RU2623081C1 - Способ криоконсервирования тромбоцитов - Google Patents

Способ криоконсервирования тромбоцитов Download PDF

Info

Publication number
RU2623081C1
RU2623081C1 RU2016124196A RU2016124196A RU2623081C1 RU 2623081 C1 RU2623081 C1 RU 2623081C1 RU 2016124196 A RU2016124196 A RU 2016124196A RU 2016124196 A RU2016124196 A RU 2016124196A RU 2623081 C1 RU2623081 C1 RU 2623081C1
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
platelets
platelet
plasma
cryoprotectant
dmso
Prior art date
Application number
RU2016124196A
Other languages
English (en)
Inventor
Игорь Валерьевич Высочин
Максим Сергеевич Макаров
Елена Николаевна Кобзева
Валерий Борисович Хватов
Original Assignee
Государственное бюджетное учреждение здравоохранения города Москвы Научно-исследовательский институт скорой помощи имени Н.В. Склифосовского Департамента здравоохранения г. Москвы
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Государственное бюджетное учреждение здравоохранения города Москвы Научно-исследовательский институт скорой помощи имени Н.В. Склифосовского Департамента здравоохранения г. Москвы filed Critical Государственное бюджетное учреждение здравоохранения города Москвы Научно-исследовательский институт скорой помощи имени Н.В. Склифосовского Департамента здравоохранения г. Москвы
Priority to RU2016124196A priority Critical patent/RU2623081C1/ru
Application granted granted Critical
Publication of RU2623081C1 publication Critical patent/RU2623081C1/ru

Links

Images

Classifications

    • AHUMAN NECESSITIES
    • A01AGRICULTURE; FORESTRY; ANIMAL HUSBANDRY; HUNTING; TRAPPING; FISHING
    • A01NPRESERVATION OF BODIES OF HUMANS OR ANIMALS OR PLANTS OR PARTS THEREOF; BIOCIDES, e.g. AS DISINFECTANTS, AS PESTICIDES OR AS HERBICIDES; PEST REPELLANTS OR ATTRACTANTS; PLANT GROWTH REGULATORS
    • A01N1/00Preservation of bodies of humans or animals, or parts thereof
    • A01N1/02Preservation of living parts

Abstract

Изобретение относится к области медицины, а именно к трансфузиологии, и предназначено для заготовки тромбоцитов длительного хранения. Осуществляют отбор исходного тромбоцитного концентрата (ТК) с концентрацией 1×109/мл-1,5×109/мл, содержащих 40-70% тромбоцитов с гранулами и тромбоциты с адгезивной активностью 40-70%. Разделяют ТК на тромбоцитсодержащую часть и плазму центрифугированием. Готовят комбинированный криопротектор, содержащий 55% ДМСО и 5% декстран 40, разводя криопротектор плазмой до конечной концентрации ДМСО 10-15%. Ресуспендируют тромбоцитсодержащую часть разведенным криопротектором, который вводят в тромбоцитсодержащую часть по 1-3 мл с интервалами 1-3 мин до конечной концентрации ДМСО 5-7%. Замораживают суспензию тромбоцитов и плазму со скоростью 1-3°/мин при минус 80°С-минус 100°С и хранят их при минус 85°С-минус 196°С. Размораживают контейнеры нагреванием при 37-40°С в течение 2-10 мин. Ресуспендируют размороженные тромбоциты плазмой в соотношении 1:9 в течение 10 мин и хранят их при 20-24°С и постоянном перемешивании не более 4 часов до трансфузии. Использование изобретения позволяет повысить качество получаемых после размораживания криоконсервированных тромбоцитов. 6 з.п. ф-лы, 1 ил., 4 табл., 2 пр.

