RU2608638C2 - Method of producing planting material of bobovnik anagyroid - Google Patents

Method of producing planting material of bobovnik anagyroid Download PDF

Info

Publication number
RU2608638C2
RU2608638C2 RU2014149849A RU2014149849A RU2608638C2 RU 2608638 C2 RU2608638 C2 RU 2608638C2 RU 2014149849 A RU2014149849 A RU 2014149849A RU 2014149849 A RU2014149849 A RU 2014149849A RU 2608638 C2 RU2608638 C2 RU 2608638C2
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
seeds
bobovnik
weeks
bap
minutes
Prior art date
Application number
RU2014149849A
Other languages
Russian (ru)
Other versions
RU2014149849A (en
Inventor
Светлана Николаевна Тимофеева
Лев Александрович Эльконин
Валерий Степанович Тырнов
Original Assignee
Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования "Саратовский национальный исследовательский государственный университет имени Н.Г. Чернышевского" (СГУ)
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования "Саратовский национальный исследовательский государственный университет имени Н.Г. Чернышевского" (СГУ) filed Critical Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования "Саратовский национальный исследовательский государственный университет имени Н.Г. Чернышевского" (СГУ)
Priority to RU2014149849A priority Critical patent/RU2608638C2/en
Publication of RU2014149849A publication Critical patent/RU2014149849A/en
Application granted granted Critical
Publication of RU2608638C2 publication Critical patent/RU2608638C2/en

Links

Images

Classifications

    • AHUMAN NECESSITIES
    • A01AGRICULTURE; FORESTRY; ANIMAL HUSBANDRY; HUNTING; TRAPPING; FISHING
    • A01HNEW PLANTS OR NON-TRANSGENIC PROCESSES FOR OBTAINING THEM; PLANT REPRODUCTION BY TISSUE CULTURE TECHNIQUES
    • A01H4/00Plant reproduction by tissue culture techniques ; Tissue culture techniques therefor
    • A01H4/008Methods for regeneration to complete plants
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A01AGRICULTURE; FORESTRY; ANIMAL HUSBANDRY; HUNTING; TRAPPING; FISHING
    • A01HNEW PLANTS OR NON-TRANSGENIC PROCESSES FOR OBTAINING THEM; PLANT REPRODUCTION BY TISSUE CULTURE TECHNIQUES
    • A01H5/00Angiosperms, i.e. flowering plants, characterised by their plant parts; Angiosperms characterised otherwise than by their botanic taxonomy
    • A01H5/10Seeds

Landscapes

  • Pretreatment Of Seeds And Plants (AREA)
  • Breeding Of Plants And Reproduction By Means Of Culturing (AREA)

Abstract

FIELD: biotechnology.
SUBSTANCE: invention relates to biotechnology and reproductive biology. Invention represents a method of regeneration of plants of Bobovnik anagyroid in vitro, including preliminary processing of dry seeds, surface sterilization and cultivation in nutrient medium for sprouting, characterised by that as the preliminary treatment of seeds of Bobovnik anagyroid filled with hot water at a temperature of 90–100 °C and left for 20–30 minutes before the cooling water, surface sterilization is carried out, by placing seeds in 1 % aqueous solution of synthetic detergent for 15 minutes under continuous stirring conditions, and then washing with running water for 15–20 minutes, culturing is carried out for 3–4 weeks, then evolved seedings are planted in cups with soil substrate and placed into garden frame for 4–6 weeks for adaptation to non-sterile conditions, where nutrient medium comprises mineral salts and vitamins at MS, 20 g/l sucrose, 7 g/l agar, additionally contains 2.2 μM BAP, as feed medium selected medium WPM with addition of 2.2 μM BAP.
EFFECT: invention allows to reduce labor intensity and duration of the process of planting material, as well as simplify the process of planting material.
4 cl, 2 tbl, 2 dwg, 1 ex

Description

Изобретение относится к области биотехнологии и репродуктивной биологии растений, а именно для массового получения посадочного материала, и может быть использовано в биотехнологии, декоративном озеленении, интродукции, а также в целях сохранения генетических ресурсов и биологического разнообразия видов. Способ предназначен для регенерации растений семейства Бобовых, семенное размножение которых затруднено вследствие явления твердосемянности (состояния физического покоя). The invention relates to the field of biotechnology and reproductive biology of plants, namely for the mass production of planting material, and can be used in biotechnology, decorative gardening, introduction, as well as in order to preserve genetic resources and biological diversity of species. The method is intended for the regeneration of plants of the legume family, whose seed reproduction is difficult due to the phenomenon of hard seed (state of physical dormancy).

