RU2741003C1 - Method for production of tetravalent subunit vaccine against influenza without adjuvants - Google Patents

Method for production of tetravalent subunit vaccine against influenza without adjuvants Download PDF

Info

Publication number
RU2741003C1
RU2741003C1 RU2020112627A RU2020112627A RU2741003C1 RU 2741003 C1 RU2741003 C1 RU 2741003C1 RU 2020112627 A RU2020112627 A RU 2020112627A RU 2020112627 A RU2020112627 A RU 2020112627A RU 2741003 C1 RU2741003 C1 RU 2741003C1
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
detergent
tdtab
antigen
monovaccine
purification
Prior art date
Application number
RU2020112627A
Other languages
Russian (ru)
Inventor
Сергей Яковлевич Мельников
Евгений Дмитриевич Некрасов
Сергей Николаевич Горюнов
Original Assignee
Евгений Дмитриевич Некрасов
Сергей Николаевич Горюнов
Сергей Яковлевич Мельников
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Евгений Дмитриевич Некрасов, Сергей Николаевич Горюнов, Сергей Яковлевич Мельников filed Critical Евгений Дмитриевич Некрасов
Priority to RU2020112627A priority Critical patent/RU2741003C1/en
Application granted granted Critical
Publication of RU2741003C1 publication Critical patent/RU2741003C1/en

Links

Images

Classifications

    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K39/00Medicinal preparations containing antigens or antibodies
    • A61K39/12Viral antigens
    • A61K39/145Orthomyxoviridae, e.g. influenza virus
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61PSPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P31/00Antiinfectives, i.e. antibiotics, antiseptics, chemotherapeutics
    • A61P31/12Antivirals
    • A61P31/14Antivirals for RNA viruses
    • A61P31/16Antivirals for RNA viruses for influenza or rhinoviruses

Abstract

FIELD: medicine; pharmaceuticals.SUBSTANCE: invention refers to medicine and pharmaceutics, namely to a method for producing a tetravalent subunit vaccine without adjuvants for influenza prevention, according to which a) obtaining four mono-vaccines containing one of serotypes of influenza viruses H1N1, H3N2, B (Victoria line) or B (Yamagata line), wherein to obtain monovaccine producing a virus-containing allantoic liquid, then inactivated with beta-propiolactone and purified and concentrated by microfiltration, ultrafiltration and two cycles of ultracentrifugation in a sucrose density gradient; destroying the virions in the obtained purified viral concentrate by successive treatment with Triton X-100 and TDTAB; sub-virion structures are removed by ultracentrifugation and microfiltration and detergents by ultrafiltration and concentration of the obtained purified supernatant with subsequent purification by hydrophobic chromatography using ExpandedBedAdsorption technology; diluting the concentrate with a phosphate buffer solution containing Triton X-100 to obtain a monovaccine; b) combining the four monovaccines into a single dosage form.EFFECT: technical result consists in improvement of purification and immunogenicity of tetravalent subunit vaccine without adjuvants during its production in accordance with the declared method.4 cl, 14 dwg, 2 tbl, 11 ex

Description

Область техникиTechnology area

Изобретение относится к биотехнологии и касается способа производства четырехвалентной субъединичной вакцины для профилактики гриппа без адъювантов.The invention relates to biotechnology and relates to a method for the production of a tetravalent subunit vaccine for the prevention of influenza without adjuvants.

Предшествующий уровень техникиPrior art

Согласно практике мирового здравоохранения, основным средством борьбы с заболеваемостью гриппом является иммунизация населения инактивированными вакцинами против гриппа. Инактивированные вакцины против гриппа разделяются на цельновирионные, расщепленные и субъединичные. В период с 40-х - 60-х гг. XX века в мире для вакцинации населения использовались преимущественно цельновирионные вакцины. Эти вакцины индуцировали устойчивый протективный иммунитет у привитых людей, однако они обладали высокой реактогенностью и поэтому не могли применяться для вакцинации детей. В 60-70 годы появились два новых класса вакцин. Первой была разработана вакцина расщепленная, в состав которой входили как поверхностные, так и внутренние антигены вирусов гриппа, но которая уже не содержала вирионных и субвирионных структур. Этот класс вакцин обладал существенно меньшей реактогенностью по сравнению с цельновирионными вакцинами, но остаточная реактогенность у этих вакцин все-таки была, предположительно в следствии наличия в их составе агрегированных и частично денатурированных форм мембранного белка (M1). В середине 70-х гг. стали появляться субъединичные вакцины, в состав которых входили преимущественно поверхностные антигены вирусов гриппа (1). За счет отсутствия различных форм мембранного белка в их составе, а также за счет более высокого качества очистки вирионов, этот класс вакцин является наименее низкой реактогенным, обладает достаточной иммуногенностью и поэтому может применяться для вакцинации населения всех возрастов.According to the practice of world health care, the main means of combating the incidence of influenza is the immunization of the population with inactivated influenza vaccines. Inactivated influenza vaccines are categorized as whole virion, split and subunit. In the period from the 40s - 60s. XX century in the world for the vaccination of the population used mainly whole virion vaccines. These vaccines induced a stable protective immunity in vaccinated people, but they were highly reactogenic and therefore could not be used for vaccination of children. In the 60s and 70s, two new classes of vaccines appeared. The first to be developed was a split vaccine, which included both surface and internal antigens of influenza viruses, but which no longer contained virion and subvirionic structures. This class of vaccines was significantly less reactogenic than whole-virion vaccines, but these vaccines still had residual reactogenicity, presumably due to the presence of aggregated and partially denatured forms of the membrane protein (M1) in their composition. In the mid 70s. subunit vaccines began to appear, which mainly included surface antigens of influenza viruses (1). Due to the absence of various forms of membrane protein in their composition, as well as due to the higher quality of purification of virions, this class of vaccines is the least reactogenic, has sufficient immunogenicity and therefore can be used to vaccinate the population of all ages.

Последние несколько лет международными центрами ВОЗ было выявлено, что в течении текущих эпидемиологических сезонов в человеческой популяции циркулируют не три серотипа вирусов гриппа (H3N2, H1N1, В), как это было раньше, а четыре. Было установлено, что серотип В разделился на две независимые линии, а именно линия Ямагато и линия Виктория. Поэтому ВОЗ рекомендует всем производителям вакцин против гриппа переходить на выпуск четырехвалентных препаратов, которые более полно защищают людей от этого заболевания.Over the past few years, WHO international centers have revealed that during the current epidemiological seasons, not three serotypes of influenza viruses (H3N2, H1N1, B) circulate in the human population, as it was before, but four. It was found that serotype B split into two independent lines, namely the Yamagato line and the Victoria line. Therefore, WHO recommends that all manufacturers of influenza vaccines switch to the production of tetravalent drugs, which more fully protect people from this disease.

Большое значение для производства всех типов инактивированных вакцин имеет качество очистки вируссодержащей аллантоисной жидкости (ВАЖ) от дебрисных структур, которые образуются в процессе размножения вирусов гриппа в куриных эмбрионах (КЭ). В РФ первоначально для очистки от этих структур использовалась технология сорбции-элюции на формализированных куриных эритроцитах (4). Эта технология позволяла в достаточно высокой степени очищать ВАЖ от дебрисных структур, однако не позволяла добиться воспроизводимых результатов из-за различной способности штаммов вирусов гриппа сорбироваться на формализированные куриные эритроциты. По причине не воспроизводимости результатов на этой технологической стадии проведение процесса валидации согласно правилам GMP («надлежащей производственной практики»)было практически невозможно. В рекомендациях ВОЗ относительно производства препаратов для вакцинации людей указывается, что для основных технологических стадий должны быть проведены процессы валидации в соответствии с правилами GMP. В процессе развития современной биотехнологии в РФ были разработаны технологические подходы, которые позволили проводить очистку ВАЖ без использования эритроцитов. В одной из этих технологий при очистке ВАЖ использовались методы сепарации с использованием центрифугирования, различные виды микрофильтрации и ультрафильтрации, а для получения ОВК использовали метод ультрацентрифугирования в градиенте плотности сахарозы (5). Эти же авторы провели дальнейшую оптимизацию своей технологии с использованием нейтральных и основных аминокислот, а также детергентов (6).Of great importance for the production of all types of inactivated vaccines is the quality of purification of virus-containing allantoic fluid (VAF) from debris structures that are formed during the reproduction of influenza viruses in chicken embryos (CE). In the Russian Federation, initially, the technology of sorption-elution on formalized chicken erythrocytes was used to remove these structures (4). This technology made it possible to sufficiently high purify IAF from debris structures, but did not allow achieving reproducible results due to the different ability of influenza virus strains to be sorbed on formalized chicken erythrocytes. Due to the non-reproducibility of the results at this technological stage, it was practically impossible to carry out the validation process in accordance with the rules of GMP ("good manufacturing practice"). The WHO guidelines for the production of drugs for human vaccination indicate that validation processes should be carried out in accordance with GMP rules for the main technological stages. In the process of the development of modern biotechnology in the Russian Federation, technological approaches have been developed that made it possible to purify VAZ without using erythrocytes. In one of these technologies, the separation methods using centrifugation, various types of microfiltration and ultrafiltration were used for the purification of VAS, and the method of ultracentrifugation in a sucrose density gradient was used to obtain HVA (5). The same authors further optimized their technology using neutral and basic amino acids, as well as detergents (6).

Необходимо отметить, что в обоих этих изобретениях для проведения инактивации инфекционной активности вирусов гриппа указано использование метода ультрафиолетового облучения, который также не позволяет получать воспроизводимые результаты и, поэтому, не позволяет провести валидацию всего производственного процесса согласно требованиям GMP. Требования к производству и качеству инактивированных гриппозных вакцин подробно указаны в нормативном документе ЕС от 2014 года (2) и ГФ РФ издание XIV (14). В этих документах указано, что для проведения инактивации инфекционной активности вирусов гриппа в процессе получения вакцин необходимо использовать обработку дезинфектантами: формалином или бета-пропиолактоном, так как использование этих дезинфектантов обеспечивает надежную и воспроизводимую инактивацию вирусов гриппа. Использование бета-пропиолактона для инактивации инфекционной активности вирусов гриппа в составе ВАЖ было впервые проведено в 1991 году (11). Позднее было показано, что использование этого дезинфектанта в процессе инактивации вирусов гриппа не влияет на антигенную структуру антигена ГА в отличие от использования дезинфектанта формалина (10).It should be noted that in both of these inventions for inactivation of the infectious activity of influenza viruses, the use of the ultraviolet irradiation method is indicated, which also does not allow obtaining reproducible results and, therefore, does not allow validating the entire production process in accordance with GMP requirements. Requirements for the production and quality of inactivated influenza vaccines are detailed in the EU regulatory document of 2014 (2) and the RF GF edition XIV (14). These documents indicate that in order to inactivate the infectious activity of influenza viruses in the process of obtaining vaccines, it is necessary to use disinfectant treatment: formalin or beta-propiolactone, since the use of these disinfectants ensures reliable and reproducible inactivation of influenza viruses. The use of beta-propiolactone to inactivate the infectious activity of influenza viruses as a part of VAV was first performed in 1991 (11). Later, it was shown that the use of this disinfectant in the process of inactivation of influenza viruses does not affect the antigenic structure of the HA antigen, in contrast to the use of the disinfectant formalin (10).

В РФ был разработан способ получения расщепленной вакцины (7), в котором для инактивации вирусов гриппа в составе ВАЖ используется дезинфектант бета-пропиолактон, для предварительной очистки ВАЖ используются 2 каскада глубинных фильтров с диаметрами пор 5 мкм и 1 мкм, окончательная очистка вирионного концентрата проводится путем однократного ультрацентрифугирования в градиенте плотности сахарозы. Для получения расщепленной вакцины разрушение ОВК проводится детергентом Октилглюкозидом, очистка антигенов от субвирионных структур проводится методам микрофильтрации через глубинные фильтры с диаметром пор 10 мкм и методом ультрацентрифугирования, очистка от детергента проводится последовательно методам диафильтрафильтрации и методом гель-хроматографии с использованием носителя «WorkBeads 40/100» производства фирмы «Bio-Works», Швеция.In the Russian Federation, a method for obtaining a split vaccine was developed (7), in which the disinfectant beta-propiolactone is used in the VAZ to inactivate influenza viruses, 2 cascades of depth filters with pore diameters of 5 μm and 1 μm are used for preliminary purification of the VAZ, the final purification of the virion concentrate is carried out by a single sucrose density gradient ultracentrifugation. To obtain a split vaccine, the destruction of OVK is carried out with a detergent Octylglucoside, antigens are purified from subvirionic structures by microfiltration through depth filters with a pore diameter of 10 microns and by ultracentrifugation, cleaning from detergent is carried out sequentially by diafiltration methods and gel chromatography using the WorkBeads 40/100 carrier "By Bio-Works, Sweden.

Недостатками этого способа являются: 1) методика предварительной очистки ВАЖ с использованием только двух каскадов глубинных фильтров с диаметрами пор 5 мкм и 1 мкм не позволяет полностью очистить ВАЖ от дебрисных структур; 2) использование только одного цикла ультрацентрифугирования в градиенте плотности сахарозы не позволяет полностью очистить конечный препарат ОВК от примесей овальбумина; 3) использование детергента Октилглюкозид не позволяет получать препараты моновакцин, очищенные от внутренних антигенов вирусов гриппа; 4) использование глубинных фильтров с диаметром пор 10 мкм на стадии микрофильтрации расщепленного ОВК не позволяет добиться адекватной очистки препарата на этой технологической стадии от субвирионных структур; 5) в результате совокупного действия вышеуказанных факторов полученные препараты моновакцин имеют достаточно высокий уровень показателя мутности.The disadvantages of this method are: 1) the method of preliminary cleaning of the VAZ using only two cascades of depth filters with pore diameters of 5 μm and 1 μm does not allow to completely clean the VAZ from debris structures; 2) the use of only one cycle of ultracentrifugation in a sucrose density gradient does not allow to completely purify the final HVAC preparation from ovalbumin impurities; 3) the use of the detergent Octylglucoside does not allow obtaining monovaccine preparations purified from internal antigens of influenza viruses; 4) the use of depth filters with a pore diameter of 10 μm at the stage of microfiltration of the split HVAC does not allow achieving adequate purification of the drug at this technological stage from subvirionic structures; 5) as a result of the combined action of the above factors, the obtained monovaccine preparations have a sufficiently high level of turbidity index.

Расщепленные и субъединичные вакцины против гриппа отличаются между собой, как по технологии получения, так и по составу (14). Расщепленные вакцины в своем составе могут содержать как поверхностные, так и внутренние антигены вирусов гриппа, тогда как субъединичные вакцины должны иметь в составе преимущественно поверхностные антигены, а именно, гемагглютинин (ГА) и нейраминедазу (НА). Кроме того, согласно требованиям ГФ РФ XIV(14), эти вакцины отличаются соотношением общего белка к антигену ГА, при этом в расщепленных вакцинах это соотношение может составлять (6,7:1), тогда как в субъединичных оно не должно быть больше, чем (3,7:1).Split and subunit influenza vaccines differ from each other, both in production technology and in composition (14). Split vaccines can contain both surface and internal antigens of influenza viruses, while subunit vaccines should contain mainly surface antigens, namely, hemagglutinin (HA) and neuraminedase (HA). In addition, according to the requirements of the GF RF XIV (14), these vaccines differ in the ratio of the total protein to the HA antigen, while in split vaccines this ratio can be (6.7: 1), while in subunit vaccines it should not be more than (3.7: 1).

В патенте РФ №2446824 (3) описана технология, согласно которой производится субъединичная вакцина с адъювантом «Совигрипп» в объемах десятков миллионов доз ежегодно. Эта технология включает в себя: культивирование вирусов гриппа в КЭ; получение ВАЖ и ее предварительную очистку; получение ОВК методом ультрацентрифугирования в градиенте плотности сахарозы; инактивацию вирусного материала с использованием метода ультрафиолетового облучения; расщепление ОВК детергентом ТДТАБ; очистку антигенов от детергента методом диафильтрации.RF patent No. 2446824 (3) describes a technology according to which a subunit vaccine with the adjuvant "Sovigripp" is produced in the amount of tens of millions of doses annually. This technology includes: the cultivation of influenza viruses in CE; receipt of VAZ and its preliminary cleaning; obtaining HVAC by ultracentrifugation in a sucrose density gradient; inactivation of viral material using the ultraviolet irradiation method; cleavage of HVAC with detergent TDTAB; purification of antigens from detergent by diafiltration.

Недостатками этого способа являются: 1) использование куриных эритроцитов для предварительной очистки ВАЖ, что не позволяет проводить процесс валидации всего производственного процесса согласно требованиям GMP; 2) использование ультрафиолетового облучения для инактивации вирусов, что также не позволяет проводить процесс валидации согласно требованиям GMP; 3) отсутствие стадии микрофильтрации на этапе выделения моновакцин для проведения дополнительной очистки препарата от субвирионных структур, что не позволяет получать моновакцины с низким уровнем показателя мутности; 4) использование только одного метода диафильтрации на этапе выделения моновакцин, что недостаточно для эффективной очистки поверхностных антигенов от детергента ТДТАБ. Кроме вышеуказанных недостатков, в процессе производства вакцины «Совигрипп» стали выявляться проблемы, связанные с различной эффективностью технологии производства на стадии расщепления ОВК для производственных штаммов вируса гриппа серотипов H1N1 и H3N2c одной стороны, и производственных штаммов вирусов гриппа серотипа В, с другой стороны.The disadvantages of this method are: 1) the use of chicken erythrocytes for preliminary purification of VAZ, which does not allow the validation process of the entire production process in accordance with GMP requirements; 2) the use of ultraviolet radiation to inactivate viruses, which also does not allow the validation process to be carried out in accordance with GMP requirements; 3) the absence of a microfiltration stage at the stage of isolating monovaccines for additional purification of the drug from subvirionic structures, which does not allow obtaining monovaccines with a low level of turbidity; 4) the use of only one method of diafiltration at the stage of isolation of monovaccines, which is not enough for effective purification of surface antigens from the detergent TDTAB. In addition to the aforementioned shortcomings, in the production process of the Sovigripp vaccine, problems began to emerge related to the different efficiency of the production technology at the stage of HVAC cleavage for industrial strains of the influenza virus of serotypes H1N1 and H3N2c on the one hand, and industrial strains of influenza viruses of serotype B, on the other.

