RU2743967C1 - Method of creating planting material for chrysanthemums in vitro - Google Patents

Method of creating planting material for chrysanthemums in vitro Download PDF

Info

Publication number
RU2743967C1
RU2743967C1 RU2020121099A RU2020121099A RU2743967C1 RU 2743967 C1 RU2743967 C1 RU 2743967C1 RU 2020121099 A RU2020121099 A RU 2020121099A RU 2020121099 A RU2020121099 A RU 2020121099A RU 2743967 C1 RU2743967 C1 RU 2743967C1
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
chrysanthemums
concentration
vitro
planting material
aminoven
Prior art date
Application number
RU2020121099A
Other languages
Russian (ru)
Inventor
Елена Анатольевна Калашникова
Рима Нориковна Киракосян
Original Assignee
Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования "Российский государственный аграрный университет - МСХА имени К.А. Тимирязева" (ФГБОУ ВО РГАУ - МСХА имени К.А. Тимирязева)
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования "Российский государственный аграрный университет - МСХА имени К.А. Тимирязева" (ФГБОУ ВО РГАУ - МСХА имени К.А. Тимирязева) filed Critical Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования "Российский государственный аграрный университет - МСХА имени К.А. Тимирязева" (ФГБОУ ВО РГАУ - МСХА имени К.А. Тимирязева)
Priority to RU2020121099A priority Critical patent/RU2743967C1/en
Application granted granted Critical
Publication of RU2743967C1 publication Critical patent/RU2743967C1/en

Links

Classifications

    • AHUMAN NECESSITIES
    • A01AGRICULTURE; FORESTRY; ANIMAL HUSBANDRY; HUNTING; TRAPPING; FISHING
    • A01HNEW PLANTS OR NON-TRANSGENIC PROCESSES FOR OBTAINING THEM; PLANT REPRODUCTION BY TISSUE CULTURE TECHNIQUES
    • A01H4/00Plant reproduction by tissue culture techniques ; Tissue culture techniques therefor

Landscapes

  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Developmental Biology & Embryology (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • Cell Biology (AREA)
  • Botany (AREA)
  • Environmental Sciences (AREA)
  • Breeding Of Plants And Reproduction By Means Of Culturing (AREA)

Abstract

FIELD: biotechnology.
SUBSTANCE: invention relates to biotechnology. The invention is a method of growing regenerative plants on the basis of in vitro ray flowers of chrysanthemums . The method was devised for in vitro cultivation of ray flowers of chrysanthemums and can be used for mass production of genetically homogeneous planting material of valuable varieties and hybrids of chrysanthemums. Ray flowers are used as the primary explant and are cultivated on the basis of nutrient medium which contains all the mineral salts of Murashige and Skoog medium and also such hormones as 6-benzylaminopurine (BAP) at a concentration of 1 mg/l and indoleacetic acid (IAA) at a concentration of 0.5 mg/l and Aminoven 15% at a concentration of 3 ml/l.
EFFECT: invention increases yields of chrysanthemums.
1 cl, 1 ex

Description

Изобретение относится к области сельскохозяйственной биотехнологии, и может быть использовано для массового получения генетически однородного посадочного материала ценных сортов и гибридов хризантем.The invention relates to the field of agricultural biotechnology, and can be used for the mass production of genetically homogeneous planting material of valuable varieties and hybrids of chrysanthemums.

Известен ряд способов получения растений-регенерантов in vitro: активация развития существующих в растении меристем, индукция образования адвентивных почек непосредственно на первичном экспланте, соматический эмбриогенез, индукция образования адвентивных почек в первичной и пересадочной каллусной ткани (Патент RU №2560592, Патент RU №2619052).A number of methods for producing regenerant plants in vitro are known: activation of the development of meristems existing in the plant, induction of the formation of adventive buds directly on the primary explant, somatic embryogenesis, induction of the formation of adventive buds in the primary and transplant callus tissue (Patent RU No. 2560592, Patent RU No. 2619052) ...

Однако все перечисленные способы имеют, как свои преимущества, так и недостатки.However, all of these methods have both their advantages and disadvantages.

