RU2600883C1 - Method for maintaining viability of culture strains of pale treponema using cryopreservation - Google Patents

Method for maintaining viability of culture strains of pale treponema using cryopreservation Download PDF

Info

Publication number
RU2600883C1
RU2600883C1 RU2015115416/10A RU2015115416A RU2600883C1 RU 2600883 C1 RU2600883 C1 RU 2600883C1 RU 2015115416/10 A RU2015115416/10 A RU 2015115416/10A RU 2015115416 A RU2015115416 A RU 2015115416A RU 2600883 C1 RU2600883 C1 RU 2600883C1
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
strains
native
cultures
pale
treponemal
Prior art date
Application number
RU2015115416/10A
Other languages
Russian (ru)
Inventor
Эдуард Исаакович Мордухович
Давид Борисович Жуков
Илья Владимирович Дармов
Вероника Юрьевна Охапкина
Original Assignee
Общество с ограниченной ответственностью "КАНЦЕРНЕТ"
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Общество с ограниченной ответственностью "КАНЦЕРНЕТ" filed Critical Общество с ограниченной ответственностью "КАНЦЕРНЕТ"
Priority to RU2015115416/10A priority Critical patent/RU2600883C1/en
Application granted granted Critical
Publication of RU2600883C1 publication Critical patent/RU2600883C1/en

Links

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N1/00Microorganisms, e.g. protozoa; Compositions thereof; Processes of propagating, maintaining or preserving microorganisms or compositions thereof; Processes of preparing or isolating a composition containing a microorganism; Culture media therefor
    • C12N1/04Preserving or maintaining viable microorganisms
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N1/00Microorganisms, e.g. protozoa; Compositions thereof; Processes of propagating, maintaining or preserving microorganisms or compositions thereof; Processes of preparing or isolating a composition containing a microorganism; Culture media therefor
    • C12N1/20Bacteria; Culture media therefor

Landscapes

  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • Virology (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Tropical Medicine & Parasitology (AREA)
  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)

Abstract

FIELD: microbiology.
SUBSTANCE: method provides accumulation of biomass of pale treponema in liquid accumulation nutrient medium. Method comprises concentration by natural sedimentation followed by decanting supernatant. Method then includes stabilisation of concentrated microbial suspension with protective saccharose-glycerin medium to produce a preparation. Produced preparation is packed into separate sealed containers and frozen at minus 40±2 °C with subsequent storage at same temperature.
EFFECT: invention enables to maintain viability and growth properties of culture strains of treponemas for 18 months.
4 cl, 1 tbl, 1 ex

Description

Изобретение относится к микробиологии и может быть использовано в исследованиях по изучению биологических свойств возбудителя сифилиса, при сохранении и поддержании культуральных штаммов бледных трепонем, а также в технологии производства лечебно-диагностических препаратов на их основе.The invention relates to microbiology and can be used in research on the biological properties of the causative agent of syphilis, while maintaining and maintaining the culture strains of pale treponemas, as well as in the technology for the production of therapeutic and diagnostic preparations based on them.

Возбудителем сифилиса является бледная трепонема (спирохета), открытая в 1905 г. F. Schaudinn и Е. Hoffman. По классификации Bergey она относится к отделу Gracillicutes, порядку Spirochaetales, семейству Spirochaetaceae, роду Treponema, виду Treponema pallidum, подвиду Treponema pallidum pallidum (Определитель бактерий Берджи. Справочное пособие в 2-х томах / Под ред. Дж. Хоулта, Н. Крига, П. Снита / пер. с англ. под ред. Г.А. Заварзина. - М.: «Мир», 1997. - 800 с.).The causative agent of syphilis is pale treponema (spirochete), discovered in 1905 by F. Schaudinn and E. Hoffman. According to Bergey's classification, it belongs to the Gracillicutes division, the Spirochaetales order, the Spirochaetaceae family, the Treponema genus, the species Treponema pallidum, the subspecies Treponema pallidum pallidum (Identifier of the bacteria Bergey. Reference book in 2 volumes / Edited by J. Holt, N. Kriga, P. Snita / transl. From English under the editorship of G. A. Zavarzin. - M.: Mir, 1997. - 800 p.).

Бледных трепонем, выделенных из патологического материала от человека, практически никогда не удавалось поддерживать в патогенном состоянии на искусственных средах. Однако попытки выращивания бледной трепонемы на питательных средах в анаэробных условиях привели к получению определенного количества культивируемых штаммов. Указанные штаммы трепонем, получившие название «культуральные» (в отличие от патогенных «тканевых» трепонем), являются авирулентными не только для человека, но и для чувствительных к сифилису лабораторных животных - кроликов и приматов.Pale treponemas isolated from pathological material from humans almost never succeeded in maintaining a pathogenic state on artificial media. However, attempts to grow pale treponema on nutrient media under anaerobic conditions have led to a certain number of cultured strains. The indicated treponemal strains, called “cultural” (in contrast to the pathogenic “tissue” treponemas), are avirulent not only for humans, but also for laboratory animals sensitive to syphilis - rabbits and primates.

