RU2614256C2 - Method of detecting of cell culture contamination with viruses by immunoperoxidase method - Google Patents

Method of detecting of cell culture contamination with viruses by immunoperoxidase method Download PDF

Info

Publication number
RU2614256C2
RU2614256C2 RU2015112387A RU2015112387A RU2614256C2 RU 2614256 C2 RU2614256 C2 RU 2614256C2 RU 2015112387 A RU2015112387 A RU 2015112387A RU 2015112387 A RU2015112387 A RU 2015112387A RU 2614256 C2 RU2614256 C2 RU 2614256C2
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
cell culture
viruses
virus
washed
contamination
Prior art date
Application number
RU2015112387A
Other languages
Russian (ru)
Other versions
RU2015112387A (en
Inventor
Лидия Алексеевна Мникова
Константин Павлович Юров
Татьяна Александровна Ишкова
Original Assignee
Федеральное государственное бюджетное научное учреждение "Всероссийский научно-исследовательский институт экспериментальной ветеринарии имени Я.Р. Коваленко" (ФГБНУ ВИЭВ)
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Федеральное государственное бюджетное научное учреждение "Всероссийский научно-исследовательский институт экспериментальной ветеринарии имени Я.Р. Коваленко" (ФГБНУ ВИЭВ) filed Critical Федеральное государственное бюджетное научное учреждение "Всероссийский научно-исследовательский институт экспериментальной ветеринарии имени Я.Р. Коваленко" (ФГБНУ ВИЭВ)
Priority to RU2015112387A priority Critical patent/RU2614256C2/en
Publication of RU2015112387A publication Critical patent/RU2015112387A/en
Application granted granted Critical
Publication of RU2614256C2 publication Critical patent/RU2614256C2/en

Links

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N1/00Microorganisms, e.g. protozoa; Compositions thereof; Processes of propagating, maintaining or preserving microorganisms or compositions thereof; Processes of preparing or isolating a composition containing a microorganism; Culture media therefor
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N7/00Viruses; Bacteriophages; Compositions thereof; Preparation or purification thereof

Landscapes

  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • Virology (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Immunology (AREA)
  • Tropical Medicine & Parasitology (AREA)
  • Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)

Abstract

FIELD: biochemistry.
SUBSTANCE: invention relates to biochemistry. Method of detecting contamination with viruses of cell culture by immunoperoxidase method is described, involving reaction of antigen with labelled antibodies in clean cell culture and accounting of reaction results by color density of formed complex under microscope. Wherein reaction uses tablets with analyzed cell culture, contaminated with diarrhoea virus, and after adding into tablet wells of 0.10–0.12 ml of specific homologous serum diluted by 1:64 – 1:128 it is incubated, washed, then 0.10–0.12 ml of anti-specific immunoenzymometric conjugate is introduced, consisting of peroxidase marked antibodies against globulins of cattle blood serum, it is incubated, washed, substrate mixture is introduced consisting of 5-aminosalicylic acid and hydrogen peroxide, and 30–40 minutes later results are accounted under light microscope by formation of brown color in virus-containing cells. Invention improves control system of cell lines latent contamination with viruses used in laboratory practice and biological industry.
EFFECT: invention allows to prevent biological contamination and is extremely important stage in production of vaccines and diagnostic preparations; this method can be used for certification at absence of viruses in again coming cell cultures; invention is practically feasible, cheap method of monitoring of cell cultures for content of virus and may be recommended for extensive use both in scientific research and practical virological laboratories, and in production in making diagnostic preparations and vaccines.
1 cl, 2 ex

Description

Предлагаемое изобретение относится к области ветеринарной вирусологии, в частности к ветеринарной биотехнологии, а именно к обнаружению артефактов (вирусов) в культуре клеток «непрямым» иммунопероксидазным методом.The present invention relates to the field of veterinary virology, in particular to veterinary biotechnology, namely the detection of artifacts (viruses) in cell culture by the “indirect” immunoperoxidase method.

Контаминация культур клеток вирусами представляет проблему как для научных исследований в вирусологии и биотехнологии, так и при производстве различных биопрепаратов (диагностикумов и вакцин).The contamination of cell cultures with viruses is a problem both for scientific research in virology and biotechnology, and for the production of various biological products (diagnosticums and vaccines).