Description

Область, к которой относится изобретение
Изобретение относится к области медицины, а именно производственной и клинической трансфузиологии, и может быть использовано для заготовки тромбоцитов длительного хранения (до 24 месяцев), пригодных к трансфузии.
Уровень техники
Известен способ криоконсервации богатой тромбоцитами плазмы без использования криопротекторов [патент РФ на изобретение «Способ криоконсервации богатой тромбоцитами плазмы» авторы Суханов В.А., Трофимов И.М., Левит А.Л., №2138162, 1999], согласно которому плазму помещают в контейнер с жидким азотом, располагают контейнер между двумя металлическими пластинами, после чего последовательно подвергают процессам замораживания, хранения и размораживания, при этом процесс замораживания плазмы ведут при скорости 2-3°С/с, процесс размораживания - при скорости 1,5-2°С/с, до начала таяния, а затем нагревают плазму при температуре 37°С. Однако этот способ не включает оценку параметров структурной полноценности и функциональной активности тромбоцитов человека.
Известен способ криоконсервирования тромбоцитов в присутствии 10% ДМСО, предусматривающий отмывание тромбоцитов от ДМСО и разведение плазмой тромбоцитов после размораживания [Khuri S.F., Healey N., MacGregor H. et al. Comparison of the effects of transfusions of cryopreserved and liquid-preserved platelets on hemostasis and blood loss after cardiopulmonary bypass J Thorac Cardiovasc Surg 1999; 117: 172-84]. Однако данный способ часто приводит к значительному увеличению содержания в концентрате тромбоцитов активированных клеток, что повышает риск развития тромбоэмболических осложнений при их трансфузии.
Наиболее близкой к заявляемому решению является технология криоконсервирования тромбоцитов с ДМСО и хранение клеток при -80°С [С. Robert Valery, Gina Rango, and Shukri Khuri Freezing human platelets with 6 percent dimethyl sulfoxide with removal of the supernatani solution before freezing and storage at -80°C without postthaw processing // Transfusion 2005; 45: 1890-1898]. Исходные тромбоцитные концентраты (ТК) получают путем аппаратного афереза на сепараторах Cobe Spectra и Amicus, общий объем ТК составляет 200-300 мл, содержание тромбоцитов - от 3,5 до 4,0×1011 клеток в 1 дозе (концентрация 1,3-2,0×109 в мл). Оценка качества клеток ТК проводится перед процедурами криоконсервирования и после размораживания ТК и включает следующие параметры: количество тромбоцитов (109/мл); рН тромбоконцентрата, величину R-периода на тромбоэластограмме, агрегационную активность тромбоцитов (индукторы - 50 мкг/мл арахидоновой кислоты и 2 мкМоль/л АДФ); продукцию тромбоксана В2 после стимуляции 50 мкг/мл арахидоновой кислоты и 2 мкМоль/л АДФ; содержание аннексин-положительных тромбоцитов. Процедура подготовки ТК к криоконсервированию включает 4 технологических этапа: внесение криопротектора в дозу ТК; центрифугирование дозы ТК в присутствии криопротектора; удаление избытка криопротектора с бесклеточной плазмой после центрифугирования; ресуспендирование клеток ТК с криопротектором. В качестве криопротектора используют солевой раствор 27% ДМСО (эндоцитарный криопротектор), который добавляют к ТК при постоянном покачивании с частотой 180 колебаний в минуту до конечной концентрации 6% ДМСО в ТК. Затем ТК центрифугируют при 1250 g в течение 10 минут с целью удаления супернатанта, содержащего избыток ДМСО. Весь супернатантный раствор удаляют. Это снижает остаточное количество ДМСО в замороженном ТК как минимум на 95%. Оставшийся осадок объемом 10-15 мл ресуспендируют покачиванием в течение 3-5 минут, контейнер с суспензией тромбоцитов помещают в защитный полимерный пакет, затем в картонную коробку и замораживают на дне механического морозильника при минус 80°С. Размораживание тромбоцитов проводится в водяной бане (Thermogenesis), при температуре 36°С в течение 5 минут. Размороженную суспензию тромбоцитов разводят 10-20 мл 0,9% раствора NaCl с целью уменьшения общей концентрации клеток, увеличения объема ТК, а также для уменьшения концентрации ДМСО в дозе размороженных тромбоцитов. Трансфузия размороженного ТК проводится через фильтр диаметром 170 микрон.
Однако данный метод для определения качества клеток ТК использует параметры агрегометрии, тромбоэластографии и проточной цитометрии, которые не отражают структурную целостность тромбоцитов, что снижает достоверность общего анализа клеток ТК до и после криоконсервирования и не позволяет оценить сохранность (в %) биологически полноценных клеток в ТК после криоконсервирования; использует только эндоцитарный (внутриклеточный) криопротектор ДМСО, который обладает низкой способностью к сохранению наружных мембранных структур клеток при заморозке, что повышает риск повреждения тромбоцитарных рецепторов; процедура подготовки ТК к криоконсервированию включает 4 последовательных технологических этапа, которые в сумме занимают 25-30 мин, что существенно повышает риск токсического действия ДМСО на тромбоциты; для разведения размороженных тромбоцитов используется 0,9% раствор NaCl, не обладающий буферными свойствами, что приводит к образованию в ТК кислой среды (рН=6.5-6.6) и повышает риск повреждения тромбоцитов; разведение размороженных ТК 0,9% раствором NaCl снижает конечную концентрацию ДМСО в ТК только до 3%, что является недостаточным для достижения концентрации, нетоксичной для тромбоцитов человека (0,5%); размороженная доза ТК обладает очень высокой осмолярностью (800-860 мОсмоль/л при физиологической норме 300-380 мОсмоль/л) и повышает риск развития у пациентов пострансфузионных реакций.
Раскрытие изобретения
Задачей изобретения является разработка технологии криоконсервирования тромбоцитов человека для получения лечебных доз тромбоцитного концентрата длительного хранения с высокой сохранностью биологически полноценных тромбоцитов, обеспечивающей хранение тромбоцитов после размораживания при температуре 20-24°С и нетоксичных для пациентов.
Техническим результатом, на достижение которого направлено заявленное изобретение, является повышение качества получаемых после размораживания криоконсервированных тромбоцитов за счет используемого комплекса: технологических операций, качественных и количественных параметров криопротектора и режимов, позволяющих сократить время контакта тромбоцитов с криопротектором, сохранить гораздо большее число биологически полноценных тромбоцитов (в 1,5-1,8 раза по сравнению с технологией по прототипу), хранить размороженные ТК при комнатной температуре в течение 4 часов без угрозы потери структурной или функциональной полноценности тромбоцитов, получить осмолярность дозы ТК, соответствующей физиологической норме, не вызывающей развития у пациентов посттрансфузионных реакций.