Работы по клонированию хризантем в условиях in vitro ведутся во многих странах, в том числе и России. Однако предлагаемые технологии малоэффективны, так как они зависят от количества и качества исходного материала. Как правило, в качестве первичного экспланта при размножении растений хризантемы in vitro используют черенки с одной или двумя пазушными почками, а также листовые пластинки. Реже используют семена.In vitro cloning of chrysanthemums is being carried out in many countries, including Russia. However, the proposed technologies are ineffective, since they depend on the quantity and quality of the starting material. As a rule, cuttings with one or two axillary buds, as well as leaf blades, are used as the primary explant for in vitro propagation of chrysanthemum plants. Seeds are less commonly used.

Так, например, известен способ размножения хризантем за счет активации развития существующих в растении меристем. Способ предусматривает культивирование на питательной среде черенков длиной 10-15 мм с одной пазушной почкой, которые нарезают с растения-донора. Для массового производства генетически однородного посадочного материала ценных сортов и гибридов растений необходимо таких черенков нарезать с интактного растения в количестве не менее 50-100 шт., так как при введении в культуру in vitro после стерилизации может выжить всего лишь 50% эксплантов в связи с неправильным подбором стерилизующего агента и его временной экспозиции воздействия (см. автореферат дис…к.б.н. / Гранда Харамильо Роберто Карлос. - МСХА имени К.А. Тимирязева. - Москва, 2009. - 19 с.). Следует отметить, что недостатком данного способа является то, что изолирование такого количества черенков с одного растения может привести к полной гибели растения и потери ценного сортового материала. Кроме того, недостатком этого способа является также невысокий коэффициент размножения. Так, из одной пазушной почки развивается на первом пассаже всего лишь один микропобег. При его последующем микрочеренковании коэффициент размножения составляет, как правило, 5-7. Отсюда следует, что в течение последующего пассажа (1 месяц культивирования) можно получить всего 5-7 растений. Если коэффициент размножения на каждом пассаже составляет 5-7, то в течение 6 месяцев культивирования можно получить 16807 растений-регенерантов.For example, there is a known method of reproduction of chrysanthemums by activating the development of meristems existing in the plant. The method provides for the cultivation on a nutrient medium of cuttings 10-15 mm long with one axillary bud, which are cut from the donor plant. For mass production of genetically homogeneous planting material of valuable varieties and hybrids of plants, it is necessary to cut such cuttings from an intact plant in an amount of at least 50-100 pieces, since when introduced into an in vitro culture after sterilization, only 50% of explants can survive due to incorrect selection of a sterilizing agent and its temporary exposure (see the abstract of thesis ... Ph.D. / Grand Jaramillo Roberto Carlos. - Moscow Agricultural Academy named after K.A. Timiryazev. - Moscow, 2009. - 19 p.). It should be noted that the disadvantage of this method is that the isolation of such a number of cuttings from one plant can lead to the complete death of the plant and the loss of valuable varietal material. In addition, the disadvantage of this method is also a low multiplication factor. So, from one axillary bud, only one microshot develops at the first passage. When it is subsequently micro-cut, the multiplication factor is, as a rule, 5-7. Hence it follows that during the next passage (1 month of cultivation) only 5-7 plants can be obtained. If the multiplication factor at each passage is 5-7, then within 6 months of cultivation, 16807 regenerant plants can be obtained.

Известен способ, предусматривающий размножение растений хризантемы in vitro на питательной среде, содержащей электрохимически активированные водные растворы: анолит нейтральный катодно-обработанный (анолит АНК) и католит. Черенки с одной или двумя пазушными почками нарезают с интактных растений и подвергают стерилизации раствором анолита АНК в концентрации 0,03% в течение 10 мин. Это позволило авторам получить выход 90-100% стерильных и жизнеспособных эксплантов. На этапе собственно микроразмножения в качестве стимулятора роста и развития растений авторы предлагают применять католит, что позволяет избежать быстрого старения тканей, а также витрификации (гипергидратации) побегов, которая встречается в ходе микроразмножения (Патент RU №2560592).The known method provides for the propagation of chrysanthemum plants in vitro on a nutrient medium containing electrochemically activated aqueous solutions: neutral cathode-treated anolyte (ANK anolyte) and catholyte. Cuttings with one or two axillary buds are cut from intact plants and sterilized with anolyte ANK solution at a concentration of 0.03% for 10 minutes. This allowed the authors to obtain a yield of 90-100% of sterile and viable explants. At the stage of micropropagation proper, the authors propose to use catholyte as a stimulator of plant growth and development, which avoids rapid aging of tissues, as well as vitrification (hyperhydration) of shoots, which occurs during micropropagation (Patent RU No. 2560592).

