RU2732594C1 - Штамм микроскопического гриба Aspergillus sp. ВКМ F-4822D, являющийся активным агентом биоповреждений промышленных материалов - Google Patents

Штамм микроскопического гриба Aspergillus sp. ВКМ F-4822D, являющийся активным агентом биоповреждений промышленных материалов Download PDF

Info

Publication number
RU2732594C1
RU2732594C1 RU2019132455A RU2019132455A RU2732594C1 RU 2732594 C1 RU2732594 C1 RU 2732594C1 RU 2019132455 A RU2019132455 A RU 2019132455A RU 2019132455 A RU2019132455 A RU 2019132455A RU 2732594 C1 RU2732594 C1 RU 2732594C1
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
vkm
strain
aspergillus
ltt
materials
Prior art date
Application number
RU2019132455A
Other languages
English (en)
Inventor
Валерий Анатольевич Карпов
Татьяна Александровна Семенова
Анна Евгеньевна Иванова
Юлия Лукинична Ковальчук
Ксения Александровна Комарова
Василий Филиппович Смирнов
Original Assignee
Российская Федерация, от имени которой выступает Министерство обороны Российской Федерации
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Российская Федерация, от имени которой выступает Министерство обороны Российской Федерации filed Critical Российская Федерация, от имени которой выступает Министерство обороны Российской Федерации
Priority to RU2019132455A priority Critical patent/RU2732594C1/ru
Application granted granted Critical
Publication of RU2732594C1 publication Critical patent/RU2732594C1/ru

Links

Images

Classifications

    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N1/00—Microorganisms, e.g. protozoa; Compositions thereof; Processes of propagating, maintaining or preserving microorganisms or compositions thereof; Processes of preparing or isolating a composition containing a microorganism; Culture media therefor
    • C12N1/14—Fungi; Culture media therefor
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12Q—MEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
    • C12Q1/00—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions
    • C12Q1/02—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions involving viable microorganisms
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12Q—MEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
    • C12Q1/00—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions
    • C12Q1/02—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions involving viable microorganisms
    • C12Q1/18—Testing for antimicrobial activity of a material

Landscapes

  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • Proteomics, Peptides & Aminoacids (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Physics & Mathematics (AREA)
  • Analytical Chemistry (AREA)
  • Immunology (AREA)
  • Biophysics (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Mycology (AREA)
  • Botany (AREA)
  • Tropical Medicine & Parasitology (AREA)
  • Virology (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • Toxicology (AREA)
  • Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)

Abstract

Изобретение относится к биотехнологии, в частности к защите промышленных материалов от биокоррозии. Выделен штамм микроскопического гриба Aspergillus sp. ЛТТ 7, обладающий коррозионной способностью в отношении различных строительных, промышленных и полимерных материалов и высокой устойчивостью к фунгицидам, депонирован во Всероссийской коллекции микроорганизмов при Институте биохимии и физиологии микроорганизмов им Г.К. Скрябина РАН под регистрационным номером ВКМ F-4822D. Штамм гриба Aspergillus sp. ВКМ F-4822D может использоваться как тест-объект для тестирования грибостойкости промышленных и строительных материалов и изделий в различных климатических условиях. Изобретение позволяет повысить достоверность результатов при определении биокоррозионной активности микроорганизмов в отношении различных промышленных материалов, полимеров. 2 ил., 3 табл.

