RU2666257C1 - Method for determining sensitivity of bacterial hemocultures to antibiotics - Google Patents

Method for determining sensitivity of bacterial hemocultures to antibiotics Download PDF

Info

Publication number
RU2666257C1
RU2666257C1 RU2017130194A RU2017130194A RU2666257C1 RU 2666257 C1 RU2666257 C1 RU 2666257C1 RU 2017130194 A RU2017130194 A RU 2017130194A RU 2017130194 A RU2017130194 A RU 2017130194A RU 2666257 C1 RU2666257 C1 RU 2666257C1
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
antibiotics
bacterial
antibiotic
suspension
determining
Prior art date
Application number
RU2017130194A
Other languages
Russian (ru)
Inventor
Дмитрий Александрович Попов
Татьяна Юрьевна Вострикова
Original Assignee
Федеральное государственное бюджетное учреждение "Национальный научно-практический центр сердечно-сосудистой хирургии им. А.Н. Бакулева" Министерства здравоохранения Российской Федерации
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Федеральное государственное бюджетное учреждение "Национальный научно-практический центр сердечно-сосудистой хирургии им. А.Н. Бакулева" Министерства здравоохранения Российской Федерации filed Critical Федеральное государственное бюджетное учреждение "Национальный научно-практический центр сердечно-сосудистой хирургии им. А.Н. Бакулева" Министерства здравоохранения Российской Федерации
Priority to RU2017130194A priority Critical patent/RU2666257C1/en
Application granted granted Critical
Publication of RU2666257C1 publication Critical patent/RU2666257C1/en

Links

Classifications

    • GPHYSICS
    • G01MEASURING; TESTING
    • G01NINVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
    • G01N33/00Investigating or analysing materials by specific methods not covered by groups G01N1/00 - G01N31/00
    • G01N33/48Biological material, e.g. blood, urine; Haemocytometers

Landscapes

  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Food Science & Technology (AREA)
  • Analytical Chemistry (AREA)
  • Urology & Nephrology (AREA)
  • Hematology (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Physics & Mathematics (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • General Physics & Mathematics (AREA)
  • Immunology (AREA)
  • Pathology (AREA)
  • Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)

Abstract

FIELD: medicine.SUBSTANCE: invention relates to medicine, namely to laboratory diagnostics, and can be used in bacteriological laboratories of clinics to determine the sensitivity of bacterial blood cultures to antibiotics. Method comprises preparing a bacterial suspension, inoculating the culture medium and incubating it. To prepare a bacterial suspension with a density of 0.5 of the McFarland turbidity standard, direct primary broth culture is used directly, a suspension prepared by suspension is inoculated with Mueller-Hinton nutrient agar, 10 minutes after inoculation, paper discs with test antibiotics are placed on the surface of the Mueller-Hinton agar and incubated at 37 °C in a dry-air thermostat until visually noticeable growth. Diameter of the growth retardation zones of microorganisms around antibiotic discs is assessed by determining the stability of the bacteriaemia agent to the antibiotic under test when a growth retardation zone is detected whose diameter is proportional to the level of activity of the antibiotic to be tested.EFFECT: use of the invention improves the accuracy of determining the sensitivity of bacterial blood cultures to antibiotics while reducing the study time.1 cl, 1 ex

Description

Изобретение относится к медицине, а именно к лабораторной диагностике. Разработанный способ может быть использован в бактериологических лабораториях клиник для определения чувствительности бактериальных гемокультур к антибиотикам.The invention relates to medicine, namely to laboratory diagnostics. The developed method can be used in bacteriological laboratories of clinics to determine the sensitivity of bacterial hemocultures to antibiotics.

