RU2744095C1 - Escherichia coli jm 109 1-430 bacterial strain - producer of the recombinant pwnv1protc plasmid, which carries the sequence of the 5'-untranslated area and a section of the west nile virus 1 polyprotein gene of the genotype encoding the capsid protein - Google Patents
Escherichia coli jm 109 1-430 bacterial strain - producer of the recombinant pwnv1protc plasmid, which carries the sequence of the 5'-untranslated area and a section of the west nile virus 1 polyprotein gene of the genotype encoding the capsid protein Download PDFInfo
- Publication number
- RU2744095C1 RU2744095C1 RU2020113832A RU2020113832A RU2744095C1 RU 2744095 C1 RU2744095 C1 RU 2744095C1 RU 2020113832 A RU2020113832 A RU 2020113832A RU 2020113832 A RU2020113832 A RU 2020113832A RU 2744095 C1 RU2744095 C1 RU 2744095C1
- Authority
- RU
- Russia
- Prior art keywords
- west nile
- nile virus
- genotype
- pwnv1protc
- recombinant
- Prior art date
Links
Images
Classifications
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
- C12N15/00—Mutation or genetic engineering; DNA or RNA concerning genetic engineering, vectors, e.g. plasmids, or their isolation, preparation or purification; Use of hosts therefor
- C12N15/09—Recombinant DNA-technology
- C12N15/63—Introduction of foreign genetic material using vectors; Vectors; Use of hosts therefor; Regulation of expression
- C12N15/70—Vectors or expression systems specially adapted for E. coli
Landscapes
- Genetics & Genomics (AREA)
- Health & Medical Sciences (AREA)
- Engineering & Computer Science (AREA)
- Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
- Chemical & Material Sciences (AREA)
- Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
- Organic Chemistry (AREA)
- Biotechnology (AREA)
- General Engineering & Computer Science (AREA)
- Zoology (AREA)
- Wood Science & Technology (AREA)
- Biomedical Technology (AREA)
- Microbiology (AREA)
- Plant Pathology (AREA)
- Molecular Biology (AREA)
- Physics & Mathematics (AREA)
- Biochemistry (AREA)
- General Health & Medical Sciences (AREA)
- Biophysics (AREA)
- Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)
Abstract
Description
Изобретение относится к области генной инженерии, микробиологии, вирусологии и заключается в конструировании рекомбинантного штамма бактерий Escherichia coli JM 109 1-430, являющегося продуцентом рекомбинантной плазмиды pWNV1protC, несущей последовательность 5'-нетранслируемой области и участка гена полипротеина West Nile virus 1 генотипа, кодирующего капсидный белок. Штамм предназначен для получения рекомбинантной плазмиды pWNV1protC, используемой в качестве положительного контроля для оценки эффективности амплификации кДНК West Nile virus 1 генотипа методом полимеразной цепной реакции с обратной транскрипцией. Штамм депонирован в Государственной коллекции патогенных бактерий ФКУЗ Российский научно-исследовательский противочумный институт «Микроб» Роспотребнадзора под номером КМ 2049.The invention relates to the field of genetic engineering, microbiology, virology and consists in the construction of a recombinant bacterial strain Escherichia coli JM 109 1-430, which is the producer of the recombinant plasmid pWNV1protC, carrying the sequence of the 5'-untranslated region and a region of the gene of the West Nile
Вирус Западного Нила (West Nile virus) принадлежит семейству Flaviviridae, роду Flavivirus, антигенному комплексу вируса японского энцефалита (Japanese encephalitis virus group). По принятой в Российской Федерации классификации патогенных биологических агентов West Nile virus относится к вирусам II группы патогенности.West Nile virus belongs to the Flaviviridae family, the Flavivirus genus, the Japanese encephalitis virus group. According to the classification of pathogenic biological agents adopted in the Russian Federation, West Nile virus belongs to viruses of the II pathogenicity group.
West Nile virus является возбудителем природно-очаговой арбовирусной инфекции с трансмиссивным механизмом передачи, называемой лихорадкой Западного Нила (ЛЗН). Клинические проявления ЛЗН варьируют от гриппоподобного синдрома до развития тяжелых осложнений в форме менингита и менингоэнцефалита. Летальность при ЛЗН, в зависимости от иммунного статуса заболевших, составляет до 10%. С 1999 года лабораторно подтвержденные случаи ЛЗН на территории России регистрируют ежегодно. Ареалы West Nile virus занимают огромные территории в пределах экваториального, тропического и умеренного климатических поясов в Африке, Европе, Америке, Азии и Австралии. В России ареал распространения West Nile virus охватывает территории юга европейской части, регионы Сибири и Дальнего Востока.West Nile virus is the causative agent of a naturally occurring focal arbovirus infection with a vector-borne transmission mechanism called West Nile fever (WNF). Clinical manifestations of WNI vary from influenza-like syndrome to the development of severe complications in the form of meningitis and meningoencephalitis. Mortality in WNV, depending on the immune status of the diseased, is up to 10%. Since 1999, laboratory-confirmed cases of WNV in Russia have been registered annually. The areas of West Nile virus occupy vast territories within the equatorial, tropical and temperate climatic zones in Africa, Europe, America, Asia and Australia. In Russia, the distribution area of West Nile virus covers the territories of the south of the European part, regions of Siberia and the Far East.
По современным данным штаммы West Nile virus разделены на 9 генотипов (генетических линий). В России достоверно зарегистрирована циркуляция 1, 2 и 4 генотипов West Nile virus, имеющих разное эпидемическое значение. Так, штаммы West Nile virus генотипов 1 и 2 являются высокопатогенными для человека, а патогенность West Nile virus 4 генотипа для млекопитающих пока не установлена. Имеются данные, что инфицирование некоторыми штаммами West Nile virus субгенотипа 1a, приводит к появлению более тяжелых нейроинвазивных форм ЛЗН. Это, по-видимому, свидетельствует о более высокой вирулентности некоторых штаммов West Nile virus субгенотипа 1a по сравнению со штаммами субгенотипа 1b и генотипа 2.According to modern data, West Nile virus strains are divided into 9 genotypes (genetic lines). In Russia, the circulation of 1, 2, and 4 West Nile virus genotypes, which have different epidemic significance, has been reliably registered. Thus, strains of West Nile
Генотипирование - комплексный анализ уникального для каждого живого организма генотипа на основе изучения его генома. Циркуляция разных генетических линий вируса на территории Российской Федерации диктует необходимость разработки и совершенствования диагностических методов и тест-систем для выявления и дифференциации штаммов возбудителя лихорадки Западного Нила. Установление генотипа West Nile virus является важной составляющей эпидемиологического мониторинга для изучения путей распространения вируса и выявления связей между его генетическими вариантами и клиническими формами ЛЗН.Genotyping is a comprehensive analysis of a genotype unique to each living organism based on the study of its genome. The circulation of different genetic lines of the virus on the territory of the Russian Federation dictates the need to develop and improve diagnostic methods and test systems for identifying and differentiating strains of the causative agent of West Nile fever. Establishing the genotype of West Nile virus is an important component of epidemiological monitoring to study the pathways of the virus spread and to identify links between its genetic variants and clinical forms of WNV.