Недостатком данного способа является то, что, как и в первом аналоге, изолирование черенков осуществляется с одного растения, что может привести к полной его гибели и даже к потери ценного сортового материала. Кроме того, недостатком указанного способа является также невысокий коэффициент размножения.The disadvantage of this method is that, as in the first analogue, the isolation of cuttings is carried out from one plant, which can lead to its complete death and even to the loss of valuable varietal material. In addition, the disadvantage of this method is also a low multiplication factor.

Известен также способ размножения растений хризантемы in vitro -получение растений-регенерантов в первичной и пересадочной каллусной ткани. В качестве первичного экспланта авторы предлагают использовать семена (Патент RU №2619052) - прототип.There is also known a method of in vitro propagation of chrysanthemum plants - obtaining regenerant plants in the primary and transplant callus tissue. As a primary explant, the authors propose to use seeds (Patent RU No. 2619052) - a prototype.

Способ предусматривает культивирование семян на питательной среде Мурасига и Скуга (МС) с добавлением 0,7% агар-агара, 1 мг/л БАП, 0,1-1 мг/л ИУК в течение 1 пассажа (26 суток) до появления каллуса. Затем каллусы пересаживают на питательную среду МС с половинной концентрацией всех компонентов и с добавлением 0,2-1 мг/л БАП. и культивируют в течение 2-4 пассажей до появления растений-регенерантов.The method provides for the cultivation of seeds on the nutrient medium of Murasig and Skoog (MS) with the addition of 0.7% agar-agar, 1 mg / l BAP, 0.1-1 mg / l IAA for 1 passage (26 days) until callus appears. Then the calli are transplanted onto the MC nutrient medium with a half concentration of all components and with the addition of 0.2-1 mg / l BAP. and cultivated for 2-4 passages until the appearance of regenerant plants.

Недостатком данного способа является то, что растения-регенеранты, полученные из дедифференцированных клеток каллусной ткани, как правило, генетически неоднородны между собой (наблюдается сомаклональная вариабельность, проявляющаяся как на морфологическом, так и на генетическом уровне) и отличаются от растения-донора. Такие растения представляют интерес только для селекционеров, но не для производителей высококачественного посадочного материала.The disadvantage of this method is that regenerant plants obtained from dedifferentiated cells of callus tissue, as a rule, are genetically heterogeneous among themselves (somaclonal variability is observed, which manifests itself both at the morphological and genetic levels) and differ from the donor plant. Such plants are of interest only to breeders and not to producers of high quality planting material.

Из анализа известных аналогичных технических решений выявлено, что технической проблемой в данной области является необходимость расширения арсенала средств, для массового получения генетически однородного посадочного материала ценных сортов и гибридов хризантем.From the analysis of known similar technical solutions, it was revealed that a technical problem in this area is the need to expand the arsenal of tools for the mass production of genetically homogeneous planting material of valuable varieties and hybrids of chrysanthemums.

Техническим результатом изобретения является ускорение процесса массового получения генетически однородного, высококачественного посадочного материала хризантем для промышленного цветоводства ценных сортов и гибридов хризантемы.The technical result of the invention is to accelerate the process of mass production of genetically homogeneous, high-quality planting material of chrysanthemums for industrial floriculture of valuable varieties and hybrids of chrysanthemums.

Для решения указанной проблемы и достижения заявленного технического результата в качестве первичного экспланта используют язычковые цветки, которые изолируют с раскрывшихся цветочных бутонов и культивируют на питательной среде, содержащей минеральные соли по прописи Мурасига и Скуга. В качестве индуктора образования адвентивных почек служат гормоны 6-бензиламинопурин (БАП) в концентрации 1 мг/л и индолилуксусная кислота (ИУК) 0,5 мг/л), а также препарат Аминовен 15-ти процентный в концентрации 3 мл/л. Развитые в побеги адвентивные почки к концу пассажа отделяют от материнского экспланта и самостоятельно культивируют на среде МС с содержанием только препарата 15%-ного Аминовен, взятого в той же концентрации.To solve this problem and achieve the claimed technical result, reed flowers are used as the primary explant, which are isolated from the opened flower buds and cultivated on a nutrient medium containing mineral salts according to the recipe of Murasig and Skoog. The hormones 6-benzylaminopurine (BAP) at a concentration of 1 mg / l and indoleacetic acid (IAA) 0.5 mg / l), as well as the drug Aminoven 15% at a concentration of 3 ml / l, serve as an inducer of the formation of adventive kidneys. By the end of the passage, adventive buds developed into shoots are separated from the maternal explant and independently cultivated on MS medium containing only 15% Aminoven, taken at the same concentration.