Известен способ регенерации растений для получения посадочного материала бобовника с помощью культуры in vitro (Timofeeva SN, Elkonin LA, Tyrnov VS Micropropagation of Laburnum anagyroides Medic. through axillary shoot regeneration // In Vitro Cell.Dev.Biol.—Plant, 2014, v.50 , pp. 561–567), заключающийся в активации роста и развития побегов из уже существующих меристем вегетативных почек, включающий в себя несколько последовательных этапов. Для инициации культуры in vitro поверхностно простерилизованные изолированные почки помещали на питательную среду, содержащую минеральные соли и витамины по прописи среды Мурасиге и Скуга (MS), сахарозу (20 г/л) и агар (7 г/л); с добавлением фитогармона 6-БАП (2.2 μМ). Через 2 недели культивирования активно растущие экспланты переносили на среду для пролиферации, отличающуюся от исходной среды сниженной до Ѕ концентрации минеральных солей по MS. Через 6-8 недель культивирования на этой среде из каждой почки развивался пучок из нескольких побегов длиной 3-7 мм. Побеги длиной ≥ 5 мм отделяли от пучка и субкультивировали на свежеприготовленной среде до получения нового пучка побегов. Такой цикл микроразмножения повторяли несколько раз с регулярными пересадками через каждые 6-8 недель. После получения достаточного количества экспериментального материала отбирали побеги длиной ≥ 10 мм, состоящие из 3-4 междоузлий, переносили на среду для укоренения, отличающуюся от среды для пролиферации сниженной концентрацией минеральных солей (¼ MS) и сахарозы (10 г/л). Для стимуляции ризогенеза в среду добавляли ауксин НУК (2.7 μМ). Полученные корнесобственные растения высаживали в стаканчики с почвенным субстратом и помещали в теплицу. Через 1-2 месяца, после адаптации к нестерильным условиям, растения высаживали в полевые условия.A known method of plant regeneration to obtain bean planting material using an in vitro culture (Timofeeva SN, Elkonin LA, Tyrnov VS Micropropagation of Laburnum anagyroides Medic. Through axillary shoot regeneration // In Vitro Cell.Dev. Biol. — Plant, 2014, v. 50, pp. 561–567), which consists in activating the growth and development of shoots from already existing meristems of the vegetative buds, which includes several successive stages. To initiate in vitro culture, surface-sterilized isolated kidneys were placed on a nutrient medium containing mineral salts and vitamins according to the prescription of the medium Murashige and Skoog (MS), sucrose (20 g / l) and agar (7 g / l); with the addition of phytoharmon 6-BAP (2.2 μM). After 2 weeks of cultivation, actively growing explants were transferred to proliferation medium, which differs from the initial medium by a concentration of mineral salts reduced to Ѕ by MS. After 6-8 weeks of cultivation on this medium, a bundle of several shoots 3-7 mm long developed from each bud from this kidney. Shoots ≥ 5 mm long were separated from the bunch and subcultured on freshly prepared medium until a new shoot bundle was obtained. This micropropagation cycle was repeated several times with regular transplants every 6-8 weeks. After obtaining a sufficient amount of experimental material, shoots ≥ 10 mm long, consisting of 3-4 internodes, were selected, transferred to a rooting medium, which differs from the medium for proliferation by a reduced concentration of mineral salts (¼ MS) and sucrose (10 g / l). To stimulate rhizogenesis, auxin of NAA (2.7 μM) was added to the medium. The obtained root plants were planted in glasses with soil substrate and placed in a greenhouse. After 1-2 months, after adaptation to non-sterile conditions, the plants were planted in the field.

