RU2726484C1 - Diagnostic technique for rickettsial diseases group of spotted fever, immunoassay diagnostic test system for implementation thereof - Google Patents

Diagnostic technique for rickettsial diseases group of spotted fever, immunoassay diagnostic test system for implementation thereof Download PDF

Info

Publication number
RU2726484C1
RU2726484C1 RU2019113159A RU2019113159A RU2726484C1 RU 2726484 C1 RU2726484 C1 RU 2726484C1 RU 2019113159 A RU2019113159 A RU 2019113159A RU 2019113159 A RU2019113159 A RU 2019113159A RU 2726484 C1 RU2726484 C1 RU 2726484C1
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
rickettsia
group
immunosorbent
antibodies
antigens
Prior art date
Application number
RU2019113159A
Other languages
Russian (ru)
Inventor
Татьяна Александровна Чеканова
Алексей Викторович Костарной
Алексей Владимирович Кондратьев
Александр Леонидович Гинцбург
Original Assignee
федеральное государственное бюджетное учреждение "Национальный исследовательский центр эпидемиологии и микробиологии имени почетного академика Н.Ф. Гамалеи" Министерства здравоохранения Российской Федерации
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by федеральное государственное бюджетное учреждение "Национальный исследовательский центр эпидемиологии и микробиологии имени почетного академика Н.Ф. Гамалеи" Министерства здравоохранения Российской Федерации filed Critical федеральное государственное бюджетное учреждение "Национальный исследовательский центр эпидемиологии и микробиологии имени почетного академика Н.Ф. Гамалеи" Министерства здравоохранения Российской Федерации
Priority to RU2019113159A priority Critical patent/RU2726484C1/en
Application granted granted Critical
Publication of RU2726484C1 publication Critical patent/RU2726484C1/en

Links

Images

Classifications

    • GPHYSICS
    • G01MEASURING; TESTING
    • G01NINVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
    • G01N33/00Investigating or analysing materials by specific methods not covered by groups G01N1/00 - G01N31/00
    • G01N33/48Biological material, e.g. blood, urine; Haemocytometers
    • G01N33/50Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing
    • G01N33/53Immunoassay; Biospecific binding assay; Materials therefor
    • G01N33/531Production of immunochemical test materials
    • GPHYSICS
    • G01MEASURING; TESTING
    • G01NINVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
    • G01N33/00Investigating or analysing materials by specific methods not covered by groups G01N1/00 - G01N31/00
    • G01N33/48Biological material, e.g. blood, urine; Haemocytometers
    • G01N33/50Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing
    • G01N33/53Immunoassay; Biospecific binding assay; Materials therefor
    • G01N33/543Immunoassay; Biospecific binding assay; Materials therefor with an insoluble carrier for immobilising immunochemicals

Abstract

FIELD: biotechnology; medicine.SUBSTANCE: group of inventions refers to clinical laboratory diagnostics, biotechnology and medicine. Disclosed is a method of producing inactivated soluble purified protein-lipopolysaccharide antigenic substancefor preparing a main component of a test system - an immunosorbent, comprising inactivated lyophilized fully solubleantigen resuspension, then the antigen suspension is subjected to ultrasonic treatment with subsequent centrifugation and the supernatant is extracted, then the supernatant is subjected to the chromatography on the chromatographic sorbent column, after which the fractions are evaluated for specific antigenic activity in the EIA and the fractions of the first peak are further combined and adjacent to it, which demonstrated in EIA best ratio of average values of optical density of OD of positive control samples to average values of optical density of OD of negative control samples. Also disclosed are a test system comprising said inactivated soluble purified protein-lipopolysaccharide antigenic substance, and a diagnostic technique for rickettsial diseases using said test system.EFFECT: group of inventions provides higher sensitivity, information value and specificity of the method for diagnosing rickettsial diseases, conducted by indirect solid-phase EIA technique.4 cl, 2 dwg, 3 tbl, 5 ex

Description

Область техникиTechnical field

Изобретение относится к области клинической лабораторной диагностики, биотехнологии и медицины, и касается способа диагностики риккетсиозов группы клещевой пятнистой лихорадки и иммуноферментной диагностической тест-системы для его осуществления.The invention relates to the field of clinical laboratory diagnostics, biotechnology and medicine, and relates to a method for diagnosing rickettsioses of the group of tick-borne spotted fever and an enzyme immunoassay diagnostic test system for its implementation.

Уровень техникиState of the art

Для серологической лабораторной диагностики риккетсиозов группы клещевой пятнистой лихорадки (КПЛ) используют общеизвестные методы: реакцию связывания комплемента (РСК), реакцию непрямой иммунофлуоресценции (РНИФ), реакцию иммунофлуоресценции (РИФ), реакцию агглютинации, реакцию непрямой гемагглютинации, иммуноферментный анализ (ИФА), иммунный блоттинг и другие на основе, как правило, нативных риккетсиальных антигенов. Исходным материалом для приготовления таких антигенов служат зараженные первичными культурами патогенных риккетсий, например, хорошо охарактеризованными штаммами, овокультуры (накопление проводят в желточном мешке развивающихся куриных эмбрионов), адаптированные клеточные культуры, риккетсиозно-тканевый материал, полученный из органов зараженных восприимчивых животных. В зависимости от метода очистки получают корпускулярные, растворимые или цельнорастворимые антигены риккетсий. Корпускулярный антиген риккетсий представляет собой очищенные риккетсии (корпускулы), полученные, как правило, методом сочетанной эфирной обработки и дифференциального центрифугирования. Растворимый антиген риккетсий, чаще всего, выделяют водно-фенольной экстракцией риккетсиальных суспензий с последующим центрифугированием. Цельнорастворимый антиген наряду с растворимой антигенной фракцией содержит очищенные корпускулы [Здродовский П.Ф., Голиневич Е.М. Учение о риккетсиях и риккетсиозах. Москва, «Медицина», 1972, 495 с].For serological laboratory diagnostics of rickettsioses of the tick-borne spotted fever (LPF) group, well-known methods are used: complement fixation reaction (CSC), indirect immunofluorescence reaction (RNIF), immunofluorescence reaction (RIF), agglutination reaction, indirect hemagglutinated immunoassay test) blotting and others based, as a rule, on native rickettsial antigens. The starting material for the preparation of such antigens are pathogenic rickettsia infected with primary cultures, for example, well-characterized strains, ovocultures (accumulation is carried out in the yolk sac of developing chicken embryos), adapted cell cultures, rickettsial tissue material obtained from the organs of infected susceptible animals. Depending on the method of purification, corpuscular, soluble or whole-soluble antigens of rickettsia are obtained. The corpuscular antigen of rickettsia is a purified rickettsia (corpuscle) obtained, as a rule, by the method of combined ether treatment and differential centrifugation. Soluble rickettsial antigen is most often isolated by water-phenol extraction of rickettsial suspensions followed by centrifugation. The whole-soluble antigen, along with the soluble antigenic fraction, contains purified corpuscles [Zdrodovsky P.F., Golinevich E.M. The doctrine of rickettsia and rickettsioses. Moscow, "Medicine", 1972, 495 s].

Известно, что ИФА обладает высокими показателями чувствительности, специфичности, метод легко воспроизводим, доступен. Известен способ лабораторной диагностики клещевого риккетсиоза с использованием иммуноферментного анализа для определения антител к антигену Rickettsia sibirica по патенту RU 2477860 (прототип) (Рудаков Н.В., Абрамова Н.В., Пеньевская Н.А., Самойленко И.Е., Шпынов С.Н., Решетникова Т.А. Способ лабораторной диагностики клещевого риккетсиоза с использованием иммуноферментного анализа для определения антител к антигену Rickettsia sibirica. Патент RU 2477860, приоритет от 13.08.2010 г.), по которому для его осуществления в качестве антигена для приготовления иммуносорбента используют «Диагностикум риккетсиозный Сибирика сухой для РСК» производства НПО «Микроген», Россия. В соответствии с описанием патента, основу этого диагностикума составляет цельнорастворимый антиген Rickettsia sibirica. Согласно Инструкции по применению производителя НПО «Микроген» «Диагностикум риккетсиозный Сибирика сухой для РСК» представляет собой лиофилизированные антигенные комплексы, выделенные методом эфирной обработки из риккетсий Сибирика, выращенных (накопленных) в желточных мешках куриных эмбрионов и инактивированных фенолом. Иммуноферментная тест-система на его основе позволяет выявлять в сыворотке крови человека антитела классов М и G к Rickettsia sibirica и осуществлять серологическую диагностику клещевого риккетсиоза с чувствительностью, превосходящей РСК. Недостатком антигена, используемого авторами патента для приготовления иммуносорбента иммуноферментной тест-системы, является то, что он, несмотря на проводимую в производственных условиях очистку, содержит примеси тканей оболочек желточных мешков куриных развивающихся эмбрионов (овокультур), что может привести к ложноположительным результатам. Антитела к антигенным структурам тканей овокультур могут встречаться у лиц, страдающих непереносимостью компонентов куриного яйца (аллергические реакции, развивающиеся, как правило, на основные аллергены - овальбумин, овамукоид, лизоцим, кональбумин), или по другим причинам (например, антитела к лизоциму повышаются у больных язвенным колитом и при ревматоидных васкулитах). Доказательством специфической иммунореактивности антител в исследуемом образце исключительно на риккетсиальный антиген является отсутствие реактивности образца с контрольным антигеном. В случае накопления риккетсий (получения антигенов) в овокультурах в качестве такого контрольного антигена может служить гомогенизат незараженных риккетсиями тканей оболочек желточного мешка развивающегося куриного эмбриона. Использование панели сывороток крови людей, страдающих аллергическими реакциями на компоненты куриного яйца, показало, что в ИФА, где для приготовления иммуносорбента использован «Диагностикум риккетсиозный Сибирика сухой для РСК», были выявлены ложноположительные значения, подтвержденные перекрестной иммунореактивностью с контрольным антигеном. Подробное доказательство этому приведено в примере 3. Таким образом, для повышения специфичности способа диагностики риккетсиозов необходима высокая степень очистки используемых риккетсиальных антигенов от примесей среды культивирования (накопления).It is known that ELISA has high sensitivity, specificity, the method is easily reproducible and available. A known method for laboratory diagnosis of tick-borne rickettsiosis using enzyme-linked immunosorbent assay to determine antibodies to the antigen Rickettsia sibirica according to patent RU 2477860 (prototype) (Rudakov N.V., Abramova N.V., Penievskaya N.A., Samoilenko I.E., Shpinov S.N., Reshetnikova T.A. Method for laboratory diagnosis of tick-borne rickettsiosis using enzyme-linked immunosorbent assay to determine antibodies to Rickettsia sibirica antigen Patent RU 2477860, priority from 13.08.2010), according to which for its implementation as an antigen for preparation immunosorbent is used "Diagnosticum rickettsial Sibirica dry for RSK" produced by NPO Microgen, Russia. In accordance with the description of the patent, the basis of this diagnosticum is the whole-soluble antigen of Rickettsia sibirica. According to the Instructions for use of the manufacturer NPO Microgen, Diagnosticum Rickettsial Sibirica dry for RSK is lyophilized antigenic complexes isolated by ether treatment from Siberian rickettsia grown (accumulated) in the yolk sacs of chicken embryos and inactivated with phenol. An enzyme-linked immunosorbent assay system based on it allows detecting antibodies of classes M and G to Rickettsia sibirica in human blood serum and performing serological diagnostics of tick-borne rickettsiosis with a sensitivity exceeding CSC. The disadvantage of the antigen used by the authors of the patent for the preparation of the immunosorbent of the enzyme-linked immunosorbent assay is that, despite the cleaning carried out in production conditions, it contains impurities of the tissues of the yolk sac shells of developing chicken embryos (ovocultures), which can lead to false positive results. Antibodies to the antigenic structures of ovoculture tissues can be found in individuals suffering from intolerance to the components of chicken eggs (allergic reactions, which usually develop to the main allergens - ovalbumin, ovamucoid, lysozyme, conalbumin), or for other reasons (for example, antibodies to lysozyme increase in patients with ulcerative colitis and rheumatoid vasculitis). Evidence of the specific immunoreactivity of antibodies in the test sample exclusively for the rickettsial antigen is the absence of reactivity of the sample with the control antigen. In the case of accumulation of rickettsiae (obtaining antigens) in ovocultures, a homogenizate of tissues of the yolk sac of a developing chicken embryo not infected with rickettsia can serve as such a control antigen. The use of a panel of blood sera from people suffering from allergic reactions to the components of chicken eggs showed that in ELISA, where the "Diagnosticum rickettsial Sibirica dry for RSK" was used for the preparation of immunosorbent, false positive values were revealed, confirmed by cross-immunoreactivity with a control antigen. A detailed proof of this is given in example 3. Thus, to increase the specificity of the method for diagnosing rickettsial diseases, a high degree of purification of the used rickettsial antigens from impurities of the cultivation medium (accumulation) is required.

Известно, что для серологической диагностики риккетсиозов возможно использование не цельного нативного антигена, а выделенного из него липополисахарида (ЛПС) или белков. Так, компания «Fuller Laboratories», США (http://www.fullerlabs.com) для производства иммуноферментных тест-систем с целью определения IgG к антигенам группы КПЛ использует ЛПС, а для выявления антител класса М - поверхностные антигены OmpA и/или OmpB. Компания «Vircell», Испания для обнаружения антител классов M и G к антигенам риккетсий группы КПЛ (в частности, Rickettsia conorii) использует единый инактивированный нативный антиген Rickettsia conorii, однако детальной информации производитель об этом антигене не раскрывает.It is known that for the serological diagnosis of rickettsioses, it is possible to use not the whole native antigen, but the lipopolysaccharide (LPS) or proteins isolated from it. For example, Fuller Laboratories, USA (http://www.fullerlabs.com) uses LPS for the production of enzyme-linked immunosorbent assays to determine IgG to antigens of the LP group, and OmpA surface antigens and / or OmpB. The Vircell company, Spain, uses a single inactivated native Rickettsia conorii antigen to detect antibodies of classes M and G to antigens of the Rickettsia conorii group (in particular, Rickettsia conorii), but the manufacturer does not disclose detailed information about this antigen.

Известные коммерческие иммуноферментные тест-системы для диагностики риккетсиозов группы КПЛ предназначены для выявления в сыворотке или плазме крови человека специфических антител двух классов - М (IgM) и G (IgG).Known commercial enzyme-linked immunosorbent assay systems for diagnosing rickettsioses of the LPL group are designed to detect specific antibodies of two classes in human serum or plasma - M (IgM) and G (IgG).

Раскрытие изобретенияDisclosure of invention

Техническая задача изобретения состоит в повышении чувствительности, информативности и специфичности способа диагностики риккетсиозов группы КПЛ, проводимого методом непрямого твердофазного иммуноферментного анализа.The technical problem of the invention is to increase the sensitivity, information content and specificity of the method for diagnosing rickettsioses of the LP group, carried out by the method of indirect enzyme-linked immunosorbent assay.

Техническая задача решается за счет того, что авторами разработан способ диагностики риккетсиозов группы клещевой пятнистой лихорадки методом твердофазного иммуноферментного анализа, заключающийся в том, что в сыворотке или плазме крови человека проводят раздельное дифференциальное выявление антител классов М, G и А, а иммуносорбент получают на основе инактивированной растворимой очищенной белково-липополисахаридной антигенной субстанции, выделенной из суспензии антигенов Rickettsia sibirica.The technical problem is solved due to the fact that the authors have developed a method for diagnosing rickettsioses of the group of tick-borne spotted fever by the method of enzyme-linked immunosorbent assay, which consists in the fact that separate differential detection of antibodies of classes M, G and A is carried out in human serum or plasma, and the immunosorbent is obtained on the basis of inactivated soluble purified protein-lipopolysaccharide antigenic substance isolated from a suspension of Rickettsia sibirica antigens.

