RU2736064C1 - Protective medium for stabilization of tularemia pathogen during preparation and storage of dry preparations - Google Patents
Protective medium for stabilization of tularemia pathogen during preparation and storage of dry preparations Download PDFInfo
- Publication number
- RU2736064C1 RU2736064C1 RU2020114019A RU2020114019A RU2736064C1 RU 2736064 C1 RU2736064 C1 RU 2736064C1 RU 2020114019 A RU2020114019 A RU 2020114019A RU 2020114019 A RU2020114019 A RU 2020114019A RU 2736064 C1 RU2736064 C1 RU 2736064C1
- Authority
- RU
- Russia
- Prior art keywords
- storage
- protective medium
- tularemia
- dry preparations
- stabilization
- Prior art date
Links
Classifications
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61K—PREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
- A61K31/00—Medicinal preparations containing organic active ingredients
- A61K31/16—Amides, e.g. hydroxamic acids
- A61K31/17—Amides, e.g. hydroxamic acids having the group >N—C(O)—N< or >N—C(S)—N<, e.g. urea, thiourea, carmustine
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61K—PREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
- A61K31/00—Medicinal preparations containing organic active ingredients
- A61K31/33—Heterocyclic compounds
- A61K31/335—Heterocyclic compounds having oxygen as the only ring hetero atom, e.g. fungichromin
- A61K31/365—Lactones
- A61K31/375—Ascorbic acid, i.e. vitamin C; Salts thereof
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61K—PREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
- A61K31/00—Medicinal preparations containing organic active ingredients
- A61K31/70—Carbohydrates; Sugars; Derivatives thereof
- A61K31/7016—Disaccharides, e.g. lactose, lactulose
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61K—PREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
- A61K31/00—Medicinal preparations containing organic active ingredients
- A61K31/70—Carbohydrates; Sugars; Derivatives thereof
- A61K31/715—Polysaccharides, i.e. having more than five saccharide radicals attached to each other by glycosidic linkages; Derivatives thereof, e.g. ethers, esters
- A61K31/716—Glucans
- A61K31/721—Dextrans
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61K—PREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
- A61K9/00—Medicinal preparations characterised by special physical form
- A61K9/08—Solutions
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
- C12N1/00—Microorganisms, e.g. protozoa; Compositions thereof; Processes of propagating, maintaining or preserving microorganisms or compositions thereof; Processes of preparing or isolating a composition containing a microorganism; Culture media therefor
Landscapes
- Health & Medical Sciences (AREA)
- Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
- Chemical & Material Sciences (AREA)
- Medicinal Chemistry (AREA)
- General Health & Medical Sciences (AREA)
- Pharmacology & Pharmacy (AREA)
- Epidemiology (AREA)
- Animal Behavior & Ethology (AREA)
- Public Health (AREA)
- Veterinary Medicine (AREA)
- Engineering & Computer Science (AREA)
- Biotechnology (AREA)
- Molecular Biology (AREA)
- Organic Chemistry (AREA)
- Zoology (AREA)
- Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
- Wood Science & Technology (AREA)
- Genetics & Genomics (AREA)
- Microbiology (AREA)
- Biomedical Technology (AREA)
- Virology (AREA)
- Biochemistry (AREA)
- General Engineering & Computer Science (AREA)
- Tropical Medicine & Parasitology (AREA)
- Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
Abstract
Description
ОПИСАНИЕ ИЗОБРЕТЕНИЯDESCRIPTION OF THE INVENTION
Изобретение относится к биотехнологии, в частности составам и рецептурам защитных стабилизирующих сред, предназначенных для сохранения жизнеспособности бактериальных клеток на этапах высушивания и хранения и может быть использовано для получения сухих культур и биопрепаратов, содержащих живые бактерии возбудителя туляремии.The invention relates to biotechnology, in particular to compositions and formulations of protective stabilizing media designed to preserve the viability of bacterial cells at the stages of drying and storage and can be used to obtain dry cultures and biological products containing live bacteria of the tularemia pathogen.