Одним из перспективных подходов выявления генотипа West Nile virus в пробах биологического материала с высокой чувствительностью и специфичностью является использование полимеразной цепной реакции с обратной транскрипцией в реальном времени (ОТ-ПЦР). Метод ОТ-ПЦР является прямым методом выявления РНК West Nile virus. В основе метода ОТ-ПЦР лежит последовательное осуществление двух процессов: реакции обратной транскрипции и полимеразной цепной реакции. Реакция обратной транскрипции представляет собой синтез цепи комплементарной ДНК (кДНК) по матрице РНК посредством фермента ревертазы. Метод ПЦР заключается в амплификации целевых участков полученной кДНК посредством фермента ДНК-полимеразы и праймеров, фланкирующих участки уникальных кДНК-мишеней, существующих только у определенных генотипов вируса.One of the promising approaches to detecting the West Nile virus genotype in samples of biological material with high sensitivity and specificity is the use of polymerase chain reaction with reverse transcription in real time (RT-PCR). RT-PCR is a direct method for detecting West Nile virus RNA. The RT-PCR method is based on the sequential implementation of two processes: the reverse transcription reaction and the polymerase chain reaction. The reverse transcription reaction is the synthesis of a complementary DNA strand (cDNA) from an RNA template by the enzyme revertase. The PCR method consists in amplifying the target regions of the obtained cDNA by means of the DNA polymerase enzyme and primers flanking regions of unique cDNA targets that exist only in certain genotypes of the virus.
Для контроля эффективности амплификации, а следовательно, и объективной оценки результатов исследования, необходимо использование положительных контрольных образцов. Положительный контроль позволяет удостовериться, что все компоненты, входящие в состав реакционной смеси, обеспечивают нормальное прохождение ПЦР. Если на этапе учета результатов ПЦР выявляют отсутствие накопления ампликонов положительного контроля, результаты для всех проб в исследуемой серии считают недостоверными, а отрицательные пробы являются потенциально ложноотрицательными.To control the efficiency of amplification, and, consequently, to objectively assess the results of the study, it is necessary to use positive control samples. The Positive Control ensures that all the components in the reaction mixture are ensuring that the PCR is progressing normally. If, at the stage of recording the PCR results, the absence of accumulation of positive control amplicons is revealed, the results for all samples in the test series are considered unreliable, and negative samples are potentially false negative.
В качестве положительного контроля применяют препарат нуклеиновой кислоты, содержащей мишени для отжига праймеров. Один из подходов заключается в использовании РНК или ДНК искомого возбудителя. Однако, в случае патогенных вирусов такой подход связан с высокой биологической опасностью. Так, геном West Nile virus представлен одноцепочечной молекулой (+) РНК (положительной полярности). Молекула (+) РНК непосредственно способна к участию в трансляции в качестве матричной, а следовательно, может являться инфекционным биологическим агентом находясь вне вирусной частицы. Кроме того, молекулы РНК в силу особенностей химической структуры являются менее стабильными, чем ДНК. В связи с этим, применяют другой подход, заключающийся в конструировании положительных контрольных образцов с помощью генно-инженерных методов. Например, клонированием специфичных участков генома вирусов в составе векторов, в качестве которых используют плазмиды или бактериофаги Е. coli. Такие образцы отвечают требованиям биологической безопасности, стабильны при хранении и используются в производстве диагностических наборов.A nucleic acid preparation containing primer annealing targets is used as a positive control. One approach is to use the RNA or DNA of the target pathogen. However, in the case of pathogenic viruses, this approach is associated with a high biological hazard. Thus, the West Nile virus genome is represented by a single-stranded molecule (+) RNA (positive polarity). The (+) RNA molecule is directly capable of participating in translation as a template, and therefore, can be an infectious biological agent outside the viral particle. In addition, RNA molecules, due to the peculiarities of their chemical structure, are less stable than DNA. In this regard, a different approach is used, which consists in constructing positive control samples using genetic engineering methods. For example, by cloning specific regions of the viral genome into vectors, which are plasmids or bacteriophages of E. coli. Such samples meet biological safety requirements, are shelf stable and are used in the production of diagnostic kits.
В литературе описан подход конструирования экспрессирующих векторов на основе плазмид с клонированными в их составе фрагментами геномов вирусов энцефалита Сент-Луис и Западного Нила [Lorch М., Collado М., М. et al. Production of recombinant NS1 protein and its possible use in encephalitic flavivirus differential diagnosis // Protein Expression and Purification 153 (2019) 18-25]. В данной работе авторы использовали для клонирования нуклеотидную последовательность West Nile virus, кодирующую неструктурный белок (NS1). Однако локус NS1 является высококонсервативным для большинства штаммов West Nile virus и больше подходит для идентификации вируса, а не для его типирования.The literature describes an approach to constructing expression vectors based on plasmids with cloned fragments of the genomes of St. Louis and West Nile encephalitis viruses [Lorch M., Collado M., M. et al. Production of recombinant NS1 protein and its possible use in encephalitic flavivirus differential diagnosis // Protein Expression and Purification 153 (2019) 18-25]. In this work, the authors used the West Nile virus nucleotide sequence encoding a non-structural protein (NS1) for cloning. However, the NS1 locus is highly conserved for most West Nile virus strains and is more suitable for virus identification rather than typing.
