RU2754465C1 - Method for obtaining an erythrocyte diagnosticum for the indirect hemagglutination reaction (ihar) with clostridiosis of animals - Google Patents
Method for obtaining an erythrocyte diagnosticum for the indirect hemagglutination reaction (ihar) with clostridiosis of animals Download PDFInfo
- Publication number
- RU2754465C1 RU2754465C1 RU2020139350A RU2020139350A RU2754465C1 RU 2754465 C1 RU2754465 C1 RU 2754465C1 RU 2020139350 A RU2020139350 A RU 2020139350A RU 2020139350 A RU2020139350 A RU 2020139350A RU 2754465 C1 RU2754465 C1 RU 2754465C1
- Authority
- RU
- Russia
- Prior art keywords
- type
- perfringens
- animals
- clostridiosis
- erythrocyte
- Prior art date
Links
Classifications
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61K—PREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
- A61K39/00—Medicinal preparations containing antigens or antibodies
- A61K39/02—Bacterial antigens
- A61K39/08—Clostridium, e.g. Clostridium tetani
-
- G—PHYSICS
- G01—MEASURING; TESTING
- G01N—INVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
- G01N33/00—Investigating or analysing materials by specific methods not covered by groups G01N1/00 - G01N31/00
- G01N33/48—Biological material, e.g. blood, urine; Haemocytometers
- G01N33/50—Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing
- G01N33/53—Immunoassay; Biospecific binding assay; Materials therefor
- G01N33/531—Production of immunochemical test materials
Landscapes
- Health & Medical Sciences (AREA)
- Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
- Immunology (AREA)
- Engineering & Computer Science (AREA)
- Chemical & Material Sciences (AREA)
- Biomedical Technology (AREA)
- General Health & Medical Sciences (AREA)
- Medicinal Chemistry (AREA)
- Hematology (AREA)
- Microbiology (AREA)
- Molecular Biology (AREA)
- Urology & Nephrology (AREA)
- Food Science & Technology (AREA)
- Pathology (AREA)
- Physics & Mathematics (AREA)
- Analytical Chemistry (AREA)
- Biochemistry (AREA)
- Biotechnology (AREA)
- General Physics & Mathematics (AREA)
- Cell Biology (AREA)
- Mycology (AREA)
- Pharmacology & Pharmacy (AREA)
- Epidemiology (AREA)
- Animal Behavior & Ethology (AREA)
- Public Health (AREA)
- Veterinary Medicine (AREA)
- Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)
Abstract
Description
Способ получения эритроцитарного диагностикума для реакции непрямой гемагглютинации (РНГА) относится к методам лабораторной диагностики анаэробной энтеротоксемии (клостридиоза) сельскохозяйственных животных и может быть использован в ветеринарной медицине.The method of obtaining erythrocyte diagnosticum for the reaction of indirect hemagglutination (RNGA) refers to the methods of laboratory diagnostics of anaerobic enterotoxemia (clostridiosis) of farm animals and can be used in veterinary medicine.
Анаэробная энтеротоксемия - остропротекающая болезнь животных различных видов (овец, телят, поросят, пушных зверей, птиц и др.) первых дней жизни, характеризующаяся общим токсикозом организма с признаками поражения нервной системы и желудочно-кишечного тракта, возникающая в результате интенсивного размножения в кишечнике различных типов Cl. perfringens и всасывания образовавшихся при этом токсинов [1, 15-17].Anaerobic enterotoxemia is an acute disease of animals of various species (sheep, calves, piglets, fur animals, birds, etc.) of the first days of life, characterized by general toxicosis of the body with signs of damage to the nervous system and gastrointestinal tract, resulting from intensive reproduction in the intestines of various types Cl. perfringens and absorption of the resulting toxins [1, 15-17].
Возбудитель болезни - Cl. perfringens, который по выделению токсинов подразделяют на шесть типов: А, В, С, D, Е и F, которые отличаются друг от друга антигенной структурой вырабатываемых ими токсинов. У ягнят анаэробную энтеротоксемию вызывает возбудитель типов В, D; у телят -типы А, С, D; у поросят - в основном тип С, реже другие [2-4, 12-14].The causative agent of the disease is Cl. perfringens, which, according to the release of toxins, are divided into six types: A, B, C, D, E and F, which differ from each other in the antigenic structure of the toxins they produce. In lambs, anaerobic enterotoxemia is caused by the pathogen of types B, D; calves - types A, C, D; in piglets - mainly type C, less often others [2-4, 12-14].
На сегодняшний день диагноз на инфекционную энтеротоксемию животных ставят на основании эпизоотологических, клинических, патологоанатомических данных и результатов лабораторных исследований [5, 11].Today, the diagnosis of infectious enterotoxemia in animals is made on the basis of epizootological, clinical, pathological data and the results of laboratory studies [5, 11].
Диагноз на инфекционную энтеротоксемию животных считают установленным в случае:The diagnosis of infectious enterotoxemia of animals is considered established in the case of:
- обнаружения токсина в фильтрате содержимого тонкого отдела кишечника биологическим методом и определения его типа в реакции нейтрализации с типоспецифическими сыворотками;- detection of the toxin in the filtrate of the contents of the small intestine by a biological method and determination of its type in the neutralization reaction with type-specific sera;
- выделения из содержимого тонкого отдела кишечника культуры, продуцирующей токсин, тип которого установлен в реакции нейтрализации с типоспецифическими сыворотками, с характерными для данного возбудителя свойствами.- isolation from the contents of the small intestine of a culture producing a toxin, the type of which is established in the neutralization reaction with type-specific sera, with properties characteristic of this pathogen.
Недостатками лабораторного метода являются:The disadvantages of the laboratory method are:
- трудоемкость и длительность исследований, требующая для постановки диагноза до 8 рабочих дней [10];- labor intensity and duration of research, requiring up to 8 working days to make a diagnosis [10];
- высокая себестоимость исследования (дороговизна питательных сред, реактивов, затраты на приобретение и содержание лабораторных животных).- high cost of research (high cost of nutrient media, reagents, the cost of purchasing and maintaining laboratory animals).