Однако недостатком данного способа является то, что на успешность получения культур in vitro влияет сезон эксплантирования. Кроме того, хотя частота инициации достигала 70-75%, в процессе дальнейшего культивирования не все инициированные экспланты продуцировали интенсивно растущие культуры с высоким регенерационным потенциалом. Ограничивает применение данного способа также длительность процесса получения стабильно пролиферирующих культур (около 6 месяцев) и невысокий коэффициент размножения (каждый эксплант продуцировал не более 1-2 побегов длиной ≥ 10 мм, пригодных для последующего укоренения). Кроме того, при длительном культивировании скорость размножения уменьшалась, появлялись морфологически измененные побеги, усиливался каллусогенез.However, the disadvantage of this method is that the success of in vitro culture is influenced by the explantation season. In addition, although the initiation frequency reached 70-75%, in the course of further cultivation, not all initiated explants produced intensively growing cultures with high regeneration potential. The application of this method also limits the duration of the process of obtaining stably proliferating cultures (about 6 months) and a low reproduction rate (each explant produced no more than 1-2 shoots with a length of ≥ 10 mm suitable for subsequent rooting). In addition, during long-term cultivation, the reproduction rate decreased, morphologically altered shoots appeared, and callusogenesis intensified.

Известен также способ получения сеянцев Бобовника ангировидного путем обработки семян концентрированной серной кислотой H2SO4 в течение 0,5-1 часов. There is also a method of producing seedlings of Bobovnik angovidnogo by treating seeds with concentrated sulfuric acid H 2 SO 4 for 0.5-1 hours.

Однако работы с серной кислотой требует осторожности, так как она небезопасна для исполнителя работ.However, working with sulfuric acid requires caution, since it is unsafe for the contractor.

Наиболее близким к предлагаемому изобретению является способ регенерации древесного растения из сем. Бобовые Albizia odoratissima в культуре in vitro (Rajeswari V., Paliwal K. In vitro adventitious shoot organogenesis and plant regeneration from seedling explants of Albizia odoratissima L.f. (Benth.)// In Vitro Cell. Dev. Biol. Plant, 2008, v.44, pp. 78-83), в соответствии с которым семена альбиции предварительно выдерживали 15 мин в 1N H2SO4, после чего поверхностно стерилизовали и помещали на среду для проращивания, содержавшую Ѕ минеральных солей по MS, сахарозу (30 г/л) и агар (8 г/л), без добавления фитогормонов. Из развившихся сеянцев выделяли эпикотили, которые культивировали на среде MS с добавлением БАП (5-10 μМ) для индукции органогенного каллуса и последующего развития побегов. Полученные побеги индивидуально переносили на среду MS с добавлением НУК (25 μМ), где их выдерживали 24 часа для стимуляции ризогенеза. После этого побеги культивировали на среде того же состава, но без НУК. Полученные корнесобственные растения были акклиматизированы в стерильном вермикулите, после чего высажены в почву.Closest to the proposed invention is a method of regeneration of a woody plant from this. Legumes of Albizia odoratissima in vitro culture (Rajeswari V., Paliwal K. In vitro adventitious shoot organogenesis and plant regeneration from seedling explants of Albizia odoratissima Lf (Benth.) // In Vitro Cell. Dev. Biol. Plant, 2008, v. 44, pp. 78-83), according to which the albia seeds were preliminarily incubated for 15 min in 1N H 2 SO 4 , after which they were surface sterilized and placed on a germination medium containing Ѕ mineral salts by MS, sucrose (30 g / l ) and agar (8 g / l), without the addition of phytohormones. Epicotyls were isolated from the developed seedlings, which were cultured on MS medium with the addition of BAP (5-10 μM) for the induction of organogenic callus and the subsequent development of shoots. The resulting shoots were individually transferred to MS medium with the addition of NAA (25 μM), where they were kept for 24 hours to stimulate rhizogenesis. After this, the shoots were cultivated on the medium of the same composition, but without NAA. The resulting root plants were acclimatized in sterile vermiculite, and then planted in the soil.

