RU2672816C2 - METHOD OF PRODUCING NON-METHIONINE RECEPTOR ANTAGONIST INTERLEUKIN-36 STRAIN BACTERIA ESCHERICHIA COLI BL21 [DE3] - PRODUCER NON-METHIONINE RECEPTOR ANTAGONIST INTERLEUKIN-36 (VARIANTS), METHOD OF THEIR PREPARATION, AND PLASMID VECTOR pBAD15A pET15A AND DNA SEQUENCE FOR THEIR PREPARATION - Google Patents

METHOD OF PRODUCING NON-METHIONINE RECEPTOR ANTAGONIST INTERLEUKIN-36 STRAIN BACTERIA ESCHERICHIA COLI BL21 [DE3] - PRODUCER NON-METHIONINE RECEPTOR ANTAGONIST INTERLEUKIN-36 (VARIANTS), METHOD OF THEIR PREPARATION, AND PLASMID VECTOR pBAD15A pET15A AND DNA SEQUENCE FOR THEIR PREPARATION Download PDF

Info

Publication number
RU2672816C2
RU2672816C2 RU2017103888A RU2017103888A RU2672816C2 RU 2672816 C2 RU2672816 C2 RU 2672816C2 RU 2017103888 A RU2017103888 A RU 2017103888A RU 2017103888 A RU2017103888 A RU 2017103888A RU 2672816 C2 RU2672816 C2 RU 2672816C2
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
methionine
receptor antagonist
gene
strain
escherichia coli
Prior art date
Application number
RU2017103888A
Other languages
Russian (ru)
Other versions
RU2017103888A3 (en
RU2672816C9 (en
RU2017103888A (en
Inventor
Алексей Александрович Колобов
Екатерина Владимировна Кондратьева
Петр Петрович Нимирицкий
Татьяна Викторовна Кудлинг
Дарья Сергеевна Сергеева
Максим Михайлович Карасёв
Александр Владимирович Петров
Original Assignee
Федеральное государственное унитарное предприятие "Государственный научно-исследовательский институт особо чистых биопрепаратов" Федерального медико-биологического агентства
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Федеральное государственное унитарное предприятие "Государственный научно-исследовательский институт особо чистых биопрепаратов" Федерального медико-биологического агентства filed Critical Федеральное государственное унитарное предприятие "Государственный научно-исследовательский институт особо чистых биопрепаратов" Федерального медико-биологического агентства
Priority to RU2017103888A priority Critical patent/RU2672816C9/en
Publication of RU2017103888A3 publication Critical patent/RU2017103888A3/ru
Publication of RU2017103888A publication Critical patent/RU2017103888A/en
Application granted granted Critical
Publication of RU2672816C2 publication Critical patent/RU2672816C2/en
Publication of RU2672816C9 publication Critical patent/RU2672816C9/en

Links

Images

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N15/00Mutation or genetic engineering; DNA or RNA concerning genetic engineering, vectors, e.g. plasmids, or their isolation, preparation or purification; Use of hosts therefor
    • C12N15/09Recombinant DNA-technology
    • C12N15/11DNA or RNA fragments; Modified forms thereof; Non-coding nucleic acids having a biological activity
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N15/00Mutation or genetic engineering; DNA or RNA concerning genetic engineering, vectors, e.g. plasmids, or their isolation, preparation or purification; Use of hosts therefor
    • C12N15/09Recombinant DNA-technology
    • C12N15/63Introduction of foreign genetic material using vectors; Vectors; Use of hosts therefor; Regulation of expression
    • C12N15/74Vectors or expression systems specially adapted for prokaryotic hosts other than E. coli, e.g. Lactobacillus, Micromonospora

Landscapes

  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Biophysics (AREA)
  • Physics & Mathematics (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Plant Pathology (AREA)
  • Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)

Abstract

FIELD: biotechnology.SUBSTANCE: invention relates to the field of biotechnology, in particular to a technology for producing a receptor antagonist of interleukin-36, and is a plasmid expression vector pBAD15A for producing a non-methionine recombinant human interleukin-36 (IL-36PA) receptor antagonist of a human, the map of which is shown at Fig. 2, pET15A plasmid expression vector for producing a human without the use of recombinant IL-36PA, the map of which is shown at FIG. 3, as well as the strain producing the non-methionine recombinant human IL-36PA.EFFECT: invention allows to obtain a more active IL-36RA with a higher yield.5 cl, 12 dwg, 7 ex, 4 tbl

Description

Изобретение относится к области биотехнологии, а именно к генно-инженерным препаратам медицинского назначения и технологии их получения, точнее к технологии получения рецепторного антагониста интерлейкина-36.The invention relates to the field of biotechnology, in particular to genetic engineering drugs for medical purposes and the technology for their preparation, more precisely, to the technology for producing the receptor antagonist of interleukin-36.

Интерлейкины-36 альфа, бета и гамма (IL-36α, IL-36β, IL-36γ), а также рецепторный антагонист интерлейкинов-36 (IL-36Ra) представляют собой отдельную группу в семействе интерлейкина-1 [Gresnigt M.S., van de Veer-donk F.L. Biology of IL-36 cytokines and their role in disease // Semin. Immunol. 2013. Vol. 25, №6. P. 458-465]. Интерлейкины группы IL-36 синтезируются в основном в эпителиальных тканях и в коже, не имеют сигнальных пептидов и поэтому не могут секретироваться по обычному секреционному пути [Vigne S. et al. IL-36R ligands are potent regulators of dendritic and T cells // Blood. 2011. Vol. 118, №22. P. 5813-5823.].Interleukins-36 alpha, beta and gamma (IL-36α, IL-36β, IL-36γ), as well as the receptor antagonist of interleukins-36 (IL-36Ra) are a separate group in the interleukin-1 family [Gresnigt MS, van de Veer -donk FL Biology of IL-36 cytokines and their role in disease // Semin. Immunol. 2013. Vol. 25, No. 6. P. 458-465]. Interleukins of the IL-36 group are synthesized mainly in epithelial tissues and in the skin, do not have signal peptides and therefore cannot be secreted by the usual secretion pathway [Vigne S. et al. IL-36R ligands are potent regulators of dendritic and T cells // Blood. 2011. Vol. 118, No. 22. P. 5813-5823.].

IL-36 (α,β,γ) играют важную роль в активации воспалительного процесса в коже и в легких. В частности, ряд экспериментальных данных свидетельствует о возможном участии IL-36 в развитии в развитии псориаза и воспалительных заболеваний дыхательных путей и суставов [Ramadas R.A. et al. IL-36α exerts pro-inflammatory effects in the lungs of mice // PloS One. 2012. Vol. 7, №9. P. e45784.; Vigne S. et al. IL-36R ligands are potent regulators of dendritic and T cells // Blood. 2011. Vol. 118, №22. P. 5813-5823.; Foster A.M. et al. IL-36 promotes myeloid cell infiltration, activation, and inflammatory activity in skin // J. Immunol. Baltim. Md 1950. 2014. Vol. 192, №12. P. 6053-6061]. В ряде исследований было показано, что некоторые мутации в гене рецепторного антагониста интерлейкина-36 (ИЛ-36РА) способны вызывать генерализованный пустулезный псориаз (ГПП) - смертельно опасную форму псориаза, которая поражает большие участки кожи и характеризуется периодическими обострениями, гиперлейкоцитозом и повышением уровня С-реактивного белка в крови [Sugiura K. et al. The Majority of Generalized Pustular Psoriasis without Psoriasis Vulgaris Is Caused by Deficiency of Interleukin-36 Receptor Antagonist // J. Invest. Dermatol. 2013. Vol. 133, №11. P. 2514-2521.; Farooq M. et al. Mutation analysis of the IL36RN gene in 14 Japanese patients with generalized pustular psoriasis // Hum. Mutat. 2013. Vol. 34, №1. P. 176-183; Griffiths C.E.M., Barker J.N.W.N. Pathogenesis and clinical features of psoriasis // Lancet Lond. Engl. 2007. Vol. 370, №9583. P. 263-271.; Zelickson B.D., Muller S.A. Generalized pustular psoriasis. A review of 63 cases // Arch. Dermatol. 1991. Vol. 127, №9. P. 1339-1345.].IL-36 (α, β, γ) play an important role in the activation of the inflammatory process in the skin and lungs. In particular, a number of experimental data indicate the possible participation of IL-36 in the development of psoriasis and inflammatory diseases of the respiratory tract and joints [Ramadas R.A. et al. IL-36α exerts pro-inflammatory effects in the lungs of mice // PloS One. 2012. Vol. 7, No. 9. P. e45784 .; Vigne S. et al. IL-36R ligands are potent regulators of dendritic and T cells // Blood. 2011. Vol. 118, No. 22. P. 5813-5823 .; Foster A.M. et al. IL-36 promotes myeloid cell infiltration, activation, and inflammatory activity in skin // J. Immunol. Baltim. Md 1950. 2014. Vol. 192, No. 12. P. 6053-6061]. Several studies have shown that some mutations in the interleukin-36 receptor antagonist gene (IL-36RA) can cause generalized pustular psoriasis (GLP), a deadly form of psoriasis that affects large areas of the skin and is characterized by periodic exacerbations, hyperleukocytosis and an increase in C level -reactive protein in the blood [Sugiura K. et al. The Majority of Generalized Pustular Psoriasis without Psoriasis Vulgaris Is Caused by Deficiency of Interleukin-36 Receptor Antagonist // J. Invest. Dermatol. 2013. Vol. 133, No. 11. P. 2514-2521 .; Farooq M. et al. Mutation analysis of the IL36RN gene in 14 Japanese patients with generalized pustular psoriasis // Hum. Mutat. 2013. Vol. 34, No. 1. P. 176-183; Griffiths C.E.M., Barker J.N.W.N. Pathogenesis and clinical features of psoriasis // Lancet Lond. Engl. 2007. Vol. 370, No. 9583. P. 263-271 .; Zelickson B.D., Muller S.A. Generalized pustular psoriasis. A review of 63 cases // Arch. Dermatol. 1991. Vol. 127, No. 9. P. 1339-1345.].

Учитывая, что ГПП вызывается, как правило, недостатком активности ИЛ-36РА [Sugiura K. et al. The Majority of Generalized Pustular Psoriasis without Psoriasis Vulgaris Is Caused by Deficiency of Interleukin-36 Receptor Antagonist // J. Invest. Dermatol. 2013. Vol. 133, №11. P. 2514-2521.; Farooq M. et al. Mutation analysis of the IL36RN gene in 14 Japanese patients with generalized pustular psoriasis // Hum. Mutat. 2013. Vol. 34, №1. P. 176-183; Hussain S. et al. IL36RN mutations define a severe autoinflammatory phenotype of generalized pustular psoriasis // J. Allergy Clin. Immunol. 2015. Vol. 135, №4. P. 1067-1070.e9], перспективным подходом к терапии этого заболевания представляется введение в организм экзогенного ИЛ-36РА. Кроме того, терапия, направленная на подавление воспаления, опосредованного ИЛ-36, могла бы применяться и для лечения других форм псориаза, а также прочих воспалительных заболеваний кожи в связи с тем, что IL-36Ra способен активировать противовоспалительный каскад, взаимодействуя с рецептором SIGIRR [Costelloe С. et al. IL-1F5 mediates anti-inflammatory activity in the brain through induction of IL-4 following interaction with SIGIRR/TIR8 // J. Neurochem. 2008. Vol. 105, №5. P. 1960-1969.].Given that GLP is caused, as a rule, by a lack of activity of IL-36PA [Sugiura K. et al. The Majority of Generalized Pustular Psoriasis without Psoriasis Vulgaris Is Caused by Deficiency of Interleukin-36 Receptor Antagonist // J. Invest. Dermatol. 2013. Vol. 133, No. 11. P. 2514-2521 .; Farooq M. et al. Mutation analysis of the IL36RN gene in 14 Japanese patients with generalized pustular psoriasis // Hum. Mutat. 2013. Vol. 34, No. 1. P. 176-183; Hussain S. et al. IL36RN mutations define a severe autoinflammatory phenotype of generalized pustular psoriasis // J. Allergy Clin. Immunol. 2015. Vol. 135, No. 4. P. 1067-1070.e9], the introduction of exogenous IL-36RA into the body seems to be a promising approach to the treatment of this disease. In addition, therapy aimed at suppressing inflammation mediated by IL-36 could also be used to treat other forms of psoriasis, as well as other inflammatory skin diseases, due to the fact that IL-36Ra is able to activate the anti-inflammatory cascade by interacting with the SIGIRR receptor [ Costelloe C. et al. IL-1F5 mediates anti-inflammatory activity in the brain through induction of IL-4 following interaction with SIGIRR / TIR8 // J. Neurochem. 2008. Vol. 105, No. 5. P. 1960-1969.].

Наиболее близким к настоящей группе изобретений являлась ранее разработанная авторами технология получения рецепторного антагониста ИЛ-36 (IL-36Ra), включающая в себя последовательности ДНК, кодирующие полноразмерный IL-36Ra; экспрессионный вектор pET-IL36Raf, а также штамм бактерий Escherichia coli BL21Star[DE3](pET-IL36Raf), содержащий вектор pET-IL36Raf - продуцент полноразмерного IL-36Ra человека (RU 2582569, 2016).Closest to the present group of inventions was the technology previously developed by the authors for the production of the IL-36 receptor antagonist (IL-36Ra), which includes DNA sequences encoding full-length IL-36Ra; The expression vector pET-IL36Raf, as well as the bacterial strain Escherichia coli BL21Star [DE3] (pET-IL36Raf) containing the vector pET-IL36Raf, is a producer of full-sized human IL-36Ra (RU 2582569, 2016).

Недостатком использования данной группы изобретений является получение препарата с недостаточно высокой антагонистической активностью.The disadvantage of using this group of inventions is to obtain a drug with insufficiently high antagonistic activity.

Техническая задачей, решаемой авторами являлось разработка технологии получения рекомбинантного биологически активного IL-36Ra человека с более высокой активностью.The technical problem solved by the authors was the development of a technology for the production of recombinant biologically active human IL-36Ra with higher activity.

В основу заявляемого решения было положено предположение, что активность IL-36Ra может быть повышена за счет удаления из его молекулы N-концевого остатка метионина в результате ее обработки метионинаминопептидазой.The basis of the proposed solution was the assumption that the activity of IL-36Ra can be increased by removing from its molecule the N-terminal methionine residue as a result of its treatment with methionine aminopeptidase.

