RU2626528C2 - Иммобилизованный биокатализатор для получения фумаровой кислоты - Google Patents

Иммобилизованный биокатализатор для получения фумаровой кислоты Download PDF

Info

Publication number
RU2626528C2
RU2626528C2 RU2015126935A RU2015126935A RU2626528C2 RU 2626528 C2 RU2626528 C2 RU 2626528C2 RU 2015126935 A RU2015126935 A RU 2015126935A RU 2015126935 A RU2015126935 A RU 2015126935A RU 2626528 C2 RU2626528 C2 RU 2626528C2
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
biocatalyst
fumaric acid
immobilized
spores
yeast extract
Prior art date
Application number
RU2015126935A
Other languages
English (en)
Other versions
RU2015126935A (ru
Inventor
Елена Николаевна Ефременко
Ольга Витальевна Сенько
Ольга Васильевна Маслова
Сергей Дмитриевич Варфоломеев
Original Assignee
Федеральное Государственное Бюджетное Учреждение Науки Институт Биохимической Физики Им. Н.М. Эмануэля Российской Академии Наук (Ибхф Ран)
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Федеральное Государственное Бюджетное Учреждение Науки Институт Биохимической Физики Им. Н.М. Эмануэля Российской Академии Наук (Ибхф Ран) filed Critical Федеральное Государственное Бюджетное Учреждение Науки Институт Биохимической Физики Им. Н.М. Эмануэля Российской Академии Наук (Ибхф Ран)
Priority to RU2015126935A priority Critical patent/RU2626528C2/ru
Publication of RU2015126935A publication Critical patent/RU2015126935A/ru
Application granted granted Critical
Publication of RU2626528C2 publication Critical patent/RU2626528C2/ru

Links

Images

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12PFERMENTATION OR ENZYME-USING PROCESSES TO SYNTHESISE A DESIRED CHEMICAL COMPOUND OR COMPOSITION OR TO SEPARATE OPTICAL ISOMERS FROM A RACEMIC MIXTURE
    • C12P7/00Preparation of oxygen-containing organic compounds
    • C12P7/40Preparation of oxygen-containing organic compounds containing a carboxyl group including Peroxycarboxylic acids
    • C12P7/44Polycarboxylic acids
    • C12P7/46Dicarboxylic acids having four or less carbon atoms, e.g. fumaric acid, maleic acid
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N1/00Microorganisms, e.g. protozoa; Compositions thereof; Processes of propagating, maintaining or preserving microorganisms or compositions thereof; Processes of preparing or isolating a composition containing a microorganism; Culture media therefor
    • C12N1/14Fungi; Culture media therefor
    • C12N1/145Fungal isolates
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N11/00Carrier-bound or immobilised enzymes; Carrier-bound or immobilised microbial cells; Preparation thereof
    • C12N11/02Enzymes or microbial cells immobilised on or in an organic carrier
    • C12N11/04Enzymes or microbial cells immobilised on or in an organic carrier entrapped within the carrier, e.g. gel or hollow fibres
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N11/00Carrier-bound or immobilised enzymes; Carrier-bound or immobilised microbial cells; Preparation thereof
    • C12N11/02Enzymes or microbial cells immobilised on or in an organic carrier
    • C12N11/08Enzymes or microbial cells immobilised on or in an organic carrier the carrier being a synthetic polymer
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12RINDEXING SCHEME ASSOCIATED WITH SUBCLASSES C12C - C12Q, RELATING TO MICROORGANISMS
    • C12R2001/00Microorganisms ; Processes using microorganisms
    • C12R2001/645Fungi ; Processes using fungi
    • C12R2001/845Rhizopus

Landscapes

  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • Dispersion Chemistry (AREA)
  • General Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
  • Botany (AREA)
  • Mycology (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Tropical Medicine & Parasitology (AREA)
  • Virology (AREA)
  • Immobilizing And Processing Of Enzymes And Microorganisms (AREA)
  • Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)

