RU2624667C1 - Способ выделения штаммов микроорганизмов-деструкторов нефти - Google Patents

Способ выделения штаммов микроорганизмов-деструкторов нефти Download PDF

Info

Publication number
RU2624667C1
RU2624667C1 RU2016124207A RU2016124207A RU2624667C1 RU 2624667 C1 RU2624667 C1 RU 2624667C1 RU 2016124207 A RU2016124207 A RU 2016124207A RU 2016124207 A RU2016124207 A RU 2016124207A RU 2624667 C1 RU2624667 C1 RU 2624667C1
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
oil
soil
microorganisms
degraders
bacteria
Prior art date
Application number
RU2016124207A
Other languages
English (en)
Inventor
Наталья Марковна Лабутова
Original Assignee
Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования "Санкт-Петербургский государственный университет" (СПбГУ)
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования "Санкт-Петербургский государственный университет" (СПбГУ) filed Critical Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования "Санкт-Петербургский государственный университет" (СПбГУ)
Priority to RU2016124207A priority Critical patent/RU2624667C1/ru
Application granted granted Critical
Publication of RU2624667C1 publication Critical patent/RU2624667C1/ru

Links

Images

Classifications

    • B—PERFORMING OPERATIONS; TRANSPORTING
    • B09—DISPOSAL OF SOLID WASTE; RECLAMATION OF CONTAMINATED SOIL
    • B09C—RECLAMATION OF CONTAMINATED SOIL
    • B09C1/00—Reclamation of contaminated soil
    • B09C1/10—Reclamation of contaminated soil microbiologically, biologically or by using enzymes

Landscapes

  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Mycology (AREA)
  • Soil Sciences (AREA)
  • Environmental & Geological Engineering (AREA)
  • Processing Of Solid Wastes (AREA)
  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)

Abstract

Способ выделения микроорганизмов-деструкторов нефти содержит селекцию микроорганизмов-деструкторов с последующим их выделением в чистую культуру. Селекцию проводят с помощью мембранного фильтра, предварительно пропитанного нефтью, который погружают в очищаемую почву на глубину 5-10 см от поверхности почвы и выдерживают там от 20 до 90 суток, а выделение микроорганизмов-деструкторов нефти, способных к ее разложению в конкретных почвенно-климатических условиях, осуществляют с мембранным фильтром. Мембранный фильтр помещают в пробирку с 10 мл стерильной воды, встряхивают не менее 10 минут, после чего полученную суспензию высевают поверхностно на мясо-пептонный агар для изоляции бактерий деструкторов и на среду Чапека для изоляции грибов-нефтедеструкторов. Использование данного изобретения обеспечивает получение штаммов бактерий и грибов с высокой способностью к нефтедеструкции в естественной почве, а также хорошей приживаемостью в месте применения. 4 ил.

