RU2704115C1 - Способ определения антагонистической активности штаммов бактерий в отношении Pseudomonas aeruginosa - Google Patents
Способ определения антагонистической активности штаммов бактерий в отношении Pseudomonas aeruginosa Download PDFInfo
- Publication number
- RU2704115C1 RU2704115C1 RU2018137121A RU2018137121A RU2704115C1 RU 2704115 C1 RU2704115 C1 RU 2704115C1 RU 2018137121 A RU2018137121 A RU 2018137121A RU 2018137121 A RU2018137121 A RU 2018137121A RU 2704115 C1 RU2704115 C1 RU 2704115C1
- Authority
- RU
- Russia
- Prior art keywords
- aeruginosa
- strains
- oxyphenazines
- production
- activity
- Prior art date
Links
Classifications
-
- G—PHYSICS
- G01—MEASURING; TESTING
- G01N—INVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
- G01N33/00—Investigating or analysing materials by specific methods not covered by groups G01N1/00 - G01N31/00
- G01N33/48—Biological material, e.g. blood, urine; Haemocytometers
-
- G—PHYSICS
- G01—MEASURING; TESTING
- G01N—INVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
- G01N33/00—Investigating or analysing materials by specific methods not covered by groups G01N1/00 - G01N31/00
- G01N33/48—Biological material, e.g. blood, urine; Haemocytometers
- G01N33/50—Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing
- G01N33/52—Use of compounds or compositions for colorimetric, spectrophotometric or fluorometric investigation, e.g. use of reagent paper and including single- and multilayer analytical elements
Landscapes
- Health & Medical Sciences (AREA)
- Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
- Engineering & Computer Science (AREA)
- Chemical & Material Sciences (AREA)
- Immunology (AREA)
- Hematology (AREA)
- Molecular Biology (AREA)
- Urology & Nephrology (AREA)
- Biomedical Technology (AREA)
- General Health & Medical Sciences (AREA)
- Physics & Mathematics (AREA)
- Analytical Chemistry (AREA)
- Biochemistry (AREA)
- Medicinal Chemistry (AREA)
- General Physics & Mathematics (AREA)
- Food Science & Technology (AREA)
- Pathology (AREA)
- Biotechnology (AREA)
- Cell Biology (AREA)
- Microbiology (AREA)
- Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)
- Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
Abstract
Изобретение относится к области биотехнологии, а именно к способу определения антагонистической активности штаммов бактерий в отношении Pseudomonas aeruginosa, включающему культивирование Pseudomonas aeruginosa и тестируемых штаммов на питательных средах, отличающемуся тем, что выявление антагонистической активности тестируемых штаммов осуществляют путем оценки продукции оксифеназинов P. aeruginosa в присутствии тестируемых штаммов в сравнении с чистой культурой P. aeruginosa на основе спектрофотометрической оценки их содержания в экстрактах, и при установлении факта подавления продукции оксифеназинов выявляют антагонистическую активность тестируемого штамма. Использование способа позволяет оценивать антагонистическую активность штаммов бактерий, подавляющих рост P. aeruginosa и препятствующих накоплению факторов патогенности, ассоциируемых с образованием биопленок. 4 пр., 2 табл.
Description
Изобретение относится к области ветеринарии а именно, к способу определения антагонистической активности штаммов микроорганизмов против Pseudomonas aeruginosa, также способ может быть использован в микробиологии и других областях.
Интегральным критерием антагонистической активности синегнойной палочки является снижение концентрации оксифеназинов (соединений которые образует синегнойная палочка в процесс реакций чувства кворума), для накопления которых нужно наличие синегнойной палочки и продукции этим микроорганизмом токсичного метаболита - пиоцианина, относящегося к оксифеназинам.