Источником заражения культур клеток могут быть среды, реактивы, сыворотки, персонал лаборатории и др. Диагностикумы, изготовленные из контаминированного сырья, могут давать ложные результаты исследования. В лабораторной практике известны случаи контаминации перевиваемых культур клеток вирусом диареи нецитопатогенного биотипа.The source of infection of cell cultures can be media, reagents, serum, laboratory personnel, etc. Diagnostics made from contaminated raw materials can give false research results. In laboratory practice, cases of contamination of transplanted cell cultures by the diarrhea virus of non-cytopathogenic biotype are known.

Известен способ выявления контаминации культур клеток вирусом диареи крупного рогатого скота в полимеразноцепной реакции (ПЦР) (1).A known method for detecting contamination of cell cultures by the virus of cattle diarrhea in the polymerase chain reaction (PCR) (1).

Известен также способ выявления контаминации культуры клеток вирусом диареи в реакции иммунофлуоресценции, для чего монослой клеток промывают фосфатно-буферным раствором pH 7,2 и фиксируют ацетоном. Клетки инкубируют с иммуноглобулинами мышей против ВД-БС, мечеными ФИТЦ, взятыми в рабочем разведении в течение 45 мин при 37°C. После этого клетки отмывают фосфатно-буферным раствором 3-4 раза, после чего исследуют под люминесцентным микроскопом. О наличии вируса ВД-БС судят по желто-зеленой флуоресценции в клетках (2).There is also a method of detecting contamination of a cell culture by the diarrhea virus in an immunofluorescence reaction, for which a cell monolayer is washed with a phosphate-buffered solution of pH 7.2 and fixed with acetone. Cells are incubated with immunoglobulins of mice against VD-BS labeled with FITC taken in working dilution for 45 min at 37 ° C. After that, the cells are washed with phosphate-buffered saline 3-4 times, after which they are examined under a luminescent microscope. VD-BS virus is judged by yellow-green fluorescence in cells (2).

В задачу исследований входило - разработать специфический, чувствительный, не требующий специального оборудования способ обнаружения контаминации культур клеток вирусом диареи крупного рогатого скота.The research objective was to develop a specific, sensitive, equipment-free method for detecting contamination of cell cultures by the cattle diarrhea virus.

Сущность предложенного способа состоит в следующем.The essence of the proposed method is as follows.

Лунки планшета с выросшим монослоем культуры клеток 3-4 раза отмывают фосфатно-буферным раствором (pH 7,2-7,4), фиксируют ацетоном, отмывают буфером, наносят на монослой специфическую сыворотку в рабочем разведении 1:64 - 1:128 в объеме 0,10-0,12 мл, инкубируют 1,5-2 ч при температуре 36-37°C, отмывают, наносят 0,10-0,12 мл антивидового иммуноферментного коньюгата, состоящего из меченных пероксидазой хрена антител к иммуноглобулинам специфической сыворотки крови крупного рогатого скота, инкубируют при тех же условиях, отмывают и после добавления субстратной смеси 0,10-0,12 мл проводят учет результатов реакции через 30-40 минут на наличие вируса под световым микроскопом. Способ можно также проводить на предметных стеклах.Wells of a plate with a grown monolayer of cell culture are washed 3-4 times with phosphate-buffered saline (pH 7.2-7.4), fixed with acetone, washed with buffer, specific serum is applied to the monolayer in a working dilution of 1:64 - 1: 128 in volume 0.10-0.12 ml, incubated 1.5-2 hours at a temperature of 36-37 ° C, washed, applied, 0.10-0.12 ml of anti-enzyme immunoassay conjugate consisting of horseradish peroxidase-labeled antibodies to immunoglobulins of specific blood serum cattle, incubated under the same conditions, washed and after adding substrate see B 0.10-0.12 ml carried out keeping the reaction results after 30-40 minutes for the virus under a light microscope. The method can also be carried out on slides.