Конкретный пример осуществления предполагаемого способаA specific example of implementation of the proposed method

Для размножения хризантемы можно использовать один срезанный цветущий побег, на котором имеется один или несколько цветов. Каждый цветок хризантемы разделить на отдельные лепестки (язычковые цветки). С одного цветка можно изолировать до 50 шт язычковых цветков, которые помещают в марлевые мешочки и в условиях ламинар-бокса проводят поверхностную их стерилизацию 0,1%-ным раствором сулемы в течение 5 минут с последующим выдерживанием в стерильной дистиллированной воде. Язычковые лепестки вынимают из марлевого мешочка и равномерно раскладывают на поверхности питательной среды в чашках Петри. Культивирование язычковых лепестков проводят на питательной среде, содержащей минеральные соли по прописи Мурасига и Скуга. В качестве индуктора образования адвентивных почек служат гормоны (6-бензиламинопурин (БАП) в концентрации 1 мг/л и индолилуксусная кислота (ИУК) 0,5 мг/л), а также препарат Аминовен 15-ти процентный в концентрации 3 мл/л. Чашки Петри с эксплантами переносят в световую комнату, где поддерживается температура 230С, 16-часовой фотопериод, освещение белыми люминесцентными лампами, интенсивность освещения 3 тыс.лк. Через 15 суток отмечается появление в базальной части язычковых лепестков адвентивных почек, среднее количество которых составляет 12-15 шт. К концу пассажа (30 суток) адвентивные почки развиваются в побеги, которые отделяют от материнского экспланта и самостоятельно культивируют на среде МС без гормонов, но с содержанием препарата Аминовен 15-ти процентного в концентрации 3 мл/л. При среднем коэффициенте размножения 5-7 и изолировании с одного цветочного бутона всего 10 язычковых лепестков, то в течение 6 месяцев культивирования можно получить 312130 растений-регенерантов.For propagation of chrysanthemums, you can use one cut flowering shoot, which has one or more flowers. Divide each chrysanthemum flower into separate petals (reed flowers). Up to 50 reed flowers can be isolated from one flower, which are placed in gauze bags and under the conditions of a laminar box, they are surface sterilized with 0.1% mercuric chloride solution for 5 minutes, followed by keeping in sterile distilled water. The reed petals are removed from the gauze bag and evenly spread on the surface of the nutrient medium in Petri dishes. The cultivation of reed petals is carried out on a nutrient medium containing mineral salts according to the recipe of Murasig and Skoog. Hormones (6-benzylaminopurine (BAP) at a concentration of 1 mg / l and indoleacetic acid (IAA) 0.5 mg / l), as well as the drug Aminoven 15% at a concentration of 3 ml / l, serve as an inducer of the formation of adventive kidneys. Petri dishes with explants are transferred to a light room, where the temperature is maintained at 230C, a 16-hour photoperiod, illumination with white fluorescent lamps, illumination intensity 3,000 lux. After 15 days, adventitious buds appear in the basal part of the reed petals, the average number of which is 12-15 pcs. By the end of the passage (30 days), adventive buds develop into shoots, which are separated from the maternal explant and independently cultivated on MS medium without hormones, but containing 15% Aminoven at a concentration of 3 ml / l. With an average multiplication factor of 5-7 and isolation from one flower bud of only 10 reed petals, then within 6 months of cultivation, 312130 regenerant plants can be obtained.

Предлагаемый способ получения генетически однородного посадочного материала хризантем сочетает ряд положительных свойств, которые позволяют использовать ее в практической работе:The proposed method for obtaining genetically homogeneous planting material for chrysanthemums combines a number of positive properties that allow it to be used in practical work:

1. Технология предполагает использовать в небольших количествах легкодоступный материал (цветы) для клонирования.1. The technology assumes the use of readily available material (flowers) for cloning in small quantities.