Известно, что в процессе лиофилизации определенная часть микроорганизмов отмирает, большая часть при замораживании, меньшая - при сублимации и досушивании. Процесс хранения сухих препаратов, так же сопровождается постепенной гибелью клеток. Цели сохранения микроорганизмов в жизнеспособном состоянии служат специальные защитные среды, различных составов, широко используемые и гарантирующие определенный уровень выживаемости бактерий на этапах переработки.It is known that in the process of lyophilization, a certain part of microorganisms dies off, most during freezing, and a smaller part during sublimation and drying. The storage process of dry preparations is also accompanied by gradual cell death. The purpose of preserving microorganisms in a viable state is special protective media, of various compositions, widely used and guaranteeing a certain level of bacterial survival at the stages of processing.
Возбудитель туляремии относится к группу бактерий со средней устойчивостью к факторам замораживания и обезвоживания. Выживаемость при высушивании этих микроорганизмов без использования защитных сред колеблется от 10 до 30%. Применение стабилизации клеток средами высушивания повышает выживаемость до 40-60%.The causative agent of tularemia belongs to a group of bacteria with an average resistance to freezing and dehydration factors. The survival rate when these microorganisms are dried without the use of protective media ranges from 10 to 30%. The use of cell stabilization with drying media increases the survival rate up to 40-60%.
Известна защитная среда высушивания, используемая для получения методом сублимации сухих вакцинных препаратов против чумы, туляремии, бруцеллеза и туберкулеза, содержащая: 10% сахарозы или лактозы, от 0,1 до 0,2% агар-агара, от 1 до 1,5% желатина и от 88,3 до 88,9% воды (дисахаридно-агар-желатиновая среда) [Файбич М.М. Стабилизация вакцинных препаратов в процессе высушивания и хранения // Журнал микробиологии, эпидемиологии и иммунологии - 1968, №2. - С. 59-65]. При использовании вышеуказанной защитной среды, при сублимационном высушивании, выживало до 50% бактерий вакцинной культуры туляремии.Known protective drying medium used to obtain by the method of sublimation dry vaccine preparations against plague, tularemia, brucellosis and tuberculosis, containing: 10% sucrose or lactose, from 0.1 to 0.2% agar-agar, from 1 to 1.5% gelatin and from 88.3 to 88.9% of water (disaccharide-agar-gelatin medium) [Faibich M.M. Stabilization of vaccine preparations during drying and storage // Journal of Microbiology, Epidemiology and Immunology - 1968, No. 2. - S. 59-65]. When using the above protective medium, with freeze drying, up to 50% of the bacteria of the tularemia vaccine culture survived.
К недостаткам данной среды можно отнести: отсутствие в составе антиок-сидантов - веществ, способных нейтрализовать или замедлить процессы окисления жизненноважных структур клеток (липидов и ферментов) при воздействии на них свободных радикалов кислорода воздуха [Эмануэль Н.М. Свободные радикалы в биологии / Пер. с англ. - М.-.ИХФ АН СССР, 1981. - С. 68-70].The disadvantages of this environment include: the absence in the composition of antioxidants - substances that can neutralize or slow down the oxidation processes of vital cell structures (lipids and enzymes) when exposed to free radicals of air oxygen [Emanuel N.M. Free radicals in biology / Per. from English. - M.-. Institute of Chemical Physics of the USSR Academy of Sciences, 1981. - S. 68-70].
Так же известна защитная среда высушивания, предназначенная для получения сухих туляремийных вакцин, содержащая: 0,3% сахарозы и 5 или 10% желатина [Олсуфьев Н.Г. Таксономия, микробиология и лабораторная диагностика возбудителя туляремии. - М.: Медицина, 1975 - С. 67]. При применении указанного состава защитной среды в процессе сублимационного высушивания выживало от 50 до 60% бактериальных клеток вакцины.Also known protective drying environment, designed to obtain dry tularemia vaccines, containing: 0.3% sucrose and 5 or 10% gelatin [Olsufiev NG. Taxonomy, microbiology and laboratory diagnostics of tularemia causative agent. - M .: Medicine, 1975 - S. 67]. When using the specified composition of the protective medium in the process of freeze drying, 50 to 60% of the bacterial cells of the vaccine survived.
