RU2614256C2 - Method of detecting of cell culture contamination with viruses by immunoperoxidase method - Google Patents
Method of detecting of cell culture contamination with viruses by immunoperoxidase method Download PDFInfo
- Publication number
- RU2614256C2 RU2614256C2 RU2015112387A RU2015112387A RU2614256C2 RU 2614256 C2 RU2614256 C2 RU 2614256C2 RU 2015112387 A RU2015112387 A RU 2015112387A RU 2015112387 A RU2015112387 A RU 2015112387A RU 2614256 C2 RU2614256 C2 RU 2614256C2
- Authority
- RU
- Russia
- Prior art keywords
- cell culture
- viruses
- virus
- washed
- contamination
- Prior art date
Links
Classifications
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
- C12N1/00—Microorganisms, e.g. protozoa; Compositions thereof; Processes of propagating, maintaining or preserving microorganisms or compositions thereof; Processes of preparing or isolating a composition containing a microorganism; Culture media therefor
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
- C12N7/00—Viruses; Bacteriophages; Compositions thereof; Preparation or purification thereof
Landscapes
- Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
- Chemical & Material Sciences (AREA)
- Health & Medical Sciences (AREA)
- Engineering & Computer Science (AREA)
- Genetics & Genomics (AREA)
- Organic Chemistry (AREA)
- Zoology (AREA)
- Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
- Wood Science & Technology (AREA)
- Biotechnology (AREA)
- Virology (AREA)
- Microbiology (AREA)
- Biomedical Technology (AREA)
- Medicinal Chemistry (AREA)
- Biochemistry (AREA)
- General Engineering & Computer Science (AREA)
- General Health & Medical Sciences (AREA)
- Immunology (AREA)
- Tropical Medicine & Parasitology (AREA)
- Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)
Abstract
Description
Предлагаемое изобретение относится к области ветеринарной вирусологии, в частности к ветеринарной биотехнологии, а именно к обнаружению артефактов (вирусов) в культуре клеток «непрямым» иммунопероксидазным методом.The present invention relates to the field of veterinary virology, in particular to veterinary biotechnology, namely the detection of artifacts (viruses) in cell culture by the “indirect” immunoperoxidase method.
Контаминация культур клеток вирусами представляет проблему как для научных исследований в вирусологии и биотехнологии, так и при производстве различных биопрепаратов (диагностикумов и вакцин).The contamination of cell cultures with viruses is a problem both for scientific research in virology and biotechnology, and for the production of various biological products (diagnosticums and vaccines).
Источником заражения культур клеток могут быть среды, реактивы, сыворотки, персонал лаборатории и др. Диагностикумы, изготовленные из контаминированного сырья, могут давать ложные результаты исследования. В лабораторной практике известны случаи контаминации перевиваемых культур клеток вирусом диареи нецитопатогенного биотипа.The source of infection of cell cultures can be media, reagents, serum, laboratory personnel, etc. Diagnostics made from contaminated raw materials can give false research results. In laboratory practice, cases of contamination of transplanted cell cultures by the diarrhea virus of non-cytopathogenic biotype are known.
Известен способ выявления контаминации культур клеток вирусом диареи крупного рогатого скота в полимеразноцепной реакции (ПЦР) (1).A known method for detecting contamination of cell cultures by the virus of cattle diarrhea in the polymerase chain reaction (PCR) (1).