Пример 1Example 1

На первом этапе реакции лунки планшета отмывали от ростовой среды фосфатным буфером pH 7,2, фиксировали ацетоном. Затем на монослой клеток наносили автоматической пипеткой по 0,1 мл гипериммунную сыворотку к вирусу диареи в титре 1:64, инкубировали в термостате 1,5 ч при 36°C, затем отмывали от несвязавшихся антител и вносили 0,10-0,12 мл антивидовой иммуноферментный коньюгат, состоящий из антивидовых иммуноглобулинов, меченных пероксидазой хрена. Планшет инкубировали в термостате при 36°C - 1,5 ч и вновь отмывали фосфатно-буферным раствором. Затем наносили по 0,1 мл субстратной смеси, состоящей из раствора 5-аминосалилициловой кислоты и перекиси водорода. Планшет просматривали под световым микроскопом. Результат учитывали через 30 мин по появлению в цитоплазме клеток образовавшегося реакционного продукта от коричневого до светло-коричневого цвета.At the first stage of the reaction, the wells of the plate were washed from the growth medium with phosphate buffer pH 7.2, and fixed with acetone. Then, a 0.1 ml hyperimmune serum to a diarrhea virus in titer 1:64 was applied to the cell monolayer with an automatic pipette, incubated in an incubator for 1.5 hours at 36 ° C, then washed from unbound antibodies and introduced 0.10-0.12 ml anti-enzyme immunoassay conjugate consisting of anti-species immunoglobulins labeled with horseradish peroxidase. The plate was incubated in a thermostat at 36 ° C for 1.5 h and again washed with phosphate-buffered saline. Then, 0.1 ml of a substrate mixture was applied, consisting of a solution of 5-aminosalilicylic acid and hydrogen peroxide. The tablet was viewed under a light microscope. The result was taken into account after 30 min from the appearance of brown to light brown color in the cell cytoplasm of the resulting reaction product.

В качестве контроля вместо гипериммунной сыворотки применяли отрицательную сыворотку.As a control, negative serum was used instead of hyperimmune serum.

Для контроля реакции при том же режиме обрабатывали культуру клеток неконтаминированную вирусом диареи.To control the reaction under the same mode, a non-contaminated diarrhea virus cell culture was treated.

Проведено 7 опытов по разработке способа выявления контаминации культуры клеток вирусом диареи крупного рогатого скота иммунопероксидазным методом с положительным результатом.7 experiments were conducted on the development of a method for detecting contamination of cell culture by cattle diarrhea virus by immunoperoxidase method with a positive result.

В контрольных препаратах окрашивание отсутствовало.In control preparations, staining was absent.

Пример 2Example 2

Реакцию проводили аналогично примеру 1.The reaction was carried out analogously to example 1.

На первом этапе реакции лунки планшета отмывали от ростовой среды фосфатным буфером pH 7,2, фиксировали ацетоном. Затем на монослой клеток наносили автоматической пипеткой по 0,1 мл гипериммунную сыворотку к вирусу диареи в титре 1:128, инкубировали в термостате 2 ч при 37°C, затем отмывали от несвязавшихся антител и вносили антивидовой иммуноферментный коньюгат, состоящий из антивидовых иммуноглобулинов, меченных пероксидазой хрена. Планшет инкубировали в термостате при 37°C 2 ч и вновь отмывали фосфатно-буферным раствором. Затем наносили по 0,1 мл субстратной смеси, состоящей из раствора 5-аминосалициловой кислоты и перекиси водорода. Планшет просматривали под световым микроскопом. Результат учитывали через 40 мин по появлению в цитоплазме клеток образовавшегося реакционного продукта от коричневого до светло-коричневого цвета. Контроль аналогичен примеру 1.At the first stage of the reaction, the wells of the plate were washed from the growth medium with phosphate buffer pH 7.2, and fixed with acetone. Then, 0.1 ml hyperimmune serum to the diarrhea virus in titer 1: 128 was applied to the cell monolayer with an automatic pipette, incubated in a thermostat for 2 h at 37 ° C, then washed from unbound antibodies and an anti-type immunosorbent conjugate consisting of anti-type immunoglobulins labeled horseradish peroxidase. The plate was incubated in a thermostat at 37 ° C for 2 h and again washed with phosphate-buffered saline. Then, 0.1 ml of a substrate mixture consisting of a solution of 5-aminosalicylic acid and hydrogen peroxide was applied. The tablet was viewed under a light microscope. The result was taken into account after 40 min from the appearance of brown to light brown color in the cell cytoplasm of the resulting reaction product. The control is similar to example 1.

Проведено 5 опытов по выявлению контаминации культуры клеток вирусом диареи крупного рогатого скота иммунопероксидазным методом с положительным результатом.5 experiments were carried out to identify the contamination of cell culture with cattle diarrhea virus by immunoperoxidase method with a positive result.

В контрольных препаратах окрашивание отсутствовало.In control preparations, staining was absent.

Предложенный способ чувствителен и специфичен, в лабораторных условиях выявляет нецитопатогенные штаммы вируса диареи. Прост в исполнении, не трудоемок, не требует специального оборудования.The proposed method is sensitive and specific, in laboratory conditions reveals non-cytopathogenic strains of the diarrhea virus. It is simple in execution, not laborious, does not require special equipment.

Предложенный способ, используя набор специфических сывороток к различным возбудителям, позволяет значительно сократить время на выявление контаминации культуры клеток.The proposed method, using a set of specific sera for various pathogens, can significantly reduce the time to detect contamination of cell culture.