Наиболее близким аналогом является генетически модифицированный штамм Е. coli TGI pWNApR, сконструированный Красовской Т.Ю. и депонированный в Государственной коллекции патогенных бактерий ФКУЗ РосНИПЧИ «Микроб» Роспотребнадзора под номером KM 201 [Красовская, Т.Ю. Разработка и апробация тест-системы для выявления РНК вируса Западного Нила методом обратной транскрипции и полимеразной цепной реакции: автореферат дис. … кандидата медицинских наук: 03.00.06 / Красовская Татьяна Юрьевна. - Кольцово: Гос. науч. центр вирусологии и биотехнологии «Вектор», 2007. - 24 с.]. На основе данного штамма был создан положительный контрольный образец к разработанной автором ПЦР-тест-системе и стандартный образец предприятия, используемый для стандартизации процедуры контроля чувствительности и специфичности диагностического препарата «ГенНил-РЭФ» (ФКУЗ РосНИПЧИ «Микроб» Роспотребнадзора, Россия) в условиях производства. Известны и другие зарегистрированные на территории РФ в качестве медицинских изделий диагностические наборы реагентов для обнаружения РНК West Nile virus, в состав которых входят положительные контрольные образцы: «АмплиСенс WNV-FL» (ФБУН ЦНИИ эпидемиологии Роспотребнадзора, Россия), «ОМ-скрин ЛЗН/ЛДР-РВ» (ЗАО «СИНТОЛ», Россия). Однако все указанные выше наборы и используемые в их составе контрольные образцы применимы только для выявления West Nile virus, а не для дифференциации его генотипов.The closest analogue is the genetically modified E. coli TGI pWNAp R strain, designed by T.Yu. Krasovskaya. and deposited in the State collection of pathogenic bacteria FKUZ RosNIPCHI "Microbe" Rospotrebnadzor under the number KM 201 [Krasovskaya, T.Yu. Development and testing of a test system for detecting West Nile virus RNA by reverse transcription and polymerase chain reaction: abstract of thesis. … Candidate of medical sciences: 03.00.06 / Krasovskaya Tatyana Yurievna. - Koltsovo: State. scientific. center of virology and biotechnology "Vector", 2007. - 24 p.]. On the basis of this strain, a positive control sample was created for the PCR test system developed by the author and a standard sample of the enterprise used to standardize the procedure for monitoring the sensitivity and specificity of the diagnostic drug "GenNil-REF" (FKUZ RosNIPCHI "Microbe" Rospotrebnadzor, Russia) under production conditions ... There are other known diagnostic reagent kits for the detection of RNA West Nile virus registered in the Russian Federation as medical devices, which include positive control samples: AmpliSens WNV-FL (FBSI Central Research Institute of Epidemiology of Rospotrebnadzor, Russia), OM-screen LZN / LDR-RV "(CJSC SINTOL, Russia). However, all the above kits and the control samples used in their composition are applicable only for the detection of West Nile virus, and not for the differentiation of its genotypes.
Целью настоящего изобретения является конструирование штамма бактерий Escherichia coli JM 109 1-430, являющегося продуцентом рекомбинантной плазмиды pWNV1protC, несущей последовательность 5'-нетранслируемой области и участка гена полипротеина West Nile virus 1 генотипа, кодирующего капсидный белок, для использования в качестве положительного контроля при оценке эффективности амплификации кДНК West Nile virus 1 генотипа.The aim of the present invention is to construct a bacterial strain Escherichia coli JM 109 1-430, which is a producer of the recombinant plasmid pWNV1protC, carrying the sequence of the 5'-untranslated region and the gene region of the West Nile
Цель достигается созданием рекомбинантного штамма бактерий Escherichia coli JM 109 1-430 (Государственная коллекция патогенных бактерий ФКУЗ Российского научно-исследовательского противочумного института «Микроб» Роспотребнадзора, номер КМ 2049), предназначенного для использования в качестве положительного контроля при оценке эффективности амплификации кДНК West Nile virus 1 генотипа, являющегося продуцентом рекомбинантной плазмиды pWNV1protC, несущей фрагмент генома West Nile virus 1 генотипа размером 430 п.н., представляющий собой последовательность 5'-нетранслируемой области генома, а также участок гена полипротеина West Nile virus, кодирующего капсидный белок.The goal is achieved by creating a recombinant bacterial strain Escherichia coli JM 109 1-430 (State collection of pathogenic bacteria FKUZ of the Russian Research Anti-Plague Institute "Microbe" Rospotrebnadzor, number KM 2049), intended for use as a positive control in assessing the effectiveness of amplification of cDNA West Nile
Характеристика штамма бактерий Escherichia coli JM 109 1-430Characteristics of the bacterial strain Escherichia coli JM 109 1-430
Штамм Е. coli JM 109 1-430 получен посредством трансформации клеток штамма Е. coli JM 109 рекомбинантной плазмидой pWNV1protC, несущей фрагмент генома West Nile virus 1 генотипа размером 430 п.н., представляющий собой последовательность 5'-нетранслируемой области генома а также участок гена полипротеина West Nile virus, кодирующий капсидный белок. Полученный рекомбинантный штамм Е. coli JM 109 1-430 сохраняет основные свойства, характерные для вида Е. coli.The E. coli JM 109 1-430 strain was obtained by transforming the cells of the E. coli JM 109 strain with the recombinant plasmid pWNV1protC carrying a fragment of the West Nile
При посеве в LB-бульон (рН 7,2) через 24 часа при 37°С рекомбинантный штамм Е. coli JM 109 1-430 дает рост в виде равномерного помутнения питательной среды с образованием небольшого легко разбивающегося сероватого осадка, а также пристеночного кольца. На LB-агаре (рН 7,2) образует полупрозрачные колонии цвета среды, легко сливающиеся между собой. На среде Эндо образует бесцветные (лактозонегативные) колонии. В мазках из бульонных и агаровых культур клетки штамм Е. coli JM 109 1-430 имеют вид грамотрицательных палочек.When inoculated in LB broth (pH 7.2) after 24 hours at 37 ° C, the recombinant E. coli strain JM 109 1-430 grows in the form of a uniform turbidity of the nutrient medium with the formation of a small easily breakable grayish sediment, as well as a parietal ring. On LB-agar (pH 7.2) forms translucent colonies of medium color, easily merging with each other. On medium Endo forms colorless (lactose-negative) colonies. In smears from broth and agar cultures, the cells of the E. coli strain JM 109 1-430 have the form of gram-negative rods.