Технический результат достигался созданием группы изобретений, включающей в себя:The technical result was achieved by creating a group of inventions, including:

- технологию получения безметионинового IL-36Ra человека на основе штаммов, трансформированных плазмидным вектором, содержащим ген метионинаминопептидазы, с последующим выделением и концентрированием целевого продукта;- a technology for the preparation of non-methionine human IL-36Ra based on strains transformed with a plasmid vector containing the methionine aminopeptidase gene, followed by isolation and concentration of the target product;

- варианты штаммов, трансформированных плазмидным вектором, содержащим ген метионинаминопептидазы штамм бактерий Escherichia coli BL21Star[DE3] (pET-IL3 6Raf, pBAD15A) и штамм бактерий Escherichia coli BL21Star[DE3](pET-IL36Raf, pET15A);- variants of strains transformed with a plasmid vector containing the methionine aminopeptidase gene, the bacterial strain Escherichia coli BL21Star [DE3] (pET-IL3 6Raf, pBAD15A) and the bacterial strain Escherichia coli BL21Star [DE3] (pET-IL36Raf, pET15A);

- пособы их конструирования, заключающаяся в трансформации штамма Escherichia coli BL21Star[DE3] плазмидными векторами с индукцией экспрессии генов рецепторного антагониста интерлейкина-36 человека (ИЛ-36РА) и метионинаминопептидазы (МАП).- ways of their construction, which consists in transforming the Escherichia coli strain BL21Star [DE3] with plasmid vectors with induction of expression of the human interleukin-36 receptor antagonist (IL-36RA) and methionine aminopeptidase (MAP) genes.

- плазмидный экспрессионный вектор pBAD15A для трансформации штамма бактерий Escherichia coli BL21Star[DE3](pET-IL36Raf, pBAD15A)- plasmid expression vector pBAD15A for transformation of the bacterial strain Escherichia coli BL21Star [DE3] (pET-IL36Raf, pBAD15A)

- плазмидный экспрессионный вектор рЕТ15А штамм бактерий Escherichia coli BL21Star[DE3](pET-IL36Raf, рЕТ15А)- plasmid expression vector pET15A strain of bacteria Escherichia coli BL21Star [DE3] (pET-IL36Raf, pET15A)

- последовательность ДНК, кодирующая метионинаминопептидазу, для получения плазмидных векторов.- a DNA sequence encoding methionine aminopeptidase to obtain plasmid vectors.

Последовательность ДНК, кодирующая метионинаминопептидазу, была амплифицирована с использованием в качестве матрицы ДНК из культуры бактерий штамма Escherichia coli BL21Star[DE3]. По концам к гену были добавлены олигонуклеотиды, формирующие сайты рестрикции NdeI и XhoI. (Полученная последовательность ДНК приведена на SEQ ID No 1.)The DNA sequence encoding methionine aminopeptidase was amplified using Escherichia coli strain BL21Star [DE3] as a DNA template from a bacterial culture. At the ends, oligonucleotides that form the restriction sites NdeI and XhoI were added to the gene. (The obtained DNA sequence is shown on SEQ ID No 1.)

Ген был обработан вышеуказанными рестриктазами и клонирован в подготовленный аналогичным образом вектор pBAD22, полученный из вектора pET22b+, с получением промежуточного плазмидного вектора pBAD22/MAP.The gene was digested with the above restriction enzymes and cloned into a similarly prepared pBAD22 vector derived from the pET22b + vector to obtain the intermediate plasmid vector pBAD22 / MAP.

Затем ген метионинаминопептидазы с регуляторными последовательностями был клонирован из плазмиды pBAD22/MAP в плазмиду pACYC184 по сайтам рестрикции HindIII и SalI с получением экспрессионного плазмидного вектора pBAD15A, карта которого приведена на фиг. 2.The regulatory sequence methionine aminopeptidase gene was then cloned from the plasmid pBAD22 / MAP into plasmid pACYC184 at the HindIII and SalI restriction sites to obtain the expression plasmid vector pBAD15A, the map of which is shown in FIG. 2.

Плазмидный экспрессионный вектор pBAD15A содержит ген метионинаминопептидазы Е. coli (MAP), промотор pBADara, терминаторы транскрипции гена rrnB (rrnB Т1Т2), регуляторную последовательность araBAD оперона, ориджин репликации плазмид р15А, ген хлорамфеникол ацетил-трансферазы (CamR), рестрикционные сайты, необходимые для объединения отдельных фрагментов в векторе (SalI, HindIII, XhoI, NdeI).The plasmid expression vector pBAD15A contains the E. coli methionine aminopeptidase gene (MAP), the pBADara promoter, the rrnB gene transcription terminators (rrnB T1T2), the araBAD operon regulatory sequence, the p15A plasmid replication origin, the chloramphenicol acetyl-transferase gene for Cam combining individual fragments in a vector (SalI, HindIII, XhoI, NdeI).

Плазмидный экспрессионный вектор рЕТ15А был получен аналогичным образом. Ген метионинаминопептидазы Е. coli был клонирован в вектор pET302/NT-His по рестрикционным сайтам EcoRI и BamHI с получением промежуточной плазмиды рЕТ302/МАР. Затем ген метионинаминопептидазы с регуляторными последовательностями был клонирован из плазмиды рЕТ302/МАР в плазмиду pACYC184 по сайтам рестрикции HindIII и SalI с получением экспрессионного плазмидного вектора рЕТ15А, карта которого приведена на фиг. 3.The plasmid expression vector pET15A was obtained in a similar manner. The E. coli methionine aminopeptidase gene was cloned into the pET302 / NT-His vector at the EcoRI and BamHI restriction sites to give the intermediate plasmid pET302 / MAP. Then, the regulatory sequence methionine aminopeptidase gene was cloned from the pET302 / MAP plasmid into the pACYC184 plasmid at the HindIII and SalI restriction sites to obtain the pET15A expression plasmid vector, the map of which is shown in FIG. 3.

Плазмидный экспрессионный вектор рЕТ15А (фиг. 3), содержит ген метионинаминопептидазы Е. coli (MAP) под контролем регулируемого промотора Т7, терминатор транс-крипции Т7, ориджин репликации р15А, ген хлорамфеникол ацетил-трансферазы (CamR), рестрикционные сайты, необходимые для объединения отдельных фрагментов в векторе (EcoRI, BamHI, HindIII, SalI).The plasmid expression vector pET15A (Fig. 3) contains the E. coli methionine aminopeptidase gene (MAP) under the control of the regulated T7 promoter, T7 transcriptional terminator, p15A replication origin, chloramphenicol acetyl transferase gene (CamR), restriction sites necessary for association individual fragments in the vector (EcoRI, BamHI, HindIII, SalI).

Полученные штаммы Escherichia coli BL21Star[DE3](pET-IL36Raf, pBAD15A) и Escherichia coli BL21Star[DE3](pET-IL36Raf, pET15A) характеризуются одинаковыми культурально-морфологическими и физико-биохимическими свойствами:The obtained strains of Escherichia coli BL21Star [DE3] (pET-IL36Raf, pBAD15A) and Escherichia coli BL21Star [DE3] (pET-IL36Raf, pET15A) are characterized by the same cultural-morphological and physico-biochemical properties:

Культурально-морфологические особенности штаммов. Грам-отрицательные прямые палочки, размером 1,1-1,5×2,0-3,0 мкм, одиночные, спор и капсул не образуют. Каталазоположительные. Оксидазоотрицательные. Факультативные анаэробы. Клетки хорошо растут на простых питательных средах, содержащих и не содержащих ампициллин и хлоамфеникол, например, на среде LB. На агаризованной среде - колонии гладкие, круглые, слабо выпуклые, с ровным краем. В жидких средах образуют равномерную светорассеивающую суспензию, при хранении без перемешивания оседают на дно. Клетки растут в интервале температур от 8°С до 43°С, интервал для культивирования - 28-38°С, оптимум роста при 37°С. Интервал pH 5-8. Катализируют D-глюкозу и некоторые другие углеводы с образованием кислоты и газа, не сбраживают галактозу. Реакция Фогес-Проскауэра отрицательная, не образуют H2S, гидролизуют мочевину.Cultural and morphological features of the strains. Gram-negative straight sticks, 1.1-1.5 × 2.0-3.0 microns in size, single, do not form spores and capsules. Catalopositive. Oxidase-negative. Optional anaerobes. Cells grow well on simple nutrient media containing and not containing ampicillin and chloamphenicol, for example, on LB medium. On an agar medium, colonies are smooth, round, slightly convex, with a smooth edge. A uniform light-scattering suspension is formed in liquid media; when stored without stirring, they settle to the bottom. Cells grow in the temperature range from 8 ° C to 43 ° C, the interval for cultivation is 28-38 ° C, the optimum growth at 37 ° C. The pH range is 5-8. Catalyze D-glucose and some other carbohydrates with the formation of acid and gas, do not ferment galactose. Voges-Proskauer reaction is negative, do not form H 2 S, hydrolyze urea.

Характеристики полезного вещества, синтезируемого штаммами.Characteristics of a useful substance synthesized by strains.

Рекомбинантный белок - рецепторный антагонист интерлейкинов-36 человека с отщепленным N-концевым остатком метионина (безметиониновый рецепторный антагонист интерлейкинов - 36 человека).Recombinant protein is a human interleukin-36 receptor antagonist with a cleaved N-terminal methionine residue (36 people are a non-methionine interleukin receptor antagonist).

Активность штаммов. Продуктивность штаммов - рекомбинантный IL-36Ra составляет не менее 3% массы белков клеточного лизата при культивировании в условиях индукции.The activity of the strains. The productivity of the strains - recombinant IL-36Ra is at least 3% of the mass of the proteins of the cell lysate during cultivation under conditions of induction.

Криоконсервация. В запаянных ампулах, штаммы лиофильно-высушенные в среде, содержащей 0,8-1,2% сахарозы и 0,8-1,2% маннитола, хранится при комнатной температуре в течении 20 лет.Cryopreservation. In sealed ampoules, the strains are freeze-dried in a medium containing 0.8-1.2% sucrose and 0.8-1.2% mannitol, stored at room temperature for 20 years.

Культивирование штаммов. Культивирование при температуре 28-38°С в термостате или качалке, в агаризованной (2% агара) или жидкой LB-среде, соответственно. Селективные условия - добавление 50-125 мкг/мл ампициллина и 20-40 мкг/мл хлорамфеникола.The cultivation of strains. Cultivation at a temperature of 28-38 ° C in a thermostat or rocking chair, in agar (2% agar) or liquid LB-medium, respectively. Selective conditions - the addition of 50-125 μg / ml ampicillin and 20-40 μg / ml chloramphenicol.

Ферментация. Для ферментации полученных штаммов используют 1-2 кратную среду LB в 0,8-1,2 кратной среде М9 с добавлением 50-125 мкг/мл ампициллина и 20-40 мкг/мл хлорамфеникола. Культуры растят в колбах объемом 0,5-2,5 л (предпочтительно 2 л) при температуре 35-38°С (предпочтительно +37°С) до плотности 2-5 ОЕ/мл (предпочтительно 3 ОЕ/мл). При этой оптической плотности вносят индуктор - IPTG 0,1-1 мМ (предпочтительно 0,5 мМ). В случае штамма Escherichia coli BL21Star[DE3](pET-IL36Raf, pBAD15A) вносят также арабинозу 0,1-1% (предпочтительно 0,2%). Индукцию продолжают в течение 2-4 ч (предпочтительно 3 ч) при температуре 27-37°С (предпочтительно +30°С).Fermentation. For fermentation of the obtained strains, 1-2 times LB medium in 0.8-1.2 times M9 medium with the addition of 50-125 μg / ml ampicillin and 20-40 μg / ml chloramphenicol are used. The cultures are grown in flasks with a volume of 0.5-2.5 L (preferably 2 L) at a temperature of 35-38 ° C (preferably + 37 ° C) to a density of 2-5 OU / ml (preferably 3 OU / ml). At this optical density, an IPTG inductor of 0.1-1 mM (preferably 0.5 mM) is introduced. In the case of the Escherichia coli strain BL21Star [DE3] (pET-IL36Raf, pBAD15A), arabinose 0.1-1% (preferably 0.2%) is also introduced. Induction is continued for 2-4 hours (preferably 3 hours) at a temperature of 27-37 ° C (preferably + 30 ° C).

Метод очистки рекомбинантного ИЛ-36РА из биомассы штаммов-продуцентов включает в себя лизис клеток путем добавления Tris-буферного раствора, после чего полученный лизат осветляют, а затем очищают от примесных белков хроматографией последовательно на сорбенте Q FF (GE) и сорбенте Butyl-650 (Tosoh) и концентрирование ультрафильтрацией с помощью ячейки с перемешиванием Millipore Amicon Stirred Cell при использовании мембраны Sartorius Ultracel PLC10 с последующим диализом.The method of purification of recombinant IL-36PA from the biomass of producer strains involves lysing cells by adding a Tris buffer solution, after which the resulting lysate is clarified and then purified from impurity proteins by chromatography successively with Q FF sorbent (GE) and Butyl-650 sorbent ( Tosoh) and concentration by ultrafiltration using a Millipore Amicon Stirred Cell stirred cell using a Sartorius Ultracel PLC10 membrane followed by dialysis.

Лизис, как правило, проводят с использованием буферного раствора, содержащего от 30 до 70 мМ Tris-HCl (оптимально 50 мМ), pH от 6,8 до 7,2 (оптимально 7,0).Lysis, as a rule, is carried out using a buffer solution containing from 30 to 70 mm Tris-HCl (optimally 50 mm), pH from 6.8 to 7.2 (optimally 7.0).

Лизат осветляют центрифугированием при 5-12 тыс. об./мин, после чего к полученному супернатанту добавляют раствор кальция хлорида до конечной концентрации от 20 до 40 мМ (оптимально 30) и раствор тринатрия фосфата до конечной концентрации от 10 до 30 мМ (оптимально 20), перемешивают, а затем снова осветляют центрифугированием при 5-12 тыс. об./мин.The lysate is clarified by centrifugation at 5-12 thousand rpm./min, after which a calcium chloride solution is added to the resulting supernatant to a final concentration of 20 to 40 mM (optimally 30) and a trisodium phosphate solution to a final concentration of 10 to 30 mM (optimally 20 ), mix, and then clarify again by centrifugation at 5-12 thousand rpm.