Совершенствование системы контроля, направленного на предотвращение биологического загрязнения, является чрезвычайно важным этапом в производстве биологических препаратов (вакцин, диагностикумов и др.).Improving the control system aimed at preventing biological pollution is an extremely important stage in the production of biological preparations (vaccines, diagnostic kits, etc.).

Предложенный способ выявления контаминации культур клеток вирусом диареи крупного рогатого скота иммунопероксидазным методом испытан с положительным результатом в 2014 году в лаборатории вирусологии ФГБНУ ВИЭВ им. Я.Р. Коваленко.The proposed method for detecting the contamination of cell cultures with cattle diarrhea virus by immunoperoxidase method was tested with a positive result in 2014 in the Virology Laboratory of FSBIU VIEV named after Ya.R. Kovalenko.

В связи с вышеизложенным проблема совершенствования системы контроля скрытой контаминации вирусами клеточных линий, используемых в лабораторной практике и биологической промышленности, направлена на предотвращение биологического загрязнения и является чрезвычайно важным этапом в производстве вакцин и диагностикумов. Этот способ может быть использован в целях сертификации на отсутствие вирусов во вновь поступающих культурах клеток.In connection with the foregoing, the problem of improving the control system for covert virus contamination of cell lines used in laboratory practice and the biological industry is aimed at preventing biological contamination and is an extremely important stage in the production of vaccines and diagnostics. This method can be used for certification for the absence of viruses in newly introduced cell cultures.

Способ практически легко осуществим для контроля клеточных культур на содержание в них вирусов и рекомендуется для широкого использования как в научно-исследовательских и практических вирусологических лабораториях, так и в производстве при изготовлении диагностикумов и вакцин.The method is almost easily feasible for monitoring cell cultures for the content of viruses in them and is recommended for widespread use both in research and practical virological laboratories, and in production in the manufacture of diagnosticums and vaccines.

Источники информацииInformation sources

1. Информационный бюллетень, «Клеточные культуры». М.: ВИЭВ, 2011, вып. 27, стр. 80-88.1. Newsletter, “Cell Culture”. M .: VIEV, 2011, no. 27, pp. 80-88.

2. Российский ветеринарный журнал. «Сельскохозяйственные животные», М.: 2013, 1, стр. 15-18.2. Russian Veterinary Journal. "Farm animals", Moscow: 2013, 1, p. 15-18.

Claims (1)

Способ выявления контаминации вирусами культуры клеток иммунопероксидазным методом, включающий взаимодействие антигена с мечеными антителами в неинфицированной культуре клеток и учет результатов реакции по интенсивности окрашивания образовавшегося комплекса под микроскопом, при этом в реакции используют планшеты с анализируемой культурой клеток, контаминированной вирусом диареи, и после внесения в лунки планшета специфической гомологичной сыворотки по 0,10-0,12 мл в разведении 1:64 - 1:128 инкубируют, отмывают, далее вносят по 0,10-0,12 мл антивидовой иммуноферментный коньюгат, состоящий из меченных пероксидазой хрена антител против глобулинов сыворотки крови крупного рогатого скота, инкубируют, отмывают, вносят субстратную смесь, состоящую из 5-аминосалициловой кислоты и перекиси водорода, и через 30-40 минут проводят учет результатов под световым микроскопом по образованию коричневого окрашивания в вируссодержащих клетках.A method for detecting viral contamination of cell culture by the immunoperoxidase method, including the interaction of antigen with labeled antibodies in an uninfected cell culture and taking into account the results of the reaction by the intensity of staining of the resulting complex under a microscope, using plates with the analyzed cell culture contaminated with diarrhea virus in the reaction and after wells of a specific homologous serum tablet of 0.10-0.12 ml at a dilution of 1:64 - 1: 128 are incubated, washed, then 0.10-0.12 ml of anti a specific enzyme immunoassay conjugate consisting of horseradish peroxidase-labeled antibodies against bovine serum globulins is incubated, washed, a substrate mixture consisting of 5-aminosalicylic acid and hydrogen peroxide is introduced, and after 30-40 minutes the results are counted under a light microscope to form brown staining in virus-containing cells.
RU2015112387A 2015-04-07 2015-04-07 Method of detecting of cell culture contamination with viruses by immunoperoxidase method RU2614256C2 (en)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2015112387A RU2614256C2 (en) 2015-04-07 2015-04-07 Method of detecting of cell culture contamination with viruses by immunoperoxidase method

