RU2713273C1 - Method for producing culture media for bifido- and lactobacteria cultivation - Google Patents

Method for producing culture media for bifido- and lactobacteria cultivation Download PDF

Info

Publication number
RU2713273C1
RU2713273C1 RU2018143793A RU2018143793A RU2713273C1 RU 2713273 C1 RU2713273 C1 RU 2713273C1 RU 2018143793 A RU2018143793 A RU 2018143793A RU 2018143793 A RU2018143793 A RU 2018143793A RU 2713273 C1 RU2713273 C1 RU 2713273C1
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
bifidobacterium
starch
lactobacillus
containing grain
grain raw
Prior art date
Application number
RU2018143793A
Other languages
Russian (ru)
Inventor
Наталья Юрьевна Хромова
Борис Алексеевич Кареткин
Вероника Дмитриевна Грошева
Наталья Викторовна Хабибулина
Ирина Васильевна Шакир
Виктор Иванович Панфилов
Original Assignee
Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования "Российский химико-технологический университет имени Д.И. Менделеева" (РХТУ им. Д.И. Менделеева)
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования "Российский химико-технологический университет имени Д.И. Менделеева" (РХТУ им. Д.И. Менделеева) filed Critical Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования "Российский химико-технологический университет имени Д.И. Менделеева" (РХТУ им. Д.И. Менделеева)
Priority to RU2018143793A priority Critical patent/RU2713273C1/en
Application granted granted Critical
Publication of RU2713273C1 publication Critical patent/RU2713273C1/en

Links

Classifications

    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N1/00—Microorganisms, e.g. protozoa; Compositions thereof; Processes of propagating, maintaining or preserving microorganisms or compositions thereof; Processes of preparing or isolating a composition containing a microorganism; Culture media therefor
    • C12N1/20—Bacteria; Culture media therefor
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N1/00—Microorganisms, e.g. protozoa; Compositions thereof; Processes of propagating, maintaining or preserving microorganisms or compositions thereof; Processes of preparing or isolating a composition containing a microorganism; Culture media therefor
    • C12N1/20—Bacteria; Culture media therefor
    • C12N1/205—Bacterial isolates
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N9/00—Enzymes; Proenzymes; Compositions thereof; Processes for preparing, activating, inhibiting, separating or purifying enzymes
    • C12N9/14—Hydrolases (3)
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12R—INDEXING SCHEME ASSOCIATED WITH SUBCLASSES C12C - C12Q, RELATING TO MICROORGANISMS
    • C12R2001/00—Microorganisms ; Processes using microorganisms
    • C12R2001/01—Bacteria or Actinomycetales ; using bacteria or Actinomycetales
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12R—INDEXING SCHEME ASSOCIATED WITH SUBCLASSES C12C - C12Q, RELATING TO MICROORGANISMS
    • C12R2001/00—Microorganisms ; Processes using microorganisms
    • C12R2001/01—Bacteria or Actinomycetales ; using bacteria or Actinomycetales
    • C12R2001/225—Lactobacillus

Abstract

FIELD: biotechnologies.
SUBSTANCE: invention relates to the biotechnology. Method of producing culture media for culturing bifido- and lactobacteria involves preparing nutrient media based on hydrolysates of starch-containing grain raw material obtained by pretreating suspensions of renewable starch-containing grain material in ratio with water 1:5–1:40 proteolytic enzyme preparations in dose of 0.5–4.0 % and amylolytic enzyme preparations in dose of 1.0–3.0 %. Wheat, rye, peas or buckwheat are used as a renewable starch-containing grain raw material.
EFFECT: invention allows increasing the number of viable bifido- and lactobacteria cells.
1 cl, 2 tbl, 4 ex

Description

Настоящее изобретение относится к получению питательных сред с использованием крахмалосодержащего зернового сырья для выращивания бифидо- и лактобактерий, и может быть использовано в биотехнологии, пищевых производствах и при получении кормовых добавок для сельскохозяйственных животных, птиц и аквакультур.The present invention relates to the production of nutrient media using starch-containing grain raw materials for growing bifidobacteria and lactobacilli, and can be used in biotechnology, food production and in the preparation of feed additives for farm animals, birds and aquaculture.