Description

Изобретение относится к области охраны окружающей среды и может быть использовано для очистки нефтезагрязненных почв и грунтов и восстановления нефтезагрязненных земель.
Известны публикации, в которых показано, что создание микробиологических препаратов на основе микроорганизмов-деструкторов нефти, а также изучение в почве их ценозов с целью регуляции численности и активности невозможно без выделения чистых культур эффективных деструкторов [1-2]. Общепринятыми способами выделения микроорганизмов-деструкторов нефти и нефтепродуктов является получение накопительных культур. Согласно таким способам образцы почвы или воды вносят в питательную среду, где единственным источником углерода выступает нефть или нефтепродукты. Пробы инкубируют 7-10 суток при оптимальных условиях роста микроорганизмов, а затем из выросших колоний выделяют чистые культуры [3-6]. Недостатком этих способов является то, что микроорганизмы-деструкторы нефти отбирают на питательной среде в оптимальных условиях влажности, температуры и питания. Между тем, в почве действуют многочисленные биотические и абиотические факторы, которые влияют на рост и способность микроорганизмов к разложению нефти. Таким образом, при использовании способа накопительной культуры выделяют потенциальные, а не реальные микроорганизмы-деструкторы нефти, которые эффективны в конкретных почвенно-климатических условиях. В результате практически все имеющиеся сведения о разнообразии, таксономическом составе и активности почвенных микроорганизмов-деструкторов нефти, полученные с помощью подобных методик, существенно искажены. Биопрепараты, созданные на основе штаммов микроорганизмов-деструкторов нефти, отобранных с помощью такого способа, часто характеризуются низкой эффективностью и нестабильным действием в регионе применения.
Известен способ выделения микроорганизмов-деструкторов нефти, включающий отбор проб с нефтезагрязненных почв и грунтов, выделение ассоциации активных аборигенных штаммов-деструкторов нефти и нефтепродуктов, активацию полученной ассоциации и дальнейшую наработку биомассы ассоциации в ферментерах при оптимальных параметрах культивирования. Для выделения микроорганизмов-деструкторов нефти и нефтепродуктов используют жидкую питательную среду Маккланга следующего состава: NaNO3 - 2,0 г/л; KH2PO4 - 1,0 г/л; MnSO4 - 0,013 г/л; MgSO4⋅7H2O - 0,5 г/л; ZnSO4 - 0,002 г/л; Fe2(SO4)3 - 0,001 г/л. В качестве единственного источника углерода и энергии добавляют стерильный гексадекан (1 мас. %). Культивирование проводят в качалочных колбах на термостатированной качалке при температуре 30°С и частоте вращения 100 мин-1 в течение 3 суток [7]. Однако в известном способе преимущество получают бактерии с достаточно высоким температурным оптимумом роста 30°С, которые непригодны для использования при более низких температурах. Между тем, в северных регионах, в частности в Канаде, России и др., нефтезагрязненные почвы, требующие очистки, находятся в климатических условиях, при которых активность почвенной микрофлоры лимитируется низкой температурой. В известном способе в качестве источника углерода используют гексадекан, что предполагает выделение микроорганизмов, способных окислять именно этот углеводород. Для выделения микроорганизмов-деструкторов нефти требуется дополнительная проверка, т.к. не все микроорганизмы, разлагающие гексадекан, обладают ферментами для разложения нефти.
Известен способ, включающий отбор нефтезагрязненных образцов, приготовление питательных сред с разной концентрацией нефти за счет добавления полисорбата-80, делающего нефть растворимой в воде, высев нефтезагрязненных образцов на среды, культивирование микроорганизмов в оптимальных условиях, отбор штаммов микроорганизмов, выросших на средах [8]. Известный способ позволяет отобрать потенциальные нефтедеструкторы, активно разлагающие нефть в оптимальных условиях культивирования.