Хроматографию на Q FF (GE) проводят на сорбенте уравновешенным буферным раствором, содержащим 30-70 мМ Tris-HCl (оптимально 50 мМ), pH 6,8-7,2 (оптимально 7,0), с последующей отмывкой буферным раствором, содержащим 30-70 мМ Tris-HCl (оптимально 50 мМ), 0-0,3M NaCl (оптимально 0,15), pH 6,8-7,2 (оптимально 7,0). Колонку регенерируют буферным раствором, содержащего 30-70 мМ Tris-HCl (оптимально 50 мМ), 1,5-2М NaCl (оптимально 2М), pH 6,8-7,2 (оптимально 7,0).Chromatography on Q FF (GE) is carried out on a sorbent with a balanced buffer solution containing 30-70 mM Tris-HCl (optimally 50 mM), pH 6.8-7.2 (optimally 7.0), followed by washing with a buffer solution containing 30-70 mM Tris-HCl (optimally 50 mM), 0-0.3 M NaCl (optimally 0.15), pH 6.8-7.2 (optimally 7.0). The column is regenerated with a buffer solution containing 30-70 mM Tris-HCl (optimally 50 mM), 1.5-2 M NaCl (optimally 2 M), pH 6.8-7.2 (optimally 7.0).

Очистка целевого белка от примесных белков на сорбенте Butyl-650 (Tosoh) проводится следующим образом. Добавляют аммония сульфат до 0,15-0,5 М (оптимально 0,3). К несвязавшейся фракции после хроматографии на Q FF (GE), содержащую ИЛ-36РА, добавляют аммония сульфат до 0,15-0,5 М (оптимально 0,3), затем наносят на сорбента Butyl-650 (Tosoh), уравновешенный 0,3 ± 0,05 л буферным раствором, содержащим 30-70 мМ Na2HPO4 (оптимально 50 мМ), 0,15-0,5 М (NH4)2SO4 (оптимально 0,3), pH 5,8-6,2 (оптимально 6,0). Затем ИЛ-36РА элюируют буферным раствором, содержащим 30-70 мМ Na2HPO4 (оптимально 50 мМ), pH 5,8-6,2 (оптимально 6,0). Колонку регенерируют 0,5 ± 0,1 л дистиллированной воды.Purification of the target protein from impurity proteins on the sorbent Butyl-650 (Tosoh) is carried out as follows. Ammonium sulfate is added to 0.15-0.5 M (optimally 0.3). To the unbound fraction after chromatography on Q FF (GE) containing IL-36PA, ammonium sulfate was added to 0.15-0.5 M (optimally 0.3), then applied to a Butyl-650 sorbent (Tosoh), balanced 0, 3 ± 0.05 L buffer solution containing 30-70 mM Na 2 HPO 4 (optimally 50 mM), 0.15-0.5 M (NH 4 ) 2 SO 4 (optimally 0.3), pH 5.8 -6.2 (optimally 6.0). Then, IL-36RA was eluted with a buffer solution containing 30-70 mM Na2HPO4 (optimally 50 mM), pH 5.8-6.2 (optimally 6.0). The column regenerate 0.5 ± 0.1 l of distilled water.

Концентрирование ИЛ-36РА проводят методом ультрафильтрации с помощью ячейки с перемешиванием Millipore Amicon Stirred Cell с установленной мембраной Sartorius Ultracel PLC 10 с пределом отсечения 10 кДа, а затем проводят смену раствора диализом белка против раствора, содержащего 30-70 мМ натрия цитрата (оптимально 50 мМ), pH 5,8-6,2 (оптимально 6,0).The concentration of IL-36RA is carried out by ultrafiltration using a Millipore Amicon Stirred Cell with a Sartorius Ultracel PLC 10 membrane with a cut-off limit of 10 kDa, and then the solution is changed by protein dialysis against a solution containing 30-70 mm sodium citrate (optimally 50 mm ), pH 5.8-6.2 (optimally 6.0).

После этого раствор белка может быть при необходимости стерилизован с использованием шприцевых фильтров Millipore Millex с диаметром пор 0,22 мкм.After that, the protein solution can be sterilized if necessary using Millipore Millex syringe filters with a pore diameter of 0.22 μm.

После всех стадий очистки получаемый ИЛ-36РА имеет чистоту >95% по ОФ-ВЭЖХ, имеет <5% примеси непроцессированной формы с неотщепленный инициаторным остатком метионина и <5% дезамидированной формы.After all stages of purification, the obtained IL-36RA has a purity of> 95% by RP-HPLC, has <5% impurities of an unprocessed form with an uncleaved initiator methionine residue and <5% of a deamidated form.

При необходимости для лучшего хранения технология получения ИЛ-36РА может быть дополнена введением в целевой продукт 20-100 мМ нитратного буферного раствора (оптимально 50 мМ) с pH 5,5-6,5 (оптимально 6,0), твин-80 в количестве 0,01-1% и ЭДТА в количестве 0,1-10 мМ.If necessary, for better storage, the production technology of IL-36RA can be supplemented by introducing into the target product 20-100 mM nitrate buffer solution (optimally 50 mM) with a pH of 5.5-6.5 (optimally 6.0), tween-80 in quantity 0.01-1% and EDTA in an amount of 0.1-10 mm.

Полученный препарат был апробирован на модели псориазоподобного дерматита, вызванного накожной аппликацией агониста Толл-подобных рецепторов 7 и 8 имихимода [van der Fits L. et al. Imiquimod-induced psoriasislike skin inflammation in mice is mediated via the IL-23/IL-17 axis // J. Immunol. Baltim. Md 1950. 2009. Vol. 182, №9. P. 5836-5845.]. Было показано, что ежедневное подкожное введение разработанного препарата рекомбинантного ИЛ-36РА человека в дозах 50 ± 1 и 10 ± 1 мкг/мышь значительно снижает тяжесть экспериментального дерматита, вызванного имихимодом. При этом эффект появляется в пределах 3-4 дней после первого введения препарата и превосходит эффект контрольного препарата - метотрексата.The resulting preparation was tested on a model of psoriasis-like dermatitis caused by cutaneous application of an agonist of Toll-like receptors 7 and 8 of imichimode [van der Fits L. et al. Imiquimod-induced psoriasislike skin inflammation in mice is mediated via the IL-23 / IL-17 axis // J. Immunol. Baltim. Md 1950. 2009. Vol. 182, No. 9. P. 5836-5845.]. It was shown that daily subcutaneous administration of the developed preparation of recombinant human IL-36RA in doses of 50 ± 1 and 10 ± 1 μg / mouse significantly reduces the severity of experimental dermatitis caused by imichimod. Moreover, the effect appears within 3-4 days after the first injection of the drug and exceeds the effect of the control drug - methotrexate.

Сущность изобретения иллюстрируется последовательностями и рисунками.The invention is illustrated by sequences and figures.

Фиг. 1. Нуклеотидная последовательность гена метионинаминопептидазы Е. coli.FIG. 1. The nucleotide sequence of the methionine aminopeptidase gene of E. coli.

Фиг. 2. Карта плазмидного вектора pBAD15A, несущего последовательностьFIG. 2. Map of plasmid vector pBAD15A carrying the sequence

гена метионинаминопептидазы, где:the methionine aminopeptidase gene, where:

MAP - ген метионинаминопептидазы Е. coliMAP - E. coli methionine aminopeptidase gene

pBADara promoter - прокариотический промотор, необходимый для инициации транскрипции геновpBADara promoter is a prokaryotic promoter necessary to initiate gene transcription

rrnB Т1Т2 terminators - терминаторы транскрипции гена rrnB E. colirrnB T1T2 terminators - terminators of transcription of the rrnB gene of E. coli

araBAD operon - регуляторная последовательность araBAD оперона, необходимая для регуляции экспрессии генов, находящихся под контролем промотора pBADaraaraBAD operon is the regulatory sequence of the araBAD operon necessary for regulating the expression of genes controlled by the pBADara promoter

р15А origin - сайт начала репликации плазмидp15A origin - plasmid replication origin site

CamR - последовательность гена хлорамфеникол ацетилтрансферазы, обеспечивающей устойчивость бактерий к хлорамфениколуCamR - chloramphenicol acetyltransferase gene sequence ensuring bacterial resistance to chloramphenicol

SalI, HindIII, XhoI, NdeI - рестрикционные сайты, необходимые для объединения отдельных фрагментов в вектореSalI, HindIII, XhoI, NdeI - restriction sites necessary for combining individual fragments in the vector

Фиг. 3. Карта плазмидного вектора рЕТ15А, несущего последовательность гена метионинаминопептидазы, гдеFIG. 3. Map of the plasmid vector pET15A carrying the sequence of the methionine aminopeptidase gene, where

MAP - последовательность гена метионинаминопептидазыMAP - methionine aminopeptidase gene sequence

Т7 promoter - промотор фага Т7, необходимый для инициации транскрипции геновT7 promoter - T7 phage promoter needed to initiate gene transcription

Т7 terminator - терминатор транскрипции генов фага Т7T7 terminator - phage T7 gene transcription terminator

lacI - последовательность гена lacI, регулирующего экспрессию генов, находящихся под контролем промотора Т7.lacI is the lacI gene sequence that regulates the expression of genes under the control of the T7 promoter.

р15А origin - сайт начала репликации плазмидp15A origin - plasmid replication origin site

CamR - последовательность гена хлорамфеникол ацетилтрансферазы, обеспечивающей устойчивость бактерий к хлорамфениколу EcoRI, BamHI, HindIII, SalI - рестрикционные сайты, необходимые для объединения отдельных фрагментов в вектореCamR - chloramphenicol acetyltransferase gene sequence ensuring bacterial resistance to chloramphenicol EcoRI, BamHI, HindIII, SalI - restriction sites necessary for combining individual fragments in a vector

Фиг. 4. Электрофореграмма лизатов биомассы различных штаммов-продуцентов ИЛ-36РА после культивирования в условиях добавления индукторов и без их добавления. Толстой синей стрелкой отмечена полоса, соответствующая ИЛ-36РА; тонкой белой стрелкой отмечена полоса, соответствующая МАП.FIG. 4. Electrophoregram of biomass lysates of various producer strains of IL-36RA after cultivation under the conditions of adding inductors and without adding them. The thick blue arrow marks the strip corresponding to IL-36RA; a thin white arrow marks the band corresponding to the MAP.

1 - Лизат биомассы штамма Escherichia coli BL21Star[DE3]1 - Biomass lysate of Escherichia coli strain BL21Star [DE3]

2 - Лизат биомассы штамма Escherichia coli BL21Star[DE3](pET-IL36Raf) без индукции2 - Biomass lysate of Escherichia coli strain BL21Star [DE3] (pET-IL36Raf) without induction

3 - Лизат биомассы штамма Escherichia coli BL21Star[DE3](pET-IL36Raf) после индукции3 - Biomass lysate of Escherichia coli strain BL21Star [DE3] (pET-IL36Raf) after induction

4 - Лизат биомассы штамма Escherichia coli BL21Star[DE3](pET-IL36Raf) без индукции, иной метод лизиса4 - Biomass lysate of Escherichia coli strain BL21Star [DE3] (pET-IL36Raf) without induction, another method of lysis

5 - Лизат биомассы штамма Escherichia coli BL21Star[DE3](pET-IL36Raf) после индукции, иной метод лизиса5 - Biomass lysate of Escherichia coli strain BL21Star [DE3] (pET-IL36Raf) after induction, another lysis method

6 - Лизат биомассы штамма Escherichia coli BL21Star[DE3](pET-IL36Raf, рЕТ15А) без индукции6 - Biomass lysate of Escherichia coli strain BL21Star [DE3] (pET-IL36Raf, pET15A) without induction

7 - Лизат биомассы штамма Escherichia coli BL21Star[DE3](pET-IL36Raf, рЕТ15А) после индукции7 - Biomass lysate of Escherichia coli strain BL21Star [DE3] (pET-IL36Raf, pET15A) after induction

8 - Лизат биомассы штамма Escherichia coli BL21Star[DE3](pET-IL36Raf, pBAD15A) без индукции8 - Biomass lysate of Escherichia coli strain BL21Star [DE3] (pET-IL36Raf, pBAD15A) without induction

9 - Лизат биомассы штамма Escherichia coli BL21Star[DE3](pET-IL36Raf, pBAD15A) после индукции9 - Biomass lysate of Escherichia coli strain BL21Star [DE3] (pET-IL36Raf, pBAD15A) after induction

Фиг. 5. Сравнение продукции ИЛ-36РА различными штаммами-продуцентами с помощью твердофазного ИФА с использованием моноклональных антител к ИЛ-36РА. Обозначения соответствуют присутствующей в штамме плазмиде с геном МАП:FIG. 5. Comparison of the production of IL-36RA with different producer strains using solid-phase ELISA using monoclonal antibodies to IL-36RA. The designations correspond to the plasmid with the MAP gene present in the strain:

«pBAD15A» - штамм Escherichia coli BL21Star[DE3](pET-IL36Raf, pBAD15A)"PBAD15A" - strain Escherichia coli BL21Star [DE3] (pET-IL36Raf, pBAD15A)

«pET15A» - штамм Escherichia coli BL21 Star[DE3](pET-IL36Raf, pET15A) «без коэкспрессии с МАП» - штамм Escherichia coli BL21Star[DE3](pET-IL36Raf)"PET15A" - Escherichia coli strain BL21 Star [DE3] (pET-IL36Raf, pET15A) "without co-expression with MAP" - Escherichia coli strain BL21Star [DE3] (pET-IL36Raf)

Фиг. 6. Сравнение примеси непроцессированной формы ИЛ-36РА, содержащей инициаторный остаток метионина, в образцах ИЛ-36РА, полученных от различных штаммов-продуцентов. Обозначения соответствуют присутствующей в штамме плазмиде с геном МАП:FIG. 6. Comparison of the impurity of the unprocessed form of IL-36RA containing the methionine initiator residue in IL-36RA samples obtained from various producer strains. The designations correspond to the plasmid with the MAP gene present in the strain:

«pBAD15A» - штамм Escherichia coli BL21Star[DE3](pET-IL36Raf, pBAD15A)"PBAD15A" - strain Escherichia coli BL21Star [DE3] (pET-IL36Raf, pBAD15A)

«pET15A» - штамм Escherichia coli BL21Star[DE3](pET-IL36Raf, pET15A) «без коэкспрессии с МАП» - штамм Escherichia coli BL21Star[DE3](pET-IL36Raf)"PET15A" - Escherichia coli strain BL21Star [DE3] (pET-IL36Raf, pET15A) "without co-expression with MAP" - Escherichia coli strain BL21Star [DE3] (pET-IL36Raf)

Фиг. 7. Электрофореграмма фракций, полученных при хроматографической очистке ИЛ-36РА. Стрелкой отмечена полоса, соответствующая ИЛ-36РА.FIG. 7. Electrophoregram fractions obtained by chromatographic purification of IL-36RA. The arrow marks the band corresponding to IL-36RA.

