RU2626737C2 - Способ определения микоценозов фитоценозов нектаро-пыльценосной направленности по пыльцевой обножке, собранной apis mellifera - Google Patents
Способ определения микоценозов фитоценозов нектаро-пыльценосной направленности по пыльцевой обножке, собранной apis mellifera Download PDFInfo
- Publication number
- RU2626737C2 RU2626737C2 RU2015132449A RU2015132449A RU2626737C2 RU 2626737 C2 RU2626737 C2 RU 2626737C2 RU 2015132449 A RU2015132449 A RU 2015132449A RU 2015132449 A RU2015132449 A RU 2015132449A RU 2626737 C2 RU2626737 C2 RU 2626737C2
- Authority
- RU
- Russia
- Prior art keywords
- pollen
- nectar
- collected
- mycocenoses
- polliniferous
- Prior art date
Links
- 238000000034 method Methods 0.000 title claims abstract description 9
- 241000256844 Apis mellifera Species 0.000 title claims abstract description 7
- 239000008188 pellet Substances 0.000 title abstract 4
- 238000010835 comparative analysis Methods 0.000 claims abstract 2
- 238000012543 microbiological analysis Methods 0.000 claims abstract 2
- 239000000428 dust Substances 0.000 claims description 4
- 230000000694 effects Effects 0.000 abstract 1
- 239000000126 substance Substances 0.000 abstract 1
- 241000196324 Embryophyta Species 0.000 description 20
- 239000002689 soil Substances 0.000 description 8
- 241000894007 species Species 0.000 description 8
- 241000256837 Apidae Species 0.000 description 7
- 230000015572 biosynthetic process Effects 0.000 description 5
- 210000000056 organ Anatomy 0.000 description 5
- 241000736262 Microbiota Species 0.000 description 4
- 240000004808 Saccharomyces cerevisiae Species 0.000 description 3
- 238000011109 contamination Methods 0.000 description 3
- 244000005706 microflora Species 0.000 description 3
- 239000000203 mixture Substances 0.000 description 3
- 241000233866 Fungi Species 0.000 description 2
- 240000005323 Hoya carnosa Species 0.000 description 2
- 241000257303 Hymenoptera Species 0.000 description 2
- 235000010654 Melissa officinalis Nutrition 0.000 description 2
- 241001507806 Penicillium thomii Species 0.000 description 2
- 230000002538 fungal effect Effects 0.000 description 2
- 230000000813 microbial effect Effects 0.000 description 2
- 238000011160 research Methods 0.000 description 2
- 239000000758 substrate Substances 0.000 description 2
- 241000235389 Absidia Species 0.000 description 1
- 235000001674 Agaricus brunnescens Nutrition 0.000 description 1
- 241000228212 Aspergillus Species 0.000 description 1
- 241000131966 Aspergillus niveus Species 0.000 description 1
- 241000228230 Aspergillus parasiticus Species 0.000 description 1
- 208000034656 Contusions Diseases 0.000 description 1
- 241000144128 Lichtheimia corymbifera Species 0.000 description 1
- 241001480037 Microsporum Species 0.000 description 1
- 241000235395 Mucor Species 0.000 description 1
- 241000235526 Mucor racemosus Species 0.000 description 1
- 241000293032 Mucor ramosissimus Species 0.000 description 1
- 241000699670 Mus sp. Species 0.000 description 1
- 208000031888 Mycoses Diseases 0.000 description 1
- 241000228143 Penicillium Species 0.000 description 1
- 241000228129 Penicillium janthinellum Species 0.000 description 1
- 241000036267 Penicillium jensenii Species 0.000 description 1
- 208000034809 Product contamination Diseases 0.000 description 1
- 241000235527 Rhizopus Species 0.000 description 1
- 239000000443 aerosol Substances 0.000 description 1
- 239000003570 air Substances 0.000 description 1
- 230000000172 allergic effect Effects 0.000 description 1
- 238000013459 approach Methods 0.000 description 1