Влитературе описанпатент фирмы «Новартис» (8). В этом патентерекомендуется с целью увеличения эффективности технологиипоследовательно добавлять два детергента в процессе разрушения ОВК. При этом неионный детергент (ТВИН-80) добавлялся первым для проведения процесса дезаггрегации, а потом добавлялся второй детергент катионного типа (ЦТАБ, ТДТАБ и др.) для поведения процесса собственно расщепления. Именно за счет использования обоих детергентов удавалось достичь повышения процента расщепления по сравнению с использованием только одного катионного детергента. Однако, в вышеуказанном патенте не указаны технологические параметры процесса расщепления с использованием двух детергентов. Кроме того, детергент ТВИН-80 определяется в составе моновакцин с большими трудностями в связи со своей химической структурой. Соответственно, при использовании этого детергента в промышленном производстве могут возникнуть серьезные проблемы с методикой его обнаружения в составе полученных моновакцин и готовой лекарственной формы, так как детергенты, входящие в систему разрушения ОВК, должны определятся с помощью методик производственного контроля, прошедших процедуру валидации(2, 14). Это означает, что для проведения подобных контролей должно использоваться оборудование, достаточно доступное для соответствующих производственных подразделений. В частности, для определения следов детергента ТВИН-80 в составе моновакцин необходимо использование Масс-спектрометрического детектора, который в связи со своей высокой стоимостью недоступен в качестве средства производственного контроля в РФ.The literature describes the patent of the company "Novartis" (8). This patent recommends, in order to increase the efficiency of the technology, to add two detergents sequentially in the process of HVAC destruction. In this case, the nonionic detergent (TWIN-80) was added first to carry out the disaggregation process, and then the second cationic detergent (CTAB, TDTAB, etc.) was added to conduct the actual cleavage process. It was through the use of both detergents that it was possible to achieve an increase in the percentage of degradation compared to using only one cationic detergent. However, the above patent does not indicate the technological parameters of the degradation process using two detergents. In addition, the detergent TWIN-80 is determined in the composition of monovaccines with great difficulties due to its chemical structure. Accordingly, when using this detergent in industrial production, serious problems may arise with the method of its detection in the composition of the obtained monovaccines and the finished dosage form, since the detergents included in the HVAC destruction system must be determined using production control methods that have passed the validation procedure (2, 14). This means that to carry out such controls, equipment that is sufficiently available to the relevant production units must be used. In particular, in order to detect traces of the TWIN-80 detergent in monovaccines, it is necessary to use a mass spectrometric detector, which, due to its high cost, is not available as a means of production control in the Russian Federation.

Раскрытие изобретенияDisclosure of invention

Задача, на решение которой направлено настоящее изобретение, заключается в создании нового высокоэффективного способа производства четырехвалентной субъединичной вакцины против гриппа.The problem to which the present invention is directed is to create a new highly efficient method for the production of a tetravalent subunit influenza vaccine.

Технические результаты предлагаемого изобретения заключаются в следующем:The technical results of the proposed invention are as follows:

1. Создание новой технологии предварительной очистки ВАЖ с максимально сниженным содержанием дебрисных структур в полученном фильтрате.1. Creation of a new technology for preliminary treatment of VAZ with the maximum reduced content of debris structures in the resulting filtrate.

2. Создание новой технологии очистки ОВК с максимально сниженным содержанием овальбумина и других белков КЭ.2. Creation of a new technology for HVAC purification with the maximum reduced content of ovalbumin and other EC proteins.

3. Создание новой технологии расщепления ОВК детергентами с увеличенной эффективностью технологии на этом этапе для всех серотипов вирусов гриппа.3. Creation of a new technology for HVAC cleavage with detergents with increased technology efficiency at this stage for all serotypes of influenza viruses.

4. Создание новой технологии очистки расщепленного препарата ОВК от субвирионных структур с максимальным снижением показателям мутности в препаратах моновакцин.4. Creation of a new technology for the purification of a split HVAC preparation from subvirionic structures with a maximum decrease in turbidity indicators in monovaccine preparations.

5. Создание новой высокоэффективной технологии очистки поверхностных антигенов от детергентов с максимальным снижением содержания детергентов в препаратах полученных моновакцин.5. Creation of a new highly effective technology for cleaning surface antigens from detergents with a maximum reduction in the content of detergents in the preparations of monovaccines obtained.

6. Создание новой технологии приготовления лекарственной формы четырехвалентной субъединичной вакцины без адъювантов.6. Creation of a new technology for preparing a dosage form of a tetravalent subunit vaccine without adjuvants.

Продукт, получаемый заявленным способом, является высокоочищенной и высокоиммуногеной субъединичной вакциной с низкими показателями ректогенности для привитых людей.The product obtained by the claimed method is a highly purified and highly immunogenic subunit vaccine with low rates of rectogenicity for vaccinated people.

Сущность изобретения заключается в создании нового способа производства, который позволяет не только получать высокоочищенные препараты черырехвалентной субъединичной вакцины, но и позволяет добиваться высокого показателя эффективности технологии всего производственного процесса. Способ включает в себя получение вируссодержащей аллантоисной жидкости (ВАЖ), инактивацию ВАЖ, предварительную очистку ВАЖ от дебрисных структур методом трехступенчатой микрофильтрации, концентрирование ВАЖ методом ультрафильтрации и окончательную очистку вирионов методом последовательного двойного ультрацентрифугирования в градиенте плотности сахарозы. Далее полученный таким образом очищенный вирусный концентрат (ОВК) с целью расщепления последовательно обрабатывают детергентами Тритон Х-100 и ТДТАБ, субвирионные структуры из суспензии удаляют методами ультрацентрифугирования и двухступенчатой микрофильтрации. Удаление детергентов из полученного препарата проводят с использованием методов тангенциальной ультрафильтрации и промышленной хроматографии. Хроматографию проводят с использованием гидрофобного носителя «SDRHyperD», фирмы Pall (USA) с применением специальной технологии проведения хроматографического процесса. Полученный очищенный препарат разводят буфером, содержащим детергент Тритон Х-100 в качестве средства дезаггрегации, после чего проводят стадию стерилизующей фильтрации с использованием картриджей с диаметром пор 220 нм. Полученные таким 4 моновалента 4 различных серотипов сводят в единую лекарственную форму таким образом, чтобы конечная концентрация каждого моновалента была в диапозоне от 25,6 до 34,4 мкг/мл по белку гемагглютинину. К полученному раствору добавляют детергент Тритон Х-100 в качестве дезаггрегирующей добавки, раствор тщательно перемешивают, подвергают стерилизующей фильтрации, после чего разливают по стерильным флаконам или специальным шприцам. Применение способа по настоящему изобретению обеспечивает производство высокоочищенной и высокоиммуногенной субъединичной вакцины, а также позволяет увеличить эффективность технологии на различных стадиях производственного процесса по сравнению с прототипами.The essence of the invention lies in the creation of a new method of production, which allows not only to obtain highly purified preparations of a four-valent subunit vaccine, but also allows to achieve a high indicator of the efficiency of the technology of the entire production process. The method includes obtaining vaccinated allantoic fluid (VAF), inactivation of VFA, preliminary purification of VFA from debris structures by three-stage microfiltration, concentration of VFA by ultrafiltration and final purification of virions by the method of sequential double ultracentrifugation in a sucrose density gradient. Then the purified viral concentrate (VVC) obtained in this way is sequentially treated with detergents Triton X-100 and TDTAB for digestion, subvirionic structures are removed from the suspension by ultracentrifugation and two-stage microfiltration. Removal of detergents from the resulting preparation is carried out using the methods of tangential ultrafiltration and industrial chromatography. Chromatography is carried out using a hydrophobic carrier "SDRHyperD", firm Pall (USA) using a special technology for the chromatographic process. The resulting purified preparation is diluted with a buffer containing detergent Triton X-100 as a means of disaggregation, after which a sterilizing filtration step is carried out using cartridges with a pore diameter of 220 nm. The resulting 4 monovalent of 4 different serotypes are combined into a single dosage form so that the final concentration of each monovalent is in the range from 25.6 to 34.4 μg / ml for the hemagglutinin protein. The detergent Triton X-100 is added to the resulting solution as a disaggregating additive, the solution is thoroughly mixed, subjected to sterilizing filtration, and then poured into sterile vials or special syringes. The use of the method according to the present invention ensures the production of a highly purified and highly immunogenic subunit vaccine, and also allows to increase the efficiency of the technology at various stages of the production process in comparison with prototypes.

Технический результат достигается тем, что проводят культивирование вирусов гриппа в КЭ, отбор ВАЖ, инактивацию ВАЖ дезинфектантом бета-пропиолактоном. Предварительную очистку ВАЖ проводят методом микрофильтрации с использованием трех каскадов складчатых фильтров и получение ОВК проводят с использованием двух последовательных циклов ультрацентрифугирования в градиенте плотности сахарозы. Расщепление ОВК проводят смесью детергентов Тритон Х-100 и ТДТАБ в определенных соотношениях. Удаление субвирионных структур после расщепления проводят последовательно методом ультрацентрифугирования и методом микрофильтрации с использованием двух каскадов складчатых фильтров. Очистку поверхностных антигенов от детергентов проводят последовательно методом диафильтрации и методом гидрофобной хроматографии с использованием промышленного хроматографического носителя. Для сохранения специфической активности в процессе хранения лекарственной формы вакцины используется дезаггрегирующая добавка детергента Тритон Х-100.The technical result is achieved by the fact that the cultivation of influenza viruses in EC, the selection of VAZ, inactivation of VAZ with a disinfectant beta-propiolactone is carried out. Preliminary purification of VFA is carried out by microfiltration using three cascades of folded filters, and HVAC production is carried out using two successive cycles of ultracentrifugation in a sucrose density gradient. The HVAC is cleaved with a mixture of Triton X-100 and TDTAB detergents in certain ratios. Removal of subvirionic structures after cleavage is carried out sequentially by ultracentrifugation and microfiltration using two cascades of folded filters. Purification of surface antigens from detergents is carried out sequentially by diafiltration and hydrophobic chromatography using an industrial chromatographic carrier. To preserve the specific activity during storage of the vaccine dosage form, a disaggregating detergent additive Triton X-100 is used.

Краткое описание фигур чертежейBrief Description of the Drawing Figures

Фиг. 1. представляет анализ полипептидного состава образцов антигенов серотипа B/Phuket/3073/2013, полученных с использованием детергентов Октилглюкозид и ТДТАБ, методом электрофореза в нередуцирующих условиях.FIG. 1.presents an analysis of the polypeptide composition of serotype B / Phuket / 3073/2013 antigen samples obtained using the detergents Octylglucoside and TDTAB by electrophoresis under non-reducing conditions.

Позиции на Фиг. 1:The positions in FIG. one:

1 - стандарт молекулярных весов фирмы «Биорад»;1 - standard of molecular weights of the company "Biorad";

2 - образец антигена, полученный с использованием детергента ТДТАБ в соотношении белок:детергент (1:1). Специфическая активность по ОРИД не выявлена;2 - antigen sample obtained using detergent TDTAB in the ratio of protein: detergent (1: 1). Specific activity by ORID was not revealed;

3 - образец антигена, полученный с использованием детергента Октилглюкозид белок: детергент в соотношении (1:15). Специфическая активность - 432 мкг/мл;3 - an antigen sample obtained using the detergent Octylglucoside protein: detergent in the ratio (1:15). Specific activity - 432 μg / ml;

4 - образец антигена, полученный с использованием детергента Октилглюкозид белок: детергент в соотношении (1:10). Специфическая активность - 451 мкг/мл;4 - an antigen sample obtained using the detergent Octylglucoside protein: detergent in the ratio (1:10). Specific activity - 451 μg / ml;

5 - образец исходного очищенного вирусного концентрата (ОВК) без обработки детергентами. Специфическая активность по ОРИД - 514 мкг/мл.5 - a sample of the original purified viral concentrate (VVC) without detergent treatment. Specific activity according to ORID is 514 μg / ml.

На Фиг. 2 показан анализ полипептидного состава образцов антигенов серотипа B/Brisbane/60/2008, полученных с использованием детергентов Октилглюкозид и ТДТАБ методом электрофореза в нередуцирующих условиях.FIG. 2 shows the analysis of the polypeptide composition of samples of serotype B / Brisbane / 60/2008 antigens obtained using the detergents Octylglucoside and TDTAB by electrophoresis in non-reducing conditions.

Позиции на Фиг. 2:The positions in FIG. 2:

1 - стандарт молекулярных весов фирмы «Bio-Rad»;1 - standard of molecular weights from Bio-Rad;

2 - образец антигена, полученный с использованием детергента ТДТАБ в соотношении белок: детергент (1:1). Специфическая активность не выявлена.2 - antigen sample obtained using detergent TDTAB in the ratio of protein: detergent (1: 1). No specific activity was found.

3 - образец антигена, полученный с использованием детергента ТДТАБ в соотношении белок: детергент (1:0,8). Специфическая активность - 223 мкг/мл (бледные кольца);3 - sample of antigen obtained using detergent TDTAB in the ratio of protein: detergent (1: 0.8). Specific activity - 223 μg / ml (pale rings);

4 - образец антигена, полученный с использованием детергента Октилглюкозид в соотношении белок: детергент (1:15). Специфическая активность - 317 мкг/мл;4 - sample of antigen obtained using the detergent Octylglucoside in the ratio of protein: detergent (1:15). Specific activity - 317 μg / ml;

5 - образец антигена, полученный с использованием детергента Октилглюкозид в соотношении белок: детергент (1:10). Специфическая активность - 286 мкг/мл;5 - sample of antigen obtained using the detergent Octylglucoside in the ratio of protein: detergent (1:10). Specific activity - 286 μg / ml;

6 - исходный образец ОВК без добавления детергентов. Специфическая активность - 362 мкг/мл.6 - the original sample of HVAC without the addition of detergents. The specific activity is 362 μg / ml.

На Фиг. 3 показан анализ полипептидного состава образцов антигенов серотипа B/Maryland/15/2016 с использованием детергентов ТДТАБ и Октилглюкозид, методом электрофореза в нередуцирующих условиях.FIG. 3 shows the analysis of the polypeptide composition of antigen samples of serotype B / Maryland / 15/2016 using detergents TDTAB and Octylglucoside, by electrophoresis in non-reducing conditions.

Позиции на Фиг. 3:The positions in FIG. 3:

1 - стандарт молекулярных весов фирмы «Bio-Rad»;1 - standard of molecular weights from Bio-Rad;

2 - образец антигена, полученный с использованием детергента ТДТАБ в соотношении белок:детергент (1:0,4). Специфическая активность - 191 мкг/мл;2 - antigen sample obtained using detergent TDTAB in the ratio of protein: detergent (1: 0.4). Specific activity - 191 μg / ml;

3 - образец антигена, полученный с использованием детергента ТДТАБ в соотношении белок:детергент в соотношении (1:0,5). Специфическая активность - 273 мкг/мл;3 - sample of antigen obtained using detergent TDTAB in the ratio of protein: detergent in the ratio (1: 0.5). Specific activity - 273 μg / ml;

4 - образец антигена, полученный с использованием детергента ТДТАБ в соотношении белок:детергент (1:0,6). Специфическая активность - 224 мкг/мл;4 - sample of antigen obtained using detergent TDTAB in the ratio of protein: detergent (1: 0.6). Specific activity - 224 μg / ml;

5 - образец антигена, полученный с использованием детергента ТДТАБ в соотношении белок:детергент (1:0,8). Специфическая активность не выявлена;5 - antigen sample obtained using detergent TDTAB in the ratio of protein: detergent (1: 0.8). No specific activity was found;

6 - образец антигена, полученный с использованием детергента Октилглюкозид в соотношении белок:детергент (1:10). Специфическая активность - 354 мкг/мл;6 - an antigen sample obtained using the detergent Octylglucoside in the ratio of protein: detergent (1:10). Specific activity - 354 μg / ml;

7 - образец антигена, полученный с использованием детергента Октилглюкозид в соотношении белок:детергент (1:12). Специфическая активность - 348 мкг/мл;7 - a sample of antigen obtained using the detergent Octylglucoside in the ratio of protein: detergent (1:12). Specific activity - 348 μg / ml;

8 - образец антигена, полученный с использованием детергента Октилглюкозид в соотношении белок:детергент (1:15). Специфическая активность - 338 мкг/мл;8 - antigen sample obtained using the detergent Octylglucoside in the ratio of protein: detergent (1:15). Specific activity - 338 μg / ml;

9 - Образец исходного ОВК без обработки детергентами. Специфическая активность - 368 мкг/мл.9 - A sample of the original HVAC without treatment with detergents. The specific activity is 368 μg / ml.

Фиг. 4 показывает анализ морфологии колец преципитации в реакции ОРИД образцов антигена серотипа B/Brisbane/60/2008, полученных с использованием детергентов Октилглюкозид, ТДТАБ и ТДТАБ Плюс.FIG. 4 shows the analysis of the precipitation ring morphology in the ORID reaction of serotype B / Brisbane / 60/2008 antigen samples obtained using the detergents Octylglucoside, TDTAB and TDTAB Plus.

Позиции на Фиг. 4:The positions in FIG. 4:

1 - образец антигена, полученный при использовании смеси детергентов в соотношении белок:ТДТАБ Плюс (1:1);1 - an antigen sample obtained using a mixture of detergents in the ratio of protein: TDTAB Plus (1: 1);

2 - международный стандарт ОРИД;2 - international standard ORID;

3 - образец антигена, полученный при использовании смеси детергентов в соотношении белок:ТДТАБ Плюс (1:0,8);3 - sample of antigen obtained using a mixture of detergents in the ratio of protein: TDTAB Plus (1: 0.8);

4 - образец антигена, полученный при использовании детергента Октилглюкозид в соотношении белок:детергент (1:10);4 - a sample of antigen obtained using the detergent Octylglucoside in the ratio of protein: detergent (1:10);

5 - образец антигена, полученный при использовании смеси детергентов в соотношении белок:ДТАБ Плюс (1:1);5 - sample of antigen obtained using a mixture of detergents in the ratio of protein: DTAB Plus (1: 1);

6 - международный стандарт ОРИД;6 - international standard ORID;

7 - образец антигена, полученный при использовании смеси детергентов в соотношении белок:ТДТАБ Плюс (1:0,8);7 - sample of antigen obtained using a mixture of detergents in the ratio of protein: TDTAB Plus (1: 0.8);

8 - образец антигена, полученный при использовании детергента Октилглюкозид в соотношении белок:детергент (1:10).8 - a sample of antigen obtained using the detergent Octylglucoside in the ratio of protein: detergent (1:10).

На Фиг. 5 представлен анализ полипептидного состава антигенов серотипа А/Мичиган/45/2105(Н1N1), полученных с использованием детергентов ТБТАБ Плюс, ТДТАБ и Октилглюкозид.FIG. 5 shows an analysis of the polypeptide composition of antigens of serotype A / Michigan / 45/2105 (H1N1) obtained using detergents TBTAB Plus, TDTAB and Octylglucoside.

