RU2580412C1 - Способ количественного определения т-2 токсина методом дифференциальной вольтамперометрии - Google Patents

Способ количественного определения т-2 токсина методом дифференциальной вольтамперометрии Download PDF

Info

Publication number
RU2580412C1
RU2580412C1 RU2015103279/28A RU2015103279A RU2580412C1 RU 2580412 C1 RU2580412 C1 RU 2580412C1 RU 2015103279/28 A RU2015103279/28 A RU 2015103279/28A RU 2015103279 A RU2015103279 A RU 2015103279A RU 2580412 C1 RU2580412 C1 RU 2580412C1
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
toxin
solution
electrode
sample
range
Prior art date
Application number
RU2015103279/28A
Other languages
English (en)
Inventor
Мария Алексеевна Гаврилова
Галина Борисовна Слепченко
Валентина Ивановна Дерябина
Original Assignee
Федеральное государственное автономное образовательное учреждение высшего образования "Национальный исследовательский Томский политехнический университет"
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Федеральное государственное автономное образовательное учреждение высшего образования "Национальный исследовательский Томский политехнический университет" filed Critical Федеральное государственное автономное образовательное учреждение высшего образования "Национальный исследовательский Томский политехнический университет"
Priority to RU2015103279/28A priority Critical patent/RU2580412C1/ru
Application granted granted Critical
Publication of RU2580412C1 publication Critical patent/RU2580412C1/ru

Links

Images

Landscapes

  • Investigating Or Analysing Biological Materials (AREA)

Abstract

Изобретение относится к области аналитической химии и может быть использовано в фармакокинетических исследованиях, для контроля продуктов сельскохозяйственного производства растительного происхождения. Согласно изобретению Т-2 токсин переводят из пробы в раствор и проводят вольтамперометрическое накопление микотоксина в перемешиваемом растворе в течение 30 с при потенциале электролиза (-0,5±0,05) В относительно насыщенного хлоридсеребряного электрода на фоне нитрата калия (KNO3), рН 4,0÷5,0, с последующей регистрацией катодных пиков при скорости развертки 30 мВ/с. Концентрацию Т-2 токсина определяли по высоте пика в диапазоне Еn=(-1,25±0,35) В методом добавок аттестованных смесей. Изобретение обеспечивает расширение диапазона определяемых концентраций Т-2 токсина и разработки экспресс-технологии оценки Т-2 токсина в течение 30-40 мин и возможность использования электродов из нетоксичного материала. 1 ил., 2 табл., 2 пр.