Культуральные трепонемы несколько отличаются от тканевых по своим морфологическим, биохимическим и патогенным свойствам. Однако особенно значимо то, что антигенные свойства их очень близки к патогенным вариантам возбудителя сифилиса. Наибольшее количество культуральных штаммов бледных трепонем в нашей стране выделили В.М. Аристовский и Р.Р. Гельтцер. Данные «казанские» (I, II, IV, V) и «ставропольские» (VI, VII, VIII, IX) штаммы наряду со штаммом Рейтера применяют для приготовления антигенов для серодиагностики сифилиса (Овчинников Н.М. Экспериментальный сифилис / Н.М. Овчинников. - М.: Медгиз, 1955. - 387 с.).Cultural treponemas are somewhat different from tissue ones in their morphological, biochemical and pathogenic properties. However, it is especially significant that their antigenic properties are very close to the pathogenic variants of the causative agent of syphilis. The greatest number of cultured strains of pale treponemas in our country were identified by V.M. Aristovsky and R.R. Geltzer. These “Kazan” (I, II, IV, V) and “Stavropol” (VI, VII, VIII, IX) strains along with the Reiter strain are used to prepare antigens for serodiagnosis of syphilis (Ovchinnikov N.M. Experimental syphilis / N.M Ovchinnikov. - M.: Medgiz, 1955. - 387 p.).

Следует отметить, что возбудитель сифилиса является крайне прихотливым микроорганизмом. Культуральные трепонемы по сравнению с другими гетеротрофными микроорганизмами отличаются высокими питательными потребностями, не растут на обычных питательных средах, развиваются в узком температурном и кислотно-щелочном диапазоне, требуют тщательного соблюдения анаэробных условий, характеризуются очень медленным (до 7-10 сут) ростом и низким накоплением биомассы.It should be noted that the causative agent of syphilis is an extremely whimsical microorganism. Cultural treponemas, in comparison with other heterotrophic microorganisms, are characterized by high nutritional requirements, do not grow on ordinary nutrient media, develop in a narrow temperature and acid-base range, require careful observance of anaerobic conditions, are characterized by very slow (up to 7-10 days) growth and low accumulation biomass.

Бледные трепонемы хорошо развиваются на хорионаллантоисной ткани куриного зародыша в кроличьей сыворотке с добавлением кусочков мозговой ткани под слоем вазелинового масла. Наиболее распространенными питательными средами для выращивания культуральных трепонем являются среды, питательной основой которых является бульон из бычьих сердец с кусочками печени или бычьего сердца с добавлением пептона и ростовых факторов (Ю.А. Козлов. Питательные среды в медицинской микробиологии, М.: Медгиз, 1950, с. 203-206; Справочник по микробиологическим и вирусологическим методам исследования под редакцией М.О. Биргера, М.: Медицина, 1973, с. 47-92). Были разработаны среды на основе смеси асцитической жидкости с печеночным бульоном (рН 7,4-7,6), в которых кусочки печени заменены кусочками агара или мелко нарезанного круто сваренного куриного желтка. Описано использование жидких питательных сред на основе белковых гидролизатов пищевого и непищевого сырья (RU 2198920 С1, 20.02.2003). На рынке предлагается сухая коммерческая среда для получения биомассы трепонем штамма Рейтера - «Бульон Омата для трепонем и фузобактерий» (HiMedia Laboratories Pvt. Limited, Индия).Pale treponemas develop well on the chorionallantoic tissue of the chicken fetus in rabbit serum with the addition of pieces of brain tissue under a layer of paraffin oil. The most common nutrient media for growing culture treponemes are environments whose nutrient basis is a bovine heart broth with pieces of liver or bovine heart supplemented with peptone and growth factors (Yu.A. Kozlov. Nutrient media in medical microbiology, Moscow: Medgiz, 1950 , p. 203-206; Handbook of microbiological and virological research methods edited by M.O. Birger, M .: Medicine, 1973, p. 47-92). Media based on a mixture of ascitic fluid with hepatic broth (pH 7.4-7.6) were developed, in which slices of the liver were replaced by slices of agar or finely chopped, boiled chicken yolk. The use of liquid nutrient media based on protein hydrolysates of food and non-food raw materials is described (RU 2198920 C1, 02.20.2003). A dry commercial medium for obtaining biomass of treponems of Reuters strain Trematon Omata Broth for Treponemas and Fusobacteria (HiMedia Laboratories Pvt. Limited, India) is offered on the market.

Наиболее близким по существу и назначению к заявляемому способу поддержания культуральных штаммов трепонем является традиционный метод субкультивирования (Овчинников Н.М. Экспериментальный сифилис / Н.М. Овчинников. - М.: Медгиз, 1955. - 387 с.), основанный на регулярных и частых (1 раз в 2-4 недели) пересевах на жидких питательных средах. Для поддержания чистых культур наиболее часто применяют жидкие питательные среды на основе мясопептонного бульона с добавлением кусочков телячьей печени в количестве 0,25% от объема питательной среды с рН 8,0-8,4. Культивирование осуществляют при температуре 36-38°C в течение 5-7 сут в статических анаэробных условиях.The closest to the essence and purpose of the claimed method of maintaining culture of treponemal strains is the traditional method of subcultivation (Ovchinnikov N.M. Experimental syphilis / N.M. Ovchinnikov. - M.: Medgiz, 1955. - 387 p.), Based on regular and frequent (1 time in 2-4 weeks) transfers in liquid nutrient media. To maintain pure cultures, liquid nutrient media based on meat-peptone broth with the addition of calf liver pieces in the amount of 0.25% of the volume of the nutrient medium with a pH of 8.0-8.4 are most often used. Cultivation is carried out at a temperature of 36-38 ° C for 5-7 days under static anaerobic conditions.

