RU2729931C1 - Способ восстановления биохимических показателей периферической крови лабораторных животных с циррозом печени - Google Patents

Способ восстановления биохимических показателей периферической крови лабораторных животных с циррозом печени Download PDF

Info

Publication number
RU2729931C1
RU2729931C1 RU2019124348A RU2019124348A RU2729931C1 RU 2729931 C1 RU2729931 C1 RU 2729931C1 RU 2019124348 A RU2019124348 A RU 2019124348A RU 2019124348 A RU2019124348 A RU 2019124348A RU 2729931 C1 RU2729931 C1 RU 2729931C1
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
cells
laboratory animals
peripheral blood
biochemical parameters
mmsc
Prior art date
Application number
RU2019124348A
Other languages
English (en)
Inventor
Ирина Юрьевна Маклакова
Дмитрий Юрьевич Гребнев
Илья Валерьевич Гаврилов
Original Assignee
Государственное автономное учреждение здравоохранения Свердловской области "Центр специализированных видов медицинской помощи "Институт медицинских клеточных технологий"
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Государственное автономное учреждение здравоохранения Свердловской области "Центр специализированных видов медицинской помощи "Институт медицинских клеточных технологий" filed Critical Государственное автономное учреждение здравоохранения Свердловской области "Центр специализированных видов медицинской помощи "Институт медицинских клеточных технологий"
Priority to RU2019124348A priority Critical patent/RU2729931C1/ru
Application granted granted Critical
Publication of RU2729931C1 publication Critical patent/RU2729931C1/ru

Links

Classifications

    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K35/00Medicinal preparations containing materials or reaction products thereof with undetermined constitution
    • A61K35/12Materials from mammals; Compositions comprising non-specified tissues or cells; Compositions comprising non-embryonic stem cells; Genetically modified cells
    • A61K35/48Reproductive organs
    • A61K35/50Placenta; Placental stem cells; Amniotic fluid; Amnion; Amniotic stem cells
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61MDEVICES FOR INTRODUCING MEDIA INTO, OR ONTO, THE BODY; DEVICES FOR TRANSDUCING BODY MEDIA OR FOR TAKING MEDIA FROM THE BODY; DEVICES FOR PRODUCING OR ENDING SLEEP OR STUPOR
    • A61M5/00Devices for bringing media into the body in a subcutaneous, intra-vascular or intramuscular way; Accessories therefor, e.g. filling or cleaning devices, arm-rests
    • A61M5/14Infusion devices, e.g. infusing by gravity; Blood infusion; Accessories therefor
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61PSPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P1/00Drugs for disorders of the alimentary tract or the digestive system
    • A61P1/16Drugs for disorders of the alimentary tract or the digestive system for liver or gallbladder disorders, e.g. hepatoprotective agents, cholagogues, litholytics
    • GPHYSICS
    • G09EDUCATION; CRYPTOGRAPHY; DISPLAY; ADVERTISING; SEALS
    • G09BEDUCATIONAL OR DEMONSTRATION APPLIANCES; APPLIANCES FOR TEACHING, OR COMMUNICATING WITH, THE BLIND, DEAF OR MUTE; MODELS; PLANETARIA; GLOBES; MAPS; DIAGRAMS
    • G09B23/00Models for scientific, medical, or mathematical purposes, e.g. full-sized devices for demonstration purposes
    • G09B23/28Models for scientific, medical, or mathematical purposes, e.g. full-sized devices for demonstration purposes for medicine

Landscapes

  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Veterinary Medicine (AREA)
  • Public Health (AREA)
  • Animal Behavior & Ethology (AREA)
  • Pharmacology & Pharmacy (AREA)
  • Cell Biology (AREA)
  • Developmental Biology & Embryology (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • General Physics & Mathematics (AREA)
  • Physics & Mathematics (AREA)
  • Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
  • Mathematical Analysis (AREA)
  • Anesthesiology (AREA)
  • Medical Informatics (AREA)
  • General Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Mathematical Optimization (AREA)
  • Mathematical Physics (AREA)
  • Pure & Applied Mathematics (AREA)
  • Business, Economics & Management (AREA)
  • Educational Administration (AREA)
  • Educational Technology (AREA)
  • Nuclear Medicine, Radiotherapy & Molecular Imaging (AREA)
  • Gastroenterology & Hepatology (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • Computational Mathematics (AREA)
  • Algebra (AREA)
  • Theoretical Computer Science (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Vascular Medicine (AREA)
  • Hematology (AREA)
  • Heart & Thoracic Surgery (AREA)
  • Pregnancy & Childbirth (AREA)
  • Reproductive Health (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • Immunology (AREA)