Известны стандартные способы определения чувствительности гемокультур к антибиотикам, которые включают световую микроскопию с окраской по Граму, высев первичной бульонной гемокультуры на дифференциально-диагностические плотные питательные среды с последующим субкультивированием, получение чистых культур микроорганизмов, приготовление бактериальной суспензии из чистых культур микроорганизмов, инокуляцию полученной суспензией питательного агара Мюллера-Хинтона, помещение на поверхность инокулированной питательной среды бумажных дисков с тестируемыми антибиотиками, инкубацию образцов при 35°С с последующим считыванием зон задержки роста культуры микроорганизмов вокруг дисков с антибиотиками. Вместо бумажных дисков с антибиотиками могут быть использованы специальные тест-полоски, импрегнированные антибиотиком в различных концентрациях. Известен способ определения чувствительности гемокультур к антибиотикам с помощью автоматических микробиологических анализаторов, включающий световую микроскопию с окраской по Граму, высев первичной бульонной гемокультуры на дифференциально-диагностические плотные питательные среды с последующим субкультивированием, получение чистых культур микроорганизмов, приготовление бактериальной суспензии из чистых культур микроорганизмов, инокуляцию полученной суспензией специальных карт, содержащих различные антибиотики в различных концентрациях с последующим учетом результатов [Методические указания МУК 4.2.1890-04 «Определение чувствительности микроорганизмов к антибактериальным препаратам», МУК 4.2.2886-11 «Идентификация микроорганизмов и определение чувствительности их к антибиотикам с применением автоматизированной системы для биохимического анализа», клинические рекомендации МАКМАХ «Определение чувствительности микроорганизмов к антимикробным препаратам», версия 2015-02. http://www.antibiotic.ru/minzdrav/files/ docs/clrec-dsma2015.pdf].Known standard methods for determining the sensitivity of hemocultures to antibiotics, which include light microscopy with Gram stain, plating primary broth hemoculture on differential diagnostic solid nutrient media followed by subculture, obtaining pure cultures of microorganisms, preparing a bacterial suspension from pure cultures of microorganisms, inoculating the resulting suspension of nutrient Muller-Hinton agar, paper surface inoculated culture medium x disks with the test antibiotic, incubating the samples at 35 ° C followed by the read latency zones microorganism culture growth around the discs with antibiotics. Instead of paper discs with antibiotics, special test strips impregnated with antibiotic in various concentrations can be used. A known method for determining the sensitivity of hemocultures to antibiotics using automatic microbiological analyzers, including light microscopy with Gram stain, plating the primary broth hemoculture on differential diagnostic solid nutrient media with subsequent subculture, obtaining pure cultures of microorganisms, preparing a bacterial suspension from pure cultures of microorganisms, inoculation obtained suspension of special cards containing various antibiotics in various concentrations followed by results [Methodical guidelines MUK 4.2.1890-04 “Determining the sensitivity of microorganisms to antibacterial drugs”, MUK 4.2.2886-11 “Identifying microorganisms and determining their sensitivity to antibiotics using an automated system for biochemical analysis”, IACMAC clinical guidelines "Determination of the sensitivity of microorganisms to antimicrobial agents", version 2015-02. http://www.antibiotic.ru/minzdrav/files/ docs / clrec-dsma2015.pdf].

Основным недостатком данных способов является длительное время, необходимое для получения результата (обычно не менее 2 сут), что обусловлено физиологией микроорганизмов, требующих времени для накопления биомассы. Это является критичным для своевременного назначения адекватной антимикробной терапии, так как известно, что каждый час задержки с назначением антибиотика у больных с септическим шоком сопровождается приростом летальности на 6,7% [Kumar A., Roberts D., Wood К.Е. et al. Duration of hypotension before initiation of effective antimicrobial therapy is the critical determinant of survival in human septic shock. Crit. Care Med. 2006; 34 (6): 1589-1596].The main disadvantage of these methods is the long time required to obtain a result (usually at least 2 days), which is due to the physiology of microorganisms that require time to accumulate biomass. This is critical for the timely appointment of adequate antimicrobial therapy, since it is known that every hour of delay in prescribing an antibiotic in patients with septic shock is accompanied by an increase in mortality of 6.7% [Kumar A., Roberts D., Wood K.E. et al. Duration of hypotension before initiation of effective antimicrobial therapy is the critical determinant of survival in human septic shock. Crit. Care Med. 2006; 34 (6): 1589-1596].