Известен способ получения питательной среды для выращивания бифидобактерий на основе кислотно-щелочного гидролизата бобовых, в частности гороха, с добавлением пептона, лактозы, хлористого натрия и агара (патент RU №94026139). При этом среды, получаемые на основе кислотно-щелочного гидролизата гороха, люпина или люцерны, обеспечивают наращивание биомассы бифидобактерий к 16-24 ч культивирования с числом живых клеток не ниже 108 КОЕ/мл. Основным недостатком изобретения является использование для гидролиза возобновляемого растительного сырья химически агрессивных кислот и щелочей, что может приводить к образованию побочных продуктов, ингибирующих рост пробиотических микроорганизмов.A known method of obtaining a nutrient medium for growing bifidobacteria based on an acid-base hydrolyzate of legumes, in particular peas, with the addition of peptone, lactose, sodium chloride and agar (patent RU No. 94026139). At the same time, the media obtained on the basis of the acid-base hydrolyzate of peas, lupine or alfalfa provide an increase in the biomass of bifidobacteria by 16-24 hours of cultivation with the number of living cells not lower than 10 8 CFU / ml. The main disadvantage of the invention is the use for the hydrolysis of renewable plant materials of chemically aggressive acids and alkalis, which can lead to the formation of by-products that inhibit the growth of probiotic microorganisms.

Известен способ получения функционального продукта питания культивированием штамма пробиотических бактерий Bifidobacterium lactis Bb-12 на гидролизатах пшеничных отрубей, полученных при обработке а-амилазами и комплексами ксиланаз, гемицеллюлаз, глюканаз и целлюлаз. Содержание активных бифидобактерий в конечном продукте составляло 105 КОЕ/г (Radenkovs V. et al. Wheat Bran Carbohydrates as Substrate for Bifidobacterium lactis Development. International Journal of Biological, Biomolecular, Agricultural, Food and Biotechnological Engineering. 2013. Vol.7. No.7. P. 605-610). При этом дополнительные компоненты, а именно источники белковых соединений, которые могли бы стимулировать рост культуры, в гидролизаты не вносили и в то же время предварительную обработку белковых веществ субстрата для повышения их биодоступности протеолитическими ферментными препаратами также не осуществляли, в результате чего содержание бактерий в продукте было сравнительно не велико.A known method of obtaining a functional food product by cultivating a strain of probiotic bacteria Bifidobacterium lactis Bb-12 on wheat bran hydrolysates obtained by treatment with a-amylases and complexes of xylanases, hemicellulases, glucanases and cellulases. The content of active bifidobacteria in the final product was 10 5 CFU / g (Radenkovs V. et al. Wheat Bran Carbohydrates as Substrate for Bifidobacterium lactis Development. International Journal of Biological, Biomolecular, Agricultural, Food and Biotechnological Engineering. 2013. Vol. 7. .7. P. 605-610). In this case, additional components, namely sources of protein compounds that could stimulate the growth of culture, were not added to the hydrolysates and at the same time, preliminary treatment of protein substances of the substrate to increase their bioavailability with proteolytic enzyme preparations was also not carried out, as a result of which the content of bacteria in the product was comparatively not great.

Известен способ получения питательных сред для молочнокислых бактерий на основе солода, ячменя и пшеницы, заключающийся в четырехкратной экстракции белковых и углеводных компонентов центрифугированием водных суспензий муки с последующей стерилизацией. При этом наибольший рост лактобактерий наблюдался на солодовой питательной среде и достигал 8,1-10,1 log10 (КОЕ/мл) (Charalampopoulos D. et al. Growth studies of potentially probiotic lactic acid bacteria in cereal-based substrates. Journal of Applied Microbiology. 2002. No.92. P. 851-859). Основным недостатком такого способа получения питательных сред является неполное использование потенциала компонентов муки зерновых молочнокислыми бактериями, лишь частично экстрагируемых в раствор.A known method of obtaining a nutrient medium for lactic acid bacteria based on malt, barley and wheat, which consists in four times the extraction of protein and carbohydrate components by centrifugation of aqueous suspensions of flour with subsequent sterilization. The highest growth of lactobacilli was observed on malt culture medium and reached 8.1-10.1 log 10 (CFU / ml) (Charalampopoulos D. et al. Growth studies of potentially probiotic lactic acid bacteria in cereal-based substrates. Journal of Applied Microbiology. 2002. No.92. P. 851-859). The main disadvantage of this method of obtaining nutrient media is the incomplete use of the potential of the components of cereal flour with lactic acid bacteria, which are only partially extracted into the solution.