Abstract

Изобретение относится к биотехнологии. Предложен иммобилизованный биокатализатор для получения фумаровой кислоты. Биокатализатор представляет собой клетки мицелиального гриба рода Rhizopus, введенные исходно в виде спор в криогель поливинилового спирта и пророщенные для формирования мицелия. Причем споры включены в криогель в процессе его формирования. Проращивание спор проведено в среде, содержащей глюкозу 100 г/л, дрожжевой экстракт 5 г/л и триптон 10 г/л, или маргарин 10 г/л и экстракт кукурузной кочерыжки 5 г/л, или картофельный крахмал 50 г/л и дрожжевой экстракт 10 г/л, совместно с солями - (NH4)2SO4 2,36 г/л, MgSO4×7H2O 0,2 г/л, ZnSO4×7H2O 0,07 г/л, K2HPO4×3Н2О 1,0 г/л, или в среде, содержащей ячменный солод 20 г/л или сахарозу 30 г/л, дрожжевой экстракт 10 г/л и соевую муку 10 г/л. Сформированный в результате проращивания спор иммобилизованный биокатализатор имеет следующий состав (мас. %): биомасса мицелия (сухой вес) - 6,5÷16,3; поливиниловый спирт - 2,1÷6,0; вода - до 100. Биокатализатор устойчив в кислой среде, характеризуется высокой продуктивностью, обеспечивает увеличение выхода целевого продукта, срок использования в периодическом процессе достигает 2100 ч. 2 ил. (2 табл.).