2. Присутствие в составе питательной среды сильного индуктора морфогенеза (15%-ный Аминовен 3 мл/л) (дешевая технология).2. The presence in the composition of the nutrient medium of a strong inducer of morphogenesis (15% Aminoven 3 ml / l) (cheap technology).

3. Предлагаемый способ легок в исполнении по сравнению с ранее предложенными изобретениями авторов.3. The proposed method is easy to implement in comparison with the previously proposed inventions of the authors.

4. Предлагаемая технология позволяет получить в 18 раз больше посадочного материала хризантем по сравнению с ранее предложенными изобретениями авторов.4. The proposed technology makes it possible to obtain 18 times more planting material of chrysanthemums in comparison with the previously proposed inventions of the authors.

Заявляемое изобретение направлено на устранение недостатков, которые свойственны наиболее распространенным способам получения высококачественного посадочного материала растений хризантем. Известных в научно-технической и патентной литературе способов с аналогичной технологией не обнаружено. Результат, полученный у данного решения и обусловленный применением в качестве первичного экспланта язычковых цветков, не достигался в известных решениях.The claimed invention is aimed at eliminating the disadvantages that are inherent in the most common methods for obtaining high-quality planting material for chrysanthemum plants. No methods with similar technology known in the scientific, technical and patent literature have been found. The result obtained with this solution and due to the use of reed flowers as a primary explant was not achieved in the known solutions.

Использование изобретения позволит увеличить выход генетически стабильного, высококачественного посадочного материала хризантем в 18 раз, что дает возможность получать их в количестве, достаточном для промышленного цветоводства ценных сортов и гибридов хризантем.The use of the invention will increase the yield of genetically stable, high-quality planting material of chrysanthemums by 18 times, which makes it possible to obtain them in an amount sufficient for industrial floriculture of valuable varieties and hybrids of chrysanthemums.

Claims (1)

Способ получения посадочного материала хризантемы в условиях in vitro, включающий культивирование эксплантов на питательной среде, содержащей минеральные соли по прописи Мурасиге и Скуга с гормонами 6-бензиламинопурин и индолилуксусной кислоты, отличающийся тем, что в качестве первичного экспланта используют язычковые цветки хризантемы и при их культивировании в питательную среду с гормонами дополнительно добавляют препарат Аминовен 15%-ной в концентрации 3 мл/л, затем развитые в побеги адвентивные почки к концу пассажа отделяют от материнского экспланта и самостоятельно культивируют на среде МС с содержанием только препарата 15%-ного Аминовена, взятого в той же концентрации.A method for obtaining planting material of chrysanthemum in vitro, including the cultivation of explants on a nutrient medium containing mineral salts according to the recipe of Murashige and Skoog with the hormones 6-benzylaminopurine and indoleacetic acid, characterized in that reed chrysanthemum flowers are used as the primary explant and during their cultivation additionally add the preparation Aminoven 15% at a concentration of 3 ml / l to the nutrient medium with hormones, then the adventitious buds developed in shoots by the end of the passage are separated from the maternal explant and independently cultivated on MS medium containing only the preparation of 15% Aminoven taken in the same concentration.
RU2020121099A 2020-06-25 2020-06-25 Method of creating planting material for chrysanthemums in vitro RU2743967C1 (en)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2020121099A RU2743967C1 (en) 2020-06-25 2020-06-25 Method of creating planting material for chrysanthemums in vitro

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2020121099A RU2743967C1 (en) 2020-06-25 2020-06-25 Method of creating planting material for chrysanthemums in vitro

Publications (1)

Publication Number Publication Date
RU2743967C1 true RU2743967C1 (en) 2021-03-01

Family

ID=74857613

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
RU2020121099A RU2743967C1 (en) 2020-06-25 2020-06-25 Method of creating planting material for chrysanthemums in vitro

Country Status (1)

Country Link
RU (1) RU2743967C1 (en)

Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN115968788A (en) * 2022-07-28 2023-04-18 中国农业大学 Chrysanthemum mutation breeding method based on tissue culture by using petals