Необходимо учитывать, что метод субкультивирования характеризуется рядом существенных недостатков: трудоемкостью, высокой стоимостью питательных сред, приготовленных на основе высококачественного пищевого сырья, опасностью контаминации культур посторонней микрофлорой в процессе пересевов, угрозой изменения основных биологических свойств возбудителя. Указанные трудности сохранения штаммов приводят к необходимости систематического дублирования пересевов и поддержания связей с учреждениями, сохраняющими культуральные штаммы бледных трепонем.It should be borne in mind that the subcultivation method is characterized by a number of significant drawbacks: the complexity, the high cost of nutrient media prepared on the basis of high-quality food raw materials, the danger of contamination of crops by extraneous microflora in the process of reseeding, and the threat of changing the main biological properties of the pathogen. The indicated difficulties in preserving the strains lead to the need for a systematic duplication of reseeding and maintaining links with institutions that preserve the cultured strains of pale treponema.

Известно, что низкотемпературная консервация отличается небольшим повреждающим действием и расценивается многими авторами (Никитин Е.Е., Звягин И.В. Замораживание и высушивание биологических препаратов / Е.Е. Никитин, И.В. Звягин. - М., 1979. - 337 с.; Пушкарь Н.С., Белоус A.M. Введение в криобиологию. - Киев: Наукова думка, 1975. - 175 с.) как один из перспективных методов хранения микробных культур, который на сегодняшний день широко используется в лабораторной практике. Эффективность данного метода определяется неукоснительным соблюдением режима хранения и диапазоном используемых температур (Эшвуд-Смит, М. Консервирование микроорганизмов замораживанием, сушкой из замороженного состояния и обезвоживанием в эксикаторе / М. Эшвуд-Смит / пер. с англ. - М., 1982. - 36 с.). Для повышения устойчивости микробов в процессе низкотемпературной консервации и последующего хранения необходимым является применение криозащитных сред (криопротекторов).It is known that low-temperature preservation has a small damaging effect and is regarded by many authors (Nikitin E.E., Zvyagin I.V. Freezing and drying of biological preparations / E.E. Nikitin, I.V. Zvyagin. - M., 1979. - 337 pp .; Pushkar N.S., Belous AM Introduction to cryobiology. - Kiev: Naukova Dumka, 1975. - 175 pp.) As one of the promising methods for storing microbial cultures, which today is widely used in laboratory practice. The effectiveness of this method is determined by strict observance of the storage regime and the range of temperatures used (Ashwood-Smith, M. Preservation of microorganisms by freezing, drying from a frozen state and dehydration in a desiccator / M. Ashwood-Smith / transl. From English - M., 1982. - 36 sec.). To increase the stability of microbes in the process of low-temperature preservation and subsequent storage, it is necessary to use cryoprotective media (cryoprotectants).

Следует отметить, что аналогичный подход используется для сохранения жизнеспособности патогенного штамма бледных трепонем (Treponema pallidum pallidum штамм Никольса), который не поддается выращиванию на искусственных питательных средах и поддерживается исключительно в организме восприимчивого лабораторного животного (кролика). Он включает в себя: тестикулярное заражение кролика культурой патогенной бледной трепонемы; получение из яичка взвеси микробов, содержащей экстракт нативных тканей; стабилизацию суспензии криопротектором (глицерином); разделение на небольшие аликвоты объемом 0,75-1,5 мл; замораживание и хранение при температуре минус 70-80°C (RU 2292388 C1, 27.01.2007).It should be noted that a similar approach is used to maintain the viability of the pathogenic strain of pale treponema (Treponema pallidum pallidum Nichols strain), which cannot be grown on artificial nutrient media and is maintained exclusively in the body of a susceptible laboratory animal (rabbit). It includes: testicular infection of the rabbit with a culture of pathogenic pale treponema; obtaining from the testis suspension of microbes containing the extract of native tissues; suspension stabilization with a cryoprotectant (glycerin); separation into small aliquots of 0.75-1.5 ml; freezing and storage at a temperature of minus 70-80 ° C (RU 2292388 C1, 01/27/2007).

Задачей изобретения является разработка способа, обеспечивающего сохранение жизнеспособности культуральных штаммов бледных трепонем в течение продолжительного периода времени, при упрощении способа и снижении затрат, связанных с приобретением и/или приготовлением дорогостоящего пищевого сырья надлежащего качества (питательных сред), и устранении опасности контаминации культур посторонней микрофлорой в процессе осуществления регулярных пересевов.The objective of the invention is to develop a method that preserves the viability of the cultured strains of pale treponema for a long period of time, while simplifying the method and reducing costs associated with the acquisition and / or preparation of expensive food raw materials of proper quality (nutrient media), and eliminating the risk of contamination of crops by extraneous microflora in the process of regular reseeding.

Технический результат заключается в увеличении сроков сохранения жизнеспособности культуральных штаммов бледных трепонем.The technical result consists in increasing the time for maintaining the vitality of the cultured strains of pale treponemal.

