RU2688464C1 - Method for non-destructive diagnostics of plant functional status ex vitro and in vitro - Google Patents

Method for non-destructive diagnostics of plant functional status ex vitro and in vitro Download PDF

Info

Publication number
RU2688464C1
RU2688464C1 RU2018109830A RU2018109830A RU2688464C1 RU 2688464 C1 RU2688464 C1 RU 2688464C1 RU 2018109830 A RU2018109830 A RU 2018109830A RU 2018109830 A RU2018109830 A RU 2018109830A RU 2688464 C1 RU2688464 C1 RU 2688464C1
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
chlorophyll
illumination
fluorescence intensity
vitro
plants
Prior art date
Application number
RU2018109830A
Other languages
Russian (ru)
Inventor
Ольга Николаевна Будаговская
Андрей Валентинович Будаговский
Original Assignee
Федеральное государственное бюджетное научное учреждение "Федеральный научный центр имени И.В. Мичурина"
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Федеральное государственное бюджетное научное учреждение "Федеральный научный центр имени И.В. Мичурина" filed Critical Федеральное государственное бюджетное научное учреждение "Федеральный научный центр имени И.В. Мичурина"
Priority to RU2018109830A priority Critical patent/RU2688464C1/en
Application granted granted Critical
Publication of RU2688464C1 publication Critical patent/RU2688464C1/en

Links

Images

Classifications

    • AHUMAN NECESSITIES
    • A01AGRICULTURE; FORESTRY; ANIMAL HUSBANDRY; HUNTING; TRAPPING; FISHING
    • A01GHORTICULTURE; CULTIVATION OF VEGETABLES, FLOWERS, RICE, FRUIT, VINES, HOPS OR SEAWEED; FORESTRY; WATERING
    • A01G7/00Botany in general
    • A01G7/04Electric or magnetic or acoustic treatment of plants for promoting growth
    • YGENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y02TECHNOLOGIES OR APPLICATIONS FOR MITIGATION OR ADAPTATION AGAINST CLIMATE CHANGE
    • Y02PCLIMATE CHANGE MITIGATION TECHNOLOGIES IN THE PRODUCTION OR PROCESSING OF GOODS
    • Y02P60/00Technologies relating to agriculture, livestock or agroalimentary industries
    • Y02P60/14Measures for saving energy, e.g. in green houses

Abstract

FIELD: agriculture; forestry.SUBSTANCE: present invention relates to experimental biology, plant growing, agriculture and forestry. Method involves measuring light-scattering dynamics of photosynthesizing plant tissue in the process of illumination with monochromatic optical radiation of the blue region of the spectrum in the zone of the first absorption maximum of chlorophyll 460–480 nm. Record of chlorophyll fluorescence intensity drop of leaf area 2 mm is recordedduring first illumination with monochromatic optical radiation of blue spectrum region with power density higher than photosynthesis saturation of 600–900 W/mfor 30–180 s. Then, illumination is switched off for 30–60 s and after this dark recovery pause in the same zone of object measurements light intensity decrease again during second illumination is registered with monochromatic optical radiation of blue area of spectrum of the same power density during 30–180 s. Photosynthetic activity and resistance to photoinhibition are evaluated by the values of K= (I-I) Iand K= (I-I)/(I-I), where Iis maximum intensity of fluorescence of chlorophyll per 1–2 s of first exposure; I- steady-state level of fluorescence intensity of chlorophyll for 30–180 s of first exposure; I- maximum fluorescence intensity of chlorophyll for 1–2 s of second illumination; I- stationary level of fluorescence intensity of chlorophyll by 30–180 s of second illumination. At that, higher values of Kand K, the better the functional state of plants.EFFECT: method provides higher efficiency and reduced labour intensity of determining the functional state of plants ex vitro and in vitro.1 cl, 1 dwg, 1 tbl, 1 ex

Description

Изобретение относится к экспериментальной биологии, растениеводству, биотехнологии, сельскому и лесному хозяйству и может быть использовано для оценки функционального состояния растений ex vitro и in vitro, в том числе при оптимизации условий выращивания, хранения, а также для выявления степени устойчивости растений к различным неблагоприятным факторам среды обитания.The invention relates to experimental biology, crop production, biotechnology, agriculture and forestry and can be used to assess the functional state of plants ex vitro and in vitro, including the optimization of growing conditions, storage, as well as to identify the degree of plant resistance to various adverse factors habitat.

