RU2156807C2 - Method of determination of antilactoferrin activity in microorganisms - Google Patents
Method of determination of antilactoferrin activity in microorganisms Download PDFInfo
- Publication number
- RU2156807C2 RU2156807C2 RU99117578A RU99117578A RU2156807C2 RU 2156807 C2 RU2156807 C2 RU 2156807C2 RU 99117578 A RU99117578 A RU 99117578A RU 99117578 A RU99117578 A RU 99117578A RU 2156807 C2 RU2156807 C2 RU 2156807C2
- Authority
- RU
- Russia
- Prior art keywords
- microorganisms
- optical density
- activity
- antilactoferrin
- control
- Prior art date
Links
Images
Landscapes
- Medicines That Contain Protein Lipid Enzymes And Other Medicines (AREA)
- Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)
Abstract
Description
Изобретение относится к микробиологии и может быть использовано в исследовательской работе НИИ и практической работе бактериологических лабораторий клинических учреждений, определяющих персистентные характеристики микроорганизмов для установления их этиологической значимости при патологических процессах. The invention relates to microbiology and can be used in the research work of the research institute and the practical work of the bacteriological laboratories of clinical institutions that determine the persistent characteristics of microorganisms to establish their etiological significance in pathological processes.
В настоящее время характер течения большинства инфекций изменился в сторону увеличения доли затяжных и хронических форм [1]. Currently, the nature of the course of most infections has changed in the direction of increasing the proportion of protracted and chronic forms [1].
Длительное переживание бактерий в организме хозяина (бактерионосительство), а также переход инфекционного процесса в хроническую форму обеспечивают механизмы персистенции микроорганизмов, инактивирующие ряд факторов естественной противоинфекционной резистентности: лизоцим, комплемент, интерферон [2], тромбоцитарный катионный белок [3] и др. В настоящее время все большее внимание уделяется изучению свойств патогенных микроорганизмов, направленных на инактивацию факторов естественной резистентности организма хозяина. Long-term experience of bacteria in the host’s body (carriage of bacteria), as well as the transition of the infectious process to a chronic form, are ensured by the mechanisms of persistence of microorganisms that inactivate a number of factors of natural anti-infection resistance: lysozyme, complement, interferon [2], platelet cationic protein [3], etc. At present time, more and more attention is paid to the study of the properties of pathogenic microorganisms aimed at inactivating the factors of natural resistance of the host organism.
Известны способы определения антилизоцимной [4], "антиинтерфероновой" [5] , антииммуноглобулиновой [6] , антикомплементарной [7] и антитромбоцитарной катионно-белковой [3] активностей микроорганизмов. Known methods for determining antilysocyme [4], "anti-interferon" [5], anti-immunoglobulin [6], anti-complementary [7] and antiplatelet cationic protein [3] activities of microorganisms.
В настоящее время установлено, что природный гликопротеин лактоферрин обладает рядом защитных свойств: бактериостатическим и бактерицидным действием [8] , принимает участие в процессах местной защиты слизистых оболочек [9] , в регуляции гуморальных и клеточных иммунологических реакций, в противовоспалительных процессах, воздействует на систему комплемента, регулирует гранулоцитопоэз [10], гемопоэз по принципу обратной связи [11]. Currently, it has been established that natural glycoprotein lactoferrin has a number of protective properties: bacteriostatic and bactericidal action [8], takes part in the processes of local protection of the mucous membranes [9], in the regulation of humoral and cellular immunological reactions, in anti-inflammatory processes, affects the complement system regulates granulocytopoiesis [10], hematopoiesis according to the feedback principle [11].
Актуальность разработки способа определения антилактоферриновой активности микроорганизмов определяется открывающейся при этом возможностью повышения точности диагностики и прогнозирования заболеваний микробной этиологии, а также выбора рациональной антибактериальной терапии для борьбы с бактерионосительством. The relevance of developing a method for determining the antilactoferrin activity of microorganisms is determined by the opportunity to improve the accuracy of diagnosis and prediction of diseases of microbial etiology, as well as the choice of rational antibacterial therapy to combat bacterial carriage.
Задачей заявляемого технического решения является создание способа определения антилактоферриновой активности (АЛфА) микроорганизмов. The objective of the proposed technical solution is to create a method for determining the antilactoferrin activity (ALFA) of microorganisms.
