RU2702765C2 - Microclonal propagation method of potatoes - Google Patents

Microclonal propagation method of potatoes Download PDF

Info

Publication number
RU2702765C2
RU2702765C2 RU2018108782A RU2018108782A RU2702765C2 RU 2702765 C2 RU2702765 C2 RU 2702765C2 RU 2018108782 A RU2018108782 A RU 2018108782A RU 2018108782 A RU2018108782 A RU 2018108782A RU 2702765 C2 RU2702765 C2 RU 2702765C2
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
propagation
nutrient medium
plants
potatoes
lixii
Prior art date
Application number
RU2018108782A
Other languages
Russian (ru)
Other versions
RU2018108782A (en
RU2018108782A3 (en
Inventor
Нинэль Ефимовна Павловская
Ирина Алексеевна Гнеушева
Марина Александровна Полякова
Ирина Юрьевна Солохина
Original Assignee
Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования "Орловский государственный аграрный университет имени Н.В. Парахина"
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования "Орловский государственный аграрный университет имени Н.В. Парахина" filed Critical Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования "Орловский государственный аграрный университет имени Н.В. Парахина"
Priority to RU2018108782A priority Critical patent/RU2702765C2/en
Publication of RU2018108782A publication Critical patent/RU2018108782A/en
Publication of RU2018108782A3 publication Critical patent/RU2018108782A3/ru
Application granted granted Critical
Publication of RU2702765C2 publication Critical patent/RU2702765C2/en

Links

Classifications

    • AHUMAN NECESSITIES
    • A01AGRICULTURE; FORESTRY; ANIMAL HUSBANDRY; HUNTING; TRAPPING; FISHING
    • A01HNEW PLANTS OR NON-TRANSGENIC PROCESSES FOR OBTAINING THEM; PLANT REPRODUCTION BY TISSUE CULTURE TECHNIQUES
    • A01H4/00Plant reproduction by tissue culture techniques ; Tissue culture techniques therefor
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A01AGRICULTURE; FORESTRY; ANIMAL HUSBANDRY; HUNTING; TRAPPING; FISHING
    • A01NPRESERVATION OF BODIES OF HUMANS OR ANIMALS OR PLANTS OR PARTS THEREOF; BIOCIDES, e.g. AS DISINFECTANTS, AS PESTICIDES OR AS HERBICIDES; PEST REPELLANTS OR ATTRACTANTS; PLANT GROWTH REGULATORS
    • A01N25/00Biocides, pest repellants or attractants, or plant growth regulators, characterised by their forms, or by their non-active ingredients or by their methods of application, e.g. seed treatment or sequential application; Substances for reducing the noxious effect of the active ingredients to organisms other than pests

Abstract

FIELD: agriculture.
SUBSTANCE: invention relates to the agriculture. For microclonal propagation of potatoes, propagation of tubed potato plants is performed in vitro using a hormone-free nutrient medium with pH 5.7–5.8, containing micro salts and macro salts according to Murashige and Skoog, Fe2SO4, CaCl2, meso-inositol, thiamine, pyridoxine, nicotinic acid, saccharose, glucose, agar, biologically active substances of mycelial fungus Trichoderma lixii, with the following ratio of components: Macrosalt – 50 mg/l, Microsalt – 1 mg/l, Fe2SO4⋅7H2O – 5.0 mg/l, CaCl2⋅2H2O – 440 mg/l, meso-inositol – 100 mg/l, thiamine – 1.0 mg/l, pyridoxine – 1.0 mg/l, nicotinic acid – 0.5 mg/l, acarose – 25 g/l, glucose – 25 g/l, agar – 6 g/l, biologically active substances of mycelial fungus Trichoderma lixii – 0.5 mg/l.
EFFECT: invention makes it possible to increase efficiency of reproduction of healthy pottyral potato plants.
1 cl, 2 tbl

Description

Предлагаемое изобретение относится к сельскохозяйственной биотехнологии, а именно к технологии ускоренного размножения пробирочных растений картофеля в условиях in vitro. Изобретение может быть использовано для оздоровления пробирочных растений картофеля при производстве семенного безвирусного посадочного материала из меристемных линий.The present invention relates to agricultural biotechnology, and in particular to the technology of accelerated propagation of test tube potato plants in vitro. The invention can be used to improve the test tube potato plants in the production of seed-free virus-free planting material from meristem lines.