Известен способ определения антагонистической активности в тестах по сокультивированию (патент РФ №2376381 C1 от 20.12.2009 МПК C12Q 1/00 (2006.01), включающий получение из исследуемой культуры микроорганизмов экстрактов, представляющих собой экзометаболиты, клеточный экстракт и клеточные стенки. Полученные экстракты обеззараживают хлороформом из расчета 0,1 мл хлороформа на 3 мл экстракта. Затем смешивают каждый из подготовленных препаратов со штаммом-антагонистом в соотношении 1:2 соответственно. Параллельно готовят две контрольные пробы, при этом контроль 1 готовят из жидкой питательной среды и физиологического раствора, а контроль 2 - из жидкой питательной среды и штамма-антагониста. После чего опытные и контрольные пробы инкубируют. После этого разбавляют жидкой питательной средой, инкубируют и отделяют супернатанты (надосадочную жидкость) центрифугированием. Полученные супернатанты обеззараживают путем обработки их хлороформом из расчета 0,1 мл хлороформа на 3 мл супернатанта. Обеззараженные супернатанты смешивают с взвесью индикаторного штамма в соотношении 1:2 соответственно. Инкубируют и разбавляют жидкой питательной средой. После чего высевают индикаторный штамм на плотную питательную среду и культивируют. Затем подсчитывают КОЕ (колониеобразующие единицы) в опытных и контрольных пробах. Рассчитывают антагонистическую активность штамма-антагониста и по изменению антагонистической активности в опытных пробах по сравнению с контролем судят о способности исследуемой культуры микроорганизмов регулировать антагонистическую активность бактерий. Изобретение позволяет определять способность микроорганизмов регулировать антагонистическую активность бактерий.
Недостатком данного способа является то, что способ предусматривает оценку взаимодействия только клеточных компонентов исследуемого микроорганизма (экзометаболитов, клеточного экстракта и клеточных стенок), а не живых микроорганизмов на рост штамма-антагониста.
Известен способ способ определения продукции оксифеназинов. Пиоцианин (оксифеназин) последовательно экстрагируют и 0,2М HCl (соляной кислотой) после чего его содержание определяли спектрофотометрически при длине волны 520 нм хлороформом (Essar et al., 1990 D.W. Essar, L. Eberly, A. Hadero, I.P. Crawford Identification and characterization of genes for a second anthranilate synthase in Pseudomonas aeruginosa: interchangeability of the two anthranilate synthases and evolutionary implications Journal of Bacteriology, 172 (1990), pp. 884-900).
Недостатком данного способа является то, что способ не используется для оценки антагонистической активности бактерий в отношении Pseudomonas aeruginosa.
Наиболее близким по технической сущности и выбранным в качестве прототипа является определения антагонистической активности штаммов бактерий (патент РФ №2328734 С1 от 10.07.2008 МПК G01N 33/48 (2006.01), G01N 33/15 (2006.01), C12Q 1/02 (2006.01), при котором выделяются чистые культуры бактерий, после чего осуществляют пересев культур, различающихся по морфологическим критериям и ферментативной активности, на мясопептонный агар, изучают их рост в присутствии тест-штамма Proteus vulgaris. Культуры, которые не были подавлены ползучим ростом подвижного штамма P. vulgaris, считаются антагонистичными в отношении данного вида микроорганизма. Использование способа позволяет проводить массовый поиск широкого видового спектра пробиотических штаммов бактерий, обладающих антагонистической активностью в отношении P. vulgaris, путем тестирования больших количеств культур микроорганизмов, высеваемых из различных источников. Также, использование способа позволяет оценивать антагонистическое действие бактерий в отношении одного из механизмов патогенности P. vulgaris.
Недостатком данного способа является только визуальная оценка антагонистической активности исследуемых штаммов, путем подавления подвижного роста P.vulgaris на твердой питательной среде. В данном способе отсутствует сопоставление роста исследуемых культур без P. vulgaris. Данный тест не используется для оценки антагонистической активности культур в отношении P. aeruginosa, которая является наибольшей проблемой обусловливающей сложность терапии хронических инфекций у людей и животных особенно с признаками иммунодефицита.
Задачей заявленного изобретения является поиск штаммов бактерий, которые будут подавлять выработку оксифеназинов P. aeruginosa, являющихся критерием биологической активности бактерий этого вида, при формировании биопленки.
Поставленная задача решается тем, что в способе определения антагонистически активных штаммов бактерий в отношении P. aeruginosa, включающем культивирование тестируемых штаммов бактерий вместе с P. aeruginosa, согласно изобретению, выявление антагонистической активности тестируемых штаммов осуществляют путем оценки продукции оксифеназинов P. aeruginosa в присутствии штаммов-антагонистов в сравнении с чистой культурой P. aeruginosa на основе спектрофотметрической оценки их содержания в экстрактах.