Для решения указанной задачи в заявляемом способе исследуемую культуру микроорганизмов выращивают в жидкой питательной среде, выросшие культуры обрабатывают хлороформом, отделяют супернатант и смешивают его с лактоферрином, параллельно с опытной готовят две контрольные пробы, при этом в контроль 1 вместо супернатанта исследуемых культур микроорганизмов добавляют жидкую питательную среду, а контроль 2 готовят из забуференного физиологического раствора и жидкой питательной среды, опытную и контрольные пробы инкубируют, после инкубации добавляют тест-культуру M.luteus ГИСК N 211001 и проводят первое измерение оптической плотности в опыте и контролях непосредственно по достижении режима термостатирования (37oC) и второе измерение через 18-24 часа инкубации, затем рассчитывают антилактоферриновую активность по формуле
где ΔOD - изменение оптической плотности в опыте между 1 и 2 измерениями;
ΔOD1- изменение оптической плотности в контроле 1 между 1 и 2 измерениями;
ΔOD2 - изменение оптической плотности в контроле 2 между 1 и 2 измерениями.To solve this problem, in the inventive method, the studied microorganism culture is grown in a liquid nutrient medium, the grown cultures are treated with chloroform, the supernatant is separated and mixed with lactoferrin, two control samples are prepared in parallel with the experimental one, and liquid nutrient is added to
where ΔOD is the change in optical density in the experiment between 1 and 2 measurements;
ΔOD 1 - change in optical density in
ΔOD 2 - change in optical density in control 2 between 1 and 2 measurements.
Аналогов изобретения в патентной и научно-технической литературе не обнаружено. Analogues of the invention in the patent and scientific literature are not found.
Авторами экспериментально установлено, что микроорганизмы независимо от их видового происхождения способны инактивировать бактерицидное действие лактоферрина. В результате проведенных исследований было сделано предположение о наличии у бактерий определенных механизмов защиты от влияния лактоферрина. Данное предположение было подтверждено проведенными экспериментами. Культуры E. coli, S.aureus, S.epidermidis выращивали на мясопептонном агаре при температуре 37oC в течение 24 часов, готовили их взвесь в концентрации 1 млрд/мл. Далее в равных объемах смешивали взвесь и раствор, содержащий 2 мг/мл (суббактериостатическая концентрация) лактоферрина, смесь инкубировали в течение 30 минут, центрифугировали при 3000 об/мин в течение 20 минут, получали бесклеточный супернатант, в котором с помощью микробиологического анализатора iEMS-MF (Labsystems, Финляндия) определяли остаток лактоферрина. Оказалось, что культура E.coli инактивировала (75.6 ± 5.3)% препарата, S. aureus - (68.8 ± 7.5)%, S.epidermidis - (54.6 ± 3.7)% лактоферрина.The authors experimentally established that microorganisms, regardless of their species origin, are able to inactivate the bactericidal effect of lactoferrin. As a result of the studies, it was suggested that bacteria have certain mechanisms of protection against the influence of lactoferrin. This assumption was confirmed by experiments. Cultures of E. coli, S.aureus, S.epidermidis were grown on meat and peptone agar at a temperature of 37 o C for 24 hours, they were prepared in suspension at a concentration of 1 billion / ml. Then, in equal volumes, a suspension and a solution containing 2 mg / ml (sub-bacteriostatic concentration) of lactoferrin were mixed, the mixture was incubated for 30 minutes, centrifuged at 3000 rpm for 20 minutes, a cell-free supernatant was obtained, in which using an iEMS microbiological analyzer MF (Labsystems, Finland) determined the lactoferrin residue. It turned out that the culture of E. coli inactivated (75.6 ± 5.3)% of the drug, S. aureus - (68.8 ± 7.5)%, S.epidermidis - (54.6 ± 3.7)% lactoferrin.
При разработке настоящего способа авторами были проведены исследования по выбору индикаторной культуры, позволяющей тестировать наличие или отсутствие в среде лактоферрина, поскольку для осуществления способа необходим высокочувствительный к лактоферрину штамм микроорганизма. When developing the present method, the authors conducted studies on the choice of indicator culture, which allows testing the presence or absence of lactoferrin in the medium, since a microorganism strain highly sensitive to lactoferrin is required to carry out the method.