Так же в настоящее время для диагностики многих инфекционных заболеваний применяют серологические методы (РСК, РДП, РНГА, ИФА и др.), позволяющие по титрам специфических антител в сыворотке крови выявлять больных животных, а также определять напряженность иммунитета у вакцинированных животных. Известны способы получения эритроцитарных диагностикумов, используемых для серологической диагностики различных инфекционных заболеваний, таких как сальмонеллез, микоплазмоз, эшерихиоз [6-8]. В доступных источниках научно-технической литературы не обнаружена информация о способе приготовления эритроцитарного диагностикума для выявления антител к Cl. perfringens.Also, at present, serological methods (RSK, RDP, RNGA, ELISA, etc.) are used to diagnose many infectious diseases, which make it possible to identify sick animals by titers of specific antibodies in blood serum, as well as to determine the strength of immunity in vaccinated animals. Known methods of obtaining erythrocyte diagnostics used for serological diagnosis of various infectious diseases, such as salmonellosis, mycoplasmosis, escherichiosis [6-8]. In the available sources of scientific and technical literature, no information was found on the method of preparing an erythrocyte diagnosticum for the detection of antibodies to Cl. perfringens.
Наиболее близким к заявляемому способу является способ получения иммуноферментной тест-системы для определения специфических антител к четырем серотипам Cl. perfringens (А, В, С, D) [9]. Однако недостатками метода ИФА являются трудоемкость, длительность процедуры проведения реакции, необходимость приобретения дорогостоящего оборудования.Closest to the claimed method is a method for producing an enzyme-linked immunosorbent assay for determining specific antibodies to four Cl serotypes. perfringens (A, B, C, D) [9]. However, the disadvantages of the ELISA method are the laboriousness, the duration of the reaction procedure, and the need to purchase expensive equipment.
Технический результат, на достижение которого направлено изобретение, заключается в разработке реакции непрямой гемагглютинации (РНГА) для определения специфических антител к бактериям Cl. perfringens, обладающей высокой специфичностью и чувствительностью, позволяющей одновременно определять специфические антитела к пяти серотипам Cl. perfringens (А, В, С, D, Е) и по их титрам достоверно диагностировать анаэробную энтеротоксемию среди невакцинированного поголовья и контролировать напряженность поствакцинального иммунитета у вакцинированных животных.The technical result to which the invention is directed consists in the development of an indirect hemagglutination reaction (RNGA) for the determination of specific antibodies to Cl bacteria. perfringens, which has high specificity and sensitivity, allowing the simultaneous determination of specific antibodies to five Cl serotypes. perfringens (A, B, C, D, E) and their titers can reliably diagnose anaerobic enterotoxemia among unvaccinated livestock and control the intensity of post-vaccination immunity in vaccinated animals.
Для достижения названного технического результата разработан набор препаратов для постановки РНГА, содержащий специфический эритроцитарный антиген, изготовленный путем сенсибилизации формалинизированных и танизированных эритроцитов барана смесью анатоксинов пяти штаммов Cl. perfringens №28 (тип A), LD-1 (тип В), №392 (тип С), №213 (тип D), №342 (тип Е), полученных из культуральной среды путем осаждения сульфатом аммония инактивированных формалином токсинов при температуре 37°С (анатоксинов) и соматическими антигенами, полученными путем воздействия на штаммы Cl. perfringens №28, LD-1, №392, №213, №342 ультразвуком на дезинтеграторе «Bandelin GM3100» при частоте 20 кГц ± 500 Гц в течение 10 мин при температуре 4°С, а также контрольную положительную сыворотку, полученную к антигенам Cl. perfringens №28, LD-1, №392, №213, №342 с активностью в РНГА 1:256 и контрольную отрицательную сыворотку.To achieve the named technical result, a set of preparations for setting RNGA has been developed, containing a specific erythrocyte antigen produced by sensitizing formalinized and tanned sheep erythrocytes with a mixture of toxoids of five Cl strains. perfringens No. 28 (type A), LD-1 (type B), No. 392 (type C), No. 213 (type D), No. 342 (type E) obtained from the culture medium by precipitation of formalin-inactivated toxins with ammonium sulfate at temperature 37 ° C (toxoid) and somatic antigens obtained by exposure to Cl strains. perfringens No. 28, LD-1, No. 392, No. 213, No. 342 by ultrasound on a Bandelin GM3100 disintegrator at a frequency of 20 kHz ± 500 Hz for 10 minutes at a temperature of 4 ° C, as well as a control positive serum obtained to antigens Cl ... perfringens No. 28, LD-1, No. 392, No. 213, No. 342 with activity in RNGA 1: 256 and control negative serum.
Предлагаемая реакция непрямой гемагглютинации высоко чувствительна и специфична, экспрессивна, не требует дорогостоящего оборудования, проста в постановке. Реакцию можно поставить даже в условиях животноводческих комплексов, что немаловажно, когда необходимо быстро поставить диагноз.The proposed reaction of indirect hemagglutination is highly sensitive and specific, expressive, does not require expensive equipment, and is easy to set up. The reaction can be delivered even in livestock complexes, which is important when it is necessary to quickly diagnose.
Способ получения эритроцитарного диагностикума для РНГА включает в себя:The method of obtaining erythrocyte diagnosticum for RNGA includes:
- получение антигенов и анатоксинов Cl. perfringens;- obtaining antigens and toxoids Cl. perfringens;
- сенсибилизация эритроцитов смесью антигенов и анатоксинов;- sensitization of erythrocytes with a mixture of antigens and toxoids;
- получение контрольных положительной и отрицательной сывороток.- obtaining control positive and negative sera.
Заявляемый способ иллюстрируется примерами получения эритроцитарного антигенного диагностикума.The inventive method is illustrated by examples of obtaining erythrocyte antigenic diagnosticum.
