RU2727868C1 - Способ трансплантации фрагмента опухоли толстой кишки человека в слепую кишку иммунодефицитных мышей - Google Patents

Способ трансплантации фрагмента опухоли толстой кишки человека в слепую кишку иммунодефицитных мышей Download PDF

Info

Publication number
RU2727868C1
RU2727868C1 RU2020102652A RU2020102652A RU2727868C1 RU 2727868 C1 RU2727868 C1 RU 2727868C1 RU 2020102652 A RU2020102652 A RU 2020102652A RU 2020102652 A RU2020102652 A RU 2020102652A RU 2727868 C1 RU2727868 C1 RU 2727868C1
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
cecum
serous
distance
immersed
abdominal
Prior art date
Application number
RU2020102652A
Other languages
English (en)
Inventor
Олег Иванович Кит
Георгий Юрьевич Егоров
Алексей Юрьевич Максимов
Анна Сергеевна Гончарова
Екатерина Александровна Лукбанова
Дарья Владиславовна Ходакова
Мария Вадимовна Миндарь
Татьяна Пантелеевна Протасова
Екатерина Владиславовна Заикина
Сергей Юрьевич Ткачев
Анастасия Владимировна Волкова
Original Assignee
федеральное государственное бюджетное учреждение "Национальный медицинский исследовательский центр онкологии" Министерства здравоохранения Российской Федерации
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by федеральное государственное бюджетное учреждение "Национальный медицинский исследовательский центр онкологии" Министерства здравоохранения Российской Федерации filed Critical федеральное государственное бюджетное учреждение "Национальный медицинский исследовательский центр онкологии" Министерства здравоохранения Российской Федерации
Priority to RU2020102652A priority Critical patent/RU2727868C1/ru
Application granted granted Critical
Publication of RU2727868C1 publication Critical patent/RU2727868C1/ru

Links

Images

Classifications

    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61BDIAGNOSIS; SURGERY; IDENTIFICATION
    • A61B17/00Surgical instruments, devices or methods, e.g. tourniquets
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61PSPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P23/00Anaesthetics
    • GPHYSICS
    • G09EDUCATION; CRYPTOGRAPHY; DISPLAY; ADVERTISING; SEALS
    • G09BEDUCATIONAL OR DEMONSTRATION APPLIANCES; APPLIANCES FOR TEACHING, OR COMMUNICATING WITH, THE BLIND, DEAF OR MUTE; MODELS; PLANETARIA; GLOBES; MAPS; DIAGRAMS
    • G09B23/00Models for scientific, medical, or mathematical purposes, e.g. full-sized devices for demonstration purposes
    • G09B23/28Models for scientific, medical, or mathematical purposes, e.g. full-sized devices for demonstration purposes for medicine

Landscapes

  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Physics & Mathematics (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Nuclear Medicine, Radiotherapy & Molecular Imaging (AREA)
  • Medical Informatics (AREA)
  • Surgery (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Animal Behavior & Ethology (AREA)
  • General Physics & Mathematics (AREA)
  • Public Health (AREA)
  • Veterinary Medicine (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • Anesthesiology (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Heart & Thoracic Surgery (AREA)
  • General Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
  • Algebra (AREA)
  • Computational Mathematics (AREA)
  • Pharmacology & Pharmacy (AREA)
  • Mathematical Analysis (AREA)
  • Mathematical Optimization (AREA)
  • Mathematical Physics (AREA)
  • Pure & Applied Mathematics (AREA)
  • Business, Economics & Management (AREA)
  • Educational Administration (AREA)
  • Educational Technology (AREA)
  • Theoretical Computer Science (AREA)
  • Pharmaceuticals Containing Other Organic And Inorganic Compounds (AREA)