Авторами с помощью анализа кривых роста различных видов микроорганизмов в среде с лактоферрином экспериментально отобрана тест-культура. Для этого взвесь суточных агаровых культур исследуемых микроорганизмов (106 КОЕ/мл; 50 мкл) и раствор лактоферрина в 0,01 М фосфатном буфере (2 мг/мл, 50 мкл) инокулировали в питательный бульон (300 мкл). Контролем служили пробы без лактоферрина (50 мкл 0,01М фосфатного буфера). Параметры роста (OD) определяли с помощью автоматизированной фотометрии на микробиологическом анализаторе iEMS-MF (Labsystems, Финляндия). По окончании инкубации в термостатируемом блоке ридера (через 18 часов) оценивали изменение оптической плотности в опытной пробе по сравнению с контролем (таблица).The authors, using the analysis of the growth curves of various types of microorganisms in a medium with lactoferrin, experimentally selected a test culture. For this, a suspension of daily agar cultures of the studied microorganisms (10 6 CFU / ml; 50 μl) and a solution of lactoferrin in 0.01 M phosphate buffer (2 mg / ml, 50 μl) were inoculated into nutrient broth (300 μl). Samples without lactoferrin (50 μl of 0.01 M phosphate buffer) served as a control. Growth parameters (OD) were determined using automated photometry using an iEMS-MF microbiological analyzer (Labsystems, Finland). At the end of incubation in a thermostatic reader unit (after 18 hours), the change in optical density in the experimental sample was evaluated compared to the control (table).
Таким образом, в результате проведенных исследований авторами в качестве тест-культуры был выбран штамм M.luteus, проявляющий наибольшую чувствительность к бактерицидному действию лактоферрина. Штамм депонирован в ГИСК им. Л.А.Тарасевича под регистрационным номером 211001 [12]. Thus, as a result of the studies, the authors selected the M.luteus strain as the test culture, which is most sensitive to the bactericidal effect of lactoferrin. The strain is deposited in the GISK them. L.A. Tarasevich under registration number 211001 [12].
Предлагаемый штамм M.luteus растет на простых питательных средах, клетки сферические, 0,5-3,5 мкм в диаметре, неподвижный, грамположительный, аэроб, образует каталазу, не сбраживает глюкозу. The proposed strain of M. luteus grows on simple nutrient media, the cells are spherical, 0.5-3.5 μm in diameter, motionless, gram-positive, aerobic, forms catalase, does not ferment glucose.
Для осуществления способа используется лактоферрин из коровьего молока, кристаллический, производства фирмы "Fluka" (Швейцария), степень чистоты препарата (по данным гель-электрофореза) более 75%, растворимость 10 мг/мл H2O, номер по каталогу 61323 [13].To implement the method, lactoferrin from cow's milk, crystalline, manufactured by Fluka (Switzerland) is used, the purity of the preparation (according to gel electrophoresis) is more than 75%, solubility 10 mg / ml H 2 O, catalog number 61323 [13] .
Способ осуществляется следующим образом. The method is as follows.
1) Исследуемые культуры микроорганизмов выращиваются в 3 мл жидкой питательной среды (для каждого вида микроорганизмов используется соответствующий тип питательной среды) при 37oC в течение 24-36 часов.1) The studied cultures of microorganisms are grown in 3 ml of liquid nutrient medium (for each type of microorganism the appropriate type of nutrient medium is used) at 37 o C for 24-36 hours.
2) Во все пробы добавляют 0,1 мл хлороформа, перемешивают и инкубируют при комнатной температуре в течение 40-60 минут, периодически встряхивая. 2) Add 0.1 ml of chloroform to all samples, mix and incubate at room temperature for 40-60 minutes, shaking occasionally.
3) Супернатант отделяют от бактериальных клеток центрифугированием в течение 20 минут при 3000 об/мин. 3) The supernatant is separated from the bacterial cells by centrifugation for 20 minutes at 3000 rpm.
4) На забуференном физиологическом растворе (Sigma, P4417. Состав: 0.01М фосфатный буфер, 0.0027М KCl, 0.137М NaCl, pH 7,4 при 25oC) готовят раствор лактоферрина с концентрацией 2,5 мг/мл.4) In a buffered saline solution (Sigma, P4417. Composition: 0.01 M phosphate buffer, 0.0027 M KCl, 0.137 M NaCl, pH 7.4 at 25 o C), a solution of lactoferrin with a concentration of 2.5 mg / ml is prepared.
5) Супернатант исследуемых культур микроорганизмов объемом 0,8 мл смешивают с 0,1 мл приготовленного раствора лактоферрина. 5) The supernatant of the studied cultures of microorganisms with a volume of 0.8 ml is mixed with 0.1 ml of the prepared solution of lactoferrin.
