RU2574926C2 - Липосомные композиции, используемые для доставки лекарственных средств - Google Patents
Липосомные композиции, используемые для доставки лекарственных средств Download PDFInfo
- Publication number
- RU2574926C2 RU2574926C2 RU2011112461/15A RU2011112461A RU2574926C2 RU 2574926 C2 RU2574926 C2 RU 2574926C2 RU 2011112461/15 A RU2011112461/15 A RU 2011112461/15A RU 2011112461 A RU2011112461 A RU 2011112461A RU 2574926 C2 RU2574926 C2 RU 2574926C2
- Authority
- RU
- Russia
- Prior art keywords
- liposomes
- liposome
- drug
- composition
- lipid
- Prior art date
Links
- 239000003814 drug Substances 0.000 title claims abstract description 418
- 239000000203 mixture Substances 0.000 title claims abstract description 191
- 229940079593 drugs Drugs 0.000 title claims description 376
- 239000002502 liposome Substances 0.000 claims abstract description 772
- 150000002632 lipids Chemical class 0.000 claims abstract description 294
- 239000000126 substance Substances 0.000 claims abstract description 131
- 239000011780 sodium chloride Substances 0.000 claims abstract description 93
- 235000000346 sugar Nutrition 0.000 claims abstract description 55
- 239000012528 membrane Substances 0.000 claims abstract description 50
- 150000003839 salts Chemical class 0.000 claims abstract description 47
- 229920005862 polyol Polymers 0.000 claims abstract description 44
- 150000003077 polyols Chemical class 0.000 claims abstract description 42
- 239000002253 acid Substances 0.000 claims abstract description 18
- 239000003795 chemical substances by application Substances 0.000 claims abstract description 15
- 125000002091 cationic group Chemical group 0.000 claims abstract description 14
- 230000000118 anti-eoplastic Effects 0.000 claims abstract description 13
- 150000002772 monosaccharides Chemical group 0.000 claims abstract description 10
- 125000000524 functional group Chemical group 0.000 claims abstract description 9
- 150000002016 disaccharides Chemical class 0.000 claims abstract description 8
- 239000002552 dosage form Substances 0.000 claims abstract 2
- 238000007911 parenteral administration Methods 0.000 claims abstract 2
- UCFGDBYHRUNTLO-QHCPKHFHSA-N Topotecan Chemical compound C1=C(O)C(CN(C)C)=C2C=C(CN3C4=CC5=C(C3=O)COC(=O)[C@]5(O)CC)C4=NC2=C1 UCFGDBYHRUNTLO-QHCPKHFHSA-N 0.000 claims description 192
- 229960000303 topotecan Drugs 0.000 claims description 187
- 150000003904 phospholipids Chemical class 0.000 claims description 121
- -1 boric acid ester Chemical class 0.000 claims description 92
- 210000004369 Blood Anatomy 0.000 claims description 91
- 239000008280 blood Substances 0.000 claims description 91
- 235000002639 sodium chloride Nutrition 0.000 claims description 91
- FAPWRFPIFSIZLT-UHFFFAOYSA-M sodium chloride Chemical compound [Na+].[Cl-] FAPWRFPIFSIZLT-UHFFFAOYSA-M 0.000 claims description 76
- 206010028980 Neoplasm Diseases 0.000 claims description 59
- VSJKWCGYPAHWDS-FQEVSTJZSA-N Camptothecin Chemical compound C1=CC=C2C=C(CN3C4=CC5=C(C3=O)COC(=O)[C@]5(O)CC)C4=NC2=C1 VSJKWCGYPAHWDS-FQEVSTJZSA-N 0.000 claims description 48
- 241000700159 Rattus Species 0.000 claims description 46
- 229920001223 polyethylene glycol Polymers 0.000 claims description 35
- 230000000259 anti-tumor Effects 0.000 claims description 30
- 230000001988 toxicity Effects 0.000 claims description 29
- 231100000419 toxicity Toxicity 0.000 claims description 29
- 101700025368 ERBB2 Proteins 0.000 claims description 28
- 102100016662 ERBB2 Human genes 0.000 claims description 27
- 229960004768 irinotecan Drugs 0.000 claims description 27
- UWKQSNNFCGGAFS-XIFFEERXSA-N Irinotecan Chemical compound C1=C2C(CC)=C3CN(C(C4=C([C@@](C(=O)OC4)(O)CC)C=4)=O)C=4C3=NC2=CC=C1OC(=O)N(CC1)CCC1N1CCCCC1 UWKQSNNFCGGAFS-XIFFEERXSA-N 0.000 claims description 26