Разработан также способ получения инактивированной растворимой очищенной белково-липополисахаридной антигенной субстанции, заключающийся в ультразвуковой обработке риккетсиальных антигенов, предварительно ресуспендированных в буфере 10mM трис-HCl и 0,5 M хлорида натрия, рН-7,4-7,6, содержащем 10% изопропанол или 8 М мочевину, последующеем центрифугировании и гель-фильтрации супернатанта на колонке с хроматографическим сорбентом, дальнейшем объединении фракции первого пика и соседних с ним, демонстрирующих при проверке в ИФА наилучшее соотношение сигнала оптической плотности положительных образцов сывороток или плазмы крови человека, содержащих антитела к антигенам риккетсий группы клещевой пятнистой лихорадки, к оптической плотности отрицательных контрольных образцов сывороток или плазмы крови человека, не содержащих антитела к антигенам риккетсий группы клещевой пятнистой лихорадки. При этом ультразвуковую обработку предварительно ресуспендированных риккетсиальных антигенов проводят в диапазоне частот 15-23 кГц в течение 15-30 минут, а центрифугирование проводят при 10000 -12000g.A method has also been developed for obtaining inactivated soluble purified protein-lipopolysaccharide antigenic substance, which consists in ultrasonic treatment of rickettsial antigens previously resuspended in a buffer of 10 mM Tris-HCl and 0.5 M sodium chloride, pH-7.4-7.6, containing 10% isopropanol or 8 M urea, subsequent centrifugation and gel filtration of the supernatant on a column with a chromatographic sorbent, further combining the fraction of the first peak and those adjacent to it, demonstrating the best ratio of the optical density signal of positive human serum or plasma samples containing antibodies to antigens when checked in ELISA rickettsiae of the tick-borne spotted fever group, to the optical density of negative control samples of human serum or plasma that do not contain antibodies to the antigens of the rickettsiae of the tick-borne spotted fever group. In this case, ultrasonic treatment of previously resuspended rickettsial antigens is carried out in the frequency range of 15-23 kHz for 15-30 minutes, and centrifugation is carried out at 10,000 -12,000g.

Создана также иммуноферментная диагностическая тест-система для осуществления способа диагностики риккетсиозов группы клещевой пятнистой лихорадки, которая включает:An enzyme immunoassay diagnostic test system has also been created for implementing a method for diagnosing rickettsioses of the tick-borne spotted fever group, which includes:

иммуносорбент, полученный на основе инактивированной растворимой очищенной белково-липополисахаридной антигенной субстанции, выделенной из суспензии риккетсиальных антигенов группы клещевой пятнистой лихорадки,immunosorbent obtained on the basis of inactivated soluble purified protein-lipopolysaccharide antigenic substance isolated from a suspension of rickettsial antigens of the tick-borne spotted fever group,

три конъюгата: анти-IgA человека, анти-IgM человека и анти-IgG человека, меченых пероксидазой хрена,three conjugates: human anti-IgA, human anti-IgM and human anti-IgG, labeled with horseradish peroxidase,

вспомогательные растворы для проведения ИФА,auxiliary solutions for ELISA,

положительный и отрицательный контрольные образцы:positive and negative control samples:

K+ и K.K + and K.

Причем в иммуноферментной диагностической тест-системе в качестве вспомогательных растворов используют раствор для разведения образцов, раствор для разведения конъюгатов, хромоген 3',5' - тетраметилбензидин, стоп-реагент, концентрат фосфатно-солевового раствора с твином 20 - ФСР-Т. А в качестве положительного и отрицательного контрольных образцов - K+ и K - соответственно - используют сыворотку или плазму крови человека или пул сывороток или плазм крови человека, содержащих и соответственно не содержащих специфические антитела классов А, М, G к антигенам риккетсий группы КПЛ, инактивированные прогреванием. Создан также способ диагностики риккетсиозов группы клещевой пятнистой лихорадки с использованием иммуноферментной диагностической тест-системы, заключающийся в том, что в лунки параллельных рядов иммуносорбента вносят по 100 мкл в лунку разведения исследуемых образцов сыворотки или плазмы крови человека и контрольных образцов K+ и K-, приготовленных с применением раствора для разведения образцов в начальных разведениях 1: 10 для выявления специфических антител класса А; 1: 20 для выявления антител класса M; 1: 40 для выявления специфических антител класса G, затем проводят инкубирование разведенных исследуемых и контрольных образцов при 37-38°C в течение 45-60 мин, иммуносорбент промывают рабочим раствором ФСР-Т 5-6 раз, вносят в соответствующие ряды иммуносорбента по 100 мкл в лунку рабочие разведения конъюгатов анти-IgA человека, анти-IgM человека и анти-IgG человека, меченых пероксидазой хрена, проводят инкубирование при 37-38°C в течение 30 - 60 мин, иммуносорбент промывают ФСР-Т 5-6 раз, в каждую лунку иммуносорбента вносят по 100 мкл хромогена ТМБ и выдерживают 10-30 мин при комнатной температуре, защищая планшет от прямого света, далее ферментативную реакцию останавливают добавлением 50-100 мкл стоп-реагента и проводят спектрометрическое измерение оптической плотности ОП при длине волны 450 нм с возможным применением референс-волны 620-680 нм, раздельно вычисляют пороговое значение ОПкрит для каждого класса антител по формуле:Moreover, in the immunoassay diagnostic test system, a solution for diluting samples, a solution for diluting conjugates, chromogen 3 ', 5' - tetramethylbenzidine, stop reagent, concentrate of phosphate-saline solution with tween 20 - FSR-T are used as auxiliary solutions. And as positive and negative control samples - K + and K - respectively - use human serum or plasma or a pool of human serum or plasma containing and, respectively, not containing specific antibodies of classes A, M, G to the antigens of rickettsia of the LP group, inactivated by heating ... A method has also been created for the diagnosis of rickettsioses of the tick-borne spotted fever group using an enzyme immunoassay diagnostic test system, which consists in the fact that 100 μl are added to the wells of parallel rows of the immunosorbent into the well of the dilution of the test samples of human serum or plasma and control samples K + and K- prepared using a solution for diluting samples in initial dilutions of 1: 10 to detect specific antibodies of class A; 1:20 for detecting class M antibodies; 1: 40 to detect specific antibodies of class G, then the diluted test and control samples are incubated at 37-38 ° C for 45-60 minutes, the immunosorbent is washed with a working solution of FSR-T 5-6 times, and 100 times are added to the corresponding rows of the immunosorbent μl per well, working dilutions of human anti-IgA, human anti-IgM and human anti-IgG conjugates labeled with horseradish peroxidase are incubated at 37-38 ° C for 30-60 minutes, the immunosorbent is washed with FSR-T 5-6 times, 100 μl of TMB chromogen is added to each well of the immunosorbent and kept for 10-30 minutes at room temperature, protecting the plate from direct light, then the enzymatic reaction is stopped by adding 50-100 μl of stop reagent and spectrometric measurement of optical density of OP is carried out at a wavelength of 450 nm with the possible use of a reference wave of 620-680 nm, the OPcrit threshold value for each class of antibodies is calculated separately using the formula:

ОПкрит = среднее значение ОП K- +0,2,ODcrit = average value of OD K- +0.2,

где ОП K- - среднее значение оптической плотности в лунках соответствующих рядов с внесенным отрицательным контрольным образцом K-.where OD K- is the average value of optical density in the wells of the corresponding rows with a negative control sample K-.

Описание фигурDescription of figures

На Фиг. 1FIG. 1

представлена типичная хроматограмма, полученная на заключительной стадии обработки и очистки суспензии первичных антигенов Rickettsia sibirica. Продемонстирован профиль элюции супернатанта после ультразвуковой обработки суспензии цельнорастворимого антигена Rickettsia sibirica. Инактивированная растворимая очищенная белково-липополисахаридная антигенная субстанция получается в результате объединения фракций первого пика и некоторых соседних с ним, которые продемонстрировали в ИФА наилучшее соотношение средних значений оптической плотности (ОП) положительных контрольных образцов, содержащих антитела к антигенам риккетсий группы КПЛ, к средним значениям ОП отрицательных контрольных образцов, не содержащих антитела к антигенам риккетсий группы КПЛ.shows a typical chromatogram obtained at the final stage of processing and purification of a suspension of primary antigens of Rickettsia sibirica. The elution profile of the supernatant after ultrasonic treatment of a suspension of the Rickettsia sibirica whole-soluble antigen was demonstrated. Inactivated soluble purified protein-lipopolysaccharide antigenic substance is obtained as a result of combining the fractions of the first peak and some adjacent to it, which demonstrated in ELISA the best ratio of the mean values of optical density (OD) of positive control samples containing antibodies to antigens of rickettsia from the LP group, to the average values of OD negative control samples that do not contain antibodies to the antigens of the rickettsia group of the LP.

На оси Х отмечены фракции 1-30 (объем каждой фракции - 1,5 мл), общий объем фазы, прошедшей через колонку - 45 мл; ось Y - оптическая плотность (детекция при двух длинах волн 260 нм и 280 нм).Fractions 1-30 are marked on the X-axis (the volume of each fraction is 1.5 ml), the total volume of the phase passing through the column is 45 ml; Y-axis - optical density (detection at two wavelengths 260 nm and 280 nm).

На Фиг. 2FIG. 2

приведен электрофорез инактивированной растворимой очищенной белково-липополисахаридной антигенной субстанции в полиакриламидном геле, окраска EZBluetmGelStainingReagent (Sigma-Aldrich, США). Для характеристики полученной инактивированной растворимой очищенной белково-липополисахаридной оценивается содержание белка и бактериальных липополисахаридов.shows electrophoresis of inactivated soluble purified protein-lipopolysaccharide antigenic substance in a polyacrylamide gel, stained with EZBlue tm GelStainingReagent (Sigma-Aldrich, USA). To characterize the obtained inactivated soluble purified protein-lipopolysaccharide, the content of protein and bacterial lipopolysaccharides is estimated.

1 - маркер, 2 - инактивированная растворимая очищенная белково-липополисахаридная субстанция.1 - marker, 2 - inactivated soluble purified protein-lipopolysaccharide substance.

РАСКРЫТИЕ ИЗОБРЕТЕНИЯDISCLOSURE OF THE INVENTION

Технический результат изобретения достигается дополнительной обработкой и очисткой первичных суспензий цельнорастворимых или корпускулярных или растворимых антигенов Rickettsia sibirica. Для этого инактивированные риккетсиальные антигены ресуспендируют в буфере, например, состава 10mM трис-HCl и 0,5 M хлорида натрия, рН-7,4-7,6, содержащем 10% изопропанол или 8 М мочевину, подвергают ультразвуковой обработке в диапазоне частот 15-23 кГц, в течение 15-30 минут с периодическим охлаждением с применением подходящей модели ультразвукового дезинтегратора. Полученную суспензию центрифугируют при 10000 - 12000 g, отбирают супернатант и проводят гель-фильтрацию супернатанта (растворимого антигена) на колонке, заполненной хроматографическим сорбентом, например, сорбентом Superdex-200. Фракции оценивают на специфическую антигенную активность в ИФА с применением контрольных сывороток крови человека, содержащих и не содержащих специфические антитела к антигенам риккетсий группы КПЛ. Фракции первого пика и некоторые соседние с ним, демонстрирующие при проверке в ИФА наилучшее соотношение сигнала ОП положительных контрольных образцов (содержащих антитела к антигенам риккетсий группы КПЛ) к ОП отрицательных контрольных образцов (не содержащих антитела к антигенам риккетсий группы КПЛ), объединяют и используют в дальнейшем для получения иммуносорбента иммуноферментной тест-системы. Количественное определение белка оценивают спектрофотометрически по одной из известных методик (ОФС.1.2.3.0012.15. Определение белка), количественное определение бактериальных липополисахаридов оценивают в ЛАЛ-тесте по одной из регламентированных методик (ОФС.1.2.4.0006.15. Бактериальные эндотоксины).The technical result of the invention is achieved by additional processing and purification of primary suspensions of whole-soluble or corpuscular or soluble antigens of Rickettsia sibirica. For this, inactivated rickettsial antigens are resuspended in a buffer, for example, 10 mM Tris-HCl and 0.5 M sodium chloride, pH 7.4-7.6, containing 10% isopropanol or 8 M urea, and subjected to ultrasonic treatment in the frequency range 15 -23 kHz, for 15-30 minutes with periodic cooling using a suitable model of ultrasonic disintegrator. The resulting suspension is centrifuged at 10,000 - 12,000 g, the supernatant is taken, and the supernatant (soluble antigen) is gel-filtered on a column filled with a chromatographic sorbent, for example, Superdex-200 sorbent. Fractions are assessed for specific antigenic activity in ELISA using control human blood sera, containing and not containing specific antibodies to the antigens of rickettsiae of the LP group. The fractions of the first peak and some adjacent to it, demonstrating the best ratio of the signal of the OD of positive control samples (containing antibodies to antigens of the Rickettsia LP group) to the OD of negative control samples (not containing antibodies to the antigens of the Rickettsia LP group), are combined and used in further to obtain an immunosorbent enzyme immunoassay test system. The quantitative determination of protein is assessed spectrophotometrically according to one of the known methods (OFS.1.2.3.0012.15. Protein determination), the quantitative determination of bacterial lipopolysaccharides is assessed in the LAL test according to one of the regulated methods (OFS.1.2.4.0006.15. Bacterial endotoxins).

Для приготовления иммуносорбента проводят сорбцию рабочего разведения инактивированной растворимой очищенной белково-липополисахаридной субстанции на твердую фазу (подходящая модель полистиролового 96-луночного планшета для целей ИФА). Подбор оптимальных разведений хорошо понятен специалисту и не требует дополнительных разъяснений.To prepare an immunosorbent, a working dilution of an inactivated soluble purified protein-lipopolysaccharide substance is sorbed onto a solid phase (a suitable model of a polystyrene 96-well plate for ELISA purposes). The selection of optimal dilutions is well understood by a specialist and does not require additional explanations.

Технический результат достигается также подбором условий проведения ИФА и тем, что для повышения информативности и чувствительности способа диагностики риккетсиозов группы КПЛ исследуемый образец (сыворотку или плазму крови человека) параллельно и дифференциально исследуют не только на наличие специфических антител классов G и M, но и на наличие антител класса A с раздельным использованием трех конъюгатов антител (анти-IgA, анти-IgM, анти-IgG человека, меченых пероксидазой).The technical result is also achieved by the selection of conditions for ELISA and the fact that in order to increase the information content and sensitivity of the method for diagnosing rickettsioses of the LP group, the test sample (human serum or plasma) is simultaneously and differentially examined not only for the presence of specific antibodies of classes G and M, but also for the presence class A antibodies with separate use of three antibody conjugates (anti-IgA, anti-IgM, anti-human IgG, labeled with peroxidase).