Пример 1. Получение антигенов, необходимых для сенсибилизации эритроцитов, из производственных штаммов Cl. perfringens №28 (тип A), LD-1 (тип В), №392 (тип С), №213 (тип D), №342 (тип Е). Получают два вида антигена - анатоксин и соматический антиген.Example 1. Obtaining antigens necessary for sensitization of erythrocytes from industrial strains Cl. perfringens # 28 (type A), LD-1 (type B), # 392 (type C), # 213 (type D), # 342 (type E). Two types of antigen are obtained - toxoid and somatic antigen.
1.1. Получение анатоксинов.1.1. Getting toxoids.
Анатоксины Cl. perfringens типов А, В, С, D, Е получают путем посева штаммов на мясо-печеночно-казеиновую среду под вазелиновым маслом. Посевы инкубируют в течение 8-12 ч при температуре 37-38°С. При этом концентрация токсинов в культуры достигает до 4-5 Dlm/см3. Для превращения токсинов в анатоксин в культуру добавляют формалин до 0,5%-ной конечной концентрации и выдерживают при температуре 37-38°С в течение 10 суток. Затем после удаления вазелинового масла культуру центрифугируют при 3000 об/мин. в течение 30 минут. Осадок, представлявший собой бактериальные клетки Cl. perfringens, удаляют, а анатоксин (надосадочную жидкость) используют для сенсибилизации эритроцитов. Очистку и концентрирование анатоксина проводят методом осаждения его сульфатом аммония путем добавления его до 50% к общему объему (в конечной концентрации). Далее смесь центрифугируют при 2000 об/мин в течение 30 минут, затем осадок ресуспендируют дистиллированной водой в соотношении 1:10. Полученный анатоксин диализируют против дистиллированной воды в течение 24 ч.Cl toxoids. perfringens types A, B, C, D, E are obtained by inoculating the strains on a meat-liver-casein medium under vaseline oil. Crops are incubated for 8-12 hours at 37-38 ° C. At the same time, the concentration of toxins in the culture reaches up to 4-5 Dlm / cm 3 . To convert toxins into toxoid, formalin is added to the culture to a 0.5% final concentration and kept at a temperature of 37-38 ° C for 10 days. Then, after removing the vaseline oil, the culture is centrifuged at 3000 rpm. within 30 minutes. The sediment, which was the bacterial cells Cl. perfringens are removed, and the toxoid (supernatant) is used to sensitize erythrocytes. Purification and concentration of toxoid is carried out by precipitating it with ammonium sulfate by adding it up to 50% to the total volume (at the final concentration). Then the mixture is centrifuged at 2000 rpm for 30 minutes, then the precipitate is resuspended with distilled water in a ratio of 1:10. The resulting toxoid is dialyzed against distilled water for 24 hours.
1.2. Получение соматического антигена.1.2. Obtaining somatic antigen.
Штаммы Cl. perfringens типов А, В, С, D, Е высевают на мясопептонный агар с добавлением 2% глюкозы и 15% крови барана. Получают суточную культуру посредством культивирования в анаэростате при температуре 37°С. Выросшую культуру смывают 0,85% изотоническим раствором хлористого натрия. Бактериальную взвесь трижды отмывают стерильным физиологическим раствором для освобождения от компонентов питательной среды путем центрифугирования при 2000 об/мин в течение 30 минут. Осадок микробных клеток разводят стерильным физиологическим раствором до получения взвеси 20 млрд. микробных клеток в 1 мл по стандарту мутности им. Л.А. Тарасевича. Микробные клетки разрушают ультразвуком на дезинтеграторе «Bandelin GM3100» при частоте 20 кГц ± 500 Гц в течение 10 минут при температуре 4°С. Затем суспензию центрифугируют при 3000 об/мин в течение 30 минут. Осадок удаляют, надосадочную жидкость используют в качестве антигена для сенсибилизации эритроцитов барана.Strains Cl. perfringens types A, B, C, D, E are plated on mesopatamia agar supplemented with 2% glucose and 15% ram blood. Get a daily culture by cultivation in an anaerostat at a temperature of 37 ° C. The grown culture is washed off with 0.85% isotonic sodium chloride solution. The bacterial suspension is washed three times with sterile saline to free it from the components of the nutrient medium by centrifugation at 2000 rpm for 30 minutes. The sediment of microbial cells is diluted with sterile saline until a suspension of 20 billion microbial cells in 1 ml is obtained according to the turbidity standard. L.A. Tarasevich. Microbial cells are destroyed by ultrasound on a Bandelin GM3100 disintegrator at a frequency of 20 kHz ± 500 Hz for 10 minutes at a temperature of 4 ° C. Then the suspension is centrifuged at 3000 rpm for 30 minutes. The sediment is removed, the supernatant is used as an antigen for sensitizing sheep erythrocytes.
В антигенах, приготовленных 1 и 2 способами, измеряют концентрацию белка с помощью спектрофотометра по методу Лоури. Концентрацию белка доводят до 0,4-0,5 мг/мл фосфатно-солевым буферным раствором (рН 6,4).In antigens prepared by methods 1 and 2, the protein concentration is measured using a spectrophotometer according to the Lowry method. The protein concentration is adjusted to 0.4-0.5 mg / ml with phosphate buffered saline (pH 6.4).
Пример 2. Подготовка эритроцитов к нагрузке антигенного комплекса.Example 2. Preparation of erythrocytes for the load of the antigenic complex.
2.1. В качестве клеточной основы для приготовления диагностикума используют эритроциты барана. Кровь у баранов-доноров отбирают из яремной вены, дефибринируют по общепринятой методике и разводят ее 1:1 фосфатно-солевым буферным раствором (рН 6,4).2.1. Sheep erythrocytes are used as a cellular basis for the preparation of diagnosticum. Blood from donor rams is taken from the jugular vein, defibrinated according to the generally accepted method and diluted 1: 1 with phosphate buffered saline (pH 6.4).
