RU2624241C1 - Solid phase carrier for immobilization and/or storage of biological samples containing nucleic acids - Google Patents

Solid phase carrier for immobilization and/or storage of biological samples containing nucleic acids Download PDF

Info

Publication number
RU2624241C1
RU2624241C1 RU2016111149A RU2016111149A RU2624241C1 RU 2624241 C1 RU2624241 C1 RU 2624241C1 RU 2016111149 A RU2016111149 A RU 2016111149A RU 2016111149 A RU2016111149 A RU 2016111149A RU 2624241 C1 RU2624241 C1 RU 2624241C1
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
phase carrier
carrier according
solid
solid phase
dna
Prior art date
Application number
RU2016111149A
Other languages
Russian (ru)
Inventor
Владимир Леонидович Сурвило
Герман Александрович Шипулин
Original Assignee
Акционерное Общество "ГенТерра"
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Акционерное Общество "ГенТерра" filed Critical Акционерное Общество "ГенТерра"
Priority to RU2016111149A priority Critical patent/RU2624241C1/en
Application granted granted Critical
Publication of RU2624241C1 publication Critical patent/RU2624241C1/en

Links

Classifications

    • GPHYSICS
    • G01MEASURING; TESTING
    • G01NINVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
    • G01N33/00Investigating or analysing materials by specific methods not covered by groups G01N1/00 - G01N31/00
    • G01N33/48Biological material, e.g. blood, urine; Haemocytometers
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N11/00Carrier-bound or immobilised enzymes; Carrier-bound or immobilised microbial cells; Preparation thereof
    • C12N11/02Enzymes or microbial cells immobilised on or in an organic carrier

Landscapes

  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Urology & Nephrology (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • General Physics & Mathematics (AREA)
  • Immunology (AREA)
  • Pathology (AREA)
  • Physics & Mathematics (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • Analytical Chemistry (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Food Science & Technology (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • Hematology (AREA)
  • Solid-Sorbent Or Filter-Aiding Compositions (AREA)

Abstract

FIELD: biotechnology.
SUBSTANCE: solid phase carrier for immobilization and storage of samples containing nucleic acids is a porous cellulose base treated with a composition containing a detergent, a weak base, a chelating agent, and a disaccharide.
EFFECT: prolonged storage of samples at room temperature without destroying nucleic acids; also allows carrier sterilisation against impurity DNA or RNA without loss of carrier properties.
14 cl, 4 tbl, 4 ex

Description

Область техники:Field of Technology:

Настоящее изобретение относится к твердофазному носителю для иммобилизации и последующего длительного хранения в комнатных условиях биологических материалов, содержащих нуклеиновые кислоты (ДНК или РНК), представляющему собой пористую основу, обработанную композицией, содержащей набор реагентов.The present invention relates to a solid-phase carrier for immobilization and subsequent long-term storage at room temperature of biological materials containing nucleic acids (DNA or RNA), which is a porous base treated with a composition containing a set of reagents.

Уровень техники:The prior art:

Использование твердофазных носителей для сохранения образцов биологического материала в целях последующего выделения и анализа биомолекул широко известно с 1960х гг., когда были созданы первые карты такого рода - т.н. карты Гатри [1, 2], предназначенные для скрининга новорожденных с целью выявления генетического заболевания - фенилкетонурии. Впоследствии были разработаны многочисленные варианты таких твердофазных носителей, в частности, носителей на основе целлюлозы, обеспечивающих длительную сохранность образцов биологических материалов, содержащих ДНК или РНК, при комнатной температуре [3, 4], и требования к таким носителям, включая критерии их стандартизации [5].The use of solid-phase carriers to preserve samples of biological material for the subsequent isolation and analysis of biomolecules has been widely known since the 1960s, when the first maps of this kind were created - the so-called Guthrie's cards [1, 2], designed for screening newborns to detect a genetic disease - phenylketonuria. Subsequently, numerous variants of such solid-phase carriers, in particular, cellulose-based carriers, ensuring the long-term preservation of samples of biological materials containing DNA or RNA at room temperature [3, 4], and requirements for such carriers, including criteria for their standardization [5, were developed ].

Известны карты для хранения образцов Whatman® 903 Specimen Collection Paper [6-9], позволяющие в течение длительного времени сохранять ДНК- или РНК-содержащие образцы биологического материала (такие как образцы крови и др.) при температуре -20°С в герметично запаянном контейнере совместно с влагопоглотителем [9].Known cards for storing samples Whatman ® 903 Specimen Collection Paper [6-9], allowing for a long time retain DNA or RNA-containing biological material samples (such as blood samples, etc..) At -20 ° C in a hermetically sealed container together with a desiccant [9].

Известен предлагаемый в качестве ближайшего аналога настоящего изобретения твердофазный носитель для длительного хранения образцов биологического материала, содержащих ДНК или РНК, в т.ч., образцов генетического материала, выделенных из крови, включающий твердую матрицу, выполненную из твердой целлюлозы (предпочтительно, из фильтровальной бумаги) или из полимера, где указанная матрица содержит соединение или композицию, нанесенные на матрицу или абсорбированные на матрице и защищающие ДНК или РНК от деградации [10]. В качестве соединения, защищающего ДНК или РНК от деградации, твердофазный носитель согласно [10] использует мочевую кислоту совместно со слабым основанием, с получением соли мочевой кислоты - урата и с обеспечением щелочного рН в диапазоне от 8,0 до 9,5.A solid-phase carrier for the long-term storage of samples of biological material containing DNA or RNA, including samples of genetic material isolated from blood, including a solid matrix made of solid cellulose (preferably filter paper), is known as the closest analogue of the present invention. ) or from a polymer, wherein said matrix contains a compound or composition deposited on the matrix or absorbed on the matrix and protecting DNA or RNA from degradation [10]. As a compound that protects DNA or RNA from degradation, the solid-phase carrier according to [10] uses uric acid together with a weak base to obtain a uric acid salt, urate, and to provide an alkaline pH in the range from 8.0 to 9.5.

Дополнительно твердофазный носитель [10] может содержать хелатирующий агент, такой как ЭДТА, анионный детергент, такой как натрий лаурилсульфат (натрий додецилсульфат, SDS), и слабощелочной буфер, такой как трис-ЭДТА буфер. К недостаткам твердофазного носителя [10] относится то, что он требует импрегнирования в полистирол для последующего долгосрочного хранения при комнатной температуре, либо хранения в рефрижераторе при температуре -15°С в присутствии влагопоглотителя и нескольких кристаллов сухого натрия карбоната, что увеличивает себестоимость хранения образцов на таком носителе.Additionally, the solid phase carrier [10] may contain a chelating agent, such as EDTA, an anionic detergent, such as sodium lauryl sulfate (sodium dodecyl sulfate, SDS), and a slightly alkaline buffer, such as Tris-EDTA buffer. The disadvantages of the solid-phase carrier [10] include the fact that it requires impregnation in polystyrene for subsequent long-term storage at room temperature, or storage in a refrigerator at -15 ° C in the presence of a desiccant and several crystals of dry sodium carbonate, which increases the cost of storing samples by such a carrier.