- 239000007864 aqueous solution Substances 0.000 claims description 26
- 102000004169 proteins and genes Human genes 0.000 claims description 24
- 108090000623 proteins and genes Proteins 0.000 claims description 24
- WQZGKKKJIJFFOK-VFUOTHLCSA-N β-D-glucose Chemical compound OC[C@H]1O[C@@H](O)[C@H](O)[C@@H](O)[C@@H]1O WQZGKKKJIJFFOK-VFUOTHLCSA-N 0.000 claims description 24
- 230000036499 Half live Effects 0.000 claims description 20
- QAOWNCQODCNURD-UHFFFAOYSA-L sulfate group Chemical group S(=O)(=O)([O-])[O-] QAOWNCQODCNURD-UHFFFAOYSA-L 0.000 claims description 20
- 241000124008 Mammalia Species 0.000 claims description 18
- 239000000651 prodrug Substances 0.000 claims description 17
- 229940002612 prodrugs Drugs 0.000 claims description 17
- WEPNHBQBLCNOBB-FZJVNAOYSA-N Sucrose Octasulfate Chemical group OS(=O)(=O)O[C@@H]1[C@H](OS(O)(=O)=O)[C@H](COS(=O)(=O)O)O[C@]1(COS(O)(=O)=O)O[C@@H]1[C@H](OS(O)(=O)=O)[C@@H](OS(O)(=O)=O)[C@@H](OS(O)(=O)=O)[C@@H](COS(O)(=O)=O)O1 WEPNHBQBLCNOBB-FZJVNAOYSA-N 0.000 claims description 16
- 230000001965 increased Effects 0.000 claims description 16
- QAOWNCQODCNURD-UHFFFAOYSA-N Sulfuric acid Chemical compound OS(O)(=O)=O QAOWNCQODCNURD-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims description 14
- 108090001123 antibodies Proteins 0.000 claims description 14
- 102000004965 antibodies Human genes 0.000 claims description 14
- 230000027455 binding Effects 0.000 claims description 13
- CZMRCDWAGMRECN-UGDNZRGBSA-N D-sucrose Chemical compound O[C@H]1[C@H](O)[C@@H](CO)O[C@@]1(CO)O[C@@H]1[C@H](O)[C@@H](O)[C@H](O)[C@@H](CO)O1 CZMRCDWAGMRECN-UGDNZRGBSA-N 0.000 claims description 11
- CZMRCDWAGMRECN-GDQSFJPYSA-N Sucrose Natural products O([C@@H]1[C@H](O)[C@@H](O)[C@H](O)[C@H](CO)O1)[C@@]1(CO)[C@H](O)[C@@H](O)[C@@H](CO)O1 CZMRCDWAGMRECN-GDQSFJPYSA-N 0.000 claims description 11
- 239000005720 sucrose Substances 0.000 claims description 11
- 125000000129 anionic group Chemical group 0.000 claims description 10
- LYCAIKOWRPUZTN-UHFFFAOYSA-N glycol Chemical compound OCCO LYCAIKOWRPUZTN-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims description 9
- 102000017256 epidermal growth factor-activated receptor activity proteins Human genes 0.000 claims description 8
- 108040009258 epidermal growth factor-activated receptor activity proteins Proteins 0.000 claims description 8
- 102000005962 receptors Human genes 0.000 claims description 7
- 108020003175 receptors Proteins 0.000 claims description 7
- UNXHWFMMPAWVPI-QWWZWVQMSA-N Threitol Chemical compound OC[C@@H](O)[C@H](O)CO UNXHWFMMPAWVPI-QWWZWVQMSA-N 0.000 claims description 6
- 239000000427 antigen Substances 0.000 claims description 6
- 108091007172 antigens Proteins 0.000 claims description 6
- 102000038129 antigens Human genes 0.000 claims description 6
- PEDCQBHIVMGVHV-UHFFFAOYSA-N glycerine Chemical compound OCC(O)CO PEDCQBHIVMGVHV-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims description 6
- 230000002401 inhibitory effect Effects 0.000 claims description 6
- 235000002949 phytic acid Nutrition 0.000 claims description 6
- 239000003112 inhibitor Substances 0.000 claims description 5
- 230000003993 interaction Effects 0.000 claims description 5
- FUXVKZWTXQUGMW-FQEVSTJZSA-N 9-Aminocamptothecin Chemical compound C1=CC(N)=C2C=C(CN3C4=CC5=C(C3=O)COC(=O)[C@]5(O)CC)C4=NC2=C1 FUXVKZWTXQUGMW-FQEVSTJZSA-N 0.000 claims description 4
- BJHIKXHVCXFQLS-UYFOZJQFSA-N Fructose Natural products OC[C@@H](O)[C@@H](O)[C@H](O)C(=O)CO BJHIKXHVCXFQLS-UYFOZJQFSA-N 0.000 claims description 4
- 229950002499 Fytic acid Drugs 0.000 claims description 4
- IMQLKJBTEOYOSI-GPIVLXJGSA-N Inositol-hexakisphosphate Chemical group OP(O)(=O)O[C@H]1[C@H](OP(O)(O)=O)[C@@H](OP(O)(O)=O)[C@H](OP(O)(O)=O)[C@H](OP(O)(O)=O)[C@@H]1OP(O)(O)=O IMQLKJBTEOYOSI-GPIVLXJGSA-N 0.000 claims description 4