Рекомбинантный штамм Е. coli JM 109 1-430 имеет следующий спектр биохимической активности: ферментирует глюкозу с образованием кислоты и газа, не ферментирует лактозу и мочевину; не утилизирует из минимальной среды цитрат натрия; не обладает декарбоксилазой орнитина, а также дезаминазой фенилаланина; образует индол, но не образует сероводород.Recombinant strain E. coli JM 109 1-430 has the following spectrum of biochemical activity: ferments glucose with the formation of acid and gas, does not ferment lactose and urea; does not utilize sodium citrate from the minimal environment; does not possess ornithine decarboxylase, as well as phenylalanine deaminase; forms indole, but does not form hydrogen sulfide.
Рекомбинантный штамм Е. coli JM 109 1-430 чувствителен к моновалентному бактериофагу коли и пиобактериофагу поливалентному «Секстафагу».Recombinant E. coli strain JM 109 1-430 is sensitive to monovalent coli bacteriophage and polyvalent sextaphage pyobacteriophage.
Рекомбинантный штамм Е. coli JM 109 1-430 не обладает гемолитической активностью, не вирулентен для белых мышей и золотистых хомячков (LD50 штамма > 1×107 м.к.), является устойчивым к антибиотику ампициллину.The recombinant E. coli strain JM 109 1-430 does not have hemolytic activity, is not virulent for white mice and golden hamsters ( strain LD 50 > 1 × 10 7 mc), is resistant to the antibiotic ampicillin.
Рекомбинантный штамм Е. coli JM 109 1-430 хранят в лиофилизированном состоянии или на полужидком агаре LB под слоем вазелинового масла.The recombinant E. coli strain JM 109 1-430 is stored in a lyophilized state or on semi-liquid LB agar under a layer of petroleum jelly.
Полученный рекомбинантный штамм Е. coli JM 109 1-430 обладает новым (приобретенным) свойством - является продуцентом рекомбинантной плазмиды pWNV1protC. Копийность рекомбинантной плазмиды pWNV1protC составляет до 200 геномных копий на клетку. Плазмида pWNV1protC несет в своем составе Ori репликации, маркер резистентности к антибиотику ампициллину (AmpR), промотор lacZ, расположенный непосредственно перед областью вставки, и участок генома West Nile virus 1 генотипа размером 430 п.н., представляющий собой последовательность 5'-нетранслируемой области генома, а также участок гена полипротеина, кодирующий капсидный белок West Nile virus 1 генотипа.The resulting recombinant strain of E. coli JM 109 1-430 has a new (acquired) property - it is a producer of the recombinant plasmid pWNV1protC. The copy number of the recombinant plasmid pWNV1protC is up to 200 genomic copies per cell. Plasmid pWNV1protC contains Ori replication, the antibiotic resistance marker ampicillin (Amp R ), the lacZ promoter located immediately in front of the insertion region, and a 430 bp region of the
Примеры конкретного выполненияExamples of specific implementation
Пример 1. Конструирование штамма бактерий Е. coli JM 109 1-430 - продуцента рекомбинантной плазмиды pWNV1protC, несущей фрагмент генома West Nile virus 1 генотипа.Example 1. Construction of a bacterial strain E. coli JM 109 1-430 - the producer of the recombinant plasmid pWNV1protC, carrying a fragment of the genome
Конструирование штамма бактерий Е. coli JM 109 1-430 осуществляли генно-инженерными методами посредством клонирования в клетках Е. coli JM 109 фрагмента генома West Nile virus 1 генотипа в составе плазмидного вектора pUC19. В качестве фрагмента для встраивания в клонирующий вектор была выбрана последовательность 5'-нетранслируемой области генома, а также участок гена полипротеина West Nile virus 1 генотипа, кодирующий капсидный белок. Расчетная длина клонируемого фрагмента составила 430 п.н. Клонируемый фрагмент занимает позицию с 1 по 430 нуклеотид в геноме West Nile virus 1 генотипа (GenBank NCBI, Accession number: AY278441).The construction of the bacterial strain E. coli JM 109 1-430 was carried out by genetic engineering methods by cloning in E. coli JM 109 cells a fragment of the
В качестве источника вирусной РНК был использован изолят West Nile virus 1 генотипа 1115, полученный из Референс-центра по мониторингу за возбудителем лихорадки Западного Нила, функционирующего на базе ФКУЗ Волгоградский научно-исследовательский противочумный институт Роспотребнадзора. Генотип West Nile virus в использованном образце РНК был подтвержден методом секвенирования. Вирусную РНК выделяли с помощью набора реагентов «РИБО-преп» (ФБУН ЦНИИ эпидемиологии Роспотребнадзора, Россия) в соответствии с инструкцией производителя. По матрице выделенной вирусной РНК синтезировали цепь кДНК посредством реакции обратной транскрипции с использованием комплекта реагентов «РЕВЕРТА-L» (ФБУН ЦНИИ эпидемиологии Роспотребнадзора, Россия).The source of viral RNA was the
Нуклеотидную последовательность фрагмента генома West Nile virus 1 генотипа размером 430 п.н., необходимого для встраивания в плазмидный вектор, получали путем амплификации участка кДНК West Nile virus 1 генотипа посредством проведения ПЦР с оригинальными праймерами, несущими на 5'-концах сайты рестрикции для эндонуклеаз XbaI и EcoRI, имеющих следующую структуру:The nucleotide sequence of a 430 bp fragment of the
5'-TTATCA-TCTAGA-T-AGTAGTTCGCCTGTGTGAGCTGA-3'-WNV-XbaI-F5'-TTATCA-TCTAGA-T-AGTAGTTCGCCTGTGTGAGCTGA-3'-WNV-XbaI-F
5'-TTAACT-GAATTC-T-CAATTCCGGTTTTCCCTCCTCTTTTC-3'-WNV1a-EcoRI-R.5'-TTAACT-GAATTC-T-CAATTCCGGTTTTCCCTCCTCTTTTC-3'-WNV1a-EcoRI-R.