Description

Изобретение относится к области аналитической химии, в частности к катодному инверсионно-вольтамперометрическому способу определения микотоксина Т-2 токсина, который представляет собой белое кристаллическое вещество, 8-(3-метилбутирилокси)-4,15-диацетокси-12,13-эпокситрихотец-9-ен-3-ол (известный также, как «Желтый Дождь») - не имеет максимумов поглощения в УФ-спектре при длине волны более 210 нм, не обладает флуоресценцией. Температура плавления Т-2 токсина 151-152°C. Данное изобретение может быть применено в анализе пищевых продуктов и продовольственном сырье и использовано в пищевой, медицинской, фармакологической промышленности и сельском хозяйстве.
Figure 00000001
Т-2 токсин, брутто-формула (система Хилла) С24Н34О9, молекулярная масса 466,52 г/моль, трихотеценовый микотоксин, который был использован в качестве биологического оружия, продуцируемый плесневым грибом рода фузариум, высокотоксичен для эукариотических организмов. Т-2 токсин относится к семейству химических соединений, получивших название сесквитерпеноидов (sesquiterpenoids). Их отличительной чертой является трихотеценовое кольцо, содержащее олефиновую связь С-9 и эпоксидную группу С-12,13. Т-2 токсин является одним из наиболее токсичных представителей группы трихотеценовых микотоксинов, токсическое действие которых характеризуется поражением кроветворных и иммунокомпетентных органов, запуская стрессовые реакции эндоплазматического ретикулума, развитием геморрагического синдрома, лейкопенией, анемией, поражением функций желудочно-кишечного тракта. Т-2 токсин обладает высокой острой токсичностью (LD для различных видов млекопитающих от 3 до 10 мг/кг массы тела). В связи с этим установлена ПДК на содержание Т-2 токсина в пищевых продуктах на уровне 0,1 мг/кг.
Многие люди предпочитают лечиться фитопрепаратами и травяными сборами, полагая, что они полезнее для здоровья. Некоторые из них могут содержать плесневые грибки, продуцирующие опасные для человека токсины. Для исследования группа ученых Университета Пешавара в Пакистане выбрала 30 образцов наиболее используемых растительных средств, в 90% проб была обнаружена плесень, причем часто содержание микотоксинов превышал допустимые уровни нормы [Bashir Ahmad, Samina Ashiq, Arshad Hussain, Shumaila Bashir, Mubbashir Hussain /Evaluation of mycotoxins, mycobiota, and toxigenic fungi in selected medicinal plants of Khyber Pakhtunkhwa, Paristan // Fungal Biology, Volum 118, Issues 9-10, September-October 2014, Pages 776-784]. Идентификация трихотеценов и, в частности, Т-2 представляет определенные трудности, несмотря на то, что к настоящему времени уже разработана целая система подходов, обеспечивающая контроль за содержанием трихотеценов в продуктах сельскохозяйственного производства растительного происхождения. Официальные методы анализа микотоксинов обычно требуют сложное оборудование, как в случае тонкослойной хроматографии для определения Т-2 токсина, в сочетании с процедурами его извлечения при пробоподготовки проб. В течение примерно последних шестнадцати лет произошел переход к использованию более простых аналитических процедур, основанных на применении аффинных биосенсоров за счет своей простоты и чувствительности. Как правило, использование электрохимических биосенсоров для определения микотоксинов включает использование специфических антител или аптамер в качестве аффинных лигандов, так рекомбенантные антитела и искусстветные рецепторы проявили свою потенциальною значимость в этой области. Таким образом, в связи с высокой токсичностью Т-2 токсина и малыми МДУ к методу определения его в пищевых продуктах питания, кормах сельскохозяйственного производства, БАДах и лекарствах растительного происхождения предъявляются особые требования по чувствительности, селективности и воспроизводимости.
В прототипе описан способ определения Т-2 токсина методом амперометрического обнаружения с использованием электрохимического биосенсора на основе ферментативных продуктов реакции [D. Compagnone, К. Van Velzen, М. Del Carlo, Marcello Mascini, A. Visconti / Chapter 29 Rapid detection of organophosphates, Ochratoxin A, and Fusarium sp. In durum wheat via screen printed based electrochemical sensors // Comprehensive Analytical Chemistry. Volume 49, 2007, Pages 687-718]. В предлагаемом способе определение Т-2 токсина осложнено использованием модифицирующего агента, вследствие чего увеличивается суммарное время анализа.
В аналогичных работах описано определение Т-2 токсина электрохимическим методом с помощью электрохимического иммуносенсора с использованием композиционных материалов, таких как фуллерена С-60, ионной жидкости и ферроцена на хитозановой пленке на стеклоуглеродном электроде [Juan С. Vidal, Laura Bonel, Alba Ezquerra, Susana and others / Electrochemical affinity biosensors for detection of mycotoxins: A review // Biosensors and Bioelectronics. Volum 49, 15 November 2013, Pages 146-158] в продуктах детского питания. Те же авторы провели модифицирование золотого электрода screen-printed с использованием моноклонального антитела для определения Т-2 токсина в диапазоне концентраций от 1 до 1000 нг/мл. В предложенной работе золотой печатный электрод требует обновления и нанесения модификатора, что ограничивает применение данного метода с точки зрения трудоемкости и использования дополнительных химических реагентов.