Description

Изобретение относится к биотехнологии, конкретно к биокатализаторам в виде клеток мицелиальных грибов, иммобилизованных в матрицу нерастворимого носителя, продуцирующих фумаровую кислоту (ФК). Изобретение может быть использовано для микробиологического синтеза фумаровой кислоты, являющейся ценным продуктом для пищевой, фармацевтической и косметической промышленности, полупродуктом органического синтеза, исходным сырьем для синтеза биоразлагаемых полимеров.
Известен биокатализатор в виде свободных клеток мицелиальных грибов, способных синтезировать и секретировать ФК в среду их культивирования [Carol A. Roa Engel et al, Appl. Microbiol. Biotechnol. (2008) 78: 379-389, Enzyme and Microbial Technology (2011) 48: 39-47]. Накапливающаяся в среде фумаровая кислота способствует снижению pH среды культивирования до 3,0, что негативно влияет на жизнеспособность используемых в качестве биокатализатора клеток грибов и приводит к снижению продуктивности процесса.
Для биотехнологического получения органических кислот целесообразно использовать биокатализаторы, представляющие собой иммобилизованные клетки продуцентов, характеризующиеся повышенной стабильностью в средах с низким значением pH. Такой подход позволяет не только повысить устойчивость клеток к негативным воздействиям pH среды и высоких концентраций накапливающейся кислоты, но и повысить жизнеспособность клеток и, как следствие, продуктивность процесса. Кроме того, иммобилизация клеток позволяет значительно упростить стадию отделения биокатализатора от культуральной жидкости. Иммобилизованные биокатализаторы (ИБК) более привлекательны с экономической точки зрения за счет возможности их многократного использования, а также существенного сокращения объемов отработанной биомассы клеток-продуцентов, подлежащих утилизации после каждого рабочего цикла [RU 2253677 C2, опубл. 10.06.2005; RU 2383618 C1, опубл. 10.03.2010].
Известен ИБК на основе клеток мицелиальных грибов рода Rhizopus (R. arrhizus, R. nigricans и R. oryzae) и полиуретанового носителя, который способен трансформировать различные углеводсодержащие субстраты (моносахариды, отходы крахмалопаточного производства и другие углеводсодержащие продукты) в фумаровую кислоту [Helena Kautola, Yui-Yen Linko Production of fumaric acid with immobilized biocatalysts // Applied Biochemistry and Biotechnology Spring/Summer 1990, V. 24-25, Issue 1, pp 161-170, Podgorska, M. Kasprzak, D. Szwajgier Fumaric acid production by Rhizopus nigricans and Rhizopus oryzae using apple juice // Pol. J. Food Nutr. Sci. 2004, Vol. 13/54, No 1, pp. 47-50, Helena Kautola, Yu-Yen Linko Fumaric acid production from xylose by immobilized Rhizopus arrhizus cells // Applied Microbiology and Biotechnology October 1989, Volume 31, Issue 5-6, pp 448-452, M. Petrucciolia, E. Angianib, F. Federici Semi-continuous fumaric acid production by Rhizopus arrhizus immobilized in polyurethane sponge // Process Biochemistry Volume 31, Issue 5, June 1996, Pages 463-469, F. Federici, M. Petruccioli Fumaric acid production by Rhizopus arrhizus immobilized on polyurethane sponge // Progress in Biotechnology Volume 11, 1996, Pages 655-660, E.]. Иммобилизованный биокатализатор представляет собой клетки микроскопического гриба рода Rhizopus, полученные в иммобилизованном состоянии методом адсорбции спор в матрицу полиуретанового носителя с последующим их прорастанием в поры носителя и формированием мицелия, пронизывающего носитель. Для получения биокатализатора в питательную среду вносят суспензию спор и частицы полиуретана в требуемом соотношении и проводят культивирование в среде формирования (роста) в течение 20 ч при 33°C. Полученный ИБК используют для получения фумаровой кислоты из различных сахаров (глюкозы, сахарозы, фруктозы, ксилозы, мальтозы, галактозы). При этом в ходе получения фумаровой кислоты необходима частичная нейтрализация pH среды, для чего изначально в среду вносят карбонат кальция.
Биокатализатор характеризуется следующими недостатками:
- низкая продуктивность единицы объема ИБК по целевому продукту, составляющая - 0,2÷0,5 г ФК/ч/дм3 ИБК, при этом за 1 рабочий цикл фумаровая кислота может быть накоплена в среде в концентрации 7÷18,5 г/л;
- относительно невысокая длительность эффективного использования - до 1230 часов при использовании питательных сред, содержащих ксилозу;
- низкие конечные концентрации фумаровой кислоты, накапливаемые в среде, что приводит к увеличению затрат на стадии выделения целевого продукта из раствора;
- использованный метод иммобилизации (сорбция спорового материала с последующим формированием мицелия на носителе) не гарантирует постоянство характеристик ИБК, поскольку сорбирующаяся для формирования активного мицелия концентрация спор на носителе не постоянна;
- нестабильность в кислой среде.
Наиболее близким к заявляемому изобретению является иммобилизованный биокатализатор для получения фумаровой кислоты на основе мицелиального гриба R. oryzae F - 1032(ВКПМ), описанный в работе [Сенько О.В. и др. «Ресурсосберегающая биотехнология получения фумаровой кислоты из возобновляемого растительного сырья». Вестник Кузбасского государственного технического университета, 2013, №1, с. 111-113]. Отмечается, что биокатализатор получен по методике, описанной в патенте РФ на изобретение №2253677, в соответствии с которой для наращивания спорового материала клетки гриба Rhizopus oryzae высевают на чашки Петри с агаризованной средой следующего состава: 20 г/л глюкозы, 200 г/л тертого картофеля, 0,2 г/л MgSO4×H2O, 0,2 г/л CaCO3, 20 г/л агара (pH 6,5) и выращивают при 28°C в течение 48 ч. Проращивание иммобилизованного спорового материла - формирование готового биокатализатора в виде иммобилизованного грибного мицелия - проводят в среде, содержащей 100 г/л глюкозы, 10 г/л дрожжевого экстракта, 20 г/л CaCO3, т.е. в условиях, которые обеспечивают повышение лактатдегидрогеназной активности биокатализатора, играющей основополагающую роль в целевом использовании биокатализатора для получения молочной, а не фумаровой кислоты. Как следствие, применение биокатализатора по прототипу позволяет получить относительно невысокие показатели его продуктивности по фумаровой кислоте и длительности эффективного использования: максимальный выход фумаровой кислоты составляет 0,35 г/г субстрата, а длительность применения биокатализатора составляет 480 часов.
Задачей настоящего изобретения является создание устойчивого в кислой среде, высокопродуктивного иммобилизованного биокатализатора для получения растворов фумаровой кислоты с высокой концентрацией целевого продукта, пригодного для длительного и многократного использования на различных средах, в том числе на гидролизатах, полученных из углеводсодержащего сырья, не имеющего пищевой ценности.