1 - осветленный лизат биомассы штамма-продуцента ИЛ-36РА Escherichia coli BL21Star[DE3](pET-IL36Raf, pBAD15A)1 - clarified biomass lysate of the producer strain IL-36PA Escherichia coli BL21Star [DE3] (pET-IL36Raf, pBAD15A)

2 - фракция, не связавшаяся с Q2 - fraction not associated with Q

3 - фракция, не связавшаяся с Butyl-6503 - fraction not associated with Butyl-650

4 - фракция, элюировавшаяся с Butyl-6504 - fraction eluted with Butyl-650

5 - проходящая фракция после ультрафильтрационного концентрирования5 - passing fraction after ultrafiltration concentration

6 - маркер молекулярных весов6 - molecular weight marker

Фиг. 8. Хроматограмма ОФ-ВЭЖХ разделения образца ИЛ-36РА после хроматографической очистки.FIG. 8. Chromatogram OF-HPLC separation of the IL-36RA sample after chromatographic purification.

Фиг. 9. Наложение хроматограмм ОФ-ВЭЖХ разделения образцов ИЛ-36РА, полученных при коэкспресии с МАП и без коэкспресии с МАП.FIG. 9. Overlaying OF-HPLC chromatograms of the separation of IL-36RA samples obtained by co-expression with MAP and without co-expression with MAP.

Фиг.10. Электрофореграмма разделения нативной (1) и дезамидированной (2) форм ИЛ-36РА в КЗЭФ.Figure 10. Electrophoregram of separation of native (1) and deamidated (2) forms of IL-36RA in KZEF.

Фиг. 11. Изменение индекса PASI в опытных и контрольной группах (*р<0,01 по сравнению с соответствующими значениями контрольной группы). По оси ординат - степень выраженности признаков псориазоподобного дерматита в баллах.FIG. 11. Change in the PASI index in the experimental and control groups (* p <0.01 compared with the corresponding values of the control group). On the ordinate axis - the severity of signs of psoriasis-like dermatitis in points.

Фиг. 12. Изменение толщины уха в месте нанесения имихимода в опытных и контрольной группах (*р<0,05 по сравнению с соответствующими значениями контрольной группы). По оси ординат - индекс изменения толщины уха в месте нанесения имихимода.FIG. 12. Change in the thickness of the ear at the site of application of imichimod in the experimental and control groups (* p <0.05 compared with the corresponding values of the control group). The ordinate axis is the index of the change in the thickness of the ear at the site of application of imichimode.

Сущность и промышленная применимость заявляемой группы изобретений иллюстрируется следующими примерамиThe essence and industrial applicability of the claimed group of inventions is illustrated by the following examples

Пример 1. Конструирование экспрессионных плазмидных векторов.Example 1. Construction of expression plasmid vectors.

Конструирование промежуточной плазмиды pBAD22. Плазмида pBAD22 содержит в своем составе ген бета-лактамазы, обеспечивающей устойчивость к антибиотикам бета-лактамной группы, сайт репликации pBR322, а также регулирующие элементы и промотор оперона araBAD, позволяющие индуцировать и регулировать экспрессию целевого белка посредством изменения концентрации арабинозы в среде.Construction of the intermediate plasmid pBAD22. The plasmid pBAD22 contains the beta-lactamase gene, which provides resistance to antibiotics of the beta-lactam group, the pBR322 replication site, as well as the regulatory elements and the promoter of the araBAD operon, which allow inducing and regulating the expression of the target protein by changing the concentration of arabinose in the medium.

На первом этапе модифицировали плазмиду pBAD (ThermoFisher Scientific, USA): удаляли участок плазмиды, содержащий сайт рестрикции NdeI, а исходный полилинкер заменяли на полилинкер плазмиды pET22b(+) (Novagen, USA). С этой целью проводили амплификацию фрагмента плазмиды pBAD с помощью пары 5'-фосфорилированных праймеров (длина продукта 3885 п.н.):At the first stage, the pBAD plasmid was modified (ThermoFisher Scientific, USA): the plasmid region containing the NdeI restriction site was deleted, and the original polylinker was replaced by the polylinker of plasmid pET22b (+) (Novagen, USA). For this purpose, the fragment of plasmid pBAD was amplified using a pair of 5'-phosphorylated primers (product length 3885 bp):

5'-GCTGCATGTGTCAGAGGTT-3'5'-GCTGCATGTGTCAGAGGTT-3 '

5'-GCACAGATGCGTAAGGAGAA-3'5'-GCACAGATGCGTAAGGAGAA-3 '

Допустимо использование праймеров в интервале концентраций от 5 до 25 мкМ, однако лучший результат достигается при использовании праймеров в концентрации 10 мкМ. Амплифицированный фрагмент обрабатывали лигазой, что привело к его замыканию в кольцо. Количество добавляемой лигазы может варьироваться от 0.5 до 5 ед., тем не менее, оптимальное количество - 1 ед. на реакцию. Затем полученную плазмиду использовали в качестве матрицы во второй ПЦР со следующей парой праймеров (длина продукта 3793 п.н.):It is acceptable to use primers in the concentration range from 5 to 25 μM, however, the best result is achieved when using primers at a concentration of 10 μM. The amplified fragment was treated with ligase, which led to its closure in the ring. The amount of ligase added can vary from 0.5 to 5 units, however, the optimal amount is 1 unit. to the reaction. Then, the obtained plasmid was used as a template in the second PCR with the following pair of primers (product length 3793 bp):

5'-ATGCATATGTATATCTCCTTCTTAAAGTT-3'5'-ATGCATATGTATATCTCCTTCTTAAAGTT-3 '

5'-TAAGACGTCTCCAGCTTGGCTGT-3'5'-TAAGACGTCTCCAGCTTGGCTGT-3 '

Допустимо использование праймеров в интервале концентраций от 5 до 25 мкМ, однако лучший результат достигается при использовании праймеров в концентрации 10 мкМ. Параллельно проводили ПЦР участка полилинкера на матрице pET22b(+) с помощью следующей пары праймеров (длина продукта 256 п.н.):It is acceptable to use primers in the concentration range from 5 to 25 μM, however, the best result is achieved when using primers at a concentration of 10 μM. In parallel, PCR of the polylinker site was carried out on a pET22b (+) template using the following pair of primers (product length 256 bp):

5'-TAATACGACTCACTATAGGG-3'5'-TAATACGACTCACTATAGGG-3 '

5'-AGCGACGTCTTATCAGTGGTGGTGGTGGT-3'5'-AGCGACGTCTTATCAGTGGTGGTGGTGGT-3 '

Допустимо использование праймеров в интервале концентраций от 5 до 25 мкМ, однако лучший результат достигается при использовании праймеров в концентрации 10 мкМ. Концы амплифицированных фрагментов ДНК открывали с помощью рестриктаз NdeI и AatII и направленно лигировали друг с другом. Количество добавляемых рестриктаз может варьироваться от 0.1 до 1 ед., тем не менее, оптимальное количество - 0.25 ед. каждой рестриктазы на 1 реакцию.It is acceptable to use primers in the concentration range from 5 to 25 μM, however, the best result is achieved when using primers at a concentration of 10 μM. The ends of the amplified DNA fragments were opened using restriction enzymes NdeI and AatII and directionally ligated with each other. The amount of restriction enzymes added can vary from 0.1 to 1 units, however, the optimal amount is 0.25 units. each restrictase for 1 reaction.

В результате была получена плазмида pBAD22. Правильность сборки модифицированного участка плазмиды подтверждали секвенированием.As a result, the plasmid pBAD22 was obtained. The correct assembly of the modified plasmid region was confirmed by sequencing.

Конструирование промежуточных плазмид рЕТ302/МАР и pBAD22/MAP Для получения промежуточных экспрессионных векторов использовали коммерческую плазмиду pET302/NT-His (Thermo Fisher Scientific, USA) и плазмиду pBAD22.Construction of intermediate plasmids pET302 / MAP and pBAD22 / MAP To obtain intermediate expression vectors used commercial plasmid pET302 / NT-His (Thermo Fisher Scientific, USA) and plasmid pBAD22.

Плазмида pET302/NT-His содержит в своем составе регулирующие элементы и промотор T7lac, позволяющие индуцировать и регулировать экспрессию целевого белка посредством изменения концентрации IPTG в среде, а также ген бета-лактамазы, обеспечивающей устойчивость к антибиотикам бета-лактамной группы, и сайт репликации pBR322.The plasmid pET302 / NT-His contains regulatory elements and the T7lac promoter, which induces and regulates the expression of the target protein by changing the concentration of IPTG in the medium, as well as the beta-lactamase gene, which provides resistance to beta-lactam antibiotics, and the pBR322 replication site .

На первом этапе последовательность гена метионинаминопептидазы (Фиг. 1) амплифицировали с геномной ДНК клеток Е. coli BL21[DE3] с помощью следующей пары праймеров:At the first stage, the methionine aminopeptidase gene sequence (Fig. 1) was amplified with the genomic DNA of E. coli BL21 cells [DE3] using the following pair of primers:

5'-GAACATATGGCTATCTCAATCAAGACCCCA-3'5'-GAACATATGGCTATCTCAATCAAGACCCCACA-3 '

5'-GAACTCGAGTTATTATTCGTCGTGCGAGATTA-3'5'-GAACTCGAGTTATTATTCGTCGTGCGAGATTA-3 '

Допустимо использование праймеров в интервале концентраций от 5 до 25 мкМ, однако лучший результат достигается при использовании праймеров в концентрации 10 мкМ. Амплифицированный фрагмент ДНК размером 800 п.н., концы которого открывали с помощью рестриктаз NdeI и XhoI, клонировали в плазмиду pBAD22, линеаризованную с помощью этих же рестриктаз. Количество добавляемых рестриктаз может варьироваться от 0.1 до 1 ед., тем не менее, оптимальное количество - 0.25 ед. каждой рестриктазы на 1 реакцию.It is acceptable to use primers in the concentration range from 5 to 25 μM, however, the best result is achieved when using primers at a concentration of 10 μM. The amplified DNA fragment of 800 bp, the ends of which were opened using restriction enzymes NdeI and XhoI, were cloned into the plasmid pBAD22 linearized using the same restriction enzymes. The amount of restriction enzymes added can vary from 0.1 to 1 units, however, the optimal amount is 0.25 units. each restrictase for 1 reaction.

Для клонирования гена метионинаминопептидазы в плазмиду pET302/NT-His использовали следующую пару праймеров:The following pair of primers was used to clone the methionine aminopeptidase gene into the pET302 / NT-His plasmid:

5'-GAATTCAGCTATCTCAATCAAGACCCCA-3'5'-GAATTCAGCTATCTCAATCAAGACCCCACA-3 '

5'-GGATCCTTATTATTCGTCGTGCGAGATTA-3'5'-GGATCCTTATTATTCGTCGTGCGAGATTA-3 '

Допустимо использование праймеров в интервале концентраций от 5 до 25 мкМ, однако лучший результат достигается при использовании праймеров в концентрации 10 мкМ. Амплифицированный фрагмент ДНК размером 800 п. н., концы которого открывали с помощью рестриктаз EcoRI и BamHI, клонировали в плазмиду pET302/NT-His, линеаризованную с помощью этих же рестриктаз. Количество добавляемых рестриктаз может варьироваться от 0.1 до 1 ед., тем не менее, оптимальное количество - 0.25 ед. каждой рестриктазы на 1 реакцию.It is acceptable to use primers in the concentration range from 5 to 25 μM, however, the best result is achieved when using primers at a concentration of 10 μM. The amplified 800 bp DNA fragment, the ends of which were opened using restriction enzymes EcoRI and BamHI, was cloned into the plasmid pET302 / NT-His linearized using the same restriction enzymes. The amount of restriction enzymes added can vary from 0.1 to 1 units, however, the optimal amount is 0.25 units. each restrictase for 1 reaction.

В результате клонирования были получены плазмиды pBAD22/MAP и рЕТ302/МАР, соответственно. Правильность сборки плазмид подтверждали секвенированием.Cloning resulted in plasmids pBAD22 / MAP and pET302 / MAP, respectively. The correct assembly of plasmids was confirmed by sequencing.

На втором этапе в полученных плазмидах сайт репликации pBR322 и ген бета-лактамазы были заменены на сайт репликации р15А и ген устойчивости к хлорамфениколу из плазмиды pACYC184 (NEB). Данная модификация необходима для эффективной коэкспрессии двух белков с различных плазмид внутри одной клетки.At the second stage, in the obtained plasmids, the pBR322 replication site and the beta-lactamase gene were replaced by the p15A replication site and the chloramphenicol resistance gene from pACYC184 plasmid (NEB). This modification is necessary for the effective coexpression of two proteins from different plasmids within the same cell.