Description

Изобретение относится к биотехнологии, в частности к защите промышленных материалов от коррозии и может быть использовано для тестирования грибостойкости промышленных и строительных материалов и изделий в различных климатических условиях, а также для получения ряда биологически активных веществ.
Известно, что основным агентом биокоррозии материалов являются микроскопические грибы. В настоящее время для проверки грибостойкости материалов согласно ГОСТ 9.048-89 используются музейные культуры микроскопических грибов, хранящиеся в национальных коллекциях микроорганизмов. Эти культуры выделены много лет назад как обладающие высокой повреждающей способностью к ряду материалов. При длительном хранении грибов в коллекциях многие их свойства ослабевают. Кроме того, за прошедший период появилось множество новых синтетических материалов, устойчивых к данным коллекционным культурам. В то же время микроскопические грибы в природных условиях постоянно приспосабливаются как к появляющимся новым материалам, так и к новым средствам защиты материалов, и среди них постоянно появляются новые высокоагрессивные штаммы грибов. Поэтому постоянный поиск и выделение таких штаммов, изучение их свойств и использование новых агрессивных штаммов в тестировании материалов на грибоустойчивость является необходимой частью работы по защите материалов от коррозии. Кроме того, именно такие штаммы зачастую являются активными продуцентами многих метаболитов, таких как органические кислоты и ферменты, которые и обеспечивают высокую коррозионную агрессивность штаммов. Высокопродуктивные штаммы могут быть использованы в биотехнологической промышленности для получения ряда важных метаболитов (например, Aspergillus niger - продуцент лимонной, янтарной и ряда других органических кислот).
Aspergillus niger - этот вид хорошо известен и как агент биоповреждения, и как продуцент многих органических кислот; различные штаммы этого вида задепонированы и хранятся во многих коллекциях по всему миру, в основном, как продуценты органических кислот. В настоящее время этот вид считается составным, из него выделены и продолжают выделяться согласно новым молекулярным данным отдельные виды, составляющие совместно с другими темноокрашенными видами, так называемую группу «черных аспергиллов» (секция Nigri). Виды этой группы грибов широко распространены в тропических регионах, обладают очень широкими адаптивными способностями и быстро осваивают новые материалы, поэтому постоянно появляются новые агрессивные штаммы. Наиболее быстро процессы адаптации проходят в условиях высоких температур и влажности, поэтому наибольшее количество новых агрессивных форм и наибольший урон приходится на страны с тропическим климатом. Нами выделен и исследован штамм Aspergillus sp. ЛТТ 7 из секции Nigri, обладающий высокой коррозионной способностью по отношению к лакокрасочным материалам, полимерам, устойчивостью к ряду фунгицидов. Данный штамм задепонирован во Всероссийской коллекции микроорганизмов (ВКМ РАН) под номером ВКМ F-4822D 20.03.2019 (свидетельство прилагается).
Известен Штамм гриба Aspergillus flavus Link ВКМР-3190Д как тест-культура для определения грибостойкости сталей, оксидных алюминиевых и магниевых сплавов. Штамм гриба Aspergillus flavus Link BKMF-3190Д депонирован во Всесоюзной коллекции микроорганизмов ИБМФ АН СССР (RU 1766073, 19.06.1995). Тест-система позволяет повысить достоверность результатов при испытании сталей, оксидных алюминиевых и магниевых сплавов, используемых в условиях тропиков, на грибостойкость. Недостатками этого штамма является ограниченное его использование только по отношению к сталям, оксидным алюминиевым и магниевым сплавам, экспортируемым в страны с тропическим климатом. Данный источник рассмотрен в качестве ближайшего аналога.
Техническим результатом заявленного изобретения является высокая коррозионная способность микроскопического гриба Aspergillus sp. ЛТТ 7 ВКМ F-4822D по отношению к лакокрасочным материалам, полимерным материалам, устойчивость к ряду фунгицидов.
Технический результат достигается тем, что создан штамм микроскопического гриба Aspergillus sp. ЛТТ 7 ВКМ F-4822D, используемый как тест-культура для определения грибостойкости промышленных и строительных материалов и изделий в различных климатических условиях, в том числе в тропических регионах, где повышенные температура и влажность создают оптимальные условия для развития плесневых грибов, вызывающих биоповреждения различных материалов.