Поставленная задача решается тем, что способ криоконсервирования тромбоцитов включает следующие этапы:
- отбор исходного тромбоцитного концентрата (ТК) объемом от 180 до 220 мл с концентрацией тромбоцитов от 1×109/мл 1,5×109/мл, содержащих от 40% до 70% тромбоцитов с гранулами и тромбоциты с адгезивной активностью от 40% до 70%;
- разделение ТК на тромбоцитсодержащую часть (8-12 мл) и плазму (172-208 мл) центрифугированием с последующим отделением плазмы от тромбоцитсодержащей части;
- приготовление комбинированного криопротектора, содержащего 55% ДМСО и 5% декстран 40, путем разведения криопротектора плазмой до конечной концентрации ДМСО от 10 до 15%;
- ресуспендирование тромбоцитсодержащей части разведенным криопротектором, который вводят в тромбоцитсодержащую часть по 1-3 мл с интервалами 1-3 минуты при постоянном перемешивании и доводят объем суспензии тромбоцитов в криопротекторе от 20 до 24 мл до конечной концентрации ДМСО в суспензии тромбоцитов от 5 до 7%;
- замораживание суспензии тромбоцитов и плазмы со скоростью 1-3°/мин в отдельных контейнерах в морозильной камере при температуре от минус 80 до минус 100°С;
- хранение замороженных тромбоцитов и плазмы при температуре от минус 85°С до минус 196°С;
- размораживание контейнеров с замороженными тромбоцитами и плазмой нагреванием при температуре от 37 до 40°С в течение от 2 до 10 минут;
- ресуспендирование размороженных тромбоцитов плазмой, совместимой по системе АВО, в соотношении 1:9, в течение 10 минут;
- хранение размороженных тромбоцитов до трансфузии при температуре от 20 до 24°С и постоянном перемешивании не более 4 часов.
При этом после размораживания измеряют следующие параметры тромбоцитов: количество тромбоцитов, количество тромбоцитов с гранулами и количество адгезивно активных тромбоцитов. Данную информацию наносят на контейнер для последующего выбора контейнера с необходимыми параметрами для транфузии конкретному пациенту в зависимости от его антропометрических характеристик.
Кроме того, разделение ТК на тромбоцитсодержащую часть и плазму может быть реализовано с помощью центрифугирования со скоростью от 1100 g до 1400 g в течение от 7 до 12 минут. В качестве криопротектора может быть использован DIMETYLSULFOXIDE/DEXTRAN 40 SOLUTION (Cryopreservative Solution) 5 ml. Ресуспендирование тромбоцитсодержащей части криопротектором осуществляют в течение от 9 до 12 минут. Размороженные тромбоциты ресуспендируют добавлением от 172 до 208 мл размороженной плазмы по 20 мл через 1-2 минуты в контейнер с 15-25 мл размороженными тромбоцитами. Качество размороженных тромбоцитов определяется следующими параметрами: объем от 180 до 220 мл, сохранность тромбоцитов не менее 75% от исходного, сохранность тромбоцитов с гранулами и тромбоцитов с адгезивной активностью не менее 50% от исходного. Для приготовления комбинированного криопротектора с конечной концентрации ДМСО от 10 до 15% исходный криопротектор разводят плазмой в объемном соотношении 1:9. Ресуспендирование тромбоцитсодержащей части разведенным криопротектором для получения суспензии тромбоцитов с конечной концентрацией ДМСО от 5 до 7% осуществляют в объемном соотношении 1:1.
Таким образом, поставленная задача решается за счет внедрения в процедуру криоконсервирования адекватных методов параллельного анализа структурной целостности и функциональной активности тромбоцитов человека до и после процедур криоконсервирования, использования комбинированного эндоцитарного и экзоцитарного криопротектора, предварительное разделение ТК путем центрифугирования на тромбоцитный концентрат и бедную тромбоцитами плазму с последующим криоконсервированием тромбоцитного концентрата и бедной тромбоцитами плазмы при минус 80°С, хранения криоконсервированного ТК в жидком азоте при минус 196°С не менее 180 суток до 24 месяцев с целью карантинизации тромбоцитов и плазмы, размораживания при 37°С и ресуспендирование криоконсервированного тромбоцитного концентрата до концентрации тромбоцитов 1,5×109/мл и снижения концентрации ДМСО менее 0,5%, оценки сохранности биологически полноценных тромбоцитов.
Использование адекватного метода морфофункционального анализа тромбоцитов человека позволило оптимизировать оценку качества клеток в ТК на разных этапах криоконсервирования. В качестве такого приема был предложен разработанный ранее способ оценки морфофункционального статуса тромбоцитов человека [Патент РФ на изобретение №2485502 «Способ оценки морфофункционального статуса тромбоцитов человека», авторы Хубутия М.Ш., Макаров М.С., Хватов В.Б., Высочин И.В., Кобзева Е.Н., Боровкова Н.В., Конюшко О.И., 20.06.2013], основанный на витальном (прижизненном) окрашивании тромбоцитов флуорохромным красителем на основе трипафлавина и акридинового оранжевого с последующим их анализом во флуоресцентном микроскопе. Данный метод позволяет параллельно оценить структурную целостность и функциональную активность тромбоцитов независимо от их концентрации в пробе, в том числе - в бесплазменной среде. Таким образом, используя данный метод, появляется возможность оценить общее содержание биологически полноценных тромбоцитов в исследуемом ТК (109/мл), а также оценить сохранность таких клеток после разных процедур криоконсервирования. Проведенные исследования показывают, что биологически полноценными (с нормальной структурой и функциями) являются лишь те тромбоциты, в которых при витальном окрашивании отчетливо выявляются гранулы - не менее 3 гранул диаметром более 300 мкм на клетку во флуоресцентном микроскопе, яркость свечения клетки - не менее 40 фут-кандел (Макаров М.С., Кобзева Е.Н., Высочин И.В., Боровкова Н.В., Хватов В.Б. Морфофункциональный анализ тромбоцитов человека с помощью витального окрашивания // Бюллетень экспериментальной биологии и медицины. - 2013. - №9. - С. 388-391). Следовательно, оценка содержания тромбоцитов с гранулами может быть использована для контроля качества клеток ТК до и после криоконсервирования.