К 100 мл разведенной крови добавляют 20% раствор формалина порциями в возрастающих объемах через каждые 15 мин: 6, 7, 8, 9 и 10 мл. Смесь инкубируют в водяной бане, тщательно перемешивая после каждого внесения. Затем смесь центрифугируют при 1500 об/мин в течение 15 мин, трижды отмывают фосфатно-солевым буферным раствором (рН 7,2) и готовят 3% взвесь эритроцитов. Эритроцитарную суспензию отстаивают при температуре (4±2)°С в течение 2 суток.A 20% formalin solution is added to 100 ml of diluted blood in portions in increasing volumes every 15 minutes: 6, 7, 8, 9 and 10 ml. The mixture is incubated in a water bath, stirring thoroughly after each addition. Then the mixture is centrifuged at 1500 rpm for 15 minutes, washed three times with phosphate-buffered saline (pH 7.2) and a 3% suspension of erythrocytes is prepared. The erythrocyte suspension is defended at a temperature of (4 ± 2) ° С for 2 days.
2.2. Для последующей модификации поверхности эритроцитов к полученной суспензии добавляют равный объем раствора танина (1:20000) в физиологическом растворе. Смесь инкубируют при температуре (37±1)°С на магнитной мешалке в течение 20 минут, эритроциты осаждают центрифугированием при 1500 об/мин. Осадок эритроцитов трижды отмывают фосфатно-солевым буферным раствором (рН 7,2) и ресуспендируют в этом же растворе до 3% концентрации эритроцитов.2.2. For the subsequent modification of the erythrocyte surface, an equal volume of tannin solution (1: 20000) in physiological saline is added to the resulting suspension. The mixture is incubated at a temperature of (37 ± 1) ° C on a magnetic stirrer for 20 minutes, erythrocytes are precipitated by centrifugation at 1500 rpm. The erythrocyte sediment is washed three times with phosphate-buffered saline (pH 7.2) and resuspended in the same solution to 3% erythrocyte concentration.
2.3. Для сенсибилизации эритроцитов используют смесь анатоксинов и соматических антигенов пяти серотипов Cl. perfringens (А, В, С, D, Е), соединенных в равных объемах. К 3% взвеси танизированных эритроцитов добавляют равный объем композиционной смеси антигена. Суспензию инкубируют в водяной бане при температуре (37±1)°С при непрерывном помешивании в течение 2-х часов. Затем сенсибилизированные эритроциты центрифугированием при 1500 об/мин отмывают трижды фосфатно-солевым буферным раствором (рН 7,2) и ресуспендируют в этом же растворе до 3% концентрации. Полученный эритроцитарный диагностикум консервируют формалином до 1% конечной концентрации.2.3. For sensitization of erythrocytes, a mixture of toxoids and somatic antigens of five Cl serotypes is used. perfringens (A, B, C, D, E) combined in equal volumes. An equal volume of the composite antigen mixture is added to a 3% suspension of tanned erythrocytes. The suspension is incubated in a water bath at a temperature of (37 ± 1) ° С with continuous stirring for 2 hours. Then the sensitized erythrocytes are washed three times with phosphate-saline buffer solution (pH 7.2) by centrifugation at 1500 rpm and resuspended in the same solution to 3% concentration. The resulting erythrocyte diagnosticum is preserved with formalin up to 1% of the final concentration.
Пример 3. Получение контрольных сывороток.Example 3. Obtaining control sera.
3.1. Для получения положительной контрольной сыворотки к антигенам Cl. perfringens типов А, В, С, D, Е используют десять кроликов живой массой 3,0-3,5 кг. Для гипериммунизации композиционную смесь антигенов вводят в краевую вену уха трижды с интервалом 4 дня. На первом этапе объем вводимой смеси составляет 0,5 мл, затем 1 мл и 2 мл. Через семь дней после иммунизации берут кровь для проверки титров и специфичности присутствующих антител.3.1. To obtain a positive control serum to Cl antigens. perfringens types A, B, C, D, E, ten rabbits weighing 3.0-3.5 kg are used. For hyperimmunization, the composite mixture of antigens is injected into the marginal ear vein three times with an interval of 4 days. At the first stage, the volume of the injected mixture is 0.5 ml, then 1 ml and 2 ml. Seven days after immunization, blood is drawn to check the titers and specificity of the antibodies present.
3.2. Отрицательную контрольную сыворотку получают от кроликов в возрасте от полугода до года, после выдерживания их в карантине в течение 30 дней. Предварительно сыворотку крови исследуют в ИФА на содержание специфических антител.3.2. Negative control serum is obtained from rabbits aged from six months to one year, after keeping them in quarantine for 30 days. Preliminary, blood serum is examined in ELISA for the content of specific antibodies.
Пример 4. Определение активности и специфичности эритроцитарного антигенного диагностикума.Example 4. Determination of the activity and specificity of erythrocyte antigenic diagnosticum.
4.1. Для определения активности и специфичности проводят постановку РНГА с контрольными сыворотками (положительной и отрицательной к Cl. perfringens) и гетерологическими (гипериммунные сыворотки к Escherichia coli, Moraxella bovis). Реакцию ставят в круглодонных планшетах для иммунологических реакций с объемом 200 мкл.4.1. To determine the activity and specificity, RNGA is performed with control sera (positive and negative to Cl. Perfringens) and heterologous (hyperimmune sera to Escherichia coli, Moraxella bovis). The reaction is set up in round-bottom plates for immunological reactions with a volume of 200 μl.
Контрольные сыворотки разводят с 1:8 до 1:1024. В качестве разбавителя используют 0,15 М фосфатно-буферный физиологический раствор рН 7,2-7,4. Проведены испытание трех серий эритроцитарного клостридиозного диагностикума в РНГА, результаты которых приведены в таблице 1.Control sera are diluted from 1: 8 to 1: 1024. A 0.15 M phosphate buffered saline solution, pH 7.2-7.4, is used as a diluent. Three series of erythrocyte clostridial diagnosticum were tested in RNGA, the results of which are shown in Table 1.