Позиции на Фиг. 5:The positions in FIG. five:

1 - стандарт молекулярных весов фирмы «Bio-Rad»;1 - standard of molecular weights from Bio-Rad;

2 - образец антигена, полученный с использованием детергента ТДТАБ Плюс в соотношении белок: детергент (1:1). Специфическая активность - 503 мкг/мл;2 - sample of antigen obtained using detergent TDTAB Plus in the ratio of protein: detergent (1: 1). Specific activity - 503 μg / ml;

3 - образец антигена, полученный с использованием детергента ТДТАБ Плюс в соотношении белок: детергент (1:0,8). Специфическая активность - 528 мкг/мл;3 - sample of antigen obtained using detergent TDTAB Plus in a protein: detergent ratio (1: 0.8). Specific activity - 528 μg / ml;

4 - образец антигена, полученный с использованием детергента ТДТАБ в соотношении белок:детергент (1:1). Специфическая активность - 490 мкг/мл;4 - sample of antigen obtained using detergent TDTAB in the ratio of protein: detergent (1: 1). Specific activity - 490 μg / ml;

5 - образец антигена, полученный с использованием детергента Октилглюкозид в соотношении белок: детергент (1:15). Специфическая активность - 496 мкг/мл;5 - an antigen sample obtained using the detergent Octylglucoside in the ratio of protein: detergent (1:15). Specific activity - 496 μg / ml;

6 - образец антигена, полученный с использованием детергента Октилглюкозид в соотношении белок: детергент (1:10). Специфическая активность - 480 мкг/мл;6 - an antigen sample obtained using the detergent Octylglucoside in the ratio of protein: detergent (1:10). Specific activity - 480 μg / ml;

7 - образец исходного ОВК без добавления детергентов. Специфическая активность - 587 мкг/мл.7 - sample of the original HVAC without the addition of detergents. The specific activity is 587 μg / ml.

На Фиг. 6 представлен анализ полипептидного состава образцов антигена сертипа A/HongKong/4801/2014 (H3N2), полученных с использованием детергентов ТДТАБ, Октилглюкозид и ТДТАБ Плюс.FIG. 6 shows an analysis of the polypeptide composition of antigen samples of the A / HongKong / 4801/2014 (H3N2) certificate obtained using the detergents TDTAB, Octylglucoside and TDTAB Plus.

Позиции на Фиг. 6:The positions in FIG. 6:

1 - стандарт молекулярных весов фирмы «Bio-Rad»;1 - standard of molecular weights from Bio-Rad;

2 - образец антигена, полученный с использованием детергента ТДТАБ в соотношении белок: детергент (1:0,8). Специфическая активность - 489 мкг/мл;2 - antigen sample obtained using detergent TDTAB in the ratio of protein: detergent (1: 0.8). Specific activity - 489 μg / ml;

3 - образец антигена, полученный с использованием детергента Октилглюкозид в соотношении белок: детергент (1:15). Специфическая активность - 637 мкг/мл;3 - an antigen sample obtained using the detergent Octylglucoside in the ratio of protein: detergent (1:15). Specific activity - 637 μg / ml;

4 - образец антигена, полученный с использованием детергента ТДТАБ Плюс в соотношении белок: детергент (1:0,8). Специфическая активность - 456 мкг/мл;4 - antigen sample obtained using detergent TDTAB Plus in the ratio of protein: detergent (1: 0.8). Specific activity - 456 μg / ml;

5 - образец антигена, полученный с использованием детергента ТДТАБ Плюс в соотношении белок: детергент (1:1). Специфическая активность - 394 мкг/мл;5 - sample of antigen obtained using detergent TDTAB Plus in the ratio of protein: detergent (1: 1). Specific activity - 394 μg / ml;

6 - образец исходного ОВК без добавления детергентов. Специфическая активность -663 мкг/мл.6 - sample of the original HVAC without the addition of detergents. The specific activity is 663 μg / ml.

На Фиг. 7 показан анализ полипептидного состава образцов антигенов серотипа B/Brisbane/60/2008, полученных с использованием детергентов Октилклюкозид, ТДТАБ и ТДТАБ Плюс методом электрофореза в нередуцирующих условиях.FIG. 7 shows the analysis of the polypeptide composition of serotype B / Brisbane / 60/2008 antigen samples obtained using the detergents Octylclucoside, TDTAB and TDTAB Plus by electrophoresis in non-reducing conditions.

Позиции на Фиг. 7:The positions in FIG. 7:

1 - стандарт молекулярных весов фирмы «Bio-Rad»;1 - standard of molecular weights from Bio-Rad;

2 - образец антигена, полученный с использованием детергента ТДТАБ Плюсв соотношении белок:детергент(1:1). Специфическая активность - 316 мкг/мл;2 - antigen sample obtained using detergent TDTAB Plus in a protein: detergent ratio (1: 1). Specific activity - 316 μg / ml;

3 - образец антигена, полученный с использованием детергента ТДТАБ Плюс в соотношении белок:детергент (1:0,8). Специфическая активность - 340 мкг/мл;3 - sample of antigen obtained using detergent TDTAB Plus in a protein: detergent ratio (1: 0.8). Specific activity - 340 μg / ml;

4 - образец антигена, полученный с использованием детергента ТДТАБ (1:1). Колец преципитации не обнаружено;4 - antigen sample obtained using detergent TDTAB (1: 1). No precipitation rings were found;

5 - образец антигена, полученный с использованием детергента ТДТАБ в соотношении белок:детергент (1:0,8). Специфическая активность - 255 мкг/мл (бледные кольца);5 - antigen sample obtained using detergent TDTAB in the ratio of protein: detergent (1: 0.8). Specific activity - 255 μg / ml (pale rings);

6 - Образец антигена, полученный с использованием детергента Октилглюкозид в соотношении белок:детергент (1:15). Специфическая активность - 336 мкг/мл;6 - An antigen sample obtained using the detergent Octylglucoside in the ratio of protein: detergent (1:15). Specific activity - 336 μg / ml;

7 - образец антигена, полученный с использованием детергента Октилглюкозид в соотношении белок:детергент (1:10). Специфическая активность - 291 мкг/мл;7 - an antigen sample obtained using the detergent Octylglucoside in the ratio of protein: detergent (1:10). Specific activity - 291 μg / ml;

8 - исходный образец ОВК без добавления детергентов; Специфическая активность - 384 мкг/мл.8 - the original sample of HVAC without the addition of detergents; The specific activity is 384 μg / ml.

Фиг. 8 представляет анализ полипептидного состава образцов антигенов серотипа B/Phuket/3073/2013, полученных с использованием детергентов Октилклюкозид, ТДТАБ и ТДТАБ Плюс методом электрофореза в нередуцирующих условиях.FIG. 8 shows an analysis of the polypeptide composition of serotype B / Phuket / 3073/2013 antigen samples obtained using the detergents Octylclucoside, TDTAB and TDTAB Plus by electrophoresis under non-reducing conditions.

Позиции на Фиг. 8:The positions in FIG. 8:

1 - стандарт молекулярных весов фирмы «Bio-Rad»;1 - standard of molecular weights from Bio-Rad;

2 - образец антигена, полученный с использованием детергента ТДТАБ Плюс в соотношении белок:детергент(1:1). Специфическая активность - 481 мкг/мл;2 - sample of antigen obtained using detergent TDTAB Plus in the ratio of protein: detergent (1: 1). Specific activity - 481 μg / ml;

3 - образец антигена, полученный с использованием детергента ТДТАБ Плюс в соотношении белок:детергент (1:0,8). Специфическая активность - 507 мкг/мл;3 - sample of antigen obtained using detergent TDTAB Plus in a protein: detergent ratio (1: 0.8). Specific activity - 507 μg / ml;

4 - образец антигена, полученный с использованием детергента ТДТАБ в соотношении белок:детергент (1:1). Колец преципитации не обнаружено;4 - sample of antigen obtained using detergent TDTAB in the ratio of protein: detergent (1: 1). No precipitation rings were found;

5 - образец антигена, полученный с использованием детергента Октилглюкозид в соотношении белок:детергент (1:15). Специфическая активность - 428 мкг/мл;5 - an antigen sample obtained using the detergent Octylglucoside in the ratio of protein: detergent (1:15). Specific activity - 428 μg / ml;

7 - образец антигена, полученный с использованием детергента Октилглюкозид в соотношении белок:детергент (1:10). Специфическая активность - 437 мкг/мл;7 - an antigen sample obtained using the detergent Octylglucoside in the ratio of protein: detergent (1:10). Specific activity - 437 μg / ml;

8 - образец антигена без добавления детергентов; Специфическая активность - 544 мкг/мл.8 - antigen sample without added detergents; The specific activity is 544 μg / ml.

Фиг. 9 демонстрирует анализ полипептидного состава образцов ОВК серотипа B/Maryland/15/2016, обработанных детергентами ТДТАБ И ТДТАБ ПЛЮС методом электрофореза в нередуцирующих условиях.FIG. 9 shows the analysis of the polypeptide composition of OVK samples of serotype B / Maryland / 15/2016 treated with detergents TDTAB and TDTAB PLUS by electrophoresis in non-reducing conditions.

Позиции на Фиг. 9:The positions in FIG. nine:

1 - стандарт молекулярных весов фирмы «Bio-Rad»;1 - standard of molecular weights from Bio-Rad;

2 - образец антигена, полученный с использованием детергента ТДТАБ в соотношении белок:детергент (1:0,4). Специфическая активность - 252 мкг/мл;2 - antigen sample obtained using detergent TDTAB in the ratio of protein: detergent (1: 0.4). Specific activity - 252 μg / ml;

3 - образец антигена, полученный с использованием детергента ТДТАБ в соотношении белок:детергент (1:0,5). Специфическая активность - 280 мкг/мл;3 - antigen sample obtained using detergent TDTAB in the ratio of protein: detergent (1: 0.5). Specific activity - 280 μg / ml;

4 - образец антигена, полученный с использованием детергента ТДТАБ в соотношении белок:детергент (1:0,6). Специфическая активность - 242 мкг/мл;4 - sample of antigen obtained using detergent TDTAB in the ratio of protein: detergent (1: 0.6). Specific activity - 242 μg / ml;

5 - образец антигена, полученный с использованием детергента ТДТАБ в соотношении белок:детергент (1:0,8). Кольца преципитации не выявлены;5 - antigen sample obtained using detergent TDTAB in the ratio of protein: detergent (1: 0.8). No precipitation rings were identified;

6 - образец антигена, полученный с использованием детергента ТДТАБ плюс в соотношении белок:детергент (1:1); Специфическая активность - 359 мкг/мл;6 - sample of antigen obtained using detergent TDTAB plus in the ratio of protein: detergent (1: 1); Specific activity - 359 μg / ml;

7 - образец антигена, полученный с использованием детергента ТДТАБ плюс в соотношении белок:детергент (1:0,8); Специфическая активность - 365 мкг/мл;7 - sample of antigen obtained using detergent TDTAB plus in the ratio of protein: detergent (1: 0.8); Specific activity - 365 μg / ml;

8 - образец антигена, полученный с использованием детергента ТДТАБ плюс в соотношении белок:детергент (1:0,7); Специфическая активность - 354 мкг/мл;8 - antigen sample obtained using detergent TDTAB plus in the ratio of protein: detergent (1: 0.7); Specific activity - 354 μg / ml;

9 - образец ОВК серотип B/Maryland/15/2016 без обработки детергентами. Специфическая активность - 368 мкг/мл.9 - sample of HVAC serotype B / Maryland / 15/2016 without detergent treatment. The specific activity is 368 μg / ml.

Фиг. 10 представляет анализ морфологии антигена ГА серотипа B/Brisbane/60/2008 МЕТОДОМ электронной микроскопии, размер линейки сравнения -100 mn.FIG. 10 shows the analysis of the morphology of the antigen HA serotype B / Brisbane / 60/2008 by the METHOD of electron microscopy, the size of the comparison ruler -100 mn.

На Фиг. 11 - анализ морфологии моновакцины серотипа A/HongKong/4801/2014 (H3N2) методом электронной микроскопии, размер линейки сравнения - 100 nm.FIG. 11 - analysis of the morphology of the monovaccine serotype A / HongKong / 4801/2014 (H3N2) by electron microscopy, the size of the comparison ruler is 100 nm.

На Фиг. 12 представлен анализ полипептидного состава экспериментальной моновакцины A/HongKong/4801/2014 (H3N2) методом электрофореза в нередуцирующих условиях.FIG. 12 shows the analysis of the polypeptide composition of the experimental monovaccine A / HongKong / 4801/2014 (H3N2) by electrophoresis in non-reducing conditions.

Позиции на Фиг. 12:The positions in FIG. 12:

1 - образец ОВК, из которого была получена экспериментальная моновакцина;1 - HVAC sample from which the experimental monovaccine was obtained;

2 - образец экспериментальной моновакцины, полученный с использованием детергента ТДТАБ Плюс;2 - a sample of an experimental monovaccine obtained using the detergent TDTAB Plus;

3 - стандарт молекулярных весов фирмы «BioRad».3 - standard of molecular weights from BioRad.

Фиг. 13 демонстрирует анализ полипептидного состава экспериментальной моновакцины B/Brisbane/60/2008 методом электрофореза в нередуцирующих условиях.FIG. 13 shows the analysis of the polypeptide composition of the experimental monovaccine B / Brisbane / 60/2008 by electrophoresis in non-reducing conditions.

Позиции на Фиг. 13:The positions in FIG. 13:

1 - стандарт молекулярных весов фирмы «BioRad»;1 - standard of molecular weights from BioRad;

2 - образец экспериментальной моновакцины, полученный с использованием детергента ТДТАБ Плюс;2 - a sample of an experimental monovaccine obtained using the detergent TDTAB Plus;

3 - образец ОВК, из которого была получена экспериментальная моновакцина.3 - HVAC sample from which the experimental monovaccine was obtained.

Фиг. 14 показывает анализ полипептидного состава экспериментальной моновакцины A/Michigan/45/2015 (H1N1) методом электрофореза в нередуцирующих условиях.FIG. 14 shows polypeptide composition analysis of experimental monovaccine A / Michigan / 45/2015 (H1N1) by electrophoresis under non-reducing conditions.

Позиции на Фиг. 14:The positions in FIG. 14:

1 - стандарт молекулярных весов фирмы «BioRad»;1 - standard of molecular weights from BioRad;

2 - образец экспериментальной моновакцины, полученный с использованием детергента ТДТАБ Плюс;2 - a sample of an experimental monovaccine obtained using the detergent TDTAB Plus;

3 - образец ОВК, из которого была получена экспериментальная моновакцина.3 - HVAC sample from which the experimental monovaccine was obtained.

Примеры осуществления изобретенияExamples of implementation of the invention

Пример 1 раскрывает оптимизацию процессов предварительной очистки ВАЖ и очистки ОВК в градиенте плотности сахарозы и показывает достижение технического результата - создание новой технологии предварительной очистки ВАЖ с максимально сниженным содержанием дебрисных структур в полученном фильтрате и создание новой технологии очистки ОВК с максимально сниженным содержанием овальбумина и других белков КЭ.Example 1 discloses the optimization of the processes of preliminary purification of VFA and purification of HVA in the density gradient of sucrose and shows the achievement of the technical result - the creation of a new technology for preliminary purification of VFA with the most reduced content of debris structures in the resulting filtrate and the creation of a new technology for purification of HVA with the most reduced content of ovalbumin and other proteins CE.

На основании проведенного поиска технологических подходов был сделан вывод, что для увеличения степени очистки ВАЖ от дебрисных структур в процессе микрофильтрации необходимо изменить, как тип самих фильтров, так и размер пор этих фильтров. Дело в том, что глубинные фильтры, которые были использованы на стадии микрофильтрации ВАЖ в источнике (7), обладают высокой грязеемкостью, но имеют очень большой разброс диаметров пор (относительный рейтинг пропускания). По этой причине нельзя подобрать эти глубинные фильтры таким образом, чтобы они максимально удерживали дебрисные структуры, но при этом не задерживали прохождение вирионных частиц. Поэтому для оптимизации процесса микрофильтрации ВАЖ было решено использовать принципиально другой тип фильтров, а именно складчатые фильтры.On the basis of the search for technological approaches, it was concluded that in order to increase the degree of purification of VAZ from debris structures during microfiltration, it is necessary to change both the type of filters themselves and the pore size of these filters. The fact is that the depth filters, which were used at the stage of microfiltration of VAZ in the source (7), have a high dirt holding capacity, but they have a very wide scatter of pore diameters (relative transmission rating). For this reason, these depth filters cannot be selected in such a way that they retain debris structures as much as possible, but at the same time do not delay the passage of virion particles. Therefore, to optimize the VAZ microfiltration process, it was decided to use a fundamentally different type of filters, namely folded filters.

Пример 1.Example 1.

Использование трех каскадов складчатых фильтров с различными диаметрами пор позволило осуществлять процесс микрофильтрации ВАЖ таким образом, чтобы в конечном фильтрате ВАЖ дебрисных структур практически не оставалось, однако, удержания вирионных частиц в процессе микрофильтрации не происходило.The use of three cascades of folded filters with different pore diameters made it possible to carry out the process of microfiltration of VFA in such a way that practically no debris structures remained in the final filtrate of VAZ, however, the retention of virion particles during microfiltration did not occur.

Для увеличения степени очистки ОВК от овальбумина и других белков КЭ наиболее оптимальным оказалось использование технологии двойного последовательного ультрацентрифугирования в градиенте плотности сахарозы. Следует отметить, что в рамках этой технологии для снижения уровня агрегации вирионных частиц в ходе проведения первого цикла ультрацентрифугирования оказалось оптимальным введение в первый сахарозный градиент дезагрегирующих добавок, а именно цитрата натрия. В процессе второго цикла ультрацентрифугирования этот реагент отделялся от вирионных частиц вследствие своей химической структуры.To increase the degree of purification of OVK from ovalbumin and other EC proteins, the use of the technology of double sequential ultracentrifugation in a sucrose density gradient turned out to be the most optimal. It should be noted that, within the framework of this technology, in order to reduce the level of aggregation of virion particles during the first cycle of ultracentrifugation, it turned out to be optimal to introduce disaggregating additives into the first sucrose gradient, namely sodium citrate. During the second cycle of ultracentrifugation, this reagent was separated from the virion particles due to its chemical structure.

Два технологических эксперимента демонстрируют эффективность вышеуказанных новых подходов. Для проведения этих экспериментов было получено 1010 литров ВАЖ серотипа A/Michigan/45/2015 (H1N1) с использованием 108 тыс. КЭ. Этот объем ВАЖ был разделен на две равные части.Two technological experiments demonstrate the effectiveness of the above new approaches. For these experiments, 1010 liters of A / Michigan / 45/2015 (H1N1) VAF were obtained using 108 thousand EC. This VAZ volume was divided into two equal parts.

