RU2712892C1 - Method of in-vitro egg collection from trichuris (= trichocephalus) ovis, which causes trichuriasis of domestic and wild ruminant - Google Patents

Method of in-vitro egg collection from trichuris (= trichocephalus) ovis, which causes trichuriasis of domestic and wild ruminant Download PDF

Info

Publication number
RU2712892C1
RU2712892C1 RU2019116371A RU2019116371A RU2712892C1 RU 2712892 C1 RU2712892 C1 RU 2712892C1 RU 2019116371 A RU2019116371 A RU 2019116371A RU 2019116371 A RU2019116371 A RU 2019116371A RU 2712892 C1 RU2712892 C1 RU 2712892C1
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
ovis
trichocephalus
eggs
females
trichuris
Prior art date
Application number
RU2019116371A
Other languages
Russian (ru)
Inventor
Валерий Евгеньевич Пасечник
Original Assignee
Федеральное государственное бюджетное учреждение "Федеральный научный центр-Всероссийский научно-исследовательский институт экспериментальной ветеринарии им. К.И. Скрябина и Я.Р. Коваленко" (ФГБНУ ФНЦ ВИЭВ РАН)
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Федеральное государственное бюджетное учреждение "Федеральный научный центр-Всероссийский научно-исследовательский институт экспериментальной ветеринарии им. К.И. Скрябина и Я.Р. Коваленко" (ФГБНУ ФНЦ ВИЭВ РАН) filed Critical Федеральное государственное бюджетное учреждение "Федеральный научный центр-Всероссийский научно-исследовательский институт экспериментальной ветеринарии им. К.И. Скрябина и Я.Р. Коваленко" (ФГБНУ ФНЦ ВИЭВ РАН)
Priority to RU2019116371A priority Critical patent/RU2712892C1/en
Application granted granted Critical
Publication of RU2712892C1 publication Critical patent/RU2712892C1/en

Links

Classifications

    • AHUMAN NECESSITIES
    • A01AGRICULTURE; FORESTRY; ANIMAL HUSBANDRY; HUNTING; TRAPPING; FISHING
    • A01KANIMAL HUSBANDRY; CARE OF BIRDS, FISHES, INSECTS; FISHING; REARING OR BREEDING ANIMALS, NOT OTHERWISE PROVIDED FOR; NEW BREEDS OF ANIMALS
    • A01K67/00Rearing or breeding animals, not otherwise provided for; New breeds of animals
    • A01K67/033Rearing or breeding invertebrates; New breeds of invertebrates
    • GPHYSICS
    • G01MEASURING; TESTING
    • G01NINVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
    • G01N33/00Investigating or analysing materials by specific methods not covered by groups G01N1/00 - G01N31/00
    • G01N33/48Biological material, e.g. blood, urine; Haemocytometers

Abstract

FIELD: medicine.
SUBSTANCE: invention relates to veterinary medicine. Method for in-vitro collection of eggs from females of Trichocephalus ovis, which causes a trichuriasis of domestic and wild ruminants, involves that of colon material of spontaneously infected animals when observing helminthological methods on exposing animals after preliminary washing in isotonic solution of 0.9 % sodium chloride, 250 and more live mature females Trichocephalus ovis are sampled. Five females are placed in separate bacteriological dishes with normal Tyrode solution. Exposure at t=25 °C for 3 hours under conditions of a thermostat to obtain pure collection of mature Trichocephalus ovis eggs.
EFFECT: invention enables to obtain high-quality material for analysis.
1 cl, 2 ex

Description

Изобретение относится к области ветеринарной медицины, а более конкретно - к паразитологии (=гельминтологии) к «Способу сбора яиц in vitro от возбудителя трихоцефалеза домашних и диких жвачных Trichuris (=Trichocephalus) ovis» и предназначенный для использования при гельминтологических лабораторных или/и полевых исследованиях чистых сборов зрелых яиц от живых, половозрелых самок Trichuris (=Trichocephalus) ovis, от спонтанно зараженных возбудителем трихоцефалеза домашних или/и диких жвачных, который необходим при терапии и профилактики трихоцефалеза домашних или/и диких жвачных, скрининге препаратов (антигельминтиков) и проведения генетических исследований - ДНК.The invention relates to the field of veterinary medicine, and more specifically to parasitology (= helminthology) to the "Method for collecting eggs in vitro from the causative agent of trichocephalosis of domestic and wild ruminant Trichuris (= Trichocephalus) ovis" and intended for use in helminthological laboratory and / or field studies net collections of mature eggs from living, sexually mature females of Trichuris (= Trichocephalus) ovis, from spontaneously infected with the causative agent of trichocephalosis of domestic and / or wild ruminants, which is necessary in the treatment and prevention of trichocephalosis of domestic and / or di ruminants, screening of drugs (anthelmintics) and genetic research - DNA.

Трихоцефалез это заболевание домашних и диких жвачных, которое регистрируется во многих странах мира и в Российской Федерации. [2, 3, 4, 5, 6, 7, 8, 9] Болезнь протекает зачастую в хронической форме у взрослых домашних жвачных, но может протекать и в острой форме, особенно у молодняка, что может стать причиной гибели последних, если несвоевременно ставится диагноз и не проводятся лечебные и профилактические мероприятия. [4, 5] Гибель домашних и диких жвачных может наносить зоопаркам, циркам, заповедникам, охотничьим и фермерским хозяйствам огромные экономические убытки. Поэтому разработка различных способов, которые дают возможность исследователям более детально изучать эпизоотологию, биологию и видовой состав возбудителей трихоцефалеза жвачных, позволит разработать более эффективные меры борьбы и профилактики этой болезни.Trichocephalosis is a disease of domestic and wild ruminants, which is registered in many countries of the world and in the Russian Federation. [2, 3, 4, 5, 6, 7, 8, 9] The disease often proceeds in a chronic form in adult domestic ruminants, but can also occur in an acute form, especially in young animals, which can cause the death of the latter if untimely diagnosis and treatment and preventive measures are not carried out. [4, 5] The death of domestic and wild ruminants can cause huge economic losses to zoos, circuses, reserves, hunting and farming enterprises. Therefore, the development of various methods that enable researchers to study in more detail the epizootology, biology and species composition of ruminant trichocephaliasis pathogens will allow the development of more effective measures to combat and prevent this disease.