Из таблицы видно, что с положительной клостридиозной сывороткой диагностикум реагирует на четыре креста до разведения 1:128, на три креста 1:256, на один крест 1:512. С гетерологичными сыворотками сомнительная реакция на два креста наблюдается в разведении 1:8. С отрицательной сывороткой и фосфатно-солевым буферным раствором (рН 7,2) наблюдается отрицательная реакция во всех разведениях.The table shows that with a positive Clostridial serum, the diagnosticum reacts to four crosses up to a dilution of 1: 128, to three crosses 1: 256, to one cross 1: 512. With heterologous sera, a dubious response to two crosses is observed at a 1: 8 dilution. With negative serum and phosphate buffered saline (pH 7.2), a negative reaction is observed in all dilutions.
Пример 5. Иллюстрация применения РНГА.Example 5. Illustration of the use of RNGA.
Ампулу с эритроцитарным антигеном тщательно встряхивают до получения однородной взвеси, вскрывают и разводят антиген в соотношении 1:2 разбавителем. В качестве разбавителя используют 0,15 М фосфатно-буферный физиологический раствор рН 7,2-7,4.The ampoule with the erythrocyte antigen is thoroughly shaken until a homogeneous suspension is obtained, opened and the antigen is diluted in a 1: 2 ratio with a diluent. A 0.15 M phosphate buffered saline solution, pH 7.2-7.4, is used as a diluent.
Приготовление 0,15 М фосфатно-буферного физиологического раствора. В мерную колбу на 1 л вносят 20,4 г химически чистого безводного однозамещенного фосфорнокислого калия, растворяют в небольшом количестве дистиллированной воды и доводят водой до метки 1 л (раствор А). В другую мерную колбу на 1 л вносят 26,7 химически чистого двузамещенного фосфорнокислого натрия двуводного, растворяют в небольшом количестве воды и доводят водой до метки 1 л (раствор Б). Растворы А и Б можно хранить при температуре 4-6°С в течение месяца.Preparation of 0.15 M phosphate buffered saline. Into a 1 L volumetric flask, add 20.4 g of chemically pure anhydrous monosubstituted potassium phosphate, dissolve in a small amount of distilled water and bring up to the mark of 1 L with water (solution A). In another 1 liter volumetric flask, 26.7 chemically pure disubstituted sodium phosphate dihydrate is added, dissolved in a small amount of water and brought to the mark of 1 liter with water (solution B). Solutions A and B can be stored at 4-6 ° C for a month.
Для приготовления буфера к 24 мл раствора А добавляют 76 мл раствора Б и вносят 0,85 г. химически чистого хлористого натрия. С помощью рН-метра проверяют рН буфера и при необходимости доводят рН до 7,2-7,4 растворами А или Б.To prepare a buffer, 76 ml of solution B is added to 24 ml of solution A and 0.85 g of chemically pure sodium chloride is added. Using a pH meter, check the pH of the buffer and, if necessary, adjust the pH to 7.2-7.4 with solutions A or B.
Постановка реакции.Statement of the reaction.
РНГА ставят с использованием микропанелей с U-образными лунками наборов для микротитрования Такачи или Титертек. В лунки микропанели с помощью многоканальной пипетки вносят по 0,05 мл разбавителя. В первые лунки одноканальной пипеткой вносят исследуемые сыворотки в количестве 0,05 мл и последовательными переносами получают двукратные разведения сывороток от 1:2 до 1:256. Затем во все лунки вносят по 0,025 мл 1%-ной взвеси эритроцитарного антигена. Панель осторожно встряхивают и оставляют при комнатной температуре на 6 ч. Одновременно с постановкой РНГА ставят контроли: контроль на отсутствие спонтанной агглютинации эритроцитарного антигена в разбавителе. В 4-6 лунок микропанели вносят по 0,05 мл разбавителя, затем по 0,025 мл 1%-ной взвеси эритроцитарного антигена; контроль на отсутствие агглютинации эритроцитарного антигена отрицательной сывороткой крупного рогатого скота. В ряд лунок микропанели вносят по 0,05 мл разбавителя, в первую лунку вносят 0,05 мл отрицательной сыворотки и титруют как исследуемые сыворотки, затем в каждую лунку вносят по 0,025 мл 1-%-ной взвеси эритроцитарного антигена; контроль на активность эритроцитарного антигена со специфической сывороткой крупного рогатого скота. В ряд лунок микропанели вносят по 0,05 мл разбавителя, в первую лунку вносят 0,05 мл специфической сыворотки и титруют как исследуемые сыворотки, 0,025 мл 1%-ной взвеси эритроцитарного антигена.RNGA is set using microtiter plates with U-shaped wells of Takachi or Tittek microtiter kits. Add 0.05 ml of diluent to the wells of the micropanel using a multichannel pipette. In the first wells with a single-channel pipette, the test sera are added in an amount of 0.05 ml, and by successive transfers, two-fold dilutions of the sera from 1: 2 to 1: 256 are obtained. Then, 0.025 ml of 1% suspension of erythrocyte antigen is added to all wells. The panel is gently shaken and left at room temperature for 6 hours. Simultaneously with the RNGA, controls are set: control for the absence of spontaneous agglutination of erythrocyte antigen in the diluent. In 4-6 wells of the micropanel add 0.05 ml of diluent, then 0.025 ml of 1% suspension of erythrocyte antigen; control for the absence of agglutination of erythrocyte antigen by negative serum of cattle. 0.05 ml of diluent is added to a row of micropanel wells, 0.05 ml of negative serum is added to the first well and titrated as test sera, then 0.025 ml of 1% suspension of erythrocyte antigen is added to each well; control for the activity of erythrocyte antigen with specific serum of cattle. 0.05 ml of diluent is added to a row of micropanel holes, 0.05 ml of specific serum is added to the first well and titrated as test sera, 0.025 ml of 1% suspension of erythrocyte antigen.