Кроме того, носитель в соответствии с прототипом [10], как и многие другие аналогичные носители, сталкивается с проблемой присутствия контаминирующей ДНК или РНК бактериального, вирусного и др. происхождения. Твердофазный носитель для хранения биологических образцов с целью последующего выделения ДНК или РНК, обладающий оптимальными характеристиками, должен не только обеспечивать возможность долгосрочного хранения ДНК-содержащих биологических образцов, но и предоставлять возможность стерилизационной предобработки с целью разрушения контаминирующей ДНК или РНК.In addition, the carrier in accordance with the prototype [10], like many other similar carriers, faces the problem of the presence of contaminating DNA or RNA of bacterial, viral, and other origin. A solid-phase carrier for storing biological samples for the purpose of subsequent extraction of DNA or RNA with optimal characteristics should not only provide the possibility of long-term storage of DNA-containing biological samples, but also provide the possibility of sterilization pretreatment in order to destroy contaminated DNA or RNA.

В связи с указанными недостатками прототипа [10] остается актуальной задача создания твердофазного носителя на основе пористого целлюлозного материала, позволяющего осуществлять длительное хранение биологических образцов, содержащих ДНК или РНК, при комнатной температуре, без использования дополнительных мер средств, который, однако, не утрачивал бы своих свойств в результате стерилизационной предобработки.In connection with these shortcomings of the prototype [10], it remains an urgent task to create a solid-phase carrier based on porous cellulosic material that allows long-term storage of biological samples containing DNA or RNA at room temperature, without the use of additional measures, which, however, would not lose their properties as a result of sterilization pre-treatment.

В рамках настоящего изобретения неожиданно было показано, что твердофазный носитель на основе пористой целлюлозы, пропитанный или покрытый композицией, содержащей слабое основание, анионный детергент и хелатообразующий агент, отличается тем, что дополнительно содержит дисахарид, эффективно защищает ДНК или РНК, содержащиеся в биологических образцах, от деградации под действием ионизирующего излучения или этиленоксида, в то же время позволяя осуществить стерилизационную обработку носителя от «примесной» ДНК или РНК, в чем и заключается неожиданный технический результат настоящего изобретения.In the framework of the present invention, it was unexpectedly shown that a porous cellulose-based solid phase carrier, impregnated or coated with a composition containing a weak base, an anionic detergent and a chelating agent, is characterized in that it additionally contains a disaccharide, effectively protects DNA or RNA contained in biological samples, from degradation due to ionizing radiation or ethylene oxide, at the same time allowing sterilization treatment of the carrier from “impurity” DNA or RNA, which concludes I unexpected technical result of the present invention.

В предпочтительном варианте изобретения дисахарид представляет собой трегалозу, сахарозу, мальтозу или их комбинацию; в наиболее предпочтительном воплощении, дисахарид представляет собой комбинацию трегалозы и сахарозы в массовом соотношении от 1:1 до 1:4 или смесь трегалозы и мальтозы в массовом соотношении от 1:1 до 1:4.In a preferred embodiment, the disaccharide is trehalose, sucrose, maltose, or a combination thereof; in a most preferred embodiment, the disaccharide is a combination of trehalose and sucrose in a mass ratio of from 1: 1 to 1: 4 or a mixture of trehalose and maltose in a mass ratio of from 1: 1 to 1: 4.

В предпочтительном варианте изобретения рН упомянутой композиции составляет от 7,0 до 9,0.In a preferred embodiment, the pH of said composition is from 7.0 to 9.0.

В более предпочтительном варианте изобретения, упомянутая композиция содержит от 0,2 до 0,4% детергента, от 0,1 до 0,2% слабого основания, от 0,02 до 0,04% хелатообразующего агента и от 0,3 до 0,5% дисахарида.In a more preferred embodiment of the invention, said composition contains from 0.2 to 0.4% detergent, from 0.1 to 0.2% weak base, from 0.02 to 0.04% chelating agent, and from 0.3 to 0 5% disaccharide.

В предпочтительном варианте слабое основание выбрано из группы, включающей трис(гидроксиметил)аминометан, N-(2-гидрокси-1,1-бис(гидроксиметил)этил)глицин, N,N-бис-(2-гидроксиэтил)глицин и натриевую соль 4-(2-оксиэтил)1-пиперазинэтансульфоновой кислоты.In a preferred embodiment, the weak base is selected from the group consisting of Tris (hydroxymethyl) aminomethane, N- (2-hydroxy-1,1-bis (hydroxymethyl) ethyl) glycine, N, N-bis- (2-hydroxyethyl) glycine and sodium salt 4- (2-hydroxyethyl) 1-piperazineethanesulfonic acid.

В предпочтительном варианте анионный детергент выбран из гуанидина гидрохлорида, гуанидина изоционата, мочевины, лаурилсульфата натрия (SDS), полиоксиэтилен сорбитан монолаурата (Tween 20 или др.), октилфенокси-полиэтоксиэтанола (Nonidet Р40 или др.) и т-октилфеноксиполиэтоксиэтанола (Triton Х-100 или др.).In a preferred embodiment, the anionic detergent is selected from guanidine hydrochloride, guanidine isocyanate, urea, sodium lauryl sulfate (SDS), polyoxyethylene sorbitan monolaurate (Tween 20 or others), octylphenoxy-polyethoxyethanol (Nonidet P40 or others) and t-octylphenolphenol 100 or others).

В предпочтительном варианте хелатообразующий агент выбран из группы, включающей тринатриевую соль нитрилтриуксусной кислоты, динатриевую соль этилендиаминтетрауксусной кислоты, тринатриевую соль N-(гидроксиэтил)этилен-диаминтетрауксусной кислоты и пентатриевую соль диэтилентетраминпентауксусной кислоты.In a preferred embodiment, the chelating agent is selected from the group consisting of trisodium nitrile triacetic acid, disodium salt of ethylenediaminetetraacetic acid, trisodium salt of N- (hydroxyethyl) ethylene diamine tetraacetic acid and pentasodium salt of diethylenetetramine pentaacetic acid.