Способ осуществляется следующим образом сокультивирование культуры P. aeruginosa с тестируемым штаммом микроорганизма в жидкой питательной среде, одновременно проводится культивирование чистой культуры P. aeruginosa при температуре 37°С в течение 22-24 ч., согласно изобретению, после инкубации оксифеназины экстрагируют последовательно вначале 1 мл хлороформа, а затем 1 мл 0,2М HCl, Оценка подавления синтеза оксифеназинов производится путем выявления снижения оптической плотности экстракта оксифеназинов P. aeruginosa (при сокультивировании) при длине волны 520 нм в сравнении с контрольной пробой (чистой культурой P. aeruginosa). Антагонистическая активность тестируемого штамма выявляется по факту подавления продукции оксифеназинов P. aeruginosa.
Для иллюстрации способа приведены примеры.
Пример 1. Способ определения оксифеназинов
Для выявления штаммов бактерий подавляющих продукцию оксифеназинов использовали культуру P. aeruginosa стабильно продуцирующий оксифеназины. Штамм засевали в объеме 100 мл триптиказо-соевого бульона и выращивали при температуре 37°С в течение 22 ч до стационарной фазы, которая сопровождалась накоплением концентрации клеток 2×109 КОЕ/мл и оксифеназинов. Затем клетки из культуральной среды осаждали центрифугированием при 5000 об/мин в течение 10 минут. Осадок отмывали один раз физиологическим раствором, и снова повторяли осаждение клеток методом центрифугирования при тех же условиях. Отмытые клетки ресуспендировали в 10 мл триптиказо-соевого бульона, таким образом сконцентрировали клетки в 10 раз и повысили титр P. aeruginosa до конечной концентрации клеток 3,2×1010 КОЕ/мл, а затем вносили по одному миллилитру в конические пробирки содержащие по 5 мл суточной культуры тестируемой бактерии Lactobacillus spp., в качестве отрицательного контроля при сокультивировании штаммов использовали P. aeruginosa. Полученные образцы сокультивирования штаммов инкубировали при температуре 37°С в течение 23 ч. Затем оксифеназины экстрагировали последовательно вначале 1 мл хлороформа, а затем 1 мл 0,2М HCl, экстрагированные образцы объединяли. После чего содержание оксифеназинов определяли спектрофометрически на спектрофотометре СФ-ломо 26. Продукция оксифеназинов P. aeruginosa в тестах по сокультивированию с Lactobacillus spp. составляла OD520 нм 0,01±0,001, в отличие от контроля P. aeruginosa OD520 нм 0,27±0,13.
Таким образом, происходит полное подавление синтеза оксифеназинов лактобактериями при сокультивировании с P. aeruginosa.
Пример 2. Поиск штаммов подавляющих активность образования оксифеназинов P. aeruginosa
Для выявления штаммов бактерий подавляющих продукцию оксифеназинов использовали культуру P. aeruginosa стабильно продуцирующий оксифеназины. Штамм засевали в объеме 1000 мл триптиказо-соевого бульона и выращивали при температуре 37°С в течение 22 ч до стационарной фазы, которая сопровождалась накоплением концентрации клеток 4,5×109 КОЕ/мл и оксифеназинов. Затем клетки из культуральной среды осаждали центрифугированием при 5000 об./мин в течение 10 минут. Осадок отмывали один раз физиологическим раствором, и снова повторяли осаждение клеток методом центрифугирования при тех же условиях. Отмытые клетки ресуспендировали в 100 мл триптиказо-соевого бульона, таким образом сконцентрировали клетки в 10 раз и повысили титр Р. aeruginosa до конечной концентрации клеток 5,3×1010 КОЕ/мл, а затем вносили по одному миллилитру в конические пробирки содержащие по 5 мл суточных культур тестируемых бактерий Weisella solipiscis, Acinetobacter calcoaceticus, Staphylococcus cohnii, Pseudomonas oryzihabitans, Enterobacter oryza, Serratia spp., в качестве отрицательного контроля при сокультивировании штаммов использовали P. aeruginosa. Полученные образцы сокультивирования штаммов инкубировали при температуре 37°С в течение 24 ч. Затем из каждого образца при сокультивировании экстрагировали оксифеназины последовательно, вначале 1 мл хлороформа, а затем 1 мл 0,2М НСд, экстрагированные образцы объединяли. После чего содержание оксифеназинов определяли спектрофометрически при длине волны 520 нм используя спектрофотометр СФ-ломо 26.