Конструирование экспрессионного вектора pBAD15AConstruction of the expression vector pBAD15A

Фрагмент последовательности ДНК, содержащий ген метионинаминопептидазы и регулирующие его экспрессию последовательности, амплифицировали с плазмиды pBAD22/MAP с помощью следующей пары праймеров:A DNA sequence fragment containing the methionine aminopeptidase gene and the sequences regulating its expression was amplified from the plasmid pBAD22 / MAP using the following pair of primers:

5'-GATAAGCTTCTGTGCGCTGCATGTGTCAGAG-3'5'-GATAAGCTTCTGTGCGCTGCATGTGTCAGAG-3 '

5'-GAAGTCGACGTCCTACTCAGGAGAGCGTTCAC-3'5'-GAAGTCGACGTCCTACTCAGGAGAGCGTTCAC-3 '

Допустимо использование праймеров в интервале концентраций от 5 до 25 мкМ, однако лучший результат достигается при использовании праймеров в концентрации 10 мкМ. Амплифицированный фрагмент ДНК размером 2529 п.н., концы которого открывали с помощью рестриктаз HindIII и SalI, клонировали в плазмиду pACYC184, линеаризованную с помощью этих же рестриктаз. Количество добавляемых рестриктаз может варьироваться от 0.1 до 1 ед., тем не менее, оптимальное количество - 0.25 ед. каждой рестриктазы на 1 реакцию.It is acceptable to use primers in the concentration range from 5 to 25 μM, however, the best result is achieved when using primers at a concentration of 10 μM. The amplified DNA fragment of 2529 bp, the ends of which were opened using restriction enzymes HindIII and SalI, were cloned into the plasmid pACYC184, linearized using the same restriction enzymes. The amount of restriction enzymes added can vary from 0.1 to 1 units, however, the optimal amount is 0.25 units. each restrictase for 1 reaction.

В результате клонирования была получена плазмида pBAD15A (Фиг. 2), содержащая ген метионинаминопептидазы под контролем регулируемого арабинозного промотора, сайт репликации р15А и ген устойчивости к хлорамфениколу для проведения селекции. Правильность сборки плазмиды подтверждали секвенированием.Cloning resulted in the plasmid pBAD15A (Fig. 2) containing the methionine aminopeptidase gene under the control of the regulated arabinose promoter, the p15A replication site and the chloramphenicol resistance gene for selection. The correct assembly of the plasmid was confirmed by sequencing.

Праймеры:Primers

pBAD-HindIII-F 5'-GATAAGCTTCTGTGCGCTGCATGTGTCAGAG-3' FW Расположение - 3536-3557 п.н. плазмиды pBAD22/MAP. pBAD-SalI-R 5'-GAAGTCGACGTCCTACTCAGGAGAGCGTTCAC-3' RV Расположение - 1446-1468 п.н. плазмиды pBAD22/MAP.pBAD-HindIII-F 5'-GATAAGCTTCTGTGCGCTGCATGTGTCAGAG-3 'FW Location - 3536-3557 bp plasmids pBAD22 / MAP. pBAD-SalI-R 5'-GAAGTCGACGTCCTACTCAGGAGAGCGTTCAC-3 'RV Location - 1446-1468 bp plasmids pBAD22 / MAP.

Конструирование экспрессионного вектора рЕТ15АConstruction of the expression vector pET15A

Фрагмент последовательности ДНК, содержащий ген метионинаминопептидазы и регулирующие его экспрессию последовательности, амплифицировали с плазмиды рЕТ302/МАР с помощью следующей пары праймеров:A DNA sequence fragment containing the methionine aminopeptidase gene and the sequences regulating its expression was amplified from plasmid pET302 / MAP using the following pair of primers:

5'-GTTAAGCTTCGGGTTACTGATGATGAACATG-3'5'-GTTAAGCTTCGGGTTACTGATGATGAACATG-3 '

5'-GGAGTCGACATCCGGATATAGTTCCTCCTTTC-3'5'-GGAGTCGACATCCGGATATAGTTCCTCCTTTC-3 '

Допустимо использование праймеров в интервале концентраций от 5 до 25 мкМ, однако лучший результат достигается при использовании праймеров в концентрации 10 мкМ. Амплифицированный фрагмент ДНК размером 3755 п.н., концы которого открывали с помощью рестриктаз HindIII и SalI, клонировали в плазмиду pACYC 184, линеаризованную с помощью этих же рестриктаз. Количество добавляемых рестриктаз может варьироваться от 0.1 до 1 ед., тем не менее, оптимальное количество - 0.25 ед. каждой рестриктазы на 1 реакцию.It is acceptable to use primers in the concentration range from 5 to 25 μM, however, the best result is achieved when using primers at a concentration of 10 μM. The amplified 3755 bp DNA fragment, the ends of which were opened with the restriction enzymes HindIII and SalI, was cloned into the pACYC 184 plasmid linearized with the same restriction enzymes. The amount of restriction enzymes added can vary from 0.1 to 1 units, however, the optimal amount is 0.25 units. each restrictase for 1 reaction.

В результате клонирования была получена плазмида рЕТ15А (Фиг. 3), содержащая ген метионинаминопептидазы под контролем регулируемого Т7 промотора, сайт репликации р15А и ген устойчивости к хлорамфениколу для проведения селекции. Правильность сборки плазмиды подтверждали секвенированием.Cloning yielded the plasmid pET15A (Fig. 3) containing the methionine aminopeptidase gene under the control of the regulated T7 promoter, the p15A replication site and the chloramphenicol resistance gene for selection. The correct assembly of the plasmid was confirmed by sequencing.

Праймеры:Primers

pET-HindIII-F 5'-GTTAAGCTCCGGGTTACTGATGATGAACATG-3' FW Расположение - 3788-3809 п.н. плазмиды рЕТ302/МАР.pET-HindIII-F 5'-GTTAAGCTCCGGGTTACTGATGATGAACATG-3 'FW Location - 3788-3809 bp plasmids pET302 / MAP.

pRh15A-SalI-R 5'-GGAGTCGACATCCGGATATAGTTCCTCCTTTC RVpRh15A-SalI-R 5'-GGAGTCGACATCCGGATATAGTTCCTCCTTTC RV

Расположение - 1048-1070 п.н. плазмиды рЕТ302/МАР.Location - 1048-1070 bp plasmids pET302 / MAP.

Пример 2. Получение штаммов культивируемых клеток - продуцентов безметионинового ИЛ-36РА человекаExample 2. Obtaining strains of cultured cells - producers of methionine-free human IL-36RA

Для экспрессии гена ИЛ-36РА использовали созданный нами ранее плазмидный экспрессионный вектор pET-IL36Raf (RU 2582569, 2016). Электрокомпетентные клетки Е. coli BL21 [DE3] трансформировали смесью плазмид pET-IL36Raf и рЕТ15А в эквимолярном соотношении. Трансформацию проводили с помощью аппарата Bio-Rad MicroPulser (Bio-Rad, США) согласно инструкции производителя. Положительные трансформанты отбирали на агаризованной среде, содержащей смесь двух антибиотиков (ампициллин в конечной концентрации от 50 до 125 мкг/мл, предпочтительно 100 мкг/мл; и хлорамфеникол в конечной концентрации от 20 до 40 мкг/мл, предпочтительно 25 мкг/мл), что гарантировало содержание обеих плазмид в отобранных колониях. Наличие в трансформантах обеих плазмид также подтверждали путем ПЦР с использованием двух пар праймеров, специфических для гена ИЛ-36РА и гена МАП, соответственно. Полученный штамм получил название Escherichia coli BL21Star[DE3](pET-IL36Raf, рЕТ15А).To express the IL-36RA gene, we used the previously created plasmid expression vector pET-IL36Raf (RU 2582569, 2016). Electrocompetent cells of E. coli BL21 [DE3] were transformed with a mixture of plasmids pET-IL36Raf and pET15A in an equimolar ratio. Transformation was performed using a Bio-Rad MicroPulser apparatus (Bio-Rad, USA) according to the manufacturer's instructions. Positive transformants were selected on an agar medium containing a mixture of two antibiotics (ampicillin at a final concentration of 50 to 125 μg / ml, preferably 100 μg / ml; and chloramphenicol at a final concentration of 20 to 40 μg / ml, preferably 25 μg / ml), which guaranteed the content of both plasmids in the selected colonies. The presence of both plasmids in transformants was also confirmed by PCR using two pairs of primers specific for the IL-36RA gene and the MAP gene, respectively. The resulting strain was called Escherichia coli BL21Star [DE3] (pET-IL36Raf, pET15A).

Для культивирования полученного штамма использовали 1-2х (предпочтительно 1,5х) среду LB (10-20 г/л (предпочтительно 15 г/л) триптона, 5-10 г/л (предпочтительно 7,5 г/л) дрожжевого экстракта, 4-6 (предпочтительно 5 г/л) хлорида натрия) в 0,8-1,2х (предпочтительно 1х) среде М9 (Na2HPO4 3,84-5,76 мМ (предпочтительно 4,8 мМ), KH2PO4 1,76-2,64 мМ (предпочтительно 2,2 MM); NaCl 0,68-1,02 мМ (предпочтительно 0,85 мМ), NH4Cl 1,5-2,24 мМ (предпочтительно 1,87 мМ), MgSO4 0,8-1,2 мМ (предпочтительно 1 мМ), CaCl2 0,08-0,12 мМ (предпочтительно 0,1 мМ) с добавлением антибиотиков в указанных выше концентрациях. Культуру засевали до плотности 0,05-0,5 ОЕ (предпочтительно 0,1 ОЕ), растили 12-18 часов (предпочтительно 16 часов) при температуре 35-38°С (предпочтительно +37°С) и скорости перемешивания 150-300 об/мин (предпочтительно 250 об/мин). Затем эти культуры инокулировали в 1-2х LB (предпочтительно 1,5х LB) + 0,8-1,2х (предпочтительно 1x) М9 объемом 50-2500 мл (предпочтительно 200 мл) до плотности 0,1-1 ОЕ (предпочтительно 0,3 ОЕ) и растили в колбах объемом 0,5-2,5 л (предпочтительно 2 л) при температуре 35-38°С (предпочтительно +37°С) при скорости перемешивания 150-300 об/мин (предпочтительно 250 об/мин) до плотности 2-5 ОЕ/мл (предпочтительно 3 ОЕ/мл). При этой оптической плотности вносили индуктор - IPTG 0,1-1 мМ (предпочтительно 0,5 мМ).For cultivation of the obtained strain used 1-2x (preferably 1.5x) LB medium (10-20 g / l (preferably 15 g / l) tryptone, 5-10 g / l (preferably 7.5 g / l) yeast extract, 4-6 (preferably 5 g / l) sodium chloride) in 0.8-1.2x (preferably 1x) M9 medium (Na 2 HPO 4 3.84-5.76 mm (preferably 4.8 mmol), KH 2 PO 4 1.76-2.64 mm (preferably 2.2 MM); NaCl 0.68-1.02 mm (preferably 0.85 mm), NH 4 Cl 1.5-2.24 mm (preferably 1, 87 mM), MgSO 4 0.8-1.2 mM (preferably 1 mM), CaCl 2 0.08-0.12 mM (preferably 0.1 mM) supplemented with antibiotics at the above concentrations. to a density of 0.05-0.5 OE (preferably 0.1 OE), grew 12-18 hours (preferably 16 hours) at a temperature of 35-38 ° C (preferably + 37 ° C) and a stirring speed of 150-300 rpm min (preferably 250 rpm). Then these cultures were inoculated in 1-2x LB (preferably 1.5x LB) + 0.8-1.2x (preferably 1x) M9 with a volume of 50-2500 ml (preferably 200 ml) to a density 0.1-1 OE (preferably 0.3 OE) and grown in flasks with a volume of 0.5-2.5 L (preferably 2 L) at a temperature of 35-38 ° C (preferably + 37 ° C) with a stirring speed of 150- 300 rpm (preferably 250 rpm) to a density of 2-5 OU / ml (preferably 3 OU / ml). At this optical density, an IPTG inductor of 0.1-1 mM (preferably 0.5 mM) was added.

Индукцию продолжали в течение 2-4 ч (предпочтительно 3 ч) при температуре 27-37°С (предпочтительно +30°С) при скорости перемешивания 150-300 об/мин (предпочтительно 250 об/мин). Затем биомассу бактерий собирали центрифугированием со скоростью 2000-12000 g (предпочтительно 8000 g) при температуре 3-18°С (предпочтительно +4°С) в течение 15-60 мин (предпочтительно 30 мин). Вначале экспрессию белка ИЛ-36РА подтверждали путем электрофореза тотальных лизатов клеток (Фиг. 4). Затем уровень продукции ИЛ-36РА различными штаммами-продуцентами оценивали с помощью твердофазного ИФА с использованием моноклональных антител к ИЛ-36РА, полученных во ФГУП «ГосНИИ ОЧБ» (Фиг. 5). Примесь непроцессированной формы ИЛ-36РА, содержащей инициаторный остаток метионина, оценивали с помощью ОФ-ВЭЖХ (Фиг. 6, 9).Induction was continued for 2-4 hours (preferably 3 hours) at a temperature of 27-37 ° C (preferably + 30 ° C) at a stirring speed of 150-300 rpm (preferably 250 rpm). Then the bacteria biomass was collected by centrifugation at a speed of 2000-12000 g (preferably 8000 g) at a temperature of 3-18 ° C (preferably + 4 ° C) for 15-60 minutes (preferably 30 minutes). Initially, the expression of IL-36PA protein was confirmed by electrophoresis of total cell lysates (Fig. 4). Then, the level of production of IL-36RA by various producer strains was evaluated using solid-phase ELISA using monoclonal antibodies to IL-36RA, obtained in the Federal State Unitary Enterprise State Research Institute of General Medicine (Fig. 5). An admixture of the unprocessed form of IL-36RA containing the methionine initiator residue was evaluated by RP-HPLC (Fig. 6, 9).

Пример 3. Получение штамма Escherichia coli BL21Star[DE3](pET-IL36Raf, pBAD15A).Example 3. Obtaining a strain of Escherichia coli BL21Star [DE3] (pET-IL36Raf, pBAD15A).

Получение штамма Escherichia coli BL21Star[DE3](pET-IL36Raf, pBAD15A) и все работы с ним проводили по технологии, описанной в примере 2 с двумя отличиями: при его создании использовали плазмиду pBAD15A, а не рЕТ15А, и при индукции вносили также арабинозу 0,2%).Obtaining Escherichia coli strain BL21Star [DE3] (pET-IL36Raf, pBAD15A) and all work with it was carried out according to the technology described in example 2 with two differences: when it was created, plasmid pBAD15A was used, and not pET15A, and arabinose was also introduced during induction 0 , 2%).

Пример 4. Выделение рецепторного антагониста ИЛ-36.Example 4. Isolation of the receptor antagonist of IL-36.