Картофель (Solanum tuberosum var. tuberosum) выращивается в России повсеместно, практически во всех климатических зонах. Относительно высокая продуктивность при известной простоте возделывания позволяет картофелю стабильно занимать второе место после злаковых культур в отечественном сельскохозяйственном производстве.Potatoes (Solanum tuberosum var. Tuberosum) are grown everywhere in Russia, in almost all climatic zones. Relatively high productivity with a certain ease of cultivation allows the potato to consistently take the second place after cereal crops in domestic agricultural production.

Важной особенностью картофеля является и то, что вследствие вегетативного размножения большинство поражающих его болезней передается через семенные клубни, которые и являются первичным источником инфекции для последующего заражения посадок. Картофель может поражаться болезнями на всех этапах жизненного цикла: до появления всходов, во время вегетации и в период хранения. Многие возбудители болезней способны также накапливаться и длительно сохраняться в почве.An important feature of potatoes is that due to vegetative propagation, most of the diseases affecting it are transmitted through seed tubers, which are the primary source of infection for subsequent infection of plantings. Potatoes can be affected by diseases at all stages of the life cycle: before emergence, during the growing season and during storage. Many pathogens can also accumulate and persist for a long time in the soil.

Выращивание картофеля, свободного от инфекции, является перспективным направлением исследований в настоящее время. Микроклональное размножение картофеля из меристемных линий позволяет получать оздоровленный от вирусной, грибной и бактериальной инфекций семенной материал.Growing infection-free potatoes is a promising area of research today. Microclonal propagation of potatoes from meristemic lines allows you to get healed from viral, fungal and bacterial infections seed material.

Картофельные вирусные заболевания чаще всего передаются через семенной материал. В процессе длительного культивирования стерильных растений из меристемных линий в условиях in vitro, часто происходит контаминация материала бактериальной и грибной микрофлорой. Причиной этого являются чаще всего инфицированные экспланты, реже компоненты питательных сред, возможна внутрилабораторная передача инфекции из воздуха, от персонала, и от одной культуры клеток к другим.Potato viral diseases are most often transmitted through seed material. During prolonged cultivation of sterile plants from meristem lines in vitro, contamination of the material with bacterial and fungal microflora often occurs. The reason for this is most often infected explants, less often the components of nutrient media; intra-laboratory transmission of the infection from air, from personnel, and from one cell culture to another is possible.

Известен способ, уменьшающий зараженность ягодных культур во время длительного культивирования из апикальных меристем, заключающийся во включении в питательные среды антибиотиков, в частности тетрациклина, что снижает контаминацию отдельных микроорганизмов, случайно попавших на поверхность питательной среды во время пересадок (Иванов А.И., Приходько Ю.Н., Приходько Д.П., Богомолов А.А. «Совершенствование методики получения растений земляники методом культуры апикальных меристем» / В сборнике «Селекция и агротехника выращивания плодовых и ягодных культур в Среднем Поволжье, Куйбышевское книжное изд-во, 1989, с. 63-75) [1].There is a method that reduces the infection of berry crops during prolonged cultivation from the apical meristems, which consists in including antibiotics, in particular tetracycline, in the nutrient medium, which reduces the contamination of individual microorganisms that accidentally hit the surface of the nutrient medium during transplants (Ivanov A.I., Prikhodko Yu.N., Prikhodko DP, Bogomolov AA “Improving the methodology for producing strawberry plants using the apical meristem culture method” / In the collection “Selection and agricultural technology of fruit growing x and fruit crops in the Middle Volga, Kuibyshevskoe book publishing house, 1989, p. 63-75) [1].

Недостатком способа является ограничение использования тетрациклина для производства оздоровленного пробирочного растения ввиду того, что антибиотик активен в отношении лишь немногих грамотрицательных бактерий. К тетрациклину не устойчивы микроорганизмы большинства грибов, которые чаще всего вызывают контаминацию питательной среды при длительном культивировании стерильных растений в условиях in vitro.The disadvantage of this method is the restriction of the use of tetracycline for the production of a healthy test tube plant due to the fact that the antibiotic is active against only a few gram-negative bacteria. Microorganisms of most fungi are not resistant to tetracycline, which most often cause contamination of the nutrient medium during prolonged cultivation of sterile plants in vitro.

Известен способ внесения антибиотика нистатина в культуру эксплантов земляники и яблони, описан положительный эффект от его применения при нулевом эффекте от антибиотиков макропен, цефипим и др. (Бунцевич Л.Л., Палецкая Е.Н., Костюк М.А., Медведеева Н.И. «Исследование эффективности антибиотиков и стерилизаторов нового поколения для подавления бактериальной и грибной контаминации среды и эксплантов» / Тематический сетевой электронный журнал СКЗНИИСиВ, 2012, №16(4). - С. 10) [2].There is a method of introducing the nystatin antibiotic into the explant culture of strawberries and apple trees, the positive effect of its use with the zero effect of antibiotics macropen, cefipim, etc. (Buntsevich L.L., Paletskaya E.N., Kostyuk MA, Medvedeva N .I. “A study of the effectiveness of new generation antibiotics and sterilizers for suppressing bacterial and fungal contamination of the environment and explants” / Thematic online journal SKZNIISiV, 2012, No. 16 (4). - P. 10) [2].