Данные по активности продукции оксифеназинов P. aeruginosa в тестах по сокультивированию с различными бактериями представлены в таблице 1.
Для оценки ингибирования продукции оксифеназинов P. aeruginosa рассчитывали удельную долю оптической плотности экстракта оксифеназинов, образовавшихся в присутствии тестируемого штамма, от оптической плотности экстракта чистой культуры P. aeruginosa. Например, штамм Weisella solipiscis L43 подавлял продукцию оксифеназинов Р. aeruginosa на 95,91% что позволяет его рассматривать в качестве перспективного пробиотического штамма.
Пример 3. Снижение синтеза бутаноил-гомосеринлактона
Для разрушения бутаноил-гомосеринлактона (сигнальной молекулы запускающий ряд реакций чувства кворума) проводили сокультивирование P. aeruginosa и Enterobacter cloacae SahD11-2 подавляющего синтез оксифеназинов. Шамм Е. cloacae SahD11-2 в предварительных экспериментах подавлял образование оксифеназинов P. aeruginosa (OD520 нм 0,12±0,05). Предварительно выращивали по 10 мл культуры P. aeruginosa в течение 5 суток при комнатной температуре, затем культуры центрифугировали при 5000 об/мин в течение 10 мин, осадок ресуспендировали в 1 мл стерильного физиологического раствора. В пробирки с культурой Enterobacter cloacae SahD11-2 вносили по 1 мл отмытой и ресуспендированой в физиологическом растворе биомассу P. aeruginosa. После сокультивирования при 37°С в течение суток, культуры центрифугировали 5000 об/мин в течение 10 мин. Супернатант стерилизовали добавлением 200 мкл хлороформа. Бутаноил-гомосеринлактон из образцов экстрагировали 1% раствором уксусной кислоты в ацетонитриле трехкратно. Объединенные экстракты высушивали в вакууме, растворяли в 150 мкл ледяной уксусной кислоте. Хромато-масспектрометрические исследования выполняли с помощью жидкостного хроматографа Agilent 1200 (с диодно-матричным детектором) и гибридного квадруполь-времяпролетного масс-спектрометра micrOTOF-Q (фирма Bruker). Для хроматографирования использовали колонку в Zorbax Bonus-RP (2.1*100 mm, 3.5 μm) и Zorbax Eclipse XDB-C8 (2.1*150 mm, 3.5 μm) с линейным градиентом от 10 до 100% ACN с 3-й до 33-й минуты. Скорость потока: 0,2 мл/мин 0.2 ml/min, 5 μL пробы. УФ-детектирование вели на 250/320 нм.
Рабочие параметры масс-детектирования. Метод ионизации: электростатическое распыление при атмосферном давлении (API-ES). Детектирование положительных ионов в диапазоне m/z=80-1300. Поток газа-осушителя (азот): 8 л/мин, его температура: 230°С, давление на распылителе: 3 bar.
Для исследований использовали штаммы P. aeruginosa стабильно секретирующие в стационарной фазе бутаноил-гомосеринлактон (что было установлено на основании LC-ESI-Q-TOF-MS). Проведенная хроматография и масспектрометрический анализ показал снижение продукции бутанол-гомосернлактона.
Таким образом, штамм Enterobacter cloacae SahD11-2 характеризовался как способностью к подавлению синтеза оксифеназинов P. aeruginosa, так и способностью к подавлению сигнала соответствующего бутаноил-гомосеринлактону при HPLC/MS анализе. Это свидетельствует о том, что предлагаемый способ позволяет оценивать не только подавление роста P. aeruginosa, но и подавление продукции такого фактора патогенности как бутаноил-гомосеринлактон, который является сигнальной молекулой, и отвечает за интенсивность реакций кворум-сенсинга (чувства кворума) в биопленках.
Предложенный способ следует считать удобным тестом для интегральной оценки антагонистической активности микроорганизмов в отношении P. aeruginosa так как в тестах по сокультивированию может быть затруднительным разделение бактерий разных видов при подсчете числа КОЕ.
Пример 4. Применение предлагаемого способа для поиска антагонистически активных штаммов.