Первую часть ВАЖ (510 литров) использовали для проведения эксперимента №1, в котором первый этап получения ОВК проводился согласно способу, указанному в источнике (7). В этом эксперименте №1 микрофильтрацию ВАЖ проводили через два каскада глубинных фильтров с диаметрами пор 5 мкм и 1 мкм, процесс ультрацентрифугирования в градиенте плотности сахарозы проводили один раз без добавления цитрата натрия.The first part of the VAZ (510 liters) was used to conduct experiment No. 1, in which the first stage of obtaining HVAC was carried out according to the method indicated in the source (7). In this experiment No. 1, microfiltration of VAS was carried out through two cascades of depth filters with pore diameters of 5 μm and 1 μm, the process of ultracentrifugation in a sucrose density gradient was performed once without adding sodium citrate.

В эксперименте №2 были использованы другие 510 литров ВАЖ. В этом эксперименте для процесса микрофильтрации использовались три последовательных каскада складчатых фильтров с диаметрами пор 10 мкм, 1,2 мкм и 0,6 мкм. Процесс ультрацентрифугирования в градиенте плотности сахарозы проводился двукратно, при этом в состав первого градиента был включен раствор цитрата натрия до конечной концентрации 0,2 М. Образцы двух ОВК, полученных в результате проведения вышеуказанных экспериментов, были проанализированы на содержание общего белка. Далее были проведены два независимых эксперимента по получению субъединичных моновакцин с использованием детергентом ТДТАБ согласно способу, указанному в другом источнике (З).Полученные экспериментальные моновакцины были проанализированы по содержанию общего белка, специфической активности и содержанию овальбумина. На основании полученных результатов были рассчитаны такие показатели, как эффективность технологии на стадии получения моновакцин (количество ГА, полученное с 1 КЭ); относительное содержания овальбумина на 100 мкг антигена ГА в каждой из моновакцин и отношение содержания общего белка к содержанию ГА. Данные представлены в Таблице 1.In experiment # 2, another 510 liters of VAH were used. In this experiment, three successive cascades of folded filters with pore diameters of 10 μm, 1.2 μm and 0.6 μm were used for the microfiltration process. The process of ultracentrifugation in a sucrose density gradient was carried out twice, while the composition of the first gradient included a sodium citrate solution to a final concentration of 0.2 M. Samples of two HVAC obtained as a result of the above experiments were analyzed for total protein content. Further, two independent experiments were carried out to obtain subunit monovaccines using the detergent TDTAB according to the method indicated in another source (3). The resulting experimental monovaccines were analyzed for total protein content, specific activity and ovalbumin content. Based on the results obtained, such indicators were calculated as the efficiency of the technology at the stage of obtaining monovaccines (the amount of GA obtained from 1 EC); the relative content of ovalbumin per 100 μg of HA antigen in each of the monovaccines and the ratio of the total protein content to the HA content. The data are presented in Table 1.

Из представленных данных следует, что использование новых технологических подходов на первом этапе в процессе получения ОВК позволило существенно улучшить качество моновакцин, которые были получены из этих ОВК в ходе дальнейшего технологического процесса. Важно, что использование этих новых технологических подходов практически не привело к уменьшению такого важного показателя технологического процесса, как эффективность технологии, но при этом существенно улучшились такие важные показатели очистки моновакцин, как снижение содержания овальбумина и снижение относительной нагрузки общего белка.From the presented data, it follows that the use of new technological approaches at the first stage in the process of obtaining HVAC made it possible to significantly improve the quality of monovaccines that were obtained from these HVACs in the course of the further technological process. It is important that the use of these new technological approaches practically did not lead to a decrease in such an important indicator of the technological process as the efficiency of the technology, but at the same time such important indicators of the purification of monovaccines as a decrease in the content of ovalbumin and a decrease in the relative load of total protein improved significantly.

Figure 00000001
Figure 00000001

В мировой литературе качество очистки инактивированных гриппозных вакцин сравнивают именно по этим показателям для оценки потенциальной реактогенности. Кроме того, отношение содержания общего белка к содержанию ГА имеет дополнительное значение в связи с тем, что именно по этому показателю вакцины разделяются на расщепленные и субъединичные (2,14). Таким образом, предлагаемые новые подходы позволили существенно оптимизировать первый этап технологии (получение ОВК) и, в результате, получать препараты моновакцин с более высокими показателями качества.In the world literature, the quality of purification of inactivated influenza vaccines is compared precisely according to these indicators to assess the potential reactogenicity. In addition, the ratio of the total protein content to the HA content is of additional importance due to the fact that it is for this indicator that vaccines are divided into split and subunit (2, 14). Thus, the proposed new approaches made it possible to significantly optimize the first stage of the technology (HVAC production) and, as a result, to obtain monovaccine preparations with higher quality indicators.

Пример 2.Example 2.

Действие детергента ТДТАБ на антигены ГА вирусов гриппа различных серотиповEffect of detergent TDTAB on GA antigens of influenza viruses of various serotypes

Данный пример показывает достижение такого технического результата, как создание новой технологии расщепления ОВК детергентами с увеличенной эффективностью технологии на этом этапе для всех серотипов вирусов гриппа.This example shows the achievement of such a technical result as the creation of a new technology for the cleavage of HVAC with detergents with an increased efficiency of the technology at this stage for all serotypes of influenza viruses.

Далее были проведены исследования с целью изучения процесса расщепления ОВК различных серотипов вирусов гриппа с использованием детергента ТДТАБ. Для проведения этих исследований использовались препараты ОВК, полученные согласно новым технологическим подходам, описанным в примере 1. Процесс расщепления проводили согласно способу, указанному в источнике(3).Методика изучения этого воздействия была расширена по сравнению с методикой, описанной в источнике. Было проведено изучение не только эффективности расщепления, но также изучен полипептидный состав образцов после соответствующей обработки ОВК и удаления субвирионных структур. Изучение полипептидного состава образцов ГА позволяет сделать заключение о сохранении конформационной структуры этого антигена в процессе воздействия детергента. В качестве объектов изучения были взяты образцы ОВК, которые были получены с использованием производственных штаммов последних нескольких лет всех трех серотипов (H1N1,H3N2 и В). Чтобы убедиться в том, что полученные результаты связаны именно с воздействием детергента ТДТАБ, в ряде экспериментов в качестве детергента сравнения был использован детергент Октилглюкозид, который используется для выделения ГА в технологии производства расщепленной вакцины «Ультрикс».Further, studies were carried out to study the process of cleavage of the OVK of various serotypes of influenza viruses using the detergent TDTAB. To carry out these studies, HVAC preparations were used, obtained according to the new technological approaches described in example 1. The degradation process was carried out according to the method indicated in the source (3). The method of studying this effect was expanded in comparison with the method described in the source. We studied not only the efficiency of cleavage, but also studied the polypeptide composition of the samples after appropriate treatment with OVK and removal of subvirionic structures. The study of the polypeptide composition of HA samples makes it possible to conclude that the conformational structure of this antigen is preserved during the action of the detergent. The objects of study were taken samples of OVK, which were obtained using industrial strains of the last few years of all three serotypes (H1N1, H3N2 and B). To make sure that the results obtained are related specifically to the effect of the detergent TDTAB, in a number of experiments the detergent Octylglucoside was used as a comparison detergent, which is used to isolate HA in the production technology of the Ultrix split vaccine.

На первом этапе исследований было выявлено, что детергент ТДТАБ не оказывал какого-либо деструктивного действия на антигены ГА серотипов H1N1 и H3N2. Однако, в процессе экспериментов с ОВК, полученных с использованием вируса гриппа серотипа В, были выявлены факты снижения показателя эффективности технологии на этапе получения моновакцин. Было выявлено, что в реакции ОРИД антигены ГА серотипа В образовывали бледно окрашенные кольца преципитации с размытыми краями, в отличие от колец преципитации, которые образовывались в этой же реакции с образцами исходного ОВК или международным стандартом антигена (производство NIBCS). Как указано выше, в этих экспериментах был изучен также полипептидный состав образцов ГА после обработки ТДТАБ. Это позволило сделать вывод о том, в каком состоянии находится конформационная структура антигена ГА в составе образца. Из литературы известно, что если полипептид НО в составе препарата спонтанно расщепляется на полипептиды НА1 (тяжелая цепь) и НА2 (легкая цепь), то конформационная структура этого антигена уже не соответствует той, которая должна быть в интактномвирионном препарате. Изменение нативной конформационной структуры антигена ГА свидетельствует о том, что иммунохимическая структура этого антигена уже не соответствует той, которая была у этого антигена в составе вирионного препарата до обработки детергентами (9). Результаты представлены на Фигурах 1-3.At the first stage of the research, it was revealed that the detergent TDTAB did not have any destructive effect on HA antigens of serotypes H1N1 and H3N2. However, in the course of experiments with HVAC obtained with the use of influenza serotype B virus, facts of a decrease in the indicator of the effectiveness of the technology at the stage of obtaining monovaccines were revealed. It was found that in the ORID reaction, serotype B HA antigens formed pale colored precipitation rings with blurred edges, in contrast to precipitation rings, which were formed in the same reaction with samples of the original OVA or an international antigen standard (produced by NIBCS). As indicated above, in these experiments, the polypeptide composition of HA samples after treatment with TDTAB was also studied. This allowed us to make a conclusion about the state of the conformational structure of the HA antigen in the sample. It is known from the literature that if an HO polypeptide in a preparation is spontaneously cleaved into HA1 (heavy chain) and HA2 (light chain) polypeptides, then the conformational structure of this antigen no longer corresponds to that which should be in an intact virion preparation. A change in the native conformational structure of the HA antigen indicates that the immunochemical structure of this antigen no longer corresponds to that which this antigen had in the composition of the virion preparation before treatment with detergents (9). The results are presented in Figures 1-3.

Из представленных результатов можно сделать вывод, что образцы антигенов ГА, полученные с использованием трех производственных штаммов серотипа В, действительно имели чувствительность к денатурирующему действию детергента ТДТАБ. В экспериментах, где соотношение общего белка ОВК к детергенту ТДТАБ составляло 1:1, в реакции ОРИД колец преципитации не обнаруживалось при анализе антигенов ГА всех трех серотипов. В экспериментах, в которых образцы ОВК серотипа B/Brisbane/60/2008 обрабатывались детергентом ТДТАБ в соотношении (1:0,8), специфическая активность определялась, однако значительно меньше по сравнению с экспериментами с использованием детергента Октилклюкозида. При обработке образцов ОВК, полученных с использованием двух других производственных штаммов серотипа В, обработка детергентом ТДТАБ в соотношении (1:0,8) приводила к полной потере специфической активности антигена ГА в этих образцах. Для ОВК серотипа В, обработка детергентом ТДТАБ в соотношениях (1:0,4), (1:0,5), (1:0,6) и (1:0,7) позволяла получать антигены ГА, в которых можно было определить специфическую активность. Но в реакции ОРИД с этими антигенами кольца преципитации были бледные и с размытыми краями, что затрудняло определение специфической активности антигена ГА в этих образцах.From the presented results, it can be concluded that samples of HA antigens obtained using three industrial strains of serotype B did indeed have a sensitivity to the denaturing effect of the detergent TDTAB. In experiments where the ratio of total RVA protein to TDTAB detergent was 1: 1, precipitation rings were not detected in the ORID reaction when analyzing GA antigens of all three serotypes. In experiments in which samples of OVK serotype B / Brisbane / 60/2008 were treated with detergent TDTAB in the ratio (1: 0.8), the specific activity was determined, however, significantly less compared to experiments using the detergent Octyl glucoside. When processing HVAC samples obtained using two other industrial strains of serotype B, treatment with detergent TDTAB in the ratio (1: 0.8) led to a complete loss of specific activity of the HA antigen in these samples. For serotype B HVA, treatment with TDTAB detergent in the ratios (1: 0.4), (1: 0.5), (1: 0.6) and (1: 0.7) allowed the production of HA antigens in which it was possible determine the specific activity. But in the reaction of ORID with these antigens, the precipitation rings were pale and with blurred edges, which made it difficult to determine the specific activity of the HA antigen in these samples.

Так как в качестве детергента сравнения в данных экспериментах использовался детергент Октилглюкозид, который денатурирующим действием на эти образцы не обладал, то можно утверждать, что денатурация антигенов ГА в процессе обработки ОВК серотипа В происходила именно от воздействия детергента ТДТАБ. Как следует из данного исследования, при любых соотношениях эффективность расщепления с использованием детергента ТДТАБ была значительно ниже по сравнению с эффективностью расщепления этих же образцов ОВК с использованием детергента Октилклюкозид.Since the detergent used in these experiments was the detergent Octylglucoside, which did not have a denaturing effect on these samples, it can be argued that the denaturation of HA antigens during the treatment of serotype B OVA occurred precisely from the action of the detergent TDTAB. As follows from this study, at any ratios, the efficiency of degradation using the detergent TDTAB was significantly lower than the efficiency of degradation of the same HVA samples using the detergent Octyl glucoside.

Анализ полипептидного состава образцов антигенов, полученных с использованием детергента ТДТАБ, выявил феномен спонтанного расщепления, при котором молекула НА0 без всякого постороннего воздействия расщепляется на полипептиды НА1 и НА2. При использовании для расщепления детергента Октилглюкозид феномена спонтанного расщепления не наблюдалось. Так как такое расщепление свидетельствует об изменении конформационной структуры ГА, то, согласно литературным данным, можно сделать вывод о том, что иммунохимическая структура антигена ГА изменилась тоже (9). Таким образом, использование детергента ТДТАБ для получения моновакцин серотипа В не является оптимальным по причине низкой эффективности технологии, а также по причине риска появления антигенов ГА с измененной иммунохимической структурой.Analysis of the polypeptide composition of antigen samples obtained using the detergent TDTAB revealed the phenomenon of spontaneous cleavage, in which the HA0 molecule is cleaved into HA1 and HA2 polypeptides without any outside influence. When Octylglucoside was used for cleavage, the phenomenon of spontaneous cleavage was not observed. Since this cleavage indicates a change in the conformational structure of HA, then, according to the literature data, it can be concluded that the immunochemical structure of the HA antigen also changed (9). Thus, the use of the detergent TDTAB for the production of monovaccines of serotype B is not optimal due to the low efficiency of the technology, and also because of the risk of the appearance of HA antigens with altered immunochemical structure.

Следует отметить, что те производственные штаммы серотипа В, которые были использованы в данном исследовании для получения образцов ОВК, являлись теми штаммами, которые входили в состав инактивированных гриппозных вакцин в последние годы согласно рекомендациям ВОЗ. Это означает, что рекомендованные ВОЗ в последнее время производственные штаммы серотипа В имели чувствительность к денатурирующему действию детергента ТДТАБ.It should be noted that those industrial strains of serotype B, which were used in this study to obtain HVAC samples, were the strains that were included in the inactivated influenza vaccines in recent years according to WHO recommendations. This means that the recently recommended WHO production strains of serotype B were susceptible to the denaturing effect of the detergent TDTAB.

Пример 3.Example 3.

Разработка новых технологических подходов к оптимизации стадии расщепления ОВКDevelopment of new technological approaches to optimization of the HVAC splitting stage

Данный пример показывает достижение такого технического результата, как создание новой оптимальной технологии расщепленния препарата ОВК различными детергентами для достижения максимального сохранения иммунохимической активности полученных поверхностных антигенов и увеличения эффективности производственного процесса на этой стадии.This example shows the achievement of such a technical result as the creation of a new optimal technology for the cleavage of the OVK preparation with various detergents to achieve maximum preservation of the immunochemical activity of the obtained surface antigens and increase the efficiency of the production process at this stage.

В результате проведенных экспериментов было выявлено, что оптимальной технологией для проведения стадии расщепления ОВК является последовательное использование не ионного детергента Тритон Х-100 и детергента ТДТАБ. Было установлено, что изменения соотношений общего белка к этим детергентам не влияло на иммунохимическую нативность полученных антигенов ГА (Фиг. 4).As a result of the experiments, it was revealed that the optimal technology for the stage of HVAC cleavage is the sequential use of non-ionic detergent Triton X-100 and detergent TDTAB. It was found that changes in the ratios of total protein to these detergents did not affect the immunochemical nativeness of the obtained HA antigens (Fig. 4).

Было также показано, что очень важна последовательность добавления детергентов и время инкубации. В начале должен добавляться детергент Тритон X-100 и взаимодействовать с ОВК в течение как минимум 20 минут, а далее добавляться детергент ТДТАБ. Вторая инкубация должна проходить в течение 40 минут.Разработанная таким образом система детергентов получила название ТДТАБ Плюс.It has also been shown that the sequence of addition of detergents and the incubation time are very important. First, the detergent Triton X-100 should be added and reacted with the HVAC for at least 20 minutes, and then the detergent TDTAB should be added. The second incubation should take place within 40 minutes. The system of detergents thus developed was named TDTAB Plus.

Пример 4.Example 4.

Воздействие системы детергентов ТДТАБ Плюс на антигены ГА вирусов гриппа серотипов H1N1, H3N2 и ВEffect of the TDTAB Plus detergent system on HA antigens of influenza viruses of serotypes H1N1, H3N2 and B

Анализ образцов поверхностных антигенов, полученных с использованием системы детергентов ТДТАБПлюс проводили теми же методами, что и в примере 2. Для большей иллюстративности материала одновременно изучались образцы антигенов ГА, полученные с использованием детергентов ТДТАБ Плюс, ТДТАБ и Октилглюкозид. Это позволило оценить сравнительную эффективность расщепления ОВК с использованием трех различных детергентов (см. Фигуры 5-9).The analysis of samples of surface antigens obtained using the detergent system TDTABPlus was carried out by the same methods as in example 2. For greater illustration of the material, samples of HA antigens obtained using detergents TDTAB Plus, TDTAB and Octylglucoside were simultaneously studied. This allowed us to evaluate the comparative efficiency of the degradation of OVK using three different detergents (see Figures 5-9).

В результате изучения сравнительного действия трех различных детергентов на антигены ГА различных серотипов вирусов гриппа были получены данные, на основании которых можно сделать следующие выводы:As a result of the study of the comparative effect of three different detergents on the HA antigens of different serotypes of influenza viruses, data were obtained, based on which the following conclusions can be drawn:

1. На антигены ГА серотипов H1N1, H3N2hB детергенты ТДТАБ Плюс, ТДТАБ и Октилглюкозид действуют по-разному. Это различие проявляется в проценте расщепления, морфологии колец преципитации в реакции ОРИД и в полипептидном составе, который был изучен методом электрофореза в нередуцирующих условиях.1. Detergents TDTAB Plus, TDTAB and Octylglucoside act differently on HA serotypes H1N1 and H3N2hB antigens. This difference is manifested in the percentage of cleavage, the morphology of the precipitation rings in the ORID reaction, and in the polypeptide composition, which was studied by electrophoresis under non-reducing conditions.