Недостатком способа является ограничение использования полиенового антибиотика нистатина для производства оздоровленного пробирочного растения ввиду того, что антибиотик не активен в отношении бактерий. Нистатин - противогрибковое, фунгистатическое средство.The disadvantage of this method is the restriction of the use of the polyene antibiotic nystatin for the production of a healthy test tube due to the fact that the antibiotic is not active against bacteria. Nystatin is an antifungal, fungistatic agent.

Установлено, что морфологические типы бактерий, выделенных из культуральной среды растений вишни и черешни, представляют собой смесь различных видов микрорганизмов. Изучено 32 клона контаминат и выявлено, что источниками заражения являются ризосферная, эпифитная и эндофитная микрофлора растений. Исходя из этого, для декотаминации питательной среды, применяли антибиотики из группы аминогликозидов с широким антибактериальным спектром действия (Бургутин А.Б., Феактистов Н.В., пунина Н.В., Игнатов А.И. «Определение видовой принадлежности контаминирующих культур древесных растений in vitro I Звенигород, 2008. С. 80) [3].It has been established that the morphological types of bacteria isolated from the culture medium of cherry and cherry plants are a mixture of various types of microorganisms. Studied 32 clones of contaminate and revealed that the sources of infection are rhizospheric, epiphytic and endophytic microflora of plants. Proceeding from this, antibiotics from the group of aminoglycosides with a wide antibacterial spectrum of action were used for decotamination of the nutrient medium (Bourgutin A.B., Feaktistov N.V., Punina N.V., Ignatov A.I. “Determination of the species affiliation of wood contaminating cultures plants in vitro I Zvenigorod, 2008. S. 80) [3].

Недостатком известного способа является способность микроорганизмов обладать резистентностью к антибиотическим веществам этого ряда.The disadvantage of this method is the ability of microorganisms to have resistance to antibiotic substances of this series.

Известен способ микроклонального размножения винограда in vitro, включающий микрочеренкование пробирочных растений и высадку их на питательную среду Мурасиге и Скуга без ростовых веществ и с уменьшенным содержанием макроэлементов, при этом посадку и культивирование осуществляли с добавлением в питательную среду индолилуксусной кислоты 0,1-0,3 мг/л и эмистима в концентрации 10-7-10-10 мл/л (патент РФ №2264706 «Способ оптимизации клонального микроразмножения винограда in vitro», А01Н 4/00, A01N 25/00, C12N 5/00, 2005 г.) [4]. Эмистим - биорегулятор роста и корнеобразования растений, способствует индукции ризогенеза и вытягивания в длину клеток всех тканей. В результате его применения происходит оптимизация метаболических процессов, повышается иммунитет у растений.A known method of microclonal propagation of grapes in vitro, including microcentering of test plants and planting them on a nutrient medium Murashige and Skoog without growth substances and with a reduced content of macrocells, while planting and cultivation was carried out with the addition of indolylacetic acid 0.1-0.3 mg / l and emistima in a concentration of 10 -7 -10 -10 ml / l (RF patent No. 2264706 "Method for optimizing clonal micropropagation of grapes in vitro", A01H 4/00, A01N 25/00, C12N 5/00, 2005 ) [four]. Emistim is a bioregulator of plant growth and root formation, promotes the induction of rhizogenesis and elongation of cells of all tissues. As a result of its use, metabolic processes are optimized, and immunity in plants increases.

Недостатком известного способа является ограничение использования эмистима для производства оздоровленного пробирочного растения ввиду того, что этот биорегулятор не уничтожает бактериальные инфекции, которые чаще всего угнетают растения и приводят их к гибели. Хотя при этом его применение для оздоровления микрочеренков винограда не вызывает сомнения, так как виноград реже подвержен бактериальной инфекцией.The disadvantage of this method is the limitation of the use of emistim for the production of a healthy test tube plant due to the fact that this bioregulator does not destroy bacterial infections that most often inhibit plants and lead to their death. Although at the same time its use for healing microcrops of grapes is not in doubt, since grapes are less likely to be infected with bacteria.