Abstract

Изобретение относится к медицине, а именно к экспериментальной онкологии. Вводят наркоз иммунодефицитным мышам. Послойно рассекают кожу и ткани брюшной стенки. При этом рассечение брюшной стенки производят вдоль средней линии тела, начало разреза расположено на расстоянии 20 мм от конца мечевидного отростка, конец разреза находится на расстоянии 5 мм от уретры. Слепую кишку выводят в операционную рану. На расстоянии 5 мм от крайней точки концевой части слепой кишки накладывают кисетный серозно-мышечный шов, не затягивая нитей. В концевой части слепой кишки рассекают серозно-мышечный слой длиной 3 мм. Производят инвагинацию концевой части слепой кишки, формируя таким образом карман, в который погружают фрагмент опухоли толстой кишки человека объемом 27 мм. Затягивают лигатуру. Погружают слепую кишку в брюшную полость. Послойно ушивают стенку брюшной полости. Способ позволяет получить ортотопическую пациентоподобную модель рака толстого кишечника, наиболее адекватно отражающую особенности колоректального рака человека и представляющую собой ценный инструмент для проведения доклинических исследований различных способов лечения рака толстой кишки, в том числе для исследований эффективности новых фармакологических субстанций, а также обеспечивает высокий потенциал приживления опухолевого материала. 6 ил., 1 пр.