Недостатками данного способа являются многоэтапность получения корнесобственных растений, что требует большого количества реактивов и увеличивает продолжительность процесса получения растений-регенерантов. В указанном способе присутствует этап каллусообразования, который повышает вероятность самоклональной изменчивости в полученном потомстве. Кроме того, работа с 1N H2SO4 требует осторожности, так как она небезопасна для исполнителя работ.The disadvantages of this method are the multi-stage production of root plants, which requires a large number of reagents and increases the duration of the process of obtaining regenerated plants. In this method, there is a stage of callus formation, which increases the likelihood of autoclonal variability in the resulting offspring. In addition, working with 1N H 2 SO 4 requires caution, as it is unsafe for the contractor.

Задача настоящего изобретения является разработка способа получения корнесобственных растений (саженцев/посадочного материала) Бобовника анагировидного.The objective of the present invention is to develop a method for producing root plants (seedlings / planting material) Anovirus bobovnik.

Технический результат заключается в упрощении, сокращении трудоемкости и длительности процесса получения посадочного материала. The technical result consists in simplifying, reducing the complexity and duration of the process of obtaining planting material.

Поставленная задача достигается тем, что в способе регенерации растений семейства Бобовых в культуре in vitro, включающем предварительную обработку сухих семян, поверхностную стерилизацию и культивирование на питательной среде для проращивания, согласно решению, в качестве растения выбирают Бобовник анагировидный, предварительную обработку осуществляют горячей водой при температуре от 90-100°C, культивирование осуществляют в течение 3-4 недель, после чего развившиеся проростки высаживают в стаканчики с почвенным субстратом и помещают в микропарник для адаптации к нестерильным условиям.This object is achieved by the fact that in the method of regeneration of plants of the legume family in an in vitro culture, including pre-treatment of dry seeds, surface sterilization and cultivation in a nutrient medium for germination, according to the solution, an anovirus-like Bobovnik is selected, the preliminary treatment is carried out with hot water at a temperature from 90-100 ° C, cultivation is carried out for 3-4 weeks, after which the developed seedlings are planted in glasses with soil substrate and placed in kroparnik for adaptation to non-sterile conditions.

Питательная среда может содержать минеральные соли и витамины по MS, 20 г/л сахарозы, 7 г/л агара, и дополнительно 2.2 μМ БАП. В качестве питательной среды может быть выбрана среда WPM с добавлением 2.2 μМ БАП.The culture medium may contain mineral salts and vitamins according to MS, 20 g / l sucrose, 7 g / l agar, and an additional 2.2 μM BAP. As a nutrient medium, WPM can be selected with the addition of 2.2 μM BAP.

В микропарнике постепенно снижают влажность, после появления новых листочков (через 4-6 недель) сеянцы пригодны для пересадки и выращивания в полевых условиях. Новизна предлагаемого решения заключается в том, что семена обрабатывают горячей водой, а не H2SO4 для получения проростков, исключается многоэтапность, присущая прототипу, длительность получения сеянцев снижается до 7-10 недель.In a micro-greenhouse, moisture is gradually reduced, after the appearance of new leaves (after 4-6 weeks), the seedlings are suitable for transplantation and cultivation in the field. The novelty of the proposed solution is that the seeds are treated with hot water, and not H 2 SO 4 to obtain seedlings, the multi-stage inherent in the prototype is excluded, the duration of seedlings is reduced to 7-10 weeks.

Предлагаемое изобретение поясняется чертежами: на Фиг.1 – представлены проростки Бобовника, развившиеся при культивировании в условиях in vitro; на Фиг.2 – адаптированные к нестерильным условиям сеянцы бобовника,The invention is illustrated by drawings: figure 1 - presents Bobovnik seedlings that developed during cultivation in vitro; figure 2 - adapted to non-sterile conditions bean seedlings,

где: 1 – проростки Бобовника, развившиеся через 3 недели культивирования на среде MS с добавлением 2.2 µМ БАП (слева – предобработка сухих семян кипятком, справа – контроль, без предобработки); where: 1 - Bobovnik seedlings, developed after 3 weeks of cultivation on MS medium with the addition of 2.2 µM BAP (on the left - pre-treatment of dry seeds with boiling water, on the right - control, without pre-treatment);

2 – адаптированные к нестерильным условиям сеянцы Бобовника,2 - Bobovnik seedlings adapted to non-sterile conditions,

слева – через 2 недели после высадки в почву, справа – через 2 месяца после высадки в почву и выращивания в теплице.on the left - 2 weeks after planting in the soil, on the right - 2 months after planting in the soil and growing in a greenhouse.