Известен способ, включающий отбор проб с нефтезагрязненной поверхности, выделение чистых культур углеводородокисляющих бактерий, культивирование их на плотной питательной среде, определение каталазной активности у выросших штаммов микроорганизмов, смешивание взвеси клеток микроорганизмов с жидкой средой Раймонда, куда добавлена нефть или нефтепродукты в качестве единственного источника углерода, инкубирование взвеси в течение 12 суток, высев на плотную питательную среду, определение у исследуемых штаммов микроорганизмов каталазной активности, отбор штамма микроорганизма как активного деструктора нефти и нефтепродуктов при снижении каталазной активности по сравнению с исходной на 30% и более [9]. В предложенном способе отбирают микроорганизмы, снижающие каталазную активность на питательной среде в оптимальных условиях роста. Такие микроорганизмы не могут гарантированно проявлять высокую приживаемость и эффективность при разложении нефти в естественных условиях. Кроме того, для определения каталазной активности требуются дополнительные материальные затраты, специальное оборудование и обученный персонал.
Известен способ, наиболее близкий к заявляемому изобретению [10], включающий отбор проб с нефтезагрязненной поверхности, просушивание образцов до воздушно-сухого состояния, селекцию углеводородокисляющих бактерий на жидкой минеральной среде с добавлением нефти с места загрязнения при температурах инкубирования +5°С, +15°С, +25°С и +35°С, отбор культур для пересева и дальнейшую наработку в отдельности всех отселектированных микроорганизмов в ферментерах при параметрах культивирования, оптимальных для выделенных микроорганизмов.
Недостатками известного способа являются:
1. Сложность отбора микроорганизмов-деструкторов нефти на жидкой минеральной среде, связанная с тем, что нефть не растворяется в воде [11].
2. Низкая приживаемость в естественной нефтезагрязненной почве микроорганизмов-деструкторов нефти, которые отобраны по способности адаптироваться только к одному фактору - температуре.
3. Возможная низкая эффективность при разложении нефти отобранных микроорганизмов-деструкторов и нестабильность действия в силу их неадаптированности к совокупности абиотических и биотических условий места применения.
Техническим результатом заявленного изобретения является способ отбора микроорганизмов-нефтедеструкторов нефти в полевых условиях, включающих все разнообразие абиотических и биотических факторов, что обеспечивает получение штаммов бактерий и грибов с высокой способностью к нефтедеструкции в естественной почве, а также хорошей приживаемостью в месте применения. Способ не требует культивирования микроорганизмов-деструкторов нефти на жидкой питательной среде.
Сущность заявленного изобретения поясняется Фиг. 1 - Фиг. 4, на которых представлены:
На Фиг. 1 - Мембранный фильтр, пропитанный нефтью.
На Фиг. 2 - Мембранный фильтр, обернутый мельничным газом.
На Фиг. 3 - Картридж, куда вставлен фильтр, обернутый мельничным газом.
На Фиг. 4 - Картридж с мембранным фильтром, помещенный в почву. Позиция а - показана поверхность почвы.
Научными предпосылками заявляемого способа является установление существенной роли почвенных микроорганизмов - бактерий и грибов - в процессе естественного разложения нефти и нефтепродуктов в почве. Предполагается, что углеводородоокисляющие микроорганизмы обладают мобильным ферментным аппаратом и способны перестраиваться на использование углеводородов нефти [12-14].
Скорость разложения нефти зависит от концентрации и качественного состава углеводородов, а также от почвенно-климатических условий региона загрязнения [15-16, 1]. Разные группы и виды микроорганизмов сильно различаются по способности использовать различные классы углеводородов и требованиям, предъявляемым к условиям обитания: обеспеченности почвы кислородом, кислотности, содержанию элементов питания и др. [17].