Наиболее близким по технической сущности к предложенному является способ приготовления питательной среды для размножения пробирочных растений картофеля (патент KZ №25514 «Способ приготовления питательной среды для размножения пробирочных растений картофеля», A01G 9/00 C05D 9/00, 2010 год) [5], включающий быстрое размножение пробирочных растений картофеля in vitro при использовании оптимизированной безгормональной питательной среды Мурасиге и Скуга, содержащей макросоли 50 мг/л, микросоли 1 мг/л, Fe2SO47H2O 5,0 мг/л, CaCl2⋅2H2O 440 мг/л, мезо-инозит 100 мг/л, тиамин 1,0 мг/л, пиридоксин 1,0 мг/л, никотиновая кислота 0,5 мг/л, сахароза 25 г/л, глюкоза 25 г/л, агар 6 г/л, рН 5,7-5,8. Размножение пробирочных растений картофеля из меристемных линий проводили путем микрочеренкования in vitro. Пробирочные растения картофеля доставали из пробирки пинцетом и клали на стерильный матрасик. Скальпелем разрезали растение на черенки, состоящие из кусочка стебля с листочком и пазушной почкой. Черенкование пробирочных растений проводили с интервалом 14 дней. Выросшие растения с 5-6 черенками периодически разрезали и пересаживали в пробирки со свежей питательной средой Мурасиге и Скуга. Пробирочные растения выращивали в фактеростатной комнате при температуре 23-25°С и освещенность 7000 люкс.The closest in technical essence to the proposed is a method of preparing a nutrient medium for the propagation of test tube potato plants (patent KZ No. 25514 "Method for preparing a nutrient medium for the propagation of test tube potato plants", A01G 9/00 C05D 9/00, 2010) [5], including the rapid propagation of test tube potato plants in vitro using the optimized hormone-free nutrient medium Murashige and Skoog containing macrosalts 50 mg / l, microsols 1 mg / l, Fe 2 SO 4 7H 2 O 5.0 mg / l, CaCl 2 ⋅ 2H 2 O 440 mg / l, meso-inositol 100 mg / l, thiamine 1.0 mg / l, pyridoxine 1.0 mg / l, nicotinic acid 0.5 mg / l, sucrose 25 g / l, glucose 25 g / l, agar 6 g / l, pH 5.7-5.8 . The propagation of test tube potato plants from meristem lines was carried out by in vitro microcherenking. Test tube potato plants were removed from the test tube with tweezers and laid on a sterile mattress. The plant was cut with a scalpel into cuttings consisting of a piece of stem with a leaf and axillary bud. Cutting of test plants was carried out with an interval of 14 days. The grown plants with 5-6 cuttings were periodically cut and transplanted into test tubes with fresh nutrient medium Murasige and Skoog. Test plants were grown in a factorostat room at a temperature of 23-25 ° C and illumination of 7000 lux.

Недостатком этого способа является отсутствием компонента питательной среды, позволяющего снизить контаминацию грибной и бактериальной микрофлоры в процессе длительного культивирования стерильных растений картофеля из меристемных линий в условиях in vitro.The disadvantage of this method is the lack of a component of the nutrient medium, which allows to reduce the contamination of fungal and bacterial microflora during prolonged cultivation of sterile potato plants from meristem lines in vitro.

Задачей, на решение которой направлено заявляемое изобретение, является повышение эффективности размножения оздоровленных пробирочных растений картофеля, полученных из меристемных линий, в условиях in vitro при использовании оптимизированной питательной среды Мурасиге и Скуга.The problem to which the invention is directed, is to increase the efficiency of reproduction of healthy test tube potato plants obtained from meristem lines in vitro using the optimized nutrient medium Murashige and Skoog.

Технический результат достигается эффективным стимулированием корнеобразования в пробирочных растений картофеля, выращенных из меристемных линий, и полной деконтаминацией грибной и бактериальной микрофлоры.The technical result is achieved by effective stimulation of root formation in vitro potato plants grown from meristem lines, and by complete decontamination of fungal and bacterial microflora.

