RU2614885C1 - Models of spinal cord ischemia of laboratory animals - Google Patents

Models of spinal cord ischemia of laboratory animals Download PDF

Info

Publication number
RU2614885C1
RU2614885C1 RU2015156780A RU2015156780A RU2614885C1 RU 2614885 C1 RU2614885 C1 RU 2614885C1 RU 2015156780 A RU2015156780 A RU 2015156780A RU 2015156780 A RU2015156780 A RU 2015156780A RU 2614885 C1 RU2614885 C1 RU 2614885C1
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
ischemia
spinal cord
laboratory animals
vena cava
animals
Prior art date
Application number
RU2015156780A
Other languages
Russian (ru)
Inventor
Фезилах Талибович Велиханов
Камал Тажудинович Алиев
Original Assignee
Государственное бюджетное образовательное учреждение высшего профессионального образования "Дагестанская государственная медицинская академия" Министерства здравоохранения РФ
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Государственное бюджетное образовательное учреждение высшего профессионального образования "Дагестанская государственная медицинская академия" Министерства здравоохранения РФ filed Critical Государственное бюджетное образовательное учреждение высшего профессионального образования "Дагестанская государственная медицинская академия" Министерства здравоохранения РФ
Priority to RU2015156780A priority Critical patent/RU2614885C1/en
Application granted granted Critical
Publication of RU2614885C1 publication Critical patent/RU2614885C1/en

Links

Landscapes

  • Medicines That Contain Protein Lipid Enzymes And Other Medicines (AREA)
  • Acyclic And Carbocyclic Compounds In Medicinal Compositions (AREA)

Abstract

FIELD: medicine.
SUBSTANCE: for simulation of spinal cord ischemia in laboratory animals, anesthetic preparation "Propofol" is administered. The abdominal aorta and inferior vena cava are selected, ligatures are placed below the point of origin of renal arteries. Collaterals are destroyed by a scalpel, the inferior vena cava is tied up below the renal vessels, and then ligatures are removed from the place of their application.
EFFECT: method provides a persistent ischemia in laboratory animals by intraperitoneal injection of drugs, reduction of animals trauma during operations, a possibility of longer observation of patients without ischemia of the intestine, the lower libs and circulatory disorders of mesenteric veins.
1 ex

Description

Изобретение относится к экспериментальной медицине и может использоваться при выполнении научных работ по ишемии спинного мозга.The invention relates to experimental medicine and can be used when performing scientific work on spinal cord ischemia.

Аналоги изобретенияAnalogs of the invention

Экспериментальная модель ишемии спинного мозга у крыс при окклюзии брюшной аорты ниже почечных артерий. (Г.В. Пономарев, А.А. Шмонин, К.Т. Алиев, Т.Д. Власов Е.В. Мельникова, Д.Г. Смолко, А.А. Скоромец).An experimental model of rat spinal cord ischemia with occlusion of the abdominal aorta below the renal arteries. (G.V. Ponomarev, A.A. Shmonin, K.T. Aliyev, T.D. Vlasov E.V. Melnikova, D.G. Smolko, A.A. Skoromets).

Критика аналоговCriticism of analogues

Однако известные модели создания ишемии спинного мозга имеют недостатки, выявленные в ходе экспериментов: возникновение нарушения кровоснабжения кишечника, возникновение коллатерального кровоснабжения спинного мозга, в результате чего необходимы повторные оперативные вмешательства.However, the known models for creating ischemia of the spinal cord have the disadvantages identified during the experiments: the occurrence of a violation of the blood supply to the intestines, the occurrence of collateral blood supply to the spinal cord, as a result of which repeated surgical interventions are necessary.

Прототип изобретенияPrototype of the invention

Экспериментальная модель ишемии спинного мозга у крыс при окклюзии брюшной аорты ниже почечных артерий: Г.В. Пономарев, А.А. Шмонин К.Т. Алиев, Т.Д. Власов Е.В. Мельникова, Д.Г. Смолко, А.А. Скоромец (журнал Трансляционная медицина, август 2014, стр. 40-45.).An experimental model of rat spinal cord ischemia with occlusion of the abdominal aorta below the renal arteries: G.V. Ponomarev, A.A. Shmonin K.T. Aliev, T.D. Vlasov E.V. Melnikova, D.G. Smolko, A.A. Skoromets (Journal of Translational Medicine, August 2014, pp. 40-45.).