Штамм Aspergillus sp. ЛТТ 7 ВКМ F-4822D, выделен из биоповреждения полимерного покрытия электрорадиоизделия (ЭРИ) (вилка СНП-268-15 ВВ112-2-В) в тропической климатической зоне (Дам Бай, Нячанг, Вьетнам). Получение данного штамма осуществляли путем соскоба с биоповрежденного участка ЭРИ и высева его на агаризованной среде Чапека с добавлением антибиотика стрептомицина 100 мг/л среды
для подавления роста бактерий. Затем пересевали отдельные колонии на агаризованную среду Чапека для выделения чистой культуры штамма Aspergillus sp. ЛТТ 7.
Морфо-физиологические и биохимические свойства штамма изучали на жидкой и агаризованной среде Чапека при 25°C.
Видовая идентификация штамма проводилась по культурально-морфологическим признакам посредством определителя: Klich М.А., Pitt J.I. A laboratory guide to common Aspergillus species and their teleomorphs. Commonwealth scientific and industrial research organization, Division of food processing. North Ryde, N.S.W: 1992. Штамм Aspergillus sp. ЛТТ 7 имеет нетипичное строение, в спороношении присутствуют одновременно одноярусные и двухярусные головки конидиеносцев, что не позволяет определить штамм до вида. Проведено молекулярное определение путем секвенирования ДНК с помощью набора реактивов BigDye Terminator V3.1 Cycle Sequencing Kit («Applied Biosystems», USA) с последующим анализом продуктов реакции на секвенаторе Applied Biosystems 3130x1 Genetic Analyzer в Научно-производственной компании «Синтол» (Москва). Полученные нуклеотидные последовательности редактировали с помощью программы Chromas Lite 2.01 (http://www.technelysium.com.au). Стандартное определение видовой принадлежности штамма молекулярным методом по анализу участка ITS рДНК не дало результата.
Макроскопические признаки (см. фиг. 1а, б): широкорастущие колонии, диаметром 4.5-5.5 см; мицелий бесцветный до бледно-желтоватого, войлочно-пушистый; высота колоний 3 мм, в центре спороношение приподнятое коричневато-черное до угольно-черного (см. фиг. 1 а); оборот бесцветный; без запаха и пигмента (см. фиг. 1б).
Микроскопические признаки:
Конидиеносцы длиной (200)400 - 2000 (и >) мкм, гиалиновые до светло-желтоватых, округлые; конидиальные головки круглые или мохнатые «помпоны», диаметром до 300 мкм; опорная клетка - скошенная вбок под углом; апикальное вздутие шаровидное диаметром 20-60 мкм; головки 1-ярусные и 2-ярусные, фиалиды по всей поверхности апикального вздутия; конидии с утолщенной клеточной стенкой, меланизированные, шиповатые, диаметром 3-4 мкм (см. фиг. 2 а, б).
Физиологические свойства штамма:
Растет в аэробных и микроаэрофильных условиях, термотолерантен (отмечен рост при +55°C).
Методы исследования. Определение биомассы грибов.
Культивирование Aspergillus sp. ЛТТ 7 для биохимических исследований осуществлялось на жидкой питательной среде следующего состав (г/л): NaNO3 - 2,0; KH2PO4; K2HPO4 - 3; KCL - 0,5; MgSO4⋅7P2O; FeSO4 - 0,01, сахароза - 30,0 при температуре (27±2)°C на перемешивающих устройствах марки ПЭ - 0034 «Электроприбор Россия», которые обеспечивали встряхивание колб со скоростью 180 об/мин.
Накопление биомассы определялось следующим образом:
Споры тест-культуры Aspergillus sp. ЛТТ 7 ВКМ F-4822D со скошенной агаризованной питательной среды, путем смыва стерильной дистиллированной водой, переносились в стерильные колбы с жидкой питательной средой. После культивирования в течение 7 суток, мицелий Aspergillus sp. ЛТТ 7 отфильтровывался, и равные по массе образцы мицелия вносились в колбы со свежей питательной средой, содержащей исследуемые соединения в различных концентрациях. Культивирование проводилось аналогичным, описанному выше, способом, в течение 7 суток. По истечении срока культивирования, мицелий Aspergillus sp. ЛТТ 7 ВКМ F-4822D был отфильтрован и высушен до постоянной массы.
Определение органических кислот.
Были проведены эксперименты по использованию штамма гриба Aspergillus sp. ЛТТ 7 ВКМ F-4822D в качестве культуральной жидкости (к.ж.). Пробу подготавливали предварительным разбавлением культуры штамма Aspergillus sp. ЛТТ 7 ВКМ F-4822D. бидистиллированной водой в 50 раз и центрифугированием в течение 3 мин при скорости 5000 об/мин. Анализ проводили в соответствии с методикой анализа М 04-47-2012. Ввод пробы осуществлялся автоматически при 30 мбар, длина волны детектора 254 нм, напряжение - 20 кВ, температура 20°C.