Поставленная задача решается тем, что способ сохранения жизнеспособности культуральных штаммов бледных трепонем с использованием криоконсервации включает получение стабилизированных микробных суспензий из нативных концентрированных культур штаммов трепонем путем добавления криозащитной среды с последующим замораживанием и хранением стабилизированных микробных суспензий при температуре минус (38-42)°C. В частном варианте осуществления изобретения добавление криозащитной среды может быть осуществлено в объемном соотношении 2:1. Нативные концентрированные культуры штаммов трепонем получают из нативных глубинных культур с использованием метода естественного осаждения с последующим удалением надосадочной жидкости. Нативные глубинные культуры штаммов трепонем получают из посевного материала на коммерческом «Бульоне Омата для трепонем и фузобактерий», выращивание которого осуществляют в мясопептонном бульоне с добавлением кусочков печени. В заявляемом способе может быть использована криоконсервирующая среда любого состава, обеспечивающая жизнеспособность культуральных трепонем при замораживании и хранении. В частном варианте осуществления изобретения использована защитная среда включающая, мас.%: сахарозу - от 7 до 8, глицерин - от 28 до 32, калий фосфорнокислый двузамещенный - от 0,5 до 0,7.The problem is solved in that the method of maintaining the viability of the cultured pale treponem strains using cryopreservation involves obtaining stabilized microbial suspensions from native concentrated cultures of treponemal strains by adding a cryoprotective medium, followed by freezing and storage of stabilized microbial suspensions at a temperature of minus (38-42) ° C. In a particular embodiment of the invention, the addition of a cryoprotective medium can be carried out in a volume ratio of 2: 1. Native concentrated cultures of treponemal strains are obtained from native deep cultures using the natural precipitation method followed by removal of the supernatant. Native deep cultures of treponemal strains are obtained from seed on the commercial Omata Bouillon for Treponemus and Fusobacteria, which is grown in meat and peptone broth with the addition of pieces of liver. In the inventive method, a cryopreservation medium of any composition can be used that ensures the viability of culture treponemas during freezing and storage. In a particular embodiment of the invention, a protective medium is used comprising, wt.%: Sucrose - from 7 to 8, glycerin - from 28 to 32, potassium disubstituted phosphate - from 0.5 to 0.7.

Технический результат достигается за счет того, что осуществляют накопление биомассы трепонем в жидкой питательной среде, концентрирование методом естественной седиментации с последующим декантированием надосадочной жидкости и стабилизацию концентрированной микробной суспензии криозащитной сахарозо-глицериновой средой. Полученный препарат расфасовывают в отдельные герметичные укупорки, например по 5 мл, и немедленно подвергают замораживанию для последующего хранения при температуре минус 40±2°C.The technical result is achieved due to the fact that biomass of treponems is accumulated in a liquid nutrient medium, concentrated by natural sedimentation, followed by decantation of the supernatant and stabilization of the concentrated microbial suspension with cryoprotective sucrose-glycerol medium. The resulting preparation is packaged in separate sealed closures, for example 5 ml, and immediately subjected to freezing for subsequent storage at a temperature of minus 40 ± 2 ° C.

Концентрирование биомассы трепонем обеспечивает создание необходимой посевной дозы для последующих пересевов, добавление криозащитной сахарозо-глицериновой среды обусловливает защитный эффект при замораживании и хранении, фасовка в отдельные герметичные укупорки позволяет достигать оптимальных темпов замораживания и размораживания полученного продукта, а последующее хранение при температуре минус 40±2°C обеспечивает сохранение жизнеспособности микроорганизмов не менее 18 мес (по данным экспериментальных исследований).The concentration of treponem biomass provides the necessary seed dose for subsequent reseeding, the addition of a cryoprotective sucrose-glycerin medium determines the protective effect during freezing and storage, packing in separate airtight closures allows achieving optimal rates of freezing and thawing of the obtained product, and subsequent storage at a temperature of minus 40 ± 2 ° C ensures the preservation of the viability of microorganisms for at least 18 months (according to experimental studies).

Совокупность перечисленных операций и условий их выполнения обеспечивает получение следующих преимуществ:The combination of these operations and the conditions for their implementation provides the following benefits:

при бесперебойной работе холодильного оборудования гарантированно сохраняется жизнеспособность и ростовые свойства культуральных штаммов бледных трепонем не менее 18 мес;during the uninterrupted operation of refrigeration equipment, the viability and growth properties of the cultured strains of pale treponemas are guaranteed to be maintained for at least 18 months;

криоконсервированные культуры штаммов трепонем после реактивации могут быть использованы для непосредственного засева жидких питательных сред из расчета содержимое одной укупорки на 0,25-0,5 л среды;cryopreserved cultures of treponemal strains after reactivation can be used for direct inoculation of liquid nutrient media based on the contents of one closure per 0.25-0.5 l of medium;

осуществление контроля на всех этапах приготовления криоконсервированных культур штаммов трепонем гарантирует отсутствие посторонней микрофлоры и снижение связанных с этим потерь, наблюдаемых в процессе многократных пересевов;monitoring at all stages of preparation of cryopreserved cultures of treponemal strains ensures the absence of extraneous microflora and a reduction in the losses associated with this observed during repeated reseeding;

сроки культивирования штаммов трепонем в анаэробных условиях при температуре 37±1°C при использовании в качестве посевного материала криоконсервированных культур практически не отличаются от аналогичных при использовании в качестве посевного материала глубинных культур (7-10 сут);the periods of cultivation of treponemal strains under anaerobic conditions at a temperature of 37 ± 1 ° C when using cryopreserved cultures as seed material practically do not differ from the analogous when using deep cultures as seed material (7-10 days);

