RU2629335C1 - Method for diagnostics of infectious disease period caused by varicella zoster virus in children - Google Patents

Method for diagnostics of infectious disease period caused by varicella zoster virus in children Download PDF

Info

Publication number
RU2629335C1
RU2629335C1 RU2016114930A RU2016114930A RU2629335C1 RU 2629335 C1 RU2629335 C1 RU 2629335C1 RU 2016114930 A RU2016114930 A RU 2016114930A RU 2016114930 A RU2016114930 A RU 2016114930A RU 2629335 C1 RU2629335 C1 RU 2629335C1
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
minutes
solution
period
infection
zoster virus
Prior art date
Application number
RU2016114930A
Other languages
Russian (ru)
Inventor
Елена Александровна Мурина
Ольга Владимировна Голева
Елена Юрьевна Скрипченко
Зинаида Алексеевна Осипова
Original Assignee
Федеральное государственное бюджетное учреждение "Детский научно-клинический центр инфекционных болезней Федерального медико-биологического агентства" (ФГБУ ДНКЦИБ ФМБА РОССИИ)
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Федеральное государственное бюджетное учреждение "Детский научно-клинический центр инфекционных болезней Федерального медико-биологического агентства" (ФГБУ ДНКЦИБ ФМБА РОССИИ) filed Critical Федеральное государственное бюджетное учреждение "Детский научно-клинический центр инфекционных болезней Федерального медико-биологического агентства" (ФГБУ ДНКЦИБ ФМБА РОССИИ)
Priority to RU2016114930A priority Critical patent/RU2629335C1/en
Application granted granted Critical
Publication of RU2629335C1 publication Critical patent/RU2629335C1/en

Links

Classifications

    • GPHYSICS
    • G01MEASURING; TESTING
    • G01NINVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
    • G01N33/00Investigating or analysing materials by specific methods not covered by groups G01N1/00 - G01N31/00
    • G01N33/48Biological material, e.g. blood, urine; Haemocytometers
    • G01N33/50Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing
    • G01N33/53Immunoassay; Biospecific binding assay; Materials therefor

Landscapes

  • Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)

Abstract

FIELD: biotechnology.
SUBSTANCE: test serum is simultaneously added to the wells of two strips immobilized with a varicella zoster virus antigen, incubated for 50-55 minutes, then one strip is treated once with an aqueous solution of 6 M of urea for 15 minutes, after which both strips are washed and conjugated with specific monoclonal antibodies to human IgG antibodies, incubated for 30 minutes, stained after washing with an aqueous chromogen solution for 10-15 minutes at room temperature, the reaction is stopped with a solution of 0.5 M of sulfuric acid, optical density is determined with a spectrophotometer, the avidity index is calculated using the formula: avidity index (AI) = (optical density of the sample treated with a solution of 6 M of urea/optical density of the sample without treatment with a solution of 6 M of Urea)X100%, and with an AI level less than 45% and up to 50% an acute period is diagnosed, with AI more than 50% and less than 65% - an early past infection, with AI of 65% and more than 70% - the late disease period is diagnosed.
EFFECT: method is effective and informative for diagnostics of the period of infectious disease caused by the varicella zoster virus in children, used to establish acute infection, activation of chronic persistent infection, and high protective immunity, which is decisive for determination of disease etiology and choice of adequate therapeutic tactics.
3 tbl, 3 ex

Description

Изобретение относится к медицине, а именно к вирусологии, и может быть использовано для диагностики периода инфекционного процесса, вызванного вирусом ветряной оспы.The invention relates to medicine, namely to virology, and can be used to diagnose the period of the infectious process caused by chickenpox virus.

Ветряная оспа - это инфекционное заболевание, вызываемое вирусом varicella zoster, относящимся к семейству герпесвирусов альфа-типа и передающимся воздушно-капельным путем. Заболевание проявляется, в основном, папулезно-везикулярной сыпью на коже, повышением температуры, интоксикацией. Являясь нейротропным, вирус ветряной оспы может также поражать нервную систему и вызывать развитие тяжелых патологий. Значимость ветряной оспы важна в связи с возможным развитием хронической рецидивирующей формы инфекции - опоясывающего лишая, частота которого может достигать 60-70 человек на 100000 переболевших ветряной оспой. Особенно риску развития тяжелых форм и осложненного течения ветряной оспы подвергаются лица с Т-клеточным иммунодефицитным ссостоянием, взрослые, а также дети первого года жизни и дети старшего школьного возраста. Современный эпидемический процесс ветряной оспы характеризуется тенденцией «повзросления» инфекции. Увеличивается вероятность заболевания беременных и, следовательно, риск внутриутробного заражения новорожденных. Иммунологические предпосылки описанных возрастных особенностей клиники ветряной оспы изучены недостаточно. Эти современные наблюдения диктуют необходимость расширения лабораторных методов для углубленной диагностики периода инфекционных заболеваний, вызванных вирусом ветряной оспы, с целью прогнозирования тяжести и исходов заболевания, а также установления периода инфекционного процесса для проведения своевременной адресной терапии.Chicken pox is an infectious disease caused by the varicella zoster virus, which belongs to the alpha herpes virus family and is transmitted by airborne droplets. The disease is manifested mainly by papular-vesicular rash on the skin, fever, intoxication. Being neurotropic, chickenpox virus can also affect the nervous system and cause the development of severe pathologies. The importance of chickenpox is important in connection with the possible development of a chronic recurring form of infection - herpes zoster, the frequency of which can reach 60-70 people per 100,000 who have had chickenpox. Particularly at risk of developing severe forms and the complicated course of chickenpox are individuals with a T-cell immunodeficiency state, adults, as well as children of the first year of life and children of high school age. The current epidemic process of chickenpox is characterized by a tendency to "mature" infection. The likelihood of becoming pregnant and, therefore, the risk of intrauterine infection of the newborn increases. The immunological prerequisites for the described age-related features of the chickenpox clinic are not well understood. These modern observations dictate the need to expand laboratory methods for in-depth diagnosis of the period of infectious diseases caused by chickenpox virus, with the aim of predicting the severity and outcome of the disease, as well as establishing the period of the infectious process for timely targeted therapy.