Способ получения сеянцев (посадочного материала) бобовника анагировидного заключается в следующем: The method of obtaining seedlings (planting material) anovirus-shaped beanbill is as follows:

Сухие семена бобовника помещают в мерный стакан (200 мл), заливают кипящей водой (100 мл) и оставляют на 20-30 мин до остывания воды. После этого семена раскладывают в марлевые мешочки по 30 штук, помещают в 1% раствор СМС (синтетическое моющее средство, например «Биолан»), где выдерживают 15 мин при постоянном помешивании, после чего промывают от следов СМС проточной водой (15-20 мин). Поверхностную стерилизацию проводят по общепринятой методике: мешочки с растительным материалом погружают на 1 мин в 70%-ный спирт, затем помещают на 15 мин в 0.1%-ный раствор сулемы, после чего трижды промывают стерильной автоклавированной водой. В стерильных условиях ламинара простерилизованные семена помещают на поверхность питательной среды для проращивания, содержавшей минеральные соли и витамины по MS, сахарозу (20 г/л) и агар (7 г/л), с добавлением БАП (2.2 µМ) и выращивают на свету (фотопериод 16 час / 8 час). Через 3-4 недели культивирования, после появления первого настоящего листа, развившиеся проростки высаживают в стаканчики с почвенным субстратом и помещают в микропарник для адаптации к нестерильным условиям. Через 4-6 недель сеянцы пригодны для пересадки в грунт и выращивания в полевых условиях.Dry bean seeds are placed in a measuring cup (200 ml), filled with boiling water (100 ml) and left for 20-30 minutes until the water cools. After that, the seeds are laid out in gauze bags of 30 pieces, placed in a 1% SMS solution (synthetic detergent, such as Biolan), where they are kept for 15 minutes with constant stirring, and then washed from traces of SMS with running water (15-20 minutes) . Surface sterilization is carried out according to the generally accepted method: bags with plant material are immersed for 1 min in 70% alcohol, then placed for 15 min in a 0.1% mercuric chloride solution, and then washed three times with sterile autoclaved water. Under sterile conditions of laminar, sterilized seeds are placed on the surface of a germination medium containing mineral salts and vitamins according to MS, sucrose (20 g / l) and agar (7 g / l), with the addition of BAP (2.2 μM) and grown in the light ( photoperiod 16 hours / 8 hours). After 3-4 weeks of cultivation, after the appearance of the first true leaf, the developed seedlings are planted in glasses with soil substrate and placed in a microparison to adapt to non-sterile conditions. After 4-6 weeks, the seedlings are suitable for transplanting into the soil and growing in the field.

Пример практической реализации способа получения сеянцев Бобовника анагировидного.An example of a practical implementation of the method of obtaining seedlings Bobovnik anagirovidny.

Для осуществления предлагаемого способа в качестве донорного растения использовали экземпляр Laburnum anagyroides, выращиваемый в полевых условиях дендрария Ботсада СГУ (г. Саратов). В работе использовали семена, собранные в сентябре 2010 и 2011 гг.For the implementation of the proposed method as a donor plant used an instance of Laburnum anagyroides, grown in the field of the arboretum of the Botanical Garden of SSU (Saratov). The seeds used were collected in September 2010 and 2011.