Известен ряд альтернативных способов оценки чувствительности гемокультур к антибиотикам:A number of alternative methods are known for assessing the sensitivity of hemocultures to antibiotics:

1. Способы косвенного определения устойчивости к антибиотикам по выявлению соответствующих генетических детерминант методом полимеразной цепной реакции [Dark P., Wilson С, Blackwood В. et al. Accuracy of LightCycler SeptiFast for the detection and identification of pathogens in the blood of patients with suspected sepsis: a systematic review protocol. BMJ Open. 2012; 2 (1): е000392]. Данные способы позволяют оценить устойчивость лишь к некоторым препаратам и не охватывают всего необходимого их перечня.1. Methods for indirectly determining antibiotic resistance by detecting the corresponding genetic determinants by polymerase chain reaction [Dark P., Wilson C, Blackwood B. et al. Accuracy of LightCycler SeptiFast for the detection and identification of pathogens in the blood of patients with suspected sepsis: a systematic review protocol. BMJ Open. 2012; 2 (1): e000392]. These methods make it possible to evaluate resistance to only certain drugs and do not cover all the necessary list of them.

2. Определение устойчивости к антибиотикам на основе физико-химического анализа методом MALDI-ToF масс-спектрометрии продуктов, образующихся при инкубации исследуемого микроорганизма в растворе антимикробного препарата [Matrix-Assisted Laser Desorption Ionization-Time of Flight (MALDI-ToF) Mass Spectrometry for Detection of Antibiotic Resistance Mechanisms: from Research to Routine Diagnosis. Clin Microbiol Rev. 2013; 26 (1): 103-114]. Данная технология является в настоящее время экспериментальной и также предполагает использование в качестве субстрата чистых культур микроорганизмов.2. Determination of antibiotic resistance based on physicochemical analysis using the MALDI-ToF method of mass spectrometry of products formed during incubation of the studied microorganism in an antimicrobial solution [Matrix-Assisted Laser Desorption Ionization-Time of Flight (MALDI-ToF) Mass Spectrometry for Detection of Antibiotic Resistance Mechanisms: from Research to Routine Diagnosis. Clin Microbiol Rev. 2013; 26 (1): 103-114]. This technology is currently experimental and also involves the use of pure cultures of microorganisms as a substrate.

3. Способ определения чувствительности гемокультур к антибиотикам путем анализа в режиме реального времени микроскопических изображений, отражающих гибель микробных клеток в присутствии антибиотиков. Результат антибиотикограммы доступен в среднем через 6-6,5 ч. [Price С, Douglas I., Turtle Е. et al. Rapid identification and antimicrobial susceptibility testing of bacteria in bloodstream infections using the Accelerate ID/AST technology. ECCMID 2015; EV0493].3. A method for determining the sensitivity of hemocultures to antibiotics by analyzing in real time microscopic images reflecting the death of microbial cells in the presence of antibiotics. The result of the antibioticogram is available on average after 6-6.5 hours. [Price C, Douglas I., Turtle E. et al. Rapid identification and antimicrobial susceptibility testing of bacteria in bloodstream infections using the Accelerate ID / AST technology. ECCMID 2015; EV0493].

4. Способ экспресс-анализа in vitro чувствительности грамотрицательных бактерий к антибиотикам в биологических жидкостях по повышению уровня эндотоксина в тестируемых образцах после добавления того или иного антибиотика (заявка WO2014RU00074 20140131). Заявленная применимость данного способа ограничена только грамотрицательными бактериями.4. The method of rapid analysis in vitro of the sensitivity of gram-negative bacteria to antibiotics in biological fluids by increasing the level of endotoxin in the test samples after adding one or another antibiotic (application WO2014RU00074 20140131). The claimed applicability of this method is limited only by gram-negative bacteria.