хранение криоконсервированных культур в отдельных герметичных укупорках позволяет дробно использовать первоначально приготовленный препарат без ухудшения его свойств и многократно применять в качестве посевного материала;storage of cryopreserved cultures in separate airtight closures allows fractional use of the initially prepared preparation without deterioration of its properties and is repeatedly used as a seed;

при систематическом применении данного способа снижаются прямые материальные и трудовые затраты, связанные с приобретением и приготовлением питательных сред, осуществлением регулярных пересевов, в том числе при временном прекращении работ с культуральными штаммами бледных трепонем.the systematic application of this method reduces direct material and labor costs associated with the acquisition and preparation of culture media, the implementation of regular reseeding, including the temporary cessation of work with cultured strains of pale treponemes.

Способ осуществляют следующим образом:The method is as follows:

получают посевной материал штаммов трепонем путем выращивания микробов, например, в мясопептонном бульоне с добавлением от 20 до 25% по объему кусочков вареной говяжьей печени в колбах в анаэробных условиях при температуре (37±1)°C в течение от 7 до 10 сут;receive seed material of treponemal strains by growing microbes, for example, in meat and peptone broth with the addition of 20 to 25% by volume pieces of boiled beef liver in flasks under anaerobic conditions at a temperature of (37 ± 1) ° C for 7 to 10 days;

получают нативные глубинные культуры штаммов трепонем путем выращивания микробов, например, в коммерческой жидкой питательной среде «Бульон Омата для трепонем и фузобактерий» (HiMedia Laboratories Pvt. Ltd., Индия) с добавлением коммерческой сыворотки крупного рогатого скота в колбах в анаэробных условиях при температуре (37±1)°C в течение от 7 до 10 сут в шейкере-инкубаторе при частоте оборотов платформы 120±10 об/мин-1;native deep cultures of treponemal strains are obtained by growing microbes, for example, in the commercial liquid nutrient medium Omata Broth for Treponemus and Fusobacteria (HiMedia Laboratories Pvt. Ltd., India) with the addition of commercial cattle serum in flasks under anaerobic conditions at a temperature ( 37 ± 1) ° C for 7 to 10 days in a shaker-incubator at a platform speed of 120 ± 10 rpm -1 ;

получают нативные концентрированные суспензии штаммов трепонем с использованием метода естественной седиментации с последующим декантированием надосадочной жидкости, который включает отстаивание полученной на предыдущем этапе микробной культуры в течение суток при температуре (20±2)°C до получения оформленного осадка с последующим удалением в асептических условиях надосадочной жидкости в объеме от 60 до 80% от исходного объема культуральной жидкости;Native concentrated suspensions of treponemal strains are obtained using the natural sedimentation method followed by decantation of the supernatant, which includes settling the microbial culture obtained in the previous stage for 24 hours at a temperature of (20 ± 2) ° C until a formed sediment is obtained, followed by supernatant removal under aseptic conditions in a volume of from 60 to 80% of the initial volume of the culture fluid;

готовят стабилизированные микробные суспензии штаммов трепонем путем добавления криозащитной среды, включающей следующие компоненты, мас.%: сахарозу - от 7 до 8, глицерин - от 28 до 32, калий фосфорнокислый двузамещенный - от 0,5 до 0,7;stabilized microbial suspensions of strains of treponem are prepared by adding a cryoprotective medium, including the following components, wt.%: sucrose - from 7 to 8, glycerin - from 28 to 32, potassium disubstituted phosphate - from 0.5 to 0.7;

в стабилизированных микробных суспензиях штаммов трепонем осуществляют контроль внешнего вида, типичности свойств микробов и отсутствие посторонней микрофлоры методом фазово-контрастной микроскопии в нативных препаратах типа «раздавленная капля»;in stabilized microbial suspensions of treponemal strains, the appearance, typical properties of microbes and the absence of extraneous microflora are monitored by phase contrast microscopy in native preparations of the “crushed drop” type;

производят фасовку стабилизированных микробных суспензий штаммов трепонем в отдельные герметичные укупорки;packing of stabilized microbial suspensions of treponemal strains into individual sealed closures;

в течение 1 часа с момента приготовления стабилизированные микробные суспензии штаммов трепонем замораживают при температуре минус 40±2°С; хранение криоконсервированных микробных суспензии штаммов трепонем осуществляют при температуре минус 40±2°C сроком до 18 мес.within 1 hour from the time of preparation, stabilized microbial suspensions of treponemal strains are frozen at a temperature of minus 40 ± 2 ° C; storage of cryopreserved microbial suspension of treponemal strains is carried out at a temperature of minus 40 ± 2 ° C for up to 18 months.

Осуществимость заявляемого способа с достижением технического результата подтверждается примерами конкретного выполнения.The feasibility of the proposed method with the achievement of a technical result is confirmed by examples of specific performance.