Для изучения почвенной микрофлоры прямыми методами давно и успешно используются мембранные фильтры. Будучи непригодными для микроорганизмов в качестве питательного субстрата, мембранные фильтры позволяют проводить длительные наблюдения за поведением и взаимоотношениями бактерий и грибов в почве, а также выделять объекты исследования на питательные среды [18-19].
Заявленный способ был апробирован в загрязненной нефтью почве в лабораторных и полевых условиях.
Примеры конкретной апробации заявленного изобретения приведены ниже.
Примеры отбора микроорганизмов-нефтедеструкторов в полевых условиях.
Новизна предлагаемого способа заключается в том, что без промежуточных процедур отбирают штаммы микроорганизмов, способных окислять нефть и нефтепродукты, в конкретных условиях их применения, включающих почвенные (абиотические и биотические) и климатические (температура, влажность) факторы, а также другие особенности нефтезагрязненных почв. Данный способ отличается простотой и не требует значительных материальных затрат.
Для отбора микроорганизмов-нефтедеструкторов необходимо:
1. Инкубировать в почве картридж, содержащий пропитанный нефтью мембранный фильтр.
2. После периода инкубации высеять с мембранного фильтра бактерии и грибы.
3. Изолировать выросшие штаммы микроорганизмов в чистые культуры.
Пример 1. Подготовка картриджа к инкубированию в почве.
Заявленный способ основан на использовании мембранных фильтров, пропитанных нефтью. Мембранные фильтры представляют собой тонкую пластинку нитроцеллюлозы, пронизанную многочисленными извитыми порами. Такие поры позволяют почвенному раствору проникать в толщу фильтра и создавать на его поверхности условия, весьма приближенные к условиям почвенной среды. Размер пор может быть различным, в зависимости от марки фильтра, в том числе меньше, чем размер клеток прокариот. Это позволяет выделять как грибы, так и бактерии, заселившие поверхность фильтра.
При подготовке картриджа мембранные фильтры размером 1×1 см кипятят 20 мин в дистиллированной воде в закрытой посуде для удаления возможного загрязнения и стерилизации. Для предотвращение контаминации дальнейшие манипуляции желательно проводить в стерильных условиях. Фильтры высушивают до воздушно-сухого состояния на стерильной фильтровальной бумаге, затем погружают в предварительно простерилизованную нефть и выдерживают 180 с. Пропитанные нефтью фильтры раскладывают на фильтровальную бумагу и высушивают (Фиг. 1). Затем каждый фильтр оборачивают мельничным газом с размером пор 100-120 мкм (Фиг. 2) и закрепляют в картридже (Фиг. 3). К каждому картриджу привязывают леску длиной 20-25 см.
Мембранный фильтр, предварительно пропитанный нефтью, будучи помещен в почву, является приманкой для микроорганизмов, способных использовать циклические углеводороды в качестве источника углерода.
Пример 2. Инкубация картриджей в почве.
Интродукцию картриджей можно осуществлять на любом участке почвы (грунта) без учета особенностей рельефа, растительности, техногенных изменений и т.д. С помощью лопаты или шпателя в почве (грунте) делают вертикальную щель и помещают в нее картридж на глубину не менее 5-10 см от поверхности почвы, оставляя леску на поверхности. На расстоянии 10-15 см от щели втыкают лопату (шпатель) и прижимают почву (грунт) так, чтобы края щели сомкнулись. Это обеспечивает создание условий аэрации и влажности, максимально приближенных к естественным. Рядом с интродуцированным картриджем втыкают колышек, к которому привязывают леску, что облегчает поиск картриджа после окончания инкубации (Фиг. 4). Оптимальное время инкубации картриджей в почве - не менее 20-30 суток в весенне-летний период, 45-90 суток осенью и зимой.
Пример 3. Выделение микроорганизмов-нефтедеструкторов с мембранных фильтров и получение чистых культур.