Известны оптические способы оценки функционального состояния растений, основанные на регистрации спектров поглощения или коэффициентов отражения/пропускания на определенных длинах волн или параметров флуоресценции хлорофилл-содержащих тканей [1-4]. О функциональном состоянии судят по различиям оптических параметров, полученных при измерениях опытных и контрольных растений. Наиболее точное определение функционального состояния растений основано на комплексной информации о фотосинтетической активности и ее устойчивостью к фотоингибированию, но ни один из известных устройств не позволяет проводить такие оценки за один измерительный цикл. Для этого приходится проводить трудоемкую процедуру измерения оптических параметров после темновой адаптации растений, затем освещать их в течение нескольких часов интенсивным светом, выше порога насыщения фотосинтеза, затем также в течение нескольких часов проводит процедуру темновой адаптации растений, и затем вновь измерять оптические параметры. Известен способ оценки функционального состояния растений по критериям фотосинтетической активности и устойчивости к фотодеструкции, основанный на измерении динамики светорассеяния под воздействием синего и красного излучения [5]. Реализация данного способа требует точного совмещения излучателей, что трудно обеспечить конструктивно, зоны засветки синим и красным излучателем не совпадают, что приводит к неправильной оценке функционального состояния растений. Для получения достоверной информации об устойчивости к фотодеструкции здоровых растений, приходится прибегать к довольно длительным засветкам объектов красным излучением (свыше 40 минут), что делает неприемлемым использование метода для массовой оценки растений, например, при оптимизации агротехнических условий выращивания. Помимо этого, реализация способа-аналога предполагает непосредственный контакт листа исследуемого растения с излучателями и неприемлем для оценки функционального состояния растений в культуре in vitro без нарушения стерильности.Optical methods for assessing the functional state of plants are known, based on recording absorption spectra or reflection / transmission coefficients at certain wavelengths or fluorescence parameters of chlorophyll-containing tissues [1–4]. The functional state is judged by the differences in optical parameters obtained from measurements of test and control plants. The most accurate determination of the functional state of plants is based on comprehensive information about photosynthetic activity and its resistance to photoinhibition, but none of the known devices allows such assessments to be made in a single measuring cycle. To do this, it is necessary to carry out a time-consuming procedure for measuring optical parameters after dark adaptation of plants, then illuminate them for several hours with intense light, above the saturation threshold of photosynthesis, then also carry out a dark adaptation process for plants for several hours, and then measure optical parameters again. There is a method of assessing the functional state of plants according to the criteria of photosynthetic activity and resistance to photodestruction, based on measuring the dynamics of light scattering under the influence of blue and red radiation [5]. The implementation of this method requires precise alignment of the emitters, which is difficult to ensure constructively, the blue and red emitter illumination zones do not coincide, which leads to an incorrect assessment of the functional state of the plants. To obtain reliable information on the resistance to photodegradation of healthy plants, it is necessary to resort to rather long exposures of objects with red radiation (over 40 minutes), which makes it unacceptable to use the method for mass assessment of plants, for example, when optimizing agrotechnical growing conditions. In addition, the implementation of the analogue method involves direct contact of the sheet of the plant under study with radiators and is unacceptable for assessing the functional state of plants in an in vitro culture without compromising sterility.

Цель изобретения - снижение трудоемкости определения функционального состояния растений ex vitro и in vitro и повышение ее эффективности посредством количественной оценки фотосинтетической активности хлорофилл-содержащих тканей растений и их устойчивости к фотоингибированию за один измерительный цикл.The purpose of the invention is to reduce the complexity of determining the functional state of plants ex vitro and in vitro and increase its effectiveness by quantifying the photosynthetic activity of chlorophyll-containing plant tissues and their resistance to photoinhibition in a single measuring cycle.