Определение органических кислот осуществлялось методом капиллярного электрофореза (КЭ), который основан на разделении компонентов сложной смеси в кварцевом капилляре под воздействием электрического поля. Микрообъем анализируемого раствора вводят в капилляр, предварительно заполненный подходящим буфером - электролитом. После подачи к концам капилляра высокого напряжения (до 3-кВ), компоненты смеси начинают двигаться по капилляру с разной скоростью, зависящей в первую очередь от заряда и массы (точнее - от величины ионного радиуса) и, соответственно, в разное время достигают зоны детектирования. Полученная последовательность пиков называется электрофореграммой, при этом качественной характеристикой вещества является параметр удерживания (время миграции), а количественной - высота или площадь пика, пропорциональная концентрации вещества. Были получены следующие органические кислоты (см. таблица 1). Как видно из таблицы 1, данный штамм продуцирует в больших количествах глюконовую и молочные кислоты.
Figure 00000001
Figure 00000002
Определение активности каталазы.
Определение активности каталазы проводилось спектрофотометрически (Shimadzu UVmini-1240). В качестве субстрата использовался 30 мМ пероксид водорода (Li, Shellhorn, 2007). Измерения проводились при λ=240 нм.
В кювету спектрофотометра толщиной 1 см помещалась реакционная смесь, состоящая из 1 мл буферного раствора рН=7,8; 1 мл культуральной жидкости гриба Aspergillus sp. ЛТТ 7 ВКМ F-4822D; 1 мл 30 мМ Н2О2. Измерения проводили в течение одной минуты. В контрольной кювете Н2О2 заменяли водой.
Активность каталазы рассчитывалась по формуле:
Figure 00000003
где А - активность фермента каталазы,
D - убыль оптической плотности реакционной смеси гриба Aspergillus sp. ЛТТ 7,
d - толщина слоя жидкости в кювете, см,
t - время, мин,
С - концентрация белка в к.ж., мг/мл
α×β×χ - факторы разведения.
Результаты измерений выражались в условных единицах (у.е.). За единицу активности принималась убыль оптической плотности в 1 мл реакционной смеси гриба Aspergillus sp. ЛТТ 7 ВКМ F-4822D за 1 минуту, в пересчете на 1 мг общего белка.
Определение активности полифенолоксидазы.
Определение активности полифенолоксидазы проводилось спектрофотометрически по модифицированному методу. В качестве субстрата использовали n-фенилендиамин (0,1 М). Измерения проводились при λmax=535 нм.
В кювету спектрофотометра толщиной 1 см помещалась реакционная смесь, состоящая из: 2 мл буферного раствора рН = 7,2; 0,5 мл 0,1 М раствора n-фенилендиамина; 0,5 мл культуральной жидкости гриба Aspergillus sp. ЛТТ 7. В контрольной кювете n-фенилендиамин заменяли водой.
Активность полифенолоксидазы рассчитывалась по формуле: А=D⋅α⋅β⋅γ/C⋅t⋅d, где А - активность фермента, D - приращение оптической плотности реакционной смеси гриба Aspergillus sp. ЛТТ 7, d - толщина слоя жидкости в кювете, см.; t - время, мин.; α⋅β⋅γ - факторы разведения.
Результаты изменений выражались в условных единицах (у.е). За единицу активности принималось приращение оптической плотности в 1 мл реакционной смеси гриба Aspergillus sp. ЛТТ 7 ВКМ F-4822D за 1 минуту, в пересчете на 1 мг белка.
Определение активности протеиназ.
Определение протеолитической активности грибов проводили по методу Ансона (Билай В.И. Методы экспериментальной микологии изд-во «Наукова Думка», 1982. С 145-146). Метод основан на способности белков и продуктов их ферментативного расщепления поглощать свет в УФ-области спектра (при λ=275-280 нм). Поглощение света в этой части спектра обусловлено наличием ароматических аминокислот: тирозина, триптофана, фенилаланина.
Об активности протеиназ судили по количеству образовавшегося после протеолиза свободного тирозина и тирозина в составе коротких пептидов, не осаждающихся сильными кислотами, в частности трихлоруксусной кислотой (ТХУ). Для идентификации щелочных протеиназ, в качестве субстрата использовали 2,0% раствор казеина (рН - 7,8). В качестве субстрата для определения кислых протеиназ использовали 2,0% раствор гемоглобина (рН - 3,8),
Для определения активности кислых протеиназ использовали фосфатно-цитратный буфер с рН 3,8. В пробирки приливали по 1 мл реакционной смеси: состоящей из буферного раствора и исследуемой культуральной жидкости гриба Aspergillus sp. ЛТТ 7 ВКМ F-4822D и инкубировали в термостате при температуре +37°C в течение 10 минут. Затем в опытные пробирки вносили по 1 мл субстрата 2,0% раствора гемоглобина (рН-3,8)) и перемешивали. Протеолиз проводили в течение 10 минут при температуре +37°C. По истечении этого времени, реакцию останавливали добавлением 3 мл 10% ТХУ. Контрольный раствор готовился аналогично, но ТХУ вносили до введения раствора субстрата в реакционную смесь гриба Aspergillus sp. ЛТТ 7. После добавления ТХУ пробирки выдерживали на холоде в течение 20 минут и фильтровали.