После окончания периода инкубации картриджи извлекают из почвы и помещают в стерильные емкости для транспортировки. Желательно проводить посев в день извлечения картриджей. Если такая возможность исключена, то картриджи хранят 2-3 суток при температуре +5°C. Непосредственно перед посевом картриджи раскрывают, каждый извлеченный фильтр помещают в пробирку с 10 мл стерильной воды, встряхивают на ротаторе 10 мин. После этого готовят серию десятикратных разведений и высевают полученную суспензию поверхностно на твердую среду МПА для изоляции бактерий-деструкторов нефти и на твердую среду Чапека для изоляции грибов-нефтедеструкторов. Выросшие колонии оценивают по морфологическим признакам и все морфолого-культуральные типы изолируют в чистые культуры.
Пример 4. Сравнительная оценка способности окислять летучие фракции нефти у микроорганизмов, выделенных с мембранных фильтров и непосредственно из почвы.
Эффективность применения заявляемого способа проверена в условиях полевого эксперимента на дерново-подзолистой почве под растениями люпина и овсяницы. Картриджи с мембранными фильтрами (20 шт.) были интродуцированы в почву в начале июня. Время инкубации - 30 суток. С мембранных фильтров в чистые культуры изолировали 11 морфолого-культуральных типов бактерий и 7 морфолого-культуральных типов грибов. Одновременно с извлечением картриджей с поля отобрали образцы почвы и после приготовления десятикратных разведений произвели поверхностный посев на среду МПА и среду Чапека. Из почвы в чистые культуры изолировали 39 морфолого-культуральных типов бактерий и 18 морфолого-культуральных типов грибов. Уменьшение разнообразия бактерий и грибов на мембранных фильтрах свидетельствует об их избирательном заселении определенными видами микроорганизмов.
Для оценки способности выделенных микроорганизмов к усвоению летучих фракций нефти использовали бумажный фильтр, пропитанный нефтью. Такой фильтр помещали на внутреннюю сторону крышки чашки Петри. Для проверки нефтеокисляющей способности бактерий в чашки разливали твердую питательную среду Маккланга следующего состава: NaNO3 - 2,0 г/л; KH2PO4 - 1,0 г/л; MnSO4 - 0,013 г/л; MgSO4⋅7H2O - 0,5 г/л; ZnSO4 - 0,002 г/л; Fe2(SO4)3 - 0,001 г/л. Грибы проверяли на твердой среде Чапека без добавления сахарозы. После застывания сред производили поверхностный посев чистых культур бактерий и грибов. Образование колонии являлось признаком способности штамма усваивать летучие соединения нефти. Для характеристики активности культур при окислении циклических углеводородов оценивали скорость роста и размер колоний по 3-балльной шкале.
Было установлено:
1. Все штаммы бактерий (100%), выделенные с мембранных фильтров, были способны окислять летучие фракции нефти.
2. Среди бактерий, выделенных с мембранных фильтров, 54,5% проявляли максимальную активность (3 балла) при окислении летучих фракций нефти; 36,4% - среднюю активность (2 балла); 9,1% - низкую активность (1 балл).
3. Из числа бактерий, изолированных из почвы, способностью окислять летучие углеводороды обладали 43,6% штаммов.
4. Среди бактерий, выделенных из почвы, не обнаружено штаммов, обладающих высокой и средней активностью при разложении летучих фракций нефти. Низкую активность (1 балл) проявляли 23,1% культур; очень низкую (0,5 балла) - 20,5%.
5. Все штаммы грибов (100%), выделенные с мембранных фильтров, были способны окислять летучие фракции нефти.
6. Среди грибов, выделенных с мембранных фильтров, 57,1% проявляли максимальную активность (3 балла) при окислении летучих фракций нефти; 28,6% - среднюю активность (2 балла); 14,3% - очень низкую (0,5 балла).
7. Из числа грибов, изолированных из почвы, способностью окислять летучие углеводороды обладали 50% штаммов.
8. Среди грибов, выделенных из почвы, 27,8% проявляли максимальную активность (3 балла) при окислении летучих фракций нефти; 5,5% - низкую активность (1 балл); 16,7 - очень низкую активность (0,5 балла).
Как показывают результаты апробации заявляемого способа, все выделенные с мембранного фильтра штаммы бактерий и грибов способны разлагать летучие фракции нефти. При этом более половины из них демонстрируют высокую активность окисления циклических углеводородов, что позволяет рекомендовать заявляемый способ как эффективный метод отбора микроорганизмов-деструкторов нефти, способных к ее разложению в конкретных почвенно-климатических условиях, с целью создания биопрепаратов для очистки нефтезагрязненных почв и грунтов.