В настоящее время известен способ диагностики вируса ветряной оспы, основанный на выявлении ДНК VZV в клинических образцах методом ПЦР с использованием синтетических олигонуклеотидов-праймеров, комплементарных участкам генов, кодирующих белки VZV (Изобретение RU №2385872 Синтетические олигонуклеотиды - праймеры, используемые для выявления ДНК вируса Varicella-Zoster Herpes человека). Данное изобретение позволяет обнаружить непосредственно сам вирус в биологическом материале больного, но не дает представления об ответной иммунной реакции организма и сроках инфицирования, а также возможности прогноза тяжести патологического процесса.Currently, there is a known method for the diagnosis of chickenpox virus, based on the detection of VZV DNA in clinical samples by PCR using synthetic oligonucleotides primers complementary to regions of genes encoding VZV proteins (Invention RU No. 2385872 Synthetic oligonucleotides are primers used to detect Varicella virus DNA -Zoster Human Herpes). This invention allows you to directly detect the virus itself in the biological material of the patient, but does not give an idea of the response of the body and the timing of infection, as well as the possibility of predicting the severity of the pathological process.

Известен «Метод определения авидности иммуноглобулина G к вирусу varicella-zoster в сыворотке и цереброспинальной жидкости», Kneitz R.-H. и др., 2004. Метод направлен на сравнение авидности IgG антител к вирусу варицелла-зостер вирус (VZV) в парных сыворотках крови и образцах цереброспинальной жидкости (ЦСЖ). Данная методика позволяет параллельно сопоставлять авидность иммуноглобулина G в сыворотке крови и ЦСЖ, служит для диагностики острой инфекции или ее исключения и не зависит от концентрации специфических IgG антител. Метод предложен в качестве диагностического средства для выявления интратекального синтеза антител при вирусном энцефалите, рассеянном склерозе и используется для оценки сопутствующего заболевания ветряной оспой при прогрессировании ВИЧ-инфекции.The famous "Method for determining the avidity of immunoglobulin G to varicella-zoster virus in serum and cerebrospinal fluid", Kneitz R.-H. et al., 2004. The method is aimed at comparing the avidity of IgG antibodies to varicella-zoster virus (VZV) in paired blood serum and cerebrospinal fluid (CSF) samples. This technique allows you to simultaneously compare the avidity of immunoglobulin G in blood serum and CSF, is used to diagnose acute infection or its exclusion and does not depend on the concentration of specific IgG antibodies. The method was proposed as a diagnostic tool for detecting intrathecal synthesis of antibodies in case of viral encephalitis, multiple sclerosis and is used to evaluate concomitant chickenpox disease with the progression of HIV infection.

Однако данный метод требует обязательного параллельного исследования сыворотки крови и ликвора, что не всегда целесообразно применять в рутинной практике для диагностики заболеваний, вызванных вирусом varicella zoster. Кроме того, к недостаткам этого метода можно отнести необходимость разведения исследуемого материала (сыворотки) в пропорции 1:231, что практически невозможно сделать в рутинной лабораторной практике ввиду необходимости использования дополнительных расходных материалов и выполнения манипуляций, увеличивающих временные затраты на проведение этого исследования, приводящих к удорожанию анализа. Также требуется дополнительное разведение коньюгата, увеличивающее время постановки реакции. Отметим, что при оценке полученных результатов описанного метода используется только одно пограничное значение ИА (<37%), указывающее на острую инфекцию, однако при обследовании детского контингента необходимо учитывать особенности иммунной системы и предполагать различные варианты иммунного ответа организма в соответствии с индивидуальными и возрастными особенностями ребенка.However, this method requires mandatory parallel studies of blood serum and cerebrospinal fluid, which is not always advisable to use in routine practice for the diagnosis of diseases caused by varicella zoster virus. In addition, the disadvantages of this method include the need to dilute the test material (serum) in a ratio of 1: 231, which is almost impossible to do in routine laboratory practice due to the need to use additional consumables and perform manipulations that increase the time spent on this study, leading to rise in price of analysis. Additional dilution of the conjugate is also required, which increases the reaction time. Note that when evaluating the results of the described method, only one borderline value of IA (<37%) is used, indicating acute infection, however, when examining the children contingent, it is necessary to take into account the characteristics of the immune system and assume various variants of the body's immune response in accordance with individual and age characteristics a child.