К недостаткам данной защитной среды можно отнести: использование желатина в высоких концентрациях придает среде гелеобразную консистенцию, которая создает трудности при смыве культуры с поверхности агара, а так же препятствует равномерному распределению бактерий в объеме среды [Бланков Б.И., Клебанов Д.Л. Применение лиофилизации в микробиологии - М.: Медгиз, 1961 - С. 170]; отсутствие в данной среде антиоксидантов.The disadvantages of this protective environment include: the use of gelatin in high concentrations gives the medium a gel-like consistency, which creates difficulties when washing the culture from the surface of the agar, and also prevents the uniform distribution of bacteria in the volume of the medium [Blanks BI, Klebanov D.L. The use of lyophilization in microbiology - M .: Medgiz, 1961 - S. 170]; lack of antioxidants in this environment.
Наиболее близкой к заявленной является защитная среда, представляющая собой водный раствор, содержащий 10% сахарозы, 0,5% тиомочевины, 0,5% аскорбиновой кислоты, 1% желатина, 0,05% пептона и 87,95% дистиллированной воды [Никитин Е.Е., Звягин И.В. замораживание и высушивание биологических препаратов. - М.: Колос, 1971 - С. 264].The closest to the declared is a protective environment, which is an aqueous solution containing 10% sucrose, 0.5% thiourea, 0.5% ascorbic acid, 1% gelatin, 0.05% peptone and 87.95% distilled water [Nikitin E .E., Zvyagin I.V. freezing and drying biological products. - M .: Kolos, 1971 - S. 264].
Общим с заявленным изобретением является многокомпонентный состав водного раствора и использование в среде тиомочевины и аскорбиновой кислоты.Common to the claimed invention is the multicomponent composition of an aqueous solution and the use of thiourea and ascorbic acid in the medium.
К недостаткам данной среды высушивание можно отнести: использование сахарозы, способной к гидролизу с образованием глюкозы и фруктозы, что снижает ее стабилизирующую эффективность [Аккерман Ю. Биофизика / Пер. с англ. В.А. Отрощенко, В.Н. Сойфера. - М.: Мир - С. 338]; присутствие желатина, ведущее к гелеобразованию в защитной среде; не самое оптимальное содержание в среде антиоксидантов - тиомочевины и аскорбиновой кислоты [Звягин И.В., Хорьков И.А. методические рекомендации по разработке режимов замораживания- высушивания бактериальных препаратов. М.: Главмикроббиопром, 1981. - С. 35]; использование гидроскопичных веществ сахарозы, желатина и пептина ведет к необходимости понижения температуры замораживания стабилизированной суспензии до минус 40°С, при этом повышенное содержание гидрофильных веществ затягивает процесс сушки и может создать повышенную остаточную влажность в сухой культуре [Бланков Б.И., Клебанов Д.Л. Применение лиофилизации в микробиологии - М.: Медгиз, 1961 - С. 164].The disadvantages of this environment, drying can be attributed: the use of sucrose, capable of hydrolysis with the formation of glucose and fructose, which reduces its stabilizing efficiency [Ackerman Y. Biophysics / Per. from English. V.A. Otroshchenko, V.N. Soyfer. - M .: Mir - S. 338]; the presence of gelatin leading to gelling in a protective environment; not the most optimal content in the environment of antioxidants - thiourea and ascorbic acid [Zvyagin IV, Khorkov IA guidelines for the development of freezing-drying modes of bacterial preparations. M .: Glavmikrobioprom, 1981. - S. 35]; the use of hydroscopic substances sucrose, gelatin and peptin leads to the need to lower the freezing temperature of the stabilized suspension to minus 40 ° C, while the increased content of hydrophilic substances delays the drying process and can create increased residual moisture in dry culture [Blankov B.I., Klebanov D. L. The use of lyophilization in microbiology - M .: Medgiz, 1961 - P. 164].
Задачей изобретения является разработка состава защитной среды для стабилизации клеток возбудителя туляремии, обеспечивающее сокращение времени высушивания и высокую выживаемость бактерий при лиофилизации и хранении сухих препаратов в широком диапазоне температур.The objective of the invention is to develop a composition of a protective environment for stabilizing the cells of the causative agent of tularemia, providing a reduction in drying time and high survival of bacteria during lyophilization and storage of dry preparations in a wide temperature range.