Известны способы сбора яиц гельминтов от домашних жвачных [Котельников Г.А. - 1, в том числе и от цирковых животных: В.Е. Пасечник и др., - 5] с помощью методов копроовоскопии (флотации, седиментации, комбинированные), однако они имеют следующий существенный недостаток:Known methods for collecting helminth eggs from domestic ruminants [G. Kotelnikov - 1, including from circus animals: V.E. Pasechnik et al., - 5] using coproovoscopy methods (flotation, sedimentation, combined), however, they have the following significant drawback:

При этих способах неизвестен вид возбудителя инвазии, так как по литературным данным у домашних и диких жвачных Российской Федерации могут паразитировать 11 видов трихоцефал возбудителей трихоцефалеза: Trichuris ovis Abildgaard, 1795; Т. globulosa Linstow, 1901; Т. skrjabini Baskakov, 1924; Т. tarandi Puschmenkov, 1939; T. longispiculus Artjuch 1948; T. dzeirani Artjuch, 1948; T. lani Artjuch, 1948; T. capreoli Artjuch, 1948; T. baskakovi Mizkewitch, 1959; T. massino Mizkewitch, 1959; T.schumakovitschi Savinkova, 1967). Следовательно, получить сборы яиц методами копроовоскопии от определенного вида трихоцефал (в нашем случае вид Trichuris ovis) невозможно.With these methods, the type of invasion causative agent is unknown, since according to the literature 11 domestic and wild ruminants of the Russian Federation can parasitize 11 species of trichocephalus of the causative agents of trichocephalosis: Trichuris ovis Abildgaard, 1795; T. globulosa Linstow, 1901; T. skrjabini Baskakov, 1924; T. tarandi Puschmenkov, 1939; T. longispiculus Artjuch 1948; T. dzeirani Artjuch, 1948; T. lani Artjuch, 1948; T. capreoli Artjuch, 1948; T. baskakovi Mizkewitch, 1959; T. massino Mizkewitch, 1959; T.schumakovitschi Savinkova, 1967). Therefore, it is impossible to obtain egg collections by coproovoscopy from a certain type of trichocephalus (in our case, the species Trichuris ovis).

Можно воспользоваться известным «Способом прижизненной дифференциальной диагностики трихоцефал Trichocephalus ovis, Trichocephalus skrjabini, Trichocephalus capreoli от жвачных животных» [Пасечник В.Е. - 6] Этот способ эффективен при постановке прижизненного диагноза, то есть уточнения вида возбудителя болезни: Trichuris ovis, Т. skrjabini, Т. capreoli и др., если у нас нет возможности исследовать павших больных жвачных непосредственно на вскрытии.You can use the well-known "Method for intravital differential diagnosis of trichocephalus Trichocephalus ovis, Trichocephalus skrjabini, Trichocephalus capreoli from ruminants" [Pasechnik V.E. - 6] This method is effective in making a lifetime diagnosis, that is, clarifying the type of pathogen: Trichuris ovis, T. skrjabini, T. capreoli and others, if we do not have the opportunity to examine the dead ruminants directly at autopsy.

Однако при необходимости сбора зрелых яиц от оределенного вида самок власоглава (в нашем случае от вида: Trichuris (=Trichocephalus) ovis) этот способ, к сожалению непригоден так как при этом способе яйца трихоцефал (=трихурисов) просветляют в смеси 98,5%-ного раствора глицерина плотностью 1,256 и 40%-ной молочной кислоты, взятых в соотношении 1:1.However, if it is necessary to collect mature eggs from a specific species of whipworm females (in our case, from the species: Trichuris (= Trichocephalus) ovis), this method is unfortunately unsuitable because in this method the eggs trichocephalus (= trichuris) enlighten in a mixture of 98.5% - solution of glycerol with a density of 1,256 and 40% lactic acid, taken in a ratio of 1: 1.

Следовательно, яйца трихоцефал любого вида (в нашем случае вид: Trichuris ovis) будут непригодны для культивирования до инвазионной стадии, после применения этого способа.Therefore, trichocephalus eggs of any kind (in our case, species: Trichuris ovis) will be unsuitable for cultivation before the invasive stage, after applying this method.

Известен «Способ прижизненного сбора оплодотворенных яиц (in vitro) от возбудителя паразитарного зооноза Trichuris (=Trichocephalus) vulpis» [Пасечник В.Е. - 6], который имеет недостатки:The well-known "Method for in vivo collection of fertilized eggs (in vitro) from the causative agent of the parasitic zoonosis Trichuris (= Trichocephalus) vulpis" [Pasechnik V.E. - 6], which has disadvantages:

Trichuris vulpis является паразитом типичным для домашних и диких хищных [Пасечник В.Е. - 2, 4, 5, 7], a Trichuris ovis типичным гельминтом для домашних и диких жвачных. [2, 3, 4, 5, 6, 9] Поэтому и условия в лабораторной среде (применяемый раствор, температурный режим и время экспозиции) для этих самок власоглава будут резко отличаться:Trichuris vulpis is a parasite typical of domestic and wild predators [Pasechnik V.E. - 2, 4, 5, 7], a Trichuris ovis is a typical helminth for domestic and wild ruminants. [2, 3, 4, 5, 6, 9] Therefore, the conditions in the laboratory environment (used solution, temperature and exposure time) for these whipworm females will differ sharply:

другие недостатки: необходимость использования пробирок, что значительно затрудняет посевы яиц Trichuris ovis, для культивирования до инвазионной стадии и удлиняет рабочее время экспериментаторов;other disadvantages: the need to use test tubes, which significantly complicates the sowing of Trichuris ovis eggs, for cultivation to the invasive stage and lengthens the working time of the experimenters;

применение официнального изотонического раствора (0,9%) хлорида натрия для сбора яиц от самок паразитарного зооноза хищных Trichuris vulpis, однако применение в предлагаемом нами способе этого раствора к самкам Trichuris ovis паразита жвачных нецелесообразно, так как количество яиц при указанном выше известном способе сбора яиц, значительно уступает предлагаемому способу;the use of an official isotonic solution (0.9%) of sodium chloride for collecting eggs from female parasitic zoonosis of predatory Trichuris vulpis, however, the use of this solution in our method for females of Trichuris ovis ruminant parasite is impractical, since the number of eggs in the above-mentioned known method of collecting eggs significantly inferior to the proposed method;

температурный режим при этом известном способе сбора яиц от самок власоглава хищных Trichuris vulpis, значительно выше (t=37,5° - 39°С), что влияет существенно на количество получаемых яиц по предлагаемому нами способу от самок Trichuris ovis, власоглава жвачных, так как при t>30°С в разы уменьшается количество яиц выделяемые живой, половозрелой самкой Trichuris ovis, что неприемлемо, так как очень часто для заражения экспериментальных животных необходимы тысячи яиц;the temperature regime with this known method for collecting eggs from Trichuris vulpis whipworm females is significantly higher (t = 37.5 ° - 39 ° C), which significantly affects the number of eggs obtained by our method from Trichuris ovis females, ruminant whipworm, so how at t> 30 ° C the number of eggs secreted by a living, sexually mature female Trichuris ovis decreases significantly, which is unacceptable, since very often thousands of eggs are needed for infection of experimental animals;

Известен способ сбора яиц [В.Е. Пасечник - 2, 4] для лабораторных исследований, при котором исследователи для сбора яиц от гельминтов проводят секционирование половых органов самок: вагины, вульвы, матки.A known method of collecting eggs [V.E. Pasechnik - 2, 4] for laboratory research, in which researchers to collect eggs from helminths section the genitals of females: vaginas, vulva, and uterus.