Задачей заявленного изобретения является применение электродов из нетоксичного материала и определение Т-2 токсина методом дифференциальной вольтамперометрии в присутствии растворенного кислорода без дополнительного введения в фоновый электролит восстановителя, а также расширение диапазона определяемых концентраций и разработки экспресс-технологии оценки Т-2 токсина в течение 30-40 мин.
Поставленная задача достигается тем, что способ количественного определения Т-2 токсина включает перевод Т-2 токсина из пробы в раствор и вольтамперометрическое определение с использованием индикаторного стеклоуглеродного электрода. При этом накопление Т-2 токсина в перемешиваемом растворе проводят в течение 30 с при потенциале электролиза ЕЭ=(-0,5±0,05)В (табл.1) относительного насыщенного хлоридсеребряного электрода на фоне 0,1 М нитрата калия (KNO3) с последующей регистрацией катодных пиков в дифференциальном режиме съемки вольтамперограмм при скорости развертки потенциала 30 мВ/с и концентрацию Т-2 токсина определяют по высоте пика в диапазоне потенциалов Еп=(-1,25±0,35)В методом добавок аттестованных смесей.
В предлагаемом способе установлена способность Т-2 токсина восстанавливаться на углеродных электродах различных типов. Для выбора индикаторного электрода использовали графитовый электрод, пропитанный полиэтиленом с парафином в вакууме, стеклоуглеродный и углеситаловый электроды. Использование таких электродов обусловлено их высокой химической и электрохимической устойчивостью, отсутствием токсической ртути, широкой областью рабочих потенциалов, а также простотой механического обновления поверхности и требованиями техники безопасности. Использование в прототипах модифицированного стеклоуглеродного электрода/графитового печатного электрода с нанесением фермента на рабочую поверхность требует дополнительных химических реактивов и постоянного обновления поверхности электрода перед каждым анализом, что неудобно при проведении серийных анализов. Способность к электровосстановлению Т-2 токсина зависит от материала электрода и состояния его поверхности. Наибольшую величину аналитического сигнала, наименьшее значение остаточного тока и лучшую воспроизводимость сигналов на вольтамперограмме наблюдали на стеклоуглеродном электроде, который и был выбран в качестве рабочего (в аналоге в качестве индикаторного электрода использовали модифицированный СУ электрод с использованием композиционных материалов, таких как фуллерена С-60, ионной жидкости и ферроцена на хитозановой пленке).
Абсолютной новизной является разработка вольтамперометрического определения Т-2 токсина посредством измерения токов аналитического сигнала в приложенном напряжении, экспериментально установленный фоновый электролит - 0,1 М раствора нитрата калия (KNO3) с рН=4-5, который позволяет с хорошей воспроизводимостью проводить ИВ - измерения в присутствии растворенного кислорода без дополнительного введения восстановителя.
Другим отличительным признаком является использование трехэлектродной ячейки: индикаторный электрод - стеклоуглеродный; вспомогательный и сравнения - хлоридсеребряные электроды. Предварительный электролиз при потенциале (-0,5±0,05)В с последующим катодным растворением осадка позволяет регистрировать вольтамперограммы с четко выраженным максимумом при значении потенциала (-1,25±0,35) В.
Установленные условия проведения электродного процесса позволили количественно определять Т-2 токсин на основе реакции электровосстановления. Предлагаемый вольтамперометрический способ позволил сократить количество используемых реактивов, в частности, аптамеров для рекомбинантного моделирования поверхности индикаторных электродов, а также проводить измерения в присутствии растворенного кислорода и существенно улучшить метрологические характеристики анализа Т-2 токсина. Линейный диапазон определяемых концентраций 1-10-5÷6-10-3 мг/мл. Относительное стандартное отклонение (Sr) не более 20%.
Измерения проводили на компьютеризованных вольтамперометрических анализаторах СТА (ООО «ИТМ», г. Томск).
На Фиг. 1 представлено адсорбционное инверсионное вольтамперметрическое определение Т-2 токсина на стеклоуглеродном электроде. Концентрирование 30 сек при -0,5 В (метод добавок): 1-10 мл 0,1 М KNO3; 2-10 мл 0,1 М KNO3+0,02 мл Т-2 токсина; 3-10 мл 0,1 М KNO3+0,04 мл Т-2 токсина.
Пример 1. Определение содержания Т-2 токсина на уровне 0,0002 мг/мл.