Description

Изобретение относится к медицине, а именно к экспериментальной онкологии, и касается способа трансплантации фрагмента опухоли толстой кишки человека в слепую кишку иммунодефицитных мышей для получения ортотопической пациентоподобной модели, имеющей наиболее приближенные к человеческому организму молекулярно-биохимические и гистологические характеристики.
Рак толстой кишки по распространенности занимает лидирующие позиции среди всех онкозаболеваний (см. Егоренков В.В., Моисеенко Ф.В. Скрининг рака толстой кишки // Практическая онкология. - 2010. - Т. 11. - №2. - С. 81-87). На долю колоректального рака приходится 15% от всех первично диагностированных опухолей всех локализаций (см. Денисенко В.Л., Гаин Ю.М. Осложнения колоректального рака: проблемы и перспективы // Новости хирургии. - 2011. - Т. 19. - №1. - С. 103-111). В мире ежегодно регистрируется около 800 тысяч новых случаев рака толстой кишки. При этом пятилетняя выживаемость составляет 60% в развитых странах и около 40% в развивающихся государствах (см. Имянитов Е.Н. Клинико-молекулярные аспекты колоректального рака: этиопатогенез, профилактика, индивидуализация лечения // Практическая онкология. - 2005. - Т. 6. - №2. - С. 65-70; Земляной В.П., Трофимова Т.Н., Непомнящая С.Л., Дементьева Т.В. Современные методы диагностики и оценки степени распространенности рака ободочной и прямой кишки // Практическая онкология. - 2005. - Т. 6. - №2. - С. 71-80). В настоящее время отмечается мировая тенденция к увеличению заболеваемости и смертности от колоректального рака. При этом на 100 вновь выявленных больных данным заболеванием приходится более 70 умерших. Одной из причин данного факта является выявление заболевания на поздних стадиях (III-IV стадии) в большинстве случаев (около 70%). В связи с чем ранняя диагностика колоректального рака не может на сегодняшний день считаться удовлетворительной (см. Егоренков В.В., Моисеенко Ф.В. Скрининг рака толстой кишки // Практическая онкология. - 2010. - Т. 11. - №2. - С. 81-87; Денисенко В.Л., Гаин Ю.М. Осложнения колоректального рака: проблемы и перспективы // Новости хирургии. - 2011. - Т. 19. - №1. - С. 103-111). Главными задачами современной медицины применительно к раку толстой кишки являются решение проблемы ранней диагностики и скрининга данного заболевания, а также создание более эффективных способов лечения.
Однако следует отметить, что в последние годы средняя продолжительность жизни больных колоректальным раком была увеличена с 4-6 месяцев при симптоматической терапии до 20-24 месяцев - при проведении химиотерапии с использованием таргтных препаратов (см. Федянин М.Ю., Трякин А.А., Тюляндин С.А. Химиотерапия больных метастатическим раком толстой кишки // Онкологическая колопроктология. - 2012. - №2. - С. 26-34). Данная тенденция дает основание считать актуальным вопрос о разработке новых химиотерапевтических препаратов. При проведении доклинических исследований химических субстанций, обладающих потенциальным противоопухолевым эффектом, используются различные модели опухолевого процесса. С целью получения более объективных данных об испытуемом объекте стремятся разработать модели, наиболее адекватно отражающие реальное развитие опухоли в человеческом организме. В настоящее время такими моделями являются ортотопические пациентоподобные модели, характеризующиеся клеточным составом имплантируемой опухоли и ее клеточным микроокружением, схожими с таковыми у пациентов (см. Yu Wang, Jiujie Cui, Liwei Wang. Patient-derived xenografts: a valuable platform for clinical and preclinical research in pancreatic cancer // Chin Clin Oncol. - 2019. - №8(2): 17. P. 1-11; Холоденко И.В., Доронин И.И., Холоденко P.B. Опухолевые модели в изучении онкологических заболеваний // Иммунология. - 2013. - №5. - С. 282-286).
Известен способ создания подкожной пациентоподобной модели рака толстой кишки, при котором фрагменты опухоли трансплантировали подкожно в бок иммунодефицитных мышей (см. Mitsunobu Takeda, Jun Koseki, Hidekazu Takahashi et al. Disruption of Endolysosomal RAB5/7 Efficiently Eliminates Colorectal Cancer Stem Cells // Cancer Res. - 2019. - 79(7). - P. 1426-1437; Magdalena Cybulska, Tomasz Olesinski, Krzysztof Goryca et al. Challenges in Stratifying the Molecular Variability of Patient-Derived Colon Tumor Xenografts // BioMed Research International. - 2018. - P. 1-9; Ruidi Teng, Jingjing Zhao, Yiding Zhao et al. Chimeric Antigen Receptor-modified T Cells Repressed Solid Tumors and Their Relapse in an Established Patient-derived Colon Carcinoma Xenograft Model // J Immunother. - 2019. №2. - P. 33-42). Недостатком данного способа является имплантация опухолевого материала в сайт с чужеродным микроокружением, при влиянии которого выявляются некоторые характеристики, не соответствующие реальной картине онкогенеза.