6) Параллельно с опытными готовят 2 контрольные пробы:
Контроль 1. К 0,1 мл лактоферрина добавляют 0,8 мл жидкой питательной среды. Контроль 2. К 0,1 мл забуференного физиологического раствора добавляют 0,8 мл жидкой питательной среды.6) In parallel with the experimental 2 control samples are prepared:
7) Инкубируют пробы в течение 2 часов при 37oC.7) Incubate samples for 2 hours at 37 o C.
8) После инкубации в опытные и контрольные пробы добавляют по 0,1 мл взвеси тест-культуры M.luteus ГИСК N 211001. Для этого 16-18-часовую агаровую культуру M.luteus смывают забуференным физиологическим раствором и готовят взвесь с оптической плотностью 0,160 при длине волны 450 нм. Полученную взвесь разводят в 10000 раз. 8) After incubation, 0.1 ml of suspension of the test culture M.luteus GISK N 211001 is added to the experimental and control samples. For this, a 16-18-hour agar culture of M.luteus is washed off with buffered saline and a suspension with an optical density of 0.160 is prepared at 450 nm wavelength. The resulting suspension is diluted 10,000 times.
9) Далее по 100 мкл опытной и контрольной проб инокулируют в лунки полистиролового планшета с 200 мкл питательного бульона. Планшет помещают в термостатируемый блок микробиологического анализатора iEMS-MF (Labsystems, Финляндия) и проводят первое измерение оптической плотности в опыте и контролях непосредственно по достижении режима термостатирования (37oC) и второе измерение через 18-24 часа инкубации (по достижении максимальной оптической плотности индикаторной культуры в соответствии с общепринятыми микробиологическими стандартами [14]), затем рассчитывают антилактоферриновую активность по формуле
где ΔOD - изменение оптической плотности в опыте между 1 и 2 измерениями;
ΔOD1 - изменение оптической плотности в контроле 1 между 1 и 2 измерениями;
ΔOD2 - изменение оптической плотности в контроле 2 между 1 и 2 измерениями.9) Next, 100 μl of the experimental and control samples are inoculated into the wells of a polystyrene tablet with 200 μl of nutrient broth. The tablet is placed in a temperature-controlled unit of the iEMS-MF microbiological analyzer (Labsystems, Finland) and the first measurement of optical density in the experiment and controls is carried out immediately after reaching the temperature control mode (37 o C) and the second measurement after 18-24 hours of incubation (when the maximum optical density is reached indicator culture in accordance with generally accepted microbiological standards [14]), then antilactoferrin activity is calculated by the formula
where ΔOD is the change in optical density in the experiment between 1 and 2 measurements;
ΔOD 1 - change in optical density in
ΔOD 2 - change in optical density in control 2 between 1 and 2 measurements.
Антилактоферриновая активность выражается в процентах (%) инактивации лактоферрина в опыте по сравнению с контролем. Antilactoferrin activity is expressed as a percentage (%) of inactivation of lactoferrin in the experiment compared with the control.
Примеры конкретного выполнения способа. Examples of specific performance of the method.
Пример 1. У больной К. с диагнозом "острый мастит" был выделен в монокультуре Staphylococcus aureus. Однако отсутствие гемолитической активности, а также антилизоцимной, "антиинтерфероновой" и антикомплементарной активности поставило под сомнение этиологическую роль данного микроорганизма в развитии воспалительного процесса. Для решения вопроса об этиологической значимости выделенного микроорганизма у золотистого стафилококка была определена способность к инактивации лактоферрина. Наличие подобного свойства даже в отсутствие иных факторов персистенции определяет возможность этиологического агента длительно находиться в организме и инициировать воспалительный процесс. Example 1. Patient K. with a diagnosis of acute mastitis was isolated in a monoculture of Staphylococcus aureus. However, the lack of hemolytic activity, as well as antilysocyme, "anti-interferon" and anti-complementary activity, cast doubt on the etiological role of this microorganism in the development of the inflammatory process. To address the etiological significance of the isolated microorganism in Staphylococcus aureus, the ability to inactivate lactoferrin was determined. The presence of such a property, even in the absence of other persistence factors, determines the ability of the etiological agent to remain in the body for a long time and initiate the inflammatory process.