- GUBGYTABKSRVRQ-UUNJERMWSA-N Lactose Natural products O([C@@H]1[C@H](O)[C@H](O)[C@H](O)O[C@@H]1CO)[C@H]1[C@@H](O)[C@@H](O)[C@H](O)[C@H](CO)O1 GUBGYTABKSRVRQ-UUNJERMWSA-N 0.000 claims description 4
- RVFGKBWWUQOIOU-NDEPHWFRSA-N Lurtotecan Chemical compound O=C([C@]1(O)CC)OCC(C(N2CC3=4)=O)=C1C=C2C3=NC1=CC=2OCCOC=2C=C1C=4CN1CCN(C)CC1 RVFGKBWWUQOIOU-NDEPHWFRSA-N 0.000 claims description 4
- 229950002654 Lurtotecan Drugs 0.000 claims description 4
- VQHSOMBJVWLPSR-WUJBLJFYSA-N Maltitol Chemical compound OC[C@H](O)[C@@H](O)[C@@H]([C@H](O)CO)O[C@H]1O[C@H](CO)[C@@H](O)[C@H](O)[C@H]1O VQHSOMBJVWLPSR-WUJBLJFYSA-N 0.000 claims description 4
- GUBGYTABKSRVRQ-YOLKTULGSA-N Maltose Natural products O([C@@H]1[C@H](O)[C@@H](O)[C@H](O)O[C@H]1CO)[C@@H]1[C@H](O)[C@@H](O)[C@@H](O)[C@@H](CO)O1 GUBGYTABKSRVRQ-YOLKTULGSA-N 0.000 claims description 4
- PYMYPHUHKUWMLA-LMVFSUKVSA-N Ribose Natural products OC[C@@H](O)[C@@H](O)[C@@H](O)C=O PYMYPHUHKUWMLA-LMVFSUKVSA-N 0.000 claims description 4
- VHXNKPBCCMUMSW-FQEVSTJZSA-N Rubitecan Chemical compound C1=CC([N+]([O-])=O)=C2C=C(CN3C4=CC5=C(C3=O)COC(=O)[C@]5(O)CC)C4=NC2=C1 VHXNKPBCCMUMSW-FQEVSTJZSA-N 0.000 claims description 4
- 229950009213 Rubitecan Drugs 0.000 claims description 4
- SRBFZHDQGSBBOR-SQOUGZDYSA-N Xylose Natural products O[C@@H]1CO[C@@H](O)[C@@H](O)[C@@H]1O SRBFZHDQGSBBOR-SQOUGZDYSA-N 0.000 claims description 4
- 150000001982 diacylglycerols Chemical class 0.000 claims description 4
- 239000003534 dna topoisomerase inhibitor Substances 0.000 claims description 4
- GUBGYTABKSRVRQ-XLOQQCSPSA-N lactose Chemical compound O[C@@H]1[C@@H](O)[C@@H](O)[C@@H](CO)O[C@H]1O[C@@H]1[C@@H](CO)O[C@H](O)[C@H](O)[C@H]1O GUBGYTABKSRVRQ-XLOQQCSPSA-N 0.000 claims description 4
- 239000008101 lactose Substances 0.000 claims description 4
- HAWSQZCWOQZXHI-FQEVSTJZSA-N 10-Hydroxycamptothecin Chemical compound C1=C(O)C=C2C=C(CN3C4=CC5=C(C3=O)COC(=O)[C@]5(O)CC)C4=NC2=C1 HAWSQZCWOQZXHI-FQEVSTJZSA-N 0.000 claims description 3
- YXKRRCXCDMNRAU-UHFFFAOYSA-N 6-[2-(dimethylamino)ethylamino]-5H-indeno[2,1-c]quinoline-3,7-dione Chemical compound C1=CC=C2C(=O)C3=C(NCCN(C)C)NC4=CC(=O)C=CC4=C3C2=C1 YXKRRCXCDMNRAU-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims description 3
- MYQKIWCVEPUPIL-QFIPXVFZSA-N 7-Ethylcamptothecin Chemical compound C1=CC=C2C(CC)=C(CN3C(C4=C([C@@](C(=O)OC4)(O)CC)C=C33)=O)C3=NC2=C1 MYQKIWCVEPUPIL-QFIPXVFZSA-N 0.000 claims description 3
- WQZGKKKJIJFFOK-GASJEMHNSA-N D-Glucose Natural products OC[C@H]1OC(O)[C@H](O)[C@@H](O)[C@@H]1O WQZGKKKJIJFFOK-GASJEMHNSA-N 0.000 claims description 3
- FBPFZTCFMRRESA-KAZBKCHUSA-N D-Mannitol Natural products OC[C@@H](O)[C@H](O)[C@H](O)[C@H](O)CO FBPFZTCFMRRESA-KAZBKCHUSA-N 0.000 claims description 3
- FBPFZTCFMRRESA-JGWLITMVSA-N D-glucitol Chemical compound OC[C@H](O)[C@@H](O)[C@H](O)[C@H](O)CO FBPFZTCFMRRESA-JGWLITMVSA-N 0.000 claims description 3
- 102000027776 ERBB3 Human genes 0.000 claims description 3
- 101700041204 ERBB3 Proteins 0.000 claims description 3
- 101700023619 ERBB4 Proteins 0.000 claims description 3
- 102000009465 Growth Factor Receptors Human genes 0.000 claims description 3
- 108010009202 Growth Factor Receptors Proteins 0.000 claims description 3
- FBPFZTCFMRRESA-KVTDHHQDSA-N Mannitol Chemical compound OC[C@@H](O)[C@@H](O)[C@H](O)[C@H](O)CO FBPFZTCFMRRESA-KVTDHHQDSA-N 0.000 claims description 3
- 102100016102 NTRK1 Human genes 0.000 claims description 3
- 101700043017 NTRK1 Proteins 0.000 claims description 3
- 239000002870 angiogenesis inducing agent Substances 0.000 claims description 3
- 125000001495 ethyl group Chemical group [H]C([H])([H])C([H])([H])* 0.000 claims description 3
- 239000008103 glucose Substances 0.000 claims description 3
- 239000000594 mannitol Substances 0.000 claims description 3
- 235000010355 mannitol Nutrition 0.000 claims description 3