Известен способ ортотопической трансплантации опухоли толстой кишки, при котором опухолевый материал от пациента суспендировали на клетки в соотношении 1×106 клеток в 50 мл PBS, вводили в стенку слепой кишки иммунодефицитных мышей (см. Isabel Puig, Irene Chicote, Stephan P. Tenbaum et al. A Personalized Preclinical Model to Evaluate the Metastatic Potential of Patient-Derived Colon Cancer Initiating Cells // Clinical Cancer Research. - October 29. - 2013. - P. 6787-6801). Преимуществом этого способа является ортотопический сайт трансплантации опухоли. Однако существуют литературные данные о том, что суспендированный трансплантант имеет низкую скорость развития, а также более низкий потенциал метастазирования по сравнению с несуспендированными трансплантантами (см. Трещалина Е.М. Иммунодефицитные мыши Balb/c Nude и моделирование различных вариантов опухолевого роста для доклинических исследований // Российский биотерапевтический журнал. - 2017. - Т. 16. - №16. - С. 6-13).
Известен способ трансплантации рака толстой кишки иммунодефицитным мышам, при котором фрагменты опухоли от пациента имплантировали в бок под кожу животного. А по достижении ксенотрансплантанта определенных размеров, его резецировали из тела мыши-донора, очищали от некротических участков, разрезали на мелкие фрагменты, каждый из которых подшивали при помощи 8-0 нейлонового шовного материала к брыжейке слепой кишки, предварительно выведенной в операционную рану. После этого слепая кишка возвращалась в брюшную полость, операционную рану зашивали в 2 слоя (см. Yukihiko Hiroshima, Ali Maawy, Cristina A. Metildi et al. Successful Fluorescence-Guided Surgery on Human Colon Cancer Patient-Derived Orthotopic Xenograft Mouse Models Using a Fluorophore-Conjugated Anti-CEA Antibody and a Portable Imaging System // J. of Laparoendoscopic &Advanced Surgical Techniques. - 2014. - №4. - P. 241-247; Cristina A. Metildi, Sharmeela Kaushal, George A. Luiken et al. Fluorescently-labeled chimeric anti-CEA antibody improves detection and resection of human colon cancer in an orthotopic nude mouse model // J Surg Oncol. - 2014. - 109(5). - P. 451-458). Бесспорным преимуществом данного способа является ортотопическая фрагментарная трансплантация опухолевого материала, позволяющая получить наиболее адекватную модель колоректального рака. Недостатком данного способа является то, что он предполагает минимальный контакт только с наружной стенкой слепой кишки небольшой площади, не затрагивая мышечный и подслизистый слои, благодаря чему развитие опухоли будет проходить медленно, а влияние ортотопического микроокружения будет минимальным.
Известен способ ортотопической трансплантации фрагментов опухоли толстой кишки, при котором кишечник выводится в операционную рану, в месте имплантации удаляют серозный слой и подшивают хирургический материал gelfoam (Upjohn), кишечник помещают обратно в брюшную полость, которую ушивают послойно. Через 20 дней проводят имплантацию опухолевого материала в образованный при помощи хирургического материала gelfoam (Upjohn) карман в слепой кишке (см. Xinyu Fu, Jeffrey М. Besterman, Ann Monosov et al. Models of human metastatic colon cancer in nude mice orthotopically constructed by using histologically intact patient specimens // Proc. Nati. Acad. Sci. - 1991. - P. 9345-9349). Преимуществом данного метода является ортотопическая имплантация фрагмента, соприкасающегося не только с наружной серозной стенкой кишечника, но и с подлежащими слоями. Также использование данной техники трансплантации позволяет вызвать индукцию сосудистого роста в опухоли и перитуморальной области. Существенным недостатком данного способа является большая трудоемкость всех процедур. Проведение подряд двух оперативных вмешательств в брюшной полости с интервалом 20 дней может тяжело переносится мышами и оказывать негативное влияние на послеоперационное состояние животных.
Техническим результатом предлагаемого изобретения является разработка способа трансплантации фрагмента опухоли толстой кишки человека в слепую кишку иммунодефицитных мышей, обеспечивающего высокий потенциал приживления опухолевого материала благодаря помещению фрагмента в формируемый в слепой кишке карман и обилию в районе трансплантации лимфоидной ткани, и позволяющего получить ортотопическую пациентоподобную модель рака толстого кишечника, являющуюся наиболее адекватным отражением особенностей данного заболевания у человека.