Для получения клонируемого фрагмента ПЦР-смесь объемом 25 мкл включала в себя следующие компоненты: праймеры WNV-XbaI-F/WNV1a-EcoRI-R, эквимолярную смесь четырех дНТФ (Amersham Biosciences, США), хлорид магния (Thermo Scientific, Литва), Taq буфер с сульфатом аммония (Thermo Scientific, Литва), Taq-F-полимеразу (ФБУН ЦНИИ Эпидемиологии Роспотребнадзора, Россия), кДНК-пробу. При проведении ПЦР использовали следующий режим: предварительная денатурация 95°С - 15 мин; циклирование (95°С - 10 с, 72°С - 50 с) × 50 циклов. ПЦР проводили на приборе С1000 Touch Thermal Cycler (Bio-Rad, Сингапур).To obtain the cloned fragment, the PCR mixture with a volume of 25 μL included the following components: primers WNV-XbaI-F / WNV1a-EcoRI-R, an equimolar mixture of four dNTPs (Amersham Biosciences, USA), magnesium chloride (Thermo Scientific, Lithuania), Taq buffer with ammonium sulfate (Thermo Scientific, Lithuania), Taq-F-polymerase (FBSI Central Research Institute of Epidemiology of Rospotrebnadzor, Russia), cDNA sample. When carrying out PCR, the following regime was used: preliminary denaturation at 95 ° С - 15 min; cycling (95 ° С - 10 s, 72 ° С - 50 s) × 50 cycles. PCR was performed on a C1000 Touch Thermal Cycler (Bio-Rad, Singapore).
Полученные ампликоны подвергали рестрикции с целью получения липких концов. Одновременно осуществляли рестрикцию вектора, в качестве которого использовали плазмиду pUC19 (Thermo Scientific, США). В качестве эндонуклеаз использовали ферменты XbaI и EcoRI (Thermo Scientific, США). Лигирование ампликона с вектором осуществляли в соотношении 3:1 с помощью лигазы фага Т4 (Invitrogen, США). Полученной рекомбинантной плазмидой pWNV1protC трансформировали компетентные клетки Е. coli JM 109 (Promega, США).The resulting amplicons were subjected to restriction in order to obtain sticky ends. At the same time, restriction of the vector was carried out, which was the plasmid pUC19 (Thermo Scientific, USA). The enzymes XbaI and EcoRI (Thermo Scientific, USA) were used as endonucleases. The amplicon was ligated with the vector in a 3: 1 ratio using T4 phage ligase (Invitrogen, USA). The resulting recombinant plasmid pWNV1protC was used to transform competent cells of E. coli JM 109 (Promega, USA).
В результате проведенных генно-инженерных манипуляций получен клон рекомбинантного штамма Е. coli JM 109 1-430, стабильно реплицирующий плазмиду pWNV1protC. Для достижения эффективной репликации и выделения рекомбинантной плазмиды pWNV1protC с высоким выходом штамм Е. coli JM 109 1-430 культивировали на среде LB (Lysogeny broth) по Ленноксу (Becton Dickinson, США) с содержанием ампициллина (ОАО «Синтез», Россия) в концентрации 100 мкг/мл при температуре 37°С.As a result of the genetic engineering manipulations, a clone of the recombinant E. coli strain JM 109 1-430 was obtained, stably replicating the plasmid pWNV1protC. To achieve efficient replication and isolation of the recombinant plasmid pWNV1protC with a high yield, the E. coli JM 109 1-430 strain was cultured in LB medium (Lysogeny broth) according to Lennox (Becton Dickinson, USA) with ampicillin (Sintez, Russia) at a concentration 100 μg / ml at 37 ° C.
Рекомбинантная плазмида pWNV1protC может быть выделена из клеток рекомбинантного штамма Е. coli JM 109 1-430 и использована в качестве положительного контроля при конструировании диагностических наборов реагентов для выявления штаммов West Nile virus 1 генотипа методом полимеразной цепной реакции с обратной транскрипцией.The recombinant plasmid pWNV1protC can be isolated from the cells of the recombinant E. coli JM 109 1-430 strain and used as a positive control in constructing diagnostic reagent kits for detecting
Пример 2. Идентификация фрагмента генома West Nile virus 1 генотипа в составе плазмиды pWNV1protC рекомбинантного штамма Е. coli JM 109 1-430 методами ПЦР и секвенирования.Example 2. Identification of a fragment of the
Для подтверждения присутствия клонированной последовательности участка генома West Nile virus 1 генотипа в составе рекомбинантной плазмиды pWNV1protC и определения ее размера полученные трансформанты Е. coli исследовали методом ПЦР с последующей электрофоретической детекцией.To confirm the presence of the cloned sequence of the
Из выросшей на LB-агаре суточной культуры полученного рекомбинантного штамма Е. coli JM 109 1-430 готовили суспензию в 6 мл 0,9% стерильного раствора натрия хлорида (ООО МОСФАРМ, Россия), рН 7,2±0,1 эквивалентную по концентрации 1×109 м.к./мл по отраслевому стандартному образцу мутности 10 единиц ФГБУ «НЦ ЭСМП» Минздрава России (ОСО 42-28-85-П (10МЕ)). Затем проводили десятикратные разведения подготовленной суспензии в 0,9% растворе натрия хлорида до конечной концентрации 1×104 м.к./мл.A daily culture of the obtained recombinant E. coli strain JM 109 1-430 grown on LB agar was used to prepare a suspension in 6 ml of 0.9% sterile sodium chloride solution (MOSFARM LLC, Russia), pH 7.2 ± 0.1, equivalent in
Далее к 6 мл полученной взвеси клеток Е. coli в концентрации 1×104 м.к./мл добавляли мертиолят натрия (Panreac, Испания) до конечной концентрации 1:10000 (0,01%) и прогревали его при 56°С в течение 30 минут с целью инактивации клеток Е. coli JM 109 1-430. Затем 100 мкл инактивированной взвеси клеток Е. coli JM 109 1-430 переносили в микроцентрифужную пробирку объемом 1,5 мл и осуществляли выделение ДНК с использованием коммерческого набора реагентов «РИБО-преп» (ФБУН ЦНИИ эпидемиологии Роспотребнадзора, Россия) в соответствии с инструкцией к набору.Next, sodium merthiolate (Panreac, Spain) was added to 6 ml of the resulting suspension of E. coli cells at a concentration of 1 × 10 4 m.c./ml to a final concentration of 1: 10000 (0.01%) and heated at 56 ° C in for 30 minutes to inactivate E. coli JM 109 1-430 cells. Then, 100 μl of inactivated suspension of E. coli JM 109 1-430 cells was transferred into a 1.5 ml microcentrifuge tube and DNA extraction was performed using a commercial kit of reagents "RIBO-prep" (FBUN Central Research Institute of Epidemiology of Rospotrebnadzor, Russia) in accordance with the instructions for set.