Способ диагностики риккетсиозов группы КПЛ заключается в том, что сыворотку/плазму крови пациента с подозрением на риккетсиоз, вызываемый возбудителем группы КПЛ, исследуют на наличие специфических антител методом непрямого ИФА. Для упрощения способа диагностики риккетсиозов группы КПЛ разработана иммуноферментная диагностическая тест-система, которая представляет собой многокомпонентный набор реагентов и включает иммуносорбент на основе инактивированной растворимой очищенной белково-липополисахаридной антигенной субстанции, три конъюгата (анти-IgA человека, анти-IgM человека и анти-IgG человека, меченых пероксидазой хрена), вспомогательные растворы для проведения ИФА, положительный и отрицательный контрольные образцы (K+ и K). Вспомогательными растворами являются раствор для разведения образцов (РРО), раствор для разведения конъюгатов (РРК), хромоген (3',5' - тетраметилбензидин, далее - ТМБ), стоп-реагент, концентрат фосфатно-солевового раствора с твином 20 (ФСР-Т). В лунки трех параллельных рядов иммуносорбента вносят разведения исследуемых и контрольных образцов (K+ и K-), приготовленные с применением РРО (например, ряд 1 выделяют для выявления специфических антител класса А, ряд 2 - для выявления специфических антител класса M, лунки ряд 3 - для выявления специфических антител класса G). Начальные разведения образцов с целью выявления специфических антител класса А к антигенам риккетсий группы КПЛ (инактивированной растворимой очищенной белково-липополисахаридной антигенной субстанции) - 1: 10, для выявления специфических антител класса M - 1: 20, для выявления специфических антител класса G - 1: 40. Далее проводят инкубирование разведений исследуемых и контрольных образцов, для чего защищенный крышкой иммуносорбент выдерживают при температуре 37-38°C, желательно, во влажной камере, в течение 45-60 мин. Лунки иммуносорбента промывают рабочим раствором ФСР-Т 5-6 раз, внося не менее 200 мкл раствора в лунку. Готовят рабочие разведения трех конъюгатов (анти-IgA человека, анти-IgM человека и анти-IgG человека, меченых пероксидазой хрена) с применением РРК. Раздельно в лунки рядов иммуносорбента вносят по 100 мкл соответствующих конъюгатов, проводят инкубирование при температуре 37-38°C в течение 30-60 мин. Далее планшет (иммуносорбент) промывают ФСР-Т 5-6 раз и вносят по 100 мкл в каждую лунку хромогена ТМБ и выдерживают 10-30 мин при комнатной температуре, защищая планшет от прямого света. Для остановки реакции в лунки иммуносорбента добавляют по 50-100 мкл стоп-реагента и проводят измерение оптической плотности (ОП) с помощью подходящей модели спектрофотометра при длине волны 450 нм с возможным применением референс-волны 620-680 нм. Для оценки результатов ИФА раздельно вычисляют пороговое значение ОП - ОПкрит - для каждого класса антител по формуле: ОПкрит=среднее значение ОП (K-) + 0,2, где ОП (K-) - среднее значение оптической плотности в лунках соответствующих рядов с внесенным отрицательным контрольным образцом (K-). Исследуемый образец содержит специфические антитела класса А и/или М и/или G, если его значение ОП превышает или равно ОПкрит.The method for diagnosing rickettsioses of the LP group is that the serum / plasma of a patient with suspected rickettsiosis caused by the causative agent of the LP group is examined for the presence of specific antibodies by an indirect ELISA method. To simplify the method for diagnosing rickettsioses of the LP group, an enzyme immunoassay diagnostic test system has been developed, which is a multicomponent set of reagents and includes an immunosorbent based on an inactivated soluble purified protein-lipopolysaccharide antigenic substance, three conjugates (human anti-IgA, human anti-IgM and anti-IgG human labeled with horseradish peroxidase), auxiliary solutions for ELISA, positive and negative control samples (K + and K). Auxiliary solutions are sample dilution solution (PPO), conjugate dilution solution (PPK), chromogen (3 ', 5' - tetramethylbenzidine, hereinafter - TMB), stop reagent, concentrate of phosphate-saline solution with tween 20 (PSR-T ). Dilutions of the test and control samples (K + and K-) prepared using PPO are introduced into the wells of three parallel rows of immunosorbent (for example, row 1 is isolated to detect specific antibodies of class A, row 2 - to detect specific antibodies of class M, wells row 3 - to detect specific antibodies of class G). Initial dilutions of samples for the purpose of detecting specific class A antibodies to the antigens of rickettsiae of the LPL group (inactivated soluble purified protein-lipopolysaccharide antigenic substance) - 1: 10, for detecting specific antibodies of class M - 1: 20, for detecting specific antibodies of class G - 1: 40. Next, the dilutions of the test and control samples are incubated, for which the lid-protected immunosorbent is kept at a temperature of 37-38 ° C, preferably in a humid chamber, for 45-60 minutes. The wells of the immunosorbent are washed with the FSR-T working solution 5-6 times, adding at least 200 μl of the solution to the well. Working dilutions of three conjugates (human anti-IgA, human anti-IgM and human anti-IgG labeled with horseradish peroxidase) are prepared using PPK. Separately, 100 μl of the corresponding conjugates are added to the wells of the immunosorbent rows, incubation is carried out at a temperature of 37-38 ° C for 30-60 minutes. Then the plate (immunosorbent) is washed with FSR-T 5-6 times and 100 μl is added to each well of the TMB chromogen and incubated for 10-30 minutes at room temperature, protecting the plate from direct light. To stop the reaction, 50-100 μl of stop reagent is added to the wells of the immunosorbent and the optical density (OD) is measured using a suitable model of the spectrophotometer at a wavelength of 450 nm with the possible use of a reference wave of 620-680 nm. To evaluate the results of ELISA, the threshold value of OD - ODcrit is calculated separately for each class of antibodies according to the formula: ODcrit = average OD (K-) + 0.2, where OD (K-) is the average value of optical density in the wells of the corresponding rows with negative control sample (K-). The test sample contains specific antibodies of class A and / or M and / or G, if its OD value is greater than or equal to ODcrit.

На основании результатов ИФА с применением созданной иммуноферментной диагностической тест-системы делают вывод о наличии специфических антител классов классов А, М, G к антигенам риккетсий группы КПЛ в сыворотке/плазме крови человека.Based on the results of ELISA using the created immunoassay diagnostic test system, it is concluded that there are specific antibodies of classes A, M, G to the antigens of rickettsia of the LP group in human serum / plasma.

Изобретение поясняется следующими примерами.The invention is illustrated by the following examples.

Пример 1.Example 1.

Получение инактивированной растворимой очищенной белково-липополисахаридной антигенной субстанции, выделенной из цельнорастворимого антигена Rickettsia sibirica.Obtaining inactivated soluble purified protein-lipopolysaccharide antigenic substance isolated from the whole-soluble antigen of Rickettsia sibirica.

Для получения инактивированной растворимой очищенной белково-липополисахаридной антигенной субстанции использовали инактивированный лиофилизированный цельнорастворимый препарат антигена Rickettsia sibirica (штамм «Нецветаев»), произведенный в ФГБУ «НИЦЭМ им. Н.Ф. Гамалеи» Минздрава России (накопление риккетсий проводилось в желточных мешках куриных развивающихся эмбрионов).To obtain an inactivated soluble purified protein-lipopolysaccharide antigenic substance, an inactivated lyophilized whole-soluble preparation of the Rickettsia sibirica antigen (strain “Netsvetaev”) produced at the Federal State Budgetary Institution “NITsEM named after V.I. N.F. Gamalea "of the Ministry of Health of Russia (the accumulation of rickettsia was carried out in the yolk sacs of developing chicken embryos).

Инактивированный лиофилизированный цельнорастворимый антиген Rickettsia sibirica ресуспендировали в буфере состава 10mM трис-HCl и 0,5 M натрия хлорида, рН-7,4-7,6, содержащем 10% изопропанол. Далее суспензию антигена подвергали ультразвуковой обработке при частоте 23 кГц с использованием ультразвукового дезинтегратора SoniPrep 150 Plus (MSE, Великобритания), для чего шток погружали в стакан с водой, пробирка с суспензией антигена помещалась в этот же стакан. Ультразвуковую обработку проводили в режиме 5 мин озвучивания с последующим охлаждением пробирки и сменой воды в стакане. Время обработки ультразвуком составило 30 мин. Полученную суспензию центрифугировали при 10000 g и отбирали супернатант. Проводили эксклюзионную хроматографию (гель-фильтрацию) супернатанта с использованием хроматографа AktaExplorer 10 (GE, Швеция) при постоянной температуре +4°С. Отобранный супернатант наносили на колонку с размерами 10×300 мм, заполненную сорбентом Superdex 200 (GE, Швеция). Использовали подвижную фазу следующего состава: ЮтМ трис- HCl и 0,5 М хлорида натрия, рН-7,5, содержащую 10% изопропанола. Полученная хроматограмма приведена на Фиг. 1. Как видно из Фиг. 1, на хроматограмме отчетливо выделяются три основных пика. Фракции оценивали на специфическую антигенную активность в ИФА с применением сывороток/плазмы крови человека, содержащих и не содержащих специфические антитела к антигенам риккетсий группы КПП (Таблица 1).The inactivated lyophilized whole-soluble Rickettsia sibirica antigen was resuspended in a buffer of 10 mM Tris-HCl and 0.5 M sodium chloride, pH 7.4-7.6, containing 10% isopropanol. Next, the antigen suspension was subjected to ultrasonic treatment at a frequency of 23 kHz using an ultrasonic disintegrator SoniPrep 150 Plus (MSE, UK), for which the stem was immersed in a glass of water, the test tube with the antigen suspension was placed in the same glass. Ultrasonic treatment was carried out in the mode of 5 min sonication, followed by cooling the test tube and changing the water in the glass. The sonication time was 30 min. The resulting suspension was centrifuged at 10000 g and the supernatant was collected. Size exclusion chromatography (gel filtration) of the supernatant was carried out using an AktaExplorer 10 chromatograph (GE, Sweden) at a constant temperature of + 4 ° C. The collected supernatant was applied to a 10 × 300 mm column packed with Superdex 200 sorbent (GE, Sweden). Used a mobile phase of the following composition: YutM Tris-HCl and 0.5 M sodium chloride, pH 7.5, containing 10% isopropanol. The resulting chromatogram is shown in FIG. 1. As seen in FIG. 1, three main peaks are clearly distinguished on the chromatogram. The fractions were evaluated for specific antigenic activity in ELISA using human serum / plasma, containing and not containing specific antibodies to the antigens of the rickettsia group of the KPP group (Table 1).

Таблица 1. Результаты проверки фракций, полученных в результате проведенной гель-фильтрации, на специфическую антигенную активность.Table 1. Results of testing the fractions obtained as a result of the gel filtration for specific antigenic activity.

Figure 00000001
Figure 00000001

Figure 00000002
Figure 00000002

Примечание: * ОП(+)/ОП(-) - соотношение средних значений оптической плотности положительных образцов сыворотки/плазмы крови человека, содержащих антитела к риккетсиям группы КПП, к средним значениям оптической плотности отрицательных контрольных образцов сыворотки/плазмы крови человека, не содержащих антитела к риккетсиям группы КПП.Note: * OD (+) / OD (-) is the ratio of the mean optical density values of positive human serum / plasma samples containing antibodies to rickettsia of the CPP group to the mean optical density values of negative control serum / plasma samples of human blood that do not contain antibodies to the rickettsia of the KPP group.

Фракции первого пика (№№6-8), демонстрирующие при проверке в ИФА наилучшее соотношение среднего значения сигналов оптической плотности пяти положительных образцов сывороток крови человека, содержащих антитела к антигенам риккетсий группы КПП (ОП+), к среднему значению оптической плотности пяти отрицательных образцов сывороток крови человека, не содержащих антитела к антигенам риккетсий группы КПЛ (ОП-), объединяли. Полученная таким объединением фракций 6,7,8 целевая фракция представляла собой инактивированную растворимую очищенную белково-липополисахаридную антигенную субстанцию. Остальные фракции, демонстрирующие в ИФА снижение ОП(+)/ОП(-) на 30% и более по сравнению со средним значением ОП(+)/ОП(-), вычисленному для фракций первого пика (в данном примере среднее значение - 8,1), исключались.Fractions of the first peak (nos. 6-8), demonstrating the best ratio of the mean value of the optical density signals of five positive human blood serum samples containing antibodies to rickettsia antigens of the CAT group (OD +), to the mean optical density of five negative samples human blood sera that did not contain antibodies to the antigens of the rickettsia group of the LP (OP-) group were combined. Obtained by such a combination of fractions 6,7,8, the target fraction was an inactivated soluble purified protein-lipopolysaccharide antigenic substance. The rest of the fractions demonstrating a decrease in OD (+) / OD (-) by 30% or more in ELISA compared to the average OD (+) / OD (-) calculated for the fractions of the first peak (in this example, the average value is 8, 1) were excluded.

Для качественной оценки полученной антигенной субстанции проводили электрофорез в полиакриламидном геле в присутствии додецилсульфата натрия по известной методике (ОФС 1.2.1.0023.15. Электрофорез в полиакриламидном геле). Гель окрашивали с использованием реагента EZ Blue Gel Staining Reagent (Sigma-Aldrich, США). Электрофорез представлен на Фиг. 2.For a qualitative assessment of the obtained antigenic substance, electrophoresis in polyacrylamide gel in the presence of sodium dodecyl sulfate was carried out according to the known method (OFS 1.2.1.0023.15. Polyacrylamide gel electrophoresis). The gel was stained using the EZ Blue Gel Staining Reagent (Sigma-Aldrich, USA). Electrophoresis is shown in FIG. 2.

Количественное определение белка в полученном антигенном препарате оценивали спектрофотометрически по методу Брэдфорд (ОФС.1.2.3.0012.15. Определение белка). Количественное определение бактериальных липополисахаридов оценивали с использованием турбидиметрического кинетического ЛАЛ-теста (ОФС.1.2.4.0006.15. Бактериальные эндотоксины). Содержание белка в полученной антигенной субстанции, определенное по методу Брэдфорд, составило 0,292 мг/мл; содержание бактериальных липополисахаридов, определенное с использованием метода кинетического турбидиметрического ЛАЛ-теста, составило 6654 EU/мл.The quantitative determination of protein in the obtained antigenic preparation was assessed spectrophotometrically according to the Bradford method (OFS.1.2.3.0012.15. Protein determination). The quantitative determination of bacterial lipopolysaccharides was assessed using the turbidimetric kinetic LAL test (OFS.1.2.4.0006.15. Bacterial endotoxins). The protein content in the obtained antigenic substance, determined by the Bradford method, was 0.292 mg / ml; the content of bacterial lipopolysaccharides, determined using the kinetic turbidimetric LAL test, was 6654 EU / ml.

Таким образом, полученные результаты подтвердили присутствие в инактивированной растворимой очищенной белково-липополисахаридной субстанции как белков, так и бактериальных липополисахаридов.Thus, the results obtained confirmed the presence of both proteins and bacterial lipopolysaccharides in the inactivated soluble purified protein-lipopolysaccharide substance.

По аналогичной методике можно получить инактивированную растворимую очищенную белково-липополисахаридную антигенную субстанцию, используя при этом корпускулярные или цельнорастворимые или растворимые антигены других патогенных видов риккетсий, включенных в группу КПЛ.By a similar technique, an inactivated soluble purified protein-lipopolysaccharide antigenic substance can be obtained using corpuscular or whole-soluble or soluble antigens of other pathogenic rickettsia species included in the LPS group.

Пример 2.Example 2.

Получение иммуноферментной диагностической тест-системы для осуществления способа диагностики риккетсиозов группы клещевой пятнистой лихорадки.Obtaining an immunoassay diagnostic test system for implementing a method for diagnosing rickettsioses of the group of tick-borne spotted fever.

Иммуноферментная диагностическая тест-система для осуществления способа диагностики риккетсиозов группы клещевой пятнистой лихорадки представляет собой набор реагентов (компонентов), предназначенный для выявления в сыворотке/плазме крови человека специфических антител классов А, М, G к антигенам риккетсий группы КПЛ.An enzyme immunoassay diagnostic test system for implementing a method for diagnosing rickettsial diseases of the tick-borne spotted fever group is a set of reagents (components) designed to detect in human serum / plasma specific antibodies of classes A, M, G to antigens of rickettsia of the LP group.