Этот способ имеет следующие недостатки:This method has the following disadvantages:

1) полученный материал (яйца паразитов) очень сильно загрязнен остатками тканей паразита, что в процессе опыта вызывает развитие бактериальной микрофлоры и гниение (=разрушение) яиц гельминтов;1) the resulting material (parasite eggs) is very heavily contaminated with parasite tissue residues, which in the course of the experiment causes the development of bacterial microflora and rotting (= destruction) of helminth eggs;

2) извлечение яиц из матки паразита (указанным выше способом) дополнительно загрязняет материал большим количеством незрелых яиц.2) the extraction of eggs from the uterus of the parasite (as described above) additionally contaminates the material with a large number of immature eggs.

3) при этом способе сбора яиц получение до 100% зрелых яиц невозможно, так как основная масса зрелых яиц находится в дистальной, что в матке паразита яйца созревают неравномерно) и кроме того в процессе опытов исследователям нужны для культивирования до инвазионной стадии с целью изучения в лабораторных экспериментах биологии и эпизоотологии паразитов сборы в количествах иногда исчисляющие тысячи зрелых яиц.3) with this method of collecting eggs, obtaining up to 100% of mature eggs is impossible, since the bulk of mature eggs are in the distal, which does not ripen in the uterus of the parasite) and, in addition, during the experiments, the researchers need to cultivate to an invasive stage in order to study laboratory experiments of biology and epizootology of parasites fees in quantities sometimes numbering thousands of mature eggs.

Очевидно, что исследователю по этой причине получить в большом количестве чистые сборы до 100% зрелые яйца от Trichuris (=Trichocephalus) ovis, для проведения экспериментов в лабораторных или/и полевых условиях, крайне сложно и практически невозможно.Obviously, for this reason, it is extremely difficult and almost impossible for a researcher to get large quantities of clean collections of up to 100% mature eggs from Trichuris (= Trichocephalus) ovis for experiments in the laboratory and / or field conditions.

Исходя из недостатков указанных выше известных способов сбора яиц от гельминтов, мы при разработке нашего «Способа сбора яиц in vitro от возбудителя трихоцефалеза домашних и диких жвачных Trichuris (=Trichocephalus) ovis» использовали известный физиологический раствор Tyrode М. (по Свиридову С.В., 2007) [8]: состав раствора (г/л дистиллированной воды): NaCl - 8.00, KCl - 0.20, CaCl2 - 0.20, MgCl2 - 0.10, NaH2PO4 - 0.05, NaHCO3 - 1.00, глюкоза - 1.00Based on the shortcomings of the above-mentioned known methods for collecting eggs from helminths, we used the well-known physiological saline solution Tyrode M. (according to Sviridov S.V. , 2007) [8]: solution composition (g / l of distilled water): NaCl - 8.00, KCl - 0.20, CaCl 2 - 0.20, MgCl 2 - 0.10, NaH 2 PO 4 - 0.05, NaHCO 3 - 1.00, glucose - 1.00

- применяется в качестве кровезаменителя в гуманитарной медицине, который позволил получить хорошие результаты по сбору яиц от Trichuris (=Trichocephalus) ovis.- It is used as a blood substitute in humanitarian medicine, which allowed to obtain good results on the collection of eggs from Trichuris (= Trichocephalus) ovis.

Целью изобретения является использование впервые разработанного нами «Способа сбора яиц in vitro от возбудителя трихоцефалеза домашних и диких жвачных Trichuris (=Trichocephalus) ovis», для получения естественным способом до 100% зрелых яиц от живых, половозрелых самок The aim of the invention is the use of our first developed "Method of egg collection in vitro from the causative agent of trichocephalosis of domestic and wild ruminants Trichuris (= Trichocephalus) ovis", to obtain in a natural way up to 100% mature eggs from live, mature females

Trichuris ovis и предназначенного для проведения экспериментов в лабораторных или/и полевых условиях при изучении терапии и профилактики трихоцефалеза жвачных, скрининга препаратов (антигельминтиков) и генетических исследований ДНК.Trichuris ovis and intended for conducting experiments in laboratory and / or field conditions in the study of therapy and prevention of ruminant trichocephalosis, screening of drugs (anthelmintics) and genetic DNA studies.

Поставленная цель достигается тем, что при проведении сбора яиц от возбудителей трихоцефалеза, применяют разработанный нами впервые «Способ сбора яиц in vitro от возбудителя трихоцефалеза домашних и диких жвачных Trichuris (=Trichocephalus) ovis», заключающийся в том, что из материала толстой кишки спонтанно зараженных домашних и диких жвачных животных при исследовании гельминтологическими методами на вскрытии животных [по К.И. Скрябину - 9] отбирают 250 и более живых половозрелых самок Trichocephalus ovis после предварительной отмывки в изотоническом (0,9%) растворе хлорида натрия, помещают по 5 самок в отдельные бактериологические чашки с физиологическим раствором Tyrode экспонируют при t=25°C в течение 3 ч в условиях термостата, после чего получают чистый сбор зрелых яиц Trichocephalus ovis, выделенных живыми самками.This goal is achieved by the fact that when collecting eggs from the causative agents of trichocephalosis, we use the first-developed “Method for collecting eggs in vitro from the causative agent of trichocephaliasis of domestic and wild ruminant Trichuris (= Trichocephalus) ovis”, which consists in the fact that the colon material is spontaneously infected domestic and wild ruminants in the study of helminthological methods at autopsy of animals [according to K.I. Scriabin - 9], 250 or more living sexually mature females of Trichocephalus ovis were selected after preliminary washing in isotonic (0.9%) sodium chloride solution, 5 females were placed in separate bacteriological plates with Tyrode saline solution and exposed at t = 25 ° C for 3 h in a thermostat, after which a clean collection of mature Trichocephalus ovis eggs isolated by live females is obtained.

Экспериментатор получает чистый сбор из до 100% зрелых яиц от самок Trichuris (=Trichocephalus) ovis возбудителя трихоцефалеза жвачных.The experimenter receives a net collection of up to 100% mature eggs from Trichuris (= Trichocephalus) ovis females of ruminant trichocephalosis.

Сопоставительный анализ заявляемого технического решения с прототипом: известным способом сбора яиц путем секционирования (=разрушения) половых женских органов паразитов, показывает, что заявляемый способ отличается от известного тем, что:A comparative analysis of the proposed technical solution with the prototype: a known method of collecting eggs by sectioning (= destruction) of the female genital organs of parasites, shows that the claimed method differs from the known one in that:

проводят раздельный (=индивидуальный) только что извлеченных из вскрытых органов жвачных сбор живых, половозрелых самок Trichuris (=Trichocephalus) ovis, в каждую бактериологическую чашку с раствором Tyrode и экспонируют их при t=25°С в течение 3 часов в условиях термостата.separate (= individual) freshly harvested ruminants from open organs were collected of live, sexually mature Trichuris females (= Trichocephalus) ovis in each bacteriological cup with Tyrode solution and exposed at 3 ° C for 3 hours under a thermostat.