- 239000002157 polynucleotide Substances 0.000 claims description 3
- 229920000023 polynucleotide Polymers 0.000 claims description 3
- WXZMFSXDPGVJKK-UHFFFAOYSA-N 2,2-bis(hydroxymethyl)propane-1,3-diol Chemical compound OCC(CO)(CO)CO WXZMFSXDPGVJKK-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims description 2
- GZCGUPFRVQAUEE-KCDKBNATSA-N D-(+)-Galactose Natural products OC[C@@H](O)[C@H](O)[C@H](O)[C@@H](O)C=O GZCGUPFRVQAUEE-KCDKBNATSA-N 0.000 claims description 2
- FBPFZTCFMRRESA-FSIIMWSLSA-N D-Glucitol Natural products OC[C@H](O)[C@H](O)[C@@H](O)[C@H](O)CO FBPFZTCFMRRESA-FSIIMWSLSA-N 0.000 claims description 2
- 239000004386 Erythritol Substances 0.000 claims description 2
- 229940009714 Erythritol Drugs 0.000 claims description 2
- 239000005715 Fructose Substances 0.000 claims description 2
- CDAISMWEOUEBRE-GPIVLXJGSA-N Inositol Chemical compound O[C@H]1[C@H](O)[C@@H](O)[C@H](O)[C@H](O)[C@@H]1O CDAISMWEOUEBRE-GPIVLXJGSA-N 0.000 claims description 2
- 229960000367 Inositol Drugs 0.000 claims description 2
- 102000007238 Transferrin Receptors Human genes 0.000 claims description 2
- 108010033576 Transferrin Receptors Proteins 0.000 claims description 2
- HDTRYLNUVZCQOY-LIZSDCNHSA-N Trehalose Chemical compound O[C@@H]1[C@@H](O)[C@H](O)[C@@H](CO)O[C@@H]1O[C@@H]1[C@H](O)[C@@H](O)[C@H](O)[C@@H](CO)O1 HDTRYLNUVZCQOY-LIZSDCNHSA-N 0.000 claims description 2
- HDTRYLNUVZCQOY-WSWWMNSNSA-N Trehalose Natural products O[C@@H]1[C@@H](O)[C@@H](O)[C@@H](CO)O[C@@H]1O[C@@H]1[C@H](O)[C@@H](O)[C@@H](O)[C@@H](CO)O1 HDTRYLNUVZCQOY-WSWWMNSNSA-N 0.000 claims description 2
- 108091007928 VEGF receptors Proteins 0.000 claims description 2
- HEBKCHPVOIAQTA-SCDXWVJYSA-N Xylitol Chemical compound OC[C@H](O)[C@@H](O)[C@H](O)CO HEBKCHPVOIAQTA-SCDXWVJYSA-N 0.000 claims description 2
- 229960002675 Xylitol Drugs 0.000 claims description 2
- 229960003487 Xylose Drugs 0.000 claims description 2
- 239000004327 boric acid Substances 0.000 claims description 2
- 150000001783 ceramides Chemical class 0.000 claims description 2
- 230000001809 detectable Effects 0.000 claims description 2
- 235000019414 erythritol Nutrition 0.000 claims description 2
- 150000004676 glycans Polymers 0.000 claims description 2
- 239000000832 lactitol Substances 0.000 claims description 2
- 235000010448 lactitol Nutrition 0.000 claims description 2
- 229960003451 lactitol Drugs 0.000 claims description 2
- 239000000845 maltitol Substances 0.000 claims description 2
- 235000010449 maltitol Nutrition 0.000 claims description 2
- 229940035436 maltitol Drugs 0.000 claims description 2
- 239000003550 marker Substances 0.000 claims description 2
- 229920001184 polypeptide Polymers 0.000 claims description 2
- 229920001282 polysaccharide Polymers 0.000 claims description 2
- 239000005017 polysaccharide Substances 0.000 claims description 2
- 150000004804 polysaccharides Polymers 0.000 claims description 2
- 239000000600 sorbitol Substances 0.000 claims description 2
- 229960002920 sorbitol Drugs 0.000 claims description 2
- 235000010356 sorbitol Nutrition 0.000 claims description 2
- 102000035250 vitamin receptors Human genes 0.000 claims description 2
- 108091005505 vitamin receptors Proteins 0.000 claims description 2
- 239000000811 xylitol Substances 0.000 claims description 2
- 235000010447 xylitol Nutrition 0.000 claims description 2
- WQZGKKKJIJFFOK-PHYPRBDBSA-N α-D-galactose Chemical compound OC[C@H]1O[C@H](O)[C@H](O)[C@@H](O)[C@H]1O WQZGKKKJIJFFOK-PHYPRBDBSA-N 0.000 claims description 2
- 229920001477 hydrophilic polymer Polymers 0.000 claims 11
- 102000003915 DNA Topoisomerases Human genes 0.000 claims 2
- 108090000323 DNA Topoisomerases Proteins 0.000 claims 2
- 102000027777 ERBB4 Human genes 0.000 claims 2
- HEBKCHPVOIAQTA-QWWZWVQMSA-N Ribitol Natural products OC[C@@H](O)C(O)[C@H](O)CO HEBKCHPVOIAQTA-QWWZWVQMSA-N 0.000 claims 2