Для приготовления основного компонента тест-системы - иммуносорбента - использована инактивированная растворимая очищенная белково-липополисахаридная антигенная субстанция, выделенная из суспензии цельнорастворимого Rickettsia sibirica (штамм Нецветаев). Подробное описание получения инактивированной растворимой очищенной белково-липополисахаридной приведено в примере 1. Инактивированную растворимую очищенную белково-липополисахаридную антигенную субстанцию, разведенную в 0,05 М карбонат-бикарбонатной буфере, рН-9,6, до рабочей концентрации (по белку 10 мкг/мл, содержание бактериальных эндотоксинов - 225 EU/мл), сорбировали в течение 18 ч при комнатной температуре (22°C) в лунках планшета Maxi Sorp Costar в объеме 100 мкл в лунке. Далее содержимое иммуносорбента сбрасывали и вносили на 1 ч при комнатной температуре по 150 мкл в каждую лунку раствор для блокировки неспецифических связываний (0,05М карбонат-бикарбонатный буфер рН-9,6, содержащий 0,5% раствор казеината натрия и консерванты), после раствор удаляли, планшет высушивали, помещали в фольгированный пакет с вложенным силикагелем и запаивали под вакуумом.For the preparation of the main component of the test system - immunosorbent - used inactivated soluble purified protein-lipopolysaccharide antigenic substance isolated from a suspension of whole-soluble Rickettsia sibirica (strain Netsvetaev). A detailed description of the preparation of inactivated soluble purified protein-lipopolysaccharide is given in example 1. Inactivated soluble purified protein-lipopolysaccharide antigenic substance, diluted in 0.05 M carbonate-bicarbonate buffer, pH 9.6, to a working concentration (for protein 10 μg / ml , the content of bacterial endotoxins is 225 EU / ml), was sorbed for 18 h at room temperature (22 ° C) in the wells of the Maxi Sorp Costar plate in a volume of 100 μl per well. Then the contents of the immunosorbent were discarded and added for 1 h at room temperature, 150 μL in each well with a solution to block nonspecific binding (0.05M carbonate-bicarbonate buffer pH-9.6, containing 0.5% sodium caseinate solution and preservatives), after the solution was removed, the plate was dried, placed in a foil bag with embedded silica gel and sealed under vacuum.

Для приготовления конъюгата №1 (11-кратного концентрата конъюгата анти-IgA человека с пероксидазой) использовали препарат аффиноочищенных антител козы против иммуноглобулинов А человека, меченых пероксидазой хрена (ООО «Имтек», Россия), разведенных до концентрации 7 мкг/мл на смеси из глицерина 30% и сыворотки крупного рогатого скота 70%. Для приготовления конъюгата №2 (11-кратного концентрата конъюгата анти-IgM человека, меченых пероксидазой) использовали препарат аффиноочищенных антител козы против иммуноглобулинов М человека, меченых пероксидазой хрена (ООО «Имтек», Россия), разведенных до концентрации 2 мкг/мл на смеси из глицерина 30% и сыворотки крупного рогатого скота 70%. Для приготовления конъюгата №3 (11-кратного концентрата конъюгата анти-lgG человека, меченых пероксидазой) использовали препарат аффиноочищенных антител козы против иммуноглобулинов G человека, меченых пероксидазой хрена (ООО «Имтек», Россия), разведенных до концентрации 8 мкг/мл на смеси из глицерина 30% и сыворотки крупного рогатого скота 70%.To prepare conjugate No. 1 (11-fold concentrate of human anti-IgA conjugate with peroxidase), a preparation of affine-purified goat antibodies against human immunoglobulins A labeled with horseradish peroxidase (OOO Imtek, Russia), diluted to a concentration of 7 μg / ml on a mixture of glycerin 30% and cattle serum 70%. To prepare conjugate No. 2 (11-fold concentrate of human anti-IgM conjugate labeled with peroxidase), a preparation of affine-purified goat antibodies against human immunoglobulins M labeled with horseradish peroxidase (OOO Imtek, Russia) was used, diluted to a concentration of 2 μg / ml on the mixture from glycerin 30% and cattle serum 70%. To prepare conjugate No. 3 (11-fold concentrate of human anti-IgG conjugate, labeled with peroxidase), a preparation of affine-purified goat antibodies against human immunoglobulins G labeled with horseradish peroxidase (OOO Imtek, Russia) was used, diluted to a concentration of 8 μg / ml on the mixture from glycerin 30% and cattle serum 70%.

Готовили вспомогательные растворы для проведения ИФА:Prepared auxiliary solutions for ELISA:

- раствор для разведения образцов (РРО) состава: 0,1 М фосфатно-солевой буфер, рН 7,3-7,5, содержащий 1% раствор казеината натрия, 0,25 М мочевину, 0,5 М хлорида натрия, 0,01% твин-20, 0,01% мертиолята натрия;- solution for dilution of samples (PPO) composition: 0.1 M phosphate-buffered saline, pH 7.3-7.5, containing 1% sodium caseinate solution, 0.25 M urea, 0.5 M sodium chloride, 0, 01% tween-20, 0.01% sodium merthiolate;

- раствор для разведения конъюгатов (РРК) состава: 0,1 М фосфатно-солевой буфер, рН 7,3-7,4, содержащий 10% сыворотки крупного рогатого скота, 0,05% твин-20;- solution for dilution of conjugates (RRK) composition: 0.1 M phosphate-buffered saline, pH 7.3-7.4, containing 10% bovine serum, 0.05% Tween-20;

- хромоген (однокомпонентный водный раствор 3',5'-тетраметилбензидина, далее - ТМБ) производства ЗАО «НЕЮ ИММУНОТЕХ», Россия;- chromogen (one-component aqueous solution of 3 ', 5'-tetramethylbenzidine, hereinafter - TMB) produced by CJSC "NEYU IMMUNOTECH", Russia;

- стоп-реагент (0,75 нормальная серная кислота);- stop reagent (0.75 normal sulfuric acid);

- концентрат фосфатно-солевового раствора с твином 20 (ФСР-Т) для промывания планшетов (состав рабочего раствора ФСР-Т после разведения концентрата дистиллированной водой: 0,1 М фосфатно-солевой буфер, рН 7,3-7,4, содержащий 0,15 М хлорида натрия, 0,05% твин-20).- concentrate of phosphate-saline solution with tween 20 (FSR-T) for washing the plates (composition of the working solution FSR-T after diluting the concentrate with distilled water: 0.1 M phosphate buffered saline, pH 7.3-7.4, containing 0 , 15 M sodium chloride, 0.05% tween-20).

Готовили положительный и отрицательный контрольные образцы (K+ и K). Положительный контрольный образец (К+) представлен сывороткой/плазмой крови человека или пулом сывороток/плазмы крови человека, содержащих антитела классов А, М, G к антигенам риккетсий группы КПЛ, инактивированный прогреванием на водяной бане в течение 30 мин при 56°C. Отрицательный контрольный образец (K-) представлен сывороткой/плазмой крови человека или пулом сывороток/плазмы крови человека, не содержащих антитела классов А, М, G к антигенам риккетсий группы КПЛ, также инактивированный прогреванием на водяной бане в течение 30 мин при 56°C.Prepared positive and negative control samples (K + and K). A positive control sample (K +) is represented by human serum / plasma or a pool of human serum / plasma containing antibodies of classes A, M, G to Rickettsia antigens of the LP group, inactivated by heating in a water bath for 30 min at 56 ° C. A negative control sample (K-) is represented by human serum / plasma or a pool of human serum / plasma that does not contain antibodies of classes A, M, G to antigens of the rickettsia group of the LP, also inactivated by heating in a water bath for 30 min at 56 ° C ...

Все компоненты соответствующим образом упаковываются, маркируются. Тест-система (набор реагентов) упакована в картонную коробку, снабжена инструкцией по применению с описанием предназначения, состава, детальной последовательности проведения анализа с ее помощью, указанием производителя, сроков производства и годности, прочей дополнительной необходимой информации.All components are properly packed and labeled. The test system (set of reagents) is packed in a cardboard box, supplied with instructions for use with a description of the purpose, composition, detailed sequence of the analysis with its help, indication of the manufacturer, production time and shelf life, and other additional necessary information.

Указанные выше прописи реагентов (компонентов) в составе диагностической иммуноферментной тест-системы приведены для конкретного примера. Корректировка составов находится в компетенции специалиста.The above recipes for reagents (components) in the diagnostic enzyme immunoassay test system are given for a specific example. Correction of formulations is in the competence of a specialist.

Таким образом, иммуноферментная диагностическая тест-система представляет собой многокомпонентный набор реагентов, предназначенный для дифференциального выявления специфических антител классов А, М, G к антигенам группы КПЛ в сыворотке/плазме крови человека.Thus, the immunoassay diagnostic test system is a multicomponent set of reagents designed for the differential detection of specific antibodies of classes A, M, G to antigens of the LP group in human serum / plasma.

Пример 3.Example 3.

Изучение параметров чувствительности и специфичности иммуноферментного анализа в сравнительном анализе иммуносорбентов, полученных на основе цельнорастворимых антигенов Rickettsia sibirica и инактивированной растворимой очищенной белково-липополисахаридной антигенной субстанции, выделенной из суспензии цельнорастворимого антигена Rickettsia sibirica.Study of the parameters of the sensitivity and specificity of the enzyme-linked immunosorbent assay in the comparative analysis of immunosorbents obtained on the basis of the whole-soluble antigens of Rickettsia sibirica and inactivated soluble purified protein-lipopolysaccharide antigenic substance isolated from a suspension of the whole-soluble antigen of Rickettsia sibirica.

Для сравнительной оценки параметров чувствительности и специфичности иммуноферментного анализа раздельно готовили иммуносорбенты на основе лиофилизированного инактивированного цельнорастворимого антигена Rickettsia sibirica, штамм «Нецветаев» (ФГБУ «НИЦЭМ им. Н.Ф. Гамалеи» МЗ РФ), «Диагностикума риккетсиозного Сибирика сухого для РСК» (НПО «Микроген», Россия) и инактивированной растворимой очищенной белково-липополисахаридной антигенной субстанции, полученной по оригинальной методике (см. пример 1). Для этого проводили сорбцию в лунках полистироловых планшетов Maxi Sorp Corning, США в объеме 100 мкл в каждой лунке рабочих разведений вышеуказанных антигенов и инактивированной растворимой очищенной белково-липополисахаридной антигенной субстанции, приготовленных с применением 0,05 М карбонат-бикарбонатного буфера, рН-9,6. Закрытые крышками планшеты выдерживали в течение 20 ч при температуре 18°C, после содержимое лунок удаляли без промывания планшета и вносили раствор для блокировки неспецифических связываний на 1 час состава, приведенного в примере 2, при температуре 18°C. Содержимое лунок удаляли, планшеты высушивали и использовали для проведения ИФА. Таким образом, иммуносорбент 1 был получен в результате сорбции «Диагностикума риккетсиозного Сибирика сухого для РСК» в концентрации 200 мкг/мл. Иммуносорбент 2 получен в результате сорбции инактивированного цельнорастворимого антигена Rickettsia sibirica, штамм «Нецветаев» (ФГБУ «НИЦЭМ им. Н.Ф. Гамалеи» МЗ РФ), разведенного до концентрации 200 мкг/мл. Для получения иммуносорбента 3 использовали инактивированную растворимую очищенную белково-липополисахаридную субстанцию, выделенную из инактивированного цельнорастворимого антигена Rickettsia sibirica, штамм «Нецветаев», сорбированную в концентрации 10 мкг/мл по белку и содержанием бактериальных эндотоксинов - 225 EU/мл.For a comparative assessment of the parameters of the sensitivity and specificity of the enzyme immunoassay, immunosorbents were prepared separately based on lyophilized inactivated whole-soluble antigen Rickettsia sibirica, strain "Netsvetaev" (FGBU "NF Gamaleya NITsEM" (Ministry of Health of the Russian Federation), "Diagnostic Sibiricum rickettsial NPO Microgen, Russia) and inactivated soluble purified protein-lipopolysaccharide antigenic substance obtained by the original method (see example 1). For this, sorption was carried out in the wells of polystyrene plates Maxi Sorp Corning, USA in a volume of 100 μl in each well of the working dilutions of the above antigens and inactivated soluble purified protein-lipopolysaccharide antigenic substance prepared using 0.05 M carbonate-bicarbonate buffer, pH-9, 6. The plates covered with lids were kept for 20 hours at a temperature of 18 ° C, after the contents of the wells were removed without washing the plate, and a solution was added to block nonspecific binding for 1 hour of the composition shown in example 2 at a temperature of 18 ° C. The contents of the wells were removed, the plates were dried and used for ELISA. Thus, immunosorbent 1 was obtained as a result of sorption of "Diagnosticum of rickettsial Siberia dry for RSK" at a concentration of 200 μg / ml. Immunosorbent 2 was obtained as a result of sorption of an inactivated whole-soluble antigen of Rickettsia sibirica, strain "Netsvetaev" (NF Gamaleya Research Center for Electrochemistry, Ministry of Health of the Russian Federation), diluted to a concentration of 200 μg / ml. To obtain immunosorbent 3, an inactivated soluble purified protein-lipopolysaccharide substance was used, isolated from an inactivated whole-soluble antigen Rickettsia sibirica, strain "Netsvetaev", sorbed at a concentration of 10 μg / ml for protein and a content of bacterial endotoxins of 225 EU / ml.

Дополнительно для оценки специфичности иммуноферментного анализа с использованием иммуносорбентов 1, 2, 3 и выявления возможных перекрестных (ложноположительных реакций) готовили аналогичным образом иммуносорбент 5 на основе контрольного антигена, представляющим собой гомогенизат незараженных риккетсиями тканей оболочек желточного мешка развивающихся куриных эмбрионов (ФГБУ «НИЦЭМ им.Н.Ф. Гамалеи» Минздрава России), который сорбировали в подобранной концентрации 10 мкг/мл. Также готовили иммуносорбент 4 на основе яичного лизоцима (Amresco, США) в концентрации 5 мкг/мл.In addition, to assess the specificity of the enzyme-linked immunosorbent assay using immunosorbents 1, 2, 3 and to identify possible cross-over (false-positive reactions), immunosorbent 5 was prepared in a similar way based on a control antigen, which is a homogenizate of tissues not infected with rickettsiae from the tissues of the yolk sac of developing chicken embryos (FGBU NITsEM them. NF Gamalei "of the Ministry of Health of Russia), which was sorbed at a selected concentration of 10 μg / ml. Also prepared immunosorbent 4 based on egg lysozyme (Amresco, United States) at a concentration of 5 μg / ml.

РРО, РРК, ФСР-Т, ТМБ, стоп-реагент, контрольные образцы (K+ и K-) для проведения ИФА использовали состава, приведенного в примере 2.PPO, RRK, FSR-T, TMB, stop reagent, control samples (K + and K-) for ELISA used the composition shown in example 2.