Поставленная задача решается благодаря тому, что компонентный состав защитной среды сбалансирован и оптимизирован для клеток возбудителя туляремии, в составе среды высушивания предусмотрены следующие отличия: сахароза заменена на лактозу, желатин на полиглюкин, исключен пептон и увеличено содержание тиомочевины и аскорбиновой кислоты.The problem is solved due to the fact that the component composition of the protective medium is balanced and optimized for the cells of the causative agent of tularemia, the composition of the drying medium includes the following differences: sucrose is replaced by lactose, gelatin is replaced by polyglucin, peptone is excluded, and the content of thiourea and ascorbic acid is increased.
Использование лактозы и полиглюкина, являющихся структурообразователями и криопротекторами, дает возможность сформировать структуру высушиваемого материала, регулировать скорость дегидратации микробных клеток и значительно снизить их деструкцию при замораживании и обезвоживании. Исключение из состава среды сахарозы, желатина и пептона позволит проводить замораживание стабилизированной суспензии клеток при температуре минус 28°С (против минус 40°С с использованием среды по прототипу), при этом процесс высушивания сократится с 45 до 36 часов. Это, в комплексе с увеличением содержания тиомочевины и аскорбиновой кислоты, повышающих защиту липидов и ферментов клеток от кислорода воздуха и свободных радикалов, обеспечит выживаемость микробов при высушивании на уровне 80-90%, при низкотемпературном хранении - 80-85%, при хранении при комнатной температуре - не менее 50%.The use of lactose and polyglucin, which are structure-forming and cryoprotectants, makes it possible to form the structure of the dried material, regulate the rate of dehydration of microbial cells and significantly reduce their destruction during freezing and dehydration. The exclusion of sucrose, gelatin and peptone from the medium will allow freezing of the stabilized cell suspension at a temperature of minus 28 ° C (versus minus 40 ° C using the prototype medium), while the drying process will be reduced from 45 to 36 hours. This, in combination with an increase in the content of thiourea and ascorbic acid, which increase the protection of lipids and cell enzymes from air oxygen and free radicals, will ensure the survival of microbes when dried at 80-90%, with low-temperature storage - 80-85%, when stored at room temperature - not less than 50%.
Состав защитной среды, процент (по массе): лактоза - 10; тиомочевина -3,3; аскорбиновая кислота - 1,8; полиглюкин - 0,8; дистиллированная вода 84,1. Величина рН среды от 7,0 до 7,2 ед. рН.The composition of the protective environment, percentage (by weight): lactose - 10; thiourea -3.3; ascorbic acid - 1.8; polyglucin - 0.8; distilled water 84.1. The pH of the medium is from 7.0 to 7.2 units. pH.
Защитную среду готовят в следующем порядке. Расчетные навески компонентов взвешивают с точностью до 0,1 г, дистиллированную воду берут по объему.The protective environment is prepared in the following order. Calculated samples of the components are weighed with an accuracy of 0.1 g, distilled water is taken by volume.
Навеску полиглюкина замачивают в воде (1/6 часть от расчетного объема) и выдерживают при комнатной температуре в течение не менее четырех часов (до полного растворения). Навеску аскорбиновой кислоты растворяют в воде (1/6 часть от расчетного объема) при нагревании на водяной бане до температуры не более 30°С и перемешивании. Полученный раствор аскорбиновой кислоты охлаждают на воздухе до температуры 20-25°С и с помощью 40% раствора едкого натрия подводят его водородный показатель до значений 6,7-6,9 ед. рН.A weighed portion of polyglucin is soaked in water (1/6 of the calculated volume) and kept at room temperature for at least four hours (until complete dissolution). A weighed portion of ascorbic acid is dissolved in water (1/6 of the calculated volume) by heating in a water bath to a temperature of no more than 30 ° C and stirring. The resulting solution of ascorbic acid is cooled in air to a temperature of 20-25 ° C and with the help of a 40% sodium hydroxide solution, its pH value is brought to values of 6.7-6.9 units. pH.
Навеску лактозы растворяют в оставшейся дистиллированной воде при нагревании на водяной бане до температуры не более 80°С и перемешивании. Затем раствор лактозы охлаждают на воздухе до температуры 40°С и растворяют в нем навеску тиомочевины.A portion of lactose is dissolved in the remaining distilled water by heating in a water bath to a temperature not exceeding 80 ° C and stirring. Then the lactose solution is cooled in air to a temperature of 40 ° C and a sample of thiourea is dissolved in it.