Твердофазный носитель в соответствии с изобретением обеспечивает возможность длительного хранения биологических образцов, содержащих нуклеиновые кислоты (ДНК или РНК) при комнатной температуре без использования дополнительных средств (таких, как импрегнирование карт в полистирол, использование рефрижератора и т.п.), а также возможность эффективной стерилизационной предобработки без утраты полезных свойств носителя.The solid-phase carrier in accordance with the invention provides the possibility of long-term storage of biological samples containing nucleic acids (DNA or RNA) at room temperature without the use of additional means (such as impregnating cards into polystyrene, using a refrigerator, etc.), as well as the possibility of efficient sterilization pretreatment without loss of useful properties of the carrier.

Стерилизационная предобработка может осуществляться ионизирующим излучением [11], например гамма-излучением. Наиболее предпочтительно, стерилизующая доза гамма-излучения составляет от 10 до 25 кГр, В альтернативном варианте стерилизация может осуществляться газовой смесью, содержащей этиленоксид [12]. В наиболее предпочтительном варианте количество этиленоксида в газовой смеси составляет от 5 до 15%, при этом в самом предпочтительном варианте обработку газовой смесью, содержащей этиленоксид, осуществляют по крайней мере на протяжении от 4 до 8 часов.Sterilization pretreatment can be carried out by ionizing radiation [11], for example, gamma radiation. Most preferably, the sterilizing dose of gamma radiation is from 10 to 25 kGy. Alternatively, sterilization can be carried out with a gas mixture containing ethylene oxide [12]. In the most preferred embodiment, the amount of ethylene oxide in the gas mixture is from 5 to 15%, while in the most preferred embodiment, the treatment with the gas mixture containing ethylene oxide is carried out for at least 4 to 8 hours.

Ниже приведены примеры осуществления изобретения, наглядно демонстрирующие возможность достижения заявленного технического результата, не ограничивая при этом объема притязаний.Below are examples of the invention, clearly demonstrating the possibility of achieving the claimed technical result, without limiting the scope of the claims.

Примеры осуществления изобретенияExamples of carrying out the invention

Пример 1. Приготовление твердофазного носителя.Example 1. Preparation of solid phase media.

40 г лаурилсульфата натрия, 38,8 г трис(гидроксиметил)аминометана и 5,8 г ЭДТА смешали с 50 г смеси трегалоза: сахароза (в массовом соотношении 1:3), растворили в дистиллированной воде, затем добавили при перемешивании концентрированную соляную кислоту до рН 8,5, и затем довели объем полученного раствора до 1 л. Обеззоленную фильтровальную бумагу типа Whatman® 903 пропитали полученной композицией и сушили при температуре 70°С в течение 4 часов. Полученный твердофазный носитель нарезали на карты размером 5,0×5,0 см. Аналогичным образом получили твердофазные носители с использованием 50 г трегалозы, 50 г сахарозы или 50 г мальтозы и 50 г смеси трегалозы и мальтозы в массовом соотношении 1:3 вместо 50 г смеси трегалоза:сахароза в массовом соотношении 1:3.40 g of sodium lauryl sulfate, 38.8 g of tris (hydroxymethyl) aminomethane and 5.8 g of EDTA were mixed with 50 g of a mixture of trehalose: sucrose (in a mass ratio of 1: 3), dissolved in distilled water, then concentrated hydrochloric acid was added with stirring to pH 8.5, and then the volume of the resulting solution was adjusted to 1 liter. Ashless filter paper type Whatman ® 903 was impregnated with the resulting composition, and dried at 70 ° C for 4 hours. The obtained solid-phase carrier was cut into 5.0 × 5.0 cm cards. Solid-phase carriers were similarly prepared using 50 g of trehalose, 50 g of sucrose or 50 g of maltose and 50 g of a mixture of trehalose and maltose in a mass ratio of 1: 3 instead of 50 g mixtures of trehalose: sucrose in a mass ratio of 1: 3.

Аналогичным образом готовили контрольные твердофазные носители, не содержащие дисахарида.Similarly prepared control solid-phase media that do not contain disaccharide.

Пример 2. Исследование хранения ДНК на твердофазных носителях.Example 2. The study of the storage of DNA on solid phase media.

Для исследования хранения ДНК-карт использовали метод «ускоренного старения».To study the storage of DNA cards, the “accelerated aging” method was used.

На исследуемые и контрольные носители, а также на носители сравнения (FTA™ Mini Card производства GE Healthcare, кат. № WB120055) поместили по 85 мкл образца капиллярной крови и сушили при комнатной температуре в течение 4 часов. Затем часть носителей поместили в сушильный шкаф с постоянной температурой 60°С. Вторую часть носителей оставили при комнатной температуре.85 μl of a capillary blood sample was placed on test and control media, as well as on reference media (FTA ™ Mini Card manufactured by GE Healthcare, Cat. No. WB120055) and dried at room temperature for 4 hours. Then part of the media was placed in an oven with a constant temperature of 60 ° C. The second part of the media was left at room temperature.

Образцы носителей, хранящихся при температуре 60°С, исследовали через каждые 7 дней хранения, а образцы носителей, хранящихся при комнатной температуре, исследовали через каждый 21 день хранения.Samples of carriers stored at 60 ° C were examined every 7 days of storage, and samples of carriers stored at room temperature were examined every 21 days of storage.

Для этого из носителей с помощью перфоратора вырезали диски диаметром 2 мм. Диски помещали в пробирки типа «Эппендорф» и встряхивали с 0,2 мкл трис-ЭДТА буфером (рН 8,5) на лабораторном шейкере типа «Вортекс» в течение 5 минут, затем трис-ЭДТА буфер удалили декантацией. Процедуру повторили дважды. Диски сушили при 60°С в течение 30 минут и помещали в пробирки для ПЦР. В пробирки добавили по 25 мкл реакционной смеси, приготовленной согласно инструкции для набора реагентов «АмплиСенс® М. hominis-скрин-титр-FL». Пробирки помещали в автоматический амплификатор и проводили амплификацию методом ПЦР в реальном времени по следующей программе (Таблица 1):For this, disks with a diameter of 2 mm were cut out from the carriers using a punch. Disks were placed in Eppendorf tubes and shaken with 0.2 μl Tris-EDTA buffer (pH 8.5) on a Vortex laboratory shaker for 5 minutes, then Tris-EDTA buffer was removed by decantation. The procedure was repeated twice. The discs were dried at 60 ° C for 30 minutes and placed in PCR tubes. 25 μl of the reaction mixture prepared according to the instructions for the AmpliSens ® M. hominis-screen-titer-FL reagent kit was added to the tubes. The tubes were placed in an automatic amplifier and amplification was performed by real-time PCR using the following program (Table 1):

Figure 00000001
Figure 00000001

Флуоресцентный сигнал детектировали, начиная с шестого цикла. Детекцию вели по каналу для флуорофора JOE (канал детекции для внутреннего контрольного образца, специфичного к ДНК человека).A fluorescent signal was detected starting from the sixth cycle. Detection was conducted via the JOE fluorophore channel (detection channel for an internal control specimen specific for human DNA).