По прототипу эксперименты проводили в соответствии с «Руководством по уходу и использованию лабораторных животных» (публикация Национального института здоровья №85-23, США) и «Руководством по экспериментальному (доклиническому) изучению новых фармакологических веществ» под общей редакцией Р.У. Хабриева (2005). Опыты выполнены на 12 крысах-самцах линии Wistar массой 200-250 г. Все оперативные вмешательства проведены в экспериментальной операционной с соблюдением правил асептики и антисептики под общей анестезией хлоралгидратом (450 мг/кг), введенным внутрибрюшинно. Экспериментальные животные были поделены на две экспериментальные группы. К первой (контрольной) отнесены ложнооперированные крысы, которым производили выделение брюшного отдела аорты без ее окклюзии (n=6); у второй (опытной) проводили пережатие инфраренального отдела брюшной аорты без реперфузии (n=6). Для моделирования ишемии пояснично-крестцовых сегментов спинного мозга у анестезированных животных выполняли лапаротомию, выделяли инфраренальный отдел брюшной аорты, которую перевязывали шовной шелковой нитью. Операционная рана ушивалась. Животные помещались по одному в клетку. Неврологический дефицит оценивали через 48 часов по шкале Тарлова. Спустя 48 часов после перевязки брюшной аорты медицинской иглой пунктировали левый желудочек сердца и вводили 4-процентный раствор параформальдегида на фосфатном буфере с целью фиксации спинного мозга. Затем послойно препарировали мягкие ткани поясничного отдела и выделяли позвоночник. После ляминэктомии и пересечения спинномозговых корешков извлекали из позвоночного канала спинной мозг. Затем его заливали парафином (или целлулоидином) и после застывания проводили на микротоме срезы пояснично-крестцовых сегментов (L2-S4) толщиной 5 мкм и окрашивали тионином по методике Ниссля. Далее под световым микроскопом при увеличении ×100, ×400 подсчитывали число нейронов нормохромных, гиперхромных сморщенных и несморщенных и гипохромных клеток-теней. Статистическую обработку результатов проводили с помощью программы «Statistica 6,0». Для сравнения двух независимых выборок был использован непараметрический теста Манна-Уитни. Различия считались значимыми при р<0,01.The prototype experiments were carried out in accordance with the Guidelines for the care and use of laboratory animals (publication of the National Institute of Health No. 85-23, USA) and the Guidelines for the experimental (preclinical) study of new pharmacological substances, edited by R.U. Khabrieva (2005). The experiments were performed on 12 Wistar male rats weighing 200-250 g. All surgical interventions were performed in an experimental operating room in compliance with aseptic and antiseptic rules under general anesthesia with chloral hydrate (450 mg / kg), administered intraperitoneally. Experimental animals were divided into two experimental groups. False-operated rats, which were used to isolate the abdominal aorta without occlusion, were assigned to the first (control) one (n = 6); in the second (experimental), the infrarenal section of the abdominal aorta was clamped without reperfusion (n = 6). To model ischemia of the lumbosacral segments of the spinal cord in anesthetized animals, laparotomy was performed, the infrarenal section of the abdominal aorta was isolated, which was ligated with suture silk thread. The surgical wound was sutured. Animals were housed one at a time in a cage. Neurological deficit was assessed after 48 hours on the Tarlov scale. 48 hours after the abdominal aortic ligation, the left ventricle of the heart was punctured with a medical needle and a 4% solution of paraformaldehyde was injected on phosphate buffer to fix the spinal cord. Then, soft tissues of the lumbar region were dissected in layers and the spine was isolated. After laminectomy and intersection of the spinal roots, the spinal cord was removed from the spinal canal. Then it was embedded in paraffin (or celluloidin) and, after solidification, sections of the lumbosacral segments (L2-S4) 5 μm thick were performed on the microtome and stained with thionine according to the Nissl method. Then, under a light microscope with magnification × 100, × 400, the number of neurons of normochromic, hyperchromic shriveled and non-wrinkled and hypochromic shadow cells was counted. Statistical processing of the results was carried out using the program "Statistica 6.0". A nonparametric Mann-Whitney test was used to compare two independent samples. Differences were considered significant at p <0.01.