В охлажденный раствор лактозы и тиомочевины вносят растворы полиглюкина и аскорбиновой кислоты, перемешивают и определяют величину рН. При необходимости величину рН среды корректируют 5% раствором едкого натрия до значений 7,0-7,2 ед. рН. Готовая защитная среда представляет собой светлую, прозрачную жидкость. Среду не хранят, готовят и используют в день смыва колоний возбудителя туляремии, выращенных на поверхности плотной питательной среды.In a cooled solution of lactose and thiourea, solutions of polyglucin and ascorbic acid are added, mixed and the pH value is determined. If necessary, the pH value of the medium is adjusted with 5% sodium hydroxide solution to values of 7.0-7.2 units. pH. The prepared protective medium is a light, transparent liquid. The medium is not stored, prepared and used on the day of washing of the tularemia causative agent colonies grown on the surface of a dense nutrient medium.
Наличие причинно-следственной связи между совокупностью существенных признаков заявляемого объекта и достигнутым техническим результатом показано в таблице 1.The presence of a causal relationship between the set of essential features of the claimed object and the achieved technical result is shown in Table 1.
Возможность осуществления заявляемого изобретения показана следующими примерами.The possibility of implementing the claimed invention is shown by the following examples.
Пример 1.Example 1.
Готовили две среды высушивания, следующих составов:Two drying media were prepared with the following compositions:
1) защитная среда прототипа, процент (по массе):1) protective environment of the prototype, percentage (by weight):
сахароза - 10;sucrose - 10;
тиомочевина - 0,5;thiourea - 0.5;
аскорбиновая кислота - 0,5;ascorbic acid - 0.5;
желатин - 1;gelatin - 1;
пептон - 0,05;peptone - 0.05;
дистиллированная вода - 87,95;distilled water - 87.95;
2) заявляемая защитная среда, процент (по массе):2) the declared protective environment, percentage (by weight):
лактоза - 10;lactose - 10;
тиомочевина - 3,3;thiourea - 3.3;
аскорбиновая кислота - 1,8;ascorbic acid - 1.8;
полиглюкин - 0,8;polyglucin - 0.8;
дистиллированная вода - 84,1.distilled water - 84.1.
Матрацы, с выросшими на поверхности плотной питательной среды колониями возбудителя туляремии, перед смывом делили на две равные группы. Из матрацев, в асептических условиях удаляли конденсат. Затем в каждый матрац вносили стерильные фарфоровые шары диаметром 7 мм (по 10 г в каждый), также с помощью стерильной пипетки вносили по 10 см3 защитной среды. При этом в первую группу матрацев вносили защитную среду прототипа. Во вторую группу вносили заявляемую защитную среду. Матрацы закрывали ватно-марлевыми пробками и путем покачивания их вручную производили смыв колоний с поверхности плотной питательной среды. Полученные суспензии микробных клеток собирали в две стерильные колбы.Mattresses with colonies of tularemia causative agent that grew on the surface of a dense nutrient medium were divided into two equal groups before washing. Condensation was removed from the mattresses under aseptic conditions. Then, sterile porcelain balls with a diameter of 7 mm (10 g each) were introduced into each mattress, and 10 cm 3 of a protective medium was also added using a sterile pipette. In this case, the protective environment of the prototype was introduced into the first group of mattresses. The claimed protective environment was introduced into the second group. The mattresses were closed with cotton-gauze plugs, and by rocking them manually, the colonies were washed off the surface of the dense nutrient medium. The resulting suspensions of microbial cells were collected in two sterile flasks.
Стабилизированные суспензии клеток, разливали высотой не более 8 мм в металлические кюветы, которые устанавливали на полках сублимационной камеры установки типа МАСС-5-02 (ООО «Биомашприбор», г. Йошкар-Ола).Stabilized cell suspensions were poured no more than 8 mm in height into metal cuvettes, which were installed on the shelves of the sublimation chamber of the MASS-5-02 installation (OOO Biomashpribor, Yoshkar-Ola).