После этой экспозиции экспериментаторы получают с эффективностью до 100% чистый сбор зрелых яиц гельминтов выделившихся естественным путем из половых органов (вульвы, вагины, матки) самок, так как они вынуждены выделять в раствор Tyrode и следовательно в бактериологические чашки - до 100% зрелые, чистые яйца Trichuris (=Trichocephalus) ovis.After this exposure, experimenters obtain, with an efficiency of up to 100%, a clean collection of mature helminth eggs naturally secreted from the genitals (vulva, vagina, uterus) of the females, since they are forced to isolate up to 100% mature, pure into Tyrode solution and therefore into bacteriological plates Trichuris eggs (= Trichocephalus) ovis.

Эти отличия позволяют сделать вывод о соответствии заявляемого технического решения критерию «новизна». Признаки, отличающие заявляемое техническое решение от прототипа, не выявлены в других технических решениях, и поэтому они обеспечивают заявляемому техническому решению соответствие критерию «существенные отличия».These differences allow us to conclude that the claimed technical solution meets the criterion of "novelty." Signs that distinguish the claimed technical solution from the prototype are not identified in other technical solutions, and therefore they provide the claimed technical solution with the criterion of "significant differences".

Примеры конкретного выполнения предлагаемого способа.Examples of specific performance of the proposed method.

Пример 1. При исследовании на мясокомбинатах, убойных пунктах в России (Московской области), Республике Молдова - толстого кишечника и особенно слепой кишки от спонтанно зараженных трихоцефалами домашних жвачных (крупный рогатый скот, овец), были собраны живые, половозрелые 500 самок Trichuris (=Trichocephalus) ovis, которые были использованы для получения сборов яиц по двум способам:.Example 1. In a study in meat processing plants, slaughterhouses in Russia (Moscow region), the Republic of Moldova - of the large intestine and especially the cecum from spontaneously infected trichocephalic domestic ruminants (cattle, sheep), live, mature 500 Trichuris females were collected (= Trichocephalus) ovis, which were used to obtain egg collections in two ways :.

1-й (опыт) по предлагаемому «Способу сбора яиц in vitro от возбудителя трихоцефалеза жвачных Trichuris (=Trichocephalus) ovis», заключающийся в отборе только живых, половозрелых 250 и более самок Trichuris ovis после гельминтологических исследований толстого кишечника на вскрытии от спонтанно зараженных возбудителем трихоцефалеза жвачных с предварительной отмывкой живых, половозрелых самок Trichuris ovis от субстрата в изотоническом растворе (0,9%) хлорида натрия и помещении по 5 самок в каждую бактериологическую чашку с физиологическим раствором Tyrode и экспозицией их при t=25°С в течение 3 часов в условиях термостата.1st (experiment) on the proposed “Method of collecting eggs in vitro from the causative agent of ruminant trichocephaliasis Trichuris (= Trichocephalus) ovis”, which consists in the selection of only live, mature 250 or more Trichuris ovis females after helminthological studies of the colon with an autopsy from spontaneously infected with the pathogen ruminant trichocephalosis with preliminary washing of live, mature Trichuris ovis females from the substrate in isotonic sodium chloride solution (0.9%) and 5 females were placed in each bacteriological plate with Tyrode physiological saline and their exposure t = 25 ° C for 3 hours under conditions of a thermostat.

и 2-м (контроль) известным «Способом сбора оплодотворенных яиц (in vitro) от возбудителя паразитарного зооноза Trichuris (=Trichocephalus) vulpis» [по В.Е. Пасечнику -], который заключается в отборе 250 живых, половозрелых самок Trichuris ovis, после гельминтологических исследований толстого кишечника на вскрытии от спонтанно зараженных возбудителем трихоцефалеза жвачных без предварительной отмывкой живых, половозрелых самок Trichuris ovis от субстрата в изотоническом растворе (0,9%) хлорида натрия в отдельные пробирки с официнальным изотоническим раствором (0,9%) хлорида натрия (solutio Natrii chlorati isotonica), и экспозицией пробирок при t=37,5°-39°С в течение 5 часов в условиях термостата.and the 2nd (control) known “Method for collecting fertilized eggs (in vitro) from the causative agent of the parasitic zoonosis Trichuris (= Trichocephalus) vulpis” [according to B.E. Pasechnik -], which consists in the selection of 250 live, sexually mature Trichuris ovis females, after helminthological studies of the large intestine with an autopsy from ruminant spontaneously infected ruminant trichocephalosis pathogen without preliminary washing of live, mature Trichuris ovis females from the substrate in isotonic solution (0.9%) of chloride sodium in separate tubes with an official isotonic solution (0.9%) of sodium chloride (solutio Natrii chlorati isotonica), and exposure of the tubes at t = 37.5 ° -39 ° C for 5 hours in a thermostat.

Через 5 часов были сравнены результаты эффективности этих двух способов сбора яиц от самок возбудителя трихоцефалеза жвачных: Trichuris (=Trichocephalus) ovis. В результате, было выяснено, что:After 5 hours, the results of the effectiveness of these two methods of collecting eggs from females of the ruminant trichocephaliasis pathogen were compared: Trichuris (= Trichocephalus) ovis. As a result, it was found that:

по известному способу (контроль) то есть без предварительной отмывкой живых, половозрелых самок Trichuris ovis от субстрата в изотоническом растворе (0,9%) хлорида натрия и помещении их в пробирки с изотоническим раствором (0,9%) хлорида натрия (solution Natrii chlorati isotonica) и экспозицией пробирок с самками Trichuris ovis при t=37,5°C-39°С в течение 5 часов в условиях термостата, количество яиц выделенных 250 самками в раствор:by a known method (control) that is, without preliminary washing live, sexually mature Trichuris ovis females from the substrate in isotonic sodium chloride solution (0.9%) and placing them in test tubes with isotonic sodium chloride solution (0.9%) (solution Natrii chlorati isotonica) and exposure of tubes with Trichuris ovis females at t = 37.5 ° C-39 ° C for 5 hours under thermostat conditions, the number of eggs isolated by 250 females in solution:

при t=37,5°-39°С составило 759 яиц при экспозиции 5 часов в условиях термостата.at t = 37.5 ° -39 ° C it amounted to 759 eggs with an exposure of 5 hours in a thermostat.

А по предлагаемому способу (1-й опыт) отобранные 250 живых, половозрелых самок Trichuris ovis с предварительной отмывкой их от субстрата в изотоническом растворе (0,9%) растворе хлорида натрия в раствор Tyrode и помещенных по 5 живых, половозрелых самок Trichuris ovis в каждую бактериологическую чашку и экспозицией в термостате при t=25°C в течение 3-х и 5-и часов:And according to the proposed method (1st experiment), 250 live, sexually mature Trichuris ovis females were selected with their preliminary washing from the substrate in an isotonic solution (0.9%) of sodium chloride solution in Tyrode solution and 5 live, sexually mature Trichuris ovis females placed in each bacteriological plate and exposure in a thermostat at t = 25 ° C for 3 and 5 hours:

при t=25°С составило 2957 яиц в течение 3-х часов и 3530 яиц в течение 5 часов.at t = 25 ° C it amounted to 2957 eggs for 3 hours and 3530 eggs for 5 hours.