2. Детергенты ТДТАБ Плюс и Октилглюкозид воздействовали на антигены ГА всех трех серотипов таким образом, что нативная конформационная (иммунохимическая) структура этих антигенов не менялась. Это выражалось в том, что полученные антигены ГА в реакции ОРИД образовывали кольца преципитации, морфология которых не отличалась от морфологии колец преципитации с образцами международных стандартных антигенов, а также образцами исходных ОВК. При анализе полипептидного состава этих антигенов феномена спонтанного расщепления молекул НА0 выявлено не было.2. Detergents TDTAB Plus and Octylglucoside affected the GA antigens of all three serotypes in such a way that the native conformational (immunochemical) structure of these antigens did not change. This was expressed in the fact that the obtained HA antigens in the ORID reaction formed precipitation rings, the morphology of which did not differ from the morphology of the precipitation rings with samples of international standard antigens, as well as samples of the original OVK. Analysis of the polypeptide composition of these antigens did not reveal the phenomenon of spontaneous cleavage of HA0 molecules.

3. Детергент ТДТАБ на антигены ГА серотипов H1N1 и H3N2 воздействовал примерно также, как и два других детергента. Однако, изучение действия детергента ТДТАБ на антигены серотипа В выявило тот факт, что этот детергент в процессе расщепления оказывает деструктирующее действие на антигены ГА четырех производственных штаммов вирусов гриппа серотипа В. Это выражалось в том, что при низких соотношениях белок:детергент (1:0,4), (1:0,5) и (1:0,6) полученные образцы антигенов в реакции ОРИД образовывали бледно окрашенные кольца преципитации с размытыми краями. При более высоких соотношениях белок:детергент (1:1) полученные таким образом антигены ГА в реакции ОРИД кольца преципитации не образовывали. При изучении полипептидного состава образцов антигенов ГА, полученных с использованием детергента ТДТАБ в различных соотношениях, наблюдался феномен спонтанного расщепления. Это свидетельствует о том, что часть молекул антигена ГА перешла из так называемой «предфузионной» формы в «постфузионную» форму с соответствующими большими изменениями в конформационной и иммунохимической структуре (9).3. The detergent TDTAB had a similar effect on the HA serotypes H1N1 and H3N2 antigens, as did the other two detergents. However, the study of the effect of the detergent TDTAB on serotype B antigens revealed the fact that this detergent, in the process of cleavage, has a destructive effect on the HA antigens of four industrial strains of serotype B influenza viruses. This was expressed in the fact that at low ratios of protein: detergent (1: 0 , 4), (1: 0.5) and (1: 0.6), the obtained antigen samples in the ORID reaction formed pale colored precipitation rings with blurred edges. At higher ratios of protein: detergent (1: 1), the thus obtained HA antigens did not form precipitation rings in the ORID reaction. When studying the polypeptide composition of HA antigen samples obtained using the detergent TDTAB in various ratios, the phenomenon of spontaneous cleavage was observed. This indicates that some of the HA antigen molecules have passed from the so-called "prefusion" form to the "postfusion" form with corresponding large changes in the conformational and immunochemical structure (9).

4. В результате проделанных исследований можно сделать вывод о том, что с вирусами серотипа H1N1 детергент ТДТАБ Плюс дает максимальный процент расщепления (90%) по сравнению с двумя другими детергентами.4. As a result of the studies carried out, it can be concluded that with viruses of the H1N1 serotype, detergent TDTAB Plus gives the maximum percentage of degradation (90%) compared to the other two detergents.

5. С вирусами серотипа H3N2 максимальный процент расщепления показал детергент Октилглюкозид (96%).5. With viruses of the H3N2 serotype, the detergent Octylglucoside showed the maximum percentage of cleavage (96%).

6. С вирусами серотипа В (B/Brisbane/60/2008, B/Phuket/3073/2013 и B/Maryland/15/2016) действие системы детергентов ТДТАБ Плюс позволило достичь более высоких процентов расщепления (93%, 93% и 99%) по сравнению с действием детергента Октилглюкозид (87%, 80%).6.With viruses of serotype B (B / Brisbane / 60/2008, B / Phuket / 3073/2013 and B / Maryland / 15/2016), the action of the TDTAB Plus detergent system allowed to achieve higher percentages of degradation (93%, 93% and 99 %) compared to the action of the detergent Octylglucoside (87%, 80%).

7. Несмотря на то, что детергент ТДТАБ оказывал в процессе расщепления деструктирующее действие на антигены ГА всех изученных производственных штаммов серотипа В, степень его деструктирующего действия зависела от конкретного производственного штамма и соотношения белокгдетергент. В частности, при соотношении белок:детергент (1:0,8) выделенные антигены серотипа B/Brisbane/60/2008 в реакции ОРИД образовывали кольца преципитации, а антигены ГА других изученных серотипов В, выделенные с использованием детергента ТДТАБ в соотношении белокгдетергент (1:0,8), колец преципитации не образовывали.7. Despite the fact that the detergent TDTAB had a destructive effect on the HA antigens of all studied industrial strains of serotype B in the process of cleavage, the degree of its destructive effect depended on the specific production strain and the ratio of protein to detergent. In particular, at a protein: detergent ratio (1: 0.8), the isolated antigens of serotype B / Brisbane / 60/2008 in the ORID reaction formed precipitation rings, and GA antigens of other studied B serotypes isolated using the detergent TDTAB in the protein-detergent ratio (1 : 0.8), no precipitation rings were formed.

8. На основании вышеизложенных выводов можно сделать заключение, что детергенты ТДТАБ Плюс и Октилглюкозид с точки зрения процесса получения моновакцин являются универсальными для серотипов вирусов гриппа Н1N1, H3N2 и В (линии Виктория и Ямагато), которые входят в состав «сезонных» вакцин.8. Based on the above conclusions, we can conclude that detergents TDTAB Plus and Octylglucoside from the point of view of the process of obtaining monovaccines are universal for the serotypes of influenza viruses H1N1, H3N2 and B (Victoria and Yamagato lines), which are included in the "seasonal" vaccines.

При этом использование детергента ТДТАБ Плюс позволяет получить более высокую эффективность технологии на 3-х из 4-х серотипов, входящих в состав четырехвалентных вакцин по сравнению с использованием детергента Октилглюкозид.At the same time, the use of detergent TDTAB Plus makes it possible to obtain a higher technology efficiency for 3 out of 4 serotypes included in tetravalent vaccines as compared to the use of Octylglucoside detergent.

Использование детергента ТДТАБ для получения моновакцин серотипов Вне является оптимальным, так как его применение приводит к занижению показателя эффективности технологии на стадии расщепления ОВК, а также может привести к изменению иммунохимической структуры выделенных антигенов ГА.The use of the detergent TDTAB for the production of monovaccines of serotypes Outside is optimal, since its use leads to an underestimation of the technology efficiency at the stage of cleavage of OVA, and can also lead to a change in the immunochemical structure of isolated HA antigens.

9. Таким образом, для производства четырехвалентных субъединичных вакцин наиболее оптимальным является использование детергента ТДТАБ Плюс.9. Thus, for the production of tetravalent subunit vaccines, the most optimal is the use of detergent TDTAB Plus.

Пример 5.Example 5.

Разработка технологии очистки вирусных антигенов от детергента ТДТАБ Плюс и субвирионных структур.Development of technology for purification of viral antigens from detergent TDTAB Plus and subvirionic structures.

Данный пример демонстрирует достижение технических результатов - создание новых оптимальных технологий очистки поверхностных антигенов от детергента ТДТАБ Плюс и субвирионных структур.This example demonstrates the achievement of technical results - the creation of new optimal technologies for cleaning surface antigens from the detergent TDTAB Plus and subvirionic structures.

В источнике (3) была описана технология расщепления ОВК с использованием единственного детергента ТДТАБ и последующая технология схемы очистки антигенов после расщепления. В этом способе субвирионные структуры удаляют из суспензии только методом ультрацентрифугирования. Далее супернатант концентрируют методом тангенциальной ультрафильтрации с использованием мембран с диаметром пор 30 КД, после чего сконцентрированный супернатант подвергают процессу длительной диафильтрации с большим объемом буфера для очистки от ТДТАБ. После того, как концентрация детергента ТДТАБ в растворе будет ниже, чем 10 мкг на 50 мкг антигена ГА, процесс диафильтрации прекращают, полученную суспензию разводят буфером без каких-либо добавок и подвергают процессу стерилизующей фильтрации для получения моновакцины.The source (3) described the technology for cleavage of OVK using a single detergent TDTAB and the subsequent technology of the antigen purification scheme after cleavage. In this method, subvirionic structures are removed from the suspension only by ultracentrifugation. Then the supernatant is concentrated by tangential ultrafiltration using membranes with a pore diameter of 30 KD, after which the concentrated supernatant is subjected to a long-term diafiltration process with a large volume of buffer for purification from TDTAB. After the concentration of the detergent TDTAB in the solution is lower than 10 μg per 50 μg of HA antigen, the diafiltration process is stopped, the resulting suspension is diluted with a buffer without any additives and subjected to a sterilizing filtration process to obtain a monovaccine.

При использовании системы детергентов ТДТАБ Плюс для получения моновакцин согласно примеру 4, вышеуказанная технология очистки поверхностных антигенов (3) не давала адекватных результатов. Дело в том, что в водных растворах детергент ТДТАБ образует мицеллы незначительного размера, которые могут быть отделены от поверхностных антигенов методом диафильтрации с использованием мембраны с диаметром пор 30 КД. Однако детергент Тритон Х-100, входящий в состав системы детергентов ТДТАБ Плюс, образует в водных растворах мицеллы очень большого размера, которые не проходят через мембрану с диаметром пор 30 КД. Это означает, что с использованием только одного метода диафильтрации отделить мицеллы Тритона Х-100 от антигена ГА не представляется возможным. Следует отметить, что в результате полного удаления детергентов антигены ГА собираются в надмолекулярные структуры, которые обладают высокой иммуногенностью (13). Таким образом, для получения вакцин с высоким протективным потенциалом необходимо, чтобы в процессе выделения моновакцин происходил процесс самосборки ГА в эти надмолекулярные структуры. Если же в процессе получения моновакцины в суспензии остается большое количество детергента, то процесс самосборки будет блокирован.When using the detergent system TDTAB Plus to obtain monovaccines according to example 4, the above technology for the purification of surface antigens (3) did not give adequate results. The fact is that in aqueous solutions the detergent TDTAB forms micelles of small size, which can be separated from surface antigens by diafiltration using a membrane with a pore diameter of 30 KD. However, the detergent Triton X-100, which is part of the TDTAB Plus detergent system, forms very large micelles in aqueous solutions, which do not pass through a membrane with a pore diameter of 30 KD. This means that it is not possible to separate Triton X-100 micelles from the HA antigen using only one diafiltration method. It should be noted that as a result of complete removal of detergents, HA antigens are collected in supramolecular structures that are highly immunogenic (13). Thus, in order to obtain vaccines with a high protective potential, it is necessary that in the process of isolating monovaccines the process of self-assembly of GA into these supramolecular structures occurs. If, in the process of obtaining a monovaccine, a large amount of detergent remains in the suspension, then the self-assembly process will be blocked.

Для того, чтобы обеспечить получение высокоочищенных антигенов ГА с высокой иммуногенностью, необходимо было разработать эффективнные технологии очистки поверхностных антигенов как от субвирионных структур, так и от смеси детергентов Тритон Х-100 и ТДТАБ..In order to ensure the production of highly purified HA antigens with high immunogenicity, it was necessary to develop effective technologies for the purification of surface antigens both from subvirionic structures and from a mixture of detergents Triton X-100 and TDTAB ..

После выполнения ряда экспериментов была разработана комплексная технология получения моновакцин, с использованием которой процесс самосборки проходил эффективно. Эта технология состояла из следующих стадий:After performing a series of experiments, a complex technology for obtaining monovaccines was developed, using which the self-assembly process was efficient. This technology consisted of the following stages:

1. Проточное ультрацентрифугирование со скоростью 20 тыс.об.в течение трех часов.1. Flow-through ultracentrifugation at a speed of 20 thousand rpm for three hours.

2. Последовательная микрофильтрация полученного супернатанта через два каскада складчатых фильтров с диаметром пор 0,6 мкм и 0,2 мкм.2. Sequential microfiltration of the obtained supernatant through two cascades of folded filters with pore diameters of 0.6 µm and 0.2 µm.

3. Ультрафильтрация с использованием мембран с размером отсечки 30 КД и концентрирование полученного очищенного супернатанта до объема 3-4 литра.3. Ultrafiltration using membranes with a cut-off size of 30 KD and concentration of the resulting purified supernatant to a volume of 3-4 liters.

4. Хроматография полученного раствора концентрата с использованием гидрофобного носителя «SDRHyperD», производства фирмы Раll(USА) и колонки «Streamline 200» производства фирмы GE-Healthcare(USA) по методу «Expandedbedadsorption». Использование этого носителя, а также такого метода хроматографии позволило резко увеличить эффективность процесса удаления детергентов и получить препараты моновакцин, в которых содержание детергента ТДТАБ не превышало 5 мкг/мл, а содержание детергента Тритон Х-100 было ниже предела определения метода. Это связано с тем, что при использовании хроматографии по методу «Expandedbedadsorption» поток материала идет снизу вверх, и при этом хроматографический носитель переходит в суспензионное состояние, что позволяет увеличить время контакта жидкости с поверхностью сорбента.4. Chromatography of the resulting concentrate solution using a hydrophobic carrier "SDRHyperD" manufactured by Pall (USA) and a column "Streamline 200" manufactured by GE-Healthcare (USA) by the "Expandedbedadsorption" method. The use of this carrier, as well as this chromatography method, made it possible to dramatically increase the efficiency of the detergent removal process and obtain monovaccine preparations in which the content of the detergent TDTAB did not exceed 5 μg / ml, and the content of the detergent Triton X-100 was below the limit of the method. This is due to the fact that when using chromatography according to the "Expandedbedadsorption" method, the flow of material goes from bottom to top, and the chromatographic carrier passes into a suspension state, which makes it possible to increase the contact time of the liquid with the sorbent surface.

5. После проведения хроматографии и оценки содержания белка в полученном препарате проводилось разведение препарата буфером, содержащим в качестве дезагрегирующей добавки детергент Тритон Х-100 в концентрациях от 200 до 300 мкг/мл.5. After chromatography and evaluation of the protein content in the obtained preparation, the preparation was diluted with a buffer containing detergent Triton X-100 as a disaggregating additive in concentrations from 200 to 300 μg / ml.

6. Разведенный таким образом раствор подвергали процедуре стерилизующей фильтрации через мембрану с диаметром пор 220 нм.6. The solution thus diluted was subjected to sterilizing filtration through a membrane with a pore diameter of 220 nm.

По сравнению с процессом диафильтрации, указанным в источнике (3), процесс комбинированной очистки методами микрофильтраци, концентрирования и хроматографии занимал в два раза меньше времени.Compared to the diafiltration process indicated in the source (3), the combined purification process by microfiltration, concentration and chromatography took half the time.

В качестве иллюстрации того, что при использовании предлагаемой технологии очистки антигены ГА действительно собираются в надмолекулярные структуры, представлены результаты анализа морфологии методом электронной микроскопии образцов моновакцин серотипов В и H3N2.As an illustration of the fact that when using the proposed purification technology, HA antigens are actually collected in supramolecular structures, the results of the analysis of morphology by electron microscopy of samples of monovaccines of serotypes B and H3N2 are presented.

Анализ проводился с применением техники негативного контрастирования с использованием реагентауранил ацетата и с использованием электронного микроскопа «Jeol-100В». Результаты были получены с использованием увеличения в 50 тыс. раз.The analysis was carried out using the negative contrast technique using reagentauranyl acetate and using a Jeol-100B electron microscope. The results were obtained using a magnification of 50 thousand times.

В процессе изучения каждого из препаратов было просмотрено не менее двухсот полей зрения и были выбраны наиболее типичные морфологические структуры. В качестве сравнительного размера представлена линейка 100 нанометров внизу каждого рисунка.In the process of studying each of the preparations, at least two hundred fields of view were examined and the most typical morphological structures were selected. The 100 nanometer bar at the bottom of each figure is shown as a comparative size.

На представленных Фигурах 10 и 11 видно, что типичными морфологическими структурами изученных субъединичных моновакцин являются специфические агрегаты молекул ГА, которые имеют неправильную шаровидную форму и размер от 25 до 40 нм. В структуре этих агрегатов выявляются отдельные морфологические структуры тримеров ГА, так называемые «шипы».The presented Figures 10 and 11 show that typical morphological structures of the studied subunit monovaccines are specific aggregates of HA molecules, which have an irregular spherical shape and a size of 25 to 40 nm. In the structure of these aggregates, separate morphological structures of GA trimers, the so-called "spines", are revealed.

Таким образом, из представленных результатов следует, что предлагаемая технология очистки действительно позволяет обеспечить удаление детергентов из раствора препарата таким образом, что самосборка антигенов ГА произошла полностью. Следует отметить, что после того, как самосборка антигенов ГА уже произошла, добавление детергента Тритон Х-100 в концентрациях 200-300 мкг/мл ужене способно разрушить образовавшиеся надмолекулярные структуры. Согласно данным литературы (12), детергент Тритон Х-100 в таких концентрациях действует только в качестве дезагрегирующей добавки и не действует на морфологическую структуру антигена ГА в составе вирионов или других субвирусных структур.Thus, it follows from the presented results that the proposed purification technology really allows the removal of detergents from the drug solution in such a way that the self-assembly of HA antigens occurs completely. It should be noted that after the self-assembly of HA antigens has already occurred, the addition of the detergent Triton X-100 at concentrations of 200-300 μg / ml is already unable to destroy the formed supramolecular structures. According to the literature (12), the detergent Triton X-100 in such concentrations acts only as a disaggregating additive and does not affect the morphological structure of the HA antigen in virions or other subviral structures.

При анализе коммерческой расщепленной вакцины «Fluzone», производства фирмы SANOFI-PASTER, были выявлены похожие морфологические формы организации молекул ГА (13). Следует отметить, что у авторов этой публикации четкость изображения на представленных ими рисунках была выше, так как для анализа они использовали более современную технику криогенной электронной микроскопии. Эта информация подтверждает наши результаты в той части, что в составе коммерческих вакцин антиген ГА образует агрегаты примерно такого размера и морфологии, как и на представленных нами рисунках.Analysis of the commercial split vaccine Fluzone, manufactured by SANOFI-PASTER, revealed similar morphological forms of organization of HA molecules (13). It should be noted that the authors of this publication had a higher image clarity in the figures presented by them, since they used a more modern technique of cryogenic electron microscopy for analysis. This information confirms our results in the part that in the composition of commercial vaccines the HA antigen forms aggregates of approximately the same size and morphology as in the figures presented by us.