Получение сухих препаратов, серии 1 (заявляемая среда) и серии 2 (среда прототипа), на основе возбудителя туляремии проводили при температуре замораживания суспензий минус 28°С по следующему режиму:Receiving dry preparations, series 1 (the inventive environment) and series 2 (prototype environment), based on the causative agent of tularemia, was carried out at a suspension freezing temperature of minus 28 ° C according to the following regime:
температура замораживания стабилизированной суспензии - минус 28°С,freezing temperature of the stabilized suspension - minus 28 ° С,
продолжительность выдержки материала при температуре замораживания до начала создания разрежения в сублимационной камере - 4 часа;the duration of the holding of the material at the freezing temperature before the start of creating a vacuum in the sublimation chamber - 4 hours;
температура конденсатора - вымораживателя - от минус 52 до минус 60°С;condenser temperature - freezer - from minus 52 to minus 60 ° С;
величина рабочего вакуума в сублимационной камере - от 30 до 20 Па;the value of the working vacuum in the sublimation chamber - from 30 to 20 Pa;
скорость повышения температуры материала - не более 3°С/ч;the rate of temperature rise of the material - no more than 3 ° C / h
температура материала при высушивании - 24°С;material temperature during drying - 24 ° С;
общая продолжительность высушивания - 36 часов.total drying time - 36 hours.
В сухих культурах определяли концентрацию клеток (бактериологическим методом) и рассчитывали выживаемость бактерий при высушивании. Полученные результаты представлены в таблице 2.In dry cultures, the concentration of cells was determined (by bacteriological method) and the survival rate of bacteria upon drying was calculated. The results are shown in Table 2.
Препарат серии 2 не соответствовал требованиям, предъявляемым к сухим бактериальным препаратам по показателю остаточной влажности, значения которой от 1 до 6%, являются наиболее безопасным для жизнеспособности бактерий [Бланков Б.И., Клебанов Д.Л. Применение лиофилизации в микробиологии. -М.: Медгиз, 1961. - С. 164].The preparation of series 2 did not meet the requirements for dry bacterial preparations in terms of residual moisture, the values of which are from 1 to 6%, are the safest for the viability of bacteria [Blankov BI, Klebanov D.L. The use of lyophilization in microbiology. -M .: Medgiz, 1961. - S. 164].
Пример 2.Example 2.
Состав защитных сред и порядок получения стабилизированных суспензий с использованием среды по прототипу и заявляемой среды представлены в примере 1.The composition of protective media and the procedure for obtaining stabilized suspensions using the prototype medium and the inventive medium are presented in example 1.
Получение сухих препаратов, серии 3 (заявляемая среда) и серии 4 (среда прототипа), на основе возбудителя туляремии проводили при температуре замораживания суспензий минус 40°С по следующему режиму:Receiving dry preparations, series 3 (the inventive environment) and series 4 (prototype environment), based on the causative agent of tularemia, was carried out at a suspension freezing temperature of minus 40 ° C according to the following regime:
температура замораживания стабилизированной суспензии - минус 40°С,freezing temperature of the stabilized suspension - minus 40 ° С,
продолжительность выдержки материала при температуре замораживания до начала создания разрежения в сублимационной камере - 4 часа;the duration of the holding of the material at the freezing temperature before the start of creating a vacuum in the sublimation chamber - 4 hours;
температура конденсатора - вымораживателя - от минус 52 до минус 60°С;condenser temperature - freezer - from minus 52 to minus 60 ° С;
величина рабочего вакуума в сублимационной камере - от 30 до 20 Па;the value of the working vacuum in the sublimation chamber - from 30 to 20 Pa;
скорость повышения температуры материала - не более 3°С/ч;the rate of temperature rise of the material - no more than 3 ° C / h
температура материала при досушивании - 24°С;material temperature during final drying - 24 ° С;
общая продолжительность высушивания - 45 часов.total drying time is 45 hours.
Результаты анализа свойств сухих препаратов представлены в таблице 2.The results of the analysis of the properties of dry preparations are presented in table 2.