Преодоление физического покоя семян при проращивании. Семена бобовника на последних фазах созревания и во время хранения постепенно теряют как собственную влагу, так и способность поглощать водяные пары из воздуха. В результате формируется полная водонепроницаемость семенной кожуры, так называемая «твердосемянность» (или состояние физического покоя), значительно осложняющая прорастание семян. Из литературы известны различные методы преодоления физического покоя семян: скарификация, намачивание семян в кипятке, обработка концентрированной H2SO4 или промораживание. Современные методы стимуляции прорастания покоящихся семян - обработка семян физиологически активными веществами или проращивание на питательных средах в стерильных условиях (Николаева М.Г., Разумова М.В., Гладкова В.Н. Справочник по проращиванию покоящихся семян// Ленинград: изд-во «НАУКА», 1985 – 245 с.).Overcoming physical dormancy of seeds during germination. Bean seeds in the last phases of ripening and during storage gradually lose both their own moisture and the ability to absorb water vapor from the air. As a result, the complete waterproofness of the seed peel is formed, the so-called “hard seed” (or state of physical dormancy), which significantly complicates the germination of seeds. Various methods for overcoming the physical rest of seeds are known from the literature: scarification, soaking seeds in boiling water, treatment with concentrated H 2 SO 4, or freezing. Modern methods of stimulating the germination of dormant seeds - treatment of seeds with physiologically active substances or germination on nutrient media under sterile conditions (Nikolaeva M.G., Razumova M.V., Gladkova V.N. Directory of germination of dormant seeds // Leningrad: publishing house "SCIENCE", 1985 - 245 p.).

Были исследованы три варианта температурной предобработки семян: Three variants of temperature seed pretreatment were investigated:

• Промораживание, когда сухие семена помещали в морозильную камеру при температуре -18°С на 1 месяц, после чего их вводили в стерильную культуру;• Freezing when dry seeds were placed in a freezer at a temperature of -18 ° C for 1 month, after which they were introduced into a sterile culture;

• Обработка горящей водой, преимущественно кипятком; введение в стерильную культуру.• Treatment with burning water, mainly boiling water; introduction to sterile culture.

• Промороженные семена обрабатывали горячей водой и введение в стерильную культуру. Полученные экспериментальные результаты отражены в Таблице 1. • Frozen seeds were treated with hot water and introduced into a sterile culture. The obtained experimental results are shown in Table 1.

После выявления факторов, влияющих на преодоление «твердосемянности» были сравнительно изучены условия проращивания семян in vivo (почвенный субстрат) и in vitro (среда MS + 0.5 мг/л 6-БАП). Полученные экспериментальные результаты отражены в Таблице 2.After identifying the factors influencing the overcoming of “hard seed”, the conditions of seed germination in vivo (soil substrate) and in vitro (MS medium + 0.5 mg / L 6-BAP) were comparatively studied. The obtained experimental results are shown in Table 2.

Таблица 1. Влияние температурной предобработки семян на их приживаемость в стерильной культуре (%) через 4 недели первичного культивирования на средах различного составаTable 1. The effect of temperature pre-treatment of seeds on their survival in a sterile culture (%) after 4 weeks of primary cultivation on media of various compositions

Figure 00000001
Figure 00000001

Примечание: изучено 3 повторности по 15-20 штук;* р ≤ 0.05; ns – нет достоверной разницы; варианты, сопровождаемые одинаковыми латинскими буквами, различаются незначимо по критерию Дункана.Note: 3 replicates of 15-20 pieces were studied; * p ≤ 0.05; ns - no significant difference; variants accompanied by identical Latin letters differ insignificantly according to the Duncan criterion.

Таблица 2. Влияние предобработки и условий проращивания семян на число проростков Бобовника анагировидного (%) через 1 месяц выращиванияTable 2. The effect of pre-treatment and seed germination conditions on the number of anovirus-shaped Bobovnik seedlings (%) after 1 month of cultivation

Figure 00000002
Figure 00000002

Примечание: изучено 3 повторности по 10-15 штук; * р ≤ 0.05; варианты, сопровождаемые одинаковыми латинскими буквами, различаются незначимо по критерию Дункана.Note: 3 replicates of 10-15 each were studied; * p ≤ 0.05; variants accompanied by identical Latin letters differ insignificantly according to the Duncan criterion.