Для сравнительной оценки чувствительности ИФА использовали:For a comparative assessment of the sensitivity of ELISA used:

- 18 сывороток/плазмы крови пациентов с диагнозом «астраханская пятнистая лихорадка», установленным по совокупности клинико-эпидемиологических данных и подтвержденным серологически с применением коммерческой иммуноферментной тест-системы «Rickettsia conorii ELISA IgG/IgM» производства Vircell, Испания;- 18 sera / blood plasma of patients diagnosed with Astrakhan spotted fever, established by a set of clinical and epidemiological data and confirmed serologically using a commercial enzyme immunoassay test system "Rickettsia conorii ELISA IgG / IgM" produced by Vircell, Spain;

- 2 сыворотки крови человека с предварительным диагнозом «африканская пятнистая лихорадка», установленным по совокупности клинико-эпидемиологических данных и подтвержденным методом ПЦР и серологически (РНИФ);- 2 blood serum of a person with a preliminary diagnosis of "African spotted fever", established on the basis of a set of clinical and epidemiological data and confirmed by PCR and serologically (RNIF);

- 6 сывороток/плазмы крови пациентов с установленным клиническим диагнозом «клещевой сыпной тиф Северной Азии» (клещевой риккетсиоз, в тексте - КР) из коллекции лаборатории экологии риккетсий ФГБУ «НИЦЭМ им. Н.Ф. Гамалеи» МЗ РФ и подтвержденным серологически в РСК/РНИФ.- 6 blood serums / plasma of patients with an established clinical diagnosis of tick-borne typhus of North Asia (tick-borne rickettsiosis, in the text - KR) from the collection of the laboratory of ecology of rickettsia of the Federal State Budgetary Institution NITsEM named after N.F. Gamalei "of the Ministry of Health of the Russian Federation and confirmed serologically in RSK / RNIF.

Для сравнительной оценки специфичности ИФА использованы:For a comparative assessment of the specificity of ELISA used:

- 6 контрольных сывороток крови человека, не содержащих антитела по данным РНИФ, ИФА, дот-блоттинга, РСК к антигенам риккетсий группы КПЛ;- 6 control human blood sera that do not contain antibodies according to the RNIF, ELISA, dot blotting, RSK to antigens of rickettsiae of the KPL group;

- 30 сывороток условно здоровых крови людей, неинфицированных на момент получения сывороток крови и не переносивших ранее заболевания риккетсиальной этиологии.- 30 sera of conditionally healthy blood of people who were uninfected at the time of receiving blood sera and did not previously tolerate rickettsial etiology diseases.

ИФА проводили с использованием приготовленных иммуносорбентов в одинаковых условиях. В конкретном примере все образцы сыворотки/плазмы крови человека исследовали в отношении только специфических антител классов М и G. Антитела класса А в данном примере не оценивали, т.к. целью исследования была сравнительная оценка не только специфичности, но и чувствительности анализа (способа диагностики) по одному варьируемому параметру - составу иммуносорбента.ELISA was performed using the prepared immunosorbents under the same conditions. In a specific example, all human serum / plasma samples were tested against only specific antibodies of classes M and G. Antibodies of class A were not evaluated in this example, because the aim of the study was a comparative assessment of not only the specificity, but also the sensitivity of the assay (diagnostic method) for one variable parameter - the composition of the immunosorbent.

В параллельные лунки каждого иммуносорбента вносили исследуемые образцы в объеме 100 мкл в разведениях 1: 20 с целью выявления специфических антител класса М и 1:40 с целью выявления антител класса G, приготовленных на РРО, иммуносорбенты инкубировали 45 мин при температуре 37°C. Далее содержимое лунок удаляли в емкость для сбора инфицированного материала, лунки иммуносорбентов промывали 6 раз рабочим раствором ФСР-Т. В лунки одного ряда вносили по 100 мкл аффиноочищенных антител козы против иммуноглобулинов М человека, меченых пероксидазой хрена (ООО «Имтек», Россия) в конечной концентрации 0,2 мкг/мл, а в лунки параллельного ряда вносили конъюгат аффиноочищенных антител козы против иммуноглобулинов G человека, меченых пероксидазой хрена (ООО «Имтек», Россия) в конечной концентрации 0,7 мкг/мл. Разведения конъюгатов проводили с использованием РРК. Планшеты (иммуносорбенты) инкубировали в течение 30 мин при 37°C, после чего содержимое лунок удаляли в емкость для сбора инфицированного материала, лунки промывали 6 раз рабочим раствором ФСР-Т, вносили по 100 мкл раствора ТМБ и выдерживали 15 мин в защищенном от света месте при температуре 18°C. Реакцию останавливали добавлением во все лунки планшета по 50 мкл стоп-реагента. Учет результатов проводили спектрофотометрически при длине волны 450 нм. Интерпретацию результатов ИФА с иммуносорбентами 1, 2, 3 проводили следующим образом. Раздельно рассчитывали ОПкрит для определения пороговых значений уровня антител классов М и G по формуле: ОПкрит = среднее значение ОП (K-) + 0,2, где ОП (K-) - среднее значение оптической плотности в лунках с внесенным K- в рядах, маркированных для выявления антител класса М, и в лунках с внесенным K- в рядах для выявления антител класса G. Пробу считали положительной на наличие антител определенного класса (М или G) к антигенам риккетсий группы КПЛ, если оптическая плотность анализируемого образца была выше и равна соответствующему значению ОПкрит.In parallel wells of each immunosorbent, the test samples were added in a volume of 100 μl at dilutions of 1: 20 in order to detect specific antibodies of class M and 1:40 in order to detect antibodies of class G prepared on PPO; immunosorbents were incubated for 45 min at 37 ° C. Then the contents of the wells were removed into a container for collecting the infected material, the wells of the immunosorbents were washed 6 times with the working solution of FSR-T. In the wells of one row, 100 μl of affine-purified goat antibodies against human immunoglobulins M labeled with horseradish peroxidase (Imtek LLC, Russia) at a final concentration of 0.2 μg / ml were added, and the conjugate of affine-purified goat antibodies against immunoglobulins G was added to the wells of a parallel row. human labeled with horseradish peroxidase (OOO "Imtek", Russia) at a final concentration of 0.7 μg / ml. Dilutions of conjugates were performed using PPK. The plates (immunosorbents) were incubated for 30 min at 37 ° C, after which the contents of the wells were removed into a container for collecting infected material, the wells were washed 6 times with the working solution of FSR-T, 100 μL of TMB solution was added and kept for 15 min protected from light place at a temperature of 18 ° C. The reaction was stopped by adding 50 μl of stop reagent to all wells of the plate. The results were recorded spectrophotometrically at a wavelength of 450 nm. Interpretation of the results of ELISA with immunosorbents 1, 2, 3 was carried out as follows. The ODcrit was calculated separately to determine the threshold values of the level of antibodies of classes M and G by the formula: ODcrit = average OD (K-) + 0.2, where OD (K-) is the average value of optical density in the wells with K- introduced in rows, marked for the detection of class M antibodies, and in the wells with K- introduced in the rows for the detection of class G antibodies. The sample was considered positive for the presence of antibodies of a certain class (M or G) to the antigens of the rickettsia group of the LP, if the optical density of the analyzed sample was the corresponding value of OPcrit.

Для интерпретации результатов ИФА с иммуносорбентами 4 и 5 рассчитывали среднее значение ОП по всем сывороткам, включенным в исследование, исключая в дальнейшем такие, ОП которых отклонялась от среднего значения ОП более чем на 3 стандартных отклонения, вычисляемого с применением методов математической статистики. Вычисляли ОПкрит = среднее значение ОП + 0,2. Пробу считали положительной на наличие антител определенного класса к лизоциму или контрольному антигену, если оптическая плотность анализируемого образца была выше и равна значению ОПкрит. Полученные результаты приведены в таблице 2.To interpret the results of ELISA with immunosorbents 4 and 5, the mean OD was calculated for all sera included in the study, excluding those sera whose OD deviated from the mean OD by more than 3 standard deviations, calculated using the methods of mathematical statistics. Calculated ODcrit = average OD + 0.2. The sample was considered positive for the presence of antibodies of a certain class to lysozyme or control antigen if the optical density of the analyzed sample was higher and equal to the ODcrit value. The results are shown in Table 2.

Таблица 2. Сравнительная оценка показателей чувствительности и специфичности ИФА при использовании цельнорастворимых антигенов Rickettsia sibirica и инактивированной растворимой очищенной белково-липополисахаридной субстранции.Table 2. Comparative evaluation of the sensitivity and specificity of ELISA when using the whole-soluble antigens of Rickettsia sibirica and inactivated soluble purified protein-lipopolysaccharide substance.

Figure 00000003
Figure 00000003

ложноположительных образцов при изучении отрицательных контрольных сывороток крови (n=6)false positive samples in the study of negative control blood sera (n = 6) Количество ложноположительных образцов при изучении сывороток крови условно здоровых людей (n=30)The number of false positive samples in the study of blood sera of apparently healthy people (n = 30) 3/303/30 3/303/30 0/300/30 1/301/30 4/304/30 Чувствительность, %Sensitivity,% 88,588.5 88,588.5 100one hundred -- -- Специфичность, %Specificity,% 88,988.9 88,988.9 100one hundred -- --

Примечание:Note:

1 - «Диагностикум риккетсиозный Сибирика сухой для РСК»,1 - "Diagnosticum rickettsial Siberica dry for RSK",

2 - цельнорастворимый антиген Rickettsia sibirica (штамм «Нецветаев»),2 - whole-soluble antigen of Rickettsia sibirica (strain "Netsvetaev"),

3 - инактивированная растворимая очищенная белково-липополисахаридная субстанция, выделенная из цельнорастворимого Rickettsia sibirica,3 - inactivated soluble purified protein-lipopolysaccharide substance isolated from whole-soluble Rickettsia sibirica,

4 - лизоцим из яичного желтка,4 - lysozyme from egg yolk,

5 - контрольный антиген.5 - control antigen.

Представленные данные убедительно демонстрируют, что ложноположительные реакции при использовании иммуносорбентов 1 и 2 были вызваны наличием в них примесей тканей овокультур, что было доказано при анализе с контрольным антигеном (иммуносорбент 5), имеющий сложный состав и включающий также детерминанты, общие с лизоцимом (иммуносорбент 4). Специфичность ИФА с использованием иммуносорбента 3 составила 100% и превосходила специфичность, достигаемой использованием недостаточно очищенных антигена Rickettsia sibirica и «Диагностикума риккетсиозного Сибирика для РСК» (иммуносорбенты 1 и 2).The presented data convincingly demonstrate that false positive reactions when using immunosorbents 1 and 2 were caused by the presence of impurities of ovoculture tissues in them, which was proved in the analysis with a control antigen (immunosorbent 5), which has a complex composition and also includes determinants common with lysozyme (immunosorbent 4 ). The specificity of ELISA using immunosorbent 3 was 100% and exceeded the specificity achieved by using insufficiently purified antigen of Rickettsia sibirica and Diagnosticum of Rickettsia Sibirica for RSC (immunosorbents 1 and 2).

Чувствительность ИФА с использованием иммуносорбента 3 также превосходила параметры чувствительности анализа с применением иммуносорбентов 1 и 2. Это объясняется тем, что для приготовления инактивированной растворимой очищенной белково-липополисахаридной субстанции первичная суспензия антигенов подвергается ультразвуковой обработкой, что дополнительно способствует полному переводу антигена в растворимую форму, при этом достигается наибольшая доступность основных антигенных детерминант для эффективного связывания специфическими антителами.The sensitivity of ELISA using immunosorbent 3 also exceeded the sensitivity parameters of the assay using immunosorbents 1 and 2. This is explained by the fact that for the preparation of inactivated soluble purified protein-lipopolysaccharide substance, the primary suspension of antigens is subjected to ultrasonic treatment, which additionally contributes to the complete conversion of the antigen into a soluble form, when this achieves the greatest availability of the main antigenic determinants for efficient binding by specific antibodies.

Из представленных данных также следует, что диагностика риккетсиозов группы КПЛ носит группоспецифический характер, т.к. антиген Rickettsia sibirica и полученные на его основе антигенные субстанции позволили успешно серологически детектировать не только клещевой сыпной тиф Северной Азии (клещевой риккетсиоз), но также АПЛ и африканскую пятнистую лихорадку.It also follows from the data presented that the diagnosis of rickettsioses of the LP group is group-specific, because Rickettsia sibirica antigen and antigenic substances obtained on its basis made it possible to successfully serologically detect not only tick-borne typhus of North Asia (tick-borne rickettsiosis), but also APL and African spotted fever.

Пример 4.Example 4.

Способ диагностики риккетсиозов группы КПЛ с применением разработанной иммуноферментной тест-системы на примере исследования образцов сывороток или плазмы крови пациентов Ш., С., К., В. с подозрениями на заболевания риккетсиальной этиологии, вызываемыми возбудителями риккетсиозов группы КПЛ.A method for diagnosing rickettsial diseases of the LP group using the developed enzyme-linked immunosorbent assay on the example of studying serum or plasma samples from patients Sh., S., K., V. with suspected diseases of rickettsial etiology caused by causative agents of rickettsial diseases of the LP group.

Использовали разработанную иммуноферментную тест-систему, позволяющую определять в сыворотке или плазме крови человека антитела классов A, M, G к антигенам риккетсий группы КПЛ (описание тест-системы и состав основных компонентов представлены в примере 2).The developed enzyme-linked immunosorbent assay was used, which allows the determination of antibodies of classes A, M, and G to the antigens of the Rickettsia group of the KPL group in human serum or plasma (a description of the test system and the composition of the main components are presented in example 2).

В лунки 1 ряда иммуносорбента, маркированного для выявления специфических IgA (антител класса А) к антигенам риккетсий группы КПЛ, вносили 180 мкл РРО и 20 мкл сывороток крови исследуемых пациентов Ш., С., К., В. и контрольных образцов K+ и K - (конечное разведение образцов - 1:10). В лунки 2 ряда иммуносорбента, маркированного нами для выявления специфических IgM (антител класса М) к антигенам риккетсий группы КПЛ, вносили по 100 мкл РРО и по 100 мкл сывороток исследуемых пациентов Ш., С., К., В. и контрольных образцов K+ и K-, разведенных предварительно 1:10 в лунках ряда 1. В параллельные лунки 3 ряда иммуносорбента, маркированного для выявления специфических IgG (антител класса G) к антигенам риккетсий группы КПЛ, вносили по 100 мкл РРО и по 100 мкл сывороток/плазмы исследуемых пациентов Ш., С., К., В. и контрольных образцов K+ и K-, разведенных предварительно 1:20 в лунках ряда 2 (конечное разведение образцов составило 1: 40), далее из каждой лунки удаляли по 100 мкл разведенных образцов так, чтобы остаточный объем составил 100 мкл. Иммуносорбент инкубировали, защищая крышкой, при температуре 37°C во влажной камере 45 мин. Далее иммуносорбент промывали 6 раз рабочим раствором ФСР-Т. В лунки ряда 1 иммуносорбента вносили по 100 мкл рабочего разведения конъюгата 1, разведенного с помощью РРК. В лунки ряда 2 иммуносорбента вносили по 100 мкл рабочего разведения конъюгата 2, разведенного РРК. В лунки ряда 3 иммуносорбента вносили по 100 мкл рабочего разведения конъюгата 3, разведенного РРК. Планшет инкубировали при температуре 37°C в течение 30 мин. После планшет (иммуносорбент) промывали ФСР-Т 6 раз и вносили по 100 мкл водного однокомпонентного хромогена ТМБ, выдерживали 15 мин при комнатной температуре, защищая планшет от прямого света. Для остановки реакции в лунки иммуносорбента добавляли по 50 мкл стоп-реагента. Проводили измерение ОП на спектрофотометре при длине волны 450 нм. Рассчитывали ОПкрит для каждого класса антител по формуле: ОПкрит = среднее значение ОП (K-) + 0,2, где ОП (K-) - среднее значение оптической плотности в лунках с внесенным K-.In the wells of row 1 of the immunosorbent, marked for the detection of specific IgA (antibodies of class A) to the antigens of rickettsiae of the LP group, 180 μl of PPO and 20 μl of blood sera of the studied patients Sh., S., K., V. and control samples K + and K were added. - (final dilution of samples - 1:10). In the wells of the 2nd row of the immunosorbent, marked by us for the detection of specific IgM (class M antibodies) to the antigens of the rickettsiae of the LP group, 100 μl of PPO and 100 μl of sera from the studied patients Sh., S., K., V. and control samples K + were added and K-, diluted preliminarily 1:10 in the wells of row 1. In parallel wells of 3 rows of immunosorbent, marked for the detection of specific IgG (antibodies of class G) to the antigens of the Rickettsia group of the LPO group, 100 μl of PPO and 100 μl of sera / plasma of the studied patients Sh., S., K., V. and control samples K + and K-, diluted previously 1:20 in the wells of row 2 (the final dilution of the samples was 1: 40), then 100 μl of diluted samples were removed from each well as follows so that the residual volume is 100 μl. The immunosorbent was incubated, protected with a lid, at 37 ° C in a humid chamber for 45 min. Next, the immunosorbent was washed 6 times with the FSR-T working solution. In the wells of row 1 of the immunosorbent, 100 μl of the working dilution of conjugate 1, diluted with PPK, was added. In the wells of row 2 of the immunosorbent, 100 μl of the working dilution of conjugate 2 diluted with PPK was added. In the wells of row 3 of the immunosorbent, 100 μl of the working dilution of conjugate 3 diluted with PPK was added. The plate was incubated at 37 ° C for 30 min. After that, the plate (immunosorbent) was washed with FSR-T 6 times and added with 100 μl of an aqueous single-component chromogen TMB, kept for 15 min at room temperature, protecting the plate from direct light. To stop the reaction, 50 μL of stop reagent was added to the wells of the immunosorbent. The OD was measured on a spectrophotometer at a wavelength of 450 nm. The ODcrit was calculated for each class of antibodies according to the formula: ODcrit = average OD (K-) + 0.2, where OD (K-) is the average optical density in the wells with K- added.