Анализируя результаты сравнительных способов известного (2-й контроль) и предлагаемого (1-й опыт), отчетливо видно, что разработанный способ сбора яиц при отработанных параметрах:Analyzing the results of comparative methods of the known (2nd control) and the proposed (1st experiment), it is clearly seen that the developed method of collecting eggs with the worked out parameters:

предварительная отмывка живых, половозрелых самок Trichuris ovis от субстрата в изотоническом растворе (0,9%) хлорида натрия;preliminary washing of live, sexually mature Trichuris ovis females from the substrate in isotonic sodium chloride solution (0.9%);

сбора живых, половозрелых самок Trichuris ovis, не в пробирки, а в бактериологические чашки - что позволяет сохранить большее количество зрелых яиц и непосредственно в бактериологических чашках проводить культивирование яиц Т. ovis до инвазионной стадии;collecting live, sexually mature females of Trichuris ovis, not in test tubes, but in bacteriological cups - which allows you to save a larger number of mature eggs and directly in the bacteriological cups carry out the cultivation of T. ovis eggs to the invasive stage;

соблюдение температурного режима (не при t=37°-39°С, а при t=25°С);compliance with the temperature regime (not at t = 37 ° -39 ° C, but at t = 25 ° C);

и применение другого раствора (не официнального изотонического раствора (0,9%) хлорида натрия, а физиологического раствора Tyrode);and the use of another solution (not an official isotonic solution (0.9%) of sodium chloride, but Tyrode saline);

и времени экспозиции (не в течение 5 часов, а в течение 3-х часов) имеет явное преимущество перед известным способом, что и было подтверждено экспериментально.and exposure time (not within 5 hours, but within 3 hours) has a clear advantage over the known method, which was confirmed experimentally.

Следовательно, данный пример убедительно показывает преимущество предлагаемого «Способа сбора яиц in vitro от возбудителя трихоцефалеза домашних и диких жвачных: Trichuris (=Trichocephalus) ovis».Therefore, this example convincingly shows the advantage of the proposed "Method of egg collection in vitro from the causative agent of trichocephalosis of domestic and wild ruminants: Trichuris (= Trichocephalus) ovis".

Пример 2. При исследовании на мясокомбинатах, убойных пунктах России (Московской области), Республике Молдова - толстого кишечника и особенно слепой кишки от спонтанно зараженных трихоцефалами домашних жвачных (овец и крупный рогатый скот), были собраны 500 живых, половозрелых самок Trichuris (=Trichocephalus) ovis.Example 2. In a study in meat processing plants, slaughterhouses in Russia (Moscow region), and the Republic of Moldova — of the large intestine and especially the cecum from spontaneously infected trichocephalic domestic ruminants (sheep and cattle), 500 live, mature Trichuris females (= Trichocephalus) were collected ) ovis.

Собранные 500 живых и половозрелых Trichuris ovis, были использованы для получения сборов яиц по двум способам:Collected 500 live and mature Trichuris ovis, were used to obtain egg collections in two ways:

1-й (опыт) по заявляемому способу сбора яиц (еще живые и половозрелые 250 самок Trichuris ovis, предварительно отмытые от субстрата в изотоническом растворе (0,9%) хлорида натрия с последующим помещением по 5 самок в каждую бактериологическую чашку с физиологическим раствором Tyrode и экспозицией их при t=25°C в течение 3 часов в условиях термостата, где они произвольно откладывают яйца в пробирки с физиологическим раствором Tyrode.1st (experiment) according to the claimed method of collecting eggs (250 live Trichuris ovis females still mature and sexually matured, previously washed from the substrate in isotonic sodium chloride solution (0.9%), followed by placement of 5 females in each bacteriological plate with Tyrode physiological saline and exposing them at t = 25 ° C for 3 hours under thermostat conditions, where they randomly lay eggs in tubes with Tyrode saline.

и 2-м (контроль) известным способом сбора яиц путем вскрытия вульвы, вагины, матки 250 самок Trichuris ovis.and 2nd (control) by a known method of collecting eggs by opening the vulva, vagina, uterus of 250 Trichuris ovis females.

В последующем по 2500 яиц выбранных произвольно (=подряд) Trichuris ovis полученных предлагаемым нами способом (1-й опыт) и известным способом путем разрушения половых органов самок гельминтов (2-й контроль) культивировали в термостате при t=30°С и просматривали под микроскопом, чтобы сравнить предлагаемый способ сбора яиц (1-й - опыт) и известный способ - путем вскрытия половых органов самок: матки, вагины, вульвы (2-й - контроль).Subsequently, 2500 eggs of Trichuris ovis randomly selected (= in a row) obtained by our proposed method (1st experiment) and by a known method by destruction of the genitals of female helminths (2nd control) were cultivated in an incubator at t = 30 ° C and viewed under a microscope to compare the proposed method for collecting eggs (1st — experience) and the known method — by opening the genitals of females: uterus, vagina, vulva (2nd — control).

В результате выяснилось, что в сборе яиц по известному способу (2-й - контроль) развилось только 66% (1650 яиц), а остальные яйца начали загнивать, а при предлагаемом способе (1-й - опыт) сбора, яйца до 100% случаев были живыми и развивались без наличия секундарной микрофлоры.As a result, it turned out that only 66% (1650 eggs) developed in the collection of eggs by the known method (2nd — control), and the rest of the eggs began to rot, and with the proposed method (1st — experiment), the eggs were collected up to 100% cases were live and developed without the presence of second microflora.

Таким образом, результаты культивирования яиц собранные по разработанному и предлагаемому нами способу (1-й - опыт) подтвердили данные, полученные при использовании предлагаемого «Способа сбора яиц in vitro от возбудителя трихоцефалеза домашних и диких жвачных Trichuris (=Trichocephalus) ovis», которые были выявлены нами впервые.Thus, the egg cultivation results collected according to the method developed and proposed by us (1st experiment) confirmed the data obtained using the proposed “Method of egg collection in vitro from the causative agent of trichocephalosis of domestic and wild ruminant Trichuris (= Trichocephalus) ovis”, which identified by us for the first time.

Использование предлагаемого «Способа сбора яиц in vitro от возбудителя трихоцефалеза домашних и диких жвачных: Trichuris (=Trichocephalus) ovis», обеспечивает по сравнению с существующими способами сбора яиц: копроовоскопии, сбора яиц путем секционирования (=разрушения) половых органов самок гельминтов (вульвы, вагины, матки) следующие преимущества:Using the proposed “Method of egg collection in vitro from the causative agent of trichocephalosis of domestic and wild ruminants: Trichuris (= Trichocephalus) ovis” provides, compared with existing methods of egg collection: coprooscopy, egg collection by sectioning (= destruction) of the genital organs of female helminths (vulva, vaginas, uterus) the following advantages:

известен вид трихоцефал: Trichuris ovis (в отличие от известных способов сбора яиц: копроовоскопии седиментации, флотации, комбинированного, когда неизвестен вид трихоцефал у домашних и диких жвачных в Российской Федерации по литератрным данным могут паразитировать 11 видов трихоцефал: Т. ovis; Т. globulosa; Т. skrjabini et al., следовательно известные прижизненные способы сбора яиц (флотации, седиментации, комбинированного) непригодны для сбора яиц Т. ovis;the trichocephalic species is known: Trichuris ovis (in contrast to the known egg collection methods: coprooscopy of sedimentation, flotation, combined, when the trichocephalic species is unknown in domestic and wild ruminants in the Russian Federation, according to published data, 11 trichocephalic species can parasitize: T. ovis; T. globulosa ; T. skrjabini et al., Therefore, the known intravital methods for collecting eggs (flotation, sedimentation, combined) are unsuitable for collecting eggs T. ovis;

сокращает время и снижает трудоемкость исследований за счет исключения необходимости проведения вскрытия половых органов самок: вульвы, вагины, матки Trichuris ovis (в отличие от способа сбора яиц путем вскрытия половых органов самок гельминтов);reduces time and reduces the complexity of research by eliminating the need to open the genitals of females: vulva, vagina, uterus Trichuris ovis (in contrast to the method of collecting eggs by opening the genitals of female helminths);

исключает загрязненность полученного сбора яиц обрывками частиц тканей половых органов самок (вульвы, вагины, матки) от Trichuris ovis (в отличие от способа сбора яиц путем вскрытия половых органов самок гельминтов);eliminates the contamination of the obtained egg collection by scraps of tissue particles of the female genital organs (vulva, vagina, uterus) from Trichuris ovis (in contrast to the method of collecting eggs by opening the genitals of female helminths);

исключает загнивание и развитие секундарной бактериальной инфекции в культуре полученной предлагаемым нами способа эффективного и чистого сбора яиц in vitro от возбудителя трихоцефалеза жвачных: Trichuris ovis (в отличие от способа сбора яиц путем вскрытия половых органов самок паразита);excludes decay and development of a second bacterial infection in the culture of the method of efficient and clean egg collection in vitro obtained by our proposed method of ruminant trichocephalosis: Trichuris ovis (in contrast to the method of collecting eggs by opening the genitals of female parasites);

сбор живых, половозрелых самок Trichuris ovis, не в пробирки, а в бактериологические чашки позволяет:collecting live, sexually mature Trichuris ovis females, not in test tubes, but in bacteriological plates allows:

а) сохранить большее количество зрелых яиц,a) maintain a larger number of mature eggs,

б) и непосредственно проводить культивирование и наблюдение за культурой яиц Trichuris ovis (в отличие от известного способа сбора яиц (in vitro) от возбудителя паразитарного зооноза Trichuris (=Trichocephalus) vulpis, при котором используют пробирки, а не бактериологические чашки, что значительно затрудняет посевы яиц Trichuris (=Trichocephalus) ovis, для культивирования до инвазионной стадии и удлиняет рабочее время экспериментатора[7]);b) and directly carry out the cultivation and observation of the egg culture of Trichuris ovis (in contrast to the known method of egg collection (in vitro) from the causative agent of parasitic zoonosis Trichuris (= Trichocephalus) vulpis, in which test tubes, rather than bacteriological plates, are used, which significantly complicates sowing eggs Trichuris (= Trichocephalus) ovis, for cultivation to the invasive stage and lengthens the working time of the experimenter [7]);

соблюдение более эффективного температурного режима (не при t=37° 39°С, а при t=25°С), позволяет получить намного большее количество зрелых яиц (в отличие от известного способа сбора яиц (in vitro) от возбудителя паразитарного зооноза Trichuris (=Trichocephalus) vulpis [7]);compliance with a more efficient temperature regime (not at t = 37 ° 39 ° C, but at t = 25 ° C), allows you to get a much larger number of mature eggs (in contrast to the known method of egg collection (in vitro) from the causative agent of parasitic zoonosis Trichuris ( = Trichocephalus) vulpis [7]);

применение другого раствора: не официнального изотонического раствора (0,9%) хлорида натрия, а физиологического раствора Tyrode имеет явное преимущество в отличие от известного способа сбора [7] яиц (in vitro) от возбудителя паразитарного зооноза Trichuris (=TrichocephaIus) vulpis, что и было подтверждено нами экспериментально;the use of another solution: not an official isotonic solution (0.9%) of sodium chloride, but Tyrode physiological saline has a distinct advantage in contrast to the known method of collecting [7] eggs (in vitro) from the causative agent of parasitic zoonosis Trichuris (= TrichocephaIus) vulpis, which and it was confirmed by us experimentally;

время экспозиции (не в течение 5 часов, а в течение 3-х часов) позволило получить достаточно большое количество зрелых яиц необходимых для проведения экспериментов, так как при экспозиции свыше 5 часов самки Trichuris ovis начинают откладывать в довольно большом количестве неоплодотворенные яйца из матки самок власоглавов, а это существенно влияет на возможность проведения качественных экспериментов, что и является еще одним преимуществом и отличеем предлагаемого нами способа сбора яиц in vitro от возбудителя трихоцефалеза домашних и диких жвачных Trichuris (=Trichoceohalus) ovis, от известного способа сбора [7] яиц (in viro) от возбудителя паразитарного зооноза Trichuris (=Trichocephalus) vulpis (это тоже было подтверждено экспериментально);the exposure time (not within 5 hours, but within 3 hours) made it possible to obtain a sufficiently large number of mature eggs necessary for experiments, since when exposed for more than 5 hours, Trichuris ovis females begin to lay in a rather large number of unfertilized eggs from the uterus of females whipworm, and this significantly affects the ability to conduct high-quality experiments, which is another advantage and distinguishability of our proposed method of collecting eggs in vitro from the causative agent of trichocephalosis of domestic and wild ruminants Trichuris (= Trichoceohalus) ovis, by known collection method [7] eggs (in viro) from exciter parasitic zoonosis Trichuris (= Trichocephalus) vulpis (this was also confirmed experimentally);

«Способ сбора яиц in vitro от возбудителя трихоцефалеза домашних и диких жвачных Trichuris (=Trichocephalus) ovis» легко осуществим в лабораторных условиях;“An in vitro method for collecting eggs from the causative agent of trichocephalosis of domestic and wild ruminants Trichuris (= Trichocephalus) ovis” is easily practiced in laboratory conditions;

предлагаемый способ обеспечивает до 100% чистый сбор яиц in vitro, без обрывков частиц тканей половых органов (вульвы, вагины, матки) от живых, половозрелых и идентифицированного до вида самок Trichuris (=Trichocephalus) ovis, из паразитирующих 11 видов трихурисов у жвачных Российской Федерации, возбудителя трихоцефалеза от спонтанно зараженных трихоцефалами жвачных в зоопарках, цирках, и в фермерских хозяйствах, который необходим при терапии и профилактики трихоцефалеза домашних или/и диких жвачных, скрининге препаратов (антигельминтиков) и генетических исследований ДНК.the proposed method provides up to 100% clean egg collection in vitro, without scraps of tissue particles of the genital organs (vulva, vagina, uterus) from living, mature and identified to the species Trichuris (= Trichocephalus) ovis females, from 11 parasitizing trichuris species in ruminants of the Russian Federation , the causative agent of trichocephaliasis from ruminant spontaneously infected trichocephalus in zoos, circuses, and in farms, which is necessary for the treatment and prevention of trichocephalosis of domestic and / or wild ruminants, screening of drugs (anthelmintics) and genetic studies DNA research.