Для поиска антагонистически активных штаммов было взято 26 штаммов бактерий преимущественно рода Bacillus. Культуры бацилл выращивали при комнатной температуре на среде LB 3 суток. Затем к 5 мл среды добавляли 1 мл культуры (тщательно ресуспендированной) и 100 мкл суточной культуры P. aeruginosa штамм 669 ИХБФМ и культивировали при 37С 24 ч. Также выращивали чистую культуру P. aeruginosa в аналогичных условиях. Оценивали продукцию оксифеназинов визуально и по предлагаемому способу. Тесты проводили в трех повторностях. Результаты опыта представлены в таблице 2.
Как следует из таблицы 2, 10 штаммов микроорганизмов подавляли образование оксифеназинов P. aeruginosa что позволяет их отнести к антагонистически активным в отношении данного вида патогенных микроорганизмов.
Claims (1)
- Способ определения антагонистической активности штаммов бактерий в отношении Pseudomonas aeruginosa, включающий культивирование Pseudomonas aeruginosa и тестируемых штаммов на питательных средах, отличающийся тем, что выявление антагонистической активности тестируемых штаммов осуществляют путем оценки продукции оксифеназинов P. aeruginosa в присутствии тестируемых штаммов в сравнении с чистой культурой P. aeruginosa на основе спектрофотометрической оценки их содержания в экстрактах, и при установлении факта подавления продукции оксифеназинов выявляют антагонистическую активность тестируемого штамма.
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| RU2018137121A RU2704115C1 (ru) | 2018-10-22 | 2018-10-22 | Способ определения антагонистической активности штаммов бактерий в отношении Pseudomonas aeruginosa |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| RU2018137121A RU2704115C1 (ru) | 2018-10-22 | 2018-10-22 | Способ определения антагонистической активности штаммов бактерий в отношении Pseudomonas aeruginosa |
Publications (1)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| RU2704115C1 true RU2704115C1 (ru) | 2019-10-24 |
Family
ID=68318499
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| RU2018137121A RU2704115C1 (ru) | 2018-10-22 | 2018-10-22 | Способ определения антагонистической активности штаммов бактерий в отношении Pseudomonas aeruginosa |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| RU (1) | RU2704115C1 (ru) |
Citations (4)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| RU2187801C2 (ru) * | 2000-07-10 | 2002-08-20 | Пермское научно-производственное объединение "Биомед" | Способ определения антагонистической активности пробиотиков |
| RU2328734C1 (ru) * | 2006-09-14 | 2008-07-10 | Государственное научное учреждение Институт экспериментальной ветеринарии Сибири и Дальнего Востока Сибирского отделения Россельхозакадемии (ГНУ ИЭВСиДВ СО РАСХН) | Способ определения антагонистически активных штаммов бактерий |
| RU2376381C2 (ru) * | 2008-01-09 | 2009-12-20 | Институт клеточного и внутриклеточного симбиоза УрО РАН | Способ определения способности микроорганизмов регулировать антагонистическую активность бактерий |
| RU2670585C1 (ru) * | 2018-04-18 | 2018-10-23 | Федеральное Государственное бюджетное учреждение "Государственный научный центр колопроктологии им. А.Н. Рыжих" Министерства здравоохранения Российской Федерации | Способ оценки антагонистической активности лактобактерий толстокишечного биотопа пациента относительно разнообразных бактерий двухэтапным культивированием микроорганизма-антагониста и тестируемой культуры в условиях комбинированной системы |
-
2018
- 2018-10-22 RU RU2018137121A patent/RU2704115C1/ru active
Patent Citations (4)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| RU2187801C2 (ru) * | 2000-07-10 | 2002-08-20 | Пермское научно-производственное объединение "Биомед" | Способ определения антагонистической активности пробиотиков |
| RU2328734C1 (ru) * | 2006-09-14 | 2008-07-10 | Государственное научное учреждение Институт экспериментальной ветеринарии Сибири и Дальнего Востока Сибирского отделения Россельхозакадемии (ГНУ ИЭВСиДВ СО РАСХН) | Способ определения антагонистически активных штаммов бактерий |
| RU2376381C2 (ru) * | 2008-01-09 | 2009-12-20 | Институт клеточного и внутриклеточного симбиоза УрО РАН | Способ определения способности микроорганизмов регулировать антагонистическую активность бактерий |