Количество тирозина определяли спектрофотометрически при λ=280 нм на спектрофотометре UV mini-1240 (Shimadzu) (полученные значения оптической плотности переводили в количество мкг тир/мл используя калибровочный график), выражали в микромолях/мл.
Протеолитическую активность в культуральной жидкости Aspergillus sp. ЛТТ 7 ВКМ F-4822D определяли по формуле:
Figure 00000004
, где
Доп - мкг тирозина в опытном растворе;
Дк - мкг тирозина в контрольном растворе;
181 - молекулярный вес тирозина;
10 - продолжительность протеолиза в мин;
1/6 - разведение культуральной жидкости Aspergillus sp. ЛТТ 7.
Полученные данные приведены в таблице 2.
Figure 00000005
Таким образом, штамм Aspergillus sp. ЛТТ 7 ВКМ F-4822D обладает каталазной, оксидоредуктазной и протеазной активностью, что делает этот вид потенциально опасным для таких полимерных материалов, как ПВХ, полиакрилаты, эпоксидные компаунды и т.д., в деструкции которых участвуют данные энзимы. Штамм представляет опасность как потенциальный деструктор полимерных материалов, содержащих амидную связь. Штамм Aspergillus sp. ЛТТ 7 ВКМ F-4822D синтезирует в выделяет в окружающую среду многие органические кислоты: глюконовую, щавелевую, яблочную, лимонную, янтарную, молочную, что свидетельствует о его возможности участвовать в процессе биоповреждений изделий РЭО.
Описание условий, необходимых для культивирования штамма (состав среды, температура, срок выращивания).
Для таксономических и морфо-физиологических исследований, хранения культуру гриба Aspergillus sp. ЛТТ 7 выращивают на агаризованных средах в чашках Петри или пробирках.
Среда Чапека:
вода питьевая - 1,0 литр
сахароза - 30,0 г
нитрат натрия (NaNO3) - 2,0 г
хлорид калия (KCl) - 0,5 г
сульфит магния (MgSO4) - 0,5 г
фосфат калия двузамещенный (K2HPO4) - 1,0 г
агар-агар - 20,0 г
рН 7,4-7,6
Стерилизация при 1 атм. (121°C) - 20 мин.
Мальт-экстракт-агар (солодовый агар);
вода питьевая - 1,0 литр
солодовый экстракт 30,0 г
пептон из соевой муки 3,0 г
агар-агар 15,0 г
рН 5,6±0,2 при 25°C.
Стерилизация при 1 атм. (121°C) - 10 мин.
Культивирование в термостате 7-10 суток при +25°C.
Для наращивания биомассы и биохимических исследований экзометаболитов Aspergillus sp. ЛТТ 7 культивируют на жидкой среде Чапека (без добавления агар-агара) в колбах на качалке (120-180 оборотов/мин.) при температуре +25-+27°C.
Описание режима хранения штамма (среды, условия, предельный срок)
1) В пробирке на закошенной питательной среде Чапека под минеральным маслом;
в холодильнике при температуре 0-+4°C. Срок хранения без пересева - 2 года.
2) Лиофилизированные споры гриба Aspergillus sp. ЛТТ 7 в запаянной ампуле для длительного хранения.
Штамм депонирован во Всероссийской коллекции микроорганизмов ФБГУН Институт биохимии и физиологии микроорганизмов имени Г.К. Скрябина (ВКМ ИБФМ РАН) под номером ВКМ F-4822D.
Результаты.
Реализация использования штамма гриба Aspergillus sp. ЛТТ 7 ВКМ F-4822D в качестве тест-культуры для определения биокоррозионной способности (агрессивности) проверяли методом нанесения его споровой суспензии в концентрации 10*5 мл на поверхность лакокрасочных материалов, полимеров, резин и герметиков. Контролем служили образцы тех же материалов, обработанные споровой суспензией грибов Aspergillus sp. ЛТТ 7 ВКМ F-4822D согласно ГОСТ 9.048-89. Обработанные суспензией образцы помещали в эксикаторы с 90% влажностью и устанавливали в термостаты с температурой +28°C на 28 суток (ГОСТ 9.048-89). Повторность всех образцов трехкратная.
В опытах использовали следующие материалы:
1. Краска МЛ-12;
2. Краска ЭП-525;
3. Краска ЭП-140;
4. Краска акриловая бактерицидная с частицами наносеребра PREMIA (Ярославль);
5. Герметик 1 акриловый (Soudal, Бельгия);
6. Герметик 2 силиконовый бесцветный с кислотным отвердением с добавлением биоцида 2-octyl-2H-isothiazol-3-on (Soudal, Бельгия);
7. Герметик 3 силиконовый белый с кислотным отвердением с добавлением биоцида 4.5-dichloro-2n-octyl-4-isothiazol-3-one (Soudal, Бельгия);
8. Герметик 4 однокомпонентный герметик ВГО-1 кремнийорганический белый (ТУ 38.303-04-04-90);
9. Резина фторсиликоновая ФС-608;
10. Резина ИРП-1354.
Результаты исследования отражены в таблице 3.
Figure 00000006
По результатам экспериментов, деструктивная активность штамма Aspergillus sp. ЛТТ 7 ВКМ F-4822D превышает активность музейных культур, рекомендованных ГОСТ 9.048-89 и штамм может быть рекомендован для дополнительных испытаний на грибостойкость лакокрасочных и полимерных материалов.