После размораживания 150 ± 15 г биомассы бактерий из морозильной камеры (- 70°С) до комнатной температуры к ней добавляли 1400 ± 50 мл буфера, содержащего от 30 до 70 мМ Tris-HCl (оптимально 50 мМ), pH от 6,0 до 7,2 (оптимально 7,0), и перемешивали на электрической мешалке в течение 45-75 минут (оптимально 60) до получения гомогенного раствора. Объем полученного лизата составлял 1500 ± 100 мл. Далее лизат переливали в пробирки для центрифугирования Beckman, помещали в ротор JA-10 и центрифугировали при скорости от 5000 до 12000 об./мин (оптимально 10000) в течение в течение 45-75 минут (оптимально 60). Осадок удаляли, а к супернатанту добавляли раствор кальция хлорида до конечной концентрации от 20 до 40 мМ (оптимально 30) и раствор тринатрия фосфата до конечной концентрации от 10 до 30 мМ (оптимально 20). Полученный раствор перемешивали на электрической мешалке в течение ночи. Далее полученный раствор переливали в пробирки для центрифугирования Beckman, помещали в ротор JA-10 и центрифугировали при скорости от 5000 до 12000 об./мин (оптимально 10000) в течение в течение 45-75 минут (оптимально 60). Осадок удаляли, а супернатант наносили на хроматографический сорбент. Эта стадия подготовки сырья позволила удалить большую часть механических примесей, которые необратимо забивают хроматографический сорбент.After thawing 150 ± 15 g of bacterial biomass from the freezer (-70 ° C) to room temperature, 1400 ± 50 ml of buffer containing 30 to 70 mM Tris-HCl (optimally 50 mM), pH 6.0 to 7.2 (optimally 7.0), and mixed on an electric stirrer for 45-75 minutes (optimally 60) until a homogeneous solution is obtained. The volume of the obtained lysate was 1500 ± 100 ml. The lysate was then poured into Beckman centrifugation tubes, placed in a JA-10 rotor and centrifuged at a speed of 5000 to 12000 rpm (optimally 10000) for 45-75 minutes (optimally 60). The precipitate was removed, and a calcium chloride solution was added to the supernatant to a final concentration of 20 to 40 mM (optimally 30) and a trisodium phosphate solution to a final concentration of 10 to 30 mM (optimally 20). The resulting solution was stirred on an electric stirrer overnight. Next, the resulting solution was poured into Beckman centrifugation tubes, placed in a JA-10 rotor and centrifuged at a speed of 5000 to 12000 rpm (optimally 10000) for 45-75 minutes (optimally 60). The precipitate was removed, and the supernatant was applied to a chromatographic sorbent. This stage of preparation of the raw material allowed to remove most of the mechanical impurities that irreversibly clog the chromatographic sorbent.

Хроматографическая очистка на сорбенте Q FF (300 ± 10 мл) позволяетя очистить ИЛ-36РА от части примесных белков, а также липополисахаридов (ЛПС) и ДНК. Условия хроматографии подбирали таким образом, чтобы рецепторный антагонист ИЛ-36, в отличие от примесей, не связывался с сорбентом и оставался во фракции, не связавшейся с сорбентом. Фракцию собирали в объеме 2200 ± 200 мл, начиная с момента повышения УФ-поглощения проходящей фракции при 280 нм на 30 mAU по сравнению с уравновешивающим буфером.Chromatographic purification on a Q FF sorbent (300 ± 10 ml) allows the IL-36RA to be purified from a portion of impurity proteins, as well as lipopolysaccharides (LPS) and DNA. The chromatography conditions were selected so that the IL-36 receptor antagonist, unlike impurities, did not bind to the sorbent and remained in the fraction that did not bind to the sorbent. The fraction was collected in a volume of 2200 ± 200 ml, starting from the moment of increasing the UV absorption of the passing fraction at 280 nm by 30 mAU compared to the equilibration buffer.

Объем сорбента: 300 ± 10 млSorbent volume: 300 ± 10 ml

Уравновешивающий буфер: 30-70 мМ Tris-HCl (оптимально 50 мМ), pH 6,0-7,2 (оптимально 7,0) (0,5 ± 0,025 л)Balancing buffer: 30-70 mM Tris-HCl (optimally 50 mM), pH 6.0-7.2 (optimally 7.0) (0.5 ± 0.025 L)

Отмывающий буфер: 30-70 мМ Tris-HCl (оптимально 50 мМ), 0-0,3M NaCl (оптимально 0,15), pH 6,0-7,2 (оптимально 7,0) (0,7 ± 0,035 л) Регенерирующий буфер: 30-70 мМ Tris-HCl (оптимально 50 мМ), 1,5-2М NaCl (оптимально 2М), pH 6,0-7,2 (оптимально 7,0) (0,5 ± 0,025 л).Washing buffer: 30-70 mM Tris-HCl (optimally 50 mM), 0-0.3 M NaCl (optimally 0.15), pH 6.0-7.2 (optimally 7.0) (0.7 ± 0.035 L ) Regeneration buffer: 30-70 mM Tris-HCl (optimally 50 mM), 1.5-2 M NaCl (optimally 2 M), pH 6.0-7.2 (optimally 7.0) (0.5 ± 0.025 L) .

Figure 00000001
Figure 00000001

Хроматографическая очистка на сорбенте Butyl-650 (100 ± 5 мл) предназначена для очистки целевого белка от примесных белков. На сорбент наносили не связавшуюся с сорбентом Q FF фракцию с добавлением аммония сульфата до 0,15-0,5 М (оптимально 0,3). Условия хроматографии подбирали таким образом, чтобы рецепторный антагонист ИЛ-36, в отличие от большинства примесей, связывался с сорбентом и затем элюировался при определенных условиях.Chromatographic purification using Butyl-650 sorbent (100 ± 5 ml) is intended for purification of the target protein from impurity proteins. The fraction that did not bind to the sorbent Q FF was added to the sorbent with the addition of ammonium sulfate up to 0.15-0.5 M (optimally 0.3). Chromatography conditions were selected so that the IL-36 receptor antagonist, unlike most impurities, binds to the sorbent and then elutes under certain conditions.

Объем сорбента: 100 ± 5 млSorbent volume: 100 ± 5 ml

Уравновешивающий буфер: 30-70 мМ Na2HPO4 (оптимально 50 мМ), 0,15-0,5 М (NH4)2SO4 (оптимально 0,3), pH 5,8-6,2 (оптимально 6,0) (1,5 ± 0,2 л) Элюирующий буфер: 30-70 мМ Na2HPO4 (оптимально 50 мМ), pH 5,8-6,2 (оптимально 6,0) (0,4 ± 0,05 л) Регенерирующий буфер: дистиллированная водаBalancing buffer: 30-70 mM Na 2 HPO 4 (optimally 50 mM), 0.15-0.5 M (NH 4 ) 2 SO 4 (optimally 0.3), pH 5.8-6.2 (optimally 6 , 0) (1.5 ± 0.2 L) Elution buffer: 30-70 mM Na 2 HPO 4 (optimally 50 mM), pH 5.8-6.2 (optimally 6.0) (0.4 ± 0 , 05 l) Regeneration buffer: distilled water

Figure 00000002
Figure 00000002

Принципиально возможным представляется выделение ИЛ-36 исключительно с помощью гидрофобной хроматографии. В этом случае, однако, срок службы гидрофобного сорбента будет существенно сокращен, поэтому использование двухстадийной хроматографической очистки представляется более экономически выгодным.It is fundamentally possible to isolate IL-36 solely by hydrophobic chromatography. In this case, however, the service life of the hydrophobic sorbent will be significantly reduced, therefore, the use of two-stage chromatographic purification appears to be more economical.

Концентрирование белка проводили методом ультрафильтрации с помощью ячейки с перемешиванием Millipore Amicon Stirred Cell с установленной мембраной Sartorius Ultracel PLC 10 с пределом отсечения 10 кДа. Образец концентрировали до 10 ± 0,3 мг/мл. Затем проводили диализ белка против раствора, содержащего 30-70 мМ натрия цитрата (оптимально 50 мМ), pH 5,8-6,2 (оптимально 6,0), в диализном мешке MFPI CelluSep RC Т2 с пределом отсечения 6-8 кДа. После этого раствор белка стерилизовали с использованием шприцевых фильтров Millipore Millex с диаметром пор 0,22 мкм. Общие потери ИЛ-36РА на всех этапах очистки составили 37,5 ± 9,3%.Protein concentration was carried out by ultrafiltration using a Millipore Amicon Stirred Cell with a Sartorius Ultracel PLC 10 membrane with a cutoff limit of 10 kDa. The sample was concentrated to 10 ± 0.3 mg / ml. Then the protein was dialyzed against a solution containing 30-70 mM sodium citrate (optimally 50 mM), pH 5.8-6.2 (optimally 6.0), in a MFPI CelluSep RC T2 dialysis bag with a cutoff limit of 6-8 kDa. After this, the protein solution was sterilized using Millipore Millex syringe filters with a pore diameter of 0.22 μm. The total loss of IL-36RA at all stages of treatment amounted to 37.5 ± 9.3%.

Figure 00000003
Figure 00000003

Электрофореграмма образцов с различных этапов очистки ИЛ-36РА представлена на Фиг. 7.The electrophoregram of samples from various stages of purification of IL-36RA is presented in FIG. 7.

Пример 5. Анализ чистоты и гомогенности полученного ИЛ-36РАExample 5. Analysis of the purity and homogeneity of the obtained IL-36RA

Для определения количества белковых примесей в полученном ИЛ-36РА пробы ИЛ-36РА разделяли методом ВЭЖХ в обратной фазе на колонке Phenomenex Jupiter С18. 10 мкг (± 2 мкг) ИЛ-36РА в 20 мкл (± 4 мкл) раствора наносили на колонку в 50 мМ (±5 мМ) фосфатном буфере, pH 6,0 (допустимый интервал pH 5,8-6,2). Элюцию проводили градиентом ацетонитрила с 30% до 70% в 0,1% ТФУ, pH 2,5 (± 0,2), за 20 минут (± 5 мин) при скорости потока 1,5 мл/мин и температуре +35°С (± 2°С). Детектирование проводили на УФ-детекторе при длине волны 220 нм. Типовая хроматограмма ОФ-ВЭЖХ разделения ИЛ-36РА по этой методике представлена на Фиг. 8. Для определения примеси формы ИЛ-36РА, содержащей неотщепленный N-концевой остаток метионина, проводили ОФ-ВЭЖХ по методу, описанному выше. При этом элюцию проводили градиентом ацетонитрила с 39,6% до 40,8%), в остальном условия были такими же. Типовая хроматограмма ОФ-ВЭЖХ разделения ИЛ-36РА по этой методике представлена на Фиг. 9. Для определения примеси дезамидированной формы ИЛ-36РА проводили капиллярный зонный электрофорез (КЗЭФ) на приборе «Капель-105М» (Люмэкс, Россия). Для анализа использовали непокрытые кварцевые капилляры с внутренним диаметром 50 мкм и полной длиной 50 см (± 5 см) (эффективная длина 40 см (± 5 см) (Люмэкс, Россия). Капилляр термостатировали при 25°С (± 2°С), детекцию осуществляли на длине волны 214 нм. В качестве фонового электролита использовали 0,12 М (± 20 мМ) раствор дигидрофосфата калия (pH 3 ((± 0,2)). Перед проведением анализа капилляр промывали 0,1М (± 20 мМ) раствором гидроксида натрия, деионизованной водой и фоновым электролитом по 3 мин под давлением 2000 мбар ((± 100 мбар). Проба для капиллярного зонного электрофореза представляла собой водный раствор рекомбинантного рецепторного антагониста интерлейкина-36 человека с концентрацией 0,5 мг/мл (допустимый диапазон концентраций 0,4 мг/мл - 0,6 мг/мл), содержащий 2 мкг (± 0.2 мкг) внутреннего стандарта - синтезированного пептида Trp-Glu-His-Arg. Ввод пробы осуществляли гидродинамически под давлением 40 мбар в течение 5 с. Анализ проводили при напряжении 10 кВ (± 2 кВ) в течение 35 минут (± 5 мин). Инструментальный контроль, сбор и регистрацию электрофоретических данных производили с помощью системы «Эльфоран» (Люмэкс, Россия). Для идентификации пиков интактного белка и его дезамидированной формы рассчитывали относительное время миграции каждого из этих пиков (RMT), равное отношению времени миграции пика белка ко времени миграции внутреннего стандарта. Содержание дезамидированной формы белка рассчитывали по относительной площади пика (в процентах), равной отношению площади пика дезамидированной формы к сумме площадей пиков, соответствующих рекомбинантному рецепторному антагонисту интерлейкина-36 человека. На Фиг. 10 представлена электрофореграмма разделения нативной (А) и дезамидированной (Б) форм ИЛ-36РА в КЗЭФ.To determine the amount of protein impurities in the obtained IL-36RA, IL-36RA samples were separated by reverse phase HPLC on a Phenomenex Jupiter C18 column. 10 μg (± 2 μg) of IL-36PA in 20 μl (± 4 μl) of the solution was applied to the column in 50 mM (± 5 mM) phosphate buffer, pH 6.0 (pH range 5.8-6.2). Elution was carried out with a gradient of acetonitrile from 30% to 70% in 0.1% TFA, pH 2.5 (± 0.2), for 20 minutes (± 5 min) at a flow rate of 1.5 ml / min and a temperature of + 35 ° C (± 2 ° C). Detection was carried out on a UV detector at a wavelength of 220 nm. A typical RP-HPLC chromatogram of the IL-36RA separation by this technique is shown in FIG. 8. To determine the impurity of the IL-36RA form containing the uncleaved N-terminal methionine residue, RP-HPLC was performed according to the method described above. In this case, elution was carried out with a gradient of acetonitrile from 39.6% to 40.8%), otherwise the conditions were the same. A typical RP-HPLC chromatogram of the IL-36RA separation by this technique is shown in FIG. 9. To determine the impurity of the deamidated form of IL-36RA, capillary zone electrophoresis (KZEF) was performed on a Kapel-105M instrument (Lumex, Russia). For analysis, uncoated quartz capillaries with an inner diameter of 50 μm and a total length of 50 cm (± 5 cm) (effective length 40 cm (± 5 cm) (Lumex, Russia) were used. The capillary was thermostatically controlled at 25 ° С (± 2 ° С), detection was carried out at a wavelength of 214 nm. A 0.12 M (± 20 mM) solution of potassium dihydrogen phosphate (pH 3 ((± 0.2)) was used as the background electrolyte. Before the analysis, the capillary was washed with 0.1 M (± 20 mm) a solution of sodium hydroxide, deionized water and a background electrolyte for 3 min at a pressure of 2000 mbar ((± 100 mbar). Sample for capillary zone electrophoresis was an aqueous solution of a recombinant receptor antagonist of human interleukin-36 with a concentration of 0.5 mg / ml (allowable concentration range of 0.4 mg / ml - 0.6 mg / ml) containing 2 μg (± 0.2 μg) of the internal standard - the synthesized peptide Trp-Glu-His-Arg. The sample was injected hydrodynamically at a pressure of 40 mbar for 5 s. The analysis was carried out at a voltage of 10 kV (± 2 kV) for 35 minutes (± 5 min). Instrumental control, collection and registration of electrophoretic data was carried out using the Elforan system (Lumex, Russia). To identify the peaks of the intact protein and its deamidated form, the relative migration time of each of these peaks (RMT) was calculated, equal to the ratio of the migration time of the protein peak to the migration time of the internal standard. The content of the deamidated form of the protein was calculated by the relative peak area (in percent) equal to the ratio of the peak area of the deamidated form to the sum of the peak areas corresponding to the recombinant human interleukin-36 receptor antagonist. In FIG. 10 shows the electrophoregram of separation of native (A) and deamidated (B) forms of IL-36RA in KZEF.