Способ осуществляется следующим образом. Регистрируют спад интенсивности флуоресценции хлорофилла (ФХ) листьев в процессе первой засветки монохроматическим оптическим излучением синей области спектра (в зоне первого максимума поглощения хлорофилла 460…480 нм) плотностью мощности свыше насыщения фотосинтеза (600…900 Вт/м2) в течение 30…180 секунд, затем отключают засветку на 30…60 секунд и после этой темновой восстановительной паузы, в той же зоне измерений объекта вновь регистрируют спад интенсивности ФХ в процессе второй засветки монохроматическим оптическим излучением синей области спектра той же плотности мощности в течение 30…180 секунд. Длительность засветок определяется временем, необходимым для перехода сигнала к стационарному уровню.The method is as follows. A drop in the fluorescence intensity of chlorophyll (PC) of the leaves during the first exposure to monochromatic optical radiation of the blue spectral region (in the zone of the first maximum absorption of chlorophyll 460 ... 480 nm) is recorded with a power density above the saturation of photosynthesis (600 ... 900 W / m 2 ) for 30 ... 180 seconds, then the illumination is turned off for 30 ... 60 seconds and after this dark recovery pause, in the same measurement zone of the object, the decrease in the PC intensity during the second illumination is again recorded by monochromatic optical radiation of the blue region the spectrum of the same power density for 30 ... 180 seconds. The duration of the highlights is determined by the time required for the signal to go to a stationary level.

О фотосинтетической активности судят по относительной амплитуде спада интенсивности ФХ в течение первой засветки оптическим излучением синей области спектра, а об ее устойчивости к фотоингибированию - по отношению амплитуд спада интенсивностей ФХ в процессе второй и первой засветок. Количественно фотосинтетическая активность и ее устойчивость к фотоингибированию определяются показателями КФСА и КУФИ, которые рассчитываются по следующим формулам:About photosynthetic activity is judged by the relative amplitude of the decrease in the intensity of PC during the first exposure by optical radiation of the blue region of the spectrum, and its resistance to photo-inhibition - by the ratio of the amplitudes of the decrease in the intensity of PC in the course of the second and first exposures. Quantitatively, photosynthetic activity and its resistance to photoinhibition are determined by indicators K of FSA and UFI , which are calculated by the following formulas:

Figure 00000001
Figure 00000001

Figure 00000002
Figure 00000002

где

Figure 00000003
- максимальная интенсивность ФХ на 1…2 секунде первой засветки;
Figure 00000004
- стационарный уровень интенсивности ФХ на 30…180 секунде первой засветки;
Figure 00000005
- максимальная интенсивность ФХ на 1…2 секунде второй засветки;
Figure 00000006
- стационарный уровень ФХ на 30…180 секунде второй засветки.Where
Figure 00000003
- the maximum intensity of PC at 1 ... 2 seconds of the first exposure;
Figure 00000004
- stationary level of PF intensity at 30 ... 180 seconds of the first exposure;
Figure 00000005
- the maximum intensity of PC on 1 ... 2 seconds of the second illumination;
Figure 00000006
- stationary level FH at 30 ... 180 seconds of the second illumination.

При этом о фотосинтетической активности и ее устойчивости к фотоингибированию судят по величине показателей КФСА и КУФИ соответственно. Чем выше значение данных показателей - тем выше фотосинтетическая активность и ее устойчивость к фотоингибированию.At the same time, photosynthetic activity and its resistance to photoinhibition are judged by the magnitude of the K FSA and UFI indicators, respectively. The higher the value of these indicators - the higher the photosynthetic activity and its resistance to photoinhibition.