Наиболее близким способом для диагностики атипичных форм VZV-инфекции, возникшей вследствие реактивации вируса ветряной оспы и опоясывающего лишая является метод, основанный на анализе спонтанной продукции специфических антител мононуклеарами периферической крови (МПК), возникающей вследствие эндогенной реактивации вируса (Казанова А.С. и др. Новый метод диагностики инфекции, возникающей вследствие реактивации вируса ветряной оспы и опоясывающего лишая // Эпидемиология и вакцинопрофилактика. - 2012. - №4. - С. 57-60). Способ основан на анализе спонтанной продукции анти-VZV-IgG в культуре мононуклеаров периферической крови (МПК). Для этого первоначально мононуклеары выделяют из венозной гепаринизированой крови, затем культивировали в стерильных пробирках в питательной среде 48 часов. После определения жизнеспособности клеток проводили ингибирование синтеза белка в опытном образце МПК с помощью инкубации клеток в питательной среде с 30 минут с последующей промывкой и дополнительным тестом на жизнеспособность, а далее вновь культивировали в течение 48 часов одновременно с контрольным образцом, который продолжал изучаться без обработки циклогексимидом. Описанная методика достаточно трудоемка в связи с затратами, связанными с манипуляциями для выделения клеток крови и длительным процессом культивирования (4 суток), что не согласуется с понятием экспрессности диагностического подхода. Кроме того, учитывая постоянные проверки на жизнеспособность выделенных и культивируемых МПК возможны ошибки, связанные с точностью и информативностью получаемых результатов при конечном учете. Данную методику не возможно применять для рутинной диагностики в лабораториях, не предназначенных для ведения клеточных культур, в связи с отсутствием специальных условий и предназначенного для этого оборудования. Также отметим, что метод действительно позволяет диагностировать VZV-инфекцию, однако судить о тяжести процесса представляется затруднительным ввиду получения результатов, показывающих только интенсивность синтеза антител в ПМК, что может зависеть как от индивидуальных особенностей гуморального иммунного ответа, так и от вирусогенеза в организме обследуемого пациента. Таким образом, данный способ не обеспечивает точности и экспрессности диагностики.The closest method for diagnosing atypical forms of VZV infection resulting from reactivation of chickenpox virus and shingles is a method based on the analysis of spontaneous production of specific antibodies by peripheral blood mononuclear cells (MPC) arising from endogenous reactivation of the virus (Casanova A.S. et al. A new method for diagnosing an infection resulting from reactivation of chickenpox virus and shingles // Epidemiology and Vaccine Prevention. - 2012. - No. 4. - P. 57-60). The method is based on the analysis of spontaneous production of anti-VZV-IgG in a culture of peripheral blood mononuclear cells (MIC). To this end, mononuclear cells were initially isolated from venous heparinized blood, then cultured in sterile tubes in a culture medium for 48 hours. After determining the viability of the cells, protein synthesis was inhibited in the prototype IPC by incubating the cells in a nutrient medium for 30 minutes, followed by washing and an additional viability test, and then they were again cultured for 48 hours simultaneously with the control sample, which was continued to be studied without treatment with cycloheximide . The described technique is rather laborious due to the costs associated with the manipulations for the isolation of blood cells and a long cultivation process (4 days), which is not consistent with the concept of expressiveness of the diagnostic approach. In addition, given the constant checks on the viability of isolated and cultured MICs, errors are possible related to the accuracy and information content of the results obtained with final accounting. This technique is not possible to use for routine diagnostics in laboratories not intended for conducting cell cultures, due to the lack of special conditions and equipment intended for this. We also note that the method does make it possible to diagnose VZV infection, however, it is difficult to judge the severity of the process in view of obtaining results showing only the intensity of antibody synthesis in MVP, which may depend on both individual characteristics of the humoral immune response and virologesis in the patient’s body. . Thus, this method does not provide accuracy and expressness of diagnosis.

С целью устранения вышеуказанных недостатков авторы предлагают принципиально новый способ диагностики периода инфекционного заболевания, вызванного вирусом varicella zoster детей, технический результат, достигаемый в данном способе, заключается в повышении точности и экспрессности диагностики благодаря выявлению авидности IgG антител с расчетом цифровых показателей, характеризующих периоды заболеваний, вызванных вирусом varicella zoster.In order to eliminate the above disadvantages, the authors suggest a fundamentally new method for diagnosing the period of an infectious disease caused by the varicella zoster virus in children, the technical result achieved in this method is to increase the accuracy and expressness of diagnosis by detecting the avidity of IgG antibodies with the calculation of digital indicators characterizing periods of diseases, caused by varicella zoster virus.