После всех стадий очистки по результатам анализов получаемый ИЛ-36РА имеет чистоту >95% по ВЭЖХ, имеет <5% примеси непроцессированной формы с неотщепленный инициаторным остатком метионина и <5% дезадированной формы.After all stages of purification according to the results of the analyzes, the obtained IL-36RA has a purity of> 95% by HPLC, has <5% impurities of an unprocessed form with an uncleaved initiator methionine residue, and <5% of a precipitated form.

Пример 6. Создание композиции рекомбинантного ИЛ-36РА человека, устойчивой при хранении. При отработке условий хроматографической очистки ИЛ-36РА было обнаружено, что при экспозиции целевого белка pH>7,0 наблюдается появление значительной примеси дезамидированной формы белка (Фиг. 10). Поэтому для получения гомогенного продукта условиях очистки были модифицированы так, чтобы pH был всегда не выше 7,0. Кроме того, при хранении белка в фосфатном буфере с pH 7,4 также было зафиксировано накопление дезамидированной формы. Однако при pH <5,5 наблюдалась агрегация ИЛ-36РА, т.к. эти значения слишком близки к изоэлектрической точке белка - 5,28. Для стабилизации раствора ИЛ-36РА была разработана композиция, включающая 1-100 мМ цитратный или фосфатный буфер (оптимально 5 мМ) с pH 5,5-6,5 (оптимально 6,0), в котором по данным анализа стабильности дезамидирования белка не происходит. Также выбранная концентрация цитрата натрия или фосфата натрия пригодна для инъекционного введения человеку. Кроме того, для предотвращения агрегации ИЛ-36РА в состав композиции были введены твин-80 в количестве 0,01-1%. В концентрациях <0,01% твин-80 не уменьшал способность препарата к агрегации, концентрации твин-80>1% не показывали дальнейшего улучшения свойств препарата. Для защиты препарата от возможного протеолиза в композицию был введен ингибитор металлопротеаз ЭДТА в количестве 0,1-10 мМ. Описанные эффекты суммированы в таблице 4.Example 6. The creation of a composition of recombinant human IL-36RA, stable during storage. When testing the conditions of chromatographic purification of IL-36RA, it was found that when the target protein was exposed to pH> 7.0, a significant impurity of the deamidated form of the protein was observed (Fig. 10). Therefore, to obtain a homogeneous product, the purification conditions were modified so that the pH was always not higher than 7.0. In addition, during storage of the protein in phosphate buffer with a pH of 7.4, an accumulation of a deamidated form was also recorded. However, at pH <5.5, IL-36RA aggregation was observed, because these values are too close to the isoelectric point of the protein - 5.28. To stabilize the IL-36RA solution, a composition was developed that included 1-100 mM citrate or phosphate buffer (optimally 5 mM) with a pH of 5.5-6.5 (optimally 6.0), in which protein deamidation stability analysis does not occur . Also, the selected concentration of sodium citrate or sodium phosphate is suitable for injectable administration to humans. In addition, to prevent the aggregation of IL-36RA, tween-80 in the amount of 0.01-1% was introduced into the composition. At concentrations <0.01% tween-80 did not reduce the ability of the drug to aggregate, concentrations of tween-80> 1% did not show further improvement in the properties of the drug. To protect the drug from possible proteolysis, an EDTA metalloprotease inhibitor in an amount of 0.1-10 mM was introduced into the composition. The described effects are summarized in table 4.

Figure 00000004
Figure 00000004

Пример 7. Оценка биологической активности композиции ИЛ-36РА на модели псориазоподобного дерматита у мышейExample 7. Evaluation of the biological activity of the composition of IL-36PA on a model of psoriasis-like dermatitis in mice

Для определения биологической активности полученного ИЛ-36РА применяли модель псориазоподобного дерматита у мышей индуцированного обработкой имихимодом - агонистом Толл-подобных рецепторов 7 и 8 [van derFits L. et al. Imiquimod-induced psoriasis-like skin inflammation in mice is mediated via the IL-23/IL-17 axis // J. Immunol. Baltim. Md 1950. 2009. Vol. 182, №9. P. 5836-5845.]. Имихимод применяли накожно в виде крема Алдара (5% имихимод). Эта модель псориаза широко применяется в научной практике и многократно описана в литературе [Stjernholm Т. et al. Leptin-deficiency in mice counteracts imiquimod (IMQ)-induced psoriasis-like skin inflammation while leptin stimulation induces inflammation in human keratinocytes // Exp. Dermatol. 2016.; Li R. et al. Increased βTrCP are associated with imiquimod-induced psoriasis-like skin inflammation in mice via NF-κВ signaling pathway // Gene. 2016.; Huang S.-W. et al. Azithromycin impairs TLR7 signaling in dendritic cells and improves the severity of imiquimod-induced psoriasis-like skin inflammation in mice // J. Dermatol. Sci. 2016.].To determine the biological activity of the obtained IL-36RA, a model of psoriasis-like dermatitis in mice induced by treatment with an imichimod agonist of Toll-like receptors 7 and 8 [van derFits L. et al. Imiquimod-induced psoriasis-like skin inflammation in mice is mediated via the IL-23 / IL-17 axis // J. Immunol. Baltim. Md 1950. 2009. Vol. 182, No. 9. P. 5836-5845.]. An imihimod was applied cutaneously in the form of Aldar cream (5% imihimod). This model of psoriasis is widely used in scientific practice and has been repeatedly described in the literature [Stjernholm T. et al. Leptin-deficiency in mice counteracts imiquimod (IMQ) -induced psoriasis-like skin inflammation while leptin stimulation induces inflammation in human keratinocytes // Exp. Dermatol. 2016 .; Li R. et al. Increased βTrCP are associated with imiquimod-induced psoriasis-like skin inflammation in mice via NF-κB signaling pathway // Gene. 2016 .; Huang S.-W. et al. Azithromycin impairs TLR7 signaling in dendritic cells and improves the severity of imiquimod-induced psoriasis-like skin inflammation in mice // J. Dermatol. Sci. 2016.].

Для индукции псориазоподобного дерматита крем Алдара наносили на кожу правого уха мышей трех групп один раз в день в дозе 55-68 мкг (оптимально 62,5 мкг), ежедневно, в течение 7-ми дней. Животные были разделены на 4 группы. Первая группа получала инъекцию 200 ± 5 мкл физиологического раствора подкожно в область холки ежедневно 1 раз в день; вторая и третья группа получала 50 ± 1 или 10 ± 1 мкг/мышь ИЛ-36РА, соответственно, в объеме 200 ± 5 мкл подкожно в область холки ежедневно 1 раз в день, четвертая группа получала раствор метотрексата в дозе 20 ± 1 мкг/мышь ежедневно внутрижелудочно через зонд. Каждая группа включала 10 мышей. Ежедневно проводили морфометрическое исследование толщины уха и визуальную оценку поражения кожи в месте нанесения препарата с последующим расчетом индекса PASI [van der Fits L. et al. Imiquimod-induced psoriasis-like skin inflammation in mice is mediated via the IL-23/IL-17 axis // J. Immunol. Baltim. Md 1950. 2009. Vol. 182, №9. P. 5836-5845.].To induce psoriasis-like dermatitis, Aldar cream was applied to the skin of the right ear of mice of three groups once a day at a dose of 55-68 μg (optimally 62.5 μg), daily, for 7 days. Animals were divided into 4 groups. The first group received an injection of 200 ± 5 μl of saline subcutaneously into the withers daily 1 time per day; the second and third groups received 50 ± 1 or 10 ± 1 μg / mouse IL-36RA, respectively, in a volume of 200 ± 5 μl subcutaneously to the withers daily once a day, the fourth group received a solution of methotrexate at a dose of 20 ± 1 μg / mouse daily intragastrically through a tube. Each group included 10 mice. A daily morphometric study of the thickness of the ear and visual assessment of skin lesions at the site of application of the drug were performed, followed by the calculation of the PASI index [van der Fits L. et al. Imiquimod-induced psoriasis-like skin inflammation in mice is mediated via the IL-23 / IL-17 axis // J. Immunol. Baltim. Md 1950. 2009. Vol. 182, No. 9. P. 5836-5845.].

Было показано, что ежедневное нанесение препарата Алдара на кожу уха мышей, получавших инъекции физиологического раствора, оказало видимый эффект уже через 24 ч после первого нанесения. Были зафиксированы выраженная эритема и шелушение, достигающие максимума на 5-й день эксперимента. Морфометрическое исследование толщины уха показало достоверное увеличение данного параметра по сравнению с интактными животными, начиная с 24 часов после первого нанесения крема Алдара Анализ изменения индексов PASI, рассчитанных для всех групп животных в течение эксперимента, показал, что степень выраженности псориазоподобного дерматита была значительно снижена в группах, получавших изучаемый препарат рекомбинантного ИЛ-36РА человека в дозах 50 ± 1 и 10 ± 1 мкг/мышь, а также метотрексат в дозе 20 ± 1 мкг/мышь в сутки, по сравнению с таковой в контрольной группе, начиная с 3-го дня и на протяжении всего эксперимента (Фиг. 11). На 6-й день эксперимента эффективность препарата ИЛ-36РА в дозе 50 ± 1 мкг/мышь превзошла эффективность метотрексата. Морфометрическое исследование толщины уха показало, что в группе, получавшей исследуемый препарат в дозе 50 ± 1 мкг/мышь, индекс изменения толщины уха был достоверно ниже по сравнению с контрольной группой, начиная с 3-го дня и до конца эксперимента. В группе животных, получавших метотрексат, этот показатель достоверно снижался только на 6-й и 7-й дни эксперимента (Фиг. 12).It was shown that daily application of the drug Aldara on the skin of the ear of mice receiving injections of physiological saline had a visible effect already 24 hours after the first application. Pronounced erythema and peeling were recorded, reaching a maximum on the 5th day of the experiment. A morphometric study of the thickness of the ear showed a significant increase in this parameter compared with intact animals, starting from 24 hours after the first application of Aldar cream. Analysis of changes in the PASI indices calculated for all groups of animals during the experiment showed that the severity of psoriasis-like dermatitis was significantly reduced in groups who received the studied preparation of recombinant human IL-36RA in doses of 50 ± 1 and 10 ± 1 μg / mouse, as well as methotrexate in a dose of 20 ± 1 μg / mouse per day, compared with that in control group, starting with the third day and throughout the experiment (Fig. 11). On the 6th day of the experiment, the effectiveness of the drug IL-36RA at a dose of 50 ± 1 μg / mouse exceeded the effectiveness of methotrexate. A morphometric study of the thickness of the ear showed that in the group receiving the study drug at a dose of 50 ± 1 μg / mouse, the index of change in the thickness of the ear was significantly lower compared to the control group, starting from the 3rd day until the end of the experiment. In the group of animals treated with methotrexate, this indicator significantly decreased only on the 6th and 7th days of the experiment (Fig. 12).

Таким образом, было показано, что ежедневное подкожное введение разработанного препарата рекомбинантного ИЛ-36РА человека в дозах 50 ± 1 и 10 ± 1 мкг/мышь значительно снижает тяжесть экспериментального дерматита, вызванного имихимодом. Эффект появляется в пределах 3-4 дней после первого введения препарата и превосходит эффект метотрексата.Thus, it was shown that daily subcutaneous administration of the developed preparation of recombinant human IL-36PA at doses of 50 ± 1 and 10 ± 1 μg / mouse significantly reduces the severity of experimental dermatitis caused by imichimod. The effect appears within 3-4 days after the first injection of the drug and exceeds the effect of methotrexate.