Пример. Для измерений использовали листья лимона с высоким уровнем функционального состояния фотосинтетического аппарата. Для этого были проведены измерения потенциального квантового выхода Y фотосистемы 2, величина которого прямо пропорциональна активности фотосинтеза. Для исследования выбирали листья со значением Y свыше 0,74 отн. ед., которые были разделены на 3 группы. Первая группа - контрольная (вариант А), вторая группа (вариант В) - подвергалась в течение 5 минут тепловой обработке при температуре +52°С, что приводило к небольшому ингибированию фотосистемы-2 фотосинтезирующего аппарата и третья группа (вариант С) - подвергалась в течение 15 минут тепловой обработке при температуре +56°С, что приводило к значительному ингибированию функций фотосистемы-2. Далее листья всех вариантов проходили следующую процедуру измерений. После темновой 30 минутной адаптации небольшой участок листа площадью 2 мм2 подвергали засветке оптическим излучением с длиной волны 475 нм и плотностью мощности 800 Вт/м2, в процессе которой фиксировали изменение интенсивности ФХ в режиме отражения. Длительность засветки продолжалась 60 секунд, по окончании которой источник отключался на 60 секунд. После темновой паузы, в той же самой зоне листа, в течение 60 секунд фиксировали динамику изменения интенсивности ФХ в процессе второго цикла засветки синим излучением и затем определяли параметры КФСА и КУФИ по формулам 1 и 2 (таблица 1). Типичные качественные кривые (фиг. 1) имеют следующие особенности реакции ФСА на засветку в зависимости от функционального состояния:Example. Lemon leaves with a high level of the functional state of the photosynthetic apparatus were used for measurements. For this, measurements were made of the potential quantum yield Y of photosystem 2, the magnitude of which is directly proportional to the activity of photosynthesis. For the study selected leaves with a Y value of more than 0.74 Rel. units, which were divided into 3 groups. The first group — the control (variant A), the second group (variant B) —was heat treated at + 52 ° C for 5 minutes, which led to a slight inhibition of the photosystem-2 of the photosynthesizing apparatus, and the third group (variant C) was subjected to 15 minutes heat treatment at + 56 ° C, which led to a significant inhibition of the functions of photosystem-2. Further, the leaves of all variants underwent the following measurement procedure. After a dark 30 minute adaptation, a small area of a leaf with an area of 2 mm 2 was subjected to illumination by optical radiation with a wavelength of 475 nm and a power density of 800 W / m 2 , during which the change in the PC intensity in the reflection mode was recorded. The duration of the illumination lasted 60 seconds, after which the source was turned off for 60 seconds. After a dark pause, in the same zone of the sheet, for 60 seconds, the dynamics of changes in the intensity of PC were recorded during the second cycle of illumination with blue radiation and then the parameters K FSA and K UVI were determined by formulas 1 and 2 (table 1). Typical qualitative curves (Fig. 1) have the following features of the response of the PSA to flare, depending on the functional state:

- в варианте «А» с высоким функциональным состоянием ФСА контрольных листьев (фиг. 1А) наблюдается бурный спад ФХ в первые секунды засветки синим светом, который после темновой паузы частично восстанавливается. При этом следует отметить, что относительная амплитуда перепада интенсивности ФХ (показатель КФСА) восстанавливается за 60 секунд темновой паузы на 92,72% (с 0,8106 до 0,7516 от.ед.), тогда как абсолютная амплитуда перепада (показатель КУФИ) - только на 55,75% (с 43,49 до 24,25 усл.ед.);- in version “A” with a high functional state of the PSA of the control leaves (Fig. 1A), a rapid decrease of PC in the first seconds of exposure to blue light is observed, which is partially restored after a dark pause. At the same time, it should be noted that the relative amplitude of the intensity of the PCs (K indicator of PSA ) is restored within 60 seconds of the dark pause by 92.72% (from 0.8106 to 0.7516 o. Units), while the absolute amplitude of the difference (the K indicator UVI ) - only by 55.75% (from 43.49 to 24.25 conventional units);

- в варианте «В» (фиг. 1В), абсолютный перепад ФХ в процессе первой засветки несколько меньше, и после темновой паузы он и восстанавливается существенно хуже - только на 27,42%. В то же время показатель КФСА и в первом и во втором цикле засветки остается достаточно высоким (0,7993 и 0,6215 соответственно);- in variant “B” (Fig. 1B), the absolute differential of PC in the process of the first exposure is somewhat less, and after the dark pause it recovers significantly worse - only by 27.42%. At the same time, the KSA K indicator both in the first and in the second exposure cycle remains rather high (0.7993 and 0.6215, respectively);

- в варианте «С» с низким функциональным состоянием ФСА (фиг. 1С) и абсолютная и относительная амплитуда перепада сигнала в первом цикле засветки существенно меньше, чем у вариантов «А» и «В» (табл. 1). После темновой адаптации, в результате второго цикла засветки, и без того достаточной низкий показатель КФСА уменьшается практически в 3 раза, тогда как показатель устойчивости к фотоингибированию (КУФИ) меняется незначительно (с 27,42% до 22,98%).- in the variant “C” with a low functional state of the FSA (Fig. 1C) both the absolute and relative amplitude of the signal drop in the first cycle of illumination is significantly less than in variants “A” and “B” (Table 1). After dark adaptation, as a result of the second cycle of exposure, the already low K FSA value decreases by almost 3 times, while the photo-inhibition resistance index (K UVI ) changes slightly (from 27.42% to 22.98%).