Для достижения поставленной цели исследуемую культуру выращивали в мясопептонном бульоне при 37oC в течение 24 часов. В пробирки с выросшей культурой добавляли по 0,1 мл хлороформа, перемешивали и выдерживали в течение 40 минут. Супернатант отделяли от бактериальных клеток центрифугированием при 3000 об/мин в течение 20 минут. На забуференном физиологическом растворе готовили раствор лактоферрина с концентрацией 2,5 мг/мл. Супернатант исследуемой культуры объемом 0,8 мл смешивали с 0,1 мл приготовленного раствора лактоферрина. Параллельно готовили 2 контрольные пробы: а) контроль 1. К 0,1 мл лактоферрина в указанной выше концентрации добавляли 0,8 мл жидкой питательной среды. б) контроль 2. К 0,1 мл забуференного физиологического раствора добавляли 0,8 мл жидкой питательной среды. Все пробы инкубировали в течение 2 часов при 37oC. После инкубации в опытные и контрольные пробы добавляли по 0,1 мл взвеси тест-культуры M.luteus ГИСК N 211001. Для этого 16-18-часовую агаровую культуру M.luteus смывали забуференным физиологическим раствором и готовили взвесь с оптической плотностью 0,160 при длине волны 450 нм, полученную взвесь разводили в 10000 раз. Далее 100 мкл смеси инокулировали в лунки полистиролового планшета с 200 мкл питательного бульона. Планшет помещали в термостатируемый блок микробиологического анализатора iEMS-MF (Labsystems, Финляндия) и проводили первое измерение оптической плотности в опыте и контролях непосредственно по достижении режима термостатирования (37oC) и второе измерение через 18 часов инкубации, затем рассчитывали антилактоферриновую активность по формуле:
где 0,038 - изменение оптической плотности в опыте между 1 и 2 измерениями;
0,02 - изменение оптической плотности в контроле 1 между 1 и 2 измерениями;
0,075 - изменение оптической плотности в контроле 2 между 1 и 2 измерениями.To achieve this goal, the studied culture was grown in meat and peptone broth at 37 o C for 24 hours. 0.1 ml of chloroform was added to the tubes with the grown culture, mixed and kept for 40 minutes. The supernatant was separated from the bacterial cells by centrifugation at 3000 rpm for 20 minutes. A 2.5 mg / ml lactoferrin solution was prepared on buffered saline. The supernatant of the test culture of 0.8 ml was mixed with 0.1 ml of the prepared lactoferrin solution. In parallel, 2 control samples were prepared: a)
where 0,038 is the change in optical density in the experiment between 1 and 2 measurements;
0.02 - change in optical density in
0,075 - change in optical density in control 2 between 1 and 2 measurements.
Выявлено, что Staphylococcus aureus инактивировал 32,7% лактоферрина, т. е. его антилактоферриновая активность равна 32,7%. It was revealed that Staphylococcus aureus inactivated 32.7% of lactoferrin, i.e., its antilactoferrin activity was 32.7%.
У штамма Staphylococcus aureus методом индикаторных дисков установлена чувствительность к гентамицину, бензилпенициллину, эритромицину, мономицину, рифампицину. Курс антибиотикотерапи с использованием мономицина по 1 млн.ЕД 2 раза в день не привел к элиминации возбудителя и не сопровождался положительной динамикой клинических симптомов. В связи с этим было изучено влияние субингибиторных концентраций названных антибиотиков на антилактоферриновую активность S. aureus. Установлено, что мономицин и бензилпенициллин не оказывают на нее выраженного действия (что, очевидно, объясняет неэффективность использования мономицина в данном случае); эритромицин и рифампицин снижают антилактоферриновую активность незначительно, а гентамицин оказывает выраженное ингибирующее влияние: штамм стафилококка, выращенный в контакте с суббактериостатической концентрацией гентамицина, утрачивал способность к инактивации лактоферрина. Проведение курса антибиотикотерапии с использованием гентамицина как препарата, снижающего антилактоферриновую активность возбудителя, привело к клиническому выздоровлению. In the Staphylococcus aureus strain, sensitivity to gentamicin, benzylpenicillin, erythromycin, monomycin, rifampicin was established by the method of indicator discs. The course of antibiotic therapy using monomycin at 1 million units 2 times a day did not lead to the elimination of the pathogen and was not accompanied by positive dynamics of clinical symptoms. In this regard, the effect of sub-inhibitory concentrations of these antibiotics on the antilactoferrin activity of S. aureus was studied. It was established that monomycin and benzylpenicillin do not have a pronounced effect on it (which, obviously, explains the ineffectiveness of using monomycin in this case); erythromycin and rifampicin slightly reduce antilactoferrin activity, and gentamicin has a pronounced inhibitory effect: a staphylococcus strain grown in contact with a sub-bacteriostatic concentration of gentamicin lost its ability to inactivate lactoferrin. A course of antibiotic therapy using gentamicin as a drug that reduces the pathogen's antilactoferrin activity has led to clinical recovery.