Наиболее близким к заявленному способу является патент США №6159724 «Способ получения питательных сред для культивирования дрожжей и молочнокислых бактерий» (прототип). Способ включает в себя три варианта приготовления питательной среды: 1) питательную среду готовят с использованием автолизата дрожжей, зерна и ростков пшеницы, а также крахмала и глютена; 2) питательную среду готовят аналогично первой, но вместо глютена, она содержит белки 3) питательную среду готовят объединением питательных сред, полученных по 1 и 2 варианту. В питательные среды добавляют ферменты альфа-амилазы и амилоглюкозидазу для гидролиза крахмала в глюкозу. Кроме того, для гидролиза клейковины и протеинов в ароматические пептиды и свободные аминокислоты, стимулирующие микробный рост, также добавляют протеолитические ферменты. Среду стерилизуют и добавляют поваренную или морскую соль. Гидролиз ферментами проводят без поддержания рН. Питательные среды инокулируют индивидуальными культурами дрожжей или молочнокислых бактерий, либо проводят совместное культивирование. Недостатком изобретения является использование в среде дрожжевого автолизата и поваренной соли, которые могут повлиять на органолептические свойства конечного жидкого функционального пищевого продукта. Также в работе не рассматривается возможность культивирования на гидролизатах зернового сырья бифидобактерий.Closest to the claimed method is US patent No. 6159724 "Method for producing culture media for the cultivation of yeast and lactic acid bacteria" (prototype). The method includes three options for preparing a nutrient medium: 1) a nutrient medium is prepared using an autolysate of yeast, wheat and wheat germ, as well as starch and gluten; 2) the nutrient medium is prepared similarly to the first, but instead of gluten, it contains proteins; 3) the nutrient medium is prepared by combining the nutrient medium obtained in option 1 and 2. Alpha amylase and amyloglucosidase enzymes are added to culture media to hydrolyze starch into glucose. In addition, proteolytic enzymes are also added to the aromatic peptides and free amino acids that stimulate microbial growth to hydrolyze gluten and proteins. The medium is sterilized and table or sea salt is added. Hydrolysis by enzymes is carried out without maintaining the pH. Nutrient media are inoculated with individual cultures of yeast or lactic acid bacteria, or they are co-cultured. The disadvantage of the invention is the use of yeast autolysate and sodium chloride in the medium, which can affect the organoleptic properties of the final liquid functional food product. Also, the possibility of culturing bifidobacteria on cereal raw materials on hydrolysates is not considered.

Технической задачей настоящего изобретения является повышение биодоступности протеина и глюкозы для пробиотических бактерий в питательных средах на основе крахмалосодержащего зернового сырья путем обработки протеолитическими и амилолитическими ферментными препаратами таким образом, что внесение дополнительных дорогостоящих компонентов животного происхождения не требуется, а внесение дрожжевых добавок, которые отрицательно влияют на органолептические показатели пробиотических продуктов, ограничено.An object of the present invention is to increase the bioavailability of protein and glucose for probiotic bacteria in nutrient media based on starch-containing grain raw materials by treatment with proteolytic and amylolytic enzyme preparations so that the introduction of additional expensive components of animal origin is not required, and the introduction of yeast additives that adversely affect organoleptic indicators of probiotic products, limited.