Эти закономерности характерны для листьев различных видов растений ex vitro и in vitro, с вариациями по амплитуде перепада кривых светорассеяния в зависимости от генотипических и фенотипических особенностей.These patterns are characteristic of the leaves of various plant species ex vitro and in vitro, with variations in the amplitude of the difference in light scattering curves depending on genotypic and phenotypic features.

По результатам измерений (таблица 1) следует важный вывод, что для корректной оценки функционального состояния растительных организмов необходимо оценивать и фотосинтетическую активность и устойчивость к фотоингибированию одновременно.According to the measurement results (Table 1), it is important to conclude that for a correct assessment of the functional state of plant organisms, it is necessary to evaluate both photosynthetic activity and resistance to photo inhibition at the same time.

Таким образом, предлагаемый способ позволяет в рамках единой оптической схемы, за один цикл измерений в течение нескольких минут количественно оценивать функциональное состояние растений по параметрам, отражающим уровень фотосинтетической активности и устойчивость к фотоингибированию. На аналогичные оценки с помощью типовых методик и оборудования затрачивается несколько часов. Способ позволяет оценивать функциональное состояние не только растений ex vitro, но и растений in vitro без нарушения стерильности.Thus, the proposed method allows, within a single optical scheme, for a single measurement cycle, within a few minutes, the functional state of plants can be quantified by parameters reflecting the level of photosynthetic activity and resistance to photo inhibition. It takes several hours to make similar estimates using standard techniques and equipment. The method allows to evaluate the functional state of not only ex vitro plants, but also of in vitro plants without compromising sterility.

ЛитератураLiterature

1. Веселовский В.А., Веселова Т.В. Люминесценция растений. Теоретические и практические аспекты. - М.: Наука, 1990. - 200 с.1. Veselovsky V.A., Veselova T.V. Luminescence plants. Theoretical and practical aspects. - M .: Science, 1990. - 200 p.

2. Лепедуш X., Вильевач М, Цезар В., Любешич Н. Оценка функционального состояния фотосинтетического аппарата у хвои ели с признаками хлороза на слабом и сильном свету по изменению флуоресценции хлорофилла in vivo // Физиология растений. - 2005. - Т. 52, №2. - С. 191-197.2. Lepedush X., Vilyevach M, Tsezar V., Lyubeshich N. Evaluation of the functional state of the photosynthetic apparatus in spruce needles with signs of chlorosis in weak and strong light by the change in chlorophyll fluorescence in vivo // Plant Physiology. - 2005. - Vol. 52, No. 2. - p. 191-197.

3. Мерзляк, М.Н. Гительсон А.А., Чивкунова О.Б., Соловченко А.Е., Погосян С.И. Использование спектроскопии отражения в анализе пигментов высших растений // Физиология растений. - 2003. - Т. 50, №5. - С. 785-792.3. Merzlyak, M.N. Gitelson A.A., Chivkunova OB, Solovchenko A.E., Poghosyan S.I. The use of reflection spectroscopy in the analysis of pigments of higher plants // Plant Physiology. - 2003. - Vol. 50, No. 5. - p. 785-792.

4. Murata N., Takahashi S., Nishiyama Y., Allakhverdiev S.I. Photoinhibition of photosystem II under environmental stress // Biochem. Biophys. Acta. - 2007. - V. 1767. - P. 414-421.4. Murata N., Takahashi S., Nishiyama Y., Allakhverdiev S.I. Photoinhibition of photosystem II under environmental stress // Biochem. Biophys. Acta - 2007. - V. 1767. - P. 414-421.

5. Патент РФ №2592574 на изобретение «Оптический способ оценки функционального состояния растений» / авторы Будаговская О.Н., Будаговский А.В., Гончаров С.А. - Заявка №2014148848 от 03.12.2014. - Опубл. 27.07.2016 Бюл. №16.5. RF patent №2592574 for the invention "Optical method for assessing the functional state of plants" / authors Budagovskaya ON, Budagovsky AV, Goncharov S.А. - Application No. 2014148848 from 03.12.2014. - Publ. 07/27/2016 Bull. №16.