При экспозиции богатой тромбоцитами плазмы (БоТП) с ДМСО в конечной концентрации от 0,5 до 20% при комнатной температуре было установлено, что в процессе контакта с ДМСО биологическая полноценность клеток БоТП снижается, параллельно с этим уменьшается содержание тромбоцитов с гранулами (табл. 1). Так, при 0,5% ДМСО содержание тромбоцитов с гранулами в БоТП практически не менялось в течение 2 часов при комнатной температуре, через 4 часа снижалось на 7-10%, через 20 часов - на 70%. При концентрации ДМСО от 1 до 20% динамика снижения числа тромбоцитов с гранулами была сходной в течение первых двух часов: через 1 час потеря тромбоцитов с гранулами составила 10-20%, через 2 часа - 40-50%, через 4 часа - от 60 до 80%, через 20 часов тромбоциты с гранулами в БоТП полностью отсутствовали. Еще более выраженной динамика снижения тромбоцитов с гранулами была при 10-20% ДМСО: через 2 часа потеря тромбоцитов с гранулами составила 55-65%, через 4 часа - 90-99%. Стоит особо отметить, что при концентрации ДМСО 5% и выше адгезивная активность тромбоцитов с гранулами падает гораздо быстрее, чем их содержание. Этот эффект становится выражен уже при концентрации ДМСО 2% и выше. При использовании 5% ДМСО после 30 мин экспозиции адгезивная активность тромбоцитов снижалась в среднем в 2 раза (табл.2). Таким образом, уже через 30 мин экспозиции БоТП с 5% ДМСО при комнатной температуре в среднем 50% тромбоцитов с гранулами не проявляли функциональной активности. Это указывает на то, что время контакта тромбоцитов с 5% ДМСО при комнатной температуре должно быть минимизировано. С другой стороны, при концентрации 0,3-0,5% ДМСО биологическая полноценность тромбоцитов практически не нарушается в течение нескольких часов. Следовательно, разведение размороженных ДМСО-содержащих ТК до концентрации 0,3-0,5% ДМСО позволит сохранить их структурную и функциональную полноценность в течение 4-6 часов после разморозки.
Figure 00000001
Figure 00000002
В процессе проведения научно-исследовательской работы была разработана процедура криоконсервирования ТК, при которой время контакта тромбоцитов под действием ДМСО было минимизировано. Был выбран комбинированный стерильный криоконсервирующий раствор, содержащий 55% ДМСО (эндоцитарный криопротектор) и 5% декстран (экзоцитарный криопротектор), который позволяет адекватно проводить заморозку клеток и межклеточной среды. Вносить криопротектор в ТК предлагается после его центрифугирования и разделения на тромбоцитсодержащую часть и бесклеточную плазму. Для получения бесклеточной плазмы ТК необходимо подвергнуть центрифугированию при ускорении 1250 g. Проведенные ранее исследования показали, что центрифугирование БоТП и ТК с ускорением от 500 до 2000 g значимо не влияет на содержание клеток с гранулами [Макаров М.С., Кобзева Е.Н., Боровкова Н.В., Хватов В.Б. Влияние центрифугирования на биологическую полноценность тромбоцитов человека // Вестник службы крови России. - 2015. - №1. - С. 41-44], т.е. ускорение в 1250 g является адекватным для отделения тромбоцитсодержащей массы от бесклеточной плазмы и не нарушает биологической полноценности тромбоцитов ТК. Как и в прототипе, объем полученной тромбоцитсодержащей массы составлял 10-15 мл, в которую после ресуспендирования вносили комбинированный криопротектор на основе ДМСО и декстрана, а затем замораживали при минус 80°С. Общая продолжительность этой процедуры составляет 8-12 мин, тогда как в прототипе - от 25 до 30 минут. Таким образом, заявляемая технология в 2,5-3,0 раза сокращает время контакта тромбоцитов с криопротектором.
Было проведено сравнение качества тромбоцитов в криоконсервированных ТК, полученных с помощью технологии-прототипа и с помощью заявляемой технологии (табл. 3). Для оценки эффективности криоконсервирования решено было определять сохранность тромбоцитов с гранулами и сохранность их адгезивной активности. Было установлено, что заявляемая технология позволяет сохранить гораздо большее число биологически полноценных тромбоцитов (в 1,5-1,8 раза), чем технология-прототип. Разведение криконсервированных ТК осуществляли с помощью бесклеточной плазмы того же донора, которую параллельно замораживали (без криопротектора), а затем размораживали. Объем размороженной плазмы составлял 90-100 мл, что позволяло развести тромбоцитсодержащую часть ТК в 10 раз, снижая концентрацию ДМСО в ней до 0,4-0,6%. В то же время в прототипе концентрация ДМСО составляет 2,5-3%, осмолярность - более 800 мОсмоль/л, что является токсичным для тромбоцитов человека, при этом для дилюции ТК используется 0,9% раствор хлорида натрия, не обладающий буферными свойствами и не препятствующий закислению среды. В результате хранение размороженных ТК, полученных по технологии-прототипу, сопровождается выраженным снижением структурной и функциональной полноценности тромбоцитов. Так, через 1 час хранения в размороженных ТК адгезивная активность клеток снижается на 70%, через 2 часа - на 90%, через 4 часа - на 95-98% (см. чертеж). Это указывает на неэффективность хранения ТК (в прототипе) при комнатной температуре. Напротив, при разведении тромбоцитсодержащей части ТК бесклеточной плазмой (предлагаемая технология) адгезивная активность тромбоцитов снижается через 4 часа лишь на 10% (см. чертеж). Таким образом, появляется возможность хранения размороженных ТК при комнатной температуре в течение 4 часов без угрозы потери структурной или функциональной полноценности тромбоцитов. Осмолярность полученной дозы ТК составляет 360-380 мОсмоль/л, что соответствует физиологической норме и не вызывает развития у пациентов посттрансфузионных реакций.
Figure 00000003
Краткое описание чертежей
Изобретение поясняется графиком, на котором представлена динамика изменения адгезивной активности тромбоцитов в размороженных ТК, приготовленных с использованием технологии-прототипа и заявляемой технологии.
Осуществление изобретения
Определение гемокомпонента "криоконсервированные тромбоциты" представлено в Техническом регламенте "Криоконсервированные тромбоциты, полученные методом афереза" (Постановление Правительства РФ от 26 января 2010 г. N 29 "Об утверждении технического регламента о требованиях безопасности крови, ее продуктов, кровезамещающих растворов и технических средств, используемых в трансфузионно-инфузионной терапии" (с изменениями от 12 октября 2010 г.)).
Ниже представлено подробное описание заявляемого способа получения криоконсервированных тромбоцитов с указанием в некоторых случаях конкретных значений параметров, которые не ограничивают заявляемое изобретение, а представлены лишь для лучшего понимания сущности изобретения. Заявляемый способ включает следующие этапы.
1. Отбор исходного тромбоцитного концентрата (ТК).