Также известен способ определения чувствительности микроорганизмов к антимикробным веществам (RU №2505813 Сl, 27.01.2014), включающий забор биологического материала, инкубацию содержащихся в нем микроорганизмов на питательной среде, введение в питательную среду исследуемого антимикробного вещества с последующей оценкой результата. Исследуемое антимикробное вещество вводят в питательную среду до начала культивирования микроорганизмов в концентрации, близкой к максимально достижимой в месте забора биологического материала. Оценку чувствительности микроорганизмов к антимикробному веществу осуществляют после появления видимого роста микроорганизмов в контрольном посеве. Недостатком данного способа является недостаточная точность получаемого результата, так как ряд антибиотиков, вводимых в плотную питательную среду в процессе ее приготовления, подвергается неизбежной деградации, что делает непредсказуемой концентрацию препарата в готовой среде и не позволяет оценить получаемый результат. Данный метод использован нами в качестве наиболее близкого аналога разработанного способа.Also known is a method for determining the sensitivity of microorganisms to antimicrobial substances (RU No. 2505813 Cl, 01/27/2014), including the collection of biological material, incubation of the microorganisms contained in it on a nutrient medium, introducing the antimicrobial substance under study into the nutrient medium, with subsequent evaluation of the result. The studied antimicrobial substance is introduced into the nutrient medium before the start of the cultivation of microorganisms in a concentration close to the maximum attainable at the site of collection of biological material. The assessment of the sensitivity of microorganisms to antimicrobial substances is carried out after the appearance of visible growth of microorganisms in the control crop. The disadvantage of this method is the insufficient accuracy of the result, since a number of antibiotics introduced into a solid nutrient medium during its preparation undergoes inevitable degradation, which makes the concentration of the drug in the finished medium unpredictable and does not allow to evaluate the result. This method was used by us as the closest analogue of the developed method.

Технической проблемой является создание способа определения чувствительности бактериальных гемокультур к антибиотикам.The technical problem is the creation of a method for determining the sensitivity of bacterial hemocultures to antibiotics.

Техническим результатом, достигаемым при реализации настоящего изобретения, является повышение точности определения чувствительности бактериальных гемокультур к антибиотикам в условиях сокращения времени исследования за счет:The technical result achieved by the implementation of the present invention is to increase the accuracy of determining the sensitivity of bacterial hemocultures to antibiotics in terms of reducing research time due to:

- использования при тестировании бульонной культуры непосредственно из флакона для посева крови;- use when testing the broth culture directly from the vial for sowing blood;

- инокуляции первичной бульонной гемокультурой агара Мюллера-Хинтона;- inoculation of the primary broth hemoculture of Mueller-Hinton agar;

- использования стандартных бумажных дисков с антибиотиками, помещаемых на поверхность инокулированного агара Мюллера-Хинтона;- the use of standard paper discs with antibiotics placed on the surface of the inoculated Mueller-Hinton agar;

- осуществления инкубации при температурном режиме 37°С до появления визуально заметного роста.- incubation at a temperature of 37 ° C until a visually noticeable growth occurs.

При этом сокращение времени исследования (время получения результата антибиотикограммы сокращается до 3-5 ч) обусловлено исключением стадии получения чистой культуры, а также сокращением времени инкубации чашек с дисками.At the same time, the reduction in the study time (the time for obtaining the result of the antibioticogram is reduced to 3-5 hours) is due to the exclusion of the stage of obtaining a pure culture, as well as to a reduction in the time of incubation of plates with disks.