Поставленная задача решена иммобилизованным биокатализатором для получения фумаровой кислоты, представляющим собой клетки мицелиального гриба рода Rhizopus, способные продуцировать фумаровую кислоту, введенные исходно в виде спор в матрицу нерастворимого носителя и пророщенные для формирования мицелия, пронизывающего носитель, причем функцию нерастворимого носителя выполняет криогель поливинилового спирта, в который включены споры в процессе его формирования, отличающимся тем, что проращивание спор проводят в среде, содержащей (NH4)2SO4 (2,36 г/л), MgSO4×7H2O (0,2 г/л), ZnSO4×7H2O (0,07 г/л); K2HPO4×3H2O (1,0 г/л), а сформированный в результате проращивания спор иммобилизованный биокатализатор имеет следующий состав, мас. %:
биомасса мицелия (сухой вес) 6,5÷16,3
поливиниловый спирт 2,1÷6,0
вода до 100
Заявляемый ИБК обеспечивает получение технического результата, который, в сравнении с прототипом, состоит в увеличении максимального выхода фумаровой кислоты и увеличении максимального времени его эффективного использования. Применение заявляемого ИБК позволяет существенно расширить перечень субстратов, которые могут быть использованы для получения целевого продукта. В отличие от прототипа, получение фумаровой кислоты с помощью заявляемого ИБК не требует введения в среду каких-либо агентов, нейтрализующих pH.
Криогель поливинилового спирта (ПВС) обладает хорошими эксплуатационными характеристиками, а также высокой пористостью гелевой матрицы, обеспечивающей незатрудненную диффузию субстратов и продуктов [Лозинский В.И. Новое семейство макропористых и сверхмакропористых материалов биотехнологического назначения - полимерные криогели. // Известия РАН. Сер. Химическая, 2008, №5, с. 1-18]. Криогель ПВС химически стабилен при низких значениях pH в присутствии органических кислот, а также в присутствии возможных побочных продуктов распада природных полисахаридов и накапливающихся в среде микробных метаболитов. Известно его применение для получения биокатализаторов, предназначенных для получения этанола из пентоз [RU 2391402 С2, опубл. 10.06.2010] и молочной кислоты [RU 2253677 С2, опубл. 10.06.2005].
Принципиальную важность для возможности получения заявляемого технического результата имеет правильный подбор состава питательной среды для формирования иммобилизованного биокатализатора, обеспечивающий максимальное проявление требуемой биологической активности - способности продуцировать и выделять в среду фумаровую кислоту. Выбор состава используемых для получения катализатора сред основан на результатах проведенных авторами экспериментальных исследований, направленных на изучение структуры и свойств иммобилизованных биокатализаторов в зависимости от состава сред, использованных для их получения. Было обнаружено, что в присутствии таких неорганических солей, как карбонат кальция CaCO3, хлорид натрия NaCl, однозамещенный фосфат калия KH2PO4, происходит коллапс криогеля поливинилового спирта, формируемого за счет слабых водородных связей между параллельно располагающимися в пространстве полимерными цепями. Криогель начинает сжиматься (коллапсирует), при этом происходят сужение пор и затруднение массообменных процессов, в результате чего затрудняется доступ кислорода к мицелию, формируемому в порах за счет прорастания спор, и, как следствие, аэробные условия переходят в микроаэрофильные, и далее - в анаэробные. В условиях недостатка кислорода клетки адаптируются и переключаются на другие метаболические пути, при этом вместо фумаровой кислоты в среде накапливаются метаболиты, характерные для анаэробных процессов - этанол, ацетат, молочная кислота. Нами выяснено, что именно процесс продуцирования фумаровой кислоты клетками мицелиальных грибов является очень сильно зависимым от концентрации кислорода в среде, а отсюда - и от размера пор носителя, в котором накапливается мицелий, продуцирующий фумаровую кислоту, а размер пор, в свою очередь, регулируется составом среды, и в частности, ее солевым составом. Таким образом, состав питательных сред, используемых для получения заявляемого биокатализатора, и, в первую очередь, солевой состав является неочевидным и существенно важным признаком, характеризующим биокатализатор через способ его получения, поскольку непосредственно влияет на состояние криогеля, от которого зависит возможность достижения продемонстрированных далее высоких показателей продуктивности биокатализатора, длительности его полезного использования и конечной концентрации фумаровой кислоты, получаемой за один цикл. Как видно из табл. 1 (фиг.1), в которой приведены примеры состава и условий получения заявляемого ИБК, ни в одном из примеров не использованы среды, содержащие в своем составе такие неорганические соли, как карбонат кальция CaCO3, хлорид натрия NaCl, однозамещенный фосфат калия KH2PO4, которые, как правило, входят в состав питательных сред, используемых в биотехнологических процессах.
Заявляемый иммобилизованный биокатализатор получают следующим образом. К водному раствору ПВС, содержащему заданную концентрацию полимера, добавляют суспензию спор с концентрацией, обеспечивающей при прорастании спор в объеме полимерной гранулы накопление необходимого количества биомассы иммобилизованного мицелия, способного активно продуцировать фумаровую кислоту. Полученную суспензию дозируют в емкости желаемой формы и проводят процедуру «замораживания-оттаивания», включающую замораживание полученной смеси при температуре от -11 до -21°C, выдерживание при этой температуре в течение 10÷20 часов и последующее размораживание. Формирование биокатализатора в виде активного иммобилизованного мицелия осуществляют путем культивирования гранул криогеля ПВС с включенными в него спорами на питательных средах, состав которых приведен в табл. 1 (фиг.1). Клетки вводят в формирующийся носитель в результате суспендирования спор в растворе ПВС с последующим формированием криогеля и проращиванием спор. Иммобилизация мицелиальных клеток в объеме криогеля ПВС приводит к их пространственному разобщению пористой структурой матрицы, что позволяет создать и удерживать в метаболически активном состоянии высокие концентрации клеток, распределенных и зафиксированных в носителе по объему реактора, и увеличить, таким образом, скорость накопления метаболитов в среде культивирования. Такое пространственное распределение клеток создает улучшенные условия для метаболизма, что обеспечивает увеличение выхода целевого продукта и сохранение высокой продуктивности процесса в течение длительного времени. Как будет показано далее на примерах, общая длительность эффективного использования биокатализатора, определяемая как период его полуинактивации ППИБК (т.е. время, за которое исходная средняя продуктивность биокатализатора ПИБК в данных условиях проведения процесса снижается на 50%), в зависимости от условий проведения процесса достигает 2100 часов. Степень конверсии субстрата с использованием биокатализатора, сформированного в оптимально подобранных условиях, достигает 0,425 гФК/г субстрата (см. табл. 2 (фиг.2), пример 8) при высоком значении показателя конечной концентрации фумаровой кислоты - 51 г/л. Таким образом, степень конверсии субстрата с использованием заявляемого ИБК почти на 18% превышает аналогичный показатель для катализатора по прототипу, а общая длительность его эффективного использования (ППИБК) превышает аналогичный показатель для биокатализатора по прототипу в 4,3 раза (см. табл. 2 (фиг.2), пример 10).