Claims (19)

1. Плазмидный экспрессионный вектор pBAD15A для получения безметионинового рекомбинантного рецепторного антагониста интерлейкина-36 (ИЛ-36РА) человека путем культивирования штамма Escherichia coli BL21Star[DE3], содержащего плазмидный экспрессионный вектор pET-IL36Raf и упомянутый вектор, и последующего выделения ИЛ-36РА, содержащий:1. Plasmid expression vector pBAD15A for producing a methionine-free recombinant human interleukin-36 (IL-36PA) receptor antagonist by culturing Escherichia coli strain BL21Star [DE3] containing the plasmid expression vector pET-IL36Raf and the aforementioned vector, and subsequent isolation of IL-36PA : - ген метионинаминопептидазы Е. coli,- E. coli methionine aminopeptidase gene, - промотор pBADara,- pBADara promoter, - терминаторы транскрипции гена rrnВ (rrnB Т1Т2),- rrnB gene transcription terminators (rrnB T1T2), - регуляторную последовательность araBAD оперона,- regulatory sequence of araBAD operon, - ориджин репликации плазмид р15А,- origin of replication of plasmids p15A, - ген хлорамфеникол ацетилтрансферазы (CamR) и- gene chloramphenicol acetyltransferase (CamR) and - рестрикционные сайты, необходимые для объединения отдельных фрагментов в векторе, карта которого приведена на Фиг. 2.- restriction sites necessary for combining individual fragments in a vector, a map of which is shown in FIG. 2. 2. Плазмидный экспрессионный вектор рЕТ15А для получения безметионинового рекомбинантного ИЛ-36РА человека путем культивирования штамма Escherichia coli BL21Star[DE3], содержащего плазмидный экспрессионный вектор pET-IL36Raf и упомянутый вектор, и последующего выделения ИЛ-36РА, содержащий:2. Plasmid expression vector pET15A for the production of recombinant human IL-36PA without methionine by culturing a strain of Escherichia coli BL21Star [DE3] containing the plasmid expression vector pET-IL36Raf and the aforementioned vector, and subsequent isolation of IL-36PA containing: - ген метионинаминопептидазы Е. coli,- E. coli methionine aminopeptidase gene, - промотор фага Т7,- promoter of phage T7, - терминатор транскрипции генов фага Т7,- phage T7 gene transcription terminator, - регуляторную последовательность гена lacI,- regulatory sequence of the lacI gene, - ориджин репликации плазмид р15А,- origin of replication of plasmids p15A, - ген хлорамфеникол ацетилтрансферазы (CamR) и- gene chloramphenicol acetyltransferase (CamR) and - рестрикционные сайты, необходимые для объединения отдельных фрагментов в векторе, карта которого приведена на Фиг. 3.- restriction sites necessary for combining individual fragments in a vector, a map of which is shown in FIG. 3. 3. Штамм - продуцент безметионинового рекомбинантного ИЛ-36РА человека, представляющий собой штамм Escherichia coli BL21Star[DE3], содержащий плазмидный экспрессионный вектор pET-IL36Raf и вектор по п. 1 или 2.3. The strain is a producer of non-methionine recombinant human IL-36RA, which is a strain of Escherichia coli BL21Star [DE3], containing the plasmid expression vector pET-IL36Raf and the vector according to claim 1 or 2. 4. Способ получения штамма по п. 3, заключающийся в трансформации штамма Escherichia coli BL21Star[DE3] плазмидным экспрессионным вектором pET-IL36Raf и вектором по п. 1 или 2 с последующей индукцией экспрессии генов рецепторного антагониста интерлейкина-36 человека (ИЛ-36РА) и метионинаминопептидазы Е. coli.4. The method of obtaining the strain according to claim 3, which consists in transforming the Escherichia coli strain BL21Star [DE3] with the plasmid expression vector pET-IL36Raf and the vector according to claim 1 or 2, followed by induction of expression of the human interleukin-36 receptor antagonist genes (IL-36RA) and methionine aminopeptidases of E. coli. 5. Применение препарата безметионинового рекомбинантного рецепторного антагониста интерлейкина-36 человека, полученного с использованием штамма по п. 3, для лечения дерматитов.5. The use of a preparation of a non-methionine recombinant human interleukin-36 receptor antagonist obtained using the strain of claim 3 for the treatment of dermatitis.
RU2017103888A 2017-02-06 2017-02-06 THE METHOD OF PRODUCTION OF INTERLEUKIN-36 RECEPTOR ANTAGONIST WITH CLEAVED N-TERMINAL METHIONINE, ESCHERICHIA COLI BL21[DE3] STRAIN PRODUCING INTERLEUKIN-36 RECEPTOR ANTAGONIST WITH CLEAVED N-TERMINAL METHIONINE (VARIANTS), METHOD OF THEIR CONSTRUCTION, PLASMID VECTORS pBAD15A AND pET15A AND DNA SEQUENCE FOR THEIR CONSTRUCTION RU2672816C9 (en)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2017103888A RU2672816C9 (en) 2017-02-06 2017-02-06 THE METHOD OF PRODUCTION OF INTERLEUKIN-36 RECEPTOR ANTAGONIST WITH CLEAVED N-TERMINAL METHIONINE, ESCHERICHIA COLI BL21[DE3] STRAIN PRODUCING INTERLEUKIN-36 RECEPTOR ANTAGONIST WITH CLEAVED N-TERMINAL METHIONINE (VARIANTS), METHOD OF THEIR CONSTRUCTION, PLASMID VECTORS pBAD15A AND pET15A AND DNA SEQUENCE FOR THEIR CONSTRUCTION

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2017103888A RU2672816C9 (en) 2017-02-06 2017-02-06 THE METHOD OF PRODUCTION OF INTERLEUKIN-36 RECEPTOR ANTAGONIST WITH CLEAVED N-TERMINAL METHIONINE, ESCHERICHIA COLI BL21[DE3] STRAIN PRODUCING INTERLEUKIN-36 RECEPTOR ANTAGONIST WITH CLEAVED N-TERMINAL METHIONINE (VARIANTS), METHOD OF THEIR CONSTRUCTION, PLASMID VECTORS pBAD15A AND pET15A AND DNA SEQUENCE FOR THEIR CONSTRUCTION

Publications (4)

Publication Number Publication Date
RU2017103888A3 RU2017103888A3 (en) 2018-08-06
RU2017103888A RU2017103888A (en) 2018-08-06
RU2672816C2 true RU2672816C2 (en) 2018-11-19
RU2672816C9 RU2672816C9 (en) 2019-01-11

Family

ID=63112999

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
RU2017103888A RU2672816C9 (en) 2017-02-06 2017-02-06 THE METHOD OF PRODUCTION OF INTERLEUKIN-36 RECEPTOR ANTAGONIST WITH CLEAVED N-TERMINAL METHIONINE, ESCHERICHIA COLI BL21[DE3] STRAIN PRODUCING INTERLEUKIN-36 RECEPTOR ANTAGONIST WITH CLEAVED N-TERMINAL METHIONINE (VARIANTS), METHOD OF THEIR CONSTRUCTION, PLASMID VECTORS pBAD15A AND pET15A AND DNA SEQUENCE FOR THEIR CONSTRUCTION

Country Status (1)

Country Link
RU (1) RU2672816C9 (en)

Citations (6)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2122864C1 (en) * 1996-12-26 1998-12-10 Московский научно-исследовательский институт эпидемиологии и микробиологии им.Г.Н.Габричевского Immunoglobulin preparation for intravenous administration and method of its preparing
WO2009088255A2 (en) * 2008-01-09 2009-07-16 Korea Center For Disease Control And Prevention Method for preparing antigen effective for preventing anthrax infection
RU2473556C1 (en) * 2011-07-14 2013-01-27 Закрытое акционерное общество "ГЕНЕРИУМ" Method for commercial production and purification of human recombinant growth hormone of inclusion bodies
RU2575621C1 (en) * 2015-01-13 2016-02-20 Общество С Ограниченной Ответственностью "Рд-Биотех" (Ооо "Рд-Биотех") STRAIN-PRODUCER OF METHIONINE-FREE CRM197 BASED ON CELLS E. coli BL21 (DE3)
RU2582569C2 (en) * 2014-07-24 2016-04-27 Федеральное государственное унитарное предприятие "Государственный научно-исследовательский институт особо чистых биопрепаратов" Федерального медико-биологического агентства Dna coding full-size human interleukin-receptor antagonist 36, dna coding full-size human interleukin-receptor antagonist 36 with c-end poligistidine tag, plasmid expression vector (versions), escherichia coli bl21 [de3] star (pet-il36raf),-producer of full-size receptor antagonist 36 and strain of bacteria escherichia coli bl21 [de3] star (pet-il36raf-his),-producer of full-size receptor antagonist 36 with c-end poligistidine tag
US20170009240A1 (en) * 2015-07-08 2017-01-12 Korea Institute Of Science And Technology Vectors and strains for producing myrcene and method of producing myrcene using the same

Patent Citations (6)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2122864C1 (en) * 1996-12-26 1998-12-10 Московский научно-исследовательский институт эпидемиологии и микробиологии им.Г.Н.Габричевского Immunoglobulin preparation for intravenous administration and method of its preparing
WO2009088255A2 (en) * 2008-01-09 2009-07-16 Korea Center For Disease Control And Prevention Method for preparing antigen effective for preventing anthrax infection
RU2473556C1 (en) * 2011-07-14 2013-01-27 Закрытое акционерное общество "ГЕНЕРИУМ" Method for commercial production and purification of human recombinant growth hormone of inclusion bodies
RU2582569C2 (en) * 2014-07-24 2016-04-27 Федеральное государственное унитарное предприятие "Государственный научно-исследовательский институт особо чистых биопрепаратов" Федерального медико-биологического агентства Dna coding full-size human interleukin-receptor antagonist 36, dna coding full-size human interleukin-receptor antagonist 36 with c-end poligistidine tag, plasmid expression vector (versions), escherichia coli bl21 [de3] star (pet-il36raf),-producer of full-size receptor antagonist 36 and strain of bacteria escherichia coli bl21 [de3] star (pet-il36raf-his),-producer of full-size receptor antagonist 36 with c-end poligistidine tag
RU2575621C1 (en) * 2015-01-13 2016-02-20 Общество С Ограниченной Ответственностью "Рд-Биотех" (Ооо "Рд-Биотех") STRAIN-PRODUCER OF METHIONINE-FREE CRM197 BASED ON CELLS E. coli BL21 (DE3)
US20170009240A1 (en) * 2015-07-08 2017-01-12 Korea Institute Of Science And Technology Vectors and strains for producing myrcene and method of producing myrcene using the same

Non-Patent Citations (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
RALPH RAPLEY, DAVID WHITEHOUSE Molecular Biology and Biotechnology, 2014, Royal Society of Chemistry, р. 83. *
Издательство СПбГУ Санкт-Петербург, стр.377-378. *
П.П.НИМИРИЦКИЙ и др. Фундаментальная наука и клиническая медицина — Человек и его здоровье: Тезисы XVIII Международной медико-биологической конференции молодых исследователей, посвященной двадцатилетию медицинского факультета СПбГУ. *
П.П.НИМИРИЦКИЙ и др. Фундаментальная наука и клиническая медицина — Человек и его здоровье: Тезисы XVIII Международной медико-биологической конференции молодых исследователей, посвященной двадцатилетию медицинского факультета СПбГУ. ISSN 2221-5654, 2015 г. Издательство СПбГУ Санкт-Петербург, стр.377-378. *

Also Published As

Publication number Publication date
RU2017103888A3 (en) 2018-08-06
RU2672816C9 (en) 2019-01-11
RU2017103888A (en) 2018-08-06

Similar Documents

Publication Publication Date Title
JP2000512496A (en) Human DNase I hyperreactive mutant
US9822351B2 (en) Bacterial hyaluronidase and process for its production
CA1341015C (en) Outer membrane protein f of pseudomonas aeruginosa
CN103710367B (en) A kind of recombined human kallikrein 1 and encoding gene thereof and preparation method
RU2354702C2 (en) RECOMBINANT PLASMID DNA pHINS11 CODING HYBRID PROTEIN-HUMAN INSULIN PRECURSOR, Escherichia coli CELL, TRANSFORMED WITH RECOMBINANT PLASMID DNA pHINS11, Escherichia coli BACTERIA STRAIN JM109/pHINS11 - PRODUCER OF HYBRID PROTEIN-HUMAN INSULIN PRECURSOR, AND METHOD OF OBTAINING HUMAN INSULIN
CN112608933B (en) High-purity preparation method of recombinant blue copper peptide precursor-oligopeptide
CN111378638A (en) Helicobacter pylori phage lyase and preparation method thereof
RU2672816C2 (en) METHOD OF PRODUCING NON-METHIONINE RECEPTOR ANTAGONIST INTERLEUKIN-36 STRAIN BACTERIA ESCHERICHIA COLI BL21 [DE3] - PRODUCER NON-METHIONINE RECEPTOR ANTAGONIST INTERLEUKIN-36 (VARIANTS), METHOD OF THEIR PREPARATION, AND PLASMID VECTOR pBAD15A pET15A AND DNA SEQUENCE FOR THEIR PREPARATION
CN112143743A (en) Acetaldehyde dehydrogenase gene, escherichia coli engineering bacteria, expression and application
KR20190003694A (en) Methods for producing recombinant proteins
JP6811725B2 (en) Method of producing recombinant protein
RU2582569C2 (en) Dna coding full-size human interleukin-receptor antagonist 36, dna coding full-size human interleukin-receptor antagonist 36 with c-end poligistidine tag, plasmid expression vector (versions), escherichia coli bl21 [de3] star (pet-il36raf),-producer of full-size receptor antagonist 36 and strain of bacteria escherichia coli bl21 [de3] star (pet-il36raf-his),-producer of full-size receptor antagonist 36 with c-end poligistidine tag
CN111909949B (en) Preparation method and application of recombinant protein HSP70_5 of Sporothrix globosum
CN114920838B (en) anti-IL-17A single domain antibody and application thereof
RU2714114C1 (en) Method of producing a peptide which modulates purinergic receptor activity
CN111978382B (en) Preparation method and application of recombinant protein of Sporothrix globosum Gp70
RU2817891C1 (en) ESCHERICHIA COLI L-ASPARAGINASE PRODUCER AND EXPRESSION PLASMID pET28a-AsnSYN CODING L-ASPARAGINASE
RU2728237C1 (en) Genetic construct coding human yb-1 protein precursor, escherichia coli strain - producer of human yb-1 protein precursor, method for microbiological synthesis of said precursor
RU2127758C1 (en) Method of recombinant streptokinase preparing
CN114591432B (en) anti-TNFalpha single domain antibodies and uses thereof
CN113957026B (en) Engineering strain for producing recombinant human IL-1ra and preparation method and application thereof
CN107586334B (en) Preparation method of serum for treating haemophilus influenzae infection and application of serum
CN108265064B (en) Recombinant artemisia annua 3-class allergen protein and application thereof
EA035207B1 (en) Strain of escherichia coli bl21 (de3)/pet-21a(+) bacteria - producer of predominantly monomeric somatotropine
EP1602720B1 (en) Process for producing heterologous protein in e. coli

Legal Events

Date Code Title Description
TH4A Reissue of patent specification
TK49 Amendments to publication of information on inventions in english [patent]

Free format text: CORRECTION TO CHAPTER -FG4A- IN JOURNAL 32-2018 FOR INID CODE(S) (54)