Результаты представлены в таблице 2, где Т60 - твердофазный носитель по изобретению на целлюлозной основе, приготовленный с использованием трегалозы в качестве дисахарида, хранящийся при температуре 60°С;The results are presented in table 2, where T60 is a solid-phase carrier according to the invention on a cellulose basis, prepared using trehalose as a disaccharide, stored at a temperature of 60 ° C;

S60 - твердофазный носитель по изобретению на целлюлозной основе, приготовленный с использованием сахарозы в качестве дисахарида и хранящийся при 60°С;S60 is a solid-phase carrier according to the invention on a cellulose basis, prepared using sucrose as a disaccharide and stored at 60 ° C;

М60 - твердофазный носитель по изобретению на целлюлозной основе, приготовленный с использованием мальтозы в качестве дисахарида и хранящийся при 60°С;M60 is a solid-phase carrier according to the invention on a cellulose basis, prepared using maltose as a disaccharide and stored at 60 ° C;

TS60 - карта, приготовленная с использованием комбинации трегалозы и сахарозы (в массовом соотношении 1:3) в качестве дисахарида и хранящаяся при 60°С;TS60 - a card prepared using a combination of trehalose and sucrose (in a mass ratio of 1: 3) as a disaccharide and stored at 60 ° C;

ТМ60 - карта, приготовленная с использованием комбинации трегалозы и мальтозы (в массовом соотношении 1:3) в качестве дисахарида и хранящаяся при 60°С;TM60 - a card prepared using a combination of trehalose and maltose (in a mass ratio of 1: 3) as a disaccharide and stored at 60 ° C;

О60 - твердофазный носитель по изобретению на целлюлозной основе, приготовленный без использования дисахарида и хранящийся при 60°С;O60 is a solid-phase carrier according to the invention on a cellulose basis, prepared without the use of a disaccharide and stored at 60 ° C;

F60 - твердофазный носитель сравнения FTA™ Mini Card, хранящийся при 60°С;F60 — FTA ™ Mini Card solid-state comparison carrier stored at 60 ° C;

Т25 - твердофазный носитель по изобретению на целлюлозной основе, приготовленный с использованием трегалозы в качестве дисахарида и хранящийся при комнатной температуре (20-25°С);T25 is a solid-phase carrier according to the invention on a cellulose basis, prepared using trehalose as a disaccharide and stored at room temperature (20-25 ° C);

О25 - твердофазный носитель по изобретению на целлюлозной основе, приготовленный без использования дисахарида и хранящийся при комнатной температуре (20-25°С);O25 - a solid-phase carrier according to the invention on a cellulose basis, prepared without the use of a disaccharide and stored at room temperature (20-25 ° C);

F25 - твердофазный носитель сравнения FTA™ Mini Card, хранящийся при комнатной температуре (20-25°С).F25 is an FTA ™ Mini Card solid-phase comparison medium stored at room temperature (20–25 ° C).

Из Таблицы 2 следует, что при комнатной температуре образцы ДНК одинаково хорошо хранятся на носителях как с дисахаридами, так и без дисахаридов (результаты в опытной группе и в группе сравнения были сопоставимы), однако при повышенной температуре ДНК значительно лучше сохраняется на твердофазных носителях по изобретению; напротив, на картах без дисахарида, в том числе и на носителях сравнения, ДНК подвергалась полной деструкции после 63 дней хранения при 60°С.From Table 2 it follows that at room temperature the DNA samples are equally well stored on carriers with both disaccharides and without disaccharides (the results in the experimental group and in the comparison group were comparable), however, at elevated temperatures, the DNA is much better stored on solid-phase media according to the invention ; on the contrary, on cards without disaccharide, including on comparison media, DNA underwent complete destruction after 63 days of storage at 60 ° C.

Figure 00000002
Figure 00000002

Пример 3. Стерилизационная предобработка носителей газовой смесью, содержащей этиленоксид, и гамма-излучением.Example 3. Sterilization pretreatment of carriers with a gas mixture containing ethylene oxide and gamma radiation.

С целью имитации контаминации на твердофазные носители по примеру 1, содержащие смесь трегалозы с сахарозой (в массовом соотношении 1:3), а также аналогичные носители без дисахаридов нанесли отмытые лейкоциты крови человека или раствор ДНК, выделенной из лейкоцитов крови человека. Для выделения ДНК из лейкоцитов использовали набор реагентов «АмплиПрайм РИБО-преп». После нанесения лейкоцитов и раствора ДНК карты сушили в течение 4 часов при комнатной температуре, затем запаковали в бумажные конверты и отправили на обработку. Часть карт обрабатывали смесью 10% этиленоксида и углекислого газа в течение 4 и 8 часов, часть - гамма-облучением (10 и 25 кГр). Контрольные карты оставили запечатанными в конверте без обработки. После обработки карты извлекли из конвертов и из областей, куда были нанесены образцы лейкоцитов и ДНК, панчером вырезали диски диаметром 2 мм. Остаточное содержание ДНК измеряли методом ПЦР в реальном времени согласно примеру 2. Результаты представлены в таблице 3.In order to simulate contamination on solid-phase carriers of Example 1 containing a mixture of trehalose with sucrose (in a mass ratio of 1: 3), as well as similar carriers without disaccharides, washed human blood leukocytes or a DNA solution isolated from human blood leukocytes were applied. AmpliPrim RIBO-prep reagent kit was used to isolate DNA from leukocytes. After applying the white blood cells and the DNA solution, the cards were dried for 4 hours at room temperature, then packed in paper envelopes and sent for processing. Some cards were treated with a mixture of 10% ethylene oxide and carbon dioxide for 4 and 8 hours, and some with gamma irradiation (10 and 25 kGy). Control cards left sealed in an envelope without processing. After processing, the cards were removed from the envelopes and from the regions where the leukocyte and DNA samples were applied, 2 mm diameter disks were cut with a puncher. The residual DNA content was measured by real-time PCR according to example 2. The results are presented in table 3.