Это достигается тем, что в иммуноферментном тесте исследуемую сыворотку одновременно вносят в лунки двух стрипов, иммобилизованных антигеном вируса varicella zoster, инкубируют в течение 50-55 минут, затем один стрип обрабатывают однократно водным раствором 6М мочевины в течение 15 минут, после чего оба стрипа промывают и вносят в них конъюгат специфических моноклональных антител к IgG антителам человека, инкубируют в течение 30 минут, после промывания окрашивают водным раствором хромогена 10-15 минут при комнатной температуре, реакцию останавливают раствором 0,5М серной кислоты, определяют оптическую плотность с помощью спектрофотометра и проводят расчет индекса авидности по формуле:This is achieved by the fact that in the enzyme immunoassay the test serum is simultaneously introduced into the wells of two strips immobilized with the varicella zoster virus antigen, incubated for 50-55 minutes, then one strip is treated once with an aqueous solution of 6M urea for 15 minutes, after which both strips are washed and add a conjugate of specific monoclonal antibodies to human IgG antibodies to them, incubate for 30 minutes, after washing, stain with an aqueous chromogen solution for 10-15 minutes at room temperature, stop the reaction a solution of 0.5 M sulfuric acid, determine the optical density using a spectrophotometer and calculate the avidity index by the formula:

Figure 00000001
Figure 00000001

и при уровне ИА менее 45% и до 50% диагностируют острый период, при более 50% ИА и менее 65% - раннюю паст-инфекцию, при ИА 65% и более 70% - поздний период заболевания.and with an IA level of less than 45% and up to 50%, an acute period is diagnosed, with more than 50% of IA and less than 65%, an early past infection, and with an IA of 65% and more than 70%, a late period of the disease.

Авторами было обнаружено, что увеличение времени инкубации до 50-55 минут, в отличие от 30 минут в стандартном иммуно-ферментном тесте, на стадии образования иммунных комплексов антител со специфическими белками VZV, адсорбированными на поверхности полистероловой лунки, привело к образованию более прочной связи и позволило воздействовать на иммунный комплекс детергентом в большей концентрации. Авторы впервые использовали 6М раствор мочевины в качестве детергента, обнаружив, что именно при данной концентрации и однократной экспозиции 15 минут происходит диссоциация связи антиген-антитело в лунке. Использование менее концентрированного раствора не позволяло полностью расщеплять слабоавидные иммунные комплексы, однако увеличение концентрации детергента приводило к полному разрыву комплексов между антителами и белками, и суммарные антитела удалялись при последующих промывках. Таким образом, меньшая концентрация мочевины не приводила к полному расщеплению низкоавидных связей, использование большей концентрации оказалось неэффекивным. Авторы, впервые используя водный раствор 6 М мочевины и проведя однократную промывку, обнаружили, что значительно уменьшается вероятность отслоения адсорбированных белков с поверхности лунок, а также усиливается действие детергента на иммунные комплексы.The authors found that increasing the incubation time to 50-55 minutes, in contrast to 30 minutes in the standard immuno-enzyme test, at the stage of formation of antibody antibody complexes with specific VZV proteins adsorbed on the surface of the polystyrene well, led to the formation of a stronger bond and allowed to affect the immune complex with a detergent in a higher concentration. The authors first used a 6M urea solution as a detergent, finding that it is at this concentration and a single exposure of 15 minutes that the antigen-antibody bond dissociates in the well. The use of a less concentrated solution did not allow complete breakdown of weakly-shaped immune complexes, however, an increase in the concentration of detergent led to a complete rupture of the complexes between antibodies and proteins, and the total antibodies were removed during subsequent washes. Thus, a lower concentration of urea did not lead to a complete cleavage of low-avidity bonds, and the use of a higher concentration turned out to be ineffective. The authors, using an aqueous solution of 6 M urea for the first time and washing once, found that the likelihood of delamination of adsorbed proteins from the surface of the wells is significantly reduced, and the effect of the detergent on immune complexes is enhanced.

Авторы, существенно сократив продолжительность проведения теста, сократив необходимое время контакта сыворотки с адсорбированными на поверхности антигенами VZV, сокращая стадии обработки детергентом и время экспозиции связавшихся иммунных комплексов с раствором коньюгата в течение 30 минут, неожиданно получили оптимальный результат, повысив экспрессность и точность выполнения анализа.The authors, having significantly reduced the duration of the test, reduced the necessary contact time of the serum with VZV antigens adsorbed on the surface, shortened the stages of detergent treatment and the exposure time of the bound immune complexes with the conjugate solution for 30 minutes, unexpectedly obtained the optimal result, increasing the expressivity and accuracy of the analysis.