Известен также способ выявления контаминации культуры клеток вирусом диареи в реакции иммунофлуоресценции, для чего монослой клеток промывают фосфатно-буферным раствором pH 7,2 и фиксируют ацетоном. Клетки инкубируют с иммуноглобулинами мышей против ВД-БС, мечеными ФИТЦ, взятыми в рабочем разведении в течение 45 мин при 37°C. После этого клетки отмывают фосфатно-буферным раствором 3-4 раза, после чего исследуют под люминесцентным микроскопом. О наличии вируса ВД-БС судят по желто-зеленой флуоресценции в клетках (2).There is also a method of detecting contamination of a cell culture by the diarrhea virus in an immunofluorescence reaction, for which a cell monolayer is washed with a phosphate-buffered solution of pH 7.2 and fixed with acetone. Cells are incubated with immunoglobulins of mice against VD-BS labeled with FITC taken in working dilution for 45 min at 37 ° C. After that, the cells are washed with phosphate-buffered saline 3-4 times, after which they are examined under a luminescent microscope. VD-BS virus is judged by yellow-green fluorescence in cells (2).
В задачу исследований входило - разработать специфический, чувствительный, не требующий специального оборудования способ обнаружения контаминации культур клеток вирусом диареи крупного рогатого скота.The research objective was to develop a specific, sensitive, equipment-free method for detecting contamination of cell cultures by the cattle diarrhea virus.
Сущность предложенного способа состоит в следующем.The essence of the proposed method is as follows.
Лунки планшета с выросшим монослоем культуры клеток 3-4 раза отмывают фосфатно-буферным раствором (pH 7,2-7,4), фиксируют ацетоном, отмывают буфером, наносят на монослой специфическую сыворотку в рабочем разведении 1:64 - 1:128 в объеме 0,10-0,12 мл, инкубируют 1,5-2 ч при температуре 36-37°C, отмывают, наносят 0,10-0,12 мл антивидового иммуноферментного коньюгата, состоящего из меченных пероксидазой хрена антител к иммуноглобулинам специфической сыворотки крови крупного рогатого скота, инкубируют при тех же условиях, отмывают и после добавления субстратной смеси 0,10-0,12 мл проводят учет результатов реакции через 30-40 минут на наличие вируса под световым микроскопом. Способ можно также проводить на предметных стеклах.Wells of a plate with a grown monolayer of cell culture are washed 3-4 times with phosphate-buffered saline (pH 7.2-7.4), fixed with acetone, washed with buffer, specific serum is applied to the monolayer in a working dilution of 1:64 - 1: 128 in volume 0.10-0.12 ml, incubated 1.5-2 hours at a temperature of 36-37 ° C, washed, applied, 0.10-0.12 ml of anti-enzyme immunoassay conjugate consisting of horseradish peroxidase-labeled antibodies to immunoglobulins of specific blood serum cattle, incubated under the same conditions, washed and after adding substrate see B 0.10-0.12 ml carried out keeping the reaction results after 30-40 minutes for the virus under a light microscope. The method can also be carried out on slides.
Пример 1Example 1
На первом этапе реакции лунки планшета отмывали от ростовой среды фосфатным буфером pH 7,2, фиксировали ацетоном. Затем на монослой клеток наносили автоматической пипеткой по 0,1 мл гипериммунную сыворотку к вирусу диареи в титре 1:64, инкубировали в термостате 1,5 ч при 36°C, затем отмывали от несвязавшихся антител и вносили 0,10-0,12 мл антивидовой иммуноферментный коньюгат, состоящий из антивидовых иммуноглобулинов, меченных пероксидазой хрена. Планшет инкубировали в термостате при 36°C - 1,5 ч и вновь отмывали фосфатно-буферным раствором. Затем наносили по 0,1 мл субстратной смеси, состоящей из раствора 5-аминосалилициловой кислоты и перекиси водорода. Планшет просматривали под световым микроскопом. Результат учитывали через 30 мин по появлению в цитоплазме клеток образовавшегося реакционного продукта от коричневого до светло-коричневого цвета.At the first stage of the reaction, the wells of the plate were washed from the growth medium with phosphate buffer pH 7.2, and fixed with acetone. Then, a 0.1 ml hyperimmune serum to a diarrhea virus in titer 1:64 was applied to the cell monolayer with an automatic pipette, incubated in an incubator for 1.5 hours at 36 ° C, then washed from unbound antibodies and introduced 0.10-0.12 ml anti-enzyme immunoassay conjugate consisting of anti-species immunoglobulins labeled with horseradish peroxidase. The plate was incubated in a thermostat at 36 ° C for 1.5 h and again washed with phosphate-buffered saline. Then, 0.1 ml of a substrate mixture was applied, consisting of a solution of 5-aminosalilicylic acid and hydrogen peroxide. The tablet was viewed under a light microscope. The result was taken into account after 30 min from the appearance of brown to light brown color in the cell cytoplasm of the resulting reaction product.