Далее образец выделенной ДНК в объеме 10 мкл использовали для амплификации методом ПЦР. Реакционная смесь объемом 25 мкл для проведения ПЦР включала в себя следующие компоненты: универсальные прямой и обратный праймеры Universal М13, фланкирующие полилинкер вектора pUC19 (Invitrogen, США), эквимолярную смесь четырех дНТФ (Amersham Biosciences, США), хлорид магния (Thermo Scientific, Литва), Taq буфер с сульфатом аммония (Thermo Scientific, Литва), Taq-F-полимеразу (ФБУН ЦНИИ Эпидемиологии Роспотребнадзора, Россия), ДНК-пробу. ПЦР проводили на приборе С1000 Touch Thermal Cycler (Bio-Rad, Сингапур) при следующем режиме: удерживание температуры 95°С - 15 мин; циклирование (×40), включающее: денатурацию при температуре 95°С - 10 с, отжиг при температуре 55°С - 15 с, элонгацию при температуре 72°С - 25 с. Результаты ПЦР учитывали методом электрофореза в 2% агарозном геле. Аналогично исследовали образец сравнения, в качестве которого использовали 10 мкл ДНК плазмиды pUC19.Then a sample of isolated DNA in a volume of 10 μl was used for PCR amplification. The reaction mixture with a volume of 25 μL for PCR included the following components: universal forward and reverse primers Universal M13, flanking the polylinker of the pUC19 vector (Invitrogen, USA), an equimolar mixture of four dNTPs (Amersham Biosciences, USA), magnesium chloride (Thermo Scientific, Lithuania ), Taq buffer with ammonium sulfate (Thermo Scientific, Lithuania), Taq-F-polymerase (FBSI Central Research Institute of Epidemiology of Rospotrebnadzor, Russia), DNA test. PCR was performed on a C1000 Touch Thermal Cycler (Bio-Rad, Singapore) in the following mode: keeping the temperature at 95 ° С for 15 min; cycling (× 40), including: denaturation at a temperature of 95 ° C - 10 s, annealing at a temperature of 55 ° C - 15 s, elongation at a temperature of 72 ° C - 25 s. The PCR results were taken into account by electrophoresis in a 2% agarose gel. Similarly, a reference sample was investigated, which was 10 μl of pUC19 plasmid DNA.
На рисунке 1 представлена электрофореграмма результатов амплификации с помощью универсальных праймеров Universal М13 исходного плазмидного вектора pUC19 и фрагмента сконструированной рекомбинантной плазмиды pWNV1protC. Цифрой 1 указан отрицательный контроль. Цифрой 2 обозначен ампликон размером 103 п.н., соответствующий фрагменту плазмиды pUC19 без вставки. Цифрой 3 обозначен ампликон размером 514 п.н., соответствующий фрагменту плазмиды pWNV1protC, в составе которого находится фрагмент генома West Nile virus 1 генотипа (430 п.н.), фланкированный участками полилинкера исходной плазмиды pUC19. Цифрой 4 отмечен маркер молекулярных масс (100-1000 п.н.). Размеры специфичных ампликонов свидетельствовали о наличии у рекомбинантной плазмиды pWNV1protC, продуцируемой штаммом Е. coli JM 109 1-430, вставки соответствующей длины (430 п.н.).Figure 1 shows an electropherogram of the results of amplification using universal primers Universal M13 of the original plasmid vector pUC19 and a fragment of the constructed recombinant plasmid pWNV1protC. The
Определение последовательности нуклеотидов встроенного участка генома West Nile virus 1 генотипа в составе рекомбинантной плазмиды pWNV1protC проводили посредством секвенирования ампликонов, полученных с помощью универсальных праймеров Universal М13. Пробоподготовку и постановку ПЦР осуществляли, как описано выше. Ампликоны, полученные с использованием ДНК плазмиды pWNV1protC, очищали с помощью хроматографических колонок CENTRI-SEP (Princeton Separations, США) в соответствии с инструкцией производителя. Для проведения реакции циклического секвенирования использовали набор BigDye Terminator v1.1 Cycle Sequencing Kit (Applied Biosystems, США). Секвенирование проводили на автоматическом генетическом анализаторе ABI Prism 3130 (Applied Biosystems, США). Результаты секвенирования анализировали с помощью компьютерной программы MEGA 7 (Pennsylvania State University, США).Determination of the nucleotide sequence of the inserted region of the West
Нуклеотидная последовательность, полученная в результате секвенирования участка рекомбинантной плазмиды pWNV1protC, выделенной из культуры штамма Е. coli JM 109 1-430, показала 100%-ную гомологию с аналогичной последовательностью РНК West Nile virus 1 генотипа, представляющей собой последовательность 5'-нетранслируемой области генома, а также фрагмент гена полипротеина West Nile virus, кодирующего капсидный белок West Nile virus 1 генотипа. Это подтверждало наличие фрагмента генома West Nile virus 1 генотипа в составе рекомбинантной плазмиды pWNV1protC, продуцируемой штаммом Е. coli JM 109 1-430.The nucleotide sequence obtained as a result of sequencing a region of the recombinant plasmid pWNV1protC isolated from the culture of E. coli JM 109 1-430 strain showed 100% homology with a similar RNA sequence of
Пример 3. Использование рекомбинантной плазмиды pWNV1protC, продуцируемой штаммом Е. coli JM 109 1-430, в качестве положительного контроля при выявлении РНК West Nile virus 1 генотипа методом ОТ-ПЦР в режиме реального времени.Example 3. Use of the recombinant plasmid pWNV1protC produced by the E. coli JM 109 1-430 strain as a positive control for detecting RNA
Возможность применения рекомбинантной плазмиды pWNV1protC, продуцируемой штаммом Е. coli JM 109 1-430, в качестве положительного контроля оценивали с использованием набора специфичных олигонуклеотидных праймеров WNV-1type-F/WNV-1type-R и флуоресцентно-меченого зонда WNV-1type-P, сконструированного специалистами ФКУЗ Волгоградский научно-исследовательский противочумный институт Роспотребнадзора для идентификации West Nile virus 1 генотипа.The possibility of using the recombinant plasmid pWNV1protC produced by the E. coli strain JM 109 1-430 as a positive control was assessed using a set of specific oligonucleotide primers WNV-1type-F / WNV-1type-R and a fluorescently labeled probe WNV-1type designed by specialists of the Volgograd Scientific Research Anti-Plague Institute of Rospotrebnadzor to identify