Согласно данным литературы, вакцина «Fluzone» содержит в своем составе детергент Тритон Х-100 в концентрации 200 мкг/мл в качестве дезагрегирующей добавки. Это подтверждает наше наблюдение о том, что детергент Тритон Х-100 в этой концентрации в качестве дезагрегирующей добавки не влияет на морфологию надмолекулярных структур ГА после их самосборки.According to the literature, the vaccine "Fluzone" contains the detergent Triton X-100 at a concentration of 200 μg / ml as a disaggregating additive. This confirms our observation that the detergent Triton X-100 in this concentration as a disaggregating additive does not affect the morphology of the supramolecular HA structures after their self-assembly.

Пример 6.Example 6.

Получение моновакцины серотипа H3N2 согласно заявленному способуObtaining monovaccine serotype H3N2 according to the claimed method

В примерах 1, 3, 5 описаны новые технологические подходы на стадиях предварительной очистки ВАЖ, получения ОВК, расщепления ОВК системой детергентов ТДТАБ Плюс, очистки расщепленного ОВК от субвирионных структур и очистки выделенных поверхностных антигенов от системы детергентов ТДБАБ Плюс. На основании этих новых технологических подходов был разработан новый способ получения субъединичных моновакцин. Для иллюстрации пригодности и высокой эффективности заявленного способа было проведено выделение моновакцин серотипа H3N2 (пример 6), серотипа В (пример 7) и серотипа H1N1 (пример 8).Examples 1, 3, 5 describe new technological approaches at the stages of preliminary purification of VFA, obtaining HVA, cleavage of HVA by the TDTAB Plus detergent system, purification of the cleaved HVA from subvirionic structures and purification of isolated surface antigens from the TDBAB Plus detergent system. Based on these new technological approaches, a new method for producing subunit monovaccines has been developed. To illustrate the suitability and high efficiency of the claimed method, the isolation of monovaccines of serotype H3N2 (example 6), serotype B (example 7) and serotype H1N1 (example 8) was carried out.

КЭ в возрасте 10 суток в количестве 45 тыс.шт.были получены с птицефабрики и подвергнуты визуальному контролю с целью отбраковки. Далее были дезинфицированы при поступлении в цех двумя партиями дезинфектантом 2%-м раствором «Оксоний Актив» в течение 30 минут при температуре (+34 С°). Далее дезинфицированные КЭ перевозили в камеру для предварительной инкубации. Инкубация проходила в диапазоне температур (от +36 до +37 С°), относительной влажности 55-65% в течение 16 часов. После этого проводилось заражение КЭ седьмым пассажным уровнем реассортантного штамма серотипа A/HongKong/4801/2014 (H3N2). Заражение проводилось с использованием автоматической линии заражения производства фирмы Technolabo (Italy). Процесс заражения 45 тыс. КЭ проходил в течение 2-х часов. После заражения КЭ перемещались в термальную камеру для инкубации с температурой (+36,5 С°) и относительной влажностью 65%. Инкубация проходила в течение 44 часов, после чего икубированные КЭ были перевезены в специальную холодильную камеру с температурой (от +3 до +5 С°). Охлаждение КЭ проводилось в течение 16 часов, после чего охлажденные КЭ поступали на автоматическую линию отбора ВАЖ производства Technolabo (Italy). После соответствующей отбраковки для отбора ВАЖ было использовано 42 тыс. КЭ. Общий объем собранной ВАЖ составил 420 литров. Сбор ВАЖ происходил в реактор вместимостью 630 литров. Перед началом сбора ВАЖ этот реактор охлаждали до температуры (от +5 до +8 С°). Общее время сбора ВАЖ составило 4 часа. В реактор после окончания сбора ВАЖ добавляли40 литров стерильного раствора 2-х молярного NaCl и перемешивали содержимое в течение 15 минут. Далее в реактор добавляли дезинфектантбета-пропиолактон до конечной концентрации в реакторе0,1% и содержимое перемешивали еще 30 минут.Далее мешалки отключали, а содержимое реактора инкубировали при температуре (от +5 до +8 С°) в течение 16-20 часов. После обработки бета-пропиолактоном последующие операции с полученной ВАЖ проводились в так называемой «чистой зоне». Предварительная очистка ВАЖ проводилась с использованием трех каскадов складчатых фильтров с размерами пор 10 мкм, 1,0 мкм и 0,6 мкм производства фирмы Domnic Hunter (USA). Параллельно с процессом микрофильтрации осуществлялся процесс концентрирования с использованием метода тангенциальной ультрафильтрации на мембранах с диаметром пор 300 КД. Весь этот этап проводился при комнатной температуре. Процессы предварительной очистки и концентрирования 440 литров ВАЖ были проведены в течение 3 часов. Общий объем полученного концентрата ВАЖ был 30 литров.EC at the age of 10 days in the amount of 45 thousand pieces were obtained from a poultry farm and subjected to visual control for the purpose of rejection. Then they were disinfected upon entering the shop in two batches of disinfectant with a 2% solution of "Oxonium Active" for 30 minutes at a temperature (+34 C °). Next, the disinfected CEs were transported to the pre-incubation chamber. Incubation took place in the temperature range (from +36 to +37 C °), relative humidity 55-65% for 16 hours. After that, TBE was infected with the seventh passage level of the reassortant strain of serotype A / HongKong / 4801/2014 (H3N2). Infection was carried out using an automatic infection line manufactured by Technolabo (Italy). The infection process with 45 thousand CE took place within 2 hours. After infection, CEs were moved to a thermal incubation chamber with a temperature (+ 36.5 C °) and a relative humidity of 65%. The incubation lasted for 44 hours, after which the incubated CEs were transported to a special refrigerating chamber with a temperature (from +3 to +5 C °). The cooling of the FE was carried out for 16 hours, after which the cooled FE was fed to an automatic line for the selection of VAZ manufactured by Technolabo (Italy). After appropriate rejection, 42 thousand FE were used for the selection of VAZ. The total volume of the collected VAZ was 420 liters. The collection of VAS took place in a reactor with a capacity of 630 liters. Before the start of the collection of VAZ, this reactor was cooled to a temperature (from +5 to +8 C °). The total collection time for the VAZ was 4 hours. After the end of the collection of VAS, 40 liters of a sterile solution of 2 molar NaCl were added to the reactor and the contents were stirred for 15 minutes. Next, disinfectant beta-propiolactone was added to the reactor to a final concentration in the reactor of 0.1% and the contents were stirred for another 30 minutes. Then the stirrers were turned off, and the contents of the reactor were incubated at a temperature (from +5 to +8 C °) for 16-20 hours. After treatment with beta-propiolactone, subsequent operations with the obtained VAZ were carried out in the so-called "clean zone". Preliminary purification of the VAZ was carried out using three cascades of folded filters with pore sizes of 10 μm, 1.0 μm, and 0.6 μm manufactured by Domnic Hunter (USA). In parallel with the microfiltration process, the concentration process was carried out using the method of tangential ultrafiltration on membranes with a pore diameter of 300 KD. This entire stage was carried out at room temperature. The processes of preliminary purification and concentration of 440 liters of VAZ were carried out within 3 hours. The total volume of the obtained VAZ concentrate was 30 liters.

Далее проводили очистку концентрата ВАЖ в градиенте плотности сахарозы в два этапа. Для этой цели использовали промышленные центрифуги модели ЕК2, производства фирмы Alfa Wassermann (USA). На первом этапе использовались градиенты плотности сахарозы, в состав которых входил цитрат натрия в конечной концентрации 0,2 М. Отбор фракций после процесса ультрацентрифугирования проводили в диапазоне концентраций сахарозы от 32 до 50% и с титром ГА во фракции 1:16000 и более. Отобранные после первых градиентов фракции разводили фосфатным буферным раствором (ФБР) и повторяли очистку на сахарозном градиенте еще раз. Второй сахарозный градиент приготовлялся с использованием ФБР без каких-либо других добавок. Весь процесс центрифугирования и отбора фракций как в первом, так и во втором случае, происходил в течение 7-ми часов, скорость центрифугирования была 32-34 тыс. об./мин при охлаждении (от +3 до +5 С°). После второго центрифугирования отбор фракций проводился в более жестком диапазоне от 34 до 48% концентрации сахарозы и титром ГА не менее 1:64000. Из объема 30 литров концентрированной ВАЖ было получено 500 мл ОВК в сахарозе после проведения второго цикла ультрацентрифугирования. Аликвоты полученных фракций второго сахарозного градиента объединяли и в них определяли содержание белка по Лоури. Общее содержание белка в 500 мл ОВК составило 16 граммов. Фракции ОВК хранились при температуре (от +3 до +6 С°) в течение нескольких дней для последующего получения моновакцины.Further, the VAZ concentrate was purified in a sucrose density gradient in two stages. For this purpose, we used industrial centrifuges, model EK2, manufactured by Alfa Wassermann (USA). At the first stage, sucrose density gradients were used, which included sodium citrate at a final concentration of 0.2 M. The selection of fractions after the ultracentrifugation process was carried out in the range of sucrose concentrations from 32 to 50% and with a HA titer in the fraction of 1: 16000 and more. The fractions collected after the first gradients were diluted with phosphate buffered saline (PBS) and the purification on a sucrose gradient was repeated once more. The second sucrose gradient was prepared using PBS without any other additives. The whole process of centrifugation and selection of fractions, both in the first and in the second case, took place within 7 hours, the speed of centrifugation was 32-34 thousand rpm with cooling (from +3 to +5 C °). After the second centrifugation, the selection of fractions was carried out in a more stringent range from 34 to 48% sucrose concentration and a HA titer of at least 1: 64000. From a volume of 30 liters of concentrated VAF, 500 ml of HVA in sucrose was obtained after the second cycle of ultracentrifugation. Aliquots of the obtained fractions of the second sucrose gradient were pooled and their protein content was determined according to Lowry. The total protein content in 500 ml of HVAC was 16 grams. The HVAC fractions were stored at a temperature (from +3 to +6 C °) for several days for the subsequent receipt of a monovaccine.

Для выделения моновакцины эти фракции разводили ФБР, тщательно перемешивали и добавляли раствор детергента Тритон Х-100 до его общего количества в реакции 24 грамма (отношение общего белка к детергенту составило 1:1,5). После этого полученный раствор тщательно перемешивали в течение 20 минут, после чего к нему добавляли детергент ТДТАБ таким образом, чтобы его общее количество в конечном растворе составило 16 граммов (отношение общего белка к детергенту ТДТАБ составило 1:1). После добавления второго детергента раствор тщательно перемешали в течение еще 40 минут, после чего передали на стадию ультрацентрифугирования. Общий объем раствора составил 12 литров. Ультрацентрифугирование проводили на центрифуге модели ЕК2, производства фирмы AlfaWassermann (USA). Ультрацентрифугирование проходило на проточном роторе при 20000 об./мин. в течение 3-х часов при скорости подачи жидкости через ротор 10 л/час. После окончания центрифугирования полученный супернатант передали на следующую стадию очистки. Эта стадия очистки была проведена методом двухкаскадной микрофильтрации с использованием складчатых фильтров с диаметрами пор 0,6 мкм и 0,2 мкм производства фирмы DomnicHunter(USA). После конца микрофильтрации картриджи промывали буфером, после чего промывочный раствор и фильтрат объединяли и концентрировали методом тангенциальной ультрафильтрации с мембранами с диаметром пор 30 КД. В данном эксперименте объем супернатанта, а также объем растворов после промывки ротора и картриджей составил 16 литров, после концентрирования этот объем составил 4 литра. Финальную очистку поверхностных антигенов проводили методом промышленной хроматографии с использованием гидрофобного носителя «SDRHyperD» производства фирмы Pall (USA). Этот носитель работает по принципу гидрофобных взаимодействий и способен удалять из водных растворов практически все детергенты, имеющие гидрофобные цепи. Для сокращения времени хроматографии был использован специальный технологический подход «ExpandedBedAdsorbtion», суть которого состоит в том, что препарат для очистки подается снизу колонки, а верхний слой гидрофобного носителя не фиксирован. С целью осуществления этого подхода была использована специальная колонка «StreamLine 200»производства фирмы GE-Healthcare(USA). Объем носителя в этой колонке был 3,5 литра. На эту колонку нанесли 4 литра сконцентрированного супернатанта и провели пять циклов циркуляции раствора через этот объем носителя со скоростью 10 л/час. После пятого цикла провели отбор пробы и убедились, что содержание детергента ТДТАБ там было 11 мкг/мл. Весь процесс очистки поверхностных антигенов, начиная с микрофильтрации и заканчивая хроматографической очисткой, происходил при комнатной температуре и занял 3 часа. В результате был получен концентрат с содержанием общего белка 9,0 граммов в объеме 5 литров (вместе с буфером промывки). Этот объем концентрата разбавили до объема 25 литровбуфером ФБР, содержащим детергент Тритон Х-100 до конечной концентрации 300 мкг/мл. Полученные 25 литров раствора тщательно перемешали в стерильном реакторе с мешалкой, после чего провели стерилизующую фильтрацию через стерильный картридж с размером пор 0,22 мкм фирмы Millipore (USA). Фильтрацию проводили в стерильный одноразовый мешок производства фирмы HyClone (USA). Объем профильтрованной жидкости составил 23 литра. Из полученного раствора моновакцины отобрали образцы для проведения контролей согласно спецификации, указанной в ГФ РФ XIV. Согласно полученным результатам, общее содержание белка в моновакцине составило 7,5 граммов, общее содержание антигена ГА составило 2,7 граммов. Концентрация детергента ТДТАБ в полученном растворе моновакцины была определена 2,5 мкг/мл. Уровень эффективности технологии на стадии моновакцины в этом эксперименте составил 64 мкг ГА с 1 КЭ. Полипептидный состав образца полученной экспериментальной моновакцины представлена Фиг. 12.To isolate the monovaccine, these fractions were diluted with PBS, mixed thoroughly, and a solution of the Triton X-100 detergent was added to its total amount in the reaction of 24 grams (the ratio of total protein to detergent was 1: 1.5). After that, the resulting solution was thoroughly mixed for 20 minutes, after which the detergent TDTAB was added to it so that its total amount in the final solution was 16 grams (the ratio of total protein to detergent TDTAB was 1: 1). After adding the second detergent, the solution was thoroughly mixed for another 40 minutes, after which it was transferred to the ultracentrifugation stage. The total volume of the solution was 12 liters. Ultracentrifugation was carried out in an EK2 centrifuge manufactured by AlfaWassermann (USA). Ultracentrifugation took place on a flow-through rotor at 20,000 rpm. within 3 hours at a liquid flow rate through the rotor of 10 l / h. After the end of centrifugation, the resulting supernatant was transferred to the next purification step. This stage of purification was carried out by the method of two-stage microfiltration using folded filters with pore diameters of 0.6 µm and 0.2 µm manufactured by DomnicHunter (USA). After the end of microfiltration, the cartridges were washed with buffer, after which the wash solution and filtrate were combined and concentrated by tangential ultrafiltration with membranes with a pore diameter of 30 KD. In this experiment, the volume of the supernatant, as well as the volume of solutions after washing the rotor and cartridges, was 16 liters; after concentration, this volume was 4 liters. The final purification of surface antigens was performed by industrial chromatography using a hydrophobic SDRHyperD carrier manufactured by Pall (USA). This carrier works on the principle of hydrophobic interactions and is able to remove practically all detergents with hydrophobic chains from aqueous solutions. To reduce the time of chromatography, a special technological approach “ExpandedBedAdsorbtion” was used, the essence of which is that the preparation for purification is supplied from the bottom of the column, and the upper layer of the hydrophobic carrier is not fixed. To implement this approach, a special column "StreamLine 200" manufactured by GE-Healthcare (USA) was used. The volume of the media in this column was 3.5 liters. This column was loaded with 4 liters of concentrated supernatant and circulated the solution five times through this volume of carrier at a rate of 10 liters / hour. After the fifth cycle, a sample was taken and it was verified that the content of the detergent TDTAB was 11 μg / ml. The entire process of purification of surface antigens, from microfiltration to chromatographic purification, took place at room temperature and took 3 hours. The result was a concentrate with a total protein content of 9.0 grams in a volume of 5 liters (with wash buffer). This volume of concentrate was diluted to 25 liters with PBS buffer containing Triton X-100 detergent to a final concentration of 300 μg / ml. The resulting 25 liters of solution was thoroughly mixed in a sterile reactor with a stirrer, after which sterilizing filtration was carried out through a sterile cartridge with a pore size of 0.22 μm from Millipore (USA). Filtration was carried out in a sterile disposable bag manufactured by HyClone (USA). The volume of the filtered liquid was 23 liters. Samples were taken from the obtained solution of the monovaccine for control according to the specification specified in the RF State Pharmacopoeia XIV. According to the results obtained, the total protein content in the monovaccine was 7.5 grams, and the total HA antigen content was 2.7 grams. The concentration of the detergent TDTAB in the resulting monovaccine solution was determined at 2.5 μg / ml. The level of technology efficiency at the monovaccine stage in this experiment was 64 μg of GA with 1 EC. The polypeptide composition of the sample of the obtained experimental monovaccine is shown in FIG. 12.

Из представленных данных следует, что основным полипептидом в составе экспериментальной моновакцины является полипептид НА0 (нерасщепленная форма антигена ГА). Полипептид нуклеокапсида (NP) присутствует в следовых количествах по сравнению с относительным содержанием полипептида нуклеокапсида в препарате ОВК, из которого была получена экспериментальная моновакцина. Полипептид мембранного белка (M1) в составе моновакцины не выявлен. Наличие полипептидов НА1 (тяжелая цепь антигена ГА) и НА2 (легкая цепь антигена ГА) практически не обнаружена, что свидетельствует об отсутствии феномена спонтанного расщепления в процессе выделения моновакцины.From the presented data, it follows that the main polypeptide in the experimental monovaccine is the HA0 polypeptide (an uncleaved form of the HA antigen). The nucleocapsid polypeptide (NP) is present in trace amounts compared to the relative content of the nucleocapsid polypeptide in the OVAC preparation from which the experimental monovaccine was obtained. The membrane protein polypeptide (M1) was not detected in the monovaccine. The presence of HA1 (HA antigen heavy chain) and HA2 (HA antigen light chain) polypeptides was practically not detected, which indicates the absence of the phenomenon of spontaneous cleavage during the isolation of the monovaccine.

Пример 7.Example 7.