Таким образом, выявление у S.aureus способности инактивировать лактоферрин позволило установить его этиологическую значимость, а изучение спектра чувствительности к антибиотикам и проведение целенаправленной антибиотикотерапии привело к элиминации возбудителя. Thus, the identification of S. aureus ability to inactivate lactoferrin made it possible to establish its etiological significance, and the study of the spectrum of sensitivity to antibiotics and targeted antibiotic therapy led to the elimination of the pathogen.
Пример 2. При обследовании 52 сотрудников родильного отделения медико-санитарной части АО "Оренбурггазпром" на стафилококковое бактерионосительство было выделено 52 штамма стафилококков. Поскольку основную опасность представляют бактерионосители резидентного типа, возникла необходимость в их дифференциации. Для этого у всех штаммов была определена способность к инактивации лактоферрина. Определение антилактоферриновой активности микроорганизмов осуществлено согласно примеру 1. В результате у 12 штаммов была выявлена антилактоферриновая активность в пределах от 1,8 до 25,4%, тогда как другие штаммы не имели этого признака. Двукратное повторное обследование данных пациентов с интервалом 10 дней и последующее фаготипирование подтвердило идентичность выделенных штаммов и позволило отнести их к резидентным, тогда как у остальных пациентов произошло замещение одного вида стафилококка на другой. Example 2. When examining 52 employees of the maternity ward of the medical unit of Orenburggazprom JSC, 52 strains of staphylococci were isolated for staphylococcal bacteriocarriers. Since the main danger is represented by resident-type bacterial carriers, the need arose for their differentiation. For this, the ability to inactivate lactoferrin was determined in all strains. The determination of the antilactoferrin activity of microorganisms was carried out according to Example 1. As a result, antilactoferrin activity was detected in 12 strains in the range from 1.8 to 25.4%, while other strains did not have this feature. A double repeated examination of these patients with an interval of 10 days and subsequent phagotyping confirmed the identity of the isolated strains and allowed them to be classified as resident, while in the remaining patients, one type of staphylococcus was replaced by another.
Санация резидентных бактерионосителей масляным раствором витамина А, снижающим антилактоферриновую активность стафилококков, оказалась положительной в 95% случаев, что явилось подтверждением значимости данного признака в развитии и поддержании стафилококкового бактерионосительства. Remediation of resident bacterial carriers with an oil solution of vitamin A, which reduces the antilactoferrin activity of staphylococci, turned out to be positive in 95% of cases, which was evidence of the importance of this trait in the development and maintenance of staphylococcal bacterial carriage.
Таким образом, использование предлагаемого способа позволяет выявить новое свойство микроорганизмов - антилактоферриновую активность, а как следствие, повысить точность диагностики и прогнозирования заболеваний микробной этиологии. Также заявляемый способ способствует выбору рациональной антибактериальной терапии, изучению механизмов персистенции микроорганизмов и формирования бактерионосительства. Thus, the use of the proposed method allows to identify a new property of microorganisms - antilactoferrin activity, and as a result, to improve the accuracy of diagnosis and prediction of diseases of microbial etiology. Also, the inventive method contributes to the selection of rational antibacterial therapy, the study of the mechanisms of persistence of microorganisms and the formation of bacteria.
СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ
1. Бухарин О.В., Усвяцов Б.Я. Бактерионосительство (медико-экологический аспект).- Екатеринбург; УрО РАН, 1996, - 208 с.LIST OF REFERENCES
1. Bukharin OV, Usvyatsov B.Ya. Carrier carrier (medical-ecological aspect) .- Ekaterinburg; UB RAS, 1996, - 208 s.
2. Бухарин О.В. Биомедицинские аспекты персистенции бактерий. // Журн. микробиол., 1994. - Приложение. - С. 4-13. 2. Bukharin OV Biomedical aspects of the persistence of bacteria. // Journal. microbiol., 1994. - Appendix. - S. 4-13.
3. RU 2120999 C1, МПК 6 С 12 Q 1/02, 1/04, 27.10.98. 3. RU 2120999 C1, IPC 6 C 12
4. RU 2126051 С1, МПК 6 С 12 Q 1/02, 10.02.99. 4. RU 2126051 C1, IPC 6 C 12
5. Соколов В.Ю. Антиинтерфероновая активность микроорганизмов. // Персистенция бактерий. / Под ред. О.В. Бухарина. - Куйбышев. 1990. - С. 83-93. 5. Sokolov V.Yu. Anti-interferon activity of microorganisms. // The persistence of bacteria. / Ed. O.V. Bukharin. - Kuibyshev. 1990. - S. 83-93.