Указанные задача и технический результат достигается тем, что в способе микроклонального размножения картофеля, включающем размножение пробирочных растений картофеля in vitro при использовании оптимизированной безгормональной питательной среды Мурасиге и Скуга, содержащей макросоли, микросоли, Fe2SO4, CaCl2, мезо-инозит, тиамин, пиридоксин, никотиновую кислоту, сахарозу, глюкозу, агар, рН 5,7-5,8, согласно изобретению, в питательную среду дополнительно вводят биологически активные вещества мицелиального гриба Trichoderma lixii (GenBank: JQ350879.1) при следующем соотношении компонентов: макросоли 50 мг/л, микросоли 1 мг/л, Fe2SO4⋅7H2O 5,0 мг/л, CaCl2⋅2H2O 440 мг/л, мезо-инозит 100 мг/л, тиамин 1,0 мг/л, пиридоксин 1,0 мг/л, никотиновая кислота 0,5 мг/л, сахароза 25 г/л, глюкоза 25 г/л, агар 6 г/л,The specified task and technical result is achieved by the fact that in the method of microclonal propagation of potatoes, including the propagation of test tube potato plants in vitro using the optimized hormone-free nutrient medium Murashige and Skoog containing macrosalts, microsols, Fe 2 SO 4 , CaCl 2 , meso-inositol, thiamine , pyridoxine, nicotinic acid, sucrose, glucose, agar, pH 5.7-5.8, according to the invention, biologically active substances of the mycelial fungus Trichoderma lixii (GenBank: JQ350879.1) are additionally introduced into the nutrient medium in the following component ratio m: makrosoli 50 mg / l, mikrosoli 1 mg / L, Fe 2 SO 4 ⋅7H 2 O 5.0 mg / l, CaCl 2 ⋅2H 2 O 440 mg / L, meso-inositol 100 mg / l, thiamine 1.0 mg / l, pyridoxine 1.0 mg / l, nicotinic acid 0.5 mg / l, sucrose 25 g / l, glucose 25 g / l, agar 6 g / l,

биологически активные вещества мицелиального гриба Trichoderma lixii (GenBank: JQ350879.1) 0,5 мг/л, рН 5,7-5,8.biologically active substances of the mycelial fungus Trichoderma lixii (GenBank: JQ350879.1) 0.5 mg / l, pH 5.7-5.8.

Отличительным признаком заявляемого способа является введение в состав питательной среды для размножения пробирочных растений картофеля биологически активные вещества мицелиального гриба Trichoderma lixii (GenBank: JQ350879.1) в концентрации 0,5 мг/л, которые обеспечивают деконтаминацию от нежелательной грибной и бактериальной микрофлоры культивируемого растительного материала и обогащение их ростовыми факторами.A distinctive feature of the proposed method is the introduction of a nutrient medium for the propagation of test tube plants of potato biologically active substances of the mycelial fungus Trichoderma lixii (GenBank: JQ350879.1) at a concentration of 0.5 mg / l, which provide decontamination from undesirable fungal and bacterial microflora of cultivated plant material and enrichment with growth factors.

Доказано, что биологически активные вещества мицелиальных грибов Trichoderma представляют собой соединения не пептидной природы, не имеющих амидных связей, обладающих иммуномодулирующими, ростостимулирующими свойствами (Павловская Н.Е. Влияние вторичных метаболитов грибов рода Trichoderma на посевные качества семян гороха / Н.Е. Павловская, И.А. Гнеушева, И.Ю. Солохина, И.В Яковлева // Сельскохозяйственная биология. 2012. №3. С.114-117) [6], бактерицидным и фунгицидным действием в отношении ряда фитопатогенов, широко распространенных на овощных культурах, в том числе картофеля (бактериальные - Clavibacter michiganensis subsp.Michiganensis (возбудитель бактериального рака томатов), Pseudomonas syringae pv. tomato (возбудитель бактериальной точечности плодов томата), Xanthomonas euvesicatoria (возбудитель бактериальной пятнистости томата); грибные - Ascochita cucumis (возбудитель черной микосфереллезной стеблевой гнили огурца), Didymella lycopersici (анаморфа: Phoma lycopersici) (возбудитель стеблевой гнили томата), Phoma destructiva (возбудитель фомозной гнили томата), Fusarium oxysporum (возбудитель фузариозной гнили корневой шейки и корней томата), Fusarium solani (телеоморфа: Nectria haematococca) (возбудитель фузариозной гнили корней огурца) (Гнеушева И.А. Антагонистический потенциал штаммов Trichoderma spp.в отношении возбудителей грибных и бактериальных заболеваний растений / И.А. Гнеушева, И.Ю. Солохина, Н.Е. Павловская, А.В. Лушников // Материалы Всероссийской научно-практической конференции "Продовольственная безопасность от зависимости к самостоятельности", Орел. - 29 ноября 2017 г. В печати) [7].It is proved that the biologically active substances of Trichoderma mycelium fungi are compounds of a non-peptide nature, without amide bonds, with immunomodulatory, growth-promoting properties (Pavlovskaya N.E. Influence of secondary metabolites of Trichoderma fungi on the sowing quality of pea seeds / N.E. Pavlovskaya, I.A. Gneusheva, I.Yu. Solokhina, I.V. Yakovleva // Agricultural Biology. 2012. No. 3. S.114-117) [6], bactericidal and fungicidal action against a number of phytopathogens widely distributed in vegetable crops , at number of potatoes (bacterial - Clavibacter michiganensis subsp. Michiganensis (causative agent of bacterial tomato cancer), Pseudomonas syringae pv. tomato (causative agent of bacterial spotting of tomato fruits), Xanthomonas euvesicatoria (causative agent of tomato bacterial spotting); cucumber), Didymella lycopersici (anamorph: Phoma lycopersici) (causative agent of stem rot of tomato), Phoma destructiva (causative agent of fomose rot of tomato), Fusarium oxysporum (causative agent of fusarium rot of root neck and tomarium rhizomeumata (tomato root), causative agent of fusarium rot of cucumber roots) (Gneusheva I.A. Antagonistic potential of Trichoderma spp. Strains against pathogens of fungal and bacterial plant diseases / I.A. Gneusheva, I.Yu. Solokhina, N.E. Pavlovskaya, A.V. Lushnikov // Materials of the All-Russian Scientific and Practical Conference "Food Security from Dependence to Independence", Orel. - November 29, 2017 in print) [7].