Количественные соотношения, в которых компоненты (мицелиальная биомасса и ПВС) входят в состав заявляемого иммобилизованного биокатализатора, найдены экспериментально. Содержание ПВС в составе ИБК варьируют изменением концентрации раствора полимера, используемого для приготовления суспензии спор. Выбор концентрации раствора ПВС обусловлен следующим: при содержании ПВС в иммобилизованном биокатализаторе менее 2,1 мас. % происходит формирование больших пор, через которые происходит вымывание спор из носителя, сопровождающееся снижением продуктивности ИБК и уменьшением его механической прочности. При повышении содержания ПВС в иммобилизованном биокатализаторе более 6,0 мас. % сильно повышается вязкость его исходных растворов в суспензии со спорами, что затрудняет равномерное диспергирование спор в среде. Размер образующихся пор заметно уменьшается, что приводит к ухудшению массообменных процессов внутри иммобилизованного биокатализатора и соответственно к снижению его продуктивности. Нижний предел концентрации биомассы мицелия (по сухим веществам) в заявляемом ИБК определяется тем, что при концентрации, меньшей чем 6,5 мас. %, получаемый ИБК обеспечивает недостаточно высокую продуктивность процесса по целевому продукту, а верхний предел концентрации биомассы определяется тем, что при накоплении мицелия в порах полимерной матрицы свыше 16,3 мас. % происходит закупорка пор клетками метаболически активного мицелия настолько, что ухудшаются массообменные условия для клеток, локализованных во внутренних частях гранул ИБК, и его продуктивность снижается.
Заявляемому иммобилизованному биокатализатору может быть придана любая удобная форма, в частности форма сферических гранул, частиц неправильной формы, гелевых блоков, листов и др. Для этого суспензию спор в растворе полимера либо замораживают в соответствующей форме, либо измельчают полученный криогель ПВС с включенными спорами до проращивания мицелия с помощью предназначенного для этих целей оборудования (экструдеры, грануляторы и т.п.). Возможность варьирования формы иммобилизованного биокатализатора технически и технологически упрощает его практическое применение и масштабирование.
Споровый материал для иммобилизованного биокатализатора получают с применением известных биотехнологических приемов культивирования мицелиальных грибов в соответствии с частными характеристиками используемых культур микроорганизмов. Для получения высококонцентрированных суспензий спор после накопления спор проводят их смыв с поверхности плотных питательных сред с использованием традиционных микробиологических методов, применяемых для получения суспензии спор в водных растворах, и смешивают их с раствором ПВС.
Заявляемый ИБК может быть получен с использованием различных мицелиальных грибов, являющихся продуцентами фумаровой кислоты и относящихся к роду Rhizopus.
В табл.1(фиг.1) приведены примеры, показывающие некоторые конкретные варианты получения и состав заявляемого иммобилизованного биокатализатора. Данные табл.1(фиг.1), не исчерпывающие всех вариантов, подпадающих под формулу изобретения, показывают возможность получения заявляемого ИБК при использовании разных штаммов, при варьировании исходных концентраций раствора ПВС и суспензии спор, условий формирования иммобилизованного биокатализатора при условии сохранения заявленного солевого состава питательной среды. В результате проращивания спор ИБК, готовый к дальнейшему использованию, имеет следующий состав, мас. %:
биомасса мицелия микроскопического гриба (сухой вес) 6,5÷16,3
поливиниловый спирт 2,1÷6
водная фаза до 100
Получение фумаровой кислоты с помощью заявляемого ИБК проводят в реакторах с питательными средами в аэробных условиях при температуре 24÷35°C при постоянном перемешивании. Контроль потребления субстрата и накопления метаболитов в среде осуществляют известными методами (хроматографическими и спектрофотометрическими) с использованием стандартного аналитического оборудования.
В табл.2(фиг.2) приведены конкретные примеры получения фумаровой кислоты с использованием заявляемого ИБК из широкого спектра субстратов, в том числе субстратов, не имеющих пищевой ценности, таких, как синтетические питательные среды, среды на основе целлюлозосодержащего сырья, биомассы фототрофных микроорганизмов и макроводорослей. Приведенные примеры, не охватывающие всех возможных вариантов применения заявляемого катализатора для получения фумаровой кислоты, включают использование различных вариантов заявляемого ИБК, приведенных в табл.1(фиг.1), а также показывают возможность получения фумаровой кислоты при варьировании исходных концентраций ИБК и субстрата в различных условиях проведения процесса.
Удобство отделения иммобилизованной биомассы от культуральной среды в сочетании со способностью сохранять высокую продуктивность в течение длительного времени позволяет использовать заявляемый ИБК многократно в длительном периодическом процессе. Для этого после завершения одного рабочего цикла культуральную жидкость, содержащую фумаровую кислоту, сливают через сетчатый фильтр, установленный в ферментере (далее ее используют для выделения конечного продукта), а в ферментер вносят свежую порцию среды, содержащей субстрат, и осуществляют следующий рабочий цикл с использованием того же иммобилизованного биокатализатора в тех же условиях. В таких периодических условиях определяют максимальное время эффективного использования (период полуинактивации) иммобилизованного биокатализатора. Соответствующие данные приведены в табл.2(фиг.2).
Как видно из табл.2(фиг.2) максимальное время эффективного использования заявляемого биокатализатора может достигать 2100 часов (пример 10), что значительно превышает аналогичную величину для катализатора по прототипу.