Поставленная задача решается путем получения питательных сред для культивирования бифидо- и лактобактерий, представляющих собой Lactobacillus rhamnosus или Lactobacillus bulgaricus или Lactobacillus acidophilus или Lactobacillus helveticus или Lactobacillus paracasei или Lactobacillus plantarum или Bifidobacterium adolescentis или Bifidobacterium breve или Bifidobacterium bifidum или Bifidobacterium infantis или Bifidobacterium pseudolongum или Bifidobacterium longam, полученных посредством предварительной обработки суспензий возобновляемого крахмалосодержащего зернового сырья в соотношении с водой 1:5 - 1:40 протеолитическим ферментным препаратом Protex 40Е или Панкреатин в дозировке 0,5-4,0% по отношению к содержанию белка и амилолитическим ферментным препаратом Duozyme в дозировке 1,0-3,0%. по отношению к содержанию сухого вещества. Содержание пробиотических: бактерий на конец культивирования без поддержания рН составляет не менее 108 КОЕ/мл, в условиях pH-статирования - не менее 109 КОЕ/мл.The problem is solved by preparing culture media for the cultivation of bifidobacteria and lactobacilli, representing Lactobacillus rhamnosus or Lactobacillus bulgaricus or Lactobacillus acidophilus or Lactobacillus helveticus, or Lactobacillus paracasei or Lactobacillus plantarum or Bifidobacterium adolescentis or Bifidobacterium breve or Bifidobacterium bifidum, or Bifidobacterium infantis and Bifidobacterium pseudolongum or Bifidobacterium longam obtained by pre-treating suspensions of renewable starch-containing grain raw materials in a ratio of 1: 5 to 1:40 with proteolytic enzyme preparation Protex 40E or Pancreatin in dosage of 0.5-4.0% in relation to the protein content and amylolytic enzyme preparation Duozyme in a dosage of 1.0-3.0%. in relation to the dry matter content. The content of probiotic: bacteria at the end of cultivation without maintaining the pH is at least 10 8 CFU / ml, under conditions of pH-statization - at least 10 9 CFU / ml.

Технический результат настоящего изобретения заключается в повышении биодоступности крахмалосодержащего зернового сырья, как источника азота и углерода для пробиотических бактерий, что ведет к увеличению концентрации жизнеспособных клеток с 105-106 КОЕ/мл до 108-109 КОЕ/мл, и создании на основе полученных гидролизатов питательных сред и новых ферментированных пробиотических продуктов, способствующих расширению ассортимента продукции, в том числе, с высоким содержанием бифидобактерий, для производства которых не используется сырье животного происхождения, а также либо сокращении (за счет ферментативных гидролизатов и экстрактов растительного сырья), либо полном исключении дополнительных питательных компонентов в среде. Ниже приведены примеры реализации способа.The technical result of the present invention is to increase the bioavailability of starch-containing grain raw materials as a source of nitrogen and carbon for probiotic bacteria, which leads to an increase in the concentration of viable cells from 10 5 -10 6 CFU / ml to 10 8 -10 9 CFU / ml, and the creation of based on the obtained hydrolysates of nutrient media and new fermented probiotic products that contribute to the expansion of the product range, including those with a high content of bifidobacteria, for the production of which raw materials are not used deleterious origin, as well as any reduction (through enzymatic hydrolysates and plant extracts raw materials), or complete elimination of additional nutrients in the environment. The following are examples of the implementation of the method.

Пример 1. Крахмалосодержащее зерновое сырье смешивают с дистиллированной водой в соотношении 1:5-1:40, суспензию стерилизуют автоклавированием и инокулируют пробиотическими микроорганизмами. Рост бактерий В. adolescentis после 24 ч ферментации отсутствовал. При культивировании на суспензиях лактобактерий конечное содержание L. plantarum не превышало 105 КОЕ/мл при использовании гречневой муки и 106 КОЕ/мл при использовании пшеничной муки.Example 1. Starch-containing grain raw materials are mixed with distilled water in a ratio of 1: 5-1: 40, the suspension is sterilized by autoclaving and inoculated with probiotic microorganisms. The growth of B. adolescentis bacteria after 24 hours of fermentation was absent. When cultured on suspensions of lactobacilli, the final content of L. plantarum did not exceed 10 5 CFU / ml when using buckwheat flour and 10 6 CFU / ml when using wheat flour.

Пример 2. Муку крахмалосодержащего зернового сырья смешивают с дистиллированной водой, суспензию стерилизуют автоклавированием в течение 5 мин, охлаждают до температуры гидролиза, помещают в термостатируемую водяную баню и вносят амилолитический ферментный препарат Duozyme (Novosymes). Осахаривание и разжижение крахмала проводят в течение 90 мин при температуре 60°С и рН 5,5. Затем вносят протеолитический ферментный препарат Protex 40Е (Genencor). Гидролиз протеина муки проводят в течение 90 мин при температуре 60°С и рН 8,6. В полученный стерильный ферментолизат вносят инокулят суточной культуры молочнокислых бактерий и ферментируют в течение 15-24 ч без поддержания рН (таблица 1).Example 2. The flour of starch-containing grain raw materials is mixed with distilled water, the suspension is sterilized by autoclaving for 5 minutes, cooled to the hydrolysis temperature, placed in a thermostatic water bath and the Duozyme amylolytic enzyme preparation (Novosymes) is introduced. Saccharification and liquefaction of starch is carried out for 90 minutes at a temperature of 60 ° C and a pH of 5.5. Then make proteolytic enzyme preparation Protex 40E (Genencor). The hydrolysis of protein flour is carried out for 90 min at a temperature of 60 ° C and a pH of 8.6. The inoculum of a daily culture of lactic acid bacteria was added to the obtained sterile fermentolizate and fermented for 15-24 hours without maintaining the pH (table 1).