Кроме того, проведенные нами клинико-лабораторные исследования (исследовались различные питательные среды, варианты приготовления суспензии, режимы инкубации) продемонстрировали высокую точность определения чувствительности гемокультур к антибиотикам лишь в случае сочетания следующих компонентов тестирования: первичная бульонная гемокультура (используемая для приготовления бактериальной суспензии с плотностью 0,5 стандарта мутности по McFarland), питательный агар Мюллера-Хинтона (используемый для инокуляции приготовленной суспензией), инкубация при 37°С в суховоздушном термостате. Нами было выявлено, что именно данное сочетание компонентов создает условия для ускоренного роста микроорганизмов, отмечаемого визуально, что сокращает время проведения тестирования.In addition, our clinical and laboratory studies (various nutrient media, suspension preparation options, incubation modes were studied) demonstrated the high accuracy of determining the sensitivity of blood cultures to antibiotics only if the following testing components were combined: primary broth culture (used to prepare a bacterial suspension with a density of 0 , 5 McFarland Turbidity Standards), Müller-Hinton Nutrient Agar (used to inoculate the prepared suspension ), incubation at 37 ° C in a dry-air thermostat. We have revealed that this particular combination of components creates the conditions for the accelerated growth of microorganisms, noted visually, which reduces the time of testing.

Таким образом, применение данного способа определения чувствительности гемокультур к антибиотикам позволяет повысить точность и сократить время исследования.Thus, the use of this method for determining the sensitivity of hemocultures to antibiotics can improve accuracy and reduce the time of the study.

Сущность разработанного способа.The essence of the developed method.

Осуществляют световую микроскопию с окраской по Граму. Готовят бактериальную суспензию плотностью 0,5 стандарта мутности по McFarland, используя непосредственно первичную бульонную гемокультуру. Приготовленной суспензией инокулируют питательный агар Мюллера-Хинтона. Через 10 мин после инокуляции на поверхность агара Мюллера-Хинтона помещают бумажные диски с тестируемыми антибиотиками и инкубируют при 37°С в суховоздушном термостате до появления визуально заметного роста. Оценивают диаметр зон задержки роста микроорганизмов вокруг дисков с антибиотиками, определяя устойчивость возбудителя бактериемии к тестируемому антибиотику при выявлении зоны задержки роста, диаметр которой пропорционален уровню активности тестируемого антибиотика.Gram light microscopy is performed. Prepare a bacterial suspension with a density of 0.5 standard turbidity according to McFarland, using directly the primary broth culture. Muller-Hinton nutrient agar was inoculated with the prepared suspension. 10 minutes after inoculation, paper discs with the tested antibiotics were placed on the surface of the Mueller-Hinton agar and incubated at 37 ° C in a dry-air thermostat until a visually noticeable growth appeared. The diameter of the zones of growth inhibition of microorganisms around the discs with antibiotics is evaluated, determining the resistance of the bacteriemia pathogen to the tested antibiotic in identifying the zone of growth inhibition, the diameter of which is proportional to the activity level of the tested antibiotic.

Способ осуществляется следующим образом.The method is as follows.

Содержимое флаконов с положительной гемокультурой окрашивают по Граму и подвергают микроскопии, после чего в случае наличия монокультуры осуществляют приготовление разведения для инокуляции питательного агара Мюллера-Хинтона в стандартных чашках Петри.The contents of vials with a positive hemoculture are stained by Gram and subjected to microscopy, after which, in the presence of a monoculture, a dilution is prepared to inoculate nutrient Mueller-Hinton agar in standard Petri dishes.

Плотность инокулята - 0,5 стандарта мутности по McFarland. Через 10 мин после инокуляции агара Мюллера-Хинтона на его поверхность помещают бумажные диски с тестируемыми антибиотиками.The inoculum density is 0.5 McFarland turbidity standards. 10 minutes after the inoculation of Muller-Hinton agar, paper discs with tested antibiotics were placed on its surface.

Перечень тестируемых антибиотиков выбирается произвольно в зависимости от конкретных диагностических потребностей.The list of tested antibiotics is chosen randomly depending on the specific diagnostic needs.