- 208000010668 atopic eczema Diseases 0.000 description 1
- 230000001580 bacterial effect Effects 0.000 description 1
- QFFVPLLCYGOFPU-UHFFFAOYSA-N barium chromate Chemical compound [Ba+2].[O-][Cr]([O-])(=O)=O QFFVPLLCYGOFPU-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 229940038481 bee pollen Drugs 0.000 description 1
- 230000003115 biocidal effect Effects 0.000 description 1
- 208000034526 bruise Diseases 0.000 description 1
- 239000000969 carrier Substances 0.000 description 1
- 230000021615 conjugation Effects 0.000 description 1
- 239000000356 contaminant Substances 0.000 description 1
- 238000011161 development Methods 0.000 description 1
- 230000007613 environmental effect Effects 0.000 description 1
- 238000003912 environmental pollution Methods 0.000 description 1
- 230000002349 favourable effect Effects 0.000 description 1
- 210000004907 gland Anatomy 0.000 description 1
- 235000012907 honey Nutrition 0.000 description 1
- 230000003993 interaction Effects 0.000 description 1
- 238000004519 manufacturing process Methods 0.000 description 1
- 230000002906 microbiologic effect Effects 0.000 description 1
- 244000005700 microbiome Species 0.000 description 1
- 238000012544 monitoring process Methods 0.000 description 1
- 238000009304 pastoral farming Methods 0.000 description 1
- 230000008506 pathogenesis Effects 0.000 description 1
- 230000008659 phytopathology Effects 0.000 description 1
- 238000012545 processing Methods 0.000 description 1
- 230000007704 transition Effects 0.000 description 1
- 230000001228 trophic effect Effects 0.000 description 1
- XLYOFNOQVPJJNP-UHFFFAOYSA-N water Substances O XLYOFNOQVPJJNP-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
Images
Classifications
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A01—AGRICULTURE; FORESTRY; ANIMAL HUSBANDRY; HUNTING; TRAPPING; FISHING
- A01G—HORTICULTURE; CULTIVATION OF VEGETABLES, FLOWERS, RICE, FRUIT, VINES, HOPS OR SEAWEED; FORESTRY; WATERING
- A01G7/00—Botany in general
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A01—AGRICULTURE; FORESTRY; ANIMAL HUSBANDRY; HUNTING; TRAPPING; FISHING
- A01K—ANIMAL HUSBANDRY; AVICULTURE; APICULTURE; PISCICULTURE; FISHING; REARING OR BREEDING ANIMALS, NOT OTHERWISE PROVIDED FOR; NEW BREEDS OF ANIMALS
- A01K59/00—Honey collection
Landscapes
- Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
- Environmental Sciences (AREA)
- Biodiversity & Conservation Biology (AREA)
- Animal Husbandry (AREA)
- Botany (AREA)
- Ecology (AREA)
- Forests & Forestry (AREA)
- Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)
- Breeding Of Plants And Reproduction By Means Of Culturing (AREA)
Abstract
Изобретение относится к области сельского хозяйства, в частности к пчеловодству, а также к экологии. Способ включает механическую разборку пыльцевой обножки, собранной Apis mellifera, по цвету и установление фитоценозов. Проводят микробиологический анализ пыльцевой обножки, определяют микоценозы, проводят сравнительный анализ микоценозов, соответствующих цвету пыльцевой обножки, то есть ботаническому происхождению. Способ позволяет выявлять микоценозы фитоценозов нектаро-пыльценосной направленности. 3 ил., 3 табл.
Description
Изобретение относится к экологии (изменение микоценозов фитоценозов нектаро-пыльценосной направленности, в зависимости от самих растений (фитонцидные свойства), районов сбора (природно-климатические особенности) и других экологических факторов. Способ относится к получению информации о микоценозах сообществ нектаро-пыльценосных растений, произрастающих в местах расположения пасек.