Пример 1 Example 1

Способ криоконсервации культуральных штаммов бледной трепонемы на примере штамма Treponema pallidum pallidum РейтераThe method of cryopreservation of culture strains of pale treponema on the example of the strain Treponema pallidum pallidum Reuters

Для получения посевного материала трепонем в колбу вместимостью 0,5 л, заполненную на три четверти стерильным мясопептонным бульоном с кусочками печени под ватно-марлевой пробкой, асептически вносили культуру штамма Рейтера в количестве от 40 до 60 мл. Для создания анаэробных условий на поверхность засеянной среды осторожно наслаивали предварительно расплавленный на водяной бане стерильный медицинский вазелин, чтобы получилась герметичная пробка высотой 1,5-2,0 см. Содержимое засеянных колб тщательно перемешивали аккуратными вращательными движениями и помещали в термостат при температуре (37±1)°C на срок от 7 до 10 сут. Ежедневно несколько раз в день осуществляли перемешивание растущих культур аккуратными вращательными движениями для равномерного распределения микробов по всему объему среды.To obtain inoculum with treponem, a flask with a capacity of 0.5 l, filled in three quarters with sterile meat and peptone broth with pieces of liver under a cotton-gauze plug, was added aseptically a culture of Reiter strain in an amount of from 40 to 60 ml. To create anaerobic conditions, a sterile medical petroleum jelly pre-melted in a water bath was carefully layered on the surface of the seeded medium to obtain a sealed stopper 1.5-2.0 cm high. The contents of the seeded flasks were thoroughly mixed with gentle rotational movements and placed in a thermostat at a temperature of (37 ± 1) ° C for a period of 7 to 10 days. Every day several times a day, the growing cultures were mixed with neat rotational movements to evenly distribute microbes throughout the entire volume of the medium.

Для получения нативной глубинной культуры в колбу вместимостью 0,5 или 1 л, заполненную на три четверти стерильным коммерческим бульоном Рейтера с добавлением 10% нативной сыворотки крупного рогатого скота, асептически вносили приготовленный на мясопептонном бульоне посевной материал в количестве около 10-20% по объему. Для создания анаэробных условий на поверхность засеянной среды осторожно наслаивали предварительно расплавленный на водяной бане стерильный медицинский вазелин, чтобы получилась герметичная пробка высотой 1,5-2,0 см. Содержимое засеянных колб тщательно перемешивали и помещали в шейкер-инкубатор при температуре (37±1)°С и частоте движения платформы 120±10 качаний·мин-1 на срок 7-10 сут. Ежедневно несколько раз в день осуществляли визуальный контроль роста.To obtain a native depth culture, a flask of 0.5 or 1 L capacity, filled in three quarters with sterile commercial Reuters broth with 10% native cattle serum, was added aseptically with the seed material prepared in the meat and peptone broth in an amount of about 10-20% by volume . To create anaerobic conditions, sterile medical petroleum jelly pre-melted in a water bath was carefully layered on the surface of the seeded medium, so that a 1.5-2.0 cm high sealed cork was obtained.The contents of the seeded flasks were thoroughly mixed and placed in a shaker incubator at a temperature of (37 ± 1 ) ° C and a platform frequency of 120 ± 10 swings · min -1 for a period of 7-10 days. Several times a day, visual growth control was performed.

Для получения концентрированной нативной культуры по окончании выращивания колбы оставляли при комнатной температуре на 24 ч для уплотнения осадка. По истечении указанного срока из каждой колбы асептически с помощью стерильной стеклянной лопаточки удаляли вазелиновую пробку. Затем с помощью вакуума из каждой колбы очень осторожно удаляли надосадочную жидкость (от 60 до 80%) таким образом, чтобы не нарушить целостность осадка. Кондиционные осадки со всех колб асептически мерно объединяли в одну стерильную емкость. Культуру подобным образом сконцентрировали в 30 раз. После этого осуществляли контроль типичности морфологии и наличия посторонней микрофлоры с помощью микроскопии.To obtain a concentrated native culture, at the end of the cultivation, the flasks were left at room temperature for 24 h to condense the precipitate. After this period, a vaseline plug was removed from each flask aseptically using a sterile glass spatula. Then using a vacuum from each flask very carefully removed the supernatant (from 60 to 80%) so as not to violate the integrity of the precipitate. Conditioned precipitates from all flasks were aseptically uniformly combined into one sterile container. The culture was similarly concentrated 30 times. After this, the typical morphology and the presence of extraneous microflora were monitored using microscopy.

К концентрированной суспензии добавляли криозащитную среду в объемном соотношении 2:1. Содержимое емкости тщательно перемешивали. После этого осуществляли контроль типичности морфологии микробов и отсутствие посторонней микрофлоры в нативных препаратах типа «раздавленная капля» с помощью фазово-контрастной микроскопии.A cryoprotective medium was added to the concentrated suspension in a volume ratio of 2: 1. The contents of the container were thoroughly mixed. After that, the typicality of the morphology of microbes was monitored and the absence of extraneous microflora in native preparations of the “crushed drop” type using phase contrast microscopy.

Стабилизированную микробную суспензию расфасовали по 5 мл в стерильные флаконы емкостью 10 мл, укупоривали резиновыми пробками, которые фиксировали металлическими колпачками. Расфасованные и промаркированные флаконы со стабилизированной концентрированной культурой трепонем немедленно помещали в низкотемпературный рефрижератор с температурой минус 40±2°С для замораживания и хранения.The stabilized microbial suspension was packaged in 5 ml in sterile 10 ml bottles, corked with rubber stoppers, which were fixed with metal caps. Packaged and labeled vials with stabilized concentrated treponem culture were immediately placed in a low-temperature refrigerator with a temperature of minus 40 ± 2 ° С for freezing and storage.