Abstract

Изобретение относится к области медицины, в частности к экспериментальной медицине. Для восстановления биохимических показателей периферической крови лабораторных животных с циррозом печени проводят введение мультипотентных мезенхиальных стромальных клеток (ММСК), выделенных из плаценты лабораторных животных, в количестве 4 млн клеток/кг. Дополнительно вводят гемопоэтические стволовые клетки (ГСК), выделенные из плаценты, в количестве 330 тыс. клеток/кг. Способ позволяет восстановить биохимические показатели периферической крови при циррозе печени. 1 табл.

Description

Изобретение относится к области медицины и предназначено для восстановления биохимических показателей периферической крови лабораторных животных (крыс).
Известен способ восстановления лимфоидной ткани селезенки лабораторных животных путем продедения после облучения внутривенной аллогенной трансплантации мультипотентных стромальных клеток (ММСК) в дозе 6,2 млн клеток/кг и гемоплэтичных стволовых клеток (ГСК) в дозе 330 тыс клеток/кг (RU, патент №2639404, МПК G09B/23/28, А61К 35/28, опубл. 21.12.2017 бюл. №36).
Недостатком данного способа является высокая концентрация ММСК (6,2 млн клеток/кг) при их сочетанном введении с ГСК, что может вызвать нарушения гемостаза. (Ефименко А.Ю., Калинина Н.И., Макаревич П.И. Методические рекомендации по проведению доклинических исследований биомедицинских клеточных продуктов. - Москва, 2017. - С. 303.).
Наиболее близким техническим решением к заявляемому является способ восстановления биохимических показателей периферической крови лабораторных животных (крыс) с циррозом печени введением аутогенных ММСК из костного мозга бедренной кости в дозе 2 млн на 100 г (2 млн на кг) Цирроз печени моделировали путем подкожного введения четыреххлористого углерода (CCl4) в виде 50% масляного раствора из расчета 0,3 мл/100 г массы животного, дважды в неделю в течение 12 недель. (Экспериментальное исследование аутогенных мультипотентных мезенхимальных стромальных клеток в лечении цирроза печени / Б.А. Агаев, P.M. Агаев, А.Г. Попандопуло, Р.Э. Джафарли // Гены и клетки, Том IX, №1. - 2014. С. 58-63.
Недостатком данного способа является высокая концентрация ММСК (6,2 млн клеток/кг) при их сочетанном введении с ГСК, что может вызвать нарушения гемостаза.
Задачей данного изобретения является расширение арсенала средств, способных приводить к восстановлению биохимических показателей периферической крови лабораторных животных с циррозом печени.
Технический результат, который будет получен от использования изобретения, заключается в восстановлении уровня в крови показателей, характеризующих цитолиз гепатоцитов - алананаминотрансфераза (ACT), аспартатаминотрансфераза (ACT), лактатдегидрогенызы (ЛДГ), а также показателей, характеризующих белковый обмен - общий белок, содержание альбуминов.
Технический результат достигается за счет сочетанной внутривенной аллогенной трансплантации мультипотентных мезенхимальных стромальных клеток (ММСК), выделенных из плаценты лабораторных животных, в количестве 4 млн. клеток/кг и гемопоэтических стволовых клеток (ГСК), выделенные из плаценты, в количестве 330 тыс. клеток/кг.
Способ позволяет обеспечить восстановление биохимических показателей периферической крови при циррозе печени.
Сущность изобретения обеспечена проведением сочетанной трансплантации лабораторным животным плацентарных ММСК и ГСК в количестве 4 млн. клеток/кг и 330 тыс. клеток/кг соответственно.
Учитывая способность ММСК к выработке фактора роста стволовой клетки (SCF), который через увеличение количества звездчатых клеток печени Ито, обеспечивает увеличение количества гепатоцитов, а также способность ММСК к выработке противовоспалительных цитокинов (ИЛ-10, трансформирующий фактор роста - β), представляется перспективным изучение возможностей активации регенерации печени после ее повреждения с использованием данного вида клеток.