Получение моновакцины серотипа В (линия Виктория) согласно заявленному способуObtaining monovaccine serotype B (Victoria line) according to the claimed method

Для получения моновакцины серотипа В (линия Виктория) было использована 44 тыс. шт. КЭ. Для заражения КЭ был использован посевной вирус 8-го пассажного уровня серотипа B/Brisbane/60/2008. Процедуры обработки эмбрионов, предварительной инкубации и заражения КЭ вирусом проводились также, как и в примере 6. Однако инкубацию КЭ после заражения проводили при температуре (+32, 5 С°) в течение 68 часов. После стадии инкубации и охлаждения было собрано 410 литров ВАЖ, которые были получены в объеме 30 литров после соответствующей обработки, очистки и концентрирования. В результате, после двух циклов ультрацентрифугирования в градиенте плотности сахарозы было отобрано 6 фракций градиента с общим содержанием белка 14 граммов. Выделение моновакцины проводили, как указано в примере 6, однако, соотношения общий белок:детергент Тритон Х-100: детергент ТДТАБ было выбрано как (1:1,2:0,8). Объем разрушения составил 14 литров. После стадии ультрацентрифугирования и микрофильтрации вместе с буфером промывки объем составил 22 литра, которые были сконцентрированы до объема 5 литров. Для очистки полученного концентрата было проведено четыре цикла циркуляции со скоростью 10 л/час, после чего содержание детергента ТДТАБ достигло уровня 4 мкг/мл. Общее содержание белка составило 7 граммов. Этот раствор был разведен до объема 20 литров буфером ФБР, содержащим детергент Тритон Х-100. В результате было получено 19 литров моновакцины. Общее содержание белка в моновакцине составило 7,2 граммов, общее содержание ГА - 2,5 грамма. Эффективность технологии в этом эксперименте составила 56 мкг ГА на 1 шт. КЭ. Содержание детергента ТДТАБ составило 2 мкг/мл. Полипептидный состав образца полученной экспериментальной моновакцины представлен на Фиг. 13.To obtain a monovaccine of serotype B (Victoria line), 44 thousand pcs were used. CE. Inoculum virus of the 8th passage level of serotype B / Brisbane / 60/2008 was used to infect TBE. The procedures for processing embryos, pre-incubation and infection with CE virus were carried out as in example 6. However, the incubation of CE after infection was carried out at a temperature (+32, 5 C °) for 68 hours. After the incubation and cooling step, 410 liters of VAF were collected, which were obtained in a volume of 30 liters after appropriate processing, purification and concentration. As a result, after two cycles of sucrose density gradient ultracentrifugation, 6 gradient fractions with a total protein content of 14 grams were collected. Isolation of monovaccines was carried out as described in example 6, however, the ratio of total protein: detergent Triton X-100: detergent TDTAB was chosen as (1: 1.2: 0.8). The volume of destruction was 14 liters. After the ultracentrifugation and microfiltration step, together with the wash buffer, the volume was 22 liters, which were concentrated to a volume of 5 liters. To purify the resulting concentrate, four circulation cycles were carried out at a rate of 10 l / h, after which the content of the detergent TDTAB reached a level of 4 μg / ml. The total protein content was 7 grams. This solution was diluted to 20 liters with PBS buffer containing Triton X-100 detergent. As a result, 19 liters of monovaccine were obtained. The total protein content in the monovaccine was 7.2 grams, the total HA content was 2.5 grams. The efficiency of the technology in this experiment was 56 μg of HA per 1 pc. CE. The detergent content TDTAB was 2 μg / ml. The polypeptide composition of a sample of the obtained experimental monovaccine is shown in FIG. 13.

Из представленных данных следует, что основным полипептидом в составе экспериментальной моновакцины является полипептид НАО (нерасщепленная форма антигена ГА). Полипептид нуклеокапсида (NP) также обнаруживается в составе моновакцины, однако его сравнительное содержание по отношению к полипептиду НАО меньше, чем в препарате ОВК, из которого была получена экспериментальная моновакцина. Полипептид мембранного белка (M1) в составе моновакцины не выявлен. Наличие полипептидов НА1 (тяжелая цепь антигена ГА) и НА2 (легкая цепь антигена ГА) практически не обнаружена, что свидетельствует об отсутствии феномена спонтанного расщепления в процессе выделения моновакцины.From the presented data, it follows that the main polypeptide in the experimental monovaccine is the HAO polypeptide (an uncleaved form of the HA antigen). The nucleocapsid polypeptide (NP) is also found in the monovaccine, but its comparative content with respect to the HAO polypeptide is less than in the OVA preparation from which the experimental monovaccine was obtained. The membrane protein polypeptide (M1) was not detected in the monovaccine. The presence of HA1 (HA antigen heavy chain) and HA2 (HA antigen light chain) polypeptides was practically not detected, which indicates the absence of the phenomenon of spontaneous cleavage during the isolation of the monovaccine.

Пример 8.Example 8.

Получение моновакцины серотипа В (линия Ямагато) согласно заявленному способуObtaining monovaccine serotype B (Yamagato line) according to the claimed method

Для получения моновакцины серотипа В (линия Ямагато) были использованы 46 тыс. шт. КЭ. Для заражения КЭ был использован в качестве посевного материала вирус серотипа B/Phuket/3073/2013 на 10-ом пассажном уровне. Процедуры обработки эмбрионов, предварительной инкубации и процесс заражения КЭ вирусом проводились также, как и в примерах 6 и 7. Однако инкубацию КЭ после заражения проводили при температуре (+33,0 С°) в течение 64 часов. После стадии инкубации и охлаждения было собрано 480 литров ВАЖ, которые после соответствующей обработки, очистки и концентрирования были получены в объеме 35 литров. После двух циклов ультрацентрифугирования в градиенте плотности сахарозы было отобрано 7 фракций градиента с общим содержанием белка 16 граммов. Выделение моновакцины проводили, как указано в примере 7.To obtain monovaccines of serotype B (Yamagato line), 46 thousand pcs were used. CE. To infect TBE, a serotype B / Phuket / 3073/2013 virus at the 10th passage level was used as an inoculum. The procedures for processing embryos, pre-incubation and the process of infecting the CE with the virus were carried out as in examples 6 and 7. However, the incubation of CE after infection was carried out at a temperature (+33.0 C °) for 64 hours. After the stage of incubation and cooling, 480 liters of IAF were collected, which after appropriate processing, purification and concentration were obtained in a volume of 35 liters. After two cycles of sucrose density gradient ultracentrifugation, 7 gradient fractions with a total protein content of 16 grams were collected. Isolation of the monovaccine was carried out as described in example 7.

Соотношение Общий белок: детергент Тритон Х-100: детергент ТДТАБ было выбрано (1:1,2:0,8), как и в примере 7. Объем разрушения составил 13 литров. После стадии ультрацентрифугирования и микрофильтрации вместе с буфером промывки объем составил 21 литра, которые были сконцентрированы до объема 4 литров. Для очистки полученного концентрата было проведено пять циклов циркуляции со скоростью 10 л/час, после чего содержание детергента ТДТАБ в растворе достигло уровня 5 мкг/мл. Общее содержание белка составило 7,9 граммов. Этот раствор был разведен до объема 22 литров буфером ФБР, содержащим детергент Тритон Х-100. В результате было получено 21 литр моновакцины. Общее содержание белка в моновакцине составило 7,7 граммов, общее содержание ГА-2,8 грамма. Эффективность технологии в этом эксперименте составила 68 мкг ГА на 1 шт. КЭ. Содержание детергента ТДТАБ в растворе моновакцины составило 2 мкг/мл. Полипептидный состав образца полученной экспериментальной моновакцины был аналогичен представленному на Фиг. 13 (пример 7).The ratio Total protein: detergent Triton X-100: detergent TDTAB was chosen (1: 1.2: 0.8), as in example 7. The volume of destruction was 13 liters. After the ultracentrifugation and microfiltration step, together with the wash buffer, the volume was 21 liters, which were concentrated to a volume of 4 liters. To purify the resulting concentrate, five circulation cycles were carried out at a rate of 10 l / h, after which the content of the detergent TDTAB in the solution reached a level of 5 μg / ml. The total protein content was 7.9 grams. This solution was diluted to a volume of 22 liters with PBS buffer containing Triton X-100 detergent. As a result, 21 liters of monovaccine were obtained. The total protein content in the monovaccine was 7.7 grams, the total HA content was 2.8 grams. The efficiency of the technology in this experiment was 68 μg of HA per 1 pc. CE. The detergent content of TDTAB in the monovaccine solution was 2 μg / ml. The polypeptide composition of the sample of the obtained experimental monovaccine was similar to that shown in FIG. 13 (example 7).

Пример 9.Example 9.

Получение моновакцины серотипа H1N1 согласно заявленному способуObtaining monovaccine serotype H1N1 according to the claimed method

Для получения моновакцины серотипа H1N1 было использовано 48 тыс. шт. КЭ и посевной вирус 6-го пассажного уровня серотипа A/Michigan/45/2105 (H1N1). После заражения КЭ инкубация проходила при температуре (+35,5 С°) в течение 48 часов. Из полученного количества КЭ было собрано 470 литров ВАЖ. Все параметры дальнейшей очистки также соответствовали параметрам, указанным в примере 6. Концентрат после микрофильтрации собрали в объеме 30 литров. После второго градиента было собрано 5 фракций, в которых содержалось 9 граммов общего белка. Разрушение ОВК проводилось при соотношениях общийTo obtain a monovaccine of serotype H1N1, 48 thousand pcs were used. TBE and seed virus of the 6th passage level serotype A / Michigan / 45/2105 (H1N1). After infection with EC, incubation took place at a temperature (+ 35.5 C °) for 48 hours. From the received amount of EC, 470 liters of VAZ were collected. All parameters of further purification also corresponded to the parameters indicated in example 6. The concentrate after microfiltration was collected in a volume of 30 liters. After the second gradient, 5 fractions were collected, which contained 9 grams of total protein. The destruction of the HVAC was carried out with the ratios total

белок:детергент Тритон Х-100:детергент ТДТАБ как 1:1,5:1. После удаления детергентов общее количество белка составило 4 грамма, которые были разведены до объема 12 литровбуфером ФБР. В полученной моновакцине содержание общего белка составило 3,5 грамма, содержание общего ГА - 1,9 грамма. Концентрация детергента ТДТАБ составила 3,2 мкг/мл. Эффективность технологии в этом эксперименте составила 39,6 мкг ГА на 1 шт. КЭ. Полипептидный состав образца полученной экспериментальной моновакцины представлен на Фигуре 14.protein: detergent Triton X-100: detergent TDTAB as 1: 1.5: 1. After removal of the detergents, the total amount of protein was 4 grams, which were diluted to 12 liters with PBS buffer. In the resulting monovaccine, the total protein content was 3.5 grams, the total HA content was 1.9 grams. The concentration of the detergent TDTAB was 3.2 μg / ml. The efficiency of the technology in this experiment was 39.6 μg of GA per 1 pc. CE. The polypeptide composition of a sample of the obtained experimental monovaccine is shown in Figure 14.

В результате проведенного анализа было показано, что в составе экспериментальной моновакцины присутствует только антиген ГА в виде двух форм: полипептида НАО (нерасщепленная форма) и полипептида димера НАО (специфический агрегат антигена ГА). Полипептидов нуклеокапсида (NP), мембранного белка (M1), а также феномена спонтанного расщепления выявлено не было.As a result of the analysis, it was shown that the experimental monovaccine contains only the HA antigen in the form of two forms: the HAO polypeptide (non-cleaved form) and the HAO dimer polypeptide (a specific HA antigen aggregate). No nucleocapsid polypeptides (NP), membrane protein (M1) polypeptides, or spontaneous cleavage were detected.

Пример 10.Example 10.

Приготовление лекарственной формы четырехвалентной субъединичной вакцины без адъювантов.Preparation of a dosage form of a tetravalent subunit vaccine without adjuvants.

Для приготовления лекарственной формы вакцины были использованы препараты моновакцин, процесс получения которых был описан в примерах №6, 7, 8, 9.For the preparation of the dosage form of the vaccine, preparations of monovaccines were used, the preparation process of which was described in examples No. 6, 7, 8, 9.

Согласно рекомендациям ВОЗ, четырехвалентные инактивированные вакцины против гриппа без адъювантов должны содержать в своем составе антигены ГА каждого из 4-х рекомендованных серотипов в диапазоне концентраций от 25,6 мкг/мл до 34,4 мкг/мл по каждому серотипу. Существуют также рекомендации, что для приготовления стерильных однодозных упаковок вакцины не следует добавлять какие-либо консерванты бактериального роста.According to WHO recommendations, tetravalent inactivated influenza vaccines without adjuvants should contain HA antigens of each of the 4 recommended serotypes in the concentration range from 25.6 μg / ml to 34.4 μg / ml for each serotype. There are also recommendations that no bacterial growth preservatives should be added to prepare sterile single-dose vaccine packages.

Из данных литературы следует, что зарубежные производители инактивированных вакцин против гриппа для сохранения специфической активности лекарственной формы в процессе ее хранения используют различные дезагрегирующие добавки, в том числе детергент Тритон Х-100.From the literature data, it follows that foreign manufacturers of inactivated influenza vaccines to preserve the specific activity of the dosage form during its storage use various disaggregating additives, including the detergent Triton X-100.

Исходя из этой информации было проведено сведение экспериментальной серии четырехвалентной вакцины в объеме 10 литров. Расчет этого сведения проводился таким образом, чтобы в конечном растворе вакцины концентрация антигенов ГА каждого из четырех серотипов была в вышеуказанном диапазоне, а концентрация детергента Тритон Х-100 была от 150 мкг/мл до 200 мкг/мл. Из этого объема сведения был отобран образец 10 мл, в котором были изучены выше перичисленные параметры. После получения позитивных результатов весь объем сведения был стерилизован с использованием стерильных одноразовых капсюлей МиллиПак-60 фирмы Миллипоре (США) согласно правилам GMP. Далее стерильный раствор вакцины был разлит по стерильным флаконам объемом 1 мл. Объем розлива в каждый флакон составлял по,55 мл (одна доза). После розлива несколько флаконов были взяты для проведения анализов.Based on this information, an experimental batch of a quadrivalent vaccine in a volume of 10 liters was mixed. The calculation of this information was carried out in such a way that in the final vaccine solution the concentration of GA antigens of each of the four serotypes was in the above range, and the concentration of the detergent Triton X-100 was from 150 μg / ml to 200 μg / ml. From this volume of information, a 10 ml sample was taken, in which the above listed parameters were studied. After obtaining positive results, the entire volume of information was sterilized using sterile disposable MilliPak-60 capsules from Millipore (USA) in accordance with GMP rules. Then the sterile vaccine solution was poured into sterile 1 ml vials. The filling volume in each bottle was 55 ml (one dose). After filling, several vials were taken for analysis.

По результатам этих анализов было установлено, что содержание ГА серотипа H1N1 в одной дозе вакцины составляет 16,2 мкг, ГА серотипа H3N2 составляет 16,4 мкг, ГА серотипа В (линия Виктория) составляет 15,9 мкг, ГА серотипа В (линия Ямагато) составляет 16,7 мкг. Концентрация детергента Тритон Х-100 была 170 мкг/мл, а концентрация детергента ТДТАБ была 2 мкг/мл. Проведенный контроль на стерильность показал, что полученная лекарственная форма стерильна и может использоваться для дальнейших исследований.Based on the results of these analyzes, it was found that the content of HA serotype H1N1 in one dose of the vaccine is 16.2 μg, HA serotype H3N2 is 16.4 μg, HA serotype B (Victoria line) is 15.9 μg, HA serotype B (Yamagato line ) is 16.7 μg. The concentration of the detergent Triton X-100 was 170 μg / ml and the concentration of the detergent TDTAB was 2 μg / ml. The performed sterility control showed that the obtained dosage form is sterile and can be used for further research.

Пример 11Example 11

Сравнительное изучение антигенной активности вакцины, полученной по предлагаемому способуComparative study of the antigenic activity of the vaccine obtained by the proposed method

Для того, чтобы подтвердить, что полученная предлагаемым способом экспериментальная вакцина обладает высокой антигенной активностью, было проведено сравнительное исследование этой вакцины и расщепленной вакцины «Ваксигрипп», производства фирмы SANOFI-Pasteur, (France). Вакцина «Ваксигрипп» была взята в качестве вакцины сравнения, так как, согласно данным мировой литературы, она обладает высокой антигенной активностью и, соответственно, высокой иммуногенностью при вакцинации людей. Для того, чтобы получить более адекватные результаты, в исследования было взято по 40 беспородных мышей для изучения каждого из двух препаратов. Контрольная группа составила 20 лабораторных животных. В каждое животное вводили по 0,2 мл испытуемого препарата внутрибрюшинно, вакцинацию проводили двукратно с интервалом в 21 день. На 21-й день после первой вакцинации и на 14-й день после второй вакцинации у каждого животного отбирали сыворотку крови для изучения в реакции торможения геммаглютинирующей активности (РТГА). Анализ РТГА проводили согласно методике, указанной в ГФ РФ (14). Кроме того, было проведено дополнительное изучение титров антител в реакции микронейтрализации (РМН). РМН, согласно данным мировой литературы, значительно более адекватно выявляет протективные способности антигена ГА по сравнению с РТГА. Оценка титров проводилась, как по изменению титров антител после первой и второй иммунизации, так и по соответствующим уровням серопротекции после каждой иммунизации. Данные представлены в Таблице 2.In order to confirm that the experimental vaccine obtained by the proposed method has high antigenic activity, a comparative study of this vaccine and the split vaccine "Vaxigripp" produced by SANOFI-Pasteur, (France) was carried out. Vaccine "Vaxigripp" was taken as a comparison vaccine, since, according to the world literature, it has high antigenic activity and, accordingly, high immunogenicity when vaccinating people. In order to obtain more adequate results, 40 outbred mice were taken into the study to study each of the two drugs. The control group consisted of 20 laboratory animals. Each animal was injected with 0.2 ml of the test drug intraperitoneally, the vaccination was carried out twice with an interval of 21 days. On the 21st day after the first vaccination and on the 14th day after the second vaccination, blood serum was collected from each animal for study in the reaction of inhibition of hemaglutinating activity (RTGA). The RTGA analysis was carried out according to the procedure specified in the State Pharmaceutical Foundation of the Russian Federation (14). In addition, an additional study of antibody titers in the microneutralization reaction (PMN) was carried out. RMN, according to the data of the world literature, significantly more adequately reveals the protective ability of the HA antigen as compared with RTGA. The titers were assessed both by the change in antibody titers after the first and second immunizations, and by the corresponding levels of seroprotection after each immunization. The data are presented in Table 2.