Время выдержки с раствором хромогена в течение 10-15 при комнатной температуре получено экспериментальным путем и для данной модификации иммуно-ферментного метода является достаточным и наиболее оптимальным для получения конечного результата. В формуле расчета индекса авидности авторами использованы показатели оптической плотности образцов после обработки исследуемых проб сыворотки 6М раствором мочевины. Также предложена интерпретация расчетного значения индекса авидности с оценкой периода инфекционного заболевания, включающего как острый период, паст-инфекцию, так и высокий специфический протективный иммунитет, и активацию хронической персистирующей инфекции при возрастании ИА в динамике через 2 недели.The exposure time with a chromogen solution for 10-15 at room temperature was obtained experimentally and for this modification of the immuno-enzyme method is sufficient and most optimal to obtain the final result. In the formula for calculating the avidity index, the authors used indicators of the optical density of the samples after processing the studied serum samples with a 6M urea solution. An interpretation of the estimated avidity index with an estimate of the period of an infectious disease, including both the acute period, past infection, and high specific protective immunity, and the activation of chronic persistent infection with an increase in IA in dynamics after 2 weeks, is also proposed.

Предлагаемый способ осуществляется следующим образомThe proposed method is as follows

Для обеспечения проведения исследований по установлению авидности IgG антител к VZV может применяться стандартное оборудование для вирусологических лабораторий и лабораторий, проводящих иммуноферментный анализ (ИФА).To ensure studies to establish the avidity of IgG antibodies to VZV, standard equipment can be used for virology laboratories and enzyme immunoassay laboratories (ELISA).

Авидность антител класса IgG к VZV определялась с использованием наборов реагентов для иммуноферментного выявления иммуноглобулинов класса IgG, основанного на твердофазном непрямом иммуноферментном анализе с использованием очищенного рекомбинантного антигена varicella zoster.The avidity of antibodies of the IgG class to VZV was determined using reagent kits for enzyme immunoassay for the detection of IgG immunoglobulins based on the solid-phase indirect enzyme-linked immunosorbent assay using purified recombinant varicella zoster antigen.

Принцип определения авидности антител заключался в обнаружении антител, способных разрушать связь с антигеном VZV при обработке образовавшегося комплекса детергентом - 6М раствором мочевины. При сравнении показателя оптической плотности раствора, подвергшегося воздействию детергента, и с таковым без воздействия детергента рассчитывалось значение снижения экстинции как показателя степени зрелости (авидности) антител.The principle of determining the avidity of antibodies was to detect antibodies that could break the bond with the VZV antigen when the resulting complex was treated with a detergent - 6M urea solution. When comparing the optical density of the solution exposed to the detergent, and with that without the detergent, the extinction value was calculated as an indicator of the maturity (avidity) of the antibodies.

ИФА проводился по следующей схеме:ELISA was carried out according to the following scheme:

1. Связывание антител. Первые лунки двух стрипов оставлялись незаполненными и рассматривались как контроль субстрата, во все остальные вносилось по 90 мкл раствора для разведения сыворотки (РРС) и по 10 мкл исследуемой сыворотки, предварительно разведенной раствором для предварительного разведения (РПРС) с целью получения конечного разведения 1:100. Одни и те же исследуемые сыворотки вносились одновременно в следующие за контрольными лунки параллельно в два ряда. Планшет инкубировался при температуре 37°С в течение 50-55 мин во влажной камере. После инкубации раствор удалялся и один стрип промывался однократно 6 М раствором мочевины с экспозицией 15 минут, затем 3 раза раствором фосфатно-солевого буфера с твином (ФСБ-Т), а второй стрип обрабатывался ФСБ-Т, затем также промывался 3 раза, как и опытный стрип.1. Binding of antibodies. The first wells of the two strips were left empty and were considered as a control of the substrate, 90 μl of serum dilution solution (PPC) and 10 μl of test serum pre-diluted with pre-dilution solution (MPS) to obtain a final dilution of 1: 100 were added to all the rest . The same test sera were introduced simultaneously in two rows following the control wells in parallel. The plate was incubated at a temperature of 37 ° C for 50-55 min in a humid chamber. After incubation, the solution was removed and one strip was washed once with a 6 M urea solution with an exposure of 15 minutes, then 3 times with a solution of phosphate-saline buffer with tween (FSB-T), and the second strip was treated with FSB-T, then it was also washed 3 times, as well as experienced strip.

2. Внесение конъюгата. Во все лунки, кроме лунки для контроля субстрата, добавлялось по 100 мкл рабочего раствора конъюгата - специфических моноклональных антител к IgG человека с пероксидазой хрена. Планшет инкубировался при температуре 37°С в течение 30 минут. После инкубации раствор из лунок удалялся и промывался 5-кратно раствором ФСБ-Т.2. The introduction of the conjugate. 100 μl of the working solution of the conjugate — specific monoclonal antibodies to human IgG with horseradish peroxidase — was added to all wells, except for the substrate control. The plate was incubated at 37 ° C for 30 minutes. After incubation, the solution from the wells was removed and washed 5 times with FSB-T solution.