Пробоподготовку осуществляли, как описано в примере 2. Обратную транскрипцию и ПЦР проводили в одной пробирке. В состав реакционной смеси, помимо ДНК плазмиды pWNV1protC, входили: разработанные праймеры WNV-1type-F / WNV-1type-R и флуоресцентно-меченый зонд WNV-1type-P, а также эквимолярная смесь четырех дНТФ (Amersham Biosciences, США), ПЦР-буфер (ФБУН ЦНИИ Эпидемиологии Роспотребнадзора, Россия), раствор хлорида магния (Thermo Scientific, Литва), фермент ревертаза MMlv (Thermo Scientific, США) и фермент Taq-F-ДНК-полимераза (ФБУН ЦНИИ Эпидемиологии Роспотребнадзора, Россия). Объем реакционной смеси составлял 25 мкл. В качестве отрицательного контроля в пробирку вместо образца вносили равный объем дистиллированной воды. В качестве образца сравнения использовали РНК West Nile virus 1 генотипа.Sample preparation was carried out as described in example 2. Reverse transcription and PCR were performed in one tube. The reaction mixture, in addition to the pWNV1protC plasmid DNA, included the developed primers WNV-1type-F / WNV-1type-R and the fluorescently labeled probe WNV-1type-P, as well as an equimolar mixture of four dNTPs (Amersham Biosciences, USA), PCR -buffer (FBUN Central Research Institute of Epidemiology of Rospotrebnadzor, Russia), magnesium chloride solution (Thermo Scientific, Lithuania), MMlv revertase enzyme (Thermo Scientific, USA) and Taq-F-DNA polymerase enzyme (FBUN Central Research Institute of Epidemiology of Rospotrebnadzor, Russia). The volume of the reaction mixture was 25 μl. As a negative control, an equal volume of distilled water was added to the test tube instead of the sample. RNA
ПЦР проводили на приборе Rotor-Gene Q (QIAGEN, Германия). Условия проведения реакции: этап обратной транскрипции при 50°С - 30 мин; этап предварительной денатурации при 95°С - 15 мин; первое циклирование (5 повторений) - денатурация при 95°С - 5 с; отжиг праймеров при 56°С - 25 с; элонгация цепи при 72°С - 15 с; второе циклирование (40 повторений) - денатурация при 95°С - 5 с; отжиг праймеров при 56°С - 25 с; элонгация цепи при 72°С - 15 с. Детекцию накопления продуктов реакции осуществляли по каналу Green на этапе второго циклирования при температуре 56°С.PCR was performed on a Rotor-Gene Q device (QIAGEN, Germany). Reaction conditions: stage of reverse transcription at 50 ° С - 30 min; the stage of preliminary denaturation at 95 ° С - 15 min; first cycling (5 repetitions) - denaturation at 95 ° С - 5 s; annealing of primers at 56 ° С - 25 s; chain elongation at 72 ° С - 15 s; second cycling (40 repetitions) - denaturation at 95 ° C - 5 s; annealing of primers at 56 ° С - 25 s; chain elongation at 72 ° С - 15 s. The detection of the accumulation of reaction products was carried out via the Green channel at the second cycling stage at a temperature of 56 ° C.
При анализе данных ОТ-ПЦР в режиме реального времени положительный результат был получен как для образца ДНК рекомбинантной плазмиды pWNV1protC, выделенной из штамма Е. coli JM 109 1-430, так и для образца сравнения, представляющего собой РНК West Nile virus 1 генотипа, что свидетельствовало о возможности применения рекомбинантной плазмиды pWNV1protC в качестве положительного контроля ОТ-ПЦР. На рисунке 2 представлен график кривых нарастания флуоресценции, полученный при проведении ОТ-ПЦР. Цифрой 1 обозначен образец ДНК рекомбинантной плазмиды pWNV1protC, выделенной из штамма Е. coli JM 109 1-430. Цифрой 2 отмечен образец РНК West Nile virus 1 генотипа. Отрицательный контроль располагается ниже пороговой линии.When analyzing the RT-PCR data in real time, a positive result was obtained both for the DNA sample of the recombinant plasmid pWNV1protC isolated from the E. coli JM 109 1-430 strain, and for the reference sample, which is
Таким образом, сконструированный штамм бактерий Escherichia coli JM 109 1-430 является продуцентом рекомбинантной плазмиды pWNV1protC, которая может быть использована в качестве положительного контроля для оценки эффективности амплификации кДНК West Nile virus 1 генотипа в клинической лабораторной диагностике. Сконструированный штамм бактерий Escherichia coli JM 109 1-430 может найти применение в качестве сырья для конструирования и производственного изготовления наборов реагентов для выявления и дифференциации генотипов West Nile virus.Thus, the constructed bacterial strain Escherichia coli JM 109 1-430 is a producer of the recombinant plasmid pWNV1protC, which can be used as a positive control to evaluate the efficiency of amplification of
Claims (1)
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
RU2020113832A RU2744095C1 (en) | 2020-04-03 | 2020-04-03 | Escherichia coli jm 109 1-430 bacterial strain - producer of the recombinant pwnv1protc plasmid, which carries the sequence of the 5'-untranslated area and a section of the west nile virus 1 polyprotein gene of the genotype encoding the capsid protein |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
RU2020113832A RU2744095C1 (en) | 2020-04-03 | 2020-04-03 | Escherichia coli jm 109 1-430 bacterial strain - producer of the recombinant pwnv1protc plasmid, which carries the sequence of the 5'-untranslated area and a section of the west nile virus 1 polyprotein gene of the genotype encoding the capsid protein |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
RU2744095C1 true RU2744095C1 (en) | 2021-03-02 |
Family
ID=74857722
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
RU2020113832A RU2744095C1 (en) | 2020-04-03 | 2020-04-03 | Escherichia coli jm 109 1-430 bacterial strain - producer of the recombinant pwnv1protc plasmid, which carries the sequence of the 5'-untranslated area and a section of the west nile virus 1 polyprotein gene of the genotype encoding the capsid protein |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
RU (1) | RU2744095C1 (en) |