Технический результат изобретения достигается тем, что осуществляют трансплантацию фрагмента опухоли толстой кишки человека в слепую кишку иммунодефицитных мышей, включающий наркоз иммунодефицитных мышей, послойное рассечение кожи и тканей брюшной стенки, отличающийся тем, что рассечение брюшной стенки производят вдоль средней линии тела, начало разреза расположено на расстоянии 20 мм от конца мечевидного отростка, конец разреза находится на расстоянии 5 мм от уретры, слепую кишку выводят в операционную рану, на расстоянии 5 мм от крайней точки концевой части слепой кишки накладывают кисетный серозно-мышечный шов, не затягивая нитей, в концевой части слепой кишки рассекают серозно-мышечный слой длиной 3 мм, производят инвагинацию концевой части слепой кишки, формируя таким образом карман, в который погружают фрагмент опухоли толстой кишки человека объемом 27 мм3, затягивают лигатуру, погружают слепую кишку в брюшную полость, послойно ушивают стенку брюшной полости.
Способ осуществляют следующим образом.
Фрагмент рака толстой кишки после иссечения незамедлительно помещается в среду Хенкса. Непосредственно перед трансплантацией вырезают кусочки объемом 27 мм3. Время от момента резекции опухолевого материала у человека до имплантации в слепую кишку иммунодефицитной мыши не должно превышать 20 минут.
Реципиентом опухолевого материала служат иммунодефицитные мыши Balb/c Nude.
Наркоз животных осуществляют с использованием ксилазина концентрацией 20 мг/мл и золетила концентрацией 22,57 мг/мл.
Брюхо животного обрабатывают 10% раствором повидон-йода.
Для обеспечения оптимального доступа к слепой кишке иммунодефицитной мыши производят послойное рассечение кожи и тканей брюшной стенки вдоль средней линии тела. Разрез начинается на расстоянии 20 мм от конца мечевидного отростка, заканчивается на расстоянии 5 мм от уретры.
Для удобства проведения трансплантации слепую кишку выводят в операционную рану. На расстоянии 5 мм от крайней точки концевой части слепой кишки накладывают кисетный серозно-мышечный шов с использованием шовного материала пролен 5-0. Лигатуру при этом не затягивают. В концевой части слепой кишки рассекают серозно-мышечный слой длиной 3 мм, производят инвагинацию концевой части слепой кишки, формируя таким образом карман, в который погружают фрагмент опухоли толстой кишки человека. Затягивают лигатуру. Слепую кишку погружают в брюшную полость, после чего послойно ушивают стенку брюшной полости. Изобретение иллюстрируется фигурами (1-6).
На Фиг. 1. изображено наложение кисетного серозно-мышечного шва в концевой части слепой кишки иммунодефицитной мыши Balb/c Nude.
На Фиг. 2. изображено рассечение серозно-мышечного слоя в концевой части слепой кишки иммунодефицитной мыши Balb/c Nude.
На Фиг. 3. изображена инвагинация концевой части слепой кишки иммунодефицитной мыши Balb/c Nude.
На Фиг. 4. изображена имплантация фрагмента опухоли толстой кишки человека в слепую кишку иммунодефицитной мыши Balb/c Nude.
На Фиг. 5. изображена затяжка кисетного шва на слепой кишке иммунодефицитной мыши Balb/c Nude.
На Фиг. 6. изображено ушитие операционной раны иммунодефицитной мыши Balb/c Nude.
Данным способом произведена трансплантация фрагмента опухоли толстой кишки человека в слепую кишку 32 иммунодефицитных мышей Balb/c Nude.
Технико-экономическая эффективность данного способа заключается в том, что он позволяет получить ортотопическую пациентоподобную модель рака толстого кишечника, наиболее адекватно отражающую особенности колоректального рака человека и представляющую собой ценный инструмент для проведения доклинических исследований различных способов лечения рака толстой кишки, в том числе для исследований эффективности новых фармакологических субстанций.
Пример.
Данным способом был прооперирован самец иммунодефицитной мыши Balb/c Nude возрастом 7 недель массой 26 г. В качестве трансплантируемого материала служил фрагмент опухоли толстой кишки человека объемом 27 мм3, который сразу же после выделения из организма человека был помещен в среду Хенкса. Интервал между выделением опухолевого материала из донорского организма до его имплантации в тело животного составил 18 минут.
Премедикацию осуществляли при помощи ксилазина концентрацией 20 мг/мл. В качестве основного наркотизирующего вещества использовали золетила концентрацией 22,57 мг/мл.
Брюхо мыши обработали 10% раствором повидон-йода. Далее послойно рассекли кожу и ткани брюшной стенки вдоль средней линии тела. Начало разреза находилось на расстоянии 20 мм от конца мечевидного отростка, конец разреза - на расстоянии 5 мм от уретры. В операционную рану вывели слепую кишку. От крайней точки концевой части слепой кишки наложили кисетный серозно-мышечный шов при помощи пролена 5-0. Не затягивая лигатуру, в концевой части слепой кишки рассекли серозно-мышечный слой длиной 3 мм, инвагинировали концевую часть слепой кишки, сформировав при этом карман. В образованный карман в слепой кишке погрузили фрагмент опухоли толстой кишки человека. Затянули лигатуру. Слепую кишку погрузили в брюшную полость, после чего послойно ушили стенку брюшной полости.
Мышь благополучно перенесла операцию, без осложнений.