Критика прототипаPrototype criticism

Возникновение нарушения кровоснабжения кишечника, возникновение коллатерального кровоснабжения, в результате чего необходимы повторные оперативные вмешательства.The occurrence of a violation of the blood supply to the intestines, the occurrence of collateral blood supply, resulting in the need for repeated surgical interventions.

Цель изобретения - устранение возникновения коллатерального кровоснабжения без ишемизации кишечника.The purpose of the invention is to eliminate the occurrence of collateral blood supply without intestinal ischemia.

Сущность изобретенияSUMMARY OF THE INVENTION

Сущность предлагаемой экспериментальной модели заключается в следующем:The essence of the proposed experimental model is as follows:

эксперимент проводят на лабораторных животных (крысы).the experiment is carried out on laboratory animals (rats).

Подготовка:Training:

1) Производилась выборка животных по возрасту и полу.1) A sample of animals was made by age and gender.

2) Животные взвешивались и рассчитывалась доза наркозного препарата (пропофол).2) Animals were weighed and the dose of anesthetic drug (propofol) was calculated.

3) Введение наркозного препарата.3) The introduction of an anesthetic drug.

4) Спустя 30 минут контроль глубины наркоза путем болевых рефлексов.4) After 30 minutes, control the depth of anesthesia by pain reflexes.

5) Подготовка операционного поля.5) Preparation of the surgical field.

Ход операции:Operation progress:

1) Срединная лапаротомия.1) Median laparotomy.

2) Доступ к брюшной части аорты и нижней полой вене.2) Access to the abdominal aorta and inferior vena cava.

3) Выделение брюшной части аорты и нижней полой вены.3) Isolation of the abdominal aorta and inferior vena cava.

4) Наложение лигатур ниже места отхождения почечных артерий.4) Ligature application below the site of renal artery discharge.

5) Разрушение коллатералей.5) The destruction of collaterals.

6) Перевязка нижней полой вены ниже почечных сосудов, снятие лигатур и проверка гемостаза.6) Bandaging the inferior vena cava below the renal vessels, removing ligatures and checking hemostasis.

7) Ушивание раны.7) Wound closure.

Послеоперационный период:Postoperative period:

1) Проверка возникновения пареза или паралича нижних конечностей.1) Check for paresis or paralysis of the lower extremities.

2) Повторное вскрытие.2) Re-opening.

3) Введение в левый желудочек 1,0 мл бриллиантовой сини.3) The introduction into the left ventricle of 1.0 ml of diamond blue.

4) Через пять минут введение раствора бриллиантовой сини с формальдегидом 10% в объеме 2,0 мл.4) After five minutes, the introduction of a solution of diamond blue with formaldehyde 10% in a volume of 2.0 ml.

5) Извлечение спинного мозга.5) Spinal cord extraction.

6) Изучение макропрепарата, окраска и срезы.6) The study of macro, coloring and sections.

Пример конкретного способа создания моделиAn example of a specific way to create a model

В ходе проверки модели ишемии использовались 6 лабораторных животных. У трех крыс на первые сутки возник паралич нижних конечностей. К третьим суткам у всех животных этой группы наблюдались парезы и параличи в нижних конечностях. В результате у всех лабораторных животных на макропрепарате наблюдалось окрашивание позвоночного столба и спинного мозга выше уровня манипуляции.During the testing of the ischemia model, 6 laboratory animals were used. In three rats, paralysis of the lower extremities arose on the first day. By the third day, paresis and paralysis in the lower extremities were observed in all animals of this group. As a result, in all laboratory animals on a macrodrug, staining of the spinal column and spinal cord was higher than the level of manipulation.

Признаки изобретения, отличительные от прототипаFeatures of the invention, distinctive from the prototype

Предлагаемая в качестве изобретения модель создания ишемии спинного мозга:Proposed as an invention model for the creation of spinal cord ischemia:

- отсутствие перевязки и перерезки брюшной части аорты,- lack of ligation and transection of the abdominal part of the aorta,

- введение препаратов внутрибрюшинно,- the introduction of drugs intraperitoneally,

- перевязка нижней полой вены,- ligation of the inferior vena cava,

- венозная перегрузка нижних конечностей,- venous overload of the lower extremities,

- повышение венозного давления в системе позвоночных коллатералей между нижней и верхней полой венами,- increased venous pressure in the system of vertebral collaterals between the lower and upper vena cava,

- разрушение коллатералей.- destruction of collaterals.