В то же время известно, что ММСК, выделенные из плаценты, обладают большей пролиферативной активностью и большим пролиферативным потенциалом по сравнению с ММСК, выделенными из других источников. Способность ММСК к выработке иммуносупрессивных факторов определяет возможность проведения аллогенной трансплантации.
Заявляемая дозировка подобрана эксперементальным путем и способствует активации регенерации печени.
Из анализа научно-технической и патентной литературы использования плацентарных ММСК и ГСК для восстановления биохимических показателей периферической крови лабораторных животных с циррозом печени не выявлено, что позволяет сделать вывод о соответствии заявляемого технического решения критериям «новизна» и «изобретательский уровень».
Изобретение осуществляется следующим образом.
Эксперименты выполнены на 20 зрелых лабораторных крысах-самцах в возрасте 6-8 месяцев с массой 150-180 г. Животные содержались в стандартных условиях лабораторного вивария при естественном освещении и сбалансированном рационе.
Лабораторные животные были разделены на две группы: опытную и контрольную. Лабораторным животным опытной группы внутривенно вводились ММСК и ГСК соответственно в дозе 4 млн. клеток/кг и 330 тыс. клеток/кг, суспендированные в 0,2 мл 0,9% NaCl. Животным контрольной подгруппы вводили 0,2 мл 0,9% NaCl внутривенно (в портальную вену). Забой лабораторных животных осуществлялся на 8 неделе после трансплантации клеток.
Клеточные культуры
Получение клеточной культуры ММСК и ГСК производилось из хориона плаценты лабораторных животных. При этом мононуклеарная фракция клеток была получена путем последовательной механической и ферментативной (раствор аккутазы (Millipore, США)) обработки ткани плаценты.
Выделение ГСК осуществлялось методом позитивной иммуномагнитной сепарации по антигенам SCA-1 (StemCell Technologies, США) и CD 117 (StemCell Technologies, США) (X. Muniraetal., 2009).
Проточная цитометрия была проведена на цитометре FACS Calibur (BD Bioscienses, США). В суспензии трансплантируемых клеток оценивалось содержание ГСК с иммунофенотипом положительных по CD 117, Sca-1 и отрицательных по Lin- (CD45, С3е, Ly-6G, M1/70, Ter-119).
В качестве изотипического контроля для антител при проведении позитивной иммуномагнитной сепарации по SCA-1 и CD117 были использованы антитела РЕ labeled Rat IgG2a, kappa isotype control (BD Bioscienses). С целью определения Lin антигенов на поверхности клеток был использован набор антител - FITC anti-mouse Lineage Coctail with isotype control (Biolegend, США).
Проведенные исследования позволили установить, что содержание клеток после иммуномагнитной сепарации с иммунофенотипом CD117+ (рис. 1), Sca-1+, Lin- составило 70-93%.
Тест колониеобразования. С целью определения функциональной способности клеток, выделенных с помощью позитивной иммуномагнитной сепарации (Sca1+, CD 117+, Lin-) был проведен стандартный тест колониеобразования в метилцеллюлозной среде MethoCult (StemCell Technologies, Канада). Данный тест позволяет установить способность полученных клеток формировать различные типы гемопоэтических колоний. Образование колоний было зарегистрировано под инвертированным микроскопом Unico (США).
Культура ММСК. С целью получения первичной культуры ММСК осуществлялся пассаж мононуклеарной фракции клеток, выделенной из ткани плаценты, в специализированной среде для культивирования ММСК в чашки Петри в концентрации 1×106 клеток на 1 см2. Культивирование ММСК проводилось в условиях CO2-инкубатора при температуре 37°С с содержанием углекислого газа 5% и влажностью 90%. Через 24-48 часов инкубации не прикрепленные к дну чашки Петри клетки аспирировали. Среду для культивирования ММСК добавляли к прикрепленным к пластику клеткам. Замена среды проводилась каждые 3-4 сутки до достижения клетками 70-80% конфлюэнтности. При формировании соответствующего монослоя осуществлялся пересев клеток.