Figure 00000007
Figure 00000007

Claims (1)

Способ оптической оценки функционального состояния растений, включающий измерение динамики светорассеяния фотосинтезирующей растительной ткани в процессе засветки монохроматическим оптическим излучением синей области спектра в зоне первого максимума поглощения хлорофилла 460-480 нм, отличающийся тем, что регистрируют спад интенсивности флуоресценции хлорофилла участка листа площадью 2 мм2 в процессе первой засветки монохроматическим оптическим излучением синей области спектра плотностью мощности свыше насыщения фотосинтеза 600-900 Вт/м2 в течение 30-180 с, затем отключают засветку на 30-60 с и после этой темновой восстановительной паузы в той же зоне измерений объекта вновь регистрируют спад интенсивности светорассеяния в процессе второй засветки монохроматическим оптическим излучением синей области спектра той же плотности мощности в течение 30-180 с; о фотосинтетической активности и устойчивости к фотоингибированию судят по величине показателей КФСА=(I1 мах-I1 сm)/I1 мах и КУФИ=(I2 мах-I2 cm)/(I1 мах-I1 cm), где I1 мах - максимальная интенсивность флуоресценции хлорофилла на 1-2 с первой засветки; I1 cm - стационарный уровень интенсивности флуоресценции хлорофилла на 30-180 с первой засветки; I2 мах - максимальная интенсивность флуоресценции хлорофилла на 1-2 с второй засветки; I2 сm - стационарный уровень интенсивности флуоресценции хлорофилла на 30-180 с второй засветки; при этом чем выше значения показателей КФСA и КУФИ, тем лучше функциональное состояние растений.An optical functional assessment of plants comprising a photosynthetic light scattering measurement dynamics of plant tissues during illumination with monochromatic optical radiation in the blue region of the spectrum zone of the first absorption maximum of chlorophyll 460-480 nm, characterized in that the recorded decline chlorophyll fluorescence intensity portion of the sheet of 2 mm 2 in area the process of the first exposure to monochromatic optical radiation of the blue region of the spectrum with a power density above the saturation of photosynthesis of 600-900 V / m 2 for 30-180 s and then switched off for 30-60 sec illumination and dark after reducing pauses in the same area of the object of measurement again recorded decline in light scattering intensity of the second illumination with monochromatic blue region of spectrum of the same optical radiation power density in for 30-180 s; about photosynthetic activity and resistance to photo inhibition judged by the value of indicators K FSA = (I 1 max- I 1 cm ) / I 1 max and K UVI = (I 2 max- I 2 cm ) / (I 1 max- I 1 cm ) where I 1 max - the maximum fluorescence intensity of chlorophyll by 1-2 from the first exposure; I 1 cm - stationary level of chlorophyll fluorescence intensity at 30-180 seconds; I 2 max - the maximum fluorescence intensity of chlorophyll at 1-2 from the second exposure; I 2 cm - stationary level of chlorophyll fluorescence intensity at 30-180 seconds; however, the higher the values of indicators K FSA and K UVI , the better the functional state of plants.
RU2018109830A 2018-03-20 2018-03-20 Method for non-destructive diagnostics of plant functional status ex vitro and in vitro RU2688464C1 (en)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2018109830A RU2688464C1 (en) 2018-03-20 2018-03-20 Method for non-destructive diagnostics of plant functional status ex vitro and in vitro

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2018109830A RU2688464C1 (en) 2018-03-20 2018-03-20 Method for non-destructive diagnostics of plant functional status ex vitro and in vitro

Publications (1)

Publication Number Publication Date
RU2688464C1 true RU2688464C1 (en) 2019-05-21

Family

ID=66636853

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
RU2018109830A RU2688464C1 (en) 2018-03-20 2018-03-20 Method for non-destructive diagnostics of plant functional status ex vitro and in vitro

Country Status (1)

Country Link
RU (1) RU2688464C1 (en)

Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2756526C2 (en) * 2020-03-24 2021-10-01 Федеральное государственное бюджетное научное учреждение "Федеральный научный центр имени И.В. Мичурина" Optical method for assessing the functional state of plants