- DNIAPMSPPWPWGF-UHFFFAOYSA-N propylene glycol Chemical compound CC(O)CO DNIAPMSPPWPWGF-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims 2
- 241000260897 Acidota Species 0.000 claims 1
- 102000027760 ERBB2 Human genes 0.000 claims 1
- 102100008634 FGF2 Human genes 0.000 claims 1
- 101700082364 FGF2 Proteins 0.000 claims 1
- RPFYDENHBPRCTN-NRFANRHFSA-N Mdo-cpt Chemical compound C1=C2C=C(CN3C4=CC5=C(C3=O)COC(=O)[C@]5(O)CC)C4=NC2=CC2=C1OCO2 RPFYDENHBPRCTN-NRFANRHFSA-N 0.000 claims 1
- HEBKCHPVOIAQTA-ZXFHETKHSA-N Ribitol Chemical compound OC[C@H](O)[C@H](O)[C@H](O)CO HEBKCHPVOIAQTA-ZXFHETKHSA-N 0.000 claims 1
- 102000009484 Vascular Endothelial Growth Factor Receptors Human genes 0.000 claims 1
- 239000000853 adhesive Substances 0.000 claims 1
- 230000001070 adhesive Effects 0.000 claims 1
- QGZKDVFQNNGYKY-UHFFFAOYSA-N ammonia Chemical compound N QGZKDVFQNNGYKY-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims 1
- 150000001479 arabinose derivatives Chemical class 0.000 claims 1
- 230000021164 cell adhesion Effects 0.000 claims 1
- 150000001985 dialkylglycerols Chemical class 0.000 claims 1
- 235000014113 dietary fatty acids Nutrition 0.000 claims 1
- WREDNSAXDZCLCP-UHFFFAOYSA-N dithiocarboxylic acid group Chemical group C(=S)S WREDNSAXDZCLCP-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims 1
- 239000000194 fatty acid Substances 0.000 claims 1
- 150000004665 fatty acids Chemical class 0.000 claims 1
- 150000002191 fatty alcohols Chemical class 0.000 claims 1
- 102000006495 integrins Human genes 0.000 claims 1
- 108010044426 integrins Proteins 0.000 claims 1
- BJHIKXHVCXFQLS-PYWDMBMJSA-N keto-D-sorbose Chemical compound OC[C@@H](O)[C@H](O)[C@@H](O)C(=O)CO BJHIKXHVCXFQLS-PYWDMBMJSA-N 0.000 claims 1
- 230000003211 malignant Effects 0.000 claims 1
- 229960001855 mannitol Drugs 0.000 claims 1
- ABLZXFCXXLZCGV-UHFFFAOYSA-N phosphonic acid group Chemical group P(O)(O)=O ABLZXFCXXLZCGV-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims 1
- 150000003014 phosphoric acid esters Chemical class 0.000 claims 1
- 150000003432 sterols Chemical class 0.000 claims 1
- 235000003702 sterols Nutrition 0.000 claims 1
- 125000000542 sulfonic acid group Chemical group 0.000 claims 1
- AWIJRPNMLHPLNC-UHFFFAOYSA-N thiocarboxylic acid group Chemical group C(=S)O AWIJRPNMLHPLNC-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims 1
- 238000011068 load Methods 0.000 abstract description 67
- 230000000694 effects Effects 0.000 abstract description 26
- 238000000034 method Methods 0.000 abstract description 24
- 230000001575 pathological Effects 0.000 abstract description 2
- 239000000243 solution Substances 0.000 description 136
- GBABOYUKABKIAF-IELIFDKJSA-N vinorelbine Chemical compound C1N(CC=2C3=CC=CC=C3NC=22)CC(CC)=C[C@H]1C[C@]2(C(=O)OC)C1=CC([C@]23[C@H]([C@@]([C@H](OC(C)=O)[C@]4(CC)C=CCN([C@H]34)CC2)(O)C(=O)OC)N2C)=C2C=C1OC GBABOYUKABKIAF-IELIFDKJSA-N 0.000 description 106
- 229960002066 vinorelbine Drugs 0.000 description 106
- LFQSCWFLJHTTHZ-UHFFFAOYSA-N ethanol Chemical compound CCO LFQSCWFLJHTTHZ-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 75
- 210000004027 cells Anatomy 0.000 description 74
- 239000007924 injection Substances 0.000 description 73
- 150000003863 ammonium salts Chemical class 0.000 description 67
- ZMANZCXQSJIPKH-UHFFFAOYSA-N N,N-Diethylethanamine Substances CCN(CC)CC ZMANZCXQSJIPKH-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 66
- 238000002347 injection Methods 0.000 description 61
- 241001465754 Metazoa Species 0.000 description 58
- 150000001875 compounds Chemical class 0.000 description 51
- XLYOFNOQVPJJNP-UHFFFAOYSA-N water Substances O XLYOFNOQVPJJNP-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 50