При трансплантации лабораторным животным была использована культура ММСК третьего пассажа.
Иммуноцитохимия. Для подтверждения принадлежности культуры к ММСК производилась окраска клеток с помощью набора антител MesenchymalStemCellCharacterizationKit (Millipore, США), содержащего позитивные (антитела к integrin β1, CD 54, collagentypeI и fibronectin) и негативные маркеры (антитела к CD 14, CD 45).
Производилась дифференцировка полученной культуры в адипоцитарном и остеогенном направлениях. Состав среды, индуцирующей дифференцировку: MesenCult™ Osteogenic Stimulatory Supplement («StemCell Technologies», Канада) / MesenCult™ Adipogenic Stimulatory Supplement («StemCell Technologies», Канада) и MesenCult™ MSC Basal Medium (Mouse) («StemCellT echnologies», Канада) в соотношении 1:4, 2 ммоль раствора L-глутамина («StemCell Technologies», Канада). Факт остеогенной дифференцировки подтвержден гистохимическим методом регистрации увеличения экспрессии щелочной фосфатазы, а также с помощью окраски vonKossa, выявляющей наличие минерализованного фосфата кальция. Способность клеток дифференцироваться в адипоцитарном направлении подтверждена гистохимическим методом регистрации липидных вакуолей, окрашивающихся красителем Oil RedO (J. J. Minguelletal., 2004).
Подсчет и определение жизнеспособности клеток. Жизнеспособность клеток была определена с помощью суправитальной окраски раствором трипанового синего. Подсчет клеток производился в 5 больших квадратах камеры Горяева (или ≥100 клеток). Жизнеспособность выделенных клеток перед трансплантацией составляла 95-97%.
Моделирование цирроза печени
Цирроз печени моделировали путем подкожного введения четыреххлористого углерода (CCl4) в виде 50% масляного раствора из расчета 0,3 мл/100 г массы животного, дважды в неделю в течение 12 недель. Цирроз печени был верифицирован по биохимическим и морфологическим критериям (фиброз с формированием соединительнотканных септ и ложных долек, дистрофия и некроз гепатоцитов).
Трансплантация ММСК и ГСК
Трансплантацию плацентарных ММСК и ГСК осуществляли в портальную вену.
Производилась оценка биохимических показателей периферической крови на автоматическом биохимическом и иммуноферментном анализаторе Chem Well 2910 (Combi) после трансплантации клеток. Изучались следующие биохимические показатели: альбумин, общий белок, аспартатаминотрансфераза (ACT), аланинаминотрансфераза (АЛТ), лактатдегидрогеназа (ЛДГ).
Достоверность отличий в сравниваемых выборках проведено с применением непараметрического (рангового) метода Манна-Уитни. Статистическая обработка данных проведена с помощью программного пакета SPSS Statistics (версия 17,0).
Figure 00000001
Как видно из таблицы №1, по заявляемому способу биохимические показатели периферической крови, отражающие степень выраженности цитолиза гепатоцитов существенно ниже (АЛТ, ACT, ЛДГ), чем в прототипе. При этом показатели белкового обмена (общий белок, альбумины) увеличились и достоверно отличаются от прототипа. Таким образом, полученные биохимические данные периферической крови свидетельствуют о снижении цитолиза в печени и восстановлении до значений нормы белок синтетической функции печени. Анализ полученных данных позволяет сделать вывод, что сочетанная трансплантация плацентарных ММСК и ГСК способствует восстановлению биохимических показателей периферической крови при циррозе печени в большей степени, чем трансплантация аутогенных ММСК.