Учет реакции.Taking into account the reaction.
Реакцию учитывают через 2-2,5 ч. За титр в РНГА принимают наивысшее разведение сыворотки, дающее четкую агглютинацию (зонт).The reaction is taken into account after 2-2.5 hours. The highest dilution of serum, which gives a clear agglutination (umbrella), is taken for the titer in the RNGA.
Учет реакции проводят только при условии четких результатов, полученных в контролях.Accounting for the reaction is carried out only under the condition of clear results obtained in the controls.
Контроль реакции.Reaction control.
В контрольных лунках на спонтанную агглютинацию эритроциты должны сесть в виде пуговицы или плотного кольца.In the control wells for spontaneous agglutination, erythrocytes should sit in the form of a button or a tight ring.
Титр отрицательной сыворотки не должен превышать 1:4.The negative serum titer should not exceed 1: 4.
Титр специфической сыворотки должен быть не ниже 1:128.The specific serum titer must be at least 1: 128.
Результаты РНГА с испытуемыми сыворотками оценивают по титрам: положительные - 1:16 и выше, сомнительные - 1:8, отрицательные - 1:4, 1:2 и нулевые.The results of RNGA with the tested sera are assessed by titers: positive - 1:16 and higher, doubtful - 1: 8, negative - 1: 4, 1: 2 and zero.
Пример 6. Испытание РНГА в производственных условиях.Example 6. Testing RNGA in production conditions.
При производственном испытании эффективности набора были использованы образцы крови крупного рогатого скота, доставленных из различных в эпизоотическом отношении по клостридиозам скотоводческих хозяйств Республики Татарстан. При этом исследовались сыворотки крови от больных, не вакцинированных и здоровых, вакцинированных животных из неблагополучных по клостридиозам хозяйств, а также от интактных животных из благополучных хозяйств. Результаты исследования сывороток крови представлены в таблице 2.In the production test of the effectiveness of the kit, blood samples of cattle were used, delivered from cattle farms of the Republic of Tatarstan, different in epizootic terms for clostridiosis. At the same time, blood sera from sick, unvaccinated and healthy, vaccinated animals from farms with clostridiosis dysfunctional, as well as from intact animals from safe farms were studied. The results of the study of blood sera are presented in table 2.
Из таблицы видно, что РНГА обладает высокой специфичностью. Она позволяет определить специфические антитела к бактериям Cl. perfringens у 96,9% здоровых вакцинированных животных и 92,7% больных анаэробной энтеротоксемией животных.The table shows that RNGA has a high specificity. It allows you to determine specific antibodies to Cl bacteria. perfringens in 96.9% of healthy vaccinated animals and 92.7% of animals with anaerobic enterotoxemia.
В то же время установлено, что компоненты набора не реагируют с сыворотками крови, полученными от интактных животных из благополучных по анаэробной энтеротоксемии хозяйств.At the same time, it was found that the components of the kit do not react with blood sera obtained from intact animals from farms without anaerobic enterotoxemia.
Таким образом, РНГА позволяет по титрам специфических антител в сыворотке крови выявлять больных животных среди невакцинированного поголовья, а также определить напряженность иммунитета у вакцинированных животных.Thus, RNGA makes it possible to identify sick animals among unvaccinated livestock by the titers of specific antibodies in blood serum, as well as to determine the strength of immunity in vaccinated animals.
Источники информацииSources of information
1. Куриленко А.Н. Бактериальные и вирусные болезни молодняка сельскохозяйственных животных / А.Н. Куриленко, В.Л. Крупальник, Н.В. Пименов. – М.: КолосС, 2006. - 296 с. 1. Kurylenko A.N. Bacterial and viral diseases of young farm animals / A.N. Kurylenko, V.L. Krupalnik, N.V. Pimenov. - M .: KolosS, 2006 .-- 296 p.
2. Салимов В.А. Некоторые особенности патологоанатомической диагностики анаэробной энтеротоксемии телят, вызванной Cl. perfringens типа А / В.А. Салимов, Н.П. Салимова // Актуальные проблемы болезней молодняка в современных условиях: мат. науч. - практ. конф. - Воронеж, 2002. - С. 527-528.2. Salimov V.A. Some features of the pathological diagnosis of anaerobic enterotoxemia in calves caused by Cl. perfringens type A / B.A. Salimov, N.P. Salimova // Actual problems of diseases of young animals in modern conditions: mat. scientific. - practical. conf. - Voronezh, 2002 .-- S. 527-528.
3. Спиридонов Г.Н. Инфекционная энтеротоксемия молодняка сельскохозяйственных животных в регионе Среднего Поволжья и Предуралья. / Г.Н. Спиридонов, А.Ф. Махмутов, М.Т. Хурамшина, А.Г. Спиридонов // Актуальные вопросы ветеринарной медицины Сибири: мат. науч. - практ. конф. - Краснообск, 2010. - С. 134-139.3. Spiridonov G.N. Infectious enterotoxemia of young farm animals in the Middle Volga region and the Urals. / G.N. Spiridonov, A.F. Makhmutov, M.T. Khuramshina, A.G. Spiridonov // Actual problems of veterinary medicine in Siberia: mat. scientific. - practical. conf. - Krasnoobsk, 2010 .-- S. 134-139.
4. Ургуев К.Р. Клостридиозы животных / К.Р. Ургуев // - М.: Россельхозиздат, 1987. - 183 с. 4. Urguev K.R. Clostridioses of animals / K.R. Urguev // - M .: Rosselkhozizdat, 1987 .-- 183 p.