3. Проведение реакции взаимодействия с субстратом. Во все лунки вносилось по 100 мкл 0,05% водного раствора ТМБ. Планшет выдерживался в темноте при комнатной температуре в течение 15 минут. Спустя указанное время реакция останавливалась внесением 100 мкл 0,5М раствора серной кислоты.3. The reaction of interaction with the substrate. 100 μl of a 0.05% TMB aqueous solution was added to all wells. The tablet was kept in the dark at room temperature for 15 minutes. After the indicated time, the reaction was stopped by adding 100 μl of a 0.5 M sulfuric acid solution.

4. Учет результатов ИФА и расчет индекса авидности (ИА) антител. Измерение оптической плотности (ОП) проводился с помощью спектрофотометра в режиме: основной фильтр - 450 нм, референс-фильтр - 620 нм, не позднее, чем через 10 минут после остановки реакции.4. Accounting for the results of ELISA and calculation of the avidity index (IA) of antibodies. The optical density (OD) was measured using a spectrophotometer in the following mode: main filter - 450 nm, reference filter - 620 nm, no later than 10 minutes after the reaction was stopped.

Расчет ИА антител проводился по формуле:Calculation of IA antibodies was carried out according to the formula:

Figure 00000002
Figure 00000002

и при уровне ИА менее 45% и до 50% диагностируют острый период, при более 50% ИА и менее 65% - раннюю паст-инфекцию, при ИА 65% и более 70% - поздний период заболевания, характеризующийся как высоким специфическим протективным иммунитетом, так и возможной активацией хронической персистирующей инфекции при возрастании ИА в динамике через 2 недели.and with an IA level of less than 45% and up to 50%, an acute period is diagnosed, with more than 50% of IA and less than 65% - an early past infection, with IA of 65% and more than 70% - a late period of the disease, characterized as a high specific protective immunity, and the possible activation of chronic persistent infection with an increase in IA in dynamics after 2 weeks.

Способ диагностики периода инфекционного заболевания, вызванного вирусом varicella zoster у детей может быть подтвержден следующими примерами:A method for diagnosing a period of an infectious disease caused by varicella zoster virus in children can be confirmed by the following examples:

Пример 1Example 1

Для выявления периода инфицирования определялся индекс авидности антител класса IgG к вирусу VZV у 15 детей в возрасте от 1 года до 14 лет, в момент от 1 до 5 дней после инфицирования вирусом ветряной оспы и проходящих лечение в клинике ФГБУ НИИДИ ФМБА России. В сыворотках крови детей выявлялись антитела IgG к VZV стандартным методом иммуно-ферментного анализа (ИФА) с использованием коммерческих тест-систем. В Таблице 1 представлено определение периода инфекционного процесса, вызванного VZV у детей.To identify the period of infection, the avidity index of IgG class antibodies to VZV virus was determined in 15 children aged 1 year to 14 years, at the time from 1 to 5 days after chickenpox virus infection and undergoing treatment at the clinic of the Federal State Budget Scientific Research Institute of Biomedical Medicine of Russia. IgG antibodies to VZV were detected in the blood serum of children by the standard method of enzyme-linked immunosorbent assay (ELISA) using commercial test systems. Table 1 presents the definition of the period of the infectious process caused by VZV in children.

Figure 00000003
Figure 00000003

* Цифровой уровень антител указан в единицах оптической плотности* The digital level of antibodies is indicated in units of optical density

У 14 детей (86,7%) в сыворотке были обнаружены специфические IgG антитела с низкой авидностью (показатели авидности не превышали показателей 50, которые констатировали раннюю фазу заболевания ветряной оспой. У одного больного (№3 - пятый день заболевания) определялся поздний период инфекции, и пациент (№8 - четвертый день заболевания) была обнаружена ранняя паст-инфекция. In 14 children (86.7%), specific IgG antibodies with low avidity were detected in serum (avidity did not exceed 50, which noted the early phase of the disease with chicken pox. In one patient (No. 3 - the fifth day of the disease), a late period of infection was determined , and the patient (No. 8 — the fourth day of illness) was diagnosed with an early paste infection.

Пример 2Example 2

В клинике НИИДИ на отделение нейроинфекций и органической патологии нервной системы был госпитализирован больной Ш.С., 12 лет, с диагнозом ветряночный энцефалит на 10 сутки после высыпаний. Диагноз был подтвержден клинико-ликворологическими данными. При обследовании биологического материала (кровь, ликвор, мазок из ротоглотки) получены следующие результаты, представленные в Таблице 2.At the NIIIDI Clinic, a patient S.S., 12 years old, was hospitalized with the diagnosis of chickenpox encephalitis on the 10th day after the rash to the department of neuroinfections and organic pathology of the nervous system. The diagnosis was confirmed by clinical and liquorological data. When examining biological material (blood, cerebrospinal fluid, oropharyngeal swab), the following results are obtained, presented in Table 2.