Claims (12)

  1. Иммобилизованный биокатализатор для получения фумаровой кислоты, представляющий собой клетки мицелиального гриба рода Rhizopus, способные продуцировать фумаровую кислоту, введенные исходно в виде спор в матрицу нерастворимого носителя и пророщенные для формирования мицелия, пронизывающего носитель, причем функцию нерастворимого носителя выполняет криогель поливинилового спирта, в который включены споры в процессе его формирования, отличающийся тем, что проращивание спор проведено в среде, содержащей:
  2. глюкозу 100 г/л, дрожжевой экстракт 5 г/л, триптон 10 г/л, или
  3. маргарин 10 г/л, экстракт кукурузной кочерыжки 5 г/л, или
  4. картофельный крахмал 50 г/л, дрожжевой экстракт 10 г/л
  5. и соли - (NH4)2SO4 2,36 г/л, MgSO4×7H2O 0,2 г/л, ZnSO4×7H2O 0,07 г/л, K2HPO4×3Н2О 1,0 г/л,
  6. или в среде, содержащей:
  7. ячменный солод 20 г/л или
  8. сахарозу 30 г/л, дрожжевой экстракт 10 г/л, соевую муку 10 г/л,
  9. а сформированный в результате проращивания спор иммобилизованный биокатализатор имеет следующий состав, мас. %:
  10. биомасса мицелия (сухой вес) - 6,5÷16,3;
  11. поливиниловый спирт - 2,1÷6,0;
  12. вода - до 100.
RU2015126935A 2015-07-07 2015-07-07 Иммобилизованный биокатализатор для получения фумаровой кислоты RU2626528C2 (ru)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2015126935A RU2626528C2 (ru) 2015-07-07 2015-07-07 Иммобилизованный биокатализатор для получения фумаровой кислоты