В кварцевый стаканчик емкостью 20 мл наливают 10 мл 0,1 М раствора нитрата калия. Стаканчик с раствором помещают в электролитическую ячейку. Опускают в раствор электроды (индикаторный - стеклоуглеродный, вспомагательный и сравнения - хлоридсеребряные). Проводят электронакопление при потенциале (-0,5±0,05) В в течение 30 с при перемешивании раствора. По окончании электролиза начинают регистрацию вольтамперограммы в диапазоне потенциалов от -0,5 до -1,7 В (Фиг. 1, график 1). Отсутствие пиков свидетельствует о чистоте фона. Затем добавляют 0,02 мл стандартного раствора Т-2 токсина концентрации 10 мкг/см3 и проводят электронакопление при потенциале (-0,5±0,05) В в течение 30 с при перемешивании раствора с последующей регистрацией вольтамперограммы в диапазоне (-1,25±0,35) В (отн. ХСЭ) при чувствительности прибора (0,5÷1)·10-9 А/мм (Фиг. 1, график 2). Проводят разметку вольтамперограмм, средняя высота анодного пика составляет 54,45 нА. Далее в стаканчик с анализируемым раствором с помощью дозатора вносят добавку аттестованной смеси Т-2 токсина в объеме 0,02 мл концентрацией 0,01 мг/мл. Электронакопление и регистрацию аналитического сигнала проводят в тех же условиях (Фиг. 1, график 3). Пик регистрируют в диапазоне потенциалов от (-1,25±0,35)В (отн. ХСЭ), средняя высота пика составляет 87,83 нА.
Пример 2. Определение содержание Т-2 токсина в отрубях диетических пшеничных «Дивинка».
При отборе пробы для анализа Т-2 токсина следует руководствоваться требованиями ГОСТа 1243-66 «Сельскохозяйственная продукция. Методы отбора образцов при карантинном досмотре и экспертизе». Пробоподготовку для анализа Т-2 токсина проводят методом жидкостно-жидкостной экстракции с использованием соотношения CH3CN:KCl (9:1) и последующей очисткой гексаном и бензолом. Отобранную пробу измельчают в течение 1-2 минут в кофемолке или лабораторной мельнице. Навеску 20 г измельченного продукта помещают в плоскодонную коническу колбу на 250 мл, добавляют 10 мл 4% раствора хлористого калия и 90 мл ацетонитрила. Встряхивают на аппарате для встряхивания в течение 30 минут. Полученную смесь фильтруют через бумажный складчатый фильтр в мерный цилиндр, отбирают 70 мл фильтрата (аликвота соответствует 14 г исходного образца). В делительную воронку на 250 или 500 мл переносят 70 мл фильтрата, добавляют 50 мл гексана (или гептана). После встряхивания и разделения слоев верхний гексановый слой отбрасывают. Нижний ацетонитрильный слой еще дважды встряхивают с 40 мл гексана, каждый раз отбирая верхний гексановый слой. Ацетонитрильный слой разбавляют 17 мл дистиллированной воды и экстрагируют 50 и 25 мл бензола. Верхние бензольные слои отделяют и сушат безводным сернокислым натрием (10-15 г) в течение 30 минут. Раствор фильтруют через химическую воронку с кусочком ваты в кругло донную колбу на 250 мл. Сернокислый натрий промывают 10 мл бензола и отфильтровывают бензол в ту же круглодонную колбу. Упаривают бензольный раствор на ротационном испарителе при температуре водяной бани не выше 45-50°C досуха. Остаток растворяют в 200-300 мкл ацетонитрила. Полученный раствор является подготовленной пробой для вольтамперометрического измерения. Затем 0,02 мл полученного анализируемого раствора вносят в кварцевый стаканчик с фоновым раствором. Электронакопление и регистрацию аналитического сигнала проводят в тех же условиях. Катодный пик Т-2 токсина фиксируют в диапазоне (-1,25±0,35)В на стеклоуглеродном электроде при чувствительности прибора (1÷5) 10-8 А/мм в дифференциальном режиме съемки вольтамперограмм. Массовую концентрацию Т-2 токсина в пробе оценивают методом добавок аттестованных смесей, измеряя высоту катодных пиков по формуле (1):
Figure 00000002
где
X1 - содержание Т-2 токсина в анализируемой пробе, мг/мл;
Сд - концентрация аттестованной смеси /АС/ Т-2 токсина, из которой делается добавка к анализируемой пробе, мг/мл;
Vд - объем добавки АС Т-2 токсина, мл;
I1 - величина максимального тока компонента в анализируемой пробе, нА;
I2 - величина максимального тока компонента в пробе с добавкой АС, нА;
Vал - объем навески пробы, взятой для анализа, мл.
Время анализа одной пробы без учета времени пробоподготовки занимает около 20 минут.
Таким образом, впервые установлена способность количественного химического анализа Т-2 токсина по пикам электровостановления его на стеклоуглеродном электроде (в аналогах количественное определение Т-2 токсина проводят на золотом печатном электроде или модифицированном стеклоуглеродном электроде с использованием амперометрических биосенсоров или электрохимических иммунносенсоров).
Предложенный способ прост, не требует большого количества реактивов и трудозатрат и может быть приемлем в любой химической лаборатории, имеющей полярограф, особенно в настоящее время, когда налажен выпуск отечественной и зарубежной электроаппаратуры с контрольным управлением и обработкой данных (анализаторы типа СТА, ТА и др.). Предложенный способ может быть использован в медицине, фармакокинетических и фармацевтических исследованиях, сельскохозяйственной и пищевой промышленности, для разработки методик анализа Т-2 токсина и родственных ему соединений в сложных многокомпонентных биосистемах (кровь, моча). Определение концентраций в диапазоне 1·10-5÷6·10-3 мг/мл важно для пищевой и фармацевтической промышленности, в лекарственных растениях растительного происхождения.
Способ количественного определения Т-2 токсина методом дифференциальной вольтамперометрии
Figure 00000003