Claims (1)

  1. Способ восстановления биохимических показателей периферической крови лабораторных животных с циррозом печени, включающий введение мультипотентных мезенхиальных стромальных клеток (ММСК), отличающийся тем, что используют ММСК, выделенные из плаценты лабораторных животных, в количестве 4 млн клеток/кг и дополнительно вводят гемопоэтические стволовые клетки (ГСК), выделенные из плаценты, в количестве 330 тыс. клеток/кг.
RU2019124348A 2019-07-29 2019-07-29 Способ восстановления биохимических показателей периферической крови лабораторных животных с циррозом печени RU2729931C1 (ru)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2019124348A RU2729931C1 (ru) 2019-07-29 2019-07-29 Способ восстановления биохимических показателей периферической крови лабораторных животных с циррозом печени

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2019124348A RU2729931C1 (ru) 2019-07-29 2019-07-29 Способ восстановления биохимических показателей периферической крови лабораторных животных с циррозом печени

Publications (1)

Publication Number Publication Date
RU2729931C1 true RU2729931C1 (ru) 2020-08-13

Family

ID=72086280

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
RU2019124348A RU2729931C1 (ru) 2019-07-29 2019-07-29 Способ восстановления биохимических показателей периферической крови лабораторных животных с циррозом печени

Country Status (1)

Country Link
RU (1) RU2729931C1 (ru)

Cited By (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2765912C1 (ru) * 2021-07-29 2022-02-04 Государственное автономное учреждение здравоохранения Свердловской области "Центр специализированных видов медицинской помощи "Институт медицинских клеточных технологий" Способ выделения звездчатых клеток печени
RU2802673C1 (ru) * 2022-11-07 2023-08-30 Государственное автономное учреждение здравоохранения Свердловской области "Центр специализированных видов медицинской помощи "Институт медицинских клеточных технологий" (ГАУЗ СО "ИМКТ") Способ лечения фиброза печени аллогенной трансплантацией мультипотентных мезенхимальных стромальных клеток (ММСК) лабораторных животных

Citations (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2368384C2 (ru) * 2007-08-24 2009-09-27 Федеральное государственное учреждение "Научный Центр акушерства, гинекологии и перинатологии Федерального агентства по высокотехнологичной медицинской помощи" Биотрансплантат, способ лечения хронических заболеваний печени и способ лечения цирроза печени и портальной гипертензии
RU2639404C1 (ru) * 2016-08-24 2017-12-21 Государственное автономное учреждение здравоохранения Свердловской области "Центр специализированных видов медицинской помощи "Институт медицинских клеточных технологий" Способ восстановления лимфоидной ткани селезенки лабораторных животных

Patent Citations (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2368384C2 (ru) * 2007-08-24 2009-09-27 Федеральное государственное учреждение "Научный Центр акушерства, гинекологии и перинатологии Федерального агентства по высокотехнологичной медицинской помощи" Биотрансплантат, способ лечения хронических заболеваний печени и способ лечения цирроза печени и портальной гипертензии
RU2639404C1 (ru) * 2016-08-24 2017-12-21 Государственное автономное учреждение здравоохранения Свердловской области "Центр специализированных видов медицинской помощи "Институт медицинских клеточных технологий" Способ восстановления лимфоидной ткани селезенки лабораторных животных

Non-Patent Citations (5)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
LI Q et al. "In vivo tracking and comparison of the therapeutic effects of MSCs and HSCs for liver injury". PLoS One. 2013 Apr 30; 8(4): e62363. *
ZHANG D et al. "Transplanted human amniotic membrane-derived mesenchymal stem cells ameliorate carbon tetrachloride-induced liver cirrhosis in mouse". PLoS One. 2011 Feb 4; 6(2): e16789. *
АЛЕКСАНДРОВ В.Н. и др. "Клеточная терапия цирроза печени" // "Вестник Российской военно-медицинской академии", N1(45), 2014, 197-202. *
МАКЛАКОВА И.Ю. и др. "Изменение биохимических показателей крови лабораторных животных с токсическим гепатитом после введения ММСК" // "Актуальные направления научных исследований: перспективы развития. Сборник материалов VI Международной научно-практической конференции", Чебоксары, 2018, стр.44-46. *
МАКЛАКОВА И.Ю. и др. "Изменение биохимических показателей крови лабораторных животных с токсическим гепатитом после введения ММСК" // "Актуальные направления научных исследований: перспективы развития. Сборник материалов VI Международной научно-практической конференции", Чебоксары, 2018, стр.44-46. АЛЕКСАНДРОВ В.Н. и др. "Клеточная терапия цирроза печени" // "Вестник Российской военно-медицинской академии", N1(45), 2014, 197-202. ZHANG D et al. "Transplanted human amniotic membrane-derived mesenchymal stem cells ameliorate carbon tetrachloride-induced liver cirrhosis in mouse". PLoS One. 2011 Feb 4; 6(2): e16789. *