Отбор ТК, полученного методом афереза или из дозы крови, проводят по показателям: объем, концентрация и морфофункциональный статус тромбоцитов. Концентрацию тромбоцитов в ТК определяют на геманализаторе. Морфофунциональный статус тромбоцитов (содержание тромбоцитов с гранулами и адгезивно активных тромбоцитов) оценивают методом витального окрашивания. Для этого готовят витальный краситель для тромбоцитов путем разведения 10 мг трипафлавина и 20 мг акридинового оранжевого при комнатной температуре в 100 мл фосфатного буфера (рН - 7,2-7,4), окрашивают пробу ТК из расчета 200 мкл готового красителя на 1 мл пробы в течение 2-5 мин при комнатной температуре, после чего 5 мкл пробы с окрашенными тромбоцитами переносят на предметное стекло и накрывают покровным стеклом. Витально окрашенный препарат анализируют во флуоресцентном микроскопе (объектив ×100, числовая апертура 0.6, λ возбуждения 450-490 нм, λ эмиссии - от 520 нм) в полуавтоматическом режиме. Анализируют изображения 100-200 клеток, определяют содержание тромбоцитов с гранулами (в %) и адгезивную активность тромбоцитов (в баллах). Для криоконсервирования используют ТК: объемом от 180 до 220 мл, содержащих от 1×109/мл до 1,5×109/мл тромбоцитов, имеющих морфофункциональный статус, а именно: тромбоциты с гранулами от 40% до 70% и тромбоциты с адгезивной активностью от 40% до 70%.
2. Фракционирование ТК.
Контейнер, содержащий ТК, центрифугируют со скоростью от 1100 g до 1400 g в течение от 7 до 12 минут. После центрифугирования получают надосадок (плазму бедную тромбоцитами) объемом 172-208 мл и тромбоцитсодержащую часть (объем 8-12 мл).
3. Приготовление (разведение) криопротектора.
Набирают в 10 мл шприц от 1 до 3 мл комбинированного стерильного криопротектора («DIMETYLSULFOXIDE/DEXTRAN 40 SOLUTION (Cryopreservative Solution) 5 ml» содержащего 55% ДМСО и 5% декстран 40. Подсоединяют шприц с криопротектором к контейнеру, содержащему ТК, размещенному в плазмоэкстракторе. Набирают в шприц, содержащий криопротектор, от 10 до 12 мл плазмы. В результате разведения криопротектора концентрация ДМСО снижается в 5 раз.
4. Отделение плазмы от тромбоцитов.
Контейнер, содержащий надосадок (плазму бедную тромбоцитами) и тромбоцитсодержащую часть, помещают в плазмоэкстрактор и удаляют от 160 до 200 мл плазмы, бедную тромбоцитами, в другой контейнер для последующего замораживания.
5. Ресуспендирование тромбоцитов криопротектором.
Тромбоцитсодержащую часть объемом 8 до 12 мл ресуспендируют 10-12 мл разведенного криопротектора. Добавляют криопротектор по 2 мл с интервалами 2 минуты при постоянном перемешивании содержимого мешка. Ресуспендирование тромбоцитов криопротектором проводят в течение 10 минут. Конечная концентрация ДМСО с суспензии тромбоцитов составляет от 5 до 7%.
6. Замораживание и хранение тромбоцитов и плазмы.
Ресуспендированные криопротектором тромбоциты и плазму замораживают со скоростью 1-3°/мин в морозильной камере при температуре от минус 85°С до минус 100°С. Замороженные тромбоциты и плазму хранят при температуре от минус 85°С до минус 196°С.
7. Размораживание тромбоцитов и плазмы.
Контейнеры, содержащие замороженные тромбоциты и плазму, нагревают в программном размораживателе плазмы (например, Barkey Plasmatherm) при температуре от 37 до 40°С в течение от 2 до 10 минут.
8. Ресуспендирование размороженных тромбоцитов плазмой.
Контейнеры с размороженной плазмой и тромбоцитами объединяют в систему методом стерильного соединения трубок этих контейнеров на аппарате CompoDock (Fresenius). Размороженную плазму добавляют по 20 мл через 1-2 минуты к размороженным тромбоцитам. Объем ресуспендированных тромбоцитов составляет от 180 до 220 мл.
9. Контроль качества размороженных тромбоцитов.
Качество размороженных тромбоцитов определяют по параметрам: объем (от 180 до 220 мл), сохранность тромбоцитов не менее 75% от исходного, сохранность тромбоцитов с гранулами и тромбоцитов с адгезивной активностью не менее 50% от исходного.
10. Хранение размороженных тромбоцитов.
Хранят размороженные тромбоциты при температуре от 20 до 24°С и постоянном перемешивании не более 4 часов до трансфузии.
Пример 1.
Для получения криоконсервированных тромбоцитов заготовили тромбоцитный концентрат (ТК) методом афереза на сепараторе крови Trima Accel®. Объем ТК составил 200 мл, содержание тромбоцитов - 218×109/дозе, содержание тромбоцитов с гранулами - 51%, адгезивная активность тромбоцитов - 50%. ТК разделили на две равные части: одну часть (ТК №1) криоконсервировали, используя технологию-прототип, другую (ТК №2) - используя предлагаемую технологию. Параметры качества криоконсервированных тромбоцитов представлены в табл. 4.
Figure 00000004
Анализ результатов хранения замороженных тромбоцитов показал, что предложенная технология криоконсервирования тромбоцитов по сравнению с прототипом обеспечивает значимо большую сохранность жизнеспособных клеток в размороженных ТК. Так, через 10 минут после размораживания криоконсервированных по предложенной технологии тромбоцитов содержание жизнеспособных клеток было больше, чем в прототипе в 2,5-3 раза, через 4 часа хранения при комнатной температуре - в 40 раз.
Пример 2.
Больной А., 65 лет.
Диагноз: Расслаивающаяся аневризма грудного отдела аорты 2 типа.
Операция с использование аппарата искусственного кровообращения (АИК) - протезирование грудного отдела аорты.
Состояние больного после операции. Кровопотеря за две операции - 2300 мл. После операции в течение первых суток сохраняется геморрагическое отделяемое по дренажам. Тромбоцитопения (концентрация тромбоцитов в крови больного (КТКБ) 59×109. Лейкопения (концентрация лейкоцитов в крови 3,5 тыс/мкл), анемия (гемоглобин 71 г/л и гематокрит 19,5%).
Доля тромбоцитов с гранулами - 5%, адгезивная активность тромбоцитов - 3%, что говорит о низкой биологической полноценности тромбоцитов.
Тактика лечения
С учетом наличия у больного тромбоцитопении и выраженного геморрагического синдрома, развившихся после интраоперационной массивной кровопотери, для коррекции клеточного звена гемостаза проведена лечебная трансфузия тромбоцитного концентрата, размороженного после 9 месяцев криохранения и карантинизации.
Характеристика тромбоконцентрата
Общий объем - 200 мл, общее количество тромбоцитов - 2,4×1011, содержание тромбоцитов с гранулами - 35%, адгезивная активность тромбоцитов - 30%. Трансфузия - лечебная с учетом группы крови и фенотипа О (I) положительный.
Эффективность трансфузии
После переливания ТК геморрагический синдром купирован. В крови больного концентрация тромбоцитов повысилась до 77×109/л через 1 час и до 102×109/л через 24 часа после переливания ТК. Содержание тромбоцитов с гранулами в крови пациента через 1 час составило 15%, через 24 часа - 18%, адгезивная активность тромбоцитов - соответственно 15 и 14%. Скорректированное число прироста тромбоцитов составило через 1 час 16; через 24 часа - 38×109/л, что говорит о высокой эффективности трансфузии ТК. Больной экстубирован, моча светлая, геморрагический синдром купирован.