Claims (1)

  1. Способ количественного определения Т-2 токсина, включающий перевод Т-2 токсина из пробы в раствор и вольтамперометрическое определение с использованием индикаторного стеклоуглеродного электрода, отличающийся тем, что используют дифференциальную вольтамперометрию, при этом накопление Т-2 токсина в перемешиваемом растворе проводят в течение 30 с при потенциале электролиза Eэ=(-0,5±0,05) В относительно насыщенного хлоридсеребряного электрода на фоне 0,1 М нитрата калия с последующей регистрацией катодных пиков в дифференциальном режиме съемки вольтамперограмм при скорости развертки потенциала 30 мВ/с и концентрацию Т-2 токсина определяют по высоте пика в диапазоне потенциалов Eп=(-1,25±0,35) В методом добавок аттестованных смесей.
RU2015103279/28A 2015-02-02 2015-02-02 Способ количественного определения т-2 токсина методом дифференциальной вольтамперометрии RU2580412C1 (ru)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2015103279/28A RU2580412C1 (ru) 2015-02-02 2015-02-02 Способ количественного определения т-2 токсина методом дифференциальной вольтамперометрии

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2015103279/28A RU2580412C1 (ru) 2015-02-02 2015-02-02 Способ количественного определения т-2 токсина методом дифференциальной вольтамперометрии

Publications (1)

Publication Number Publication Date
RU2580412C1 true RU2580412C1 (ru) 2016-04-10

Family

ID=55794082

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
RU2015103279/28A RU2580412C1 (ru) 2015-02-02 2015-02-02 Способ количественного определения т-2 токсина методом дифференциальной вольтамперометрии

Country Status (1)

Country Link
RU (1) RU2580412C1 (ru)

Citations (5)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US5641632A (en) * 1983-01-10 1997-06-24 Gen-Probe Incorporated Method for preparing rRNA for hybridization with a probe
UA26008U (en) * 2007-05-16 2007-08-27 Karazin Kharkiv Nat University Method for determining content of trichotecene mycotoxins and zearalenone in grain
EP2322649A1 (en) * 2001-03-02 2011-05-18 Ibis Biosciences, Inc. Method for rapid detection and identification of bioagents
CN203203997U (zh) * 2013-04-23 2013-09-18 济南大学 一种检测呕吐毒素和t-2毒素的双通道免疫传感器
RU2514828C2 (ru) * 2012-07-11 2014-05-10 Федеральное государственное бюджетное учреждение "Федеральный центр охраны здоровья животных" (ФГБУ "ВНИИЗЖ") Способ определения микотоксинов в продуктах животного и растительного происхождения