Заявляемым методом были приготовлены три серии криоконсервированных культур. В процессе хранения регулярно проводили контроль сохранности жизнеспособности и ростовых свойств микробов (таблица 1). Для этого флаконы с криоконсервированной культурой штамма реактивировали в течение 30 мин при температуре (37±1)°С, а затем засевали в колбы емкостью 0,25 л, содержащие мясопептонный бульон с кусочками печени. Выращивание осуществляли от 7 до 10 сут при температуре (37±1)°С при ежедневном перемешивании, макро- и микроскопическом контроле роста.The inventive method was prepared three series of cryopreserved cultures. During storage, the safety of the viability and growth properties of microbes was regularly monitored (table 1). For this, vials with a cryopreserved strain culture were reactivated for 30 min at a temperature of (37 ± 1) ° С, and then they were inoculated into 0.25 L flasks containing meat-peptone broth with pieces of liver. Cultivation was carried out from 7 to 10 days at a temperature of (37 ± 1) ° С with daily stirring, macro- and microscopic control of growth.

Заявляемый способ был апробирован с использованием культуральных штаммов Treponema pallidum pallidum «Казань» V, «Ставрополь» VII, «Ставрополь» VIII, «Ставрополь» IX (см. примеры 2-5 таблицы 1).The inventive method was tested using cultural strains Treponema pallidum pallidum "Kazan" V, "Stavropol" VII, "Stavropol" VIII, "Stavropol" IX (see examples 2-5 of table 1).

Результаты проведенных исследований показывают, что после замораживания и хранения криоконсервированных культур культуральных штаммов трепонем в течение 18 мес при температуре минус (40±2)°С их ростовые свойства в жидкой питательной среде практически не отличаются от аналогичных показателей для микробов, хранившихся в течение 1-2 мес при комнатной температуре в мясопептонном бульоне с кусочками печени.The results of the studies show that after freezing and storage of cryopreserved cultures of treponemal culture strains for 18 months at a temperature of minus (40 ± 2) ° С, their growth properties in a liquid nutrient medium practically do not differ from similar indicators for microbes stored for 1- 2 months at room temperature in meat and peptone broth with pieces of liver.

Figure 00000001
Figure 00000001

Claims (4)

1. Способ сохранения жизнеспособности культуральных штаммов бледных трепонем с использованием криоконсервации, включающий получение стабилизированных микробных суспензий из нативных концентрированных культур штаммов трепонем путем добавления сахарозо-глицериновой криозащитной среды с последующим замораживанием и хранением стабилизированных микробных суспензий при температуре минус 40±2°С.1. A method for maintaining the viability of cultured pale treponemal strains using cryopreservation, comprising obtaining stabilized microbial suspensions from native concentrated cultures of treponemal strains by adding sucrose-glycerol cryoprotective medium, followed by freezing and storage of stabilized microbial suspensions at a temperature of minus 40 ± 2 ° С. 2. Способ по п. 1, характеризующийся тем, что добавление криозащитной среды осуществляют в объемном соотношении 2:1.2. The method according to p. 1, characterized in that the addition of cryoprotective medium is carried out in a volume ratio of 2: 1. 3. Способ по п. 1, характеризующийся тем, что нативные концентрированные культуры штаммов трепонем получают из нативных глубинных культур с использованием метода естественного осаждения с последующим удалением надосадочной жидкости.3. The method according to p. 1, characterized in that the native concentrated cultures of treponemal strains are obtained from native deep cultures using the method of natural deposition followed by removal of the supernatant. 4. Способ по п. 3, характеризующийся тем, что нативные глубинные культуры штаммов трепонем получают из посевного материала на коммерческом «Бульоне Омата для трепонем и фузобактерий», выращивание которого осуществляют в мясопептонном бульоне с добавлением кусочков печени. 4. The method according to p. 3, characterized in that the native deep cultures of treponemal strains are obtained from seed on the commercial Omata Broth for treponemas and fusobacteria, the cultivation of which is carried out in meat and peptone broth with the addition of pieces of liver.
RU2015115416/10A 2015-04-24 2015-04-24 Method for maintaining viability of culture strains of pale treponema using cryopreservation RU2600883C1 (en)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2015115416/10A RU2600883C1 (en) 2015-04-24 2015-04-24 Method for maintaining viability of culture strains of pale treponema using cryopreservation

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2015115416/10A RU2600883C1 (en) 2015-04-24 2015-04-24 Method for maintaining viability of culture strains of pale treponema using cryopreservation

Publications (1)

Publication Number Publication Date
RU2600883C1 true RU2600883C1 (en) 2016-10-27

Family

ID=57216544

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
RU2015115416/10A RU2600883C1 (en) 2015-04-24 2015-04-24 Method for maintaining viability of culture strains of pale treponema using cryopreservation

Country Status (1)

Country Link
RU (1) RU2600883C1 (en)

Cited By (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2650786C1 (en) * 2017-09-15 2018-04-17 Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования "Калужский Государственный Университет им. К.Э. Циолковского" Method of cryopreservation of cyanobacterium cells
RU2661117C1 (en) * 2017-05-31 2018-07-11 Федеральное бюджетное учреждение науки "Хабаровский научно-исследовательский институт эпидемиологии и микробиологии" Федеральной службы по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека Method of long-term storage of fastidious microorganisms
RU2758857C1 (en) * 2018-10-29 2021-11-02 Российская Федерация, от имени которой выступает Министерство обороны Российской Федерации Method for cryopreservation of vegetative inoculating material micromonospora purpurea var_ violacea of strain 7r of gentamycin producer