В конкретном примере значения ОПкрит следующие:In a specific example, the OPcrit values are as follows:

ОПкрит (IgA) = 0,2+0,074 = 0,274, где 0,074 - среднее значение по двум лункам ОП (K-) в ряду 1,ODcrit (IgA) = 0.2 + 0.074 = 0.274, where 0.074 is the average value for two holes OD (K-) in row 1,

ОПкрит (IgM) = 0,2+0,061 = 0,261, где 0,061 - среднее значение по двум лункам ОП (K-) в ряду 2,ODcrit (IgM) = 0.2 + 0.061 = 0.261, where 0.061 is the average value for two holes OD (K-) in row 2,

ОПкрит (IgG) = 0,2 + 0,068=0,268, где 0,068 - среднее значение по двум лункам ОП (K-) в ряду 3.ODcrit (IgG) = 0.2 + 0.068 = 0.268, where 0.068 is the average value for two holes OD (K-) in row 3.

ОП (K+) в лунках рядов 1, 2, 3 соответственно были равны значениям 0,564; 0,671; 0,988. Тест-система считается валидной, т.к. получены положительные значения ОП в лунках с внесенным положительным контролем (K+).OD (K +) in the holes of rows 1, 2, 3, respectively, were equal to the values of 0.564; 0.671; 0.988. The test system is considered valid because positive OD values were obtained in the wells with a positive control (K +) introduced.

На основании результатов ИФА делали вывод о наличии антител A, M, G в сыворотках крови пациентов Ш., С., К., В. к антигенам риккетсий группы КПЛ.Based on the ELISA results, it was concluded that antibodies A, M, G were present in the blood serum of patients Sh., S., K., V. to the antigens of rickettsiae of the LP group.

Выдержки из истории болезни пациентов Ш., С., К., В. и результаты проводимых специфических лабораторных исследований приводим ниже.Excerpts from the medical history of patients Sh., S., K., V. and the results of specific laboratory tests are given below.

Пациент Ш., 6 лет поступил в областную инфекционную больницу г. Астрахани с подозрением по клинико-эпидемиологическим данным на заболевание АПЛ в острой форме (характерная макулопапулезная сыпь, лихорадка). Первичный аффект отсутствовал.Patient Sh., 6 years old, was admitted to the regional infectious diseases hospital in Astrakhan with suspected clinical and epidemiological data for an acute APL disease (characteristic maculopapular rash, fever). There was no primary affect.

Проводимые специфические лабораторные исследования:Conducted specific laboratory tests:

ПЦР на наличие Rickettsia conorii в лейкоцитарном осадке крови с помощью набора реагентов «АмплиСенс® Rickettsia conorii-FL» с гибридизационно-флуоресцентной детекцией результатов (ФБУН ЦНИИ Эпидемиологии Роспотребнадзора) - получен отрицательный результат,PCR for the presence of Rickettsia conorii in leukocyte blood sediment using the AmpliSens® Rickettsia conorii-FL reagent kit with hybridization-fluorescent detection of results (FBSI Central Research Institute of Epidemiology of Rospotrebnadzor) - a negative result was obtained,

результаты ИФА, полученного с применением коммерческой иммуноферментной диагностической тест-системы «Rickettsia conorii ELISA IgG/IgM» (Vircell, Испания) - в сыворотке крови не выявлены специфические антитела классов G и M,ELISA results obtained using the commercial immunoassay diagnostic test system "Rickettsia conorii ELISA IgG / IgM" (Vircell, Spain) - no specific antibodies of classes G and M were detected in the blood serum,

- результаты ИФА с применением разработанной тест-системы на основе инактивированной растворимой очищенной белково-липополисахаридной субстанции, выделенной из Rickettsia sibirica - в сыворотке крови не были обнаружены антитела классов M и G, т.к. ОП сыворотки крови пациента в рядах 2 и 3 соответствовали значениям 0,078 и 0,095 и не превысили значения ОПкрит, рассчитанные для специфических IgM и IgG. Однако выявлены антитела класса А, т.к. ОП сыворотки в ряду 1 составила 1,1204 и превысила ОПкрит (IgA) = 0,274.- ELISA results using the developed test system based on inactivated soluble purified protein-lipopolysaccharide substance isolated from Rickettsia sibirica - antibodies of classes M and G were not detected in blood serum, because The OD of the patient's blood serum in rows 2 and 3 corresponded to the values of 0.078 and 0.095 and did not exceed the ODcrit values calculated for specific IgM and IgG. However, antibodies of class A were detected, since Serum OD in row 1 was 1.1204 and exceeded OD crit (IgA) = 0.274.

Таким образом, у больного Ш. с подозрением по клинико-эпидемиологическим данным на АПЛ, диагноз был подтвержден выявлением в сыворотке крови специфических антител класса А к антигенам риккетсий группы КПЛ.Thus, in patient Sh. Suspected of having APL according to clinical and epidemiological data, the diagnosis was confirmed by the detection of specific class A antibodies to antigens of rickettsiae of the LP group in the blood serum.

Пациентка С., 75 лет госпитализирована в областную инфекционную больницу г. Астрахани с подозрением по клинико-эпидемиологическим данным на заболевание АПЛ в острой форме.Patient S., 75 years old, was admitted to the regional infectious diseases hospital in Astrakhan with suspicion of acute APL disease due to clinical and epidemiological data.

Проводимые специфические лабораторные исследования:Conducted specific laboratory tests:

- ПЦР на наличие Rickettsia conorii в лейкоцитарном осадке крови с помощью коммерческого набора реагентов «АмплиСенс® Rickettsia conorii-FL» - положительный результат,- PCR for the presence of Rickettsia conorii in leukocyte blood sediment using a commercial kit of reagents "AmpliSens® Rickettsia conorii-FL" - a positive result,

- ИФА с применением разработанной тест-системы на основе инактивированной растворимой очищенной белково-липополисахаридной субстанции, выделенной из Rickettsia sibirica - были выявлены в сыворотке крови пациента антитела классов А (ОП сыворотки = 1,141) и G (ОП = 0,603) и не обнаружены антитела класса М (ОП = 0,09).- ELISA using the developed test system based on inactivated soluble purified protein-lipopolysaccharide substance isolated from Rickettsia sibirica - antibodies of classes A (OD of serum = 1.141) and G (OD = 0.603) were detected in the patient's blood serum and no antibodies of class M (OD = 0.09).

Таким образом, серологическая картина, полученная с применением разработанной тест-системы, дополнительно подтвердила картину острого риккетсиоза, в частности, АПЛ.Thus, the serological picture obtained using the developed test system additionally confirmed the picture of acute rickettsiosis, in particular, APL.

Пациент К., поступил в клиническую инфекционную больницу №1 г. Москвы с подозрением по клинико-эпидемиологическим данным на риккетсиоз группы КПЛ (африканская пятнистая лихорадка?). Инфицирование, по-видимому, произошло в результате присасывания клеща (отмечен первичный аффект) во время туристической поездки на сафари в Танзании.Patient K., was admitted to the clinical infectious diseases hospital No. 1 in Moscow with suspicion of rickettsiosis of the LP group (African spotted fever?) According to clinical and epidemiological data. Infection appears to have occurred as a result of tick sucking (primary affect noted) during a safari tour in Tanzania.

Проводимые специфические лабораторные исследования:Conducted specific laboratory tests:

- при использовании тест-системы в формате ПЦР «РеалБест ДНК Rickettsia species» (ЗАО «Вектор-Бест», Россия) и использовании в качестве биоматериала смыва с биоптата первичного аффекта был получен положительный результат,- when using a test system in the PCR format "RealBest DNA Rickettsia species" (CJSC "Vector-Best", Russia) and using a washout from a biopsy of primary affect as a biomaterial, a positive result was obtained,

- ИФА с применением тест-системы на основе инактивированной растворимой очищенной белково-липополисахаридной субстанции, выделенной из Rickettsia sibirica - в плазме крови пациента К. выявлены специфические антитела всех трех классов: А (ОП = 1,077), класса М (ОП = 0,456), класса G (ОП = 0,507), что наряду с результатами ПЦР дополнительно подтверждало первичный диагноз острого риккетсиоза группы КПЛ (африканская пятнистая лихорадка).- ELISA using a test system based on an inactivated soluble purified protein-lipopolysaccharide substance isolated from Rickettsia sibirica - specific antibodies of all three classes were detected in patient K.'s blood plasma: A (OD = 1.077), class M (OD = 0.456), class G (OD = 0.507), which, along with the PCR results, additionally confirmed the primary diagnosis of acute rickettsiosis of the LP group (African spotted fever).

Пациентка В., 45 лет поступила в областную инфекционную больницу г. Астрахани с подозрением на аденовирусную инфекцию на 14 день заболевания с момента регистрации первых симптомов инфекции (отмечалась высокая температура, конъюнктивит, катаральные явления, на момент госпитализации - отсутствие характерной для АПЛ сыпи). Во время госпитализации пациентки В. не проводилось лабораторных исследований, направленных на верификацию диагноза АПЛ. Ретроспективно в плазме крови пациентки В. с помощью разработанной ИФА-тест-системы были выявлены только антитела класса А (ОП = 1,198). Из образца плазмы крови также ретроспективно выделена ДНК Rickettsia conorii с применением набора реагентов «АмплиСенс® Rickettsia conorii-FL». Следовательно, ретроспективно была доказана риккетсиальная природа инфекционного заболевания (АПЛ), в том числе серологически с применением разработанной иммуноферментной тест-системы.Patient V., 45 years old, was admitted to the regional infectious diseases hospital in Astrakhan with suspicion of adenovirus infection on the 14th day of the disease from the moment of registration of the first symptoms of infection (there was a high temperature, conjunctivitis, catarrhal phenomena, at the time of hospitalization - the absence of a rash characteristic of APL). During the hospitalization of patient V., no laboratory studies were carried out to verify the diagnosis of APL. Retrospectively, only class A antibodies (OD = 1.198) were detected in the blood plasma of patient B. using the developed ELISA test system. Rickettsia conorii DNA was also retrospectively isolated from a blood plasma sample using the AmpliSens® Rickettsia conorii-FL reagent kit. Consequently, the rickettsial nature of the infectious disease (APL) was retrospectively proven, including serologically using the developed enzyme-linked immunosorbent assay.

Таким образом, способ диагностики риккетсиозов группы КПЛ, предусматривающий раздельное выявление в сыворотке или плазме крови человека специфических антител не только классов М и G, но и класса А, является наиболее информативным и чувствительным, что особенно важно в ранний период инфицирования.Thus, the method for diagnosing rickettsioses of the LP group, which provides for the separate detection of specific antibodies not only of classes M and G, but also of class A in human serum or plasma, is the most informative and sensitive, which is especially important in the early period of infection.

Пример 5.Example 5.

Возможность применения иммуноферментной тест-системы не только для диагностики риккетсиоза, вызываемым Rickettsia sibirica. Поскольку серологическая диагностика риккетсиозов КПЛ носит группоспецифический характер, представлял интерес изучение сывороток или плазмы крови больных клещевыми риккетсиозами, вызываемыми возбудителями (риккетсиями) группы КПЛ в отношении эффективности выявления в них специфических антител с применением предлагаемой иммуноферментной тест-системы. Для приготовления иммуносорбентов использована инактивированная растворимая очищенная белково-липополисахаридная антигенная субстанция, выделенная из суспензии цельнорастоворимого антигена R.sibirica subsp. sibirica (штамм Нецветаев). Субстанция получена по оригинальной методике, изложенной ранее (пример 1). В работе использовали тест-систему, описание которой изложено в примере 2. Постановку ИФА проводили по схеме, приведенной в примере 4.The possibility of using the enzyme-linked immunosorbent assay not only for the diagnosis of rickettsiosis caused by Rickettsia sibirica. Since serological diagnostics of LP rickettsia is group-specific, it was of interest to study the sera or blood plasma of patients with tick-borne rickettsia caused by pathogens (rickettsia) of the LP group in relation to the efficiency of detecting specific antibodies in them using the proposed enzyme-linked immunosorbent assay. For the preparation of immunosorbents, an inactivated soluble purified protein-lipopolysaccharide antigenic substance isolated from a suspension of the whole-dissolving antigen of R. sibirica subsp. sibirica (Netsvetaev strain). The substance was obtained according to the original method described earlier (example 1). We used a test system, the description of which is described in example 2. The setting of ELISA was carried out according to the scheme given in example 4.

В данное исследование были включены сыворотки или плазмы крови пациентов (всего - 86 образцов), полученные на 7-14 дни со дня регистрации клинических симптомов острой инфекции риккетсиальной этиологии, которая подтверждалась положительными результатами ПЦР-тестирования лейкоцитарных фракций крови и/или смывов с первичных аффектов уданных пациентов с применением коммерческого набора реагентов «РеалБест ДНК Rickettsia species» (ЗАО «Вектор-Бест», Россия). Набор реагентов «РеалБест ДНК Rickettsia species» предназначен для обнаружения генетического материала, содержащего консервативный участок гена gltA (цитратсинтазы), который имеется у всех видов риккетсий группы КПЛ (Е.И. Бондаренко, Л.Д. Щучинова, Д.И. Тимофеев и др. Выявление генетических маркеров возбудителей клещевых риккетсиозов в ПЦР с помощью наборов реагентов «РеалБест ДНК Rickettsia species» и «РеалБест ДНК Rickettsia sibirica/ Rickettsia heilongjiangensis». НОВОСТИ «Вектор-Бест», 2018, №1 (87)). В таблице 3 представлены данные тестирования сывороток или плазмы крови пациентов в ИФА.This study included sera or blood plasma of patients (86 samples in total) obtained on days 7-14 from the day of registration of clinical symptoms of acute infection of rickettsial etiology, which was confirmed by positive results of PCR testing of leukocyte blood fractions and / or washings from primary affects patients with the use of a commercial kit of reagents "RealBest DNA Rickettsia species" (CJSC "Vector-Best", Russia). The set of reagents "RealBest DNA Rickettsia species" is intended for the detection of genetic material containing a conservative region of the gltA (citrate synthase) gene, which is present in all species of rickettsia of the KPL group (E.I.Bondarenko, L.D.Schuchinova, D.I. Timofeev and other Identification of genetic markers of pathogens of tick-borne rickettsiosis in PCR using the kits of reagents "RealBest DNA Rickettsia species" and "RealBest DNA Rickettsia sibirica / Rickettsia heilongjiangensis". NEWS "Vector-Best", 2018, No. 1 (87)). Table 3 presents the data of testing the sera or plasma of patients' blood in ELISA.