В настоящее время, наиболее разработанным и успешно реализуемым подходом в изучении природных экосистем, основанном на микологической индикации, следует признать использование почвенных микоценозов (Марфенина, 2005). Для почвенной микобиоты разработаны уровни ее состояния, характеризующие переход от благоприятных до неблагополучных условий существования под влиянием антропогенных факторов (Зачиняева, 2003). Если принять во внимание роль почв в качестве средообразующего фактора формирования не только почвенного микоценоза, но и микобиоты каждого из компонентов биогеоценоза, то логичным будет предположение о влиянии состояния природных экосистем на состав и изменения микобиоты растительных сообществ, конкретно растений и продуктов, получаемых с них медоносными пчелами.
Патентов и другой научно-технической информации в данной области исследований не обнаружено. В литературе встречаются фрагментарные исследования в данной области. Рассматриваемый ранее Осинцевой (2007), способ мониторинга микробиоценозов по оценке микробиоты пыльцевой обножки медоносных пчел, некорректен, «микробиота пыльцевой обножки» не может рассматриваться как признак экологического состояния, так как она отражает лишь характеристику используемого средства (пыльцевой обножки), так как микробиота является обобщенным показателем загрязнения продукта на всех этапах его получения. Необходимо признать в формировании микроценозов влияние человека, как основного контаминанта бактериальной флорой (в период сбора, обработки, хранения и т.д.). В то время как на формирование микобиоты пыльцевой обножки оказывают влияние микоценозы места расположения пасеки (микромицеты почвы, воздуха, растений).
Предлагаемый нами способ позволяет изучит контаминацию нектаро-пыльценосных растений микромицетами определенной местности и, следовательно продуктов медоносных пчел: пыльца растений, пыльцевая обножка, нектар растений, мед и т.д.
В настоящее время наличие информации о загрязнении экотоксикантами объектов биосферы (воздух, вода, почва и т.д.), уровень содержания микроорганизмов и трофика контаминации ими продуктов медоносных пчел носит ограниченный характер. В наших исследованиях пыльцевая обножка рассматривается как естественный носитель информации в экологической оценке ценозов.
Результаты проведенных нами исследований показали, что формирование микобиоты пыльцевой обножки определяется совокупностью средообразующих факторов (Чекрыга, 2013). Рабочие пчелы, добавляя к собранной пыльце нектар и секрет гипофарингиальных желез, формируют пыльцевую обножку, обогащая микробиоту пыльцы, собранную с растений, собственной микрофлорой. При переносе комочков пыльцевой обножки в гнездо, происходит дополнительное ее загрязнение микофлорой атмосферного воздуха. Изменения микобиоты получаемой пыльцевой обножки медоносными пчелами в условиях максимально длительного контакта с почвой, растениями, аэрозолем, позволяют прослеживать изменения микобиоты во времени и пространстве биоценоза.
Нами установлен факт изменения численности мицелиальных грибов пыльцевой обножки (у), которое определялось изменениями численности в микобиоте генеративных (x1) и вегетативных (х2) органов растений-пыльценосов (r=0,41), и описывалось уравнением у=[2,1+0.003 x1 - 0.000005 х2]×103. С увеличением численности микромицетов на генеративных органах пыльценосов отмечено снижение их в микобиоте пыльцевой обножки (r=-0,39), а также в микобиоте вегетативных частей растений (r=-0,47) (фиг. 1).
Входящие в микробный ценоз дрожжевые микромицеты исследуемых субстратов преобладали по численности на генеративных органах. С увеличением их численности на генеративных органах пыльценосов отмечено снижение в микобиоте пыльцевой обножки (r=- 0,11), а также в микобиоте вегетативных частей растений (r=- 0,48) (фиг. 2).
Сопряженность количества дрожжевой микофлоры пыльцевой обножки медоносных пчел, генеративных (x1) и вегетативных органов растений (х2) была существенной, оценивалась коэффициентом множественной корреляции 0,45 и описывалась уравнением у=[3,6+0,004 x1 - 0,0002 х2]×102.
Как упоминалось выше, обножка медоносных пчел является субстратом для микромицетов, где существенным средообразующим фактором выступает ее ботаническое происхождение. Установлены достоверные (Р=0,99) различия сообществ грибов в составе эпифитной микрофлоры пыльцевой обножки, обусловленные ее ботаническим происхождением (табл. 1). Исключительным своеобразием по родовому представительству грибов отличалась микобиота обножки синего цвета (синяк обыкновенный), (показатель сходства составлял 0,5±0,05, 0,19±0,04 и 0,33±0,06 соответственно с полифлерным, желто-оранжевым и лимонно-желтым образцами) (табл. 2), доля редких родов, которой была максимальной и составила 42%.