Способ микроклонального размножения картофеля осуществляют следующим образом.The method of microclonal propagation of potatoes is as follows.

Отбирают растения картофеля (экспланты), регенерированные из апикальных меристем размером 0,1-0,2 мм, не зараженные вирусной, бактериальной и грибной инфекциями. Растения должны иметь 8-10 междоузлий.Potato plants (explants) are selected, regenerated from apical meristems 0.1-0.2 mm in size, not infected with viral, bacterial and fungal infections. Plants should have 8-10 internodes.

Затем готовят твердую оптимизированную безгормональную питательную среду Мурасиге и Скуга, содержащую макросоли 50 мг/л, микросоли 1 мг/л, Fe2SO4⋅7H2O 5,0 мг/л, CaCl2⋅2H2O 440 мг/л, мезо-инозит 100 мг/л, тиамин 1,0 мг/л, пиридоксин 1,0 мг/л, никотиновая кислота 0,5 мг/л, сахароза 25 г/л, глюкоза 25 г/л, агар 6 г/л. рН среды перед автоклавированием 5,7-5,8. Среду автоклавируют в автоклаве под давлением 1,0 атм, температуре 110°С в течение 10 минут.Then prepare a solid optimized hormone-free nutrient medium Murashige and Skoog, containing 50 mg / l macro salts, 1 mg / l micro salts, Fe 2 SO 4 ⋅ 7H 2 O 5.0 mg / l, CaCl 2 ⋅ 2H 2 O 440 mg / l, meso-inositol 100 mg / l, thiamine 1.0 mg / l, pyridoxine 1.0 mg / l, nicotinic acid 0.5 mg / l, sucrose 25 g / l, glucose 25 g / l, agar 6 g / l . pH of the medium before autoclaving 5.7-5.8. The medium is autoclaved in an autoclave under a pressure of 1.0 atm, a temperature of 110 ° C for 10 minutes.

Биологически активные вещества мицелиального гриба Trichoderma lixii (GenBank: JQ350879.1) в концентрации 0,5 мг/л добавляют в условиях ламинарного бокса в остывшую до +55°С питательную среду после автоклавирования, что обеспечивает их максимальное воздействие. После чего среду разливают по пробиркам.The biologically active substances of the mycelial fungus Trichoderma lixii (GenBank: JQ350879.1) at a concentration of 0.5 mg / l are added under laminar box conditions to the nutrient medium cooled to + 55 ° C after autoclaving, which ensures their maximum effect. Then the medium is poured into test tubes.

Растения картофеля (экспланты), регенерированные из апикальных меристем, достают из пробирки пинцетом и кладут на стерильную чашку Петри. Скальпелем разрезают растение на черенки, состоящие из кусочка стебля с листочком и пазушной почкой. Длина микрочеренка составляет 10-12 мм, 2 мм над глазком, остальные под глазком.Potato plants (explants) regenerated from the apical meristems are removed from the test tube with tweezers and placed on a sterile Petri dish. The plant is cut with a scalpel into cuttings consisting of a piece of stem with a leaf and axillary bud. The length of the microcranium is 10-12 mm, 2 mm above the eye, the rest under the eye.

Полученные микрочеренки высаживают в пробирки на твердую оптимизированную безгормональную питательную среду Мурасиге и Скуга. Культивирование осуществляют в культуральной комнате при освещенности 2,0-3,0 тыс. люксов, фотопериоде - 16 часов, температуре 23-25°С и влажности воздуха 70-75%.The resulting micro-stems are planted in test tubes on a solid optimized hormone-free nutrient medium Murashige and Skoog. Cultivation is carried out in a culture room with illumination of 2.0-3.0 thousand lux, a photoperiod of 16 hours, a temperature of 23-25 ° C and an air humidity of 70-75%.