Cited By (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2765912C1 (ru) * 2021-07-29 2022-02-04 Государственное автономное учреждение здравоохранения Свердловской области "Центр специализированных видов медицинской помощи "Институт медицинских клеточных технологий" Способ выделения звездчатых клеток печени
RU2802673C1 (ru) * 2022-11-07 2023-08-30 Государственное автономное учреждение здравоохранения Свердловской области "Центр специализированных видов медицинской помощи "Институт медицинских клеточных технологий" (ГАУЗ СО "ИМКТ") Способ лечения фиброза печени аллогенной трансплантацией мультипотентных мезенхимальных стромальных клеток (ММСК) лабораторных животных

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Wang et al. A toxicity study of multiple-administration human umbilical cord mesenchymal stem cells in cynomolgus monkeys
Cesselli et al. Multipotent progenitor cells are present in human peripheral blood
Pierini et al. Foxp3+ regulatory T cells maintain the bone marrow microenvironment for B cell lymphopoiesis
Frenette et al. Mesenchymal stem cell: keystone of the hematopoietic stem cell niche and a stepping-stone for regenerative medicine
US20080038231A1 (en) Processing procedure for peripheral blood stem cells
CA2649874C (en) Immune privileged and modulatory progenitor cells
Zhang et al. Cotransplantation of HLA‐identical mesenchymal stem cells and hematopoietic stem cells in Chinese patients with hematologic diseases
Li et al. Effects of bone marrow mesenchymal stem cells on hematopoietic recovery and acute graft-versus-host disease in murine allogeneic umbilical cord blood transplantation model
Lo Iacono et al. Wharton’s jelly mesenchymal stromal cells as a feeder layer for the ex vivo expansion of hematopoietic stem and progenitor cells: a review
Ueda et al. Hematopoietic capability of CD34+ cord blood cells: a comparison with CD34+ adult bone marrow cells
Jobin et al. Heterogeneity of in vitro–cultured CD34+ cells isolated from peripheral blood
Ribitsch et al. Sheep placenta cotyledons: a noninvasive source of ovine mesenchymal stem cells
RU2729931C1 (ru) Способ восстановления биохимических показателей периферической крови лабораторных животных с циррозом печени
Pörtner et al. Landscape of manufacturing process of ATMP cell therapy products for unmet clinical needs
RU2639404C1 (ru) Способ восстановления лимфоидной ткани селезенки лабораторных животных
US9650604B2 (en) Equine amniotic membrane-derived mesenchymal stem cells
Bačenková et al. Analysis of same selected immunomodulatory properties of chorionic mesenchymal stem cells
Madlambayan et al. Umbilical cord-derived stem cells for tissue therapy: current and future uses
RU2628092C1 (ru) Способ получения МСК-ассоциированных недифференцированных гемопоэтических клеток-предшественников с фенотипов CD34+/CD133+
RU2739855C1 (ru) Способ восстановления биохимических показателей периферической крови лабораторных животных с токсическим гепатитом
Rao et al. Structural and functional characterization of deceased donor stem cells: a viable alternative to living donor stem cells
Ookura et al. Adipocyte differentiation of human marrow mesenchymal stem cells reduces the supporting capacity for hematopoietic progenitors but not for severe combined immunodeficiency repopulating cells
CN101506353A (zh) 外周造血干细胞的处理方法
Pavlović et al. Animal and plant stem cells
RU2654228C1 (ru) Способ активации эритропоэза лабораторных животных после лучевой нагрузки