Citations (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
RU2715625C1 (en) * | 2019-05-21 | 2020-03-02 | Федеральное казенное учреждение здравоохранения "Волгоградский научно-исследовательский противочумный институт" Федеральной службы по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека | Set of oligonucleotide primers and a fluorescence-labeled probe for identifying a west nile virus 1 genotype |
-
2020
- 2020-04-03 RU RU2020113832A patent/RU2744095C1/en active
Patent Citations (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
RU2715625C1 (en) * | 2019-05-21 | 2020-03-02 | Федеральное казенное учреждение здравоохранения "Волгоградский научно-исследовательский противочумный институт" Федеральной службы по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека | Set of oligonucleotide primers and a fluorescence-labeled probe for identifying a west nile virus 1 genotype |
Non-Patent Citations (5)
Title |
---|
DEL AMO J. ET AL. A novel quantitative multiplex real-time RT-PCR for the simultaneous detection and differentiation of West Nile virus lineages 1 and 2, and of Usutu virus. J Virol Methods. 2013 May;189(2):321-7. * |
КРАСОВСКАЯ Т.Ю. Разработка и апробация тест-системы для выявления РНК вируса Западного Нила методом обратной транскрипции и полимеразной цепной реакции. Авто диссертации на соискание ученой степени кандидата медицинских наук. Кольцово - 2007, 24 с. * |
КРАСОВСКАЯ Т.Ю. Разработка и апробация тест-системы для выявления РНК вируса Западного Нила методом обратной транскрипции и полимеразной цепной реакции. Автореферат диссертации на соискание ученой степени кандидата медицинских наук. Кольцово - 2007, 24 с. DEL AMO J. ET AL. A novel quantitative multiplex real-time RT-PCR for the simultaneous detection and differentiation of West Nile virus lineages 1 and 2, and of Usutu virus. J Virol Methods. 2013 May;189(2):321-7. * |
ПРИЛИПОВ А. Г. Генетическая характеристика штаммов вируса Западного Нила. Авто диссертации на соискание ученой степени кандидата биологических наук. М., 2016, 50 с. * |
ПРИЛИПОВ А. Г. Генетическая характеристика штаммов вируса Западного Нила. Автореферат диссертации на соискание ученой степени кандидата биологических наук. М., 2016, 50 с. * |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
Douidah et al. | Identification of five human and mammal associated Arcobacter species by a novel multiplex-PCR assay | |
Wang et al. | Specific and rapid detection of foodborne Salmonella by loop-mediated isothermal amplification method | |
Bai et al. | Development of a loop-mediated isothermal amplification assay for sensitive and rapid detection of Mycoplasma bovis | |
Akbulut et al. | Development and application of real-time PCR assays to detect fragments of the Clostridium botulinum types A, B, and E neurotoxin genes for investigation of human foodborne and infant botulism | |
Huang et al. | Quadruplex real-time PCR assay for detection and identification of Vibrio cholerae O1 and O139 strains and determination of their toxigenic potential | |
Frasao et al. | Molecular detection, typing, and quantification of Campylobacter spp. in foods of animal origin | |
CN104946744A (en) | Method for amplifying nucleotide segment by multicross substitution and application thereof | |
US20090226895A1 (en) | Method of detecting vibrio parahaemolyticus via real-time PCR-hybridization | |
KR20130044217A (en) | Assays and kits for serotyping pseudomonas aeruginosa and oligonucleotide sequences useful in such methods and kits | |
CN109439781A (en) | For detecting the application of the Primer composition, kit and kit of clostridium difficile gene | |
Liu et al. | Simultaneous identification of Campylobacter jejuni, Campylobacter coli, and Campylobacter lari with smartcycler-based multiplex quantitative polymerase chain reaction | |
Dolka et al. | The application of the loop-mediated isothermal amplification (LAMP) method for diagnosing Enterococcus hirae-associated endocarditis outbreaks in chickens | |
US20110287965A1 (en) | Methods and compositions to detect clostridium difficile | |
EP2753629B1 (en) | Methods for detecting lyme disease | |
RU2739333C1 (en) | Bacterial strain escherichia coli jm 109 4-162, producer of recombinant plasmid pwnv4protc, carrying sequence of polyprotein gene segment of west nile virus genotype 4 encoding capsid protein | |
Lin et al. | Rectal swab sampling followed by an enrichment culture-based real-time PCR assay to detect Salmonella enterocolitis in children | |
CN113046476A (en) | Primer composition and kit for rapidly detecting N501Y mutation of novel coronavirus | |
CN109811073B (en) | Primer for rapidly detecting streptococcus agalactiae and streptococcus iniae at early stage by double PCR (polymerase chain reaction) and application of primer | |
Liu et al. | A rapid and sensitive loop-mediated isothermal amplification procedure (LAMP) for Mycoplasma hyopneumoniae detection based on the p36 gene | |
RU2744095C1 (en) | Escherichia coli jm 109 1-430 bacterial strain - producer of the recombinant pwnv1protc plasmid, which carries the sequence of the 5'-untranslated area and a section of the west nile virus 1 polyprotein gene of the genotype encoding the capsid protein | |
RU2744096C1 (en) | Escherichia coli jm 109 2-428 bacterial strain - producer of the recombinant pwnv2protc plasmid, which carries the sequence of the 5'-untranslated area and a section of the west nile virus 2 polyprotein gene of the genotype encoding the capsid protein | |
da Costa et al. | Loop-mediated isothermal amplification (LAMP) for the detection of Listeria monocytogenes and major pathogenic serotypes | |
US9115408B2 (en) | Rapid Salmonella serotyping assay | |
Ahmadi et al. | Molecular detection of Campylobacter species: comparision of 16SrRNA with slyD, cadF, rpoA, and dnaJ sequencing | |
RU2715625C1 (en) | Set of oligonucleotide primers and a fluorescence-labeled probe for identifying a west nile virus 1 genotype |