ГЩР ликвора на ДНК VZV - положительно; ПЦР крови на ДНК ЦМВ - отрицательно; ПЦР крови на ДНК ВГЧ 6 - отрицательно; ПЦР мочи на ДНК ЦМВ - отрицательно; ИЦХ исследования мазка ротоглотки на ЦМВ - отрицательно.GSR of CSF on VZV DNA - positive; PCR of blood for CMV DNA - negative; PCR of blood for HHV DNA 6 - negative; PCR of urine for CMV DNA - negative; ICC studies of smear of the oropharynx on CMV - negative.

Figure 00000004
Figure 00000004

* Антитела определялись методом ИФА. Цифровой уровень антител указан в единицах оптической плотности* Antibodies were determined by ELISA. The digital level of antibodies is indicated in units of optical density

Лабораторный диагноз: ветряночный энцефалит, ранняя паст-инфекция.Laboratory diagnosis: chickenpox encephalitis, early past infection.

Пример 3Example 3

В клинике НИИДИ на отделении нейроинфекций находилась больная, Ф.Ю., 5 лет, с диагнозом вирусная инфекция неясной этиологии, подозрение на герпесвирусную инфекцию. При вирусологическом обследовании сыворотки крови больного на группу герпесвирусов методом ИФА были получены следующие результаты, представленные в таблице 3.A patient, F.Yu., 5 years old, was diagnosed with a diagnosis of a viral infection of unknown etiology and suspected herpesvirus infection in the NIIDI clinic at the neuroinfection department. When virological examination of the patient's blood serum for a group of herpes viruses by ELISA, the following results were obtained, are presented in table 3.

Figure 00000005
Figure 00000005

* Цифровой уровень антител указан в единицах оптической плотности* The digital level of antibodies is indicated in units of optical density

Лабораторный диагноз: Герпетическая инфекция, этиологически связанная с ВПГ1, отсутствие заболевания, вызванного вирусом VZVLaboratory diagnosis: Herpetic infection etiologically related to HSV1, absence of disease caused by VZV virus

Таким образом, авторами предложен эффективный и информативный способ диагностики периода инфекционного заболевания, вызванного вирусом varicella zoster у детей, с помощью которого возможно устанавливать острую инфекцию, активацию хронической персистирующей инфекции, а также высокий протективный иммунитет, что оказывается решающим фактором при установлении этиологии заболевания и выборе адекватной терапевтической тактики.Thus, the authors proposed an effective and informative method for diagnosing the period of an infectious disease caused by the varicella zoster virus in children, with the help of which it is possible to establish acute infection, activation of chronic persistent infection, as well as high protective immunity, which turns out to be a decisive factor in establishing the etiology of the disease and choosing adequate therapeutic tactics.

Claims (3)

Способ диагностики периода инфекционного заболевания, вызванного вирусом varicella zoster у детей, путем определения антител в иммуноферментном тесте, отличающийся тем, что исследуемую сыворотку одновременно вносят в лунки двух стрипов, иммобилизованных антигеном вируса varicella zoster, инкубируют в течение 50-55 минут, затем один стрип обрабатывают однократно водным раствором 6 М мочевины в течение 15 минут, после чего оба стрипа промывают и вносят в них конъюгат специфических моноклональных антител к IgG антителам человека, инкубируют в течение 30 минут, после промывания окрашивают водным раствором хромогена 10-15 минут при комнатной температуре, реакцию останавливают раствором 0,5 М серной кислоты, определяют оптическую плотность с помощью спектрофотометра, проводят расчет индекса авидности по формуле:A method for diagnosing a period of an infectious disease caused by varicella zoster virus in children by determining antibodies in an enzyme immunoassay, characterized in that the test serum is simultaneously introduced into the wells of two strips immobilized with a varicella zoster virus antigen, incubated for 50-55 minutes, then one strip treated once with an aqueous solution of 6 M urea for 15 minutes, after which both strips are washed and a conjugate of specific monoclonal antibodies to human IgG antibodies is introduced into them, incubated for 30 minutes, after washing, stain with an aqueous chromogen solution for 10-15 minutes at room temperature, stop the reaction with a solution of 0.5 M sulfuric acid, determine the optical density using a spectrophotometer, calculate the avidity index by the formula:
Figure 00000006
Figure 00000006
и при уровне ИА менее 45% и до 50% диагностируют острый период, при более 50% ИА и менее 65% - раннюю паст-инфекцию, при ИА 65% и более 70% - поздний период заболевания.and with an IA level of less than 45% and up to 50%, an acute period is diagnosed, with more than 50% of IA and less than 65%, an early past infection, and with an IA of 65% and more than 70%, a late period of the disease.
RU2016114930A 2016-04-18 2016-04-18 Method for diagnostics of infectious disease period caused by varicella zoster virus in children RU2629335C1 (en)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2016114930A RU2629335C1 (en) 2016-04-18 2016-04-18 Method for diagnostics of infectious disease period caused by varicella zoster virus in children