Figure 00000001
Figure 00000001

Figure 00000002
Figure 00000002

Использование гидромодуля менее 1:5 приводит к ухудшению реологических свойств, а гидромодуля более 1:40 к уменьшению численности жизнеспособных клеток.The use of a hydromodule less than 1: 5 leads to a deterioration in the rheological properties, and a hydromodule more than 1:40 leads to a decrease in the number of viable cells.

Пример 3. Пшеничную муку высшего сорта смешивают с дистиллированной водой, помещают в термостатируемую водяную баню и вносят протеолитический ферментный препарат Панкреатин (Panreac). Гидролиз протеина пшеничной муки проводят в течение 90 мин при температуре 40°С и рН 8,0. Ферментолизат фильтруют через бельтинг и на его основе готовят питательную среду с добавлением дрожжевого экстракта (5 г/л), L-цистеина (0,5 г/л), аскорбиновой кислоты (0,5 г/л), глюкозы (10 г/л) и минеральной составляющей среды MRS. При этом все компоненты животного происхождения в питательной среде заменены на ферментолизат. В полученную питательную среду вносят 18 ч инокулят бифидобактерий и ферментируют в течение 15-24 ч без поддержания рН (таблица 2).Example 3. Premium wheat flour is mixed with distilled water, placed in a thermostatic water bath and the proteolytic enzyme preparation Pancreatin (Panreac) is added. Hydrolysis of wheat flour protein is carried out for 90 min at a temperature of 40 ° C and a pH of 8.0. The fermentolizate is filtered through belting and a nutrient medium is prepared on its basis with the addition of yeast extract (5 g / l), L-cysteine (0.5 g / l), ascorbic acid (0.5 g / l), glucose (10 g / k) and the mineral component of the MRS medium. Moreover, all components of animal origin in the nutrient medium are replaced by fermentolizate. Bifidobacteria inoculum is introduced into the obtained nutrient medium for 18 hours and fermented for 15-24 hours without maintaining the pH (table 2).

Figure 00000003
Figure 00000003

Использование гидромодуля менее 1:5 приводит к ухудшению реологических свойств и невозможности фильтрования через бельтинг, а гидромодуля более 1:40 к ухудшению роста бифидобактерий.Using a hydromodule of less than 1: 5 leads to a deterioration in the rheological properties and the inability to filter through belting, and a hydromodule of more than 1:40 leads to a deterioration in the growth of bifidobacteria.

Пример 4. Пшеничную муку высшего сорта смешивают с дистиллированной водой в соотношении 1:5,43, помещают в биореактор, нагревают до температуры гидролиза и дробно на 0 мин и 90 мин вносят протеолитический ферментный препарат Панкреатин (Panreac) в суммарной дозировке 2% от содержания белка в муке. Гидролиз проводят в течение 180 мин при температуре 45°С в условиях поддержания рН 8,0. На основе фильтрованного через бельтинг ферментолизата готовят питательную среду с добавлением дрожжевого экстракта (5 г/л), L-цистеина (0,5 г/л), аскорбиновой кислоты (0,5 г/л), глюкозы (10 г/л) и минеральной составляющей среды MRS. При этом все компоненты животного происхождения заменены на ферментолизат. В готовую стерильную питательную среду вносят 18 ч инокулят бифидобактерий В. adolescentis и ферментируют в течение 18-24 ч при температуре 37°С в условиях поддержания pH 6,5-7,0. Получаемый при этом титр бифидобактерий не менее 3,0×109 КОЕ/мл.Example 4. Premium wheat flour is mixed with distilled water in a ratio of 1: 5.43, placed in a bioreactor, heated to a hydrolysis temperature and the proteolytic enzyme preparation Panreac is added fractionally for 0 min and 90 min in a total dosage of 2% of the content protein in flour. Hydrolysis is carried out for 180 min at a temperature of 45 ° C under conditions of maintaining a pH of 8.0. On the basis of a fermentolizate filtered through belting, a nutrient medium is prepared with the addition of yeast extract (5 g / l), L-cysteine (0.5 g / l), ascorbic acid (0.5 g / l), glucose (10 g / l) and the mineral component of the MRS medium. In this case, all components of animal origin are replaced by fermentolizate. Inoculate sterile nutrient medium 18 h. Inoculate bifidobacteria B. adolescentis and ferment for 18-24 hours at 37 ° C under conditions of maintaining a pH of 6.5-7.0. The resulting titer of bifidobacteria is not less than 3.0 × 10 9 CFU / ml.