В качестве контроля вместо гипериммунной сыворотки применяли отрицательную сыворотку.As a control, negative serum was used instead of hyperimmune serum.
Для контроля реакции при том же режиме обрабатывали культуру клеток неконтаминированную вирусом диареи.To control the reaction under the same mode, a non-contaminated diarrhea virus cell culture was treated.
Проведено 7 опытов по разработке способа выявления контаминации культуры клеток вирусом диареи крупного рогатого скота иммунопероксидазным методом с положительным результатом.7 experiments were conducted on the development of a method for detecting contamination of cell culture by cattle diarrhea virus by immunoperoxidase method with a positive result.
В контрольных препаратах окрашивание отсутствовало.In control preparations, staining was absent.
Пример 2Example 2
Реакцию проводили аналогично примеру 1.The reaction was carried out analogously to example 1.
На первом этапе реакции лунки планшета отмывали от ростовой среды фосфатным буфером pH 7,2, фиксировали ацетоном. Затем на монослой клеток наносили автоматической пипеткой по 0,1 мл гипериммунную сыворотку к вирусу диареи в титре 1:128, инкубировали в термостате 2 ч при 37°C, затем отмывали от несвязавшихся антител и вносили антивидовой иммуноферментный коньюгат, состоящий из антивидовых иммуноглобулинов, меченных пероксидазой хрена. Планшет инкубировали в термостате при 37°C 2 ч и вновь отмывали фосфатно-буферным раствором. Затем наносили по 0,1 мл субстратной смеси, состоящей из раствора 5-аминосалициловой кислоты и перекиси водорода. Планшет просматривали под световым микроскопом. Результат учитывали через 40 мин по появлению в цитоплазме клеток образовавшегося реакционного продукта от коричневого до светло-коричневого цвета. Контроль аналогичен примеру 1.At the first stage of the reaction, the wells of the plate were washed from the growth medium with phosphate buffer pH 7.2, and fixed with acetone. Then, 0.1 ml hyperimmune serum to the diarrhea virus in titer 1: 128 was applied to the cell monolayer with an automatic pipette, incubated in a thermostat for 2 h at 37 ° C, then washed from unbound antibodies and an anti-type immunosorbent conjugate consisting of anti-type immunoglobulins labeled horseradish peroxidase. The plate was incubated in a thermostat at 37 ° C for 2 h and again washed with phosphate-buffered saline. Then, 0.1 ml of a substrate mixture consisting of a solution of 5-aminosalicylic acid and hydrogen peroxide was applied. The tablet was viewed under a light microscope. The result was taken into account after 40 min from the appearance of brown to light brown color in the cell cytoplasm of the resulting reaction product. The control is similar to example 1.
Проведено 5 опытов по выявлению контаминации культуры клеток вирусом диареи крупного рогатого скота иммунопероксидазным методом с положительным результатом.5 experiments were carried out to identify the contamination of cell culture with cattle diarrhea virus by immunoperoxidase method with a positive result.
В контрольных препаратах окрашивание отсутствовало.In control preparations, staining was absent.
Предложенный способ чувствителен и специфичен, в лабораторных условиях выявляет нецитопатогенные штаммы вируса диареи. Прост в исполнении, не трудоемок, не требует специального оборудования.The proposed method is sensitive and specific, in laboratory conditions reveals non-cytopathogenic strains of the diarrhea virus. It is simple in execution, not laborious, does not require special equipment.