В обножке синего цвета выделены дрожжи Rhodotorulla rubra, штаммы плесневых грибов рода Absidia - Absidia corymbifera, рода Mucor - Mucor ramosissimus и Mucor racemosus, а в обножке желто-оранжевого цвета -Rhizopus microsporum, виды которые выделялись только в составе одного образца определенного цвета. Выявлена тесная связь между количеством выделенных штаммов с полифлерностью образца r=0,72 (Р=95%), и тенденция к возрастанию родового разнообразия микобиоты с увеличением полифлерности обножки (r=0.35). Численность выделенных штаммов в полифлерной обножке на порядок (163 KOE/г) превышала этот показатель в монофлерных образцах.
Видовая идентификация микромицетов выявила различия образцов и по представителям pp.Aspergillus и Penicillium (табл. 3). При сравнении сообществ микромицетов обножки ботанического происхождения установлено достоверное различие их видового представительства. Из 11 выделенных видов микромицетов только один (P. thomii) обнаружен в микоценозах монофлерных обножек, составляющих полифлерный образец, но он отсутствовал в самом полифлерном образце, четыре общих вида выявлены в двух образцах, остальные виды обнаруживались в одних сообществах, но отсутствовали в других.
Все изученные популяции монофлерных образцов характеризуются специфичностью родового и видового состава, что определяется видом растения, т.е. ботаническим происхождением пыльцевой обножки, выступающей в качестве средообразующего фактора, одним из компонентов которого может являться антибиотическая активность растений. Кроме этого, очевидной является роль межвидовых взаимодействий в формировании специфичного микроценоза для каждого цвета пыльцевой обножки. Об этом свидетельствуют также изменения обилия видов микромицетов в грибных сообществах поли- и монофлерных образцов. Например, обилие P. jensenii изменялось от 93,0 до 0,0% по образцам. Из 11 видов плесеней идентифицированных в микрофлоре монофлерной обножки составляющей полифлерный образец, в последнем выявлено только 7, развитие A. niveus А. parasiticus P. janthinellum и P. thomii подавлялось (табл. 3).
Изучение микоценозов монофлерных образцов пыльцевой обножки медоносных пчел показало, что характерной их особенностью является уникальное видовое разнообразие микромицетов, определяемое видом растения, т.е. ботаническим происхождением пыльцевой обножки.
Новизна исследований заключена в том, что цвет пыльцевой обножки как признак ботанического происхождения можно использовать для определения и сравнения микоценозов, оперируя цветом пыльцевой обножки как ботаническим происхождением (Патент №2555447 «Способ определения фитоценозов пыльценосных и медоносных растений по пыльцевой обножке, собранной Apis mellifera (медоносная пчела)», заявл. 02.07.2013, опубл. 10.07.2015).
Способ осуществляется следующим образом.
Проводится механическая разборка полифлерного образеца пыльцевой обножки по цвету, определяется фитоценоз растений нектаро- пыльценосной направленности (количество присутствующих цветов в общем образце), далее проводится микробиологический посев пыльцевой обножки, определение микоценозов, которые отражают специфические условия мест произрастания этих растений и с учетом времени сбора пыльцевой обножки медоносными пчелами.
Схема анализа пыльцевой обножки приводится на фиг. 3.
Источники информации
1. Марфенина О.Е. Антропогенная экология почвенных грибов. - М.: Медицина для всех, 2005 - 195 с.
2. Зачиняева А.В. Микромицеты загрязненных почв Северо-Западного региона России и их роль в патогенезе аллергических форм микозов / А.В. Зачиняева, Е.В. Лебедева // Микология и фитопатология, 2003 - Т. 37, вып. 5 - С. 69-74.