6. Михайлова Е.А., Луда А.П., Бигеев М.И. Антииммуноглобулиновая активность бактерий. // Под ред. О.В.Бухарина. - Куйбышев, 1990, - 107 - 111 c. 6. Mikhailova E.A., Luda A.P., Bigeev M.I. Anti-immunoglobulin activity of bacteria. // Ed. O.V. Bukharina. - Kuibyshev, 1990, - 107 - 111 s.
7. RU 2010860 С1, МПК 6 С 12 Q 1/02, 1/04, 15.04.94. 7. RU 2010860 C1, IPC 6 C 12
8. Arnold R.R., Russell J.E., Champion W.I. et al. // Immunity. - 1982. - Vol. 35. - P. 792-799. 8. Arnold R.R., Russell J.E., Champion W.I. et al. // Immunity. - 1982. - Vol. 35. - P. 792-799.
9. Дворецкий Л. И. , Дидковский Н.А., Чарлыев Г. Изучение содержания лактоферрина в бронхиальном содержимом у больных хроническим бронхитом. // Здравоохранение Туркменистана. - 1985. - N 10. - С. 15-18. 9. Butler L. I., Didkovsky N. A., Charlyev G. Study of the content of lactoferrin in bronchial contents in patients with chronic bronchitis. // Health of Turkmenistan. - 1985. - N 10. - S. 15-18.
10. Broxmeyer H.E., De Sousa M., Smithyman A. // Blood. - 1980. - Vol. 55. - P. 324. 10. Broxmeyer H.E., De Sousa M., Smithyman A. // Blood. - 1980. - Vol. 55. - P. 324.
11. Bagby G., Bennett R. // Blood. - 1982. - Vol. 60. - P. 108-112. 11. Bagby G., Bennett R. // Blood. - 1982. - Vol. 60. - P. 108-112.
12. Каталог штаммов Всесоюзного музея патогенных бактерий. Вып. 1. - М., 1982. 12. Catalog of strains of the All-Union Museum of Pathogenic Bacteria. Vol. 1. - M., 1982.
13. Каталог фирмы "Sigma" (chemical company): Biochemicals organic compounds and diagnostic reagents. - 1996. - С. 222. 13. Catalog of the company "Sigma" (chemical company): Biochemicals organic compounds and diagnostic reagents. - 1996 .-- S. 222.
14. Справочник по микробиологическим и вирусологическим методам исследования. /М.О.Биргер.-М., 1992. - С.114. 14. Handbook of microbiological and virological research methods. / M.O. Birger .-M., 1992.- P.114.
Claims (1)
где ΔOD - изменение оптической плотности в опыте между 1 и 2 измерениями;
ΔOD1 - изменение оптической плотности в контроле 1 между 1 и 2 измерениями;
ΔOD2 - изменение оптической плотности в контроле 2 между 1 и 2 измерениями.A method for determining the antilactoferrin activity of microorganisms, namely, that the studied microorganism culture is grown in a liquid nutrient medium, the grown cultures are treated with chloroform, the supernatant is separated and mixed with lactoferrin, two control samples are prepared in parallel with the experimental one, while in control 1, instead of the supernatant of the studied cultures microorganisms add liquid nutrient medium, and control 2 is prepared from buffered saline and liquid nutrient medium, experimental and ntrolnye sample is incubated after incubation, culture test M. luteus GISCO N211001 and performed the first measurement of the optical density in the experiment and the control mode immediately after reaching thermostatting (37 o C) and a second measurement after 18 - 24 h incubation, then calculating activity antilactoferrin the formula
where ΔOD is the change in optical density in the experiment between 1 and 2 measurements;
ΔOD 1 - change in optical density in control 1 between 1 and 2 measurements;
ΔOD 2 - change in optical density in control 2 between 1 and 2 measurements.