Используемые источники информации
1. Шамраев А.В., Шорина Т.С. Влияние нефти и нефтепродуктов на различные компоненты окружающей среды // Вестник Оренбургского государственного университета. 2009. №6. С. 642-645.
2. Кобзев Е. Н., Шкидченко А.И. Оценка углеводородокисляющей активности микроорганизмов // Прикладная биохимия и микробиология. 2003. Т 39. №1. С. 25-31.
3. Нгуен Тиен, Сопрунова Б.О. Поиск и выявление новых бактериальных штаммов с полифункциональными свойствами в техногенных субстратах // Известия Самарского научного центра Российской академии наук. 2011. Т. 13 №5(3). С. 167-170.
4. Киреева Н.А., Григориади А.С., Хайбулина Е.Ф. Ассоциации нефтеокисляющих микроорганизмов для биоремедиации нефтезагрязненных почв // Вестник Башкирского университета. 2009. Т. 9. №2. С. 391-394.
5. Бабаев Э.Р., Мамедова П.Ш., Кулиева Д.М., Мовсумзаде М.Э. Выбор активного микроорганизма-деструктора углеводородов для очистки нефтезагрязненных почв Балаханского месторождения // Башкирский химический журнал. 2009. Т. 16. №1. С. 103-106.
6. Plakunov V.K., Zhurina M.V., Beliaev S.S. Resistance of the petroleum-oxidizing microorganism Dietzia sp.to hyperosmotic shock in reconstituted biofilms // Microbiologiia. 2008. №77(5). P. 581-590.
7. Патент RU 2 352 630 C1, опубликовано 20.04.2009. «Способ выделения и активации консорциума аборигенных микроорганизмов-деструкторов нефти и нефтепродуктов» (прототип)
8. Патент CN 104388312, опубликовано 12.10.2014. «Screening methodfor petroleum degrading bacteria, method for preparing petroleum degrading bacteria inoculant from screened bacteria, and application of inoculant».
9. Патент RU 2 426 781 C2, опубликовано 20.08.2011. «Способ выбора штаммов микроорганизмов-деструкторов нефти и нефтепродуктов».
10. Патент RU 2241745, опубликовано 10.12.2004. «Способ выделения деструкторов нефти и нефтепродуктов» - прототип.
11. Егоров Н.С. Микробиология и биотехнология. 1987. М.: Высшая школа. 143 с.
12. Renner K.О., Agwu О.A. The status of the soil microbial flora and oil content of Imore, a coastal community in Lagos state, Nigeria after petroleum spill and fire outbreak // International Journal of Biosciences (IJB). 2012. Vol. 2. No. 2. P. 27-35.
13. Zrafi-Nouira I., Saidane-Mosbahi D., Abdelghani S., Bakhrouf A., Rouabhia M.. Crude Oil Metagenomics for Better Bioremediation of Contaminated Environments // Dans "Introduction to Enhanced Oil Recovery (EOR) Processes and Bioremediation of Oil-Contaminated Sites". Edited by Laura Romero-Zeron. ISBN 978-953-51-0629-6. 2012, P. 318.
14. Габбасова И.M. Деградация и рекультивация почв Башкортостана. Уфа. Гилем. 2004 г. 284 с.
15. Ильин Н.П. и др. Наблюдение за самоочищением почв от нефти в средней и южной тайге // Добыча полезных ископаемых и геохимия природных экосистем. М.: Наука, 1982. С. 245-258.
16. Куликова И.Ю. Биодеградация нефтяных загрязнений // Экология и промышленность России. Астраханский государственный технический университет. 2008 г.
17. Кононова В.В., Самсонова А.С., Семочкина Н.Ф. Сурфактантобразующая микрофлора: свойства и практическое использование. Микробные биотехнологии: фундаментальные и прикладные аспекты // Сборник научных трудов ГНУ «Институт микробиологии НАН Беларуси». 2007 г.
18. Шахназарова В.Ю., Струнникова O.К., Вишневская Н.А. Влияние влажности на развитие Fusarium culmorum в почве // Микология и фитопатологии. 1999. Том 33. Вып. №1. С. 53-59.
19. Струнникова O.К., Шахназарова В.Ю., Вишневская Н.А., Муромцев Г.С. Применение мембранных фильтров и иммунофлюоресцентного окрашивания для наблюдения за развитием почвообитающих микромицетов. // Микология и фитопатологии. 1998. Том 32. Вып. 2. С. 65-71.