Claims (16)

1. Способ криоконсервирования тромбоцитов, включающий:
отбор исходного тромбоцитного концентрата с концентрацией тромбоцитов от 1×109/мл до 1,5×109/мл, содержащих от 40 до 70% тромбоцитов с гранулами и тромбоциты с адгезивной активностью от 40 до 70%;
разделение ТК на тромбоцитсодержащую часть и плазму с последующим отделением плазмы от тромбоцитсодержащей части;
приготовление комбинированного криопротектора, содержащего 55% ДМСО и 5% декстран 40, путем разведения криопротектора плазмой до конечной концентрации ДМСО от 10 до 15%;
ресуспендирование тромбоцитсодержащей части разведенным криопротектором, который вводят в тромбоцитсодержащую часть по 1-3 мл с интервалами 1-3 минуты при постоянном перемешивании до конечной концентрации ДМСО в суспензии тромбоцитов от 5 до 7%;
замораживание суспензии тромбоцитов и плазмы со скоростью 1-3°/мин в отдельных контейнерах в морозильной камере при температуре от минус 80°С до минус 100°C;
хранение замороженных тромбоцитов и плазмы при температуре от минус 85°C до минус 196°C;
размораживание контейнеров с замороженными тромбоцитами и плазмой нагреванием при температуре от 37 до 40°C в течение от 2 до 10 минут;
ресуспендирование размороженных тромбоцитов плазмой, совместимой по системе АВО, в соотношении 1:9, в течение 10 минут;
хранение размороженных тромбоцитов при температуре от 20 до 24°C и постоянном перемешивании не более 4 часов до трансфузии.
2. Способ по п. 1, характеризующийся тем, что разделение ТК на тромбоцитсодержащую часть и плазму осуществляют центрифугированием со скоростью от 1100 g до 1400 g в течение от 7 до 12 минут.
3. Способ по п. 1, характеризующийся тем, что в качестве криопротектора используют DIMETYLSULFOXIDE/DEXTRAN 40 SOLUTION (Cryopreservative Solution) 5 ml.
4. Способ по п. 1, характеризующийся тем, что ресуспендируют тромбоцитсодержащую часть криопротектором в течение от 9 до 12 минут.
5. Способ по п. 1, характеризующийся тем, что исходный тромбоцитный концентрат отбирают объемом от 180 до 220 мл для приготовления комбинированного криопротектора с конечной концентрацией ДМСО от 10 до 15% исходный криопротектор разводят плазмой в объемном соотношении 1:9, ресуспендирование тромбоцитсодержащей части разведенным криопротектором для получения суспензии тромбоцитов с конечной концентрацией ДМСО от 5 до 7% осуществляют в объемном соотношении 1:1, размороженные тромбоциты ресуспендируют добавлением от 172 до 208 мл размороженной плазмы по 20 мл через 1-2 минуты в контейнер с 15-25 мл размороженными тромбоцитами.
6. Способ по п. 1, характеризующийся тем, что после размораживания измеряют следующие параметры тромбоцитов: количество тромбоцитов, количество тромбоцитов с гранулами и количество адгезивно активных тромбоцитов.
7. Способ по п. 1, характеризующийся тем, что оценивают качество размороженных тромбоцитов по следующим параметрам: объем от 180 до 220 мл, сохранность тромбоцитов - не менее 75% от исходного, сохранность тромбоцитов с гранулами и тромбоцитов с адгезивной активностью - не менее 50% от исходного.
RU2016124196A 2016-06-20 2016-06-20 Способ криоконсервирования тромбоцитов RU2623081C1 (ru)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2016124196A RU2623081C1 (ru) 2016-06-20 2016-06-20 Способ криоконсервирования тромбоцитов