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
RU99117578A RU2156807C2 (en) | 1999-08-16 | 1999-08-16 | Method of determination of antilactoferrin activity in microorganisms |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
RU99117578A RU2156807C2 (en) | 1999-08-16 | 1999-08-16 | Method of determination of antilactoferrin activity in microorganisms |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
RU99117578A RU99117578A (en) | 2000-02-10 |
RU2156807C2 true RU2156807C2 (en) | 2000-09-27 |
Family
ID=20223822
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
RU99117578A RU2156807C2 (en) | 1999-08-16 | 1999-08-16 | Method of determination of antilactoferrin activity in microorganisms |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
RU (1) | RU2156807C2 (en) |
Cited By (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
RU2487929C1 (en) * | 2012-03-07 | 2013-07-20 | Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего профессионального образования "Астраханский государственный университет" | Method to detect ability to persistence in staphylococcus aureus |
RU2602362C1 (en) * | 2015-09-30 | 2016-11-20 | Общество с ограниченной ответственностью "Пром-Би" | Method of treatment of purulent corneal ulcer |
-
1999
- 1999-08-16 RU RU99117578A patent/RU2156807C2/en active
Non-Patent Citations (1)
Title |
---|
Гольдман и др. Лактоферрин: свойства и перспективы биотехнологического производства. Биотехнология. - М.: 1998, N 4, с.3-16. Бухарин О.В. и др. Методы определения антилизоцимной активности микроорганизмов. Журнал микробиологии, эпидемиологии, эпидемиологии и иммунологии. - 1984, N 2, с.27 и 28. * |
Cited By (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
RU2487929C1 (en) * | 2012-03-07 | 2013-07-20 | Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего профессионального образования "Астраханский государственный университет" | Method to detect ability to persistence in staphylococcus aureus |
RU2602362C1 (en) * | 2015-09-30 | 2016-11-20 | Общество с ограниченной ответственностью "Пром-Би" | Method of treatment of purulent corneal ulcer |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
Cady et al. | Impedimetric screening for bacteriuria | |
IE69558B1 (en) | Device and method for enhanced recovery and detection of microbial growth in the presence of antimicrobial substances | |
Slade et al. | An in vitro collagen perfusion wound biofilm model; with applications for antimicrobial studies and microbial metabolomics | |
Merghni et al. | Adhesive properties and extracellular enzymatic activity of Staphylococcus aureus strains isolated from oral cavity | |
Manandhar et al. | Phenotypic and genotypic characterization of biofilm producing clinical coagulase negative staphylococci from Nepal and their antibiotic susceptibility pattern | |
Kim et al. | A simple colorimetric method for testing antimicrobial susceptibility of biofilmed bacteria | |
JP5615712B2 (en) | Method for removing antibiotics from blood culture samples | |
RU2156807C2 (en) | Method of determination of antilactoferrin activity in microorganisms | |
Castellani et al. | Fate of pathogenic bacteria in microcosms mimicking human body sites | |
Hegde et al. | Effect of exposure to hydrogen peroxide on the virulence of Escherichia coli | |
US20210318332A1 (en) | Direct detection of the active form of beta-lactam-hydrolysing enzymes by using mass spectrophotometry | |
US5759799A (en) | Marker for revealing contaminants and application method for performing an antibiogram carried out directly on a sample | |
CN100345977C (en) | Preparing method for cow mammitis staphylococcus culture fluid and its use | |
Al-Quraishi | The relationship between biofilm production and antibiotic sensitivity of (MRSA) Staphylococcus aureus | |
Rahmati et al. | Synthesis and evaluation of antimicrobial activities of Gold and ZnO nanoparticles on inhibiting the mexab-oprm efflux pump in pseudomonas aeruginosa isolates | |
Tortorello et al. | Rapid identification of Escherichia coli O157: H7 in bovine feces using the antibody-direct epifluorescent filter technique (Ab-DEFT) | |
RU2132879C1 (en) | Method of determining anticarnosine activity of microorganisms | |
Chhunju et al. | Biofilm Producing Pseudomonas aeruginosa in Patients with Lower Respiratory Tract Infections | |
RU2666257C1 (en) | Method for determining sensitivity of bacterial hemocultures to antibiotics | |
RU2120999C1 (en) | Method of determination of antiplatelet catione-protein activity of microorganisms | |
RU2245923C2 (en) | Method for determination of anti-lactoferrin activity in microorganisms | |
Salim et al. | Evaluation of Biofilm Production and Antibiotic Resistance Pattern Between Biofilm Producing and Non-biofilm Producing Isolates | |
Al-Asadi et al. | Isolation and identification of Multidrug-Resistant (MDR) bacteria from ophthalmic patients in some hospitals in Basrah | |
DeGirolami et al. | Evaluation of a direct fluorescent antibody staining method for rapid identification of members of the Bacteroides fragilis group | |
Maroff | Determination of the inhibitory activity of some biological extracts agaiast multi rrsistans antibiotic Staphylococcus specis which and isolated from different sources of infechtion |