Claims (1)

  1. Способ выделения микроорганизмов-деструкторов нефти, включающий селекцию микроорганизмов-деструкторов с последующим их выделением в чистую культуру, отличающийся тем, что селекцию проводят с помощью мембранного фильтра, предварительно пропитанного нефтью, который погружают в очищаемую почву на глубину не менее 5-10 см от поверхности почвы и выдерживают там от 20 до 90 суток, а выделение микроорганизмов-деструкторов нефти, способных к ее разложению в конкретных почвенно-климатических условиях, осуществляют с мембранного фильтра, который помещают в пробирку с 10 мл стерильной воды, встряхивают не менее 10 мин, после чего полученную суспензию высевают поверхностно на мясо-пептонный агар для изоляции бактерий-деструкторов и на среду Чапека для изоляции грибов-нефтедеструкторов.
RU2016124207A 2016-06-17 2016-06-17 Способ выделения штаммов микроорганизмов-деструкторов нефти RU2624667C1 (ru)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2016124207A RU2624667C1 (ru) 2016-06-17 2016-06-17 Способ выделения штаммов микроорганизмов-деструкторов нефти

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2016124207A RU2624667C1 (ru) 2016-06-17 2016-06-17 Способ выделения штаммов микроорганизмов-деструкторов нефти

Publications (1)

Publication Number Publication Date
RU2624667C1 true RU2624667C1 (ru) 2017-07-05

Family

ID=59312824

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
RU2016124207A RU2624667C1 (ru) 2016-06-17 2016-06-17 Способ выделения штаммов микроорганизмов-деструкторов нефти

Country Status (1)

Country Link
RU (1) RU2624667C1 (ru)

Cited By (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2735870C1 (ru) * 2019-10-17 2020-11-09 Ян Владимирович Беркович Способ выделения микроорганизмов для очистки и восстановления нефтезагрязненных почв и грунтов методом фитобиоремедиации
RU2793460C2 (ru) * 2018-06-06 2023-04-04 Амвак Гонконг Лимитед Способ отбора микроорганизмов для объединения в композицию с носителями

Citations (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO2003008434A2 (fr) * 2001-07-17 2003-01-30 Nelly Gennadievna Astrova Souches bacteriennes servant a degrader des composes a base d'hydrocarbures, des agents tensioactifs et des xenobiotiques pour l'epuration de l'hydrosphere
RU2241745C2 (ru) * 2002-10-10 2004-12-10 Закрытое акционерное общество Научно-производственная система "Элита-комплекс" Способ выделения деструкторов нефти и нефтепродуктов
RU2292326C2 (ru) * 2005-01-21 2007-01-27 Общество с ограниченной ответственностью "ЛУКОЙЛ-Коми" Биопрепарат-нефтедеструктор
RU2319740C2 (ru) * 2005-01-21 2008-03-20 Общество с ограниченной ответственностью "ЛУКОЙЛ-Коми" Биопрепарат-нефтедеструктор

Patent Citations (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO2003008434A2 (fr) * 2001-07-17 2003-01-30 Nelly Gennadievna Astrova Souches bacteriennes servant a degrader des composes a base d'hydrocarbures, des agents tensioactifs et des xenobiotiques pour l'epuration de l'hydrosphere
RU2241745C2 (ru) * 2002-10-10 2004-12-10 Закрытое акционерное общество Научно-производственная система "Элита-комплекс" Способ выделения деструкторов нефти и нефтепродуктов
RU2292326C2 (ru) * 2005-01-21 2007-01-27 Общество с ограниченной ответственностью "ЛУКОЙЛ-Коми" Биопрепарат-нефтедеструктор
RU2319740C2 (ru) * 2005-01-21 2008-03-20 Общество с ограниченной ответственностью "ЛУКОЙЛ-Коми" Биопрепарат-нефтедеструктор