Предложенный способ, используя набор специфических сывороток к различным возбудителям, позволяет значительно сократить время на выявление контаминации культуры клеток.The proposed method, using a set of specific sera for various pathogens, can significantly reduce the time to detect contamination of cell culture.
Совершенствование системы контроля, направленного на предотвращение биологического загрязнения, является чрезвычайно важным этапом в производстве биологических препаратов (вакцин, диагностикумов и др.).Improving the control system aimed at preventing biological pollution is an extremely important stage in the production of biological preparations (vaccines, diagnostic kits, etc.).
Предложенный способ выявления контаминации культур клеток вирусом диареи крупного рогатого скота иммунопероксидазным методом испытан с положительным результатом в 2014 году в лаборатории вирусологии ФГБНУ ВИЭВ им. Я.Р. Коваленко.The proposed method for detecting the contamination of cell cultures with cattle diarrhea virus by immunoperoxidase method was tested with a positive result in 2014 in the Virology Laboratory of FSBIU VIEV named after Ya.R. Kovalenko.
В связи с вышеизложенным проблема совершенствования системы контроля скрытой контаминации вирусами клеточных линий, используемых в лабораторной практике и биологической промышленности, направлена на предотвращение биологического загрязнения и является чрезвычайно важным этапом в производстве вакцин и диагностикумов. Этот способ может быть использован в целях сертификации на отсутствие вирусов во вновь поступающих культурах клеток.In connection with the foregoing, the problem of improving the control system for covert virus contamination of cell lines used in laboratory practice and the biological industry is aimed at preventing biological contamination and is an extremely important stage in the production of vaccines and diagnostics. This method can be used for certification for the absence of viruses in newly introduced cell cultures.
Способ практически легко осуществим для контроля клеточных культур на содержание в них вирусов и рекомендуется для широкого использования как в научно-исследовательских и практических вирусологических лабораториях, так и в производстве при изготовлении диагностикумов и вакцин.The method is almost easily feasible for monitoring cell cultures for the content of viruses in them and is recommended for widespread use both in research and practical virological laboratories, and in production in the manufacture of diagnosticums and vaccines.
Источники информацииInformation sources
1. Информационный бюллетень, «Клеточные культуры». М.: ВИЭВ, 2011, вып. 27, стр. 80-88.1. Newsletter, “Cell Culture”. M .: VIEV, 2011, no. 27, pp. 80-88.
2. Российский ветеринарный журнал. «Сельскохозяйственные животные», М.: 2013, 1, стр. 15-18.2. Russian Veterinary Journal. "Farm animals", Moscow: 2013, 1, p. 15-18.
Claims (1)
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
RU2015112387A RU2614256C2 (en) | 2015-04-07 | 2015-04-07 | Method of detecting of cell culture contamination with viruses by immunoperoxidase method |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
RU2015112387A RU2614256C2 (en) | 2015-04-07 | 2015-04-07 | Method of detecting of cell culture contamination with viruses by immunoperoxidase method |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
RU2015112387A RU2015112387A (en) | 2016-10-27 |
RU2614256C2 true RU2614256C2 (en) | 2017-03-24 |
Family
ID=57216093
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
RU2015112387A RU2614256C2 (en) | 2015-04-07 | 2015-04-07 | Method of detecting of cell culture contamination with viruses by immunoperoxidase method |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
RU (1) | RU2614256C2 (en) |
Citations (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
WO2000011149A1 (en) * | 1998-08-24 | 2000-03-02 | Uab Research Foundation | Methods of producing high titer recombinant adeno-associated virus |