Инокулированный агар с дисками помещают в суховоздушный термостат, где осуществляют инкубацию при 37°С, периодически (1 раз в час, начиная с третьего часа инкубации) просматривая чашки на предмет появления визуально заметного роста.Inoculated agar with disks is placed in a dry-air thermostat, where they are incubated at 37 ° C, periodically (1 time per hour, starting from the third hour of incubation), looking at the plates for visually noticeable growth.

При появлении роста оценивают диаметр зон задержки роста микроорганизмов вокруг дисков с антибиотиками. Наличие зоны задержки роста указывает на активность тестируемого препарата, причем диаметр данной зоны пропорционален уровню активности тестируемого антибиотика. Отсутствие зоны задержки роста свидетельствует об устойчивости возбудителя бактериемии к данному антибиотику.When growth occurs, evaluate the diameter of the zones of growth inhibition of microorganisms around discs with antibiotics. The presence of a growth inhibition zone indicates the activity of the test drug, and the diameter of this zone is proportional to the level of activity of the tested antibiotic. The absence of a zone of growth inhibition indicates the resistance of the bacteriemia pathogen to this antibiotic.

Пример.Example.

Больной К., 29 лет, на фоне клинической картины системного воспаления выявлена положительная гемокультура. При микроскопическом исследовании положительной гемокультуры с окраской по Граму визуализированы грамотрицательные палочки, начата антибиотикотерапия меропенемом.Patient K., 29 years old, showed a positive blood culture against the background of the clinical picture of systemic inflammation. Microscopic examination of positive blood culture with Gram staining visualized gram-negative bacilli, and started antibiotic therapy with meropenem.

Непосредственно из первичной бульонной гемокультуры была приготовлена бактериальная суспензия плотностью 0,5 стандарта мутности по McFarland, которой был инокулирован питательный агар Мюллера-Хинтона, после чего на его поверхность были помещены бумажные диски с тестируемыми антибиотиками (цефуроксим, цефтриаксон, цефтазидим, цефоперазон/сульбактам, цефепим, эртапенем, имипенем, меропенем, дорипенем, полимиксин, ципрофлоксацин, левофлоксацин, амикацин). Через 3 ч инкубации образца в суховоздушном термостате при 37°С визуально отмечено появление зон задержки роста бактериальной культуры вокруг дисков с полимиксином и амикацином. Зоны задержки роста бактериальной культуры вокруг дисков с цефуроксимом, цефтриаксоном, цефтазидимом, цефоперазоном/сульбактамом, цефепимом, эртапенемом, имипенемом, меропенемом, дорипенемом, ципрофлоксацином и левофлоксацином отсутствовали. Антибиотикотерапия меропенемом признана неэффективной, произведена замена антибиотика на полимиксин с последующей положительной динамикой состояния пациента.A bacterial suspension with a density of 0.5 McFarland turbidity standard was prepared directly from the primary broth culture, which was inoculated with Müller-Hinton nutrient agar, and then paper disks with tested antibiotics (cefuroxime, ceftriaxone, ceftazidime, cefbactone /) were placed on its surface. cefepime, ertapenem, imipenem, meropenem, doripenem, polymyxin, ciprofloxacin, levofloxacin, amikacin). After 3 h of incubation of the sample in a dry-air thermostat at 37 ° C, the appearance of zones of growth inhibition of bacterial culture around discs with polymyxin and amikacin was visually observed. Zones of growth retardation of the bacterial culture around the disks with cefuroxime, ceftriaxone, ceftazidime, cefoperazone / sulbactam, cefepime, ertapenem, imipenem, meropenem, doripenem, ciprofloxacin and levofloxacin were absent. Antibiotic therapy with meropenem was recognized as ineffective; the antibiotic was replaced with polymyxin, followed by positive dynamics of the patient's condition.

Описанный пример подтверждает точность определения чувствительности бактериальных гемокультур к антибиотикам в условиях сокращения времени исследования.The described example confirms the accuracy of determining the sensitivity of bacterial hemocultures to antibiotics in the conditions of reducing the study time.