Из представленных в таблице 2 результатов видно, что заявляемый состав защитной среды позволяет получать при высушивании качественный продукт, с остаточной влажностью от 2,9 до 4,2% при выживаемости клеток от 86 до 92% в более короткий срок.From the results presented in table 2, it can be seen that the claimed composition of the protective environment makes it possible to obtain a high-quality product upon drying, with a residual moisture content of 2.9 to 4.2% with a cell survival rate of 86 to 92% in a shorter time.
Пример 3.Example 3.
Полученные сухие препараты, серий 1-4, хранили в металлических герметичных стаканах в стационарных условиях в трех температурно-временных режимах:The obtained dry preparations, series 1-4, were stored in metal sealed glasses under stationary conditions in three temperature-time modes:
температура от минус 15 до минус 9°С в течение 3 месяцев;temperature from minus 15 to minus 9 ° С for 3 months;
температура от 0 до 4°С в течение 1 месяца;temperature from 0 to 4 ° C for 1 month;
температура от 18 до 22°С в течение 3 суток.temperature from 18 to 22 ° C for 3 days.
После хранения в препаратах определяли концентрацию живых клеток (бактериологическим методом) и рассчитывали выживаемость бактерий после хранения. Полученные результаты представлены в таблице 2.After storage, the concentration of living cells in the preparations was determined (by bacteriological method) and the survival rate of bacteria after storage was calculated. The results are shown in Table 2.
Представленные в таблице 2 данные свидетельствуют о том, что заявляемый состав защитной среды позволяет сохранять до 85% жизнеспособных клеток при температуре от минус 15 до минус 9°С в течение 3 месяцев, до 69% клеток при температуре от 0 до 4°С в течение 1 месяца и до 53% клеток при температуре от 18 до 22°С в течение 3 суток.The data presented in Table 2 indicate that the claimed composition of the protective environment allows maintaining up to 85% of viable cells at temperatures from minus 15 to minus 9 ° C for 3 months, up to 69% of cells at temperatures from 0 to 4 ° C for 1 month and up to 53% of cells at a temperature of 18 to 22 ° C for 3 days.
Claims (1)
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
RU2020114019A RU2736064C1 (en) | 2020-04-03 | 2020-04-03 | Protective medium for stabilization of tularemia pathogen during preparation and storage of dry preparations |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
RU2020114019A RU2736064C1 (en) | 2020-04-03 | 2020-04-03 | Protective medium for stabilization of tularemia pathogen during preparation and storage of dry preparations |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
RU2736064C1 true RU2736064C1 (en) | 2020-11-11 |
Family
ID=73461003
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
RU2020114019A RU2736064C1 (en) | 2020-04-03 | 2020-04-03 | Protective medium for stabilization of tularemia pathogen during preparation and storage of dry preparations |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
RU (1) | RU2736064C1 (en) |
Citations (4)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
RU2449775C2 (en) * | 2009-01-15 | 2012-05-10 | Федеральное бюджетное учреждение науки "Московский научно-исследовательский институт эпидемиологии и микробиологии имени Г.Н. Габричевского Федеральной службы по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека" (ФБУН МНИИЭМ им. Г.Н. Габричевского Роспотребнадзора) | Method of introduction protective medium into biologically active material |
RU2510825C2 (en) * | 2012-02-27 | 2014-04-10 | Федеральное бюджетное учреждение "33 Центральный научно-исследовательский испытательный институт Министерства обороны Российской Федерации" | Method of obtaining preparation based on vaccine strain of plague microbe |
RU2522811C2 (en) * | 2012-10-11 | 2014-07-20 | Государственное научное учреждение Всероссийский научно-исследовательский институт защиты растений Российской академии сельскохозяйственных наук | METHOD OF PREPARING SYMBIOTIC BACTERIA OF GENUS Xenorhabdus, ISOLATED FROM NEMATODES OF GENUS Steinernema feltiae protense, FOR STORAGE |
RU2666601C2 (en) * | 2012-03-23 | 2018-09-11 | Эдванст Бионутришн Корп. | Stabilizing composition for biological materials |