5. Хаиров С.Г. Изыскание способа индикации Clostridium perfringens / С.Г. Хаиров, Д.М. Рамазанова, Ю.С. Салихов, П.М. Кабахов, Ф.И. Исаев // Вестник ветеринарии - №48 (1/2009) - С. 48-50.5. Khairov S.G. Investigation of a method for indicating Clostridium perfringens / S.G. Khairov, D.M. Ramazanova, Yu.S. Salikhov, P.M. Kabakhov, F.I. Isaev // Bulletin of veterinary medicine - No. 48 (1/2009) - P. 48-50.
6. Патент РФ №2257581 от 25.08.2003 на изобретение «Способ получения эритроцитарного диагностикума для реакции непрямой гемагнации (РНГА) при сальмонеллезах животных», Опубл.: 27.07.2005, Бюл. №21.6. RF patent №2257581 from 25.08.2003 for the invention "Method of obtaining erythrocyte diagnosticum for the reaction of indirect haemagnation (RNGA) with salmonellosis of animals", Publ .: 27.07.2005, Bull. No. 21.
7. Патент РФ №2342155 от 25.04.2007 на изобретение «Способ получения эритроцитарного диагностикума для реакции непрямой гемагглютинации (РНГА) при микоплазмозе крупного рогатого скота», Опубл.: 27.12.2008, Бюл. №36.7. RF patent №2342155 from 25.04.2007 for the invention "Method of obtaining erythrocyte diagnosticum for the reaction of indirect hemagglutination (RNGA) with mycoplasmosis in cattle", Publ .: 27.12.2008, Bull. No. 36.
8. Патент РФ №2449290 от 03.08.2009 на изобретение «Способ получения эритроцитарного антигенного диагностикума», Опубл.: 27.04.2012, Бюл. №12.8. RF patent No. 2449290 dated 03.08.2009 for the invention "Method for producing erythrocyte antigenic diagnosticum", Publ .: 27.04.2012, Bul. No. 12.
9. Патент РФ №2625031 от 11.08.2016 «Иммуноферментная тест-система для серологической диагностики анаэробной энтеротоксемии животных и контроля напряженности поствакцинального иммунитета», Опубл.: 11.07.2017 Бюл. №20.9. RF patent No. 2625031 of 08/11/2016 "Immunoassay test system for serological diagnosis of anaerobic enterotoxemia in animals and control of the intensity of post-vaccination immunity", Publ.: 07/11/2017 Bull. No. 20.
10. Лабораторные исследования в ветеринарии. Бактериальные инфекции. Справочник. Под редакцией Б.И. Антонова, М.: Агропромиздат, 1986. -352 с. 10. Laboratory research in veterinary medicine. Bacterial infections. Directory. Edited by B.I. Antonova, M .: Agropromizdat, 1986.-352 p.
11. Методические указания по лабораторной диагностике инфекционной энтеротоксемии животных и анаэробной дизентерии ягнят. Лабораторные исследования в ветеринарии. Бактериальные инфекции. Справочник. / Под ред. Б.И. Антонова, 1986.11. Guidelines for laboratory diagnosis of infectious enterotoxemia in animals and anaerobic dysentery of lambs. Laboratory research in veterinary medicine. Bacterial infections. Directory. / Ed. B.I. Antonova, 1986.
12. Ceci L. Haemorrhagic bowel syndrome in dairy cattle: possible role of Clostridium perfringens type A in the disease complex / L. Ceci, P. Paradies, M. Sasanelly, D. de Caprariis, F. Guarda//J. Vet. Med. - 2006. - 53 - P. 518-523.12. Ceci L. Haemorrhagic bowel syndrome in dairy cattle: a possible role of Clostridium perfringens type A in the disease complex / L. Ceci, P. Paradies, M. Sasanelly, D. de Caprariis, F. Guarda // J. Vet. Med. - 2006. - 53 - P. 518-523.
13. Gurjar A. Characterization of Toxin Plasmids in Clostridium perfringens type С isolates / A. Gurjar, J. Li, B.A. McClane // Infection and Immunity. - 2010. -78. - 11 - P. 4860-4869.13. Gurjar A. Characterization of Toxin Plasmids in Clostridium perfringens type C isolates / A. Gurjar, J. Li, B.A. McClane // Infection and Immunity. - 2010.-78. - 11 - P. 4860-4869.
14. Kazuaki M. Enterotoxigenic Clostridium perfringens: Detection and Identification / M. Kazuaki, L. Jihong, B.A. McClane // Microbes Environ. - Vol. 27, №4, 2012. - P. 343-349.14. Kazuaki M. Enterotoxigenic Clostridium perfringens: Detection and Identification / M. Kazuaki, L. Jihong, B.A. McClane // Microbes Environ. - Vol. 27, No. 4, 2012. - P. 343-349.
15. Mauricio A. Navarro. Mechanisms of Action and Cell Death Associated with Clostridium perfringens Toxins / Mauricio A. Navarro, Bruce A. McClane, Francisco A. Uzal // Toxins (Basel) - 2018 May 22; 10(5).15. Mauricio A. Navarro. Mechanisms of Action and Cell Death Associated with Clostridium perfringens Toxins / Mauricio A. Navarro, Bruce A. McClane, Francisco A. Uzal // Toxins (Basel) - 2018 May 22; 10 (5).
16. Shrestha A. Enterotoxic Clostridia: Clostridiun perfringens Enteric Diseases / A. Shrestha, F.A. Uzal, B.A. McClane // Microbiology Spectrum - 2018 Sep; 6(5).16. Shrestha A. Enterotoxic Clostridia: Clostridiun perfringens Enteric Diseases / A. Shrestha, F.A. Uzal, B.A. McClane // Microbiology Spectrum - 2018 Sep; 6 (5).
17. Van Kruiningen H.J. Clostridial abomasal disease in Connecticut dairy calves / H.J. Van Kruiningen, C.A. Nyaoke, I.F. Sidor, J.J. Fabis, L.S. Hinckley, K.A. Lindell // CVJ. - 2009. - 50 - P. 857-860.17. Van Kruiningen H.J. Clostridial abomasal disease in Connecticut dairy calves / H.J. Van Kruiningen, C.A. Nyaoke, I.F. Sidor, J.J. Fabis, L.S. Hinckley, K.A. Lindell // CVJ. - 2009. - 50 - P. 857-860.