Положительный эффект изобретенияThe beneficial effect of the invention

Получение стойкой ишемии у лабораторных животных, введение препаратов внутрибрюшинно, снижение травматизма животных во время операций, возможность более длительного наблюдения. Отсутствие ишемизации кишечникаи нижних конечностей, отсутствие нарушения кровоснабжения брыжеечных вен.Obtaining persistent ischemia in laboratory animals, administering drugs intraperitoneally, reducing animal injuries during operations, the possibility of a longer observation. The absence of ischemia of the intestines and lower extremities, the lack of impaired blood supply to the mesenteric veins

Источники информаций, принятых во вниманиеSources of information taken into account

1. Трансляционная медицина, август 2014, стр. 40-45. – прототип.1. Translational medicine, August 2014, pp. 40-45. - prototype.

2. «Руководство по уходу и использованию лабораторных животных» (публикация Национального института здоровья №85-23, США).2. "Guide for the care and use of laboratory animals" (publication of the National Institute of Health No. 85-23, USA).

3. «Руководство по экспериментальному (доклиническому) изучению новых фармакологических веществ» под общей редакцией Р.У. Хабриева (2005).3. “Guidelines for the experimental (preclinical) study of new pharmacological substances”, edited by R.U. Khabrieva (2005).

Claims (1)

Способ моделирования ишемии спинного мозга у лабораторных животных, отличающийся тем, что вводят наркозный препарат «Пропофол», выделяют брюшную часть аорты и нижнюю полую вену, накладывают лигатуры ниже места отхождения почечных артерий, скальпелем разрушают коллатерали, перевязывают нижнюю полую вену ниже почечных сосудов, затем снимают лигатуры с места их наложения.A method for simulating spinal cord ischemia in laboratory animals, characterized in that Propofol is anesthetized, the abdominal part of the aorta and the inferior vena cava are isolated, ligatures are placed below the renal arteries, the collaterals are destroyed with a scalpel, the inferior vena cava is bandaged below the renal vessels, then remove ligatures from the place of their imposition.
RU2015156780A 2015-12-28 2015-12-28 Models of spinal cord ischemia of laboratory animals RU2614885C1 (en)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2015156780A RU2614885C1 (en) 2015-12-28 2015-12-28 Models of spinal cord ischemia of laboratory animals

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2015156780A RU2614885C1 (en) 2015-12-28 2015-12-28 Models of spinal cord ischemia of laboratory animals

Publications (1)

Publication Number Publication Date
RU2614885C1 true RU2614885C1 (en) 2017-03-30

Family

ID=58505710

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
RU2015156780A RU2614885C1 (en) 2015-12-28 2015-12-28 Models of spinal cord ischemia of laboratory animals

Country Status (1)

Country Link
RU (1) RU2614885C1 (en)

Citations (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2212058C2 (en) * 2000-04-14 2003-09-10 Иркутский государственный медицинский университет Method for modeling ischemia of spinal cord
RU2496513C1 (en) * 2012-09-27 2013-10-27 Государственное бюджетное учреждение здравоохранения Центр организации специализированной медицинской помощи "Челябинский государственный институт лазерной хирургии" Method of treating spinal ischemia in experiment

Patent Citations (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2212058C2 (en) * 2000-04-14 2003-09-10 Иркутский государственный медицинский университет Method for modeling ischemia of spinal cord
RU2496513C1 (en) * 2012-09-27 2013-10-27 Государственное бюджетное учреждение здравоохранения Центр организации специализированной медицинской помощи "Челябинский государственный институт лазерной хирургии" Method of treating spinal ischemia in experiment