RU2012139912A (en) * | 2012-09-18 | 2014-03-27 | Общество с ограниченной ответственностью "Биоликвид Про" | METHOD FOR DETERMINING CONTAMINATION OR DAMAGE TO FOOD, SOIL, BIOLOGICAL MATERIALS AND BUILDING CONSTRUCTIONS BY MOLD MUSHROOMS |
-
2015
- 2015-04-07 RU RU2015112387A patent/RU2614256C2/en active
Patent Citations (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
WO2000011149A1 (en) * | 1998-08-24 | 2000-03-02 | Uab Research Foundation | Methods of producing high titer recombinant adeno-associated virus |
RU2012139912A (en) * | 2012-09-18 | 2014-03-27 | Общество с ограниченной ответственностью "Биоликвид Про" | METHOD FOR DETERMINING CONTAMINATION OR DAMAGE TO FOOD, SOIL, BIOLOGICAL MATERIALS AND BUILDING CONSTRUCTIONS BY MOLD MUSHROOMS |
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
RU2015112387A (en) | 2016-10-27 |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
Payne | Methods to study viruses | |
Hu et al. | Impact of heat-inactivation on the detection of SARS-CoV-2 IgM and IgG antibody by ELISA | |
CN105829892B (en) | The improved diagnostic test of CSFV antibody | |
CN110218668B (en) | Inert carrier salmonella and potential application thereof | |
Zhou et al. | The impact of sample processing on the rapid antigen detection test for SARS-CoV-2: virus inactivation, VTM selection, and sample preservation | |
Mak et al. | Development of an automated, high-throughput bactericidal assay that measures cellular respiration as a survival readout for Neisseria meningitidis | |
Ekrami et al. | Validity of bioconjugated silica nanoparticles in comparison with direct smear, culture, and polymerase chain reaction for detection of Mycobacterium tuberculosis in sputum specimens | |
Samuel et al. | Laboratory maintenance of Coxiella burnetii | |
Robardet et al. | Comparative assay of fluorescent antibody test results among twelve European National Reference Laboratories using various anti-rabies conjugates | |
Yu et al. | Development and application of a colloidal gold test strip for detection of avian leukosis virus | |
CN111273017A (en) | Fluorescence immunochromatography kit for rapidly detecting novel coronavirus | |
Ferris et al. | Development and laboratory evaluation of two lateral flow devices for the detection of vesicular stomatitis virus in clinical samples | |
Oxford et al. | Immunofluorescent studies on the inhibition of influenza A and B viruses in mammalian cell cultures by amines and ammonium compounds | |
RU2614256C2 (en) | Method of detecting of cell culture contamination with viruses by immunoperoxidase method | |
RU2648773C2 (en) | Method of express diagnostics of nodular dermatitis in cattle | |
Carmina et al. | Indirect Immunoperoxidase Test (IPT) for Detection of Antibodies Against African Swine Fever Virus (ASFV) on African Green Monkey Cell Lines (Vero, MS) | |
Sivajothi et al. | Detection of antibodies against Trypanosoma evansi in sheep by indirect ELISA in Rayalaseema region of Andhra Pradesh | |
WO2016196323A1 (en) | Serodiagnosis of melioidosis and glanders using polysaccharides | |
US20240011989A1 (en) | Method for identification of viruses and diagnostic kit using the same | |
Ibrahim et al. | Detection limits of live attenuated poultry viral vaccine testing method for detection of bacterial contamination | |
RU2202797C2 (en) | Kit for detecting antibodies to the agent of poultry respiratory mycoplasmosis | |
Al-Hajjar | Laboratory diagnosis of viral disease | |
RU2747420C1 (en) | Method of preparation of erythrocyte immunoglobulin tularemia diagnosticum | |
Estein et al. | Direct fluorescent antibody test and bacteriological culture for detection of Brucella suis in swine tissues | |
Yapkic et al. | An investigation of equine infectious anaemia infection in the central Anatolia region of Turkey |
Legal Events
Date | Code | Title | Description |
---|---|---|---|
FZ9A | Application not withdrawn (correction of the notice of withdrawal) |
Effective date: 20160815 |
|
PD4A | Correction of name of patent owner |