Citations (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2560592C2 (en) * 2013-01-29 2015-08-20 Общество с ограниченной ответственностью "Экобиотехнологии" Method of micropropagation of chrysanthemums
RU2619052C1 (en) * 2016-03-25 2017-05-11 Федеральное государственное бюджетное учреждение науки Институт физиологии растений Российской академии наук METHOD FOR OBTAINING PLANTS OF CHRYSANTHEMUM DEADRISE (Chrysanthemum carinatum Schousb.) IN THE IN VITRO CONDITIONS

Patent Citations (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2560592C2 (en) * 2013-01-29 2015-08-20 Общество с ограниченной ответственностью "Экобиотехнологии" Method of micropropagation of chrysanthemums
RU2619052C1 (en) * 2016-03-25 2017-05-11 Федеральное государственное бюджетное учреждение науки Институт физиологии растений Российской академии наук METHOD FOR OBTAINING PLANTS OF CHRYSANTHEMUM DEADRISE (Chrysanthemum carinatum Schousb.) IN THE IN VITRO CONDITIONS

Non-Patent Citations (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
BELEZEKOV V.O., Comparative characteristics of parenteral nutrition products "Aminoven" and "Vamin", Bulletin of Pharmacy, N4 (82), 2018, pp. 81-85. *
MURASHIGE T, et al, A Revised medium for rapid growth and bio assays with Tobacco Tissue Cultures, Physiologia plantarum, vol., 15, 1962, p. 474-495. *
MURASHIGE T, et al, A Revised medium for rapid growth and bio assays with Tobacco Tissue Cultures, Physiologia plantarum, vol., 15, 1962, p. 474-495. БЕЛЕЗЕКОВ В.О., Сравнительная характеристика средств паренторального питания "Аминовен" и "Вамин", Вестник фармации, N4 (82), 2018, с.81-85. *

Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN115968788A (en) * 2022-07-28 2023-04-18 中国农业大学 Chrysanthemum mutation breeding method based on tissue culture by using petals

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Pati et al. In vitro propagation of rose—a review
Singh et al. Effect of plant growth regulators on in vitro plant regeneration of sandalwood (Santalum album L.) via organogenesis
KR100889342B1 (en) Propagation method of liriodendron tulipifera using somatic embryogenesis technique
Radojevic Plant regeneration of Aesculus hippocastanum L.(horse chestnut) through somatic embryogenesis
Chalupa Vegetative propagation of oak (Quercus robur and Q petraea) by cutting and tissue culture
Pattnaik et al. Efficient plant retrieval from alginate-encapsulated vegetative buds of mature mulberry trees
EP0462630B1 (en) Method of multiplicating plant seedlings
Solangi et al. Optimizing tissue culture protocol for in vitro shoot and root development and acclimatization of date palm (Phoenix dactylifera L.) plantlets
RU2743967C1 (en) Method of creating planting material for chrysanthemums in vitro
SU1727514A3 (en) Method for regeneration of sunflower plants
Ziv et al. Vegetative propagation of Alstroemeria in vitro
Mneney et al. Clonal propagation of cashew (Anacardium occidentale L.) by tissue culture
RU2302106C1 (en) Method for preparation of in vitro propagated strawberry (fragraria l) plants to ex vitro cultivation
JPH0322934A (en) Production of plant seedling
Aggarwal et al. Effects of plant growth regulators on in vitro propagation of economically important ornamental plant Rosa hybrida L
JP2001511652A (en) Sugarcane production
RU2824883C1 (en) Method of growing cloudberries (rubus chamaemorus linnaeus)
RU2264706C2 (en) Method for optimization of clonal in vitro micro multiplication of grape
Zapolsky et al. Propagation of edible honeysuckle (Lonicera edulis Turcz) in in vitro conditions
Jose et al. Efficient plant regeneration through Protocorm-like Bodies derived from shoot tip cultures of Vanilla planifolia Andr.
RU2811144C1 (en) Method for growing rubus arcticus (rubus arcticus l.)
Burger Empress tree (Paulownia tomentosa Steud.)
Ajdarbin et al. Indirect shoot regeneration in Anthurium andreanum Clisto from leaf explant
RU2825762C1 (en) Method of growing wild lowbush blueberry (vaccinium angustifolium aiton)
RU2152150C1 (en) Method for obtaining in vitro healthy planting material of gerbera jamesonii bolus