Claims (1)

Способ определения чувствительности бактериальных гемокультур к антибиотикам, включающий приготовление бактериальной суспензии, инокуляцию ей питательной среды и инкубацию, отличающийся тем, что для приготовления бактериальной суспензии с плотностью 0,5 стандарта мутности по McFarland используют непосредственно первичную бульонную гемокультуру, приготовленной суспензией инокулируют питательный агар Мюллера-Хинтона, через 10 мин после инокуляции на поверхность агара Мюллера-Хинтона помещают бумажные диски с тестируемыми антибиотиками и инкубируют при 37°С в суховоздушном термостате до появления визуально заметного роста, оценивают диаметр зон задержки роста микроорганизмов вокруг дисков с антибиотиками, определяя устойчивость возбудителя бактериемии к тестируемому антибиотику при выявлении зоны задержки роста, диаметр которой пропорционален уровню активности тестируемого антибиотика.A method for determining the sensitivity of bacterial hemocultures to antibiotics, including preparation of a bacterial suspension, inoculation of a nutrient medium and incubation, characterized in that for the preparation of a bacterial suspension with a density of 0.5 standard turbidity according to McFarland directly use the primary broth culture, the suspension inoculated with nutrient Mueller agar Hinton, 10 minutes after inoculation, paper discs with tested antibiotics are placed on the surface of the Mueller-Hinton agar incubated at 37 ° C in a dry air oven until visually noticeable growth delay estimate diameter zones of microbial growth around the discs with antibiotics, determining bacteremia pathogen resistance to the tested antibiotic at revealing growth inhibition zone, the diameter of which is proportional to the level of activity of the test antibiotic.
RU2017130194A 2017-08-25 2017-08-25 Method for determining sensitivity of bacterial hemocultures to antibiotics RU2666257C1 (en)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2017130194A RU2666257C1 (en) 2017-08-25 2017-08-25 Method for determining sensitivity of bacterial hemocultures to antibiotics

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2017130194A RU2666257C1 (en) 2017-08-25 2017-08-25 Method for determining sensitivity of bacterial hemocultures to antibiotics

Publications (1)

Publication Number Publication Date
RU2666257C1 true RU2666257C1 (en) 2018-09-06

Family

ID=63459752

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
RU2017130194A RU2666257C1 (en) 2017-08-25 2017-08-25 Method for determining sensitivity of bacterial hemocultures to antibiotics

Country Status (1)

Country Link
RU (1) RU2666257C1 (en)

Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2804102C1 (en) * 2022-11-15 2023-09-26 федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования "Ставропольский государственный аграрный университет" Method for determining sensitivity of microorganisms to antibiotics in treatment of purulent inflammatory diseases of animals

Citations (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US5935806A (en) * 1989-10-24 1999-08-10 Infectech, Inc. Method and apparatus for speciating and identifying MAI (Mycobacterium avium-intracellulare) and testing the same for antibiotic sensitivity
RU2262533C2 (en) * 2003-05-20 2005-10-20 Санкт-Петербургский государственный медицинский университет имени академика И.П. Павлова Method for assay of microorganism sensitivity to antibiotic in treatment of suppurative-inflammatory process
RU2505813C1 (en) * 2012-11-06 2014-01-27 Виктор Вениаминович Тец Method for determining microorganism sensitivity to antimicrobial substances

Patent Citations (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US5935806A (en) * 1989-10-24 1999-08-10 Infectech, Inc. Method and apparatus for speciating and identifying MAI (Mycobacterium avium-intracellulare) and testing the same for antibiotic sensitivity
RU2262533C2 (en) * 2003-05-20 2005-10-20 Санкт-Петербургский государственный медицинский университет имени академика И.П. Павлова Method for assay of microorganism sensitivity to antibiotic in treatment of suppurative-inflammatory process
RU2505813C1 (en) * 2012-11-06 2014-01-27 Виктор Вениаминович Тец Method for determining microorganism sensitivity to antimicrobial substances