Citations (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2364077C2 (en) * 2007-09-26 2009-08-20 Ольга Николаевна Будаговская Method of visual estimation of photoinhibition and photodegradation resistance of plants
RU2569241C2 (en) * 2013-07-02 2015-11-20 Федеральное государственное бюджетное научное учреждение "Всероссийский научно-исследовательский институт садоводства имени И.В. Мичурина" (ФГБНУ "ВНИИС им. И.В. Мичурина) Optical method to assess resistance of photosynthesising tissues of plants to photoinhibition and device for its realisation
RU2592574C2 (en) * 2014-12-03 2016-07-27 федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования "Мичуринский государственный аграрный университет" (ФГБОУ ВО Мичуринский ГАУ) Optical method for assessing functional state of plants
RU2604302C2 (en) * 2014-09-23 2016-12-10 федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования "Мичуринский государственный аграрный университет" (ФГБОУ ВО Мичуринский ГАУ) Method for assessing functional status of plants in vitro without violating sterility

Patent Citations (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2364077C2 (en) * 2007-09-26 2009-08-20 Ольга Николаевна Будаговская Method of visual estimation of photoinhibition and photodegradation resistance of plants
RU2569241C2 (en) * 2013-07-02 2015-11-20 Федеральное государственное бюджетное научное учреждение "Всероссийский научно-исследовательский институт садоводства имени И.В. Мичурина" (ФГБНУ "ВНИИС им. И.В. Мичурина) Optical method to assess resistance of photosynthesising tissues of plants to photoinhibition and device for its realisation
RU2604302C2 (en) * 2014-09-23 2016-12-10 федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования "Мичуринский государственный аграрный университет" (ФГБОУ ВО Мичуринский ГАУ) Method for assessing functional status of plants in vitro without violating sterility
RU2592574C2 (en) * 2014-12-03 2016-07-27 федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования "Мичуринский государственный аграрный университет" (ФГБОУ ВО Мичуринский ГАУ) Optical method for assessing functional state of plants

Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2756526C2 (en) * 2020-03-24 2021-10-01 Федеральное государственное бюджетное научное учреждение "Федеральный научный центр имени И.В. Мичурина" Optical method for assessing the functional state of plants

Similar Documents

Publication Publication Date Title
JP6549705B2 (en) Imaging of target fluorophores in biological material in the presence of autofluorescence
JP6485850B2 (en) Plant vitality diagnostic method, and measurement system and diagnostic system used therefor
US20190383782A1 (en) Method and device for optical in ovo sex determination of fertilized and incubated birds? eggs
US7368694B2 (en) Device for measuring light absorption characteristics of a biological tissue sample
RU2688464C1 (en) Method for non-destructive diagnostics of plant functional status ex vitro and in vitro
JP2017106831A (en) Device and method for monitoring microalgae
US20160245751A1 (en) Method and device for determining a nutritional state of a plant
WO2020083398A1 (en) Real-time screening and measurement system for cell-specific photosensitive effect and method thereof
WO1999056127A1 (en) Method and apparatus for determining seed quality by fluorescence
RU2364077C2 (en) Method of visual estimation of photoinhibition and photodegradation resistance of plants
Holoborodko et al. Effect of Cameraria ohridella feeding on Aesculus hippocastanum photosynthesis
Lawson et al. Chlorophyll fluorescence imaging
Winfree et al. Intravital microscopy of biosensor activities and intrinsic metabolic states
RU2592574C2 (en) Optical method for assessing functional state of plants
RU2569241C2 (en) Optical method to assess resistance of photosynthesising tissues of plants to photoinhibition and device for its realisation
RU2604302C2 (en) Method for assessing functional status of plants in vitro without violating sterility
CN110806404A (en) Improved chlorophyll fluorescence detection method and device
RU2756526C2 (en) Optical method for assessing the functional state of plants
Borodin et al. Using the effect of photoinduced variability of optical properties of chlorophyll-containing tissues for diagnosing the functional state of plants
RU2626586C1 (en) Method of assessing selection material of pea by leaf photosynthesis rate
Razinger et al. Delayed fluorescence imaging of photosynthesis inhibitor and heavy metal induced stress in potato
RU2810542C1 (en) Method for species identification of mammal skins using example of ermine
Schmidt et al. Time-resolving luminescence techniques for possible detection of forest decline: I. Long term delayed luminescence
RU2384045C2 (en) Method for assessment of apple tree plants reaction at latent virus infection
Norikane et al. A new relative referencing method for crop monitoring using chlorophyll fluorescence

Legal Events

Date Code Title Description
MM4A The patent is invalid due to non-payment of fees

Effective date: 20200321