Citations (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2292388C1 (en) * 2005-06-06 2007-01-27 Федеральное государственное учреждение "Центральный научно-исследовательский кожно-венерологический институт Федерального агентства по здравоохранению и социальному развитию" (ГУ "ЦНИКВИ Росздрава") Method for retaining pathogenic treponema pallidum strain viability
RU2510825C2 (en) * 2012-02-27 2014-04-10 Федеральное бюджетное учреждение "33 Центральный научно-исследовательский испытательный институт Министерства обороны Российской Федерации" Method of obtaining preparation based on vaccine strain of plague microbe

Patent Citations (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2292388C1 (en) * 2005-06-06 2007-01-27 Федеральное государственное учреждение "Центральный научно-исследовательский кожно-венерологический институт Федерального агентства по здравоохранению и социальному развитию" (ГУ "ЦНИКВИ Росздрава") Method for retaining pathogenic treponema pallidum strain viability
RU2510825C2 (en) * 2012-02-27 2014-04-10 Федеральное бюджетное учреждение "33 Центральный научно-исследовательский испытательный институт Министерства обороны Российской Федерации" Method of obtaining preparation based on vaccine strain of plague microbe

Non-Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
ПОХИЛЕНКО В.Д., БАРАНОВ А.М., ДЕТУШЕВ К.В. Методы длительного хранения коллекционных культур микроорганизмов и тенденции развития., Известия высших учебных заведений. Поволжский регион. Медицинские науки, 2009, N 4, с. 99-121. НИКИТИН Е.Е., ЗВЯГИН И.В. Замораживание и высушивание биологических препаратов, М., Колос, 1971, с. 160-190. *

Cited By (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2661117C1 (en) * 2017-05-31 2018-07-11 Федеральное бюджетное учреждение науки "Хабаровский научно-исследовательский институт эпидемиологии и микробиологии" Федеральной службы по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека Method of long-term storage of fastidious microorganisms
RU2650786C1 (en) * 2017-09-15 2018-04-17 Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования "Калужский Государственный Университет им. К.Э. Циолковского" Method of cryopreservation of cyanobacterium cells
RU2758857C1 (en) * 2018-10-29 2021-11-02 Российская Федерация, от имени которой выступает Министерство обороны Российской Федерации Method for cryopreservation of vegetative inoculating material micromonospora purpurea var_ violacea of strain 7r of gentamycin producer

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Cleland et al. Glycine betaine as a cryoprotectant for prokaryotes
US5856172A (en) Preservation of microorganisms in a vial with a cap comprising an immobilized desiccant
RU2600883C1 (en) Method for maintaining viability of culture strains of pale treponema using cryopreservation
Day Cryopreservation of microalgae and cyanobacteria
CN104026118A (en) Immunization cell frozen stock solution, preparation method and application
CN106701583A (en) Seawater chlorella preservation method
Poncet et al. Cryopreservation of the unicellular marine alga, Nannochloropsis oculata
WO2018012993A1 (en) Method for maintaining viability of treponema pallidum culture strains via cryopreservation
Salas-Leiva et al. Criopreservación de las microalgas Chaetoceros calcitrans (Paulsen): análisis del efecto de la temperatura de DMSO y régimen de luz durante diferentes períodos de equilibrio
RU2661117C1 (en) Method of long-term storage of fastidious microorganisms
Aizdaicher et al. The development of Porphyridium purpureum (Bory de Saint-Vincent) Drew et Ross, 1965 (Rhodophyta) from Amursky Bay, sea of Japan, in a laboratory culture
Gilmour et al. Compact liquid nitrogen storage system yielding high recoveries of gram-negative anaerobes
Malik Preservation of unicellular gree algae by a liquid-drying method
RU2292388C1 (en) Method for retaining pathogenic treponema pallidum strain viability
CN107254446A (en) A kind of method for separating and preparing of people's primary tumor cell
RU2541452C1 (en) Method for long-term storage of microalgae
RU2518282C1 (en) Nutrient medium for submerged cultivation of tularemia microbe
CN104170741B (en) A kind of Storaged media of chrysanthemum tissue cultured seedling
Fatehi et al. The study of salt tolerance in regenerated plants from the roots of tobacco (Nicotiana rustica L.)
CN104845918A (en) Isolation culture method of intestinal endogenous sinapine degrading bacteria of laying hens
Al-Someidae et al. Alginate beads utilization for long-term storage of microalgal isolates
RU2681116C2 (en) Dense nutrient medium for storage of plague microbe
RU2788920C2 (en) Method for production of bacterial concentrate
KR102615267B1 (en) Food freshness retaining agent using rhodobacter sphaeroides and its manufacturing method
RU2726299C1 (en) Protective environment for cryopreservation for anaerobic, aerobic, facultative anaerobic and microaerophilic microorganisms in fecal microbiota

Legal Events

Date Code Title Description
MM4A The patent is invalid due to non-payment of fees

Effective date: 20180425

NF4A Reinstatement of patent

Effective date: 20190201