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2015126935A RU2626528C2 (ru) 2015-07-07 2015-07-07 Иммобилизованный биокатализатор для получения фумаровой кислоты

Publications (2)

Publication Number Publication Date
RU2015126935A RU2015126935A (ru) 2017-01-12
RU2626528C2 true RU2626528C2 (ru) 2017-07-28

Family

ID=58449534

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
RU2015126935A RU2626528C2 (ru) 2015-07-07 2015-07-07 Иммобилизованный биокатализатор для получения фумаровой кислоты

Country Status (1)

Country Link
RU (1) RU2626528C2 (ru)

Citations (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2253677C2 (ru) * 2002-10-02 2005-06-10 Институт элементоорганических соединений им. А.Н. Несмеянова РАН (ИНЭОС РАН) Иммобилизованный биокатализатор, способ его получения и способ получения молочной кислоты с использованием этого биокатализатора
RU2315102C1 (ru) * 2006-03-14 2008-01-20 Химический факультет МГУ (Химфак МГУ) Иммобилизованный биокатализатор для биологической очистки жиросодержащих сточных вод и способ его получения
RU2391402C2 (ru) * 2008-09-05 2010-06-10 Учреждение Российской Академии Наук Институт Биохимической Физики Им. Н.М. Эмануэля Ран (Ибхф Ран) Биокатализатор для получения этанола из пентоз