Non-Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
WO 2003008434 A2, 30/01/2003. RU 2292326 C2, 27/01/2007. *

Cited By (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2793460C2 (ru) * 2018-06-06 2023-04-04 Амвак Гонконг Лимитед Способ отбора микроорганизмов для объединения в композицию с носителями
RU2735870C1 (ru) * 2019-10-17 2020-11-09 Ян Владимирович Беркович Способ выделения микроорганизмов для очистки и восстановления нефтезагрязненных почв и грунтов методом фитобиоремедиации

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Burghal et al. Mycodegradation of crude oil by fungal species isolated from petroleum contaminated soil
Marasco et al. Salicornia strobilacea (synonym of Halocnemum strobilaceum) grown under different tidal regimes selects rhizosphere bacteria capable of promoting plant growth
KR102597380B1 (ko) 구성형 1,4-디옥산 분해균
CN114107092B (zh) 一株降解邻苯二甲酸酯的植物内生菌戈登氏菌l191及其应用
Marzuki et al. Study biodegradation of aromatics pyrene using bacterial isolates from the sea and micro symbionts sponges
Zeng et al. Uptake pathways of phthalates (PAEs) into Chinese flowering cabbage grown in plastic greenhouses and lowering PAE accumulation by spraying PAE-degrading bacterial strain
Rondón et al. Diversity of culturable bacteria recovered from Pico Bolívar’s glacial and subglacial environments, at 4950 m, in Venezuelan tropical Andes
RU2509150C2 (ru) Ассоциация штаммов бактерий-нефтедеструкторов и способ ремедиации нефтезагрязненных объектов
RU2624667C1 (ru) Способ выделения штаммов микроорганизмов-деструкторов нефти
KR102451612B1 (ko) 이미노디프로피오니트릴 분해 활성을 갖는 파라코커스 속 균주 및 이의 용도
RU2300561C1 (ru) Штамм rhodococcus globerulus h-42 для разложения нефти и нефтепродуктов
RU2735870C1 (ru) Способ выделения микроорганизмов для очистки и восстановления нефтезагрязненных почв и грунтов методом фитобиоремедиации
RU2257409C1 (ru) Штамм rhodococcus erythropolis для разложения нефти и нефтепродуктов
Sandoval et al. Reduction of imidacloprid and tebuconazole in Oryza sativa plantation applying strains of Trichoderma spp.
RU2630246C1 (ru) Способ очистки почвы от загрязнений нефтепродуктами
Abbasi et al. Biodegradation of phenanthrene polluted soil through native strains in the Darkhouvin oil field
RU2114174C1 (ru) Консорциум дрожжей candida maltosa для биодеградации нефтезагрязнений
RU2266958C2 (ru) Штаммы микроорганизмов-деструкторов:zoogloea sp. 14h, arthrobacter sp. 13h, arthrobacter sp. 15h, bacillus sp. 3h, bacillus sp. 12 h, используемые для ремедиации водоемов и почв, загрязненных нефтью и нефтепродуктами, и ассоциация штаммов микроорганизмов-деструкторов на их основе
RU2257410C1 (ru) Штамм rhodococcus erythropolis для разложения нефти и нефтепродуктов
Fazilah et al. Biodegradation of PAH-polluted soil by indigenous bacteria
TWI518180B (zh) 具有乳化能力以及對於苯和／或萘的清除能力的桃園假單胞菌ｓ０３分離株及其用途
CN112877243B (zh) 一种降解乙酰甲胺磷的湖生戴尔福特菌及其应用
Ubani Development of an active bacterial formulation for degradation of complex crude oil wastes
RU2819915C1 (ru) Способ выделения бактерий из грунта угольных отвалов для биологической рекультивации
Moreno et al. Growth and nitrogenase activity of Azotobacter vinelandii on soil phenolic acids