| RU2670585C1 (ru) * | 2018-04-18 | 2018-10-23 | Федеральное Государственное бюджетное учреждение "Государственный научный центр колопроктологии им. А.Н. Рыжих" Министерства здравоохранения Российской Федерации | Способ оценки антагонистической активности лактобактерий толстокишечного биотопа пациента относительно разнообразных бактерий двухэтапным культивированием микроорганизма-антагониста и тестируемой культуры в условиях комбинированной системы |
Non-Patent Citations (1)
| Title |
|---|
| ГРИЦЕНКО В.А. и др. Антагонистические взаимоотношения Pseudomonas aeruginosa с грамотрицательными бактериями // Бюллетень Оренбургского научного центра УрО РАН (электронный журнал). - 2016. - N.4. - 11с.. * |
Similar Documents
| Publication | Publication Date | Title |
|---|---|---|
| Hong et al. | Mechanism of tachyplesin I injury to bacterial membranes and intracellular enzymes, determined by laser confocal scanning microscopy and flow cytometry | |
| Zhu et al. | Eliciting antibiotics active against the ESKAPE pathogens in a collection of actinomycetes isolated from mountain soils | |
| Carlson Jr et al. | The relationship between phenotype, ribotype, and clinical disease in human Clostridium difficile isolates | |
| Chaiharn et al. | Screening siderophore producing bacteria as potential biological control agent for fungal rice pathogens in Thailand | |
| Al-Dhabi et al. | Chemical constituents of Streptomyces sp. strain Al-Dhabi-97 isolated from the marine region of Saudi Arabia with antibacterial and anticancer properties | |
| Zhao et al. | Study of the antifungal activity of Bacillus vallismortis ZZ185 in vitro and identification of its antifungal components | |
| Carlson Jr et al. | Variation in germination of Clostridium difficile clinical isolates correlates to disease severity | |
| Schofield et al. | Bacillus anthracis diagnostic detection and rapid antibiotic susceptibility determination using ‘bioluminescent’reporter phage | |
| Lopes et al. | Endophytic bacteria isolated from common bean (Phaseolus vulgaris) exhibiting high variability showed antimicrobial activity and quorum sensing inhibition | |
| Elbargisy | Optimization of nutritional and environmental conditions for pyocyanin production by urine isolates of Pseudomonas aeruginosa | |
| Geddes et al. | Porin-independent accumulation in Pseudomonas enables antibiotic discovery | |
| Salwan et al. | Molecular imprints of plant beneficial Streptomyces sp. AC30 and AC40 reveal differential capabilities and strategies to counter environmental stresses | |
| Shi et al. | Antimicrobial peptide BCp12 inhibits Staphylococcus aureus growth by altering lysine malonylation levels in the arginine synthesis pathway | |
| Webster et al. | A rapid screening method for the detection of specialised metabolites from bacteria: induction and suppression of metabolites from Burkholderia species | |
| Guo et al. | Targeted metabolomics revealed the regulatory role of manganese on small-molecule metabolism of biofilm formation in Escherichia coli | |
| Li et al. | Activity of bacteria isolated from bats against Pseudogymnoascus destructans in China | |
| Eze et al. | Serratiochelins A and B from Serratia marcescensshow xenosiderophoric characteristics towards Acinetobacter baumanniiand Mycobacterium tuberculosis | |
| RU2704115C1 (ru) | Способ определения антагонистической активности штаммов бактерий в отношении Pseudomonas aeruginosa | |
| Matilla et al. | Herbicolin A production and its modulation by quorum sensing in a Pantoea agglomerans rhizobacterium bioactive against a broad spectrum of plant‐pathogenic fungi | |
| Sadek et al. | Optimal detection of extended-spectrum β-lactamase producers, carbapenemase producers, polymyxin-resistant Enterobacterales, and vancomycin-resistant enterococci from stools | |
| Simó et al. | Resazurin-based high-throughput screening method for the discovery of dietary phytochemicals to target microbial transformation of l-carnitine into trimethylamine, a gut metabolite associated with cardiovascular disease | |
| Al-Humam | Heat-shock technique for isolation of soil Bacillus species with potential of antibiotics secretion in Saudi Arabia | |
| Goutam et al. | In vitro potential of endophytic fungus Aspergillus terreus (JAS-2) associated with Achyranthus aspera and study on its culture conditions | |
| Jabbar et al. | Extraction, purification and characterization of Pyocyanin pigment from Pseudomonas aeruginosa and testing its biological efficacy. | |
| Jayanna et al. | Quorum quenching activity of rhizosphere bacteria against Ralstonia solanacearum |