Figure 00000003
Figure 00000003

Figure 00000004
Figure 00000004

где ЭО4-ЛК - образцы с дисахаридами и с нанесенными лейкоцитами, обработанные газовой смесью, содержащей этиленоксид, в течение 4 часов;where EO4-LK - samples with disaccharides and coated with leukocytes treated with a gas mixture containing ethylene oxide for 4 hours;

ОЭО4-ЛК - образцы без дисахаридов и с нанесенными лейкоцитами, обработанные газовой смесью, содержащей этиленоксид, в течение 4 часов;OEO4-LK - samples without disaccharides and coated with leukocytes treated with a gas mixture containing ethylene oxide for 4 hours;

ЭО4-ДНК - образцы с дисахаридами и с нанесенным раствором ДНК, обработанные газовой смесью, содержащей этиленоксид, в течение 4 часов;EO4-DNA — samples with disaccharides and a coated DNA solution, treated with a gas mixture containing ethylene oxide for 4 hours;

ОЭО4-ДНК - образцы без дисахаридов и с нанесенным раствором ДНК, обработанные газовой смесью, содержащей этиленоксид, в течение 4 часов;OEO4-DNA - samples without disaccharides and coated with a solution of DNA, treated with a gas mixture containing ethylene oxide for 4 hours;

ЭО8-ЛК - образцы с дисахаридами и с нанесенными лейкоцитами, обработанные газовой смесью, содержащей этиленоксид, в течение 8 часов;EO8-LK - samples with disaccharides and coated with white blood cells, treated with a gas mixture containing ethylene oxide for 8 hours;

ОЭО8-ЛК - образцы без дисахаридов и с нанесенными лейкоцитами, обработанные газовой смесью, содержащей этиленоксид, в течение 8 часов;OEO8-LK - samples without disaccharides and coated with leukocytes treated with a gas mixture containing ethylene oxide for 8 hours;

ЭО8-ДНК - образцы с дисахаридами и с нанесенным раствором ДНК, обработанные газовой смесью, содержащей этиленоксид, в течение 8 ч;EO8-DNA — samples with disaccharides and a coated DNA solution, treated with a gas mixture containing ethylene oxide for 8 hours;

ОЭО8-ДНК - образцы без дисахаридов и с нанесенным раствором ДНК, обработанные газовой смесью, содержащей этиленоксид, в течение 8 ч;OEO8-DNA - samples without disaccharides and coated with a DNA solution, treated with a gas mixture containing ethylene oxide for 8 hours;

ГР10-ЛК - образцы дисахаридами и с нанесенными лейкоцитами, обработанные гамма-радиацией с дозой 10 кГр;GR10-LK - samples with disaccharides and coated with white blood cells, treated with gamma radiation with a dose of 10 kGy;

ОГР10-ЛК - образцы без дисахаридов и с нанесенными лейкоцитами, обработанные гамма-радиацией с дозой 10 кГр;OGR10-LK - samples without disaccharides and with white blood cells, treated with gamma radiation with a dose of 10 kGy;

ГР10-ДНК - образцы с дисахаридами и с нанесенным раствором ДНК, обработанные гамма-радиацией с дозой 10 кГр;ГР10-DNA - samples with disaccharides and a coated DNA solution, treated with gamma radiation with a dose of 10 kGy;

ОГР10-ДНК - образцы без дисахаридов и с нанесенными лейкоцитами, обработанные гамма-радиацией с дозой 10 кГр;OGR10-DNA - samples without disaccharides and coated with leukocytes, treated with gamma radiation with a dose of 10 kGy;

ГР25-ЛК - образцы с дисахаридами и с нанесенными лейкоцитами, обработанные гамма-радиацией с дозой 25 кГр;GR25-LK - samples with disaccharides and coated leukocytes, treated with gamma radiation with a dose of 25 kGy;

ОГР25-ЛК - образцы без дисахаридов и с нанесенными лейкоцитами, обработанные гамма-радиацией с дозой 25 кГр;OGR25-LK - samples without disaccharides and with white blood cells, treated with gamma radiation with a dose of 25 kGy;

ГР25-ДНК - образцы с дисахаридами и с нанесенным раствором ДНК, обработанные ионизирующим излучением (гамма-излучением) с дозой 25 кГр;ГР25-DNA - samples with disaccharides and coated with a solution of DNA, treated with ionizing radiation (gamma radiation) with a dose of 25 kGy;

ОГР25-ДНК - образцы без дисахаридов и с нанесенным раствором ДНК, обработанные ионизирующим излучением (гамма-излучением) с дозой 25 кГр;OGR25-DNA — samples without disaccharides and with a coated DNA solution, treated with ionizing radiation (gamma radiation) with a dose of 25 kGy;

К-ЛК - контрольные образцы с нанесенными лейкоцитами;K-LK - control samples with white blood cells;

К-ДНК - контрольные образцы с нанесенным раствором ДНК.K-DNA - control samples with applied DNA solution.

Пример 4. Хранение ДНК на картах, обработанных газовой смесью, содержащей этиленоксид, и гамма-излучением.Example 4. Storage of DNA on cards treated with a gas mixture containing ethylene oxide and gamma radiation.

Твердофазные носители по изобретению, приготовленные согласно примеру 1 с использованием смеси трегалозы с сахарозой (1:3) в качестве дисахарида, а также аналогичные носители без дисахаридов, дополнительно обрабатывали смесью 10% этиленоксида в течение 4 часов или гамма-излучением в дозе 25 кГр. Затем на карты нанесли образцы крови по 85 мкл и провели исследование хранения ДНК методом ускоренного старения аналогично примеру 2. В качестве образцов сравнения использовали ДНК-карты с трегалозой и сахарозой (в массовом соотношении 1:3), не обработанные газовой смесью, содержащей этиленоксид, или гамма-излучением, а также карты, приготовленные без использования дисахаридов, но обработанные газовой смесью, содержащей этиленоксид, или гамма-излучением. Результаты приведены в таблице 4.The solid-phase carriers of the invention prepared according to Example 1 using a mixture of trehalose with sucrose (1: 3) as a disaccharide, as well as similar carriers without disaccharides, were further treated with a mixture of 10% ethylene oxide for 4 hours or gamma radiation at a dose of 25 kGy. Then, blood samples of 85 μl were applied to the cards and DNA storage was studied using accelerated aging as in Example 2. As a comparison sample, we used DNA cards with trehalose and sucrose (in a mass ratio of 1: 3), not treated with a gas mixture containing ethylene oxide, or gamma radiation, as well as cards prepared without the use of disaccharides, but treated with a gaseous mixture containing ethylene oxide, or gamma radiation. The results are shown in table 4.