Claims (2)

1. Способ получения питательных сред для культивирования бифидо- и лактобактерий, представляющих собой Lactobacillus rhamnosus или Lactobacillus bulgaricus или Lactobacillus acidophilus или Lactobacillus helveticus или Lactobacillus paracasei или Lactobacillus plantarum или Bifidobacterium adolescentis или Bifidobacterium breve или Bifidobacterium bifidum или Bifidobacterium infantis или Bifidobacterium pseudolongum или Bifidobacterium longum, заключающийся в получении питательных сред на основе гидролизатов крахмалосодержащего зернового сырья, полученных путем предварительной обработки суспензий возобновляемого крахмалосодержащего зернового сырья в соотношении с водой 1:5-1:40 протеолитическим ферментным препаратом Protex 40Е или Панкреатин в дозировке 0,5-4,0% по отношению к содержанию белка и амилолитическим ферментным препаратом Duozyme в дозировке 1,0-3,0% по отношению к содержанию сухого вещества.1. A process for preparing culture media for the cultivation of bifidobacteria and lactobacilli, representing Lactobacillus rhamnosus or Lactobacillus bulgaricus or Lactobacillus acidophilus or Lactobacillus helveticus, or Lactobacillus paracasei or Lactobacillus plantarum or Bifidobacterium adolescentis or Bifidobacterium breve or Bifidobacterium bifidum, or Bifidobacterium infantis and Bifidobacterium pseudolongum or Bifidobacterium longum consisting in the preparation of nutrient media based on hydrolysates of starch-containing grain raw materials obtained by pre-processing suspensions of renewable starch-containing grain raw materials in relation to water 1: 5-1: 40 Protex 40E proteolytic enzyme preparation or Pancreatinum in a dosage of 0.5-4.0% in relation to protein content and Duozyme amylolytic enzyme preparation in a dosage of 1.0-3.0% in relation to dry content substances. 2. Способ по п. 1, отличающийся тем, что в качестве возобновляемого крахмалосодержащего зернового сырья используют пшеницу, или рожь, или горох, или гречиху.2. The method according to claim 1, characterized in that wheat, or rye, or peas, or buckwheat is used as a renewable starch-containing grain raw material.
RU2018143793A 2018-12-11 2018-12-11 Method for producing culture media for bifido- and lactobacteria cultivation RU2713273C1 (en)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2018143793A RU2713273C1 (en) 2018-12-11 2018-12-11 Method for producing culture media for bifido- and lactobacteria cultivation

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2018143793A RU2713273C1 (en) 2018-12-11 2018-12-11 Method for producing culture media for bifido- and lactobacteria cultivation

Publications (1)

Publication Number Publication Date
RU2713273C1 true RU2713273C1 (en) 2020-02-04

Family

ID=69625555

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
RU2018143793A RU2713273C1 (en) 2018-12-11 2018-12-11 Method for producing culture media for bifido- and lactobacteria cultivation

Country Status (1)

Country Link
RU (1) RU2713273C1 (en)

Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2410423C2 (en) * 2005-10-11 2011-01-27 Анидрал С.Р.Л. Method of producing at least one non-allergenic probiotic bacterial culture for producing food product or pharmaceutical composition for persons suffering from coeliacs disease and especially sensitive to allergenic substances of gluten and/or lactic type (versions)

Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2410423C2 (en) * 2005-10-11 2011-01-27 Анидрал С.Р.Л. Method of producing at least one non-allergenic probiotic bacterial culture for producing food product or pharmaceutical composition for persons suffering from coeliacs disease and especially sensitive to allergenic substances of gluten and/or lactic type (versions)