Источники информации, принятые во внимание при составлении заявки:Sources of information taken into account when preparing the application:

1. Котельников Г.А. Гельминтологические исследования животных и окружающей среды. //Справочник. - М. - Колос.- 1983. - 208 с.1. Kotelnikov G.A. Helminthological studies of animals and the environment. //Directory. - M. - Kolos. - 1983. - 208 p.

2. Пасечник В.Е. Перекрестное заражение трихоцефалами приотарных собак и овец в Молдавии. //Бюл. Всесоюзного института гельминтологии. - М. - 1984. - Вып. -37. - С. 57.2. Pasechnik V.E. Cross infection with trichocephalus of pricked dogs and sheep in Moldova. // Bull. All-Union Institute of Helminthology. - M. - 1984. - Issue. -37. - S. 57.

3. Пасечник В.Е. К морфологии видов Trichuris (=Trichocephalus) ovis Abildgaard, 1795, Т. skrjabini Baskakov, 1924 //Труды Всероссийского НИИ гельминтологии имени К.И. Скрябина. - М. - 1999. - Изд. Россельхозакадемии. - Том. - 35. - С. 85 - 120.3. Pasechnik V.E. On the morphology of Trichuris species (= Trichocephalus) ovis Abildgaard, 1795, T. skrjabini Baskakov, 1924 // Proceedings of the All-Russian Research Institute of Helminthology named after K.I. Scriabin. - M. - 1999. - Ed. Russian Agricultural Academy. - Tom. - 35. - S. 85 - 120.

4. Пасечник В.Е. Дисс. кандидата ветеринарных наук. - М. - Всероссийский НИИ гельминтологии имени К.И. Скрябина (ВИГИС) -2000. - С. 124-125.4. Pasechnik V.E. Diss. candidate of veterinary sciences. - M. - All-Russian Research Institute of Helminthology named after K.I. Scriabin (VIGIS) -2000. - S. 124-125.

5. Пасечник В.Е., Успенский А.В., Микулец Ю.И., Жданова В.Ю. Методические рекомендации по диагностике, профилактике и мерам борьбы с гельминтозами цирковых животных. //М. - Изд. Россельхозакадемии. (РАСХН) - 2008 - 50 с.5. Pasechnik V.E., Uspensky A.V., Mikulets Yu.I., Zhdanova V.Yu. Guidelines for the diagnosis, prevention and control measures for helminthiases of circus animals. // M. - Ed. Russian Agricultural Academy. (RAAS) - 2008 - 50 p.

6. Пасечник В.Е. Способ прижизненной дифференциальной диагностики трихоцефал Trichocephalus ovis, Trichocephalus skrjabini и Trichocephalus capreoli жвачных животных. //Бюллетень Федеральной службы по интеллектуальной собственности, патентам и товарным знакам Российской Федерации. - М., 2010 - 22. (Патент на изобретение №2396069)6. Pasechnik V.E. Method for intravital differential diagnosis of trichocephalus Trichocephalus ovis, Trichocephalus skrjabini and Trichocephalus capreoli ruminants. // Bulletin of the Federal Service for Intellectual Property, Patents and Trademarks of the Russian Federation. - M., 2010 - 22. (Patent for the invention No. 2396069)

7. Пасечник В.Е. Способ прижизненного сбора оплодотворенных яиц (in vitro) от возбудителя паразитарного зооноза Trichuris (=Trichocephalus) vulpis //Бюллетень Федеральной службы по интеллектуальной собственности, патентам и товарным знакам Российской Федерации. - М. - 2015. - №21 (Патент на изобретение №2557973).7. Pasechnik V.E. The method of in vivo collection of fertilized eggs (in vitro) from the causative agent of the parasitic zoonosis Trichuris (= Trichocephalus) vulpis // Bulletin of the Federal Service for Intellectual Property, Patents and Trademarks of the Russian Federation. - M. - 2015. - No. 21 (Patent for invention No. 2557973).

8. Свиридов С.В. Сбалансированные и специальные растворы электролитов // Трудный пациент №8. - Т. 5. - 2007 - С. 37.8. Sviridov S.V. Balanced and special solutions of electrolytes // Difficult patient No. 8. - T. 5. - 2007 - S. 37.

9. Скрябин К.И. Метод полных гельминтологических вскрытий позвоночных, включая человека. //Изд. 1-го Московского государственного университета. - М. - 1928. - 45 с.9. Skryabin K.I. The method of complete helminthological dissections of vertebrates, including humans. // Ed. 1st Moscow State University. - M. - 1928. - 45 p.

10. Скрябин К.И., Шихобалова Н.П. и И.В. Орлов. Трихоцефалиды и капиллярииды животных и человека и вызываемые ими заболевания. //Основы нематодологии. Изд. Академии наук СССР. - М. - 1957 -Т. VI. - 587 с.10. Skryabin K.I., Shikhobalova N.P. and I.V. Orlov. Trichocephalids and capillariids of animals and humans and the diseases caused by them. // Basics of nematology. Ed. USSR Academy of Sciences. - M. - 1957 -T. VI. - 587 p.

Claims (1)

Способ сбора зрелых яиц in vitro от самок возбудителя трихоцефалеза Trichocephalus ovis, заключающийся в том, что из материала толстой кишки спонтанно зараженных домашних и диких жвачных животных при исследовании гельминтологическими методами на вскрытии животных отбирают 250 и более живых половозрелых самок Trichocephalus ovis после предварительной отмывки в изотоническом 0,9%-ном растворе хлорида натрия, помещают по 5 самок в отдельные бактериологические чашки с физиологическим раствором Tyrode, экспонируют при t=25°C в течение 3 ч в условиях термостата, после чего получают чистый сбор зрелых яиц Trichocephalus ovis, выделенных живыми самками.A method of collecting mature eggs in vitro from females of the causative agent of trichocephalosis Trichocephalus ovis, which consists in the fact that from the colon material of spontaneously infected domestic and wild ruminants, when examining animals with helminthological methods, 250 or more living sexually mature females of Trichocephalus ovis are selected after preliminary washing 0.9% sodium chloride solution, placed 5 females in separate bacteriological plates with Tyrode physiological saline, exposed at t = 25 ° C for 3 hours in a thermostat, after which o receive a clean collection of mature Trichocephalus ovis eggs secreted by live females.
RU2019116371A 2019-05-28 2019-05-28 Method of in-vitro egg collection from trichuris (= trichocephalus) ovis, which causes trichuriasis of domestic and wild ruminant RU2712892C1 (en)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2019116371A RU2712892C1 (en) 2019-05-28 2019-05-28 Method of in-vitro egg collection from trichuris (= trichocephalus) ovis, which causes trichuriasis of domestic and wild ruminant

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2019116371A RU2712892C1 (en) 2019-05-28 2019-05-28 Method of in-vitro egg collection from trichuris (= trichocephalus) ovis, which causes trichuriasis of domestic and wild ruminant