Figure 00000005
Figure 00000005

гдеWhere

TS60-ЭО - твердофазный носитель по изобретению, приготовленный с использованием комбинации трегалозы и сахарозы (в массовом соотношении 1:3), в качестве дисахарида, дополнительно обработанный газовой смесью, содержащей этиленоксид, и хранящийся при 60°С;TS60-EO is a solid-phase carrier according to the invention, prepared using a combination of trehalose and sucrose (in a mass ratio of 1: 3), as a disaccharide, further treated with a gas mixture containing ethylene oxide and stored at 60 ° C;

TS60-ГР - твердофазный носитель по изобретению, приготовленный с использованием комбинации трегалозы и сахарозы (в массовом соотношении 1:3), в качестве дисахарида, дополнительно обработанный гамма-излучением и хранящийся при 60°С;TS60-GR - solid-phase carrier according to the invention, prepared using a combination of trehalose and sucrose (in a mass ratio of 1: 3), as a disaccharide, additionally treated with gamma radiation and stored at 60 ° C;

О60-ЭО - твердофазный носитель по изобретению, приготовленный без использования дисахаридов, дополнительно обработанный газовой смесью, содержащей этиленоксид, и хранящийся при 60°С;O60-EO is a solid phase carrier according to the invention, prepared without the use of disaccharides, further treated with a gas mixture containing ethylene oxide, and stored at 60 ° C;

О60-ГР - твердофазный носитель по изобретению, приготовленный без использования дисахаридов, дополнительно обработанный гамма-излучением и хранящийся при 60°С;O60-GR - solid-phase carrier according to the invention, prepared without the use of disaccharides, additionally treated with gamma radiation and stored at 60 ° C;

TS60 - твердофазный носитель по изобретению, приготовленный с использованием комбинации трегалозы и сахарозы (в массовом соотношении 1:3) в качестве дисахарида и хранящийся при 60°С.TS60 is a solid phase carrier according to the invention, prepared using a combination of trehalose and sucrose (in a mass ratio of 1: 3) as a disaccharide and stored at 60 ° C.

Таким образом, предложенный твердофазный носитель для иммобилизации и хранения образцов нуклеиновых кислот, представляющий из себя пористую целлюлозную основу, обработанную композицией, содержащей детергент, слабое основание, хелатообразующий агент и содержащий дисахарид или смесь дисахаридов, обеспечивает неожиданно высокую стабильность иммобилизованных биологических образцов, содержащих нуклеиновые кислоты, включая ДНК и РНК, в то же время предоставляя возможность эффективной стерилизующей предобработки с помощью этиленоксида или ионизирующей радиации (без утраты полезных свойств носителя).Thus, the proposed solid-phase carrier for immobilization and storage of nucleic acid samples, which is a porous cellulose base treated with a composition containing a detergent, a weak base, a chelating agent and containing a disaccharide or a mixture of disaccharides, provides an unexpectedly high stability of immobilized biological samples containing nucleic acids including DNA and RNA, while at the same time providing the possibility of effective sterilizing pretreatment with ethylene oxide or ionizing radiation (without losing the beneficial properties of the carrier).

Список литературы:Bibliography:

1. R. Guthrie, A. Susi. A simple method for detecting phenylketonuria in large populations of newborn infants. // Pediatrics 32: 338-343, 1963. Доступно посредством сети Интернет (по состоянию на 16.03.2016); режим доступа: http://pediatrics.aappublications.org/content./pediatrics/32/3/338.full.pdf.1. R. Guthrie, A. Susi. A simple method for detecting phenylketonuria in large populations of newborn infants. // Pediatrics 32: 338-343, 1963. Available via the Internet (as of 03/16/2016); access mode: http://pediatrics.aappublications.org/content./pediatrics/32/3/338.full.pdf.

2. Julia A. McMillan, Ralph D. Feigin, Catherine DeAngelis, M. Douglas Jones (1 April 2006). Oski's pediatrics: principles & practice. Lippincott Williams & Wilkins. pp. 162. Доступно посредством сети Интернет (по состоянию на 16.03.2016); режим доступа: https://books.google.ru/books?id=VbjFQiz8aR0C&pg=PA162&hl=ru#v=onepage&q&f=false.2. Julia A. McMillan, Ralph D. Feigin, Catherine DeAngelis, M. Douglas Jones (April 1, 2006). Oski's pediatrics: principles & practice. Lippincott Williams & Wilkins. pp. 162. Available via the Internet (as of 03/16/2016); access mode: https://books.google.com/books?id=VbjFQiz8aR0C&pg=PA162&hl=en#v=onepage&q&f=false.

3. М.С.Kline, D.L. Duewer. Polymerase chain reaction amplification of DNA from aged blood stains: quantitative evaluation of the "suitability for purpose" of four filter papers as archival media. //Analytical Chemistry, 2002, volume 74, №8, 1863-1869.3. M.C. Kline, D.L. Duewer. Polymerase chain reaction amplification of DNA from aged blood stains: quantitative evaluation of the "suitability for purpose" of four filter papers as archival media. // Analytical Chemistry, 2002, volume 74, No. 8, 1863-1869.

4. G.S. Makowski, F.L. Nadeau. Single tube multiplex PCR detection of 27 cystic fibrosis mutations and 4 polymorphisms using neonatal blood samples collected on Guthrie cards. // Annals of Clinical and Laboratory Science Journal, volume 33, №3, 243-250 (2003).4. G.S. Makowski, F.L. Nadeau. Single tube multiplex PCR detection of 27 cystic fibrosis mutations and 4 polymorphisms using neonatal blood samples collected on Guthrie cards. // Annals of Clinical and Laboratory Science Journal, volume 33, No. 3, 243-250 (2003).

5. J.V. Mei, J.R. Alexander, et al. Use of Filter Paper for the Collection and Analysis of Human Whole Blood Specimens. //Journal of Nutrition, May 1, 2001, vol. 131, №5, 1631S-1636S. Доступно посредством сети Интернет (по состоянию на 16.03.2016); режим доступа: http://jn.nutrition.org/content/131/5/1631S.full.5. J.V. Mei, J.R. Alexander, et al. Use of Filter Paper for the Collection and Analysis of Human Whole Blood Specimens. // Journal of Nutrition, May 1, 2001, vol. 131, No. 5, 1631S-1636S. Available via the Internet (as of 03/16/2016); access mode: http://jn.nutrition.org/content/131/5/1631S.full.

6. Pak Yang Chum, Chas Andre. Direct PCR from Blood Preserved on Whatman FTA and 903 Cards using Thermo Scientific Phusion Blood Direct PCR Kit (2013). Доступно посредством сети Интернет (по состоянию на 16.03.2016); режим доступа: https://www.thermofisher.com/content/dam/LifeTech/global/brands/Documents/1114/app-note-direct-pcr-from-blood-preserved-on-whatman-fta-903-cards.pdf.6. Pak Yang Chum, Chas Andre. Direct PCR from Blood Preserved on Whatman FTA and 903 Cards using Thermo Scientific Phusion Blood Direct PCR Kit (2013). Available via the Internet (as of 03/16/2016); access mode: https://www.thermofisher.com/content/dam/LifeTech/global/brands/Documents/1114/app-note-direct-pcr-from-blood-preserved-on-whatman-fta-903-cards .pdf.