Patent Citations (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2253677C2 (ru) * 2002-10-02 2005-06-10 Институт элементоорганических соединений им. А.Н. Несмеянова РАН (ИНЭОС РАН) Иммобилизованный биокатализатор, способ его получения и способ получения молочной кислоты с использованием этого биокатализатора
RU2315102C1 (ru) * 2006-03-14 2008-01-20 Химический факультет МГУ (Химфак МГУ) Иммобилизованный биокатализатор для биологической очистки жиросодержащих сточных вод и способ его получения
RU2391402C2 (ru) * 2008-09-05 2010-06-10 Учреждение Российской Академии Наук Институт Биохимической Физики Им. Н.М. Эмануэля Ран (Ибхф Ран) Биокатализатор для получения этанола из пентоз

Non-Patent Citations (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
KAUTOLA H. et al. "Production of fumaric acid with immobilized biocatalysts", Applied Biochemistry and Biotechnology, 1990, v.24-25, no.1, p.161-170. *
СЕНЬКО О.В. и др. "Ресурсосберегающая биотехнология получения фумаровой кислоты из возобновляемого растительного сырья", Вестник Кузбасского государственного технического университета, 2013, no.1, с.111-113. *

Also Published As

Publication number Publication date
RU2015126935A (ru) 2017-01-12

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Yu et al. Continuous citric acid production in repeated-fed batch fermentation by Aspergillus niger immobilized on a new porous foam
FI68078B (fi) Foerfarande foer framstaellning av biologiskt aktiva mikroorganismmyceliepellets
US4427775A (en) Mycelial pellets having a support core
Ganguly et al. Production of lactic acid with loofa sponge immobilized Rhizopus oryzae RBU2-10
Pimtong et al. Enhanced effectiveness of Rhizopus oryzae by immobilization in a static bed fermentor for l-lactic acid production
Rashid et al. Mannanase production by Aspergillus niger USM F4 via solid substrate fermentation in a shallow tray using palm kernel cake as a substrate
US8343741B2 (en) Pelletization process to control filamentous fungi morphology for enhanced reactor rheology bioproduct formation
Barrios-González et al. Production of antibiotics and other commercially valuable secondary metabolites
Selvaraj et al. Semi-solid state fermentation: a promising method for production and optimization of tannase from Bacillus gottheilii M2S2
RU2626528C2 (ru) Иммобилизованный биокатализатор для получения фумаровой кислоты
CN101265453B (zh) 一种含cmp激酶和cdp激酶的啤酒酵母菌株及应用
Darah et al. Pectinase production by Aspergillus niger LFP-1 using pomelo peels as substrate: An optimization study using shallow tray system
Yaykaşlı et al. Influence of alcohols on citric acid production by Aspergillus niger A-9 entrapped in polyacrylamide gels
JP7295796B2 (ja) 糸状菌ペレットの製造方法
CN107245458B (zh) 一种高抗性产海藻糖酿酒酵母菌株的筛选及应用
Mojsov Application of solid-state fermentation for cellulase enzyme production using Trichoderma viride
RU2253677C2 (ru) Иммобилизованный биокатализатор, способ его получения и способ получения молочной кислоты с использованием этого биокатализатора
CN106967708B (zh) 一种利用复合材料二次固定化汉逊德巴利酵母的方法
Krusong et al. Increasing the acetification rate of Acetobacter aceti adsorbed on luffa sponge using recycle of incremental oxygenated medium
RU2391402C2 (ru) Биокатализатор для получения этанола из пентоз
JP6121226B2 (ja) 乳酸の製造方法
RU2383618C1 (ru) Иммобилизованный биокатализатор для микробиологического получения пектиназ
CN109536547B (zh) 一种基于晶胶的微生物合成糖脂的方法
KR20120108198A (ko) 내부필터시스템이 구비된 생물반응기를 이용한 유산균의 고농도 배양 및 대사산물의 생산 방법
Zuriana et al. Production of sorbitol by repeated batch fermentation using immobilized of Lactobacillus plantarum strain (BAA-793) via solid state fermentation