Статистически достоверно было выявлено, что наиболее эффективной предобработкой семян была обработка горячей водой 80.8. Таким образом, согласно предлагаемому способу обработку сухих семян горячей водой необходимо проводить именно кипятком (90-100°С) с последующей выдержкой их до остывания воды до комнатной температуры (20-30 мин). При кратковременном ошпаривании семян в кипятке (2-3 мин) частота прорастания семян была меньшей по сравнению с выдерживанием семян в горячей воде до остывания. Если уменьшали время выдержки семян в остывающей воде, число проросших семян также уменьшалось. Если замачивание кипятком сопровождалось последующей выдержкой 20-30 мин при постоянной высокой температуре (50-60°С) наблюдали значительное ухудшение качества проростков.It was statistically significant that the most effective seed pre-treatment was hot water treatment 80.8. Thus, according to the proposed method, the treatment of dry seeds with hot water must be carried out precisely with boiling water (90-100 ° C), followed by exposure to cooling the water to room temperature (20-30 minutes). With a short-term scalding of seeds in boiling water (2-3 min), the frequency of seed germination was lower compared to keeping the seeds in hot water before cooling. If the exposure time of seeds in cooling water was reduced, the number of germinated seeds also decreased. If soaking with boiling water was accompanied by a subsequent exposure of 20-30 min at a constant high temperature (50-60 ° C), a significant deterioration in the quality of seedlings was observed.

В этой связи при использовании данного способа процесс тепловой обработки необходимо проводить в указанном температурном и временном диапазоне.In this regard, when using this method, the heat treatment process must be carried out in the specified temperature and time range.

Упрощение способа достигается за счет исключения этапов мультипликации и укоренения микропобегов.The simplification of the method is achieved by eliminating the stages of animation and rooting of microprobe.

Claims (4)

1. Способ регенерации растений Бобовника анагировидного in vitro, включающий предварительную обработку сухих семян, поверхностную стерилизацию и культивирование на питательной среде для проращивания, отличающийся тем, что в качестве предварительной обработки семена Бобовника анагировидного заливают горячей водой при температуре от 90-100°С и оставляют на 20-30 минут до остывания воды, поверхностную стерилизацию осуществляют, помещая семена в 1%-ный водный раствор синтетического моющего средства на 15 минут при постоянном помешивании, а затем промывая проточной водой в течение 15-20 минут, культивирование осуществляют в течение 3-4 недель, после чего развившиеся проростки высаживают в стаканчики с почвенным субстратом и помещают в микропарник на 4-6 недель для адаптации к нестерильным условиям.1. The method of regeneration of Bobovnik anagovirus plants in vitro, including pre-treatment of dry seeds, surface sterilization and cultivation on a nutrient medium for germination, characterized in that, as a preliminary treatment, Bobovnik anagovirus seeds are poured with hot water at a temperature of 90-100 ° C and left 20-30 minutes before cooling water, surface sterilization is carried out by placing the seeds in a 1% aqueous solution of synthetic detergent for 15 minutes with constant stirring, and then washing with running water for 15-20 minutes, cultivation was carried out for 3-4 weeks, after which the fully developed seedlings were planted into pots with soil and placed in a substrate mikroparnik for 4-6 weeks to adapt to non-sterile conditions. 2. Способ по п. 1, отличающийся тем, что питательная среда содержит минеральные соли и витамины по MS, 20 г/л сахарозы, 7 г/л агара.2. The method according to p. 1, characterized in that the nutrient medium contains mineral salts and vitamins according to MS, 20 g / l sucrose, 7 g / l agar. 3. Способ по п. 2, отличающийся тем, что питательная среда дополнительно содержит 2.2 μМ БАП.3. The method according to p. 2, characterized in that the nutrient medium additionally contains 2.2 μM BAP. 4. Способ по п. 1, отличающийся тем, что в качестве питательной среды выбрана среда WPM с добавлением 2.2 μМ БАП.4. The method according to p. 1, characterized in that the medium selected is WPM with the addition of 2.2 μM BAP.
RU2014149849A 2014-12-10 2014-12-10 Method of producing planting material of bobovnik anagyroid RU2608638C2 (en)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2014149849A RU2608638C2 (en) 2014-12-10 2014-12-10 Method of producing planting material of bobovnik anagyroid

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2014149849A RU2608638C2 (en) 2014-12-10 2014-12-10 Method of producing planting material of bobovnik anagyroid

Publications (2)

Publication Number Publication Date
RU2014149849A RU2014149849A (en) 2016-07-10
RU2608638C2 true RU2608638C2 (en) 2017-01-23

Family

ID=56372377

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
RU2014149849A RU2608638C2 (en) 2014-12-10 2014-12-10 Method of producing planting material of bobovnik anagyroid

Country Status (1)