7. М.А. Harvey et al. Impregnated 903() Blood Collection Paper: A Tool for DNA Prepartion from Dried Blood Spots for PCR Amplification. // Clinical Chemistry, 1995, volume 41, №6, S108.7. M.A. Harvey et al. Impregnated 903 () Blood Collection Paper: A Tool for DNA Prepartion from Dried Blood Spots for PCR Amplification. // Clinical Chemistry, 1995, volume 41, No. 6, S108.

8. M.A. Harvey, T.A. King, et al. Impregnated sample collection paper: A tool for preparation of DNA and RNA from dried blood spots for PCR amplification. //Clinical Chemistry, 1995, volume 41, №11, p.1686, abstract #041.8. M.A. Harvey, T.A. King, et al. Impregnated sample collection paper: A tool for preparation of DNA and RNA from dried blood spots for PCR amplification. // Clinical Chemistry, 1995, volume 41, No. 11, p. 1686, abstract # 041.

9. Whatman™ Neonatal Screening cards. // GE Healthcare LifeSciences. Опубликовано: 01/2013. Доступно посредством сети Интернет (по состоянию на 16.03.2016); режим доступа: https://www.gelifesciences.com/gehcls_images/GELS/Related%20Content/Files/136076 4947442/litdoc28984424_20130214002441.pdf.9. Whatman ™ Neonatal Screening cards. // GE Healthcare LifeSciences. Posted: 01/2013. Available via the Internet (as of 03/16/2016); access mode: https://www.gelifesciences.com/gehcls_images/GELS/Related%20Content/Files/136076 4947442 / litdoc28984424_20130214002441.pdf.

10. Патент США №5496562 А, опубликован 05.03.1996; МПК C12N 15/10, C12Q 1/68.10. US patent No. 5496562 A, published 05.03.1996; IPC C12N 15/10, C12Q 1/68.

11.

Figure 00000006
Aparecida da Silva Aquino. Sterilization by Gamma Irradiation, Gamma Radiation (Edited by Prof. Feriz Adrovic), pp. 171-206. Дата публикации: 2012. Доступно (по состоянию на 16.03.2016); режим доступа: http://www.intechopen.com/books/gamma-radiation/sterilization-by-gamma-irradiation.eleven.
Figure 00000006
Aparecida da Silva Aquino. Sterilization by Gamma Irradiation, Gamma Radiation (Edited by Prof. Feriz Adrovic), pp. 171-206. Date of publication: 2012. Available (as of March 16, 2016); access mode: http://www.intechopen.com/books/gamma-radiation/sterilization-by-gamma-irradiation.

12. Патент США №2075845 А, опубликован 06.04.1937; МПК A61L 2/20.12. US patent No. 2075845 A, published 04/06/1937; IPC A61L 2/20.

Claims (14)

1. Твердофазный носитель для иммобилизации и хранения образцов, содержащих нуклеиновые кислоты, причем упомянутый носитель представляет собой пористую целлюлозную основу, обработанную композицией, содержащей детергент, слабое основание, хелатообразующий агент и дисахарид.1. A solid-phase carrier for immobilizing and storing nucleic acid-containing samples, said carrier being a porous cellulose base treated with a composition containing a detergent, a weak base, a chelating agent and a disaccharide. 2. Твердофазный носитель по п. 1, отличающийся тем, что упомянутый детергент выбран из гуанидина гидрохлорида, гуанидина изоцианата, мочевины, лаурилсульфата (додецилсульфата) натрия, полиоксиэтилен сорбитан монолаурата, t-октилфеноксиполиэтоксиэтанола и октилфеноксиполиэтоксиэтанола.2. A solid phase carrier according to claim 1, characterized in that said detergent is selected from guanidine hydrochloride, guanidine isocyanate, urea, sodium lauryl sulfate (dodecyl sulfate), polyoxyethylene sorbitan monolaurate, t-octylphenoxypolyethoxyethanol and octyl. 3. Твердофазный носитель по п. 1, отличающийся тем, что упомянутое слабое основание выбрано из трис(гидроксиметил)аминометана, N-(2-гидрокси-1,1-бис(гидроксиметил)этил)глицина, N,N-бис-(2-гидроксиэтил)глицина и натриевой соли 4-(2-оксиэтил)1-пиперазинэтансульфоновой кислоты.3. A solid phase carrier according to claim 1, characterized in that said weak base is selected from tris (hydroxymethyl) aminomethane, N- (2-hydroxy-1,1-bis (hydroxymethyl) ethyl) glycine, N, N-bis- ( 2-hydroxyethyl) glycine and the 4- (2-hydroxyethyl) 1-piperazineethanesulfonic acid sodium salt. 4. Твердофазный носитель по п. 1, отличающийся тем, что упомянутый хелатообразующий агент выбран из группы, включающей тринатриевую соль нитрилтриуксусной кислоты, динатриевую соль этилендиаминтетрауксусной кислоты, тринатриевую соль N-(гидроксиэтил)этилендиаминтетрауксусной кислоты и пентатриевую соль диэтилентетраминпентауксусной кислоты.4. The solid-phase carrier according to claim 1, characterized in that said chelating agent is selected from the group consisting of trisodium nitrile triacetic acid, disodium salt of ethylenediaminetetraacetic acid, trisodium salt of N- (hydroxyethyl) ethylenediaminetetraacetic acid and pententetrate acetic acid. 5. Твердофазный носитель по п. 1, отличающийся тем, что упомянутый дисахарид представляет собой трегалозу, сахарозу, мальтозу или их комбинацию.5. A solid phase carrier according to claim 1, characterized in that said disaccharide is trehalose, sucrose, maltose, or a combination thereof. 6. Твердофазный носитель по п. 5, отличающийся тем, что упомянутая комбинация дисахаридов представляет собой смесь трегалозы и сахарозы в массовом соотношении от 1:1 до 1:4.6. A solid phase carrier according to claim 5, characterized in that the said combination of disaccharides is a mixture of trehalose and sucrose in a mass ratio of from 1: 1 to 1: 4. 7. Твердофазный носитель по п. 5, отличающийся тем, что упомянутая комбинация дисахаридов представляет собой смесь трегалозы и мальтозы в массовом соотношении от 1:1 до 1:4.7. The solid phase carrier according to claim 5, characterized in that the said combination of disaccharides is a mixture of trehalose and maltose in a mass ratio of from 1: 1 to 1: 4. 8. Твердофазный носитель по п. 1, отличающийся тем, что упомянутая композиция имеет значение рН от 7,0 до 9,0.8. A solid phase carrier according to claim 1, characterized in that said composition has a pH value of from 7.0 to 9.0. 9. Твердофазный носитель по п. 1, отличающийся тем, что упомянутая композиция содержит от 0,2 до 0,4% детергента, от 0,1 до 0,2% слабого основания, от 0,02 до 0,04% хелатообразующего агента и от 0,3 до 0,5% дисахарида.9. A solid phase carrier according to claim 1, characterized in that said composition contains from 0.2 to 0.4% detergent, from 0.1 to 0.2% weak base, from 0.02 to 0.04% chelating agent and from 0.3 to 0.5% disaccharide. 10. Твердофазный носитель по любому из пп. 1-9, отличающийся тем, что упомянутый носитель обработан газовой смесью, содержащей этиленоксид.10. A solid phase carrier according to any one of paragraphs. 1-9, characterized in that the said carrier is treated with a gas mixture containing ethylene oxide. 11. Твердофазный носитель по п. 10, отличающийся тем, что содержание этиленоксида в упомянутой газовой смеси составляет от 5 до 15%.11. The solid-phase carrier according to claim 10, characterized in that the ethylene oxide content in said gas mixture is from 5 to 15%. 12. Твердофазный носитель по п. 11, отличающийся тем, что обработку упомянутой газовой смесью осуществляли от 4 до 8 ч.12. The solid-phase carrier according to claim 11, characterized in that the said gas mixture is processed from 4 to 8 hours. 13. Твердофазный носитель по любому из пп. 1-9, отличающийся тем, что упомянутый носитель обработан гамма-излучением.13. A solid phase carrier according to any one of paragraphs. 1-9, characterized in that the said carrier is processed by gamma radiation. 14. Твердофазный носитель по п. 13, отличающийся тем, что доза гамма-излучения составляет от 10 до 25 кГр.14. The solid-phase carrier according to claim 13, characterized in that the dose of gamma radiation is from 10 to 25 kGy.
RU2016111149A 2016-03-25 2016-03-25 Solid phase carrier for immobilization and/or storage of biological samples containing nucleic acids RU2624241C1 (en)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2016111149A RU2624241C1 (en) 2016-03-25 2016-03-25 Solid phase carrier for immobilization and/or storage of biological samples containing nucleic acids