Patent Citations (5)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US5641632A (en) * 1983-01-10 1997-06-24 Gen-Probe Incorporated Method for preparing rRNA for hybridization with a probe
EP2322649A1 (en) * 2001-03-02 2011-05-18 Ibis Biosciences, Inc. Method for rapid detection and identification of bioagents
UA26008U (en) * 2007-05-16 2007-08-27 Karazin Kharkiv Nat University Method for determining content of trichotecene mycotoxins and zearalenone in grain
RU2514828C2 (ru) * 2012-07-11 2014-05-10 Федеральное государственное бюджетное учреждение "Федеральный центр охраны здоровья животных" (ФГБУ "ВНИИЗЖ") Способ определения микотоксинов в продуктах животного и растительного происхождения
CN203203997U (zh) * 2013-04-23 2013-09-18 济南大学 一种检测呕吐毒素和t-2毒素的双通道免疫传感器

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Safavi et al. Simultaneous determination of dopamine, ascorbic acid, and uric acid using carbon ionic liquid electrode
Wu et al. Sensitive electrochemical detection of enrofloxacin in eggs based on carboxylated multi-walled carbon nanotubes-reduced graphene oxide nanocomposites: Molecularly imprinted recognition versus direct electrocatalytic oxidation
De Souza et al. The use of a gold disc microelectrode for the determination of copper in human sweat
Li et al. Microfluidic paper-based chip for parathion-methyl detection based on a double catalytic amplification strategy
CN111060573B (zh) CoFe普鲁士蓝类似物修饰电极及其在同时测定多巴胺和5-羟色胺含量中的应用
CN107064105A (zh) 一种同时检测水产品中日落黄和孔雀石绿的方法
CN107727720A (zh) HKUST‑1(Cu‑MOFs)在制备葡萄糖传感器用电极中的应用
Giacomino et al. Development of an easy portable procedure for on-site determination of mercury and methylmercury
Dhamu et al. Environmental biosensors for agro-safety based on electrochemical sensing mechanism with an emphasis on pesticide screening
Chen et al. Novel electrochemical sensor modified with molecularly imprinted polymers for determination of enrofloxacin in marine environment
CN105158453B (zh) 一种用于壬基酚检测的无标记电化学免疫传感器的制备方法
Rahman et al. Development of electrochemical sensor for simultaneous determination of Cd (II) and Hg (II) ion by exploiting newly synthesized cyclic dipeptide
Abid et al. A novel 2D-GO@ WS2 electrochemical platform for the determination of thiram fungicide
RU2580412C1 (ru) Способ количественного определения т-2 токсина методом дифференциальной вольтамперометрии
Kumaravel Silver nanoparticle-modified electrodes for the electrochemical detection of neonicotinoid pesticide: clothianidin
RU2381502C2 (ru) Способ количественного определения гесперидина методом дифференциальной вольтамперометрии
Sarbandian et al. An electrochemical sensor based on a modified glassy carbon electrode for detection of epinephrine in the presence of theophylline
Mecheri et al. New modified selective platinum electrode based on poly (ethylene glycol) for Iron (III) detection in real water
Suo et al. Construction of an electrochemical–fluorescent dual-mode sensor with a dual-mode signal AgNC probe synthesized from cytosine-rich DNA for OTA detection
Benvidi et al. Construction of a nanocomposite sensor by the modification of a carbon-paste electrode with reduced graphene oxide and a hydroquinone derivative: simultaneous determination of glutathione and penicillamine
Hua-Li et al. A label-free immunosensor for microcystins-LR based on graphene and gold Nanocage
Austin et al. DETERMINATION OF CHLORIDES IN WHOLE BLOOD.
RU2224997C1 (ru) Вольтамперометрический способ определения суммарной активности антиоксидантов
RU2534732C1 (ru) Способ количественного определения афлатоксина в1 методом дифференциальной вольтамперометрии
Shen et al. Chitosan and nafion assisted modification of enzyme-free electrochemical immunosensors for the detection of tetrodotoxin

Legal Events

Date Code Title Description
MM4A The patent is invalid due to non-payment of fees

Effective date: 20180203