Claims (1)

  1. Способ трансплантации фрагмента опухоли толстой кишки человека в слепую кишку иммунодефицитных мышей, включающий наркоз иммунодефицитных мышей, послойное рассечение кожи и тканей брюшной стенки, отличающийся тем, что рассечение брюшной стенки производят вдоль средней линии тела, начало разреза расположено на расстоянии 20 мм от конца мечевидного отростка, конец разреза находится на расстоянии 5 мм от уретры, слепую кишку выводят в операционную рану, на расстоянии 5 мм от крайней точки концевой части слепой кишки накладывают кисетный серозно-мышечный шов, не затягивая нитей, в концевой части слепой кишки рассекают серозно-мышечный слой длиной 3 мм, производят инвагинацию концевой части слепой кишки, формируя таким образом карман, в который погружают фрагмент опухоли толстой кишки человека объемом 27 мм3, затягивают лигатуру, погружают слепую кишку в брюшную полость, послойно ушивают стенку брюшной полости.
RU2020102652A 2020-01-22 2020-01-22 Способ трансплантации фрагмента опухоли толстой кишки человека в слепую кишку иммунодефицитных мышей RU2727868C1 (ru)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2020102652A RU2727868C1 (ru) 2020-01-22 2020-01-22 Способ трансплантации фрагмента опухоли толстой кишки человека в слепую кишку иммунодефицитных мышей

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2020102652A RU2727868C1 (ru) 2020-01-22 2020-01-22 Способ трансплантации фрагмента опухоли толстой кишки человека в слепую кишку иммунодефицитных мышей

Publications (1)

Publication Number Publication Date
RU2727868C1 true RU2727868C1 (ru) 2020-07-24

Family

ID=71741304

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
RU2020102652A RU2727868C1 (ru) 2020-01-22 2020-01-22 Способ трансплантации фрагмента опухоли толстой кишки человека в слепую кишку иммунодефицитных мышей

Country Status (1)

Country Link
RU (1) RU2727868C1 (ru)

Cited By (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2742754C1 (ru) * 2020-09-30 2021-02-10 федеральное государственное бюджетное учреждение "Национальный медицинский исследовательский центр онкологии" Министерства здравоохранения Российской Федерации Способ трансплантации скаффолда из сплава титана с заселенной культурой клеток в нижнюю челюсть иммунодефицитных мышей
RU2753144C1 (ru) * 2020-12-02 2021-08-12 федеральное государственное бюджетное учреждение "Национальный медицинский исследовательский центр онкологии" Министерства здравоохранения Российской Федерации Способ трансплантации фрагмента опухоли толстой кишки человека в нисходящий отдел толстой кишки иммунодефицитных мышей

Citations (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2457546C1 (ru) * 2011-03-09 2012-07-27 Учреждение Российской академии медицинских наук Научный центр реконструктивной и восстановительной хирургии Сибирского отделения РАМН (НЦРВХ СО РАМН) Способ моделирования аденокарциномы толстой кишки человека
RU2552667C1 (ru) * 2014-05-19 2015-06-10 Михаил Юрьевич Бяхов Способ моделирования лимфомы слепой кишки
CN110150228A (zh) * 2019-06-04 2019-08-23 于涛 一种糖尿病小鼠结直肠肿瘤模型的构建方法

Patent Citations (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2457546C1 (ru) * 2011-03-09 2012-07-27 Учреждение Российской академии медицинских наук Научный центр реконструктивной и восстановительной хирургии Сибирского отделения РАМН (НЦРВХ СО РАМН) Способ моделирования аденокарциномы толстой кишки человека
RU2552667C1 (ru) * 2014-05-19 2015-06-10 Михаил Юрьевич Бяхов Способ моделирования лимфомы слепой кишки
CN110150228A (zh) * 2019-06-04 2019-08-23 于涛 一种糖尿病小鼠结直肠肿瘤模型的构建方法

Non-Patent Citations (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
HIROSHIMA YUKIHIKO et al. Successful fluorescence-guided surgery on human colon cancer patient-derived Orthotopic Xenograft Mouse Models Using a Fluorophore-Conjugated Anti-CEA Antibody and a Portable Imaging System. J Laparoendosc Adv Surg Tech A. 2014 Apr 1; 24(4): 241–247. *
КИТ О.И. и др. Методы создания ортотопических моделей рака толстой кишки человека на иммунодефицитных мышах, Вопросы онкологии, 2019, т.65, 2, с.303-307. *
КИТ О.И. и др. Методы создания ортотопических моделей рака толстой кишки человека на иммунодефицитных мышах, Вопросы онкологии, 2019, т.65, 2, с.303-307. HIROSHIMA YUKIHIKO et al. Successful fluorescence-guided surgery on human colon cancer patient-derived orthotopic xenograft mouse models using a fluorophore-conjugated anti-CEA antibody and a portable imaging system. Journal of laparoendoscopic & advanced surgical techniques. Part A, 2014, vol. 24, 4, 241-247. FU X Y et al. Models of human metastatic colon cancer in nude mice orthotopically constructed by using histologically intact patient specimens. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America, 1991, vol. 88,20, 9345-9349. *