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2016124196A RU2623081C1 (ru) 2016-06-20 2016-06-20 Способ криоконсервирования тромбоцитов

Publications (1)

Publication Number Publication Date
RU2623081C1 true RU2623081C1 (ru) 2017-06-21

Family

ID=59241541

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
RU2016124196A RU2623081C1 (ru) 2016-06-20 2016-06-20 Способ криоконсервирования тромбоцитов

Country Status (1)

Country Link
RU (1) RU2623081C1 (ru)

Cited By (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2710367C2 (ru) * 2018-05-29 2019-12-26 Общество с ограниченной ответственностью "Институт биотехнологий и фармакологии", ООО "ИНБИОФАРМА" Способ получения цитокинов из тромбоцитов пуповинной крови как субстрата для разработки лекарственных средств для человека и животных
RU2715746C1 (ru) * 2019-10-07 2020-03-03 Общество с ограниченной ответственностью "ЦИТОПРОМ" Устройство для криоконсервирования и подготовки тромбоцитов к трансфузии
EP3669904A1 (en) * 2018-12-21 2020-06-24 Fenwal, Inc. Methods and systems for platelet cryopreservation

Citations (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU99126524A (ru) * 1999-12-16 2001-08-27 Военно-медицинская академия Способ низкотемпературного консервирования тромбоцитов
RU2233589C2 (ru) * 2002-01-14 2004-08-10 Галина Степановна Лобынцева Способ криоконсервирования гемопоэтических клеток человека
RU2006131078A (ru) * 2006-08-29 2008-03-10 ФГУ "Кировский НИИ гематологии и переливани крови Росздрава" (RU) Способ криоконсервирования тромбоцитов