Оценку морфометрических показателей и наличие контаминантов в выросших растениях с 5-6 черенками проводят с интервалом 14 дней. Затем пересаживают в пробирки со свежей питательной средой.Evaluation of morphometric indicators and the presence of contaminants in grown plants with 5-6 cuttings is carried out with an interval of 14 days. Then transplanted into test tubes with fresh nutrient medium.

В ходе экспериментальных исследований было установлено, что заявляемый способ способствует размножению оздоровленных пробирочных растений картофеля сорта «Голубизна», полученных из меристемных линий, в условиях in vitro при использовании оптимизированной питательной среды Мурасиге и Скуга с биологически активными веществами мицелиального гриба Trichoderma lixii (GenBank: JQ350879.1) в концентрации 0,5 мг/л. Результаты исследования приведены в таблицах 1, 2.In the course of experimental studies, it was found that the claimed method promotes the propagation of healthy test tube plants of the Golubizna potato variety obtained from meristem lines in vitro using the optimized nutrient medium Murashige and Skoog with biologically active substances of the mycelial fungus Trichoderma lixii (GenBank: JQ350879 .1) at a concentration of 0.5 mg / L. The results of the study are shown in tables 1, 2.

Figure 00000001
Figure 00000001

Figure 00000002
Figure 00000002

В результате микроклонального размножения получено 614 образцов оздоровленных пробирочных растений картофеля из меристемных линий, свободных от вирусной, грибной и бактериальной инфекций.As a result of microclonal propagation, 614 samples of healthy test tube potato plants from meristem lines free of viral, fungal, and bacterial infections were obtained.

Таким образом, именно отличительный признак заявляемого способа убедительно показывает деконтаминацию от нежелательной грибной и бактериальной микрофлоры культивируемого растительного материала и стимулирование их роста и развития.Thus, it is the hallmark of the proposed method convincingly shows decontamination from undesirable fungal and bacterial microflora of cultivated plant material and stimulation of their growth and development.

Claims (2)

Способ микроклонального размножения картофеля, включающий размножение пробирочных растений картофеля in vitro при использовании безгормональной питательной среды с рН 5,7-5,8, содержащей микросоли, и макросоли по Мурасиге и Скуга, Fe2SO4, CaCl2, мезо-инозит, тиамин, пиридоксин, никотиновую кислоту, сахарозу, глюкозу, агар, отличающийся тем, что дополнительно в питательную среду вводят биологически активные вещества мицелиального гриба Trichoderma lixii при следующем соотношении компонентов:The method of microclonal propagation of potatoes, including the propagation of test tube potato plants in vitro using a hormone-free nutrient medium with a pH of 5.7-5.8 containing microsols and macrosalt according to Murasiga and Skoog, Fe 2 SO 4 , CaCl 2 , meso-inositol, thiamine , pyridoxine, nicotinic acid, sucrose, glucose, agar, characterized in that the biologically active substances of the mycelial fungus Trichoderma lixii are additionally introduced into the nutrient medium in the following ratio of components: макросолиmacrosalts 50 мг/л50 mg / l микросолиmicrosalts 1 мг/л1 mg / l Fe2SO4⋅7H2OFe 2 SO 4 ⋅ 7H 2 O 5,0 мг/л5.0 mg / L CaCl2⋅H2OCaCl 2 ⋅H 2 O 440 мг/л440 mg / l мезо-инозитmeso-inositol 100 мг/л100 mg / l тиаминthiamine 1,0 мг/л1.0 mg / L пиридоксинpyridoxine 1,0 мг/л1.0 mg / L никотиновая кислотаa nicotinic acid 0,5 мг/л0.5 mg / l сахарозаsucrose 25 г/л25 g / l глюкозаglucose 25 г/л25 g / l агарagar 6 г/л6 g / l биологически активные веществаbiologically active substances мицелиального гриба Trichoderma lixiimycelial fungus Trichoderma lixii 0,5 мг/л0.5 mg / l
RU2018108782A 2018-03-12 2018-03-12 Microclonal propagation method of potatoes RU2702765C2 (en)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2018108782A RU2702765C2 (en) 2018-03-12 2018-03-12 Microclonal propagation method of potatoes

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2018108782A RU2702765C2 (en) 2018-03-12 2018-03-12 Microclonal propagation method of potatoes

Publications (3)