Country Link
RU (1) RU2608638C2 (en)

Non-Patent Citations (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
Rajeswari V., et all, In vitro adventitious shoot organogenesis and plant regeneration from seedling explants of Albizia odoratissima L.f. (Benth.), In Vitro Cell. Dev. Biol. Plant, 2008, v.44, pp. 78-83. Тимофеева С.Н., и др., Опыт клонального микроразмножения бобовника анагировидного, Бюллетень Ботанического сада Саратовского Государственного университета, выпуск 7, 2008, с.230-232. *
Rajeswari V., et all, In vitro adventitious shoot organogenesis and plant regeneration from seedling explants of Albizia odoratissima L.f. (Benth.), In Vitro Cell. Dev. Biol. Plant, 2008, v.44, pp. 78-83. Тимофеева С.Н., и др., Опыт клонального микроразмножения бобовника анагировидного, Бюллетень Ботанического сада Саратовского Государственного университета, выпуск 7, 2008, с.230-232. Тимофеева С.Н., Изучение возможности размножения древесных растений методами клеточных культур, Бюллетень Ботанического сада Саратовского Государственного университета, выпуск 6, 2007, с.109-114. Байтулин И.О., Создание лесного питомника и технология выращивания посадочного материала, Костанай, 2009, c.12-14. *
Байтулин И.О., Создание лесного питомника и технология выращивания посадочного материала, Костанай, 2009, c.12-14. *
Тимофеева С.Н., Изучение возможности размножения древесных растений методами клеточных культур, Бюллетень Ботанического сада Саратовского Государственного университета, выпуск 6, 2007, с.109-114. *

Also Published As

Publication number Publication date
RU2014149849A (en) 2016-07-10

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Batukaev et al. Use of growth regulators in grapes grinding by in vitro method
CN103931497B (en) A kind of method improving dragon fruit plantlet in vitro planting percent
CN108770695B (en) Method for in-vitro tissue culture and rapid seedling establishment of red-heart pitaya
CN102499086B (en) Method for breeding locust
KR100720338B1 (en) Propagation Method of Japanese larchLarix leptolepis through Somatic Embryogenesis Technique
Riva et al. In vitro regeneration and rapid multiplication of Dendrobium bensoniae, an indigenous ornamental orchid.
Pacek-Bieniek et al. Influence of activated charcoal on seed germination and seedling development by the asymbiotic method in (Lindl.) Mansf.()
CN108077070A (en) A kind of maple tissue cultures culture medium and cultural method
Kabir et al. Multiple shoot regeneration in Dendrobium fimbriatum hook an ornamental orchid.
CN106804426B (en) Promote the box set and method of Companumoea root vitro proliferation
Klaocheed et al. Plantlet Regeneration and Multiple Shoot Induction from Protocorm-Like Bodies (PLBs) of Medicinal Orchid Species, Dendrobium crumenatum Sw.
CN109863997A (en) A kind of method for tissue culture covering mulberry seedling
RU2608638C2 (en) Method of producing planting material of bobovnik anagyroid
KR101106953B1 (en) Proliferation method of Pinus densiflora using somatic embryogenesis
CN107535356A (en) A kind of Hainan Huanghua Pear seeds seedling breeding method
Bhattacharjee et al. Development of an efficient protocol for in vitro germination and enhancing protocorm-like body development in three indigenous orchid species in Bangladesh
KR100457999B1 (en) Propagation Method of Pinus rigida × P. taeda through Somatic Embryogenesis Technique
KR100715248B1 (en) Producing method of Echinosophora koreensis by bud culture
RU2627194C1 (en) Method for clonal micro-reproduction of betulaceae family plants
KR101634349B1 (en) Method for vegetative propagation of Juglans mandshurica using somatic embryogenesis technique
KR100302206B1 (en) In-flight mass production and forge transplanting method
RU2564123C1 (en) METHOD OF REPRODUCTION OF PEPEROMIA in vitro
CN113692935B (en) Method for improving variety of cut flower of Australian wintersweet into variety of potted flower
RU2704839C1 (en) Method for clonal micro propagation of korean poplar (populus koreana render)
Pandey Techniques for high tech seed potato production including aeroponics