Publications (1)

Publication Number Publication Date
RU2712892C1 true RU2712892C1 (en) 2020-01-31

Family

ID=69625193

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
RU2019116371A RU2712892C1 (en) 2019-05-28 2019-05-28 Method of in-vitro egg collection from trichuris (= trichocephalus) ovis, which causes trichuriasis of domestic and wild ruminant

Country Status (1)

Country Link
RU (1) RU2712892C1 (en)

Citations (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2556132C1 (en) * 2014-08-08 2015-07-10 Федеральное государственное бюджетное научное учреждение " Всероссийский научно-исследовательский институт фундаментальной и прикладной паразитологии животных и растений имени К.И.Скрябина" (ФГБНУ "ВНИИП им.К.И.Скрябина") METHOD OF COLLECTING FERTILISED EGGS (in vitro) FROM EXCITER Fasciola hepatica INTRA VITAM
RU2557973C1 (en) * 2014-07-10 2015-07-27 Государственное научное учреждение Всероссийский научно-исследовательский институт гельминтологии им. К.И. Скрябина (ГНУ ВИГИС) METHOD OF INTRAVITAL COLLECTION OF FERTILISED EGGS (in vitro) FROM CAUSATIVE AGENT OF PARASITIC ZOONOSIS Trichuris (=Trichocephalus) vulpis
RU2609145C2 (en) * 2015-06-08 2017-01-30 ФАНО России Федеральное государственное бюджетное научное учреждение Всероссийский научно-исследовательский институт фундаментальной и прикладной паразитологии животных и растений им. К.И. Скрябина (ФГБНУ "ВНИИП им. К.И. Скрябина") Method of collecting maximum amount of mature (=fertilized) eggs (in vitro) of females of parasitic zoonosis infectious agent trichuris (=trichocephalus) suis
RU2629386C1 (en) * 2016-06-17 2017-08-29 ФАНО России, Федеральное государственное бюджетное научное учреждение Всероссийский научно-исследовательский институт фундаментальной и прикладной паразитологии животных и растений им. К.И. Скрябина (ФГБНУ "ВНИИП им. К.И. Скрябина") Method for collection of only mature eggs (in vitro) from female helminthozoonosis pathogens trichostrongylus colubriformis

Patent Citations (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2557973C1 (en) * 2014-07-10 2015-07-27 Государственное научное учреждение Всероссийский научно-исследовательский институт гельминтологии им. К.И. Скрябина (ГНУ ВИГИС) METHOD OF INTRAVITAL COLLECTION OF FERTILISED EGGS (in vitro) FROM CAUSATIVE AGENT OF PARASITIC ZOONOSIS Trichuris (=Trichocephalus) vulpis
RU2556132C1 (en) * 2014-08-08 2015-07-10 Федеральное государственное бюджетное научное учреждение " Всероссийский научно-исследовательский институт фундаментальной и прикладной паразитологии животных и растений имени К.И.Скрябина" (ФГБНУ "ВНИИП им.К.И.Скрябина") METHOD OF COLLECTING FERTILISED EGGS (in vitro) FROM EXCITER Fasciola hepatica INTRA VITAM
RU2609145C2 (en) * 2015-06-08 2017-01-30 ФАНО России Федеральное государственное бюджетное научное учреждение Всероссийский научно-исследовательский институт фундаментальной и прикладной паразитологии животных и растений им. К.И. Скрябина (ФГБНУ "ВНИИП им. К.И. Скрябина") Method of collecting maximum amount of mature (=fertilized) eggs (in vitro) of females of parasitic zoonosis infectious agent trichuris (=trichocephalus) suis
RU2629386C1 (en) * 2016-06-17 2017-08-29 ФАНО России, Федеральное государственное бюджетное научное учреждение Всероссийский научно-исследовательский институт фундаментальной и прикладной паразитологии животных и растений им. К.И. Скрябина (ФГБНУ "ВНИИП им. К.И. Скрябина") Method for collection of only mature eggs (in vitro) from female helminthozoonosis pathogens trichostrongylus colubriformis

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Abraham Biology of Dirofilaria immitis
Paliy et al. Contamination of animal-keeping premises with eggs of parasitic worms
van Doorn et al. Autochthonous Angiostrongylus vasorum infection in dogs in The Netherlands
Khushnazarov et al. DIAGNOSTICS OF RABBIT EMERIOSIS
O’Rourke et al. Biology and diseases of reptiles
JP6866286B2 (en) How to maintain ovaries of marine fish, how to prepare culture medium, and how to produce eggs or fertilized eggs of marine fish
Yimer Preliminary survey of parasites and bacterial pathogens of fish at Lake Ziway
RU2557973C1 (en) METHOD OF INTRAVITAL COLLECTION OF FERTILISED EGGS (in vitro) FROM CAUSATIVE AGENT OF PARASITIC ZOONOSIS Trichuris (=Trichocephalus) vulpis
RU2712892C1 (en) Method of in-vitro egg collection from trichuris (= trichocephalus) ovis, which causes trichuriasis of domestic and wild ruminant
Tolossa et al. Ectoparasites and gastrointestinal helminths of chickens of three agro-climatic zones in Oromia Region, Ethiopia
RU2609145C2 (en) Method of collecting maximum amount of mature (=fertilized) eggs (in vitro) of females of parasitic zoonosis infectious agent trichuris (=trichocephalus) suis
RU2629386C1 (en) Method for collection of only mature eggs (in vitro) from female helminthozoonosis pathogens trichostrongylus colubriformis
RU2556132C1 (en) METHOD OF COLLECTING FERTILISED EGGS (in vitro) FROM EXCITER Fasciola hepatica INTRA VITAM
AL-Shaibani et al. Effect of two species of ticks and lice on some blood and biochemical parameters and their role in the transmission of Toxoplasma gondii to turkey Meleagris gallopavo during spring and summer seasons in Al-Diwaniyah province–Iraq
RU2687487C1 (en) Method for disinvasion against oocysts of coccidia of foxes and polar foxes
SKACHKOV et al. Bothriocephalus spp. infection of Cyprinidae: epizootology, clinical features and pathogenesis, diagnostics, therapeutic and prophylactic measures
Priscilla et al. Prevalence of mouse and rat parasites in resource recovery plants, farms and housing areas of southern Selangor: implication for public health.
Belimenko et al. Method for detection latent natural foci of wild animals babesioses in nature conservation reserves
Covașă et al. Prevalence study of digestive and the serous cavities endoparasitosis in horses from Iassy city area
Kolstrup Onchocerca gutturosa in Danish cattle: prevalence, geographic distribution and host-vector relationships
Sari et al. The improvement of semen quality and testosterone level of Bali cattle after prostaglandin F2α administration
RU2249206C2 (en) Method for bacteriological testing in fish
Yagoob et al. Prevalence of Toxocara cati in pet cats by fecal examination in Tabriz city, Iran
Altaee Investigation of Microfilaria in Buffalo Blood and Fly Types in Their Barns
Akther et al. Pathoprevalence of infectious diseases of goat emphasizing on endoparasitic lesions at Dinajpur Sadar