-
2020
- 2020-04-03 RU RU2020114019A patent/RU2736064C1/en active
Patent Citations (4)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
RU2449775C2 (en) * | 2009-01-15 | 2012-05-10 | Федеральное бюджетное учреждение науки "Московский научно-исследовательский институт эпидемиологии и микробиологии имени Г.Н. Габричевского Федеральной службы по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека" (ФБУН МНИИЭМ им. Г.Н. Габричевского Роспотребнадзора) | Method of introduction protective medium into biologically active material |
RU2510825C2 (en) * | 2012-02-27 | 2014-04-10 | Федеральное бюджетное учреждение "33 Центральный научно-исследовательский испытательный институт Министерства обороны Российской Федерации" | Method of obtaining preparation based on vaccine strain of plague microbe |
RU2666601C2 (en) * | 2012-03-23 | 2018-09-11 | Эдванст Бионутришн Корп. | Stabilizing composition for biological materials |
RU2522811C2 (en) * | 2012-10-11 | 2014-07-20 | Государственное научное учреждение Всероссийский научно-исследовательский институт защиты растений Российской академии сельскохозяйственных наук | METHOD OF PREPARING SYMBIOTIC BACTERIA OF GENUS Xenorhabdus, ISOLATED FROM NEMATODES OF GENUS Steinernema feltiae protense, FOR STORAGE |
Non-Patent Citations (1)
Title |
---|
Никитин Е. Е., Звягин И. В. Замораживание и высушивание биологических препаратов //М.: Колос. - 1971. - Т. 342. Файбич М. М. Стабилизация вакцинных препаратов в процессе высушивания и хранения //Успехи микробиологии. - 1983. - Т. 18. - С. 193-215. Олсуфьев Н. Г. Таксономия микробиология и лабораторная диагностика возбудителя туляремии. - 1975. - C. 67. * |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
Mahony et al. | Stable L-forms of Clostridium perfringens and their growth on glass surfaces | |
McEldowney et al. | The effect of temperature and relative humidity on the survival of bacteria attached to dry solid surfaces | |
Sizonenko et al. | The New Efficiency of the «SRMP»–Listerias Growth-Promoting Factor During Factory Cultivation | |
CN109430252A (en) | A kind of stem cell cryopreserving liquid and preparation method thereof | |
Rouf et al. | An overview of microbial cell culture | |
Firstenberg-Eden et al. | Electron microscopic investigations into attachment of bacteria to teats of cows | |
RU2736064C1 (en) | Protective medium for stabilization of tularemia pathogen during preparation and storage of dry preparations | |
AU6000400A (en) | Storage of microorganisms, cells and tissue | |
US3567585A (en) | Process for obtaining bcg-cultures | |
US4206282A (en) | Hypertonic culture media | |
Shah et al. | Drying and storage procedures for formulated and unformulated mycelia of the aphid-pathogenic fungus Erynia neoaphidis | |
EP1937800A2 (en) | Process for stabilization of bacterial cells | |
RU2800372C1 (en) | Protective medium for drying of y. pestis ev strain cells | |
Okiev | The Importance of Lyophilization of Microorganisms and Biologicals | |
Rodionov et al. | Optimizing a low-temperature preservation technique for Bacillus anthracisstrains | |
RU2731063C1 (en) | Method for dispersing culture liquid of bifidobacteria | |
RU2738396C1 (en) | Method for producing dry bacterial preparations | |
Artemeva et al. | Long-term storage of C-141 reference strain of melioidosis agent (Burkholderia pseudomallei) | |
RU2758857C1 (en) | Method for cryopreservation of vegetative inoculating material micromonospora purpurea var_ violacea of strain 7r of gentamycin producer | |
RU2746022C1 (en) | Method for stabilizing bacterial cells of plague microbe before freeze-drying | |
Voloshin et al. | The role of intercellular contacts in the initiation of growth and in the development of a transiently nonculturable state by cultures of Rhodococcus rhodochrous grown in poor media | |
Pakhomov et al. | Induction and resuscitation of viable but nonculturable bacteria from different taxonomic groups | |
RU2605543C1 (en) | METHOD FOR OBTAINING SPORE CULTURE ON BASIS OF BACTERIAL STRAIN Bacillus species 1839 | |
Zavhorodnii et al. | Protective Media Composition and Freezing Regimen Experimental Substantiation During Mycobacterium Avium Freeze-Drying | |
RU2115431C1 (en) | Solvent for living bacterial vaccines |