Figure 00000002
Figure 00000002

Согласно представленным данным, оба изученных препарата показали высокую антигенную активность. Уже после первой иммунизации уровень специфических антител в реакции РТГА достигал защитного уровня (не менее титра 1:40), при этом в группе мышей, иммунизированных предлагаемой вакциной, этот уровень был достоверно выше по всем серотипам по сравнению с вакциной Ваксигрипп. Уровень серопротекции в реакции РТГА по всем серотипам после первой иммунизации также достигал уровня, указанного в соответствующих рекомендациях ВОЗ (не менее 70%). Но по показателю серопротекции в реакции РМН по серотипу B/Brisbane/60/2008 была выявлена разница между предлагаемой вакциной и вакциной «Ваксигрипп», которая в данном эксперименте не набрала уровень серопротекции 70% после первой иммунизации.According to the data presented, both studied drugs showed high antigenic activity. After the first immunization, the level of specific antibodies in the RTGA reaction reached a protective level (not less than a titer of 1:40), while in the group of mice immunized with the proposed vaccine, this level was significantly higher for all serotypes compared with the Vaxigripp vaccine. The level of seroprotection in the RTGA reaction for all serotypes after the first immunization also reached the level specified in the relevant WHO recommendations (at least 70%). But in terms of seroprotection in the PMN reaction for serotype B / Brisbane / 60/2008, a difference was revealed between the proposed vaccine and the Vaxigripp vaccine, which in this experiment did not gain a level of seroprotection of 70% after the first immunization.

Что касается титров антител, а также уровней серопротекции после второй иммунизации, особых различий выявлено не было. Таким образом, предлагаемая субъединичная вакцина проявила антигенную активность, не уступающую таковой вакцине «Ваксигрипп», которая в мировой практике вакцинации считается «золотым» стандартом иммуногенности. Таким образом, вакцина, полученная по предлагаемому способу, обладает высокой антигенной активностью.With regard to antibody titers and seroprotection levels after the second immunization, no significant differences were found. Thus, the proposed subunit vaccine showed antigenic activity, which is not inferior to that of the vaccine "Vaxigripp", which is considered the "gold" standard of immunogenicity in the world vaccination practice. Thus, the vaccine obtained by the proposed method has a high antigenic activity.

Список литературыList of references

1. Patent USA US 4064232A US «Process for isolating for immunogenic components of influenza viruses», начало срока действия патента с 14.01.1974. Авторы: Bachmayer Н., Schmidt G., USA.1. Patent USA US 4064232A US "Process for isolating for immunogenic components of influenza viruses", the beginning of the patent period from 01/14/1974. Authors: Bachmayer H., Schmidt G., USA.

2. European Medicines Agency (EMA) «Guideline on Influenza Vaccines-QualityModule»,oпyбликoвaнa в бюллетене EMA/CHMP/BWP/310834/2012, 25.04.2014.2. European Medicines Agency (EMA) “Guideline on Influenza Vaccines-QualityModule”, published in the bulletin EMA / CHMP / BWP / 310834/2012, 25.04.2014.

3. Патент РФ RU 2446824 C2 «Вакцина против гриппа и способ ее получения», начало срока действия патента 20.07.2010. Авторы: Алсынбаев М.М, Загидуллин Н.В. Кедик С.А.3. RF patent RU 2446824 C2 "Influenza vaccine and method for its production", the beginning of the patent period 20.07.2010. Authors: Alsynbaev M.M., Zagidullin N.V. Kedik S.A.

4. Патент РФ RU 2283139 С1 «Способ получения антигенов для вакцины против вирусов гриппа», начало срока действия патента с 21.03.2005. Авторы: Гельфанд А.С, Брызгалова СИ., Мельников С.Я., Гусарова Н.А., Ярославцев И.В.4. RF patent RU 2283139 C1 "A method of obtaining antigens for a vaccine against influenza viruses", the beginning of the patent period from 21.03.2005. Authors: Gelfand A.S., Bryzgalova S.Ya., Melnikov S.Ya., Gusarova N.A., Yaroslavtsev I.V.

5. Патент РФ RU 2493872 С1 «Способ очистки вирусов гриппа», начало срока действия патента с 08.08.2012. Авторы: Загидуллин Н.В., Кызин А.А., Исрафилов А.Г., Гелич Л.В., Катаева В.В.5. RF patent RU 2493872 C1 "Method for the purification of influenza viruses", the beginning of the patent period from 08.08.2012. Authors: Zagidullin N.V., Kyzin A.A., Israfilov A.G., Gelich L.V., Kataeva V.V.

6. Патент РФ RU 2523614 С1 «Вакцина против гриппа и способ ее получения», начало срока действия патента с 09.04.2013. Авторы: Загидуллин Н.В., Исрафилов А.Г., Гелич Л.В., Кызин А.А., Ерастова Н.П.6. RF patent RU 2523614 C1 "Influenza vaccine and method of obtaining it", the beginning of the patent validity period from 09.04.2013. Authors: Zagidullin N.V., Israfilov A.G., Gelich L.V., Kyzin A.A., Erastova N.P.

7. Патент РФ RU 2584594 С1 «Вакцина гриппозная инактивированная расщепленная и способ ее получения», начало срока действия патента с 02.07.2015. Авторы: Трухин В.П., Петровский СВ. Аракелов С.А., Быков Д.Г., Евтушенко А.Э., Уйба СВ., Грановский В.Н., Савина Н.Н.7. RF patent RU 2584594 C1 "Inactivated split influenza vaccine and method for its production", the beginning of the patent validity period from 02.07.2015. Authors: Trukhin V.P., Petrovsky SV. Arakelov S.A., Bykov D.G., Evtushenko A.E., Uyba SV., Granovsky V.N., Savina N.N.

8. Patent USA US2011/0014230 Al «Preparation of influenza virus vaccine antigens», начало срока действия патента с 17.09.2010. Авторы: Haussmann С, Hauschild F., Jobst В.8. Patent USA US2011 / 0014230 Al "Preparation of influenza virus vaccine antigens", the beginning of the patent period from 17.09.2010. Authors: Haussmann C, Hauschild F., Jobst B.

9. Wang W, DeFeo CJ, Alvarado-Facundo EJ at all. «Intermonomer Interactions in Hemagglutinin Subunits HA1 and HA2 Affecting Hemagglutinin Stability and Influenza Virus Infectivity», J Virol. 2015 October, v. 89: pp 10602-10611.9. Wang W, DeFeo CJ, Alvarado-Facundo EJ at all. "Intermonomer Interactions in Hemagglutinin Subunits HA1 and HA2 Affecting Hemagglutinin Stability and Influenza Virus Infectivity," J Virol. 2015 October, v. 89: pp 10602-10611.

10. Budimir N., Huckriede A., Meijerhof T. at all.«Induction of Heterosubtypic Cross-Protection against Influenza by a Whole Inactivated Virus Vaccine: The Role of Viral Membrane Fusion Activity)). PLoSOne. 2012; 7(1): e30898. Publishedonline 2012 Jan 27. doi: 10.1371/journal.pone.0030898.10. Budimir N., Huckriede A., Meijerhof T. at all. "Induction of Heterosubtypic Cross-Protection against Influenza by a Whole Inactivated Virus Vaccine: The Role of Viral Membrane Fusion Activity)). PLoSOne. 2012; 7 (1): e30898. Publishedonline 2012 Jan 27. doi: 10.1371 / journal.pone.0030898.

11. Budowsky E.I., Friedman E.A., Zheleznova N.V., at all«Principles of selective inactivation of viral genome». Vaccine, 1991;v,9(6); pp 398-402.11. Budowsky E.I., Friedman E.A., Zheleznova N.V., at all "Principles of selective inactivation of viral genome". Vaccine, 1991; v, 9 (6); pp 398-402.

12. Patent ЕСЕР 2493501A1 «Process for producing influenza vaccines», начало срока действия патента с 27.10.2009. Авторы: Hondt E.J., Engelmann Н.В.12. Patent ECEP 2493501A1 "Process for producing influenza vaccines", the beginning of the patent period from 27.10.2009. Authors: Hondt E.J., Engelmann N.V.

13. Gallagher J. R., McCraw D. M., Torian U., at all. «Review Characterization of Hemagglutinin Antigens on Influenza Virus and within Vaccines Using Electron Microscopy)). Vaccines, 2018; v, 6; p. 31-52.13. Gallagher J. R., McCraw D. M., Torian U., at all. “Review Characterization of Hemagglutinin Antigens on Influenza Virus and within Vaccines Using Electron Microscopy)). Vaccines, 2018; v, 6; p. 31-52.

14. ФС.3.3.1.0028.15 «Вакцина гриппозная инактивированная», Государственная фармакопея Российской Федерации, МЗ РФ, ХIV издание, том IV, Москва, год 2018, стр. 5402-5418.14. FS.3.3.1.0028.15 "Inactivated influenza vaccine", State Pharmacopoeia of the Russian Federation, Ministry of Health of the Russian Federation, XIV edition, volume IV, Moscow, year 2018, pp. 5402-5418.

Claims (13)

1. Способ производства четырехвалентной субъединичной вакцины без адъювантов для профилактики гриппа, согласно которому1. A method for the production of a quadrivalent subunit vaccine without adjuvants for the prevention of influenza, according to which а) получают четыре моновакцины, содержащие один из серотипов вирусов гриппа H1N1, H3N2, В (линия Виктория) или В (линия Ямагата), причем для получения моновакцинa) receive four monovaccines containing one of the serotypes of influenza viruses H1N1, H3N2, B (Victoria line) or B (Yamagata line), and to obtain monovaccines 1) получают вируссодержащую аллантоисную жидкость (ВАЖ);1) get vaccinated allantoic fluid (VAF); 2) инактивируют ВАЖ дезинфектантом бета-пропиолактоном;2) inactivate VAZ with a disinfectant beta-propiolactone; 3) очищают и концентрируют ВАЖ методами микрофильтрации с использованием трех последовательных каскадов складчатых фильтров с диаметрами пор 10 мкм, 1,0 мкм и 0,6 мкм, ультрафильтрации и двумя последовательными циклами ультрацентрифугирования в градиенте плотности сахарозы с получением очищенного вирусного концентрата (ОВК);3) purify and concentrate VAS using microfiltration methods using three successive cascades of folded filters with pore diameters of 10 μm, 1.0 μm and 0.6 μm, ultrafiltration and two successive cycles of ultracentrifugation in a sucrose density gradient to obtain a purified viral concentrate (VVC); 4) разрушают вирионы в полученном ОВК последовательной обработкой детергентами Тритон Х-100 и ТДТАБ;4) destroy the virions in the obtained OVK by sequential treatment with detergents Triton X-100 and TDTAB; 5) удаляют субвирионные структуры из полученного на стадии 4) раствора методами ультрацентрифугирования и микрофильтрации через складчатые фильтры с диаметрами пор 0,6 мкм и 0,2 мкм;5) remove subvirionic structures from the solution obtained at stage 4) by ultracentrifugation and microfiltration through folded filters with pore diameters of 0.6 μm and 0.2 μm; 6) удаляют детергенты из полученного раствора методами ультрафильтрации с использованием мембран с размером отсечки 30 КД и концентрирования полученного очищенного супернатанта с последующей очисткой полученного раствора концентрата методом гидрофобной хроматографии с применением технологии «ExpandedBedAdsorption», которая заключается в том, что подачу препарата для очистки осуществляют через нижнее основание колонки, а верхняя часть хроматографического носителя не фиксируется;6) remove detergents from the resulting solution by ultrafiltration methods using membranes with a cut-off size of 30 KD and concentrating the obtained purified supernatant, followed by purification of the resulting concentrate solution by hydrophobic chromatography using the Expanded Bed Addsorption technology, which consists in the fact that the preparation for purification is fed through the bottom of the column, and the top of the chromatographic support is not fixed; 7) разбавляют концентрат фосфатным буферным раствором, содержащим детергент Тритон Х-100, с получением моновакцины;7) dilute the concentrate with phosphate buffer solution containing the detergent Triton X-100 to obtain a monovaccine; б) объединяют четыре моновакцины, содержащие серотипы вирусов гриппа H1N1, H3N2, В (линия Виктория) и В (линия Ямагата), в единую лекарственную форму при добавлении детергента Тритон Х-100 в качестве дезагрегирующей добавки с последующими фильтрующей стерилизацией и розливом полученной лекарственной формы четырехвалентной вакцины в стерильные емкости.b) combine four monovaccines containing the serotypes of influenza viruses H1N1, H3N2, B (Victoria line) and B (Yamagata line) into a single dosage form with the addition of the detergent Triton X-100 as a disaggregating additive, followed by filter sterilization and filling the resulting dosage form tetravalent vaccine in sterile containers. 2. Способ по п. 1, в котором для гидрофобной хроматографии используют носитель «SDRHyperD», производства фирмы Раll (USA).2. The method according to claim 1, wherein the “SDRHyperD” support, manufactured by Pall (USA), is used for hydrophobic chromatography. 3. Способ по п. 1, в котором взаимодействие Тритона Х-100 с очищенными вирионами проводят в течение 20 мин, а взаимодействие ТДТАБ с очищенными вирионами в течение 40 мин.3. A method according to claim 1, in which the interaction of Triton X-100 with purified virions is carried out for 20 minutes, and the interaction of TDTAB with purified virions for 40 minutes. 4. Способ по п. 1, в котором розлив лекарственной формы проводят в стерильные флаконы, ампулы и специальные шприцы для преднаполнения вакцины.4. The method according to claim. 1, in which the filling of the dosage form is carried out in sterile vials, ampoules and special syringes for pre-filling the vaccine.
RU2020112627A 2020-03-27 2020-03-27 Method for production of tetravalent subunit vaccine against influenza without adjuvants RU2741003C1 (en)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2020112627A RU2741003C1 (en) 2020-03-27 2020-03-27 Method for production of tetravalent subunit vaccine against influenza without adjuvants

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2020112627A RU2741003C1 (en) 2020-03-27 2020-03-27 Method for production of tetravalent subunit vaccine against influenza without adjuvants

Publications (1)

Publication Number Publication Date
RU2741003C1 true RU2741003C1 (en) 2021-01-22

Family

ID=74213313

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
RU2020112627A RU2741003C1 (en) 2020-03-27 2020-03-27 Method for production of tetravalent subunit vaccine against influenza without adjuvants

Country Status (1)

Country Link
RU (1) RU2741003C1 (en)

Citations (5)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
EA011419B1 (en) * 2005-03-23 2009-02-27 Глаксосмитклайн Байолоджикалс С.А. Multivalent influenza immunogenic composition
US20110014230A1 (en) * 2008-03-18 2011-01-20 Novartis Ag preparation of influenza virus vaccine antigens
RU2446824C2 (en) * 2010-07-20 2012-04-10 Федеральное государственное унитарное предприятие "Научно-производственное объединение по медицинским иммунобиологическим препаратам "Микроген" Министерства здравоохранения и социального развития Российской Федерации Influenza vaccine and method for preparing it
RU2584594C1 (en) * 2015-07-02 2016-05-20 Федеральное государственное унитарное предприятие "Санкт-Петербургский научно-исследовательский институт вакцин и сывороток и предприятие по производству бактерийных препаратов" Федерального медико-биологического агентства (ФГУП СПбНИИВС ФМБА России) Inactivated split influenza vaccine and preparation method thereof
RU2710239C1 (en) * 2019-06-14 2019-12-25 Федеральное государственное унитарное предприятие "Санкт-Петербургский научно-исследовательский институт вакцин и сывороток и предприятие по производству бактерийных препаратов" Федерального медико-биологического агентства Method of producing antigen or antigens for production of influenza vaccine and a vaccine based on it

Patent Citations (5)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
EA011419B1 (en) * 2005-03-23 2009-02-27 Глаксосмитклайн Байолоджикалс С.А. Multivalent influenza immunogenic composition
US20110014230A1 (en) * 2008-03-18 2011-01-20 Novartis Ag preparation of influenza virus vaccine antigens
RU2446824C2 (en) * 2010-07-20 2012-04-10 Федеральное государственное унитарное предприятие "Научно-производственное объединение по медицинским иммунобиологическим препаратам "Микроген" Министерства здравоохранения и социального развития Российской Федерации Influenza vaccine and method for preparing it
RU2584594C1 (en) * 2015-07-02 2016-05-20 Федеральное государственное унитарное предприятие "Санкт-Петербургский научно-исследовательский институт вакцин и сывороток и предприятие по производству бактерийных препаратов" Федерального медико-биологического агентства (ФГУП СПбНИИВС ФМБА России) Inactivated split influenza vaccine and preparation method thereof
RU2710239C1 (en) * 2019-06-14 2019-12-25 Федеральное государственное унитарное предприятие "Санкт-Петербургский научно-исследовательский институт вакцин и сывороток и предприятие по производству бактерийных препаратов" Федерального медико-биологического агентства Method of producing antigen or antigens for production of influenza vaccine and a vaccine based on it

Non-Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
KON T. C. et al. Influenza vaccine manufacturing: effect of inactivation, splitting and site of manufacturing. Comparison of influenza vaccine production processes // PLoS One. - 2016. - Vol. 11. - No. 3. - e0150700. *

Similar Documents

Publication Publication Date Title
US10537630B2 (en) Virus purification
US6048537A (en) Method for preparing an influenza virus, antigens obtained and applications thereof
RU2710239C1 (en) Method of producing antigen or antigens for production of influenza vaccine and a vaccine based on it
US4522809A (en) Process for obtaining lipid envelope virus sub-units, notably antigens for use as vaccines, the products obtained and their applications
CN101998990B (en) Improvements in preparation of influenza virus vaccine antigens
GB2572275A (en) Method for preparing Foot-and-Mouth disease vaccine
US10041103B2 (en) High throughput quantification and characterization of viruses and products thereof
CN101491672A (en) Chicken new castle disease-bird influenza dual oil-emulsion inactivated vaccine and preparation method thereof
CN101732711A (en) Preparation of nose-spraying flu immunization pentavalent or multivalent inactivated vaccine and application thereof
EP2802650A1 (en) Purification of flaviviruses
CN108159411A (en) A kind of influenza virus subunit vaccine purification process and its application
B. Carvalho et al. Downstream processing for influenza vaccines and candidates: An update
RU2584594C1 (en) Inactivated split influenza vaccine and preparation method thereof
DK3010537T3 (en) PROCEDURE FOR PREVENTING AGGREGATION OF VIRUS COMPONENTS
EA010057B1 (en) Inactivated poliomyelitis vaccine from sabin strain of polio virus
RU2599496C2 (en) Improved vaccination against influenza
CN105349499A (en) Preparation method, product and application of avian influenza whole-virus particle marked vaccine
RU2741003C1 (en) Method for production of tetravalent subunit vaccine against influenza without adjuvants
RU2754398C1 (en) Method for obtaining a tetravalent vaccine for the prevention of influenza
CN104548085B (en) A kind of aftosa whole virus particles vaccine combination and its preparation method and application
CN103789272B (en) H9 subtype avian influenza virus separation strain and the vaccine combination prepared by it
CN101610787A (en) The method of replicating influenza virus in culture
RU2535153C1 (en) Method for preparing high-purity virion concentrate
Jagannathan et al. Kinetics analysis of beta-propiolactone with tangential flow filtration (TFF)
RU2682876C1 (en) Inactivated emulsion vaccine for o-type aphthous fever

Legal Events

Date Code Title Description
PC41 Official registration of the transfer of exclusive right

Effective date: 20220407