Таблица 3. Выявление специфических антител к антигенам риккетсий группы КПЛ в ИФА с применением тест-системы на основе инактивированной растворимой очищенной белково-липополисахаридной антигенной субстанции, выделенной из суспензий цельнорастворимых антигенов Rickettsia sibirica.Table 3. Detection of specific antibodies to Rickettsia antigens of the LPL group in ELISA using a test system based on inactivated soluble purified protein-lipopolysaccharide antigenic substance isolated from suspensions of Rickettsia sibirica whole-soluble antigens.

Спектры выявляемых антител в исследуемых образцахSpectra of detectable antibodies in the test samples Количество образцов с соответствующим спектром антител к антигенам риккетсий группы КПЛThe number of samples with the corresponding spectrum of antibodies to the antigens of the rickettsia group of the LP IgGIgG 19nineteen IgAIgA 2121 IgMIgM 10ten IgG + IgMIgG + IgM 1515 IgM + IgAIgM + IgA 1717 IgG + IgM + IgAIgG + IgM + IgA 44 ВсегоTotal 8686

У пациентов, инфицирование которых было вызвано патогенными для человека видами риккетсий группы КПЛ, в ИФА на основе инактивированной растворимой очищенной белково-липополисахаридной антигенной субстанции, выделенной из Rickettsia sibirica, в образцах (сыворотках или плазме крови) выявлялись специфические антитела.In patients infected with human pathogenic rickettsia species of the LPL group, specific antibodies were detected in the ELISA based on inactivated soluble purified protein-lipopolysaccharide antigenic substance isolated from Rickettsia sibirica in samples (serum or blood plasma).

Таким образом, иммуноферментная тест-система может быть использована не только для диагностики клещевого риккетсиоза (клещевого сыпного тифа Северной Азии), вызываемого Rickettsia sibirica, но также и для диагностики других риккетсиозов группы КПЛ, возбудителями которых могут быть другие патогенные виды риккетсий, объединенных в группу КПЛ (Rickettsia conorii с выделенными подвидами и вызываемыми ими отдельными нозологическими формами риккетсиозов, среди которых наибольшую актуальность для РФ имеют Rickettsia conorii subsp.conorii - возбудитель марсельской лихорадки, Rickettsia conorii subsp.caspensis - возбудитель астраханской пятнистой лихорадки; Rickettsia heilongjiangensis - возбудитель дальневосточной пятнистой лихорадки; Rickettsia africae - возбудитель африканской клещевой лихорадки и другие патогенные виды).Thus, the enzyme-linked immunosorbent system can be used not only for the diagnosis of tick-borne rickettsiosis (tick-borne typhus of North Asia) caused by Rickettsia sibirica, but also for the diagnosis of other rickettsioses of the LP group, the causative agents of which may be other pathogenic types of rickettsia, united in the group LP (Rickettsia conorii with isolated subspecies and the individual nosological forms of rickettsioses caused by them, among which Rickettsia conorii subsp.conorii - the causative agent of Marseilles fever, Rickettsia conorii subsp.caspensis - the causative agent of Astrakhan spotted fever fever ; Rickettsia africae - the causative agent of African tick fever and other pathogenic species).

Следует также особо отметить, что одиночные специфические антитела класса А к антигенам группы КПЛ были обнаружены в сыворотках крови 21 пациента (24,4%) с клиническими признаками острой инфекции риккетсиальной этиологии. Следовательно, дополнительное выявление антител класса А повышает чувствительность и информативность способа диагностики риккетсиозов группы КПЛ.It should also be specially noted that single specific class A antibodies to antigens of the LP group were detected in the blood serum of 21 patients (24.4%) with clinical signs of acute infection of rickettsial etiology. Consequently, additional detection of class A antibodies increases the sensitivity and information content of the method for diagnosing rickettsial diseases of the LP group.

Показано, что дополнительное выявление специфических антител класса А существенно сокращает количество серонегативных результатов в ранний период инфицирования. Подробное подтверждение этому приведено в примерах.It has been shown that additional detection of specific class A antibodies significantly reduces the number of seronegative results in the early period of infection. Detailed confirmation of this is given in the examples.

Все приведенные примеры доказывают, что задача, поставленная в изобретении, решена.All the examples given prove that the problem posed by the invention has been solved.

ПРОМЫШЛЕННАЯ ПРИМЕНИМОСТЬINDUSTRIAL APPLICABILITY

Способ диагностики риккетсиозов группы клещевой пятнистой лихорадки, основанный на раздельном дифференциальном выявлении методом непрямого твердофазного иммуноферментного анализа в сыворотке или плазме крови человека специфических антител классов M, G и A к антигенам риккетсий группы КПЛ, с применением иммуносорбента, полученного на основе инактивированной растворимой очищенной белково-липополисахаридной антигенной субстанции, выделенной из суспензии антигенов Rickettsia sibirica, является чувствительным, специфичным и информативным.A method for diagnosing rickettsial diseases of the tick-borne spotted fever group, based on separate differential detection by the method of indirect enzyme-linked immunosorbent assay in serum or plasma of human blood of specific antibodies of classes M, G and A to the antigens of rickettsia of the LPF group, using an immunosorbent obtained on the basis of inactivated soluble purified protein lipopolysaccharide antigenic substance isolated from a suspension of Rickettsia sibirica antigens is sensitive, specific and informative.

Из-за наличия в составе риккетсий группы КПЛ растворимого (группоспецифического антигена), который неоднороден и включает липополисахарид с высокой гомологией антигенных структур у риккетсий внутри группы и другие антигены белковой природы, серологическая диагностика риккетсиозов группы клещевой пятнистой лихорадки с использованием таких антигенов является группоспецифической, что делает возможным выявление специфических антител к большинству видов патогенных для человека риккетсий в составе группы КПЛ, хотя титр специфических антител к гомологичному антигену (возбудителю), как правило, выше (K. Amano, M. Fujita, T. Suto. Chemical properties of lipopolysaccharides from spotted fever group rickettsiae and their common antigenicity with lipopolysaccharides from Proteus species. Infection of Immunology,1993, v. 61, №10, р. 4350-4355;Due to the presence of a soluble (group-specific antigen) in the composition of rickettsia of the LP group, which is heterogeneous and includes a lipopolysaccharide with a high homology of antigenic structures in rickettsia within the group and other antigens of a protein nature, serological diagnosis of rickettsial diseases of the tick-borne spotted fever group using such antigens is a group specific makes it possible to detect specific antibodies to most types of human pathogenic rickettsiae within the LPL group, although the titer of specific antibodies to a homologous antigen (pathogen) is usually higher (K. Amano, M. Fujita, T. Suto. Chemical properties of lipopolysaccharides from spotted fever group rickettsiae and their common antigenicity with lipopolysaccharides from Proteus species Infection of Immunology, 1993, v. 61, no. 10, pp. 4350-4355;

Здродовский П.Ф., Голиневич Е.М. Учение о риккетсиях и риккетсиозах. Москва, «Медицина», 1972, 495 с;Zdrodovsky P.F., Golinevich E.M. The doctrine of rickettsia and rickettsioses. Moscow, "Medicine", 1972, 495 p;

D. Jones, B. Anderson, J. Olson, C. Greene. Enzyme-Linked Immunosorbent Assay for Detection of Human Immunoglobulin G to Lipopolysaccharide of Spotted Fever Group Rickettsiae. Journal of Clinical Microbiology, 1993, v. 31, №1, p. 138-141).D. Jones, B. Anderson, J. Olson, C. Greene. Enzyme-Linked Immunosorbent Assay for Detection of Human Immunoglobulin G to Lipopolysaccharide of Spotted Fever Group Rickettsiae. Journal of Clinical Microbiology, 1993, v. 31, no. 1, p. 138-141).

Оригинальная методика получения инактивированной растворимой очищенной белково-липополисахаридной антигенной субстанции из суспензии первичных антигенов Rickettsia sibirica, позволяет выделить антигенную субстанцию с аналогичными свойствами и характеристиками из суспензии корпускулярных/цельнорастворимых/растворимых антигенов других патогенных видов риккетсий, включенных в группу КПЛ.The original method of obtaining inactivated soluble purified protein-lipopolysaccharide antigenic substance from a suspension of primary antigens of Rickettsia sibirica allows the isolation of an antigenic substance with similar properties and characteristics from a suspension of corpuscular / whole-soluble / soluble antigens of other pathogenic rickettsia species included in the Rickettsia group.

Разработанная иммуноферментная диагностическая система может быть использована для диагностики риккетсиозов группы КПЛ и верификации диагнозов инфекционных заболеваний риккетсиальной этиологии от других инфекций со схожими клиническими проявлениями. Тест-система, помимо выявления специфических антител классов М и G к антигенам риккетсий группы КПЛ, представляет дополнительную информацию о наличии/отсутствии в сыворотке или плазме крови человека специфических антител класса А, что повышает надежность, информативность и чувствительность иммуноферментного анализа и способа диагностики риккетсиозов группы КПЛ с ее помощью.The developed immunoassay diagnostic system can be used to diagnose rickettsial diseases of the LP group and to verify the diagnoses of infectious diseases of rickettsial etiology from other infections with similar clinical manifestations. The test system, in addition to detecting specific antibodies of classes M and G to antigens of rickettsia of the LP group, provides additional information on the presence / absence of specific antibodies of class A in serum or plasma of a person, which increases the reliability, information content and sensitivity of the enzyme immunoassay and a method for diagnosing rickettsial diseases of the group KPL with her help.

Список литературыList of references

1. Здродовский П.Ф., Голиневич Е.М. Учение о риккетсиях и риккетсиозах. Москва, «Медицина», 1972, 495 с.1. Zdrodovsky P.F., Golinevich E.M. The doctrine of rickettsia and rickettsioses. Moscow, "Medicine", 1972, 495 p.

2. ОФС.1.2.4.0006.15. Бактериальные эндотоксины.2. OFS.1.2.4.0006.15. Bacterial endotoxins.

3. ОФС.1.2.1.0023.15. Электрофорез в полиакриламидном геле.3. OFS.1.2.1.0023.15. Polyacrylamide gel electrophoresis.

4. Рудаков Н.В., Абрамова Н.В., Пеньевская Н.А., Самойленко И.Е., Шпынов С.Н., Решетникова Т.А. Способ лабораторной диагностики клещевого риккетсиоза с использованием иммуноферментного анализа для определения антител к антигену Rickettsia sibirica. Патент RU 2477860, приоритет от 13.08.2010 г.4. Rudakov N.V., Abramova N.V., Penievskaya N.A., Samoilenko I.E., Shpynov S.N., Reshetnikova T.A. Method for laboratory diagnosis of tick-borne rickettsiosis using enzyme-linked immunosorbent assay to determine antibodies to Rickettsia sibirica antigen. Patent RU 2477860, priority from 13.08.2010

5. K. Amano, M. Fujita, T. Suto. Chemical properties of lipopolysaccharides from spotted fever group rickettsiae and their common antigenicity with lipopolysaccharides from Proteus species. Infection of Immunology,1993, v. 61, №10, р. 4350-4355.5. K. Amano, M. Fujita, T. Suto. Chemical properties of lipopolysaccharides from spotted fever group rickettsiae and their common antigenicity with lipopolysaccharides from Proteus species. Infection of Immunology, 1993, v. 61, no. 10, p. 4350-4355.

6. http://www.fullerlabs.com.6.http: //www.fullerlabs.com.

7. D. Jones, B. Anderson, J. Olson, C. Greene. Enzyme-Linked Immunosorbent Assay for Detection of Human Immunoglobulin G to Lipopolysaccharide of Spotted Fever Group Rickettsiae. Journal of clinical microbiology, 1993, v. 31, №1, p. 138-141.7. D. Jones, B. Anderson, J. Olson, C. Greene. Enzyme-Linked Immunosorbent Assay for Detection of Human Immunoglobulin G to Lipopolysaccharide of Spotted Fever Group Rickettsiae. Journal of clinical microbiology, 1993, v. 31, no. 1, p. 138-141.

8. Teysseire N, Raoult D. Comparison of western immunoblotting and microimmunofluorescence for diagnosis of Mediterranean spotted fever. Journal of Clinical Microbiology, 1992, v. 30, №2, р. 455-460.8. Teysseire N, Raoult D. Comparison of western immunoblotting and microimmunofluorescence for diagnosis of Mediterranean spotted fever. Journal of Clinical Microbiology, 1992, v. 30, no. 2, p. 455-460.

9. Е.И. Бондаренко, Л.Д. Щучинова, Д.И. Тимофеев и др. Выявление генетических маркеров возбудителей клещевых риккетсиозов в ПЦР с помощью наборов реагентов «РеалБест ДНК Rickettsia species» и «РеалБест ДНК Rickettsia sibirica/ Rickettsia heilongjiangensis». НОВОСТИ «Вектор-Бест», 2018, №1 (87).9.E.I. Bondarenko, L. D. Shchuchinova, D.I. Timofeev et al. Identification of genetic markers of tick-borne rickettsiosis pathogens in PCR using reagent kits "RealBest DNA Rickettsia species" and "RealBest DNA Rickettsia sibirica / Rickettsia heilongjiangensis". NEWS "Vector-Best", 2018, №1 (87).

СПИСОК СОКРАЩЕНИЙLIST OF ABBREVIATIONS

АВИ - аденовирусная инфекцияAVI - adenovirus infection

АПЛ - астраханская пятнистая лихорадкаAPL - Astrakhan spotted fever

ИФА - иммуноферментный анализELISA - enzyme immunoassay

K+ - положительный контрольный образец в составе тест-системыK + - positive control sample in the test system

K - - отрицательный контрольный образец в составе тест-системыK - - negative control sample as part of the test system

КПП - клещевая пятнистая лихорадкаCAT - tick-borne spotted fever

КР - клещевой риккетсиозKR - tick-borne rickettsiosis

ЛАЛ (англ. LAL - сокр. Лизат амебоцитов Limulus) - тест на содержание бактериальных эндотоксиновLAL (English LAL - abbreviation Limulus amebocyte lysate) - test for the content of bacterial endotoxins

ЛПС - липополисахаридLPS - lipopolysaccharide

ОП - оптическая плотностьOD - optical density

ОПкрит - критическое (пороговое) значение оптической плотностиOPcrit - critical (threshold) value of optical density

ПЦР - полимеразно-цепная реакцияPCR - polymerase chain reaction

РИФ - реакция иммунофлуоресценцииRIF - reaction of immunofluorescence

РНИФ - реакция непрямой иммунофлуоресценцииRNIF - reaction of indirect immunofluorescence

РРК - раствор для разведения конъюгатовRRK - dilution solution for conjugates

РРО - раствор для разведения образцовPPO - sample dilution solution

РСК - реакция связывания комплементаRSK - complement binding reaction

ТМБ - 3',5'-тетраметилбензидин (хромоген)TMB - 3 ', 5'-tetramethylbenzidine (chromogen)

ФСР-Т - фосфатно-солевой раствор с твином 20.FSR-T - phosphate-saline solution with tween 20.