Claims (1)

  1. Штамм микроскопического гриба Aspergillus sp. ВКМ F-4822D, как тест-культура для определения грибостойкости промышленных и строительных материалов и изделий.
RU2019132455A 2019-10-14 2019-10-14 Штамм микроскопического гриба Aspergillus sp. ВКМ F-4822D, являющийся активным агентом биоповреждений промышленных материалов RU2732594C1 (ru)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2019132455A RU2732594C1 (ru) 2019-10-14 2019-10-14 Штамм микроскопического гриба Aspergillus sp. ВКМ F-4822D, являющийся активным агентом биоповреждений промышленных материалов

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2019132455A RU2732594C1 (ru) 2019-10-14 2019-10-14 Штамм микроскопического гриба Aspergillus sp. ВКМ F-4822D, являющийся активным агентом биоповреждений промышленных материалов

Publications (1)

Publication Number Publication Date
RU2732594C1 true RU2732594C1 (ru) 2020-09-21

Family

ID=72922231

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
RU2019132455A RU2732594C1 (ru) 2019-10-14 2019-10-14 Штамм микроскопического гриба Aspergillus sp. ВКМ F-4822D, являющийся активным агентом биоповреждений промышленных материалов

Country Status (1)

Country Link
RU (1) RU2732594C1 (ru)

Citations (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU1766073C (ru) * 1990-12-27 1995-06-19 Войсковая часть 75360 Штамм гриба aspergillus flavus link как тест-культура для определения грибостойкости сталей, оксидных алюминиевых и магниевых сплавов
RU2322491C1 (ru) * 2006-06-13 2008-04-20 Общество с ограниченной ответственностью "Сириус" Штамм lecanicillium sp. 347а - продуцент комплекса биологически активных соединений
RU2486250C2 (ru) * 2011-05-12 2013-06-27 Открытое акционерное общество "Ракетно-космическая корпорация "Энергия" имени С.П. Королева" Способ качественной оценки биокоррозионных поражений тонкостенных герметичных оболочек из алюминиево-магниевых сплавов при эксплуатации космических аппаратов и суспензия споровых материалов для его реализации