3. Чекрыга Г.П. Факторы, определяющие микробную загрязненность продуктов медоносных пчел // Сиб. вестн. с.-х. науки, 2013, №5-6 - С. 32-39.
4. Осинцева Л.А. Микробиота пыльцевой обножки медоносных пчел как индикатор в апимониторинге / Тезисы междун. науч. конф. «Микроорганизмы в биосфере», 19-20 ноября 2007 г., Москва.
Claims (1)
-
Способ определения микоценозов фитоценозов нектаро-пыльценосной направленности по пыльцевой обножке, собранной Apis mellifera, включающий механическую разборку пыльцевой обножки по цвету, установление фитоценозов, проведение микробиологического анализа пыльцевой обножки, определение микоценозов, проведение сравнительного анализа микоценозов, соответствующих цвету пыльцевой обножки, то есть ботаническому происхождению.
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| RU2015132449A RU2626737C2 (ru) | 2015-08-04 | 2015-08-04 | Способ определения микоценозов фитоценозов нектаро-пыльценосной направленности по пыльцевой обножке, собранной apis mellifera |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| RU2015132449A RU2626737C2 (ru) | 2015-08-04 | 2015-08-04 | Способ определения микоценозов фитоценозов нектаро-пыльценосной направленности по пыльцевой обножке, собранной apis mellifera |
Publications (2)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| RU2015132449A RU2015132449A (ru) | 2017-02-10 |
| RU2626737C2 true RU2626737C2 (ru) | 2017-07-31 |
Family
ID=58453590
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| RU2015132449A RU2626737C2 (ru) | 2015-08-04 | 2015-08-04 | Способ определения микоценозов фитоценозов нектаро-пыльценосной направленности по пыльцевой обножке, собранной apis mellifera |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| RU (1) | RU2626737C2 (ru) |
Cited By (1)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| RU2724704C1 (ru) * | 2019-09-11 | 2020-06-25 | Федеральное государственное бюджетное научное учреждение Уфимский федеральный исследовательский центр Российской академии наук | Способ определения географического происхождения башкирского бортевого меда по составу пыльцы |
Citations (1)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| RU2555447C2 (ru) * | 2013-07-02 | 2015-07-10 | Государственное научное учреждение Сибирский научно-исследовательский институт переработки сельскохозяйственной продукции Российской академии сельскохозяйственных наук (ГНУ СибНИИП Россельхозакадемии) | СПОСОБ ОПРЕДЕЛЕНИЯ ФИТОЦЕНОЗОВ ПЫЛЬЦЕНОСНЫХ И МЕДОНОСНЫХ РАСТЕНИЙ ПО ПЫЛЬЦЕВОЙ ОБНОЖКЕ, СОБРАННОЙ Apis mellifera (МЕДОНОСНАЯ ПЧЕЛА) |
-
2015
- 2015-08-04 RU RU2015132449A patent/RU2626737C2/ru not_active IP Right Cessation
Patent Citations (1)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| RU2555447C2 (ru) * | 2013-07-02 | 2015-07-10 | Государственное научное учреждение Сибирский научно-исследовательский институт переработки сельскохозяйственной продукции Российской академии сельскохозяйственных наук (ГНУ СибНИИП Россельхозакадемии) | СПОСОБ ОПРЕДЕЛЕНИЯ ФИТОЦЕНОЗОВ ПЫЛЬЦЕНОСНЫХ И МЕДОНОСНЫХ РАСТЕНИЙ ПО ПЫЛЬЦЕВОЙ ОБНОЖКЕ, СОБРАННОЙ Apis mellifera (МЕДОНОСНАЯ ПЧЕЛА) |
Non-Patent Citations (1)
| Title |
|---|
| ЧЕКРЫГА Г.П., ОСИНЦЕВА Л.А. Формирование микобиоты пыльцевой обножки, собранной медоносными пчелами с эспарцета посевного и синяка обыкновенного // Сиб. вест. с/х. науки, Животноводство и ветеринария, 24.01.2008, c.90-95. КАМЕНЕВА И.Н. Перспективы создания микологических заказников в Оренбургской области //Современная микология в России, Т.3, Тезисы докладов 3 съезда микологов России, Москва, 2012, Раздел 6, Флора и охрана грибов, с.111-112. * |
Cited By (1)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| RU2724704C1 (ru) * | 2019-09-11 | 2020-06-25 | Федеральное государственное бюджетное научное учреждение Уфимский федеральный исследовательский центр Российской академии наук | Способ определения географического происхождения башкирского бортевого меда по составу пыльцы |