Non-Patent Citations (5)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
AYA NAKAE et al. The Animal Model of Spinal Cord Injury as an Experimental Pain Model, J Biomed Biotechnol. 2011, 11 pages. ZHOU J. et al. Inferior vena cava ligation rapidly induces tissue factor expression and venous thrombosis in rats. Arterioscler Thromb Vasc Biol. 2009 Jun;29(6):863-9. *
ВОЛОДЧЕНКО А.М. и др. Динамика изменений показателя микроциркуляции в ишемизированном спинном мозге под воздействием рекомбинантного эритропоэтина и лазерного излучения (экспериментальное исследование), Пермский медицинский журнал, Т32, N2, 2015, с.58-62. *
ПОНОМАРЕВ Г.В. и др. Экспериментальная модель ишемии спинного мозга у крыс при окклюзии брюшной аорты ниже почечных артерий, Трансляционная медицина, 2014, с.40-45. *
СУФИАНОВА Г.З. и др. Защитное действие А-нтагонистов на малоинвазивной модели ишемии спинного мозга, Экспериментальная и клиническая фармакология, 2003, Т66, N1, с.23-26. *
СУФИАНОВА Г.З. и др. Защитное действие А-нтагонистов на малоинвазивной модели ишемии спинного мозга, Экспериментальная и клиническая фармакология, 2003, Т66, N1, с.23-26. ВОЛОДЧЕНКО А.М. и др. Динамика изменений показателя микроциркуляции в ишемизированном спинном мозге под воздействием рекомбинантного эритропоэтина и лазерного излучения (экспериментальное исследование), Пермский медицинский журнал, Т32, N2, 2015, с.58-62. AYA NAKAE et al. The Animal Model of Spinal Cord Injury as an Experimental Pain Model, J Biomed Biotechnol. 2011, 11 pages. ZHOU J. et al. Inferior vena cava ligation rapidly induces tissue factor expression and venous thrombosis in rats. Arterioscler Thromb Vasc Biol. 2009 Jun;29(6):863-9. *

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Williams et al. Bailey & Love's short practice of surgery
Franco et al. Portal hypertension after bile duct obstruction: effect of bile diversion on portal pressure in the rat
Labat-Gest et al. Photothrombotic ischemia: a minimally invasive and reproducible photochemical cortical lesion model for mouse stroke studies
Sharp et al. Salmon fibrin treatment of spinal cord injury promotes functional recovery and density of serotonergic innervation
Kaux et al. Platelet-rich plasma application in the management of chronic tendinopathies
Chen et al. A novel mouse model of thromboembolic stroke
Martin-Sole et al. Effects of platelet-rich plasma (PRP) on a model of renal ischemia-reperfusion in rats
Wei et al. Establishment of a rat model: Associating liver partition with portal vein ligation for staged hepatectomy
Torul et al. Comparison of the regenerative effects of platelet-rich fibrin and plasma rich in growth factors on injured peripheral nerve: an experimental study
Zhang et al. Vascular balloon injury and intraluminal administration in rat carotid artery
Braeuninger et al. Focal cerebral ischemia
Connell et al. A novel rodent model of reperfusion injury following occlusion of the middle cerebral artery
Lourbopoulos et al. Effectiveness of a new modified intraluminal suture for temporary middle cerebral artery occlusion in rats of various weight
Mohammadi et al. Betamethasone-enhanced vein graft conduit accelerates functional recovery in the rat sciatic nerve gap
Szatmari Chitosan hemostatic dressing for control of hemorrhage from femoral arterial puncture site in dogs
Sharma et al. Rodent spinal cord injury model and application of neurotrophic factors for neuroprotection
RU2614885C1 (en) Models of spinal cord ischemia of laboratory animals
Deng et al. Clock knockout in inhibitory neurons reduces predisposition to epilepsy and influences anxiety-like behaviors in mice
Özaydın et al. Experimental Skin-Wound Methods and Healing-Assessment in Animal Models: A Review.
Kiermeir et al. Evaluation of a porcine whole‐limb heterotopic autotransplantation model
Brandt et al. The influence of liver resection on intrahepatic tumor growth
Guzel et al. Ginkgo Biloba improves bone formation during fracture healing: an experimental study in rats
RU2734568C1 (en) Method of extremity ischemia simulation
Christie et al. Abdomino-perineal resection of the rectum in a haemophilic
Boillat et al. Creation of two saccular elastase-digested aneurysms with different hemodynamics in one rabbit

Legal Events

Date Code Title Description
MM4A The patent is invalid due to non-payment of fees

Effective date: 20181229