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2016114930A RU2629335C1 (en) 2016-04-18 2016-04-18 Method for diagnostics of infectious disease period caused by varicella zoster virus in children

Publications (1)

Publication Number Publication Date
RU2629335C1 true RU2629335C1 (en) 2017-08-28

Family

ID=59797739

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
RU2016114930A RU2629335C1 (en) 2016-04-18 2016-04-18 Method for diagnostics of infectious disease period caused by varicella zoster virus in children

Country Status (1)

Country Link
RU (1) RU2629335C1 (en)

Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2385872C1 (en) * 2008-09-29 2010-04-10 Федеральное государственное учреждение науки "Государственный научный центр вирусологии и биотехнологии "Вектор" Федеральной службы по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека (ФГУН ГНЦ ВБ "Вектор" Роспотребнадзора) SYNTHETIC OLIGONUCLEOTIDE PRIMERS USED FOR DETECTING DNA OF HUMAN Varicella-Zoster Herpes VIRUS

Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2385872C1 (en) * 2008-09-29 2010-04-10 Федеральное государственное учреждение науки "Государственный научный центр вирусологии и биотехнологии "Вектор" Федеральной службы по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека (ФГУН ГНЦ ВБ "Вектор" Роспотребнадзора) SYNTHETIC OLIGONUCLEOTIDE PRIMERS USED FOR DETECTING DNA OF HUMAN Varicella-Zoster Herpes VIRUS

Non-Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
FARD AH, PAM JV. Designation of an in-house ELISA for detection of VZV IgG and determination of antibody avidity by use of diethylamine. Pak J Biol Sci. 2007 Oct 1; 10(19): 3306-13. PMID: 19090145. ЕРМОЛЕНКО М. В. Серологический мониторинг в системе эпидемиологического надзора за ветряной оспой. Диссер. к.м.н. Москва, 2014, 103с. Казанова А.С. и др. Новый метод диагностики инфекции, возникающей вследствие реактивации вируса ветряной оспы и опоясывающего лишая // Эпидемиология и вакцинопрофилактика. 2012. N4. С. 57-60. *

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Mendelson et al. Laboratory assessment and diagnosis of congenital viral infections: Rubella, cytomegalovirus (CMV), varicella-zoster virus (VZV), herpes simplex virus (HSV), parvovirus B19 and human immunodeficiency virus (HIV)
Ross et al. Congenital cytomegalovirus infection: outcome and diagnosis
CN108513586A (en) Pathogenic organisms marker and application thereof
JP6707181B2 (en) Kits or packages for identifying pregnant women at risk of preterm birth and use of such kits or packages
WO2021255479A1 (en) Aptamers against sars-cov-2
CA2725518A1 (en) Trigger assay for differentiating between rheumatic and non-rheumatic disorders
CN104726606B (en) A kind of enzyme-linked double cross method detection the pathogenic microorganism examination methods of PCR
US10191048B2 (en) Fluorometric immunoassay for detection of anti-dsDNA antibodies
CN110108889B (en) Kit for diagnosing IgA nephropathy and application thereof
WO2016175406A1 (en) Method for diagnosing sjogren&#39;s syndrome by using antibody reaction test specific to sjogren&#39;s syndrome
US6828113B2 (en) IgM antibodies to the 70 kDa heat shock protein as a marker for cytomegalovirus infection
RU2629335C1 (en) Method for diagnostics of infectious disease period caused by varicella zoster virus in children
Serin et al. Biosensing strategies (approaches) for diagnosis and monitoring of multiple sclerosis
EP3359690A1 (en) METHODS AND KITS FOR PREDICTION AND DIAGNOSIS OF HUMAN CYTOMEGALOVIRUS CONGENITAL (hCMV) TRANSMISSION
CA2576295C (en) Microarray-mediated diagnosis of herpes virus infection by monitoring host&#39;s differential gene expression upon injection
MT et al. Herpes simplex virus infections and current methods for laboratory detection
Liu et al. Serum proteomics with SELDI‐TOF‐MS in congenital human cytomegalovirus hepatitis
RU2596794C1 (en) Method of determining avidity of immunoglobulin g to herpes virus type 6
RU2641609C1 (en) Method for determination of indications for antiherpetic therapy in case of hhv-6 infection in children with acute respiratory diseases
Pennap et al. Seroprevalence of Herpes simplex virus type 2 (HSV-2) infection among HIV patients accessing healthcare at Federal Medical Centre, Keffi, Nigeria
JP5456056B2 (en) Detection of IFI16 in body fluids
Thomas Understanding and Diagnosing Herpes Simplex Virus
RU2706126C1 (en) Diagnostic technique for the combined infection in children with acute respiratory infections
RU2400756C2 (en) Method of diagnosing hypervirus eye diseases
Al-Khafaji et al. Seroprevalence of Cytomegolovirus infection among aborted women in Thi-Qar Governorate