- 229920000447 polyanionic polymer Chemical class 0.000 description 42
- 210000002381 Plasma Anatomy 0.000 description 40
- 230000037396 body weight Effects 0.000 description 40
- 210000004379 Membranes Anatomy 0.000 description 38
- 239000011148 porous material Substances 0.000 description 38
- HVYWMOMLDIMFJA-DPAQBDIFSA-N (3β)-Cholest-5-en-3-ol Chemical compound C1C=C2C[C@@H](O)CC[C@]2(C)[C@@H]2[C@@H]1[C@@H]1CC[C@H]([C@H](C)CCCC(C)C)[C@@]1(C)CC2 HVYWMOMLDIMFJA-DPAQBDIFSA-N 0.000 description 36
- 239000002609 media Substances 0.000 description 36
- ZMANZCXQSJIPKH-UHFFFAOYSA-O CC[NH+](CC)CC Chemical compound CC[NH+](CC)CC ZMANZCXQSJIPKH-UHFFFAOYSA-O 0.000 description 35
- HEMHJVSKTPXQMS-UHFFFAOYSA-M sodium hydroxide Chemical compound [OH-].[Na+] HEMHJVSKTPXQMS-UHFFFAOYSA-M 0.000 description 35
- QGZKDVFQNNGYKY-UHFFFAOYSA-O ammonium Chemical compound [NH4+] QGZKDVFQNNGYKY-UHFFFAOYSA-O 0.000 description 33
- 238000001125 extrusion Methods 0.000 description 32
- 239000011734 sodium Substances 0.000 description 32
- 239000008121 dextrose Substances 0.000 description 31
- 229940067631 Phospholipids Drugs 0.000 description 29
- GETQZCLCWQTVFV-UHFFFAOYSA-N Trimethylamine Chemical compound CN(C)C GETQZCLCWQTVFV-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 29
- 229920000388 Polyphosphate Polymers 0.000 description 28
- 231100000682 maximum tolerated dose Toxicity 0.000 description 28
- 239000001205 polyphosphate Substances 0.000 description 28
- 235000011176 polyphosphates Nutrition 0.000 description 28
- 239000004417 polycarbonate Substances 0.000 description 27
- 229920000515 polycarbonate Polymers 0.000 description 27
- 238000002360 preparation method Methods 0.000 description 27
- NRJAVPSFFCBXDT-HUESYALOSA-N 1,2-distearoyl-sn-glycero-3-phosphocholine Chemical compound CCCCCCCCCCCCCCCCCC(=O)OC[C@H](COP([O-])(=O)OCC[N+](C)(C)C)OC(=O)CCCCCCCCCCCCCCCCC NRJAVPSFFCBXDT-HUESYALOSA-N 0.000 description 26
- 229960004679 Doxorubicin Drugs 0.000 description 26
- OGWKCGZFUXNPDA-XQKSVPLYSA-N vincristine Chemical compound C([N@]1C[C@@H](C[C@]2(C(=O)OC)C=3C(=CC4=C([C@]56[C@H]([C@@]([C@H](OC(C)=O)[C@]7(CC)C=CCN([C@H]67)CC5)(O)C(=O)OC)N4C=O)C=3)OC)C[C@@](C1)(O)CC)CC1=C2NC2=CC=CC=C12 OGWKCGZFUXNPDA-XQKSVPLYSA-N 0.000 description 26
- AOJJSUZBOXZQNB-TZSSRYMLSA-N ADRIAMYCIN Chemical compound O([C@H]1C[C@@](O)(CC=2C(O)=C3C(=O)C=4C=CC=C(C=4C(=O)C3=C(O)C=21)OC)C(=O)CO)[C@H]1C[C@H](N)[C@H](O)[C@H](C)O1 AOJJSUZBOXZQNB-TZSSRYMLSA-N 0.000 description 25
- 150000001450 anions Chemical class 0.000 description 25
- 238000005538 encapsulation Methods 0.000 description 25
- 238000001990 intravenous administration Methods 0.000 description 24
- 229920000642 polymer Polymers 0.000 description 24
- 150000001412 amines Chemical class 0.000 description 23
- UIIMBOGNXHQVGW-UHFFFAOYSA-M buffer Substances [Na+].OC([O-])=O UIIMBOGNXHQVGW-UHFFFAOYSA-M 0.000 description 23
- 238000002296 dynamic light scattering Methods 0.000 description 22
- 238000000338 in vitro Methods 0.000 description 22
- 230000036231 pharmacokinetics Effects 0.000 description 22
- 239000002585 base Substances 0.000 description 21
- 235000018102 proteins Nutrition 0.000 description 21
- VEXZGXHMUGYJMC-UHFFFAOYSA-N HCl Chemical compound Cl VEXZGXHMUGYJMC-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 20
- 229960000633 Dextran Sulfate Drugs 0.000 description 19
- 206010058467 Lung neoplasm malignant Diseases 0.000 description 19
- 150000003868 ammonium compounds Chemical class 0.000 description 19
- 229910000041 hydrogen chloride Inorganic materials 0.000 description 19
- 235000021317 phosphate Nutrition 0.000 description 19
- 239000000725 suspension Substances 0.000 description 19
- 229940107161 Cholesterol Drugs 0.000 description 18
- 101710037934 QRSL1 Proteins 0.000 description 18