Cited By (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2742754C1 (ru) * 2020-09-30 2021-02-10 федеральное государственное бюджетное учреждение "Национальный медицинский исследовательский центр онкологии" Министерства здравоохранения Российской Федерации Способ трансплантации скаффолда из сплава титана с заселенной культурой клеток в нижнюю челюсть иммунодефицитных мышей
RU2753144C1 (ru) * 2020-12-02 2021-08-12 федеральное государственное бюджетное учреждение "Национальный медицинский исследовательский центр онкологии" Министерства здравоохранения Российской Федерации Способ трансплантации фрагмента опухоли толстой кишки человека в нисходящий отдел толстой кишки иммунодефицитных мышей

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Abulafi et al. Local recurrence of colorectal cancer: the problem, mechanisms, management and adjuvant therapy
RU2727868C1 (ru) Способ трансплантации фрагмента опухоли толстой кишки человека в слепую кишку иммунодефицитных мышей
Cao et al. Tumor-specific fluorescent antibody imaging enables accurate staging laparoscopy in an orthotopic model of pancreatic cancer
Metildi et al. Fluorescence-guided surgery of human colon cancer increases complete resection resulting in cures in an orthotopic nude mouse model
PORTIS et al. Laparoscopic augmentation cystoplasty with different biodegradable grafts in an animal model
Wiig, MD et al. Mesorectal excision for rectal cancer: a view from Europe
Liu et al. Magnetic anastomosis for biliojejunostomy: first prospective clinical trial
Kobayashi et al. Closure of iatrogenic large mucosal and full-thickness defects of the stomach with endoscopic interrupted sutures in in vivo porcine models: are they durable enough?
Ye et al. Construction of esophagogastric anastomosis in rabbits with magnetic compression technique
Zhang et al. A novel micromagnetic ring used for biliary-enteric anastomosis in rats
Donegan History of breast cancer
Liu et al. Laparoscopic magnetic compression biliojejunostomy: a preliminary clinical study
Mao et al. Robot-Assisted Laparoscopic Radical Cystectomy and Modified Y-Shaped Ileal Orthotopic Neobladder Reconstruction
McCue et al. Experimental carcinogenesis at sutured and sutureless colonic anastomoses
Martin et al. Expression of the 17-1A antigen in gastric and gastro-oesophageal junction adenocarcinomas: a potential immunotherapeutic target?
Zhang et al. Esophageal mucosal autograft for preventing stricture after widespread endoscopic submucosal dissection of superficial esophageal lesions
RU2709835C1 (ru) Способ оптимального доступа к абдоминальному отделу пищевода иммунодефицитных мышей при ортотопической трансплантации фрагмента опухоли пищевода человека
RU2725273C1 (ru) Способ трансплантации фрагмента нейроэндокринной опухоли поджелудочной железы человека в поджелудочную железу иммунодефицитных мышей
RU2689856C1 (ru) Способ формирования лапароскопического интракорпорального термино-терминального циркулярно-перитонизированного толстокишечного анастомоза
US20080063715A1 (en) Extracellular matrix to treat malignancy in mammals
Upton et al. Multilayered epithelium may be found in patients with Barrett’s epithelium and dysplasia or adenocarcinoma
RU2753144C1 (ru) Способ трансплантации фрагмента опухоли толстой кишки человека в нисходящий отдел толстой кишки иммунодефицитных мышей
Ishikawa et al. Anastomotic recurrence after laparoscopic distal gastrectomy with delta-shaped anastomosis: report of a case
RU2740443C1 (ru) Способ трансплантации фрагмента опухоли рака яичника человека в яичник самки иммунодефицитной мыши
RU2565836C1 (ru) Способ микрохирургической реконструкции глотки и шейного отдела пищевода толстокишечно-сальниковым аутотрансплантатом у онкологического больного