Patent Citations (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU1766073C (ru) * 1990-12-27 1995-06-19 Войсковая часть 75360 Штамм гриба aspergillus flavus link как тест-культура для определения грибостойкости сталей, оксидных алюминиевых и магниевых сплавов
RU2322491C1 (ru) * 2006-06-13 2008-04-20 Общество с ограниченной ответственностью "Сириус" Штамм lecanicillium sp. 347а - продуцент комплекса биологически активных соединений
RU2486250C2 (ru) * 2011-05-12 2013-06-27 Открытое акционерное общество "Ракетно-космическая корпорация "Энергия" имени С.П. Королева" Способ качественной оценки биокоррозионных поражений тонкостенных герметичных оболочек из алюминиево-магниевых сплавов при эксплуатации космических аппаратов и суспензия споровых материалов для его реализации

Non-Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
СМИРНОВ В.Ф., МОЧАЛОВА А.Е. и др. Деструкция микромицетами композиционных материалов на основе природных и синтетических полимеров, Поволжский Экологический Журнал, 2011,N4, с. 537-541. *

Similar Documents

Publication Publication Date Title
RU2732594C1 (ru) Штамм микроскопического гриба Aspergillus sp. ВКМ F-4822D, являющийся активным агентом биоповреждений промышленных материалов
WO2015111075A2 (en) Method of increasing biomass and lipid content in a micro-organism and a genetically modified micro-organism exhibiting enhanced autophagy
RU2776486C1 (ru) Штамм микроскопического гриба Cladosporium halotolerans Zalar, de Hoog & Gunde-Cim. BKM F-4829D, являющийся активным агентом биоповреждений промышленных материалов
RU2776487C1 (ru) Штамм микроскопического гриба Penicillium sclerotiorum J.F.H. Beyma BKM F-4837D, являющийся активным агентом биоповреждений промышленных материалов
Sameshima-Yamashita et al. Enhancement of biodegradable plastic-degrading enzyme production from Paraphoma-like fungus, strain B47-9
Suresh et al. Purification and characterization of phosphatases from Aspergillus fumigatus for applications in industrial uses
US8309321B2 (en) Screening method for identifying protease secretion-deficient mutants of microorganisms
CA2279378C (en) Method of selectively determining a fungal biomass
Joseph et al. Isolation, production and characterisation of novel gelatinase enzyme from Bacillus spp
Bridge et al. Protein extraction from fungi
RU2257409C1 (ru) Штамм rhodococcus erythropolis для разложения нефти и нефтепродуктов
Khan et al. A review on chemical and molecular characterization of keratinophilic fungi
US8728754B1 (en) Use of proteins isolated from Pseudomonas to control molluscs
Vidhya Production and Optimization of Extra-cellular protease from Ganoderma sp.
RU2257410C1 (ru) Штамм rhodococcus erythropolis для разложения нефти и нефтепродуктов
EP1608746B1 (de) Thermisch stabile amidasen
Natsir et al. Isolation, Production of Protease, and Antimicrobial Activities from Marine Sediment Gamma-Proteobacteria of MBS-L3 Isolate
REPIN et al. Characterization of Lysinibacillus spp.(Strain G6) for hydrolysing porcine gelatine
Krarup et al. Some characteristics of extracellular proteases produced by members of the Chytridiales and the Spizellomycetales (Chytridiomycetes)
Laachari et al. Biochemical study of lipases from Bacillus subtilis
Devi et al. Potential and Enzymatic Characterizations of Marine Yeast for Pufas from Balai Taman Nasional Karimunjawa
Białkowska et al. Physicochemical and biological characterization of soils from the vicinity of the Arctowski Polish Antarctic Station
Kosanovic et al. Fungal Biology
Bridge Protein extraction from fungi
Rao et al. Electrophoretic banding patterns of esterase isozymes in fresh water fish Channa punctatus