Claims (1)
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
RU2020139350A RU2754465C1 (en) | 2020-11-30 | 2020-11-30 | Method for obtaining an erythrocyte diagnosticum for the indirect hemagglutination reaction (ihar) with clostridiosis of animals |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
RU2020139350A RU2754465C1 (en) | 2020-11-30 | 2020-11-30 | Method for obtaining an erythrocyte diagnosticum for the indirect hemagglutination reaction (ihar) with clostridiosis of animals |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
RU2754465C1 true RU2754465C1 (en) | 2021-09-02 |
Family
ID=77670178
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
RU2020139350A RU2754465C1 (en) | 2020-11-30 | 2020-11-30 | Method for obtaining an erythrocyte diagnosticum for the indirect hemagglutination reaction (ihar) with clostridiosis of animals |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
RU (1) | RU2754465C1 (en) |
Citations (3)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
RU2120300C1 (en) * | 1992-03-04 | 1998-10-20 | НИИ. эпидемиологии и микробиологии СО РАМН | Method of erythrocyte antigenic diagnosticum preparing |
RU2523389C1 (en) * | 2013-05-27 | 2014-07-20 | Федеральное государственное бюджетное учреждение "Федеральный Центр токсикологической, радиационной и биологической безопасности" (ФГБУ "ФЦТРБ-ВНИВИ") | Method of production of hyperimmune serum against anaerobic enterotoxaemia and colibacillosis diarrhoea in calves |
RU2625031C1 (en) * | 2016-08-11 | 2017-07-11 | федеральное государственное бюджетное научное учреждение "Федеральный центр токсикологической, радиационной и биологической безопасности" (ФГБНУ "ФЦТРБ-ВНИВИ") | Immunoenzymometric test system for animals anaerobic enterotoxemia serum diagnostics and postvaccinal immunity stress control |
-
2020
- 2020-11-30 RU RU2020139350A patent/RU2754465C1/en active
Patent Citations (3)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
RU2120300C1 (en) * | 1992-03-04 | 1998-10-20 | НИИ. эпидемиологии и микробиологии СО РАМН | Method of erythrocyte antigenic diagnosticum preparing |
RU2523389C1 (en) * | 2013-05-27 | 2014-07-20 | Федеральное государственное бюджетное учреждение "Федеральный Центр токсикологической, радиационной и биологической безопасности" (ФГБУ "ФЦТРБ-ВНИВИ") | Method of production of hyperimmune serum against anaerobic enterotoxaemia and colibacillosis diarrhoea in calves |
RU2625031C1 (en) * | 2016-08-11 | 2017-07-11 | федеральное государственное бюджетное научное учреждение "Федеральный центр токсикологической, радиационной и биологической безопасности" (ФГБНУ "ФЦТРБ-ВНИВИ") | Immunoenzymometric test system for animals anaerobic enterotoxemia serum diagnostics and postvaccinal immunity stress control |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
Bokkenheuser et al. | Detection of enteric campylobacteriosis in children | |
Corbel et al. | Differentiation of the serological response to Yersinia enterocolitica and Brucella abortus in cattle | |
BRPI0615678A2 (en) | method to diagnose infections | |
Hardy Jr et al. | Specific agglutination of Treponema pallidum by sera from rabbits and human beings with treponemal infections | |
Leinonen et al. | Comparison of counter-current immunoelectrophoresis, latex agglutination, and radioimmunoassay in detection of soluble capsular polysaccharide antigens of Haemophilus influenzae type b and Neisseria meningitidis of groups A or C. | |
Kholy et al. | Serological identification of group A streptococci from throat scrapings before culture | |
EP1747025B1 (en) | Method for diagnosing infectious diseases | |
RU2360252C1 (en) | Diagnosticum and test-system for determining activity of anti-rabies serums and preparaton of heterological anti-rabies immunoglobulin in vitro by dot-immunoanalysis method | |
RU2754465C1 (en) | Method for obtaining an erythrocyte diagnosticum for the indirect hemagglutination reaction (ihar) with clostridiosis of animals | |
Weichsel et al. | Complement fixation tests in pertussis | |
RU2625031C1 (en) | Immunoenzymometric test system for animals anaerobic enterotoxemia serum diagnostics and postvaccinal immunity stress control | |
RU2490647C2 (en) | Differential diagnostic technique for brucellosis | |
Halpern et al. | The serologic response of patients with amebiasis compared by gel-diffusion, hemagglutination, and phagocytosis techniques with a common Entamoeba histolytica antigen preparation | |
RU2111492C1 (en) | Method of diagnosis of infectious disease in animals | |
Spiridonov et al. | Results of studies on the development of an immuno-enzymed test system for diagnosing infectious enterotoxemia in animals | |
RU2310852C1 (en) | EXPRESS-DIAGNOSIS METHOD FOR DIAGNOSING HEMOPHILIC INFECTION OF b TYPE IN CHILDREN | |
RU2812350C1 (en) | Method of obtaining diagnostic serum against brucella in r-form | |
RU2324188C2 (en) | Method of preparation of antigenic polymeric helicobacter diagnosticum | |
JPS60224068A (en) | Method for deciding pathogenic bacterium in opportunistic infection | |
CN111948388B (en) | Colloidal gold test strip for detecting clostridium putrefactive, preparation method and application thereof | |
SU1120969A1 (en) | Method of diagnosis of staphylococcal pneumonia of children at early age | |
RU2110801C1 (en) | Pasteurellosis antibody erythrocyte diagnosticum and a method of its preparing | |
RU2188036C1 (en) | Method for obtaining erythrocytic antigenic glanderous diagnostic kit | |
RU2008684C1 (en) | Method for diagnosis of yersiniosis | |
SU1148621A1 (en) | Method of diagnosis of anaerobic stomatogenic infection |