Also Published As
| Publication number | Publication date |
|---|---|
| RU2015132449A (ru) | 2017-02-10 |
Similar Documents
| Publication | Publication Date | Title |
|---|---|---|
| Cleary et al. | Friend or foe? Biological and ecological traits of the European ash dieback pathogen Hymenoscyphus fraxineus in its native environment | |
| Sánchez Márquez et al. | Endophytic mycobiota of leaves and roots of the grass Holcus lanatus | |
| Todd et al. | Medical phycology 2017 | |
| Bakys et al. | Root rot, associated fungi and their impact on health condition of declining Fraxinus excelsior stands in Lithuania | |
| Bußkamp et al. | Sphaeropsis sapinea and fungal endophyte diversity in twigs of Scots pine (Pinus sylvestris) in Germany | |
| Mbareche et al. | Fungal aerosols at dairy farms using molecular and culture techniques | |
| Vanderwolf et al. | Ectomycota associated with hibernating bats in eastern Canadian caves prior to the emergence of white-nose syndrome | |
| Terhonen et al. | The effect of latitude, season and needle age on the mycota of Scots Pine (Pinus sylvestris) in Finland | |
| Muñoz-Adalia et al. | Sydowia polyspora dominates fungal communities carried by two Tomicus species in pine plantations threatened by Fusarium circinatum | |
| Sharma et al. | Identification and characterization of toxigenic Fusaria associated with sorghum grain mold complex in India | |
| Barral et al. | Diversity and toxigenicity of fungi that cause pineapple fruitlet core rot | |
| Reis et al. | Early season symptoms on stem, inflorescences and flowers of grapevine associated with Botryosphaeriaceae species | |
| Benucci et al. | Assessment of ectomycorrhizal biodiversity in Tuber macrosporum productive sites | |
| Romeralo et al. | Pine species determine fungal microbiome composition in a common garden experiment | |
| Kim et al. | Geographic and host-associated variations in bacterial communities on the floret surfaces of field-grown broccoli | |
| Stevanović et al. | Characterization of Gnomoniopsis idaeicola, the causal agent of canker and wilting of blackberry in Serbia | |
| Janakiev et al. | The microbiome of the ‘Williams’ pear variety grown in the organic orchard and antifungal activity by the autochthonous bacterial and yeast isolates | |
| Mang et al. | Investigations on fungi isolated from apple trees with die-back symptoms from Basilicata Region (Southern Italy) | |
| RU2626737C2 (ru) | Способ определения микоценозов фитоценозов нектаро-пыльценосной направленности по пыльцевой обножке, собранной apis mellifera | |
| Donald et al. | Tropical palm endophytes exhibit low competitive structuring when assessed using co-occurrence and antipathogen activity analysis | |
| Krause et al. | Study on the effects of near-future ocean acidification on marine yeasts: a microcosm approach | |
| Hayatgheibi | Studies on the microflora associated with the seeds of European ash (Fraxinus excelsior) and the infection biology of the pathogen Hymenoscyphus pseudoalbidus causing ash dieback | |
| Pusz et al. | Is the survivability of silver fir under condition of strong ungulate pressure related to mycobiota of bark-stripping wounds? | |
| Martins et al. | A comparison of microbiota isolation methods reveals habitat preferences for fermentative yeasts and plant pathogenic fungi in the grape berry | |
| Gulati et al. | Diversity, succession and seasonal variation of phylloplane mycoflora of Leucaena leucocephala in relation to its leaf litter decomposition |
Legal Events
| Date | Code | Title | Description |
|---|---|---|---|
| MM4A | The patent is invalid due to non-payment of fees |
Effective date: 20190805 |