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2016111149A RU2624241C1 (en) 2016-03-25 2016-03-25 Solid phase carrier for immobilization and/or storage of biological samples containing nucleic acids

Publications (1)

Publication Number Publication Date
RU2624241C1 true RU2624241C1 (en) 2017-07-03

Family

ID=59312431

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
RU2016111149A RU2624241C1 (en) 2016-03-25 2016-03-25 Solid phase carrier for immobilization and/or storage of biological samples containing nucleic acids

Country Status (1)

Country Link
RU (1) RU2624241C1 (en)

Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2703058C2 (en) * 2017-12-08 2019-10-15 Владимир Артурович Хачумов Method of storing dna-containing plant material in a wide temperature range

Citations (6)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US4455370A (en) * 1982-05-17 1984-06-19 E. I. Du Pont De Nemours And Company Transferring separated components in gel electrophoresis via nylon membrane
US5496562A (en) * 1988-10-05 1996-03-05 Flinders Technologies Pty Ltd Solid medium and method for DNA storage
RU94034735A (en) * 1991-12-20 1996-07-20 Дзе Трастиз Оф Дзе Юниверсити Оф Пенсильвания (Us) Method of preparing glycosyltransferases, glycosyltransferases
RU2000112399A (en) * 1997-11-26 2002-07-10 Юниверсэл Презервэйшн Текнолоджиз, Инк. METHOD FOR PRESERVING SENSITIVE BIOLOGICAL SAMPLES BY GLASSING
GB2519465A (en) * 2012-09-13 2015-04-22 Ge Healthcare Uk Ltd Solid matrix for one step nucleic acid amplification
RU2567668C2 (en) * 2009-05-26 2015-11-10 Эдванст Бионутришн Корпорейшн Stable dry powder composition containing biologically active microorganisms and/or biologically active materials and method of its production

Patent Citations (6)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US4455370A (en) * 1982-05-17 1984-06-19 E. I. Du Pont De Nemours And Company Transferring separated components in gel electrophoresis via nylon membrane
US5496562A (en) * 1988-10-05 1996-03-05 Flinders Technologies Pty Ltd Solid medium and method for DNA storage
RU94034735A (en) * 1991-12-20 1996-07-20 Дзе Трастиз Оф Дзе Юниверсити Оф Пенсильвания (Us) Method of preparing glycosyltransferases, glycosyltransferases
RU2000112399A (en) * 1997-11-26 2002-07-10 Юниверсэл Презервэйшн Текнолоджиз, Инк. METHOD FOR PRESERVING SENSITIVE BIOLOGICAL SAMPLES BY GLASSING
RU2567668C2 (en) * 2009-05-26 2015-11-10 Эдванст Бионутришн Корпорейшн Stable dry powder composition containing biologically active microorganisms and/or biologically active materials and method of its production
GB2519465A (en) * 2012-09-13 2015-04-22 Ge Healthcare Uk Ltd Solid matrix for one step nucleic acid amplification

Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2703058C2 (en) * 2017-12-08 2019-10-15 Владимир Артурович Хачумов Method of storing dna-containing plant material in a wide temperature range

Similar Documents

Publication Publication Date Title
CA2677472C (en) Controlled transfer biological sample collection devices and methods of using such devices
US20140295429A1 (en) Biosample storage devices and methods of use thereof
JP4633332B2 (en) Sample homogenization device and biological sample processing method
CA2604075C (en) Devices and methods for collection, storage and transportation of biological specimens
CN101153263B (en) Blood DNA conserving card and method for making the same
US11078521B2 (en) Stabilization of nucleic acids on paper
JP2018068303A (en) Methods and compositions for extraction and storage of nucleic acids
US8334097B2 (en) Method of pooling and/or concentrating biological specimens for analysis
US10233508B2 (en) Virus particle stabilisation and method for isolating viral nucleic acids
CN108026570A (en) The composition and method of purification of nucleic acid from blood sample
US20140234942A1 (en) Substrates and methods for collection, stabilization and elution of biomolecules
AU2018203078A1 (en) Substrates and methods for collection, stabilization and elution of biomolecules
CA2828160A1 (en) Paper support and method of recovering biological material therefrom
RU2624241C1 (en) Solid phase carrier for immobilization and/or storage of biological samples containing nucleic acids
JP2015525890A (en) Matrix and system for storing biological specimens for qualitative and quantitative analysis
RU2619898C1 (en) Method for biological materials preservation
Saushkin et al. Strip-dried blood sampling: applicability for bovine leukemia virus detection with ELISA and real-time PCR
US20150004592A1 (en) Sample storage for molecular and immunological detection
CN113999840B (en) Nucleic acid sample preservation solution and use method and application thereof
RU2208784C2 (en) Set to detect toxins of toad-stool amanita phalloides

Legal Events

Date Code Title Description
PD4A Correction of name of patent owner