Non-Patent Citations (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
Н.Ю.ХРОМОВА, Б.А.КАРЕТКИН, И.В.ШАКИР, В.И.ПАНФИЛОВ, "Предварительная ферментативная обработка протеина зерна для культивирования лакто- и бифидобактерий". //Журнал "Бутлеровские сообщения", 2016, т.48, N. 10, с. 71-76. *
Н.Ю.ХРОМОВА, Б.А.КАРЕТКИН, И.В.ШАКИР, В.И.ПАНФИЛОВ, "Предварительная ферментативная обработка протеина различных типов пшеничной муки для культивирования лактобактерий". // Актуальные проблемы естественных и математических наук в России и за рубежом, Новосибирск, 2017, с.26-30. *
Н.Ю.ХРОМОВА, Б.А.КАРЕТКИН, И.В.ШАКИР, В.И.ПАНФИЛОВ, "Предварительная ферментативная обработка протеина различных типов пшеничной муки для культивирования лактобактерий". // Актуальные проблемы естественных и математических наук в России и за рубежом, Новосибирск, 2017, с.26-30. Н.Ю.ХРОМОВА, Б.А.КАРЕТКИН, И.В.ШАКИР, В.И.ПАНФИЛОВ, "Предварительная ферментативная обработка протеина зерна для культивирования лакто- и бифидобактерий". //Журнал "Бутлеровские сообщения", 2016, т.48, N. 10, с. 71-76. Ю.А. ДМИТРИЕВА, Н.В.ХАБИБУЛИНА, и др. Исследование ферментативного гидролиза горохового и пшеничного крахмалсодержащих субстратов, Журнал "Бутлеровские сообщения", 2017, т.50, N. 5, с. 28-35. *
Ю.А. ДМИТРИЕВА, Н.В.ХАБИБУЛИНА, и др. Исследование ферментативного гидролиза горохового и пшеничного крахмалсодержащих субстратов, Журнал "Бутлеровские сообщения", 2017, т.50, N. 5, с. 28-35. *

Similar Documents

Publication Publication Date Title
US8361778B2 (en) Composition comprising enzymatically digested yeast cells and method of preparing same
Liu et al. Cofermentation of Bacillus licheniformis and Gluconobacter oxydans for chitin extraction from shrimp waste
CN110809411A (en) Composition comprising lactic acid bacteria having improved colonization in intestinal tract by coating silk fibroin
US20190014794A1 (en) Preparation method for fermented corn gluten
CN113444664B (en) Lactobacillus brevis for producing gamma-aminobutyric acid and application thereof
CN109468259B (en) Culture medium for promoting spore generation
CN104585505A (en) Method for synergistic fermentation of soybean meal by employing bacillus subtilis and neutral protease
KR101134324B1 (en) Media of powder for mass culture of microorganism
TW201715042A (en) Method of concentrating protein in grain powder
CN114214247A (en) Bacillus licheniformis and application thereof
TW201300526A (en) Method for manufacturing culture medium, and culture medium manufactured by method
Elsayed et al. Production of β-galactosidase in shake-flask and stirred tank bioreactor cultivations by a newly isolated Bacillus licheniformis strain
Khardziani et al. Optimization of enhanced probiotic spores production in submerged cultivation of Bacillus amyloliquefaciens B-1895.
CN102669432B (en) Compound probiotics preparation for geese and method for preparing same
RU2713273C1 (en) Method for producing culture media for bifido- and lactobacteria cultivation
Kanpiengjai et al. High efficacy bioconversion of starch to lactic acid using an amylolytic lactic acid bacterium isolated from Thai indigenous fermented rice noodles
CN110583932A (en) Preparation method of fermented corn germ meal beverage
KR20080040134A (en) Composition and method for promoting proliferation of beneficial microorganisms
CN110178989A (en) A kind of Soybean Peptide feed making method of high efficiency, low cost
CN112391317B (en) Probiotic bacterial strain composition for producing cubilose acid and application
CN115927032A (en) Bacillus subtilis, leaven, preparation method and application thereof
Karetkin et al. Heterogeneous submerged fermentation of probiotic in media based on wheat meal and by-products of wheat starch production
KR20180060767A (en) Novel Lactobacillus sakei CH1 and fermented food using the same
CN106689671A (en) Biological bacterium-containing livestock feed and preparation method thereof
RU2658977C1 (en) Method for producing protein fodder additive

Legal Events

Date Code Title Description
MM4A The patent is invalid due to non-payment of fees

Effective date: 20201212