- NBIIXXVUZAFLBC-UHFFFAOYSA-K [O-]P([O-])([O-])=O Chemical compound [O-]P([O-])([O-])=O NBIIXXVUZAFLBC-UHFFFAOYSA-K 0.000 description 18
- 235000012000 cholesterol Nutrition 0.000 description 18
- 239000010452 phosphate Substances 0.000 description 18
- 239000003981 vehicle Substances 0.000 description 18
- 241000699660 Mus musculus Species 0.000 description 17
- 125000004432 carbon atoms Chemical group C* 0.000 description 17
- 230000003013 cytotoxicity Effects 0.000 description 17
- 231100000135 cytotoxicity Toxicity 0.000 description 17
- 201000005296 lung carcinoma Diseases 0.000 description 17
- 238000003860 storage Methods 0.000 description 17
- 229920005654 Sephadex Polymers 0.000 description 16
- 229920002684 Sepharose Polymers 0.000 description 16
- 210000003462 Veins Anatomy 0.000 description 16
- 229960004528 Vincristine Drugs 0.000 description 16
- 239000000969 carrier Substances 0.000 description 16
- 239000011159 matrix material Substances 0.000 description 16
- 239000012507 Sephadex™ Substances 0.000 description 15
- 239000012160 loading buffer Substances 0.000 description 14
- 230000000275 pharmacokinetic Effects 0.000 description 14
- 230000036328 Free drug Effects 0.000 description 13
- 239000008186 active pharmaceutical agent Substances 0.000 description 13
- 229930013930 alkaloids Natural products 0.000 description 13
- 238000004458 analytical method Methods 0.000 description 13
- 230000015572 biosynthetic process Effects 0.000 description 13
- 230000014759 maintenance of location Effects 0.000 description 13
- 238000002156 mixing Methods 0.000 description 13
- 125000000962 organic group Chemical group 0.000 description 13
- 229910052708 sodium Inorganic materials 0.000 description 13
- 206010006187 Breast cancer Diseases 0.000 description 12
- 241000863480 Vinca Species 0.000 description 12
- RTZKZFJDLAIYFH-UHFFFAOYSA-N diethyl ether Chemical compound CCOCC RTZKZFJDLAIYFH-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 12
- 238000005227 gel permeation chromatography Methods 0.000 description 12
- 239000011347 resin Substances 0.000 description 12
- 229920005989 resin Polymers 0.000 description 12
- KEAYESYHFKHZAL-UHFFFAOYSA-N sodium Chemical compound [Na] KEAYESYHFKHZAL-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 11
- 238000004448 titration Methods 0.000 description 11
- 201000011510 cancer Diseases 0.000 description 10
- HEDRZPFGACZZDS-UHFFFAOYSA-N chloroform Chemical compound ClC(Cl)Cl HEDRZPFGACZZDS-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 10
- 238000005755 formation reaction Methods 0.000 description 10
- 239000011521 glass Substances 0.000 description 10
- 239000001963 growth media Substances 0.000 description 10
- 125000002887 hydroxy group Chemical group [H]O* 0.000 description 10
- 238000010348 incorporation Methods 0.000 description 10
- 238000002955 isolation Methods 0.000 description 10
- 239000000047 product Substances 0.000 description 10
- 150000008163 sugars Chemical class 0.000 description 10
- 230000004580 weight loss Effects 0.000 description 10
- 229960003048 Vinblastine Drugs 0.000 description 9
- HOFQVRTUGATRFI-XQKSVPLYSA-N Vinblastine Chemical compound C([C@@H](C[C@]1(C(=O)OC)C=2C(=CC3=C([C@]45[C@H]([C@@]([C@H](OC(C)=O)[C@]6(CC)C=CCN([C@H]56)CC4)(O)C(=O)OC)N3C)C=2)OC)C[C@@](C2)(O)CC)N2CCC2=C1N=C1[C]2C=CC=C1 HOFQVRTUGATRFI-XQKSVPLYSA-N 0.000 description 9
- JXLYSJRDGCGARV-WWYNWVTFSA-N Vinblastine Natural products O=C(O[C@H]1[C@](O)(C(=O)OC)[C@@H]2N(C)c3c(cc(c(OC)c3)[C@]3(C(=O)OC)c4[nH]c5c(c4CCN4C[C@](O)(CC)C[C@H](C3)C4)cccc5)[C@@]32[C@H]2[C@@]1(CC)C=CCN2CC3)C JXLYSJRDGCGARV-WWYNWVTFSA-N 0.000 description 9
- 235000011180 diphosphates Nutrition 0.000 description 9
- 239000003480 eluent Substances 0.000 description 9
- 238000005342 ion exchange Methods 0.000 description 9
- 239000000463 material Substances 0.000 description 9