Patent Citations (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU99126524A (ru) * 1999-12-16 2001-08-27 Военно-медицинская академия Способ низкотемпературного консервирования тромбоцитов
RU2233589C2 (ru) * 2002-01-14 2004-08-10 Галина Степановна Лобынцева Способ криоконсервирования гемопоэтических клеток человека
RU2006131078A (ru) * 2006-08-29 2008-03-10 ФГУ "Кировский НИИ гематологии и переливани крови Росздрава" (RU) Способ криоконсервирования тромбоцитов

Non-Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
VALERI CR et al. Freezing human platelets with 6 percent dimethyl sulfoxide with removal of the supernatant solution before freezing and storage at -80 degrees C without postthaw processing. Transfusion, 2005, 45(12), p.1890-8. *

Cited By (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2710367C2 (ru) * 2018-05-29 2019-12-26 Общество с ограниченной ответственностью "Институт биотехнологий и фармакологии", ООО "ИНБИОФАРМА" Способ получения цитокинов из тромбоцитов пуповинной крови как субстрата для разработки лекарственных средств для человека и животных
EP3669904A1 (en) * 2018-12-21 2020-06-24 Fenwal, Inc. Methods and systems for platelet cryopreservation
RU2715746C1 (ru) * 2019-10-07 2020-03-03 Общество с ограниченной ответственностью "ЦИТОПРОМ" Устройство для криоконсервирования и подготовки тромбоцитов к трансфузии

Similar Documents

Publication Publication Date Title
US20190203176A1 (en) Platelet Products and Storage Media for Platelet Concentrates
Almizraq et al. Extracellular vesicles in transfusion-related immunomodulation and the role of blood component manufacturing
EP2271209B1 (en) Materials and methods for hypothermic collection of whole blood
Veale et al. Effect of additive solutions on red blood cell (RBC) membrane properties of stored RBCs prepared from whole blood held for 24 hours at room temperature
RU2623081C1 (ru) Способ криоконсервирования тромбоцитов
Chen et al. Introducing the red cell storage lesion
US20150328260A1 (en) Blood cell preparations and related methods (gen 8)
Wannez et al. Extracellular vesicles in red blood cell concentrates: an overview
Slichter et al. Platelets stored in whole blood at 4° C: in vivo posttransfusion platelet recoveries and survivals and in vitro hemostatic function
US20180304005A1 (en) Apheresis Platelets With Fixed Residual Plasma Volume
EP1244353A1 (en) Compositions for the storage of platelets
Johnson et al. The role of sodium citrate during extended cold storage of platelets in platelet additive solutions
Abonnenc et al. General overview of blood products in vitro quality: Processing and storage lesions
Hubel et al. Cryopreservation of cord blood after liquid storage
RU2623083C1 (ru) Способ замораживания тромбоцитов
CN113813454B (zh) 一种采集器官捐献供体血液的方法
Domowicz et al. Effects of repleting organic phosphates in banked erythrocytes on plasma metabolites and vasoactive mediators after red cell exchange transfusion in sickle cell disease
Rathbun et al. Posttransfusion survival of red cells frozen for 8 weeks after 42‐day liquid storage in AS‐3
US20040229205A1 (en) Compositions for the storage of platelets
RU2623864C1 (ru) Способ подготовки криоконсервированных тромбоцитов для трансфузии
RU2795058C1 (ru) Способ отмывания криоконсервированных-оттаянных тромбоцитов от ограждающего раствора
RU2743816C1 (ru) Способ получения криоконсервированных мононуклеарных клеток
RU2744614C1 (ru) Способ снижения токсичности криоконсервирующего раствора на основе диметилсульфоксида после размораживания гемопоэтических стволовых клеток
Roshanzamir et al. The potential effect of leukocyte filtration methods on erythrocyte-derived microvesicles: One step forward
RU2263448C1 (ru) Способ криоконсервирования пуповинной крови

Legal Events

Date Code Title Description
QB4A Licence on use of patent

Free format text: LICENCE FORMERLY AGREED ON 20180201

Effective date: 20180201

QB4A Licence on use of patent

Free format text: LICENCE FORMERLY AGREED ON 20180426

Effective date: 20180426

QB4A Licence on use of patent

Free format text: LICENCE FORMERLY AGREED ON 20180905

Effective date: 20180905

QB4A Licence on use of patent

Free format text: LICENCE FORMERLY AGREED ON 20180912

Effective date: 20180912

QB4A Licence on use of patent

Free format text: LICENCE FORMERLY AGREED ON 20181219

Effective date: 20181219

QB4A Licence on use of patent

Free format text: LICENCE FORMERLY AGREED ON 20191107

Effective date: 20191107

QB4A Licence on use of patent

Free format text: LICENCE FORMERLY AGREED ON 20191113

Effective date: 20191113

QB4A Licence on use of patent

Free format text: LICENCE FORMERLY AGREED ON 20191120

Effective date: 20191120

QB4A Licence on use of patent

Free format text: LICENCE FORMERLY AGREED ON 20200420

Effective date: 20200420