Claims (6)

1. Способ получения инактивированной растворимой очищенной белково-липополисахаридной антигенной субстанции Rickettsia sibirica для приготовления основного компонента тест-системы – иммуносорбента, заключающийся в том, что инактивированный лиофилизированный цельнорастворимый антиген Rickettsia sibirica ресуспендируют в буфере состава 10mM трис-HCl и 0,5 M хлорида натрия, рН-7,4-7,6, содержащем 8 М мочевину, далее суспензию антигена подвергают ультразвуковой обработке при частоте 15-23 кГц в течение 15-30 минут с последующим центрифугированием при 10000 -12000g и отбирают супернатант, затем проводят эксклюзионную хроматографию супернатанта на колонке с хроматографическим сорбентом, после чего фракции оценивают на специфическую антигенную активность в ИФА с применением сыворотки или плазмы крови человека, содержащих и не содержащих специфические антитела к антигенам риккетсий группы клещевой пятнистой лихорадки КПЛ, и проводят дальнейшее объединение фракций первого пика и соседних с ним, которые продемонстрировали в ИФА наилучшее соотношение средних значений оптической плотности ОП положительных контрольных образцов сывороток или плазмы крови человека, содержащих антитела к антигенам риккетсий клещевой пятнистой лихорадки КПЛ, к средним значениям оптической плотности ОП отрицательных контрольных образцов, не содержащих антитела к антигенам риккетсий клещевой пятнистой лихорадки КПЛ, при этом остальные фракции, демонстрирующие в ИФА снижение оптической плотности ОП(+) по отношению к оптической плотности ОП(-) на 30% и более по сравнению со средним значением ОП(+) к ОП(-), вычисленным для фракций первого пика, исключают.1. A method of obtaining inactivated soluble purified protein-lipopolysaccharide antigenic substanceRickettsia sibirica for the preparation of the main component of the test system - an immunosorbent, which consists in the fact that the inactivated lyophilized whole-soluble antigenRickettsia sibirica resuspended in 10mM composition buffer tris-HCl and 0.5 M sodium chloride, pH-7.4-7.6, containing 8 M urea, then the antigen suspension is subjected to ultrasonic treatment at a frequency of 15-23 kHz for 15-30 minutes, followed by centrifugation at 10,000 - 12000g and the supernatant is taken, then size exclusion chromatography of the supernatant is carried out on a column with a chromatographic sorbent, after which the fractions are assessed for specific antigenic activity in ELISA using human serum or plasma, containing and not containing specific antibodies to the antigens of the rickettsia group of tick-borne spotted fever LPF, and carry out further combining of the fractions of the first peak and those adjacent to it, which demonstrated in ELISA the best ratio of the mean values of the optical density of the OD of positive control samples of human serum or plasma containing antibodies to the antigens of rickettsia tick-borne spotted fever LPF, to the mean values of the optical density of OD of negative control samples not containing antibodies to the antigens of rickettsiae of tick-borne fever LP, while the remaining fractions showing in ELISA a decrease in the optical density of OP (+) relative to the optical density of OP (-) by 30% or more compared to the average value of OP (+) to OP ( -) calculated for the fractions of the first peak are excluded. 2. Иммуноферментная диагностическая тест-система для анализа сыворотки или плазмы крови человека и осуществления диагностики риккетсиозов группы клещевой пятнистой лихорадки, включающая: планшет для иммуноферментного анализа с адсорбированным в лунках иммуносорбентом, полученным на основе инактивированной растворимой очищенной белково-липополисахаридной антигенной субстанции, клещевой пятнистой лихорадки Rickettsia sibirica по п.1, с маркированными параллельными рядами лунок: для выявления специфических IgA - первый ряд, для выявления специфических IgМ – второй ряд, для выявления специфических IgG- третий ряд, три конъюгата: анти-IgA человека, анти-IgМ человека и анти-IgG человека, меченных пероксидазой хрена, кроме того, вспомогательные растворы: раствор для разведения образцов, раствор для разведения конъюгатов, хромоген 3′,5′–тетраметилбензидин ТМБ, стоп-реагент, концентрат фосфатно-солевового раствора с твином 20 - ФСР-Т, положительный и отрицательный контрольные образцы: К+ и К, где в качестве положительного и отрицательного контрольных образцов К+ и К используют сыворотку или плазму крови человека или пул сывороток или плазм крови человека, содержащих и соответственно не содержащих специфические антитела классов А, М, G к антигенам риккетсий группы клещевой пятнистой лихорадки КПЛ. 2. Immunoassay diagnostic test system for the analysis of human serum or plasma and the diagnosis of rickettsioses of the group of tick-borne spotted fever, including: a plate for enzyme-linked immunosorbent assay with an immunosorbent adsorbed in the wells, obtained on the basis of inactivated soluble purified protein-lipopolysaccharide antigen spotty substance, Rickettsia sibirica according to claim 1, with marked parallel rows of wells: for detecting specific IgA - the first row, for detecting specific IgM - second row, for detecting specific IgG - third row, three conjugates: human anti-IgA, human anti-IgM and anti-human IgG labeled with horseradish peroxidase, in addition, auxiliary solutions: solution for diluting samples, solution for diluting conjugates, chromogen 3 ', 5'-tetramethylbenzidine TMB, stop reagent, concentrate of phosphate-saline solution with tween 20 - PSR- T, positive and negative control samples: K + and K, g de as positive and negative control samples K + and K use serum or plasma of human blood or a pool of serum or plasma of human blood containing and, accordingly, not containing specific antibodies of classes A, M, G to the antigens of rickettsia group of tick-borne spotted fever LP. 3. Иммуноферментная диагностическая тест-система по п. 2, в которой антигены риккетсий группы клещевой пятнистой лихорадки КПЛ – это, как минимум, Rickettsia conorii, Rickettsia sibirica, Rickettsia heilongjangensis. 3. Immunoassay diagnostic test system according to claim 2, in which the antigens of the rickettsia group of tick-borne spotted fever LPF are at least Rickettsia conorii , Rickettsia sibirica, Rickettsia heilongjangensis. 4. Способ диагностики риккетсиозов группы клещевой пятнистой лихорадки КПЛ, в котором сыворотку или плазму крови пациента с подозрением на риккетсиоз, вызываемый возбудителем группы КПЛ исследуют на наличие специфических антител методом твердофазного иммуноферментного анализа ИФА, отличающийся тем, что проводят раздельное дифференциальное выявление антител классов М, G и А в сыворотке или плазме крови человека с использованием иммуноферментной диагностической тест-системы по п.2, в которой использован иммуносорбент, полученный на основе инактивированной растворимой очищенной белково-липополисахаридной антигенной субстанции Rickettsia sibirica по п.1, при этом в лунки параллельных рядов с адсорбированным иммуносорбентом вносят по 100 мкл в лунку разведения исследуемых образцов сыворотки или плазмы крови человека и контрольных образцов К+ и К-, приготовленных с применением раствора для разведения образцов: в начальных разведениях 1:10 для выявления специфических антител класса А - первый ряд лунок; 1:20 для выявления специфических антител класса M - второй ряд лунок; 1:40 для выявления специфических антител класса G - третий ряд лунок, затем проводят инкубирование разведенных исследуемых и контрольных образцов при 37 – 38 °C в течение 45 - 60 мин, иммуносорбент промывают рабочим раствором ФСР-Т 5-6 раз, вносят в соответствующие ряды лунок с иммуносорбентом и образцами по 100 мкл в лунку рабочие разведения конъюгатов анти-IgA человека, анти-IgМ человека и анти-IgG человека, меченных пероксидазой хрена, проводят инкубирование при 37 – 38 °C в течение 30 - 60 мин, иммуносорбент промывают ФСР-Т 5-6 раз, в каждую лунку иммуносорбента вносят по 100 мкл хромогена 3′,5′–тетраметилбензидин ТМБ и выдерживают 10 – 30 мин при комнатной температуре, защищая планшет от прямого света, далее ферментативную реакцию останавливают добавлением 50-100 мкл стоп-реагента и проводят спектрометрическое измерение оптической плотности ОП при длине волны 450 нм, раздельно вычисляют пороговое значение оптической плотности ОПкрит для каждого класса антител М, G и А по формуле: 4. A method for diagnosing rickettsioses of the group of tick-borne spotted fever LP, in which the serum or blood plasma of a patient with suspected rickettsiosis caused by the causative agent of the LP group is examined for the presence of specific antibodies by ELISA, characterized in that separate differential detection of antibodies of classes M is carried out, G and A in serum or plasma of human blood using an immunoassay diagnostic test system according to claim 2, in which an immunosorbent obtained on the basis of an inactivated soluble purified protein-lipopolysaccharide antigenic substance Rickettsia sibirica according to claim 1 is used, while in the wells of parallel rows with the adsorbed immunosorbent, 100 μl are added to the dilution well of the test samples of human serum or plasma and control samples K + and K- prepared using a solution for diluting samples: in initial dilutions of 1:10 to detect specific antibodies of class A - the first a row of holes; 1:20 for the detection of specific antibodies of class M - the second row of wells; 1:40 for the detection of specific antibodies of class G - the third row of wells, then the diluted test and control samples are incubated at 37 - 38 ° C for 45 - 60 min, the immunosorbent is washed with the FSR-T working solution 5-6 times, added to the appropriate rows of wells with immunosorbent and samples, 100 μl per well, working dilutions of human anti-IgA, human anti-IgM and human anti-IgG conjugates labeled with horseradish peroxidase, incubated at 37-38 ° C for 30-60 minutes, the immunosorbent is washed FSR-T 5-6 times, 100 μl of chromogen 3 ′, 5′-tetramethylbenzidine TMB is added to each well of the immunosorbent and kept for 10 - 30 minutes at room temperature, protecting the plate from direct light, then the enzymatic reaction is stopped by adding 50-100 μl stop reagent and carry out spectrometric measurement of optical density of OP at a wavelength of 450 nm, separately calculate the threshold value of optical density OPcrit for each class of antibodies M, G and A according to the formula: ОПкрит = среднее значение ОП К- + 0,2, OPcrit = average value of OP K- + 0.2, где ОП К- – среднее значение оптической плотности в лунках соответствующих рядов с внесенным отрицательным контрольным образцом К-, при этом исследуемый образец содержит специфические антитела М, или G, или А, если его значение оптической плотности ОП превышает или равно ОП крит.where OD K- is the average value of the optical density in the wells of the corresponding rows with a negative control sample K-, while the test sample contains specific antibodies M, or G, or A, if its OD value exceeds or is equal to OD crit.
RU2019113159A 2019-04-29 2019-04-29 Diagnostic technique for rickettsial diseases group of spotted fever, immunoassay diagnostic test system for implementation thereof RU2726484C1 (en)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2019113159A RU2726484C1 (en) 2019-04-29 2019-04-29 Diagnostic technique for rickettsial diseases group of spotted fever, immunoassay diagnostic test system for implementation thereof

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2019113159A RU2726484C1 (en) 2019-04-29 2019-04-29 Diagnostic technique for rickettsial diseases group of spotted fever, immunoassay diagnostic test system for implementation thereof

Publications (1)

Publication Number Publication Date
RU2726484C1 true RU2726484C1 (en) 2020-07-14

Family

ID=71616414

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
RU2019113159A RU2726484C1 (en) 2019-04-29 2019-04-29 Diagnostic technique for rickettsial diseases group of spotted fever, immunoassay diagnostic test system for implementation thereof

Country Status (1)

Country Link
RU (1) RU2726484C1 (en)

Citations (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2122427C1 (en) * 1994-06-03 1998-11-27 Научно-производственное объединение "Биомед" Method of preparing corpuscular rickettsial sibirica diagnosticum
US6528325B1 (en) * 2000-10-13 2003-03-04 Dexall Biomedical Labs, Inc. Method for the visual detection of specific antibodies in human serum by the use of lateral flow assays
RU2477860C2 (en) * 2010-08-13 2013-03-20 Федеральное государственное учреждение науки "Омский научно-исследовательский институт природноочаговых инфекций" Федеральной службы по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека Laboratory diagnostic technique for tick typhus with use of enzyme-linked immunoelectrodiffusion assay for detecting antibodies to rickettsia sibirica antigen
WO2015023626A1 (en) * 2013-08-13 2015-02-19 The Brigham And Women's Hospital, Inc. Sensitive diagnostic assay for inclusion body myositis

Patent Citations (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2122427C1 (en) * 1994-06-03 1998-11-27 Научно-производственное объединение "Биомед" Method of preparing corpuscular rickettsial sibirica diagnosticum
US6528325B1 (en) * 2000-10-13 2003-03-04 Dexall Biomedical Labs, Inc. Method for the visual detection of specific antibodies in human serum by the use of lateral flow assays
RU2477860C2 (en) * 2010-08-13 2013-03-20 Федеральное государственное учреждение науки "Омский научно-исследовательский институт природноочаговых инфекций" Федеральной службы по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека Laboratory diagnostic technique for tick typhus with use of enzyme-linked immunoelectrodiffusion assay for detecting antibodies to rickettsia sibirica antigen
WO2015023626A1 (en) * 2013-08-13 2015-02-19 The Brigham And Women's Hospital, Inc. Sensitive diagnostic assay for inclusion body myositis

Non-Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
RAUCH J. et al. Typhus Group Rickettsiosis, Germany, 2010-2017 // Emerging Infectious Diseases, 2018, V.24, pp.1213-1220. *

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Ashdown et al. Enzyme-linked immunosorbent assay for the diagnosis of clinical and subclinical melioidosis
Leinonen et al. Circulating immune complexes containing chlamydial lipopolysaccharide in acute myocardial infarction
JP2738947B2 (en) Antigen compositions and their preparation and use
Crabtree et al. Evaluation of a commercial ELISA for serodiagnosis of Helicobacter pylori infection.
US6916626B1 (en) Detection of Candida
Marangoni et al. Laboratory diagnosis of syphilis with automated immunoassays
AU2002248996A1 (en) Detection of candida
Alexander et al. Performance of Meridian ImmunoCard Mycoplasma test in a multicenter clinical trial
WO2008108510A1 (en) Diagnostic kit for leptospirosis
Chenthamarakshan et al. Detection of immunoglobulins M and G using culture filtrate antigen of Burkholderia pseudomallei
Huldt et al. Echinococcosis in northern Scandinavia
Baldi et al. Diagnosis of canine brucellosis by detection of serum antibodies against an 18 kDa cytoplasmic protein of Brucella spp.
Barrouin-Melo et al. Diagnosis of canine brucellosis by ELISA using an antigen obtained from wild Brucella canis
Ren et al. A brief review of diagnosis of small ruminants brucellosis
Bruderer et al. Serodiagnosis and monitoring of contagious bovine pleuropneumonia (CBPP) with an indirect ELISA based on the specific lipoprotein LppQ of Mycoplasma mycoides subsp. mycoides SC
RU2726484C1 (en) Diagnostic technique for rickettsial diseases group of spotted fever, immunoassay diagnostic test system for implementation thereof
WO2011130546A1 (en) Methods for differentiating between crohn's disease and other inflammatory bowel conditions
Keysary et al. Use of enzyme-linked immunosorbent assay techniques with cross-reacting human sera in diagnosis of murine typhus and spotted fever
RU2339952C1 (en) Method for differential diagnostics of pseudo-tuberculosis and intestinal yersiniosis and diagnostic set for its realisation
NO317151B1 (en) Paving of antibody production
Aktas et al. Evaluation of the fluorescent treponemal antibody absorption test for detection of antibodies (immunoglobulins G and M) to Treponema pallidum in serologic diagnosis of syphilis
Mohammadi et al. Advantage of using a home-made ELISA kit for detection of Helicobacter pylori infection over commercially imported kits
Krbková et al. Assessment of antibodies against surface and outer membrane proteins of Anaplasma phagocytophilum in Lyme borreliosis and tick-borne encephalitis paediatric patients
US20100159488A1 (en) Method for the multiplex serological diagnosis in vitro of spirochete infections
RU2394496C1 (en) Syphilis diagnostic technique by simultaneous detection of reaginic and treponema-specific t pallidum antibodies on microscope aldehyde slides