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2015112387A RU2614256C2 (en) 2015-04-07 2015-04-07 Method of detecting of cell culture contamination with viruses by immunoperoxidase method

Publications (2)

Publication Number Publication Date
RU2015112387A RU2015112387A (en) 2016-10-27
RU2614256C2 true RU2614256C2 (en) 2017-03-24

Family

ID=57216093

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
RU2015112387A RU2614256C2 (en) 2015-04-07 2015-04-07 Method of detecting of cell culture contamination with viruses by immunoperoxidase method

Country Status (1)

Country Link
RU (1) RU2614256C2 (en)

Citations (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO2000011149A1 (en) * 1998-08-24 2000-03-02 Uab Research Foundation Methods of producing high titer recombinant adeno-associated virus
RU2012139912A (en) * 2012-09-18 2014-03-27 Общество с ограниченной ответственностью "Биоликвид Про" METHOD FOR DETERMINING CONTAMINATION OR DAMAGE TO FOOD, SOIL, BIOLOGICAL MATERIALS AND BUILDING CONSTRUCTIONS BY MOLD MUSHROOMS

Patent Citations (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO2000011149A1 (en) * 1998-08-24 2000-03-02 Uab Research Foundation Methods of producing high titer recombinant adeno-associated virus
RU2012139912A (en) * 2012-09-18 2014-03-27 Общество с ограниченной ответственностью "Биоликвид Про" METHOD FOR DETERMINING CONTAMINATION OR DAMAGE TO FOOD, SOIL, BIOLOGICAL MATERIALS AND BUILDING CONSTRUCTIONS BY MOLD MUSHROOMS

Also Published As

Publication number Publication date
RU2015112387A (en) 2016-10-27

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Payne Methods to study viruses
Hu et al. Impact of heat-inactivation on the detection of SARS-CoV-2 IgM and IgG antibody by ELISA
CN105829892B (en) The improved diagnostic test of CSFV antibody
CN110218668B (en) Inert carrier salmonella and potential application thereof
Zhou et al. The impact of sample processing on the rapid antigen detection test for SARS-CoV-2: virus inactivation, VTM selection, and sample preservation
Mak et al. Development of an automated, high-throughput bactericidal assay that measures cellular respiration as a survival readout for Neisseria meningitidis
Ekrami et al. Validity of bioconjugated silica nanoparticles in comparison with direct smear, culture, and polymerase chain reaction for detection of Mycobacterium tuberculosis in sputum specimens
Samuel et al. Laboratory maintenance of Coxiella burnetii
Robardet et al. Comparative assay of fluorescent antibody test results among twelve European National Reference Laboratories using various anti-rabies conjugates
Yu et al. Development and application of a colloidal gold test strip for detection of avian leukosis virus
CN111273017A (en) Fluorescence immunochromatography kit for rapidly detecting novel coronavirus
Ferris et al. Development and laboratory evaluation of two lateral flow devices for the detection of vesicular stomatitis virus in clinical samples
Oxford et al. Immunofluorescent studies on the inhibition of influenza A and B viruses in mammalian cell cultures by amines and ammonium compounds
RU2614256C2 (en) Method of detecting of cell culture contamination with viruses by immunoperoxidase method
RU2648773C2 (en) Method of express diagnostics of nodular dermatitis in cattle
Carmina et al. Indirect Immunoperoxidase Test (IPT) for Detection of Antibodies Against African Swine Fever Virus (ASFV) on African Green Monkey Cell Lines (Vero, MS)
Sivajothi et al. Detection of antibodies against Trypanosoma evansi in sheep by indirect ELISA in Rayalaseema region of Andhra Pradesh
WO2016196323A1 (en) Serodiagnosis of melioidosis and glanders using polysaccharides
US20240011989A1 (en) Method for identification of viruses and diagnostic kit using the same
Ibrahim et al. Detection limits of live attenuated poultry viral vaccine testing method for detection of bacterial contamination
RU2202797C2 (en) Kit for detecting antibodies to the agent of poultry respiratory mycoplasmosis
Al-Hajjar Laboratory diagnosis of viral disease
RU2747420C1 (en) Method of preparation of erythrocyte immunoglobulin tularemia diagnosticum
Estein et al. Direct fluorescent antibody test and bacteriological culture for detection of Brucella suis in swine tissues
Yapkic et al. An investigation of equine infectious anaemia infection in the central Anatolia region of Turkey

Legal Events

Date Code Title Description
FZ9A Application not withdrawn (correction of the notice of withdrawal)

Effective date: 20160815

PD4A Correction of name of patent owner