Publication Number Publication Date
RU2018108782A RU2018108782A (en) 2019-09-12
RU2018108782A3 RU2018108782A3 (en) 2019-09-12
RU2702765C2 true RU2702765C2 (en) 2019-10-11

Family

ID=67989321

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
RU2018108782A RU2702765C2 (en) 2018-03-12 2018-03-12 Microclonal propagation method of potatoes

Country Status (1)

Country Link
RU (1) RU2702765C2 (en)

Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2788851C1 (en) * 2022-02-10 2023-01-25 Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования "Красноярский государственный аграрный университет" Method for microclonal reproduction of potatoes in culture in vitro

Citations (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2228354C2 (en) * 2002-06-28 2004-05-10 Северо-Кавказский НИИ горного и предгорного сельского хозяйства Nutrient medium for microclonal multiplication of potato
RU2534213C2 (en) * 2012-03-12 2014-11-27 Диана Ирековна Тазетдинова Method of obtaining biological preparation for protection of plants against phytopathogens and nematodes based on genus trichoderma fungus strain and biological preparation obtained thereof

Patent Citations (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2228354C2 (en) * 2002-06-28 2004-05-10 Северо-Кавказский НИИ горного и предгорного сельского хозяйства Nutrient medium for microclonal multiplication of potato
RU2534213C2 (en) * 2012-03-12 2014-11-27 Диана Ирековна Тазетдинова Method of obtaining biological preparation for protection of plants against phytopathogens and nematodes based on genus trichoderma fungus strain and biological preparation obtained thereof

Cited By (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2788851C1 (en) * 2022-02-10 2023-01-25 Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования "Красноярский государственный аграрный университет" Method for microclonal reproduction of potatoes in culture in vitro
RU2789460C1 (en) * 2022-04-07 2023-02-03 Общество с ограниченной ответственностью "Элита" Method for microclonal reproduction of potatoes in vitro variety hostayushka

Also Published As

Publication number Publication date
RU2018108782A (en) 2019-09-12
RU2018108782A3 (en) 2019-09-12

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Anitha et al. Control of Fusarium wilt of tomato by bioformulation of Streptomyces griseus in green house condition
Ke et al. Xanthomonas oryzae pv. oryzae inoculation and growth rate on rice by leaf clipping method
KR101453903B1 (en) Production of Virus Free Plants from in Vitro Shoot Tips through in Vitro Meristem Culture
CN109355208A (en) A kind of highly pathogenicity biocontrol microorganisms Java cordyceps sinensis and its application
JP3902216B1 (en) Method for producing fruit body of insect parasitic fungus
CN103103136A (en) Effective Ustilaginoidea virens separation method
CN102732430A (en) Aspergillus niger strain and application thereof
Gabrekiristos et al. An optimized inoculation method of Fusarium wilt (Fusarium oxysporum f. sp. Cubense) causal agent of banana wilt disease in ethiopia
CN108587969B (en) Preparation and application of verticillium dahliae strain HCX-01 capable of preventing and treating cotton verticillium wilt
RU2702765C2 (en) Microclonal propagation method of potatoes
CN110607346A (en) Identification method and application of pathogenic bacteria of weedy rice
Buckseth et al. Effect of streptomycin and gentamycin on in vitro growth and cultural contaminants of potato cultivars
Neuner et al. In vitro propagation of Salix caprea L. by single node explants
CN111996126B (en) Violet purpurea capable of being used for preventing and treating root-knot nematode and application thereof
KR101573584B1 (en) Composition comprising Tsukamurella tyrosinosolvens strain YJR102 for controlling plant diseases and plant-growth promiting effect
CN110724640B (en) Tomato root knot nematode biocontrol bacteria, preparation and application thereof
CN102533566A (en) (Aspergillus fumigates)Ty-1 and application of (Aspergillus fumigates)Ty-1
RU2789460C1 (en) Method for microclonal reproduction of potatoes in vitro variety hostayushka
KR20210044567A (en) Bacillus velezensis ak-0 strain and microorganism formulation for controlling fruit tree diseases containing the same
CN111849786B (en) Method for preventing corn plant sheath blight disease
CN112522112B (en) Fungus strain for preventing and treating alfalfa aphids and application thereof
CN103609531B (en) Artificial feeding method of fragrant pear euzophera pyriella
CN108570442A (en) A kind of rapid induction production spore method of anthrax-bacilus
CN113348965B (en) Proliferation method of Cordyceps sinensis for infecting hepialus larva
CN109355207B (en) Liquid fermentation culture medium for producing spores from anthrax

Legal Events

Date Code Title Description
MM4A The patent is invalid due to non-payment of fees

Effective date: 20200313