Non-Patent Citations (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
[он лайн] [найдено 03.05.2018] найдено в Интернет: https://medi.ru/info/11622/. *
ЛЕВИ М.И. Сравнение результатов анализа эффективности антибиотиков при исследовании бактериальных культур и гнойного отделяемого больных методом серийных разведений и диско-диффузионным методом. Дезинфекционное дело N4, 1999, с. 25-33. *
ЛЕВИ М.И. Сравнение результатов анализа эффективности антибиотиков при исследовании бактериальных культур и гнойного отделяемого больных методом серийных разведений и диско-диффузионным методом. Дезинфекционное дело N4, 1999, с. 25-33. [он лайн] [найдено 03.05.2018] найдено в Интернет: https://medi.ru/info/11622/. *

Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2804102C1 (en) * 2022-11-15 2023-09-26 федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования "Ставропольский государственный аграрный университет" Method for determining sensitivity of microorganisms to antibiotics in treatment of purulent inflammatory diseases of animals

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Idelevich et al. How to accelerate antimicrobial susceptibility testing
von Ah et al. Isothermal micro calorimetry–a new method for MIC determinations: results for 12 antibiotics and reference strains of E. coli and S. aureus
Azrad et al. Cheap and rapid in-house method for direct identification of positive blood cultures by MALDI-TOF MS technology
EP2821499B1 (en) Method for the rapid determination of susceptibility or resistance of bacteria to antibiotics
Drago et al. Microbiological diagnosis of implant-related infections: scientific evidence and cost/benefit analysis of routine antibiofilm processing
Bharadwaj et al. Clinical impact of the use of 16S rRNA sequencing method for the identification of “difficult‐to‐identify” bacteria in immunocompromised hosts
Rahman et al. Comparison of different microscopic methods with conventional TB culture
Heifets Drug susceptibility testing
JP5615712B2 (en) Method for removing antibiotics from blood culture samples
RU2666257C1 (en) Method for determining sensitivity of bacterial hemocultures to antibiotics
Saito et al. Delayed insertion of blood culture bottles into automated continuously monitoring blood culture systems increases the time from blood sample collection to the detection of microorganisms in bacteremic patients
RU2262533C2 (en) Method for assay of microorganism sensitivity to antibiotic in treatment of suppurative-inflammatory process
Karami et al. Resistant/susceptible classification of respiratory tract pathogenic bacteria based on volatile organic compounds profiling
Stratton Advanced phenotypic antimicrobial susceptibility testing methods
Zomorodian et al. Analysis of beta-hemolysis in human blood agars by Streptococcus pyogenes
Akgun et al. Comparison of rapid and routine methods of identification and antibiotic susceptibility testing of microorganisms from blood culture bottles
Sambyal et al. Changing antibiotic sensitivity pattern in gram negative nonfermenting isolates: A study in a tertiary care hospital
Lainhart et al. New bugs and new drugs: updates in clinical microbiology
RU2786394C1 (en) Method for reducing the level of clinical material contamination when soculated on dense nutritional media for isolation of mycobacterium tuberculosis complex
Cole et al. Isolation and Identification of Aerobic and Anaerobic Bacteria
RU2156807C2 (en) Method of determination of antilactoferrin activity in microorganisms
Pandey et al. Identification and culture test
Sufa et al. Efficient Techniques for Identifying Gram-Positive Clinical Bacteria
RU2292398C2 (en) Method for presentation of hospital staphylococcus strain staphylococcus aureus
Aziz Antibiotic Susceptibility Testing: Effects Of Variability In Technical Factors On Minimum Inhibitory Concentration Using Broth Microdilution

Legal Events

Date Code Title Description
MM4A The patent is invalid due to non-payment of fees

Effective date: 20190826