- 239000008194 pharmaceutical composition Substances 0.000 description 9
- 239000012071 phase Substances 0.000 description 9
- 230000002285 radioactive Effects 0.000 description 9
- KRKNYBCHXYNGOX-UHFFFAOYSA-K 2qpq Chemical compound [O-]C(=O)CC(O)(CC([O-])=O)C([O-])=O KRKNYBCHXYNGOX-UHFFFAOYSA-K 0.000 description 8
- GURKHSYORGJETM-WAQYZQTGSA-N Irinotecan hydrochloride Chemical compound Cl.C1=C2C(CC)=C3CN(C(C4=C([C@@](C(=O)OC4)(O)CC)C=4)=O)C=4C3=NC2=CC=C1OC(=O)N(CC1)CCC1N1CCCCC1 GURKHSYORGJETM-WAQYZQTGSA-N 0.000 description 8
- XPPKVPWEQAFLFU-UHFFFAOYSA-J Pyrophosphate Chemical compound [O-]P([O-])(=O)OP([O-])([O-])=O XPPKVPWEQAFLFU-UHFFFAOYSA-J 0.000 description 8
- 125000000217 alkyl group Chemical group 0.000 description 8
- 239000002246 antineoplastic agent Substances 0.000 description 8
- 239000007975 buffered saline Substances 0.000 description 8
- 230000000875 corresponding Effects 0.000 description 8
- 239000010410 layer Substances 0.000 description 8
- 230000001264 neutralization Effects 0.000 description 8
- 230000035693 Fab Effects 0.000 description 7
- 229960000779 Irinotecan hydrochloride Drugs 0.000 description 7
- 235000011130 ammonium sulphate Nutrition 0.000 description 7
- 201000010099 disease Diseases 0.000 description 7
- 239000006185 dispersion Substances 0.000 description 7
- 238000010828 elution Methods 0.000 description 7
- 239000010408 film Substances 0.000 description 7
- 238000005558 fluorometry Methods 0.000 description 7
- 125000004435 hydrogen atoms Chemical group [H]* 0.000 description 7
- KFZMGEQAYNKOFK-UHFFFAOYSA-N iso-propanol Chemical compound CC(C)O KFZMGEQAYNKOFK-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 7
- 239000000787 lecithin Substances 0.000 description 7
- 239000003446 ligand Substances 0.000 description 7
- 229920001467 poly(styrenesulfonates) Polymers 0.000 description 7
- 239000012266 salt solution Substances 0.000 description 7
- 238000002798 spectrophotometry method Methods 0.000 description 7
- 239000012536 storage buffer Substances 0.000 description 7
- 125000005208 trialkylammonium group Chemical group 0.000 description 7
- 239000001226 triphosphate Substances 0.000 description 7
- 235000011178 triphosphate Nutrition 0.000 description 7
- JLPULHDHAOZNQI-ZTIMHPMXSA-N 1-hexadecanoyl-2-(9Z,12Z-octadecadienoyl)-sn-glycero-3-phosphocholine Chemical compound CCCCCCCCCCCCCCCC(=O)OC[C@H](COP([O-])(=O)OCC[N+](C)(C)C)OC(=O)CCCCCCC\C=C/C\C=C/CCCCC JLPULHDHAOZNQI-ZTIMHPMXSA-N 0.000 description 6
- BFNBIHQBYMNNAN-UHFFFAOYSA-N Ammonium sulfate Chemical compound N.N.OS(O)(=O)=O BFNBIHQBYMNNAN-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 6
- 210000000601 Blood Cells Anatomy 0.000 description 6
- 229940067606 Lecithin Drugs 0.000 description 6
- ZMXDDKWLCZADIW-UHFFFAOYSA-N N,N-dimethylformamide Chemical compound CN(C)C=O ZMXDDKWLCZADIW-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 6
- 238000010521 absorption reaction Methods 0.000 description 6
- 229910052799 carbon Inorganic materials 0.000 description 6
- 238000004090 dissolution Methods 0.000 description 6
- 239000000499 gel Substances 0.000 description 6
- 235000010445 lecithin Nutrition 0.000 description 6
- 125000005647 linker group Chemical group 0.000 description 6
- 229920001427 mPEG Polymers 0.000 description 6
- 150000003254 radicals Chemical class 0.000 description 6
- 238000011160 research Methods 0.000 description 6
- VYPSYNLAJGMNEJ-UHFFFAOYSA-N silicium dioxide Chemical compound O=[Si]=O VYPSYNLAJGMNEJ-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 6
- 238000001542 size-exclusion chromatography Methods 0.000 description 6
- 239000011550 stock solution Substances 0.000 description 6
- UNXRWKVEANCORM-UHFFFAOYSA-I triphosphate(5-) Chemical compound [O-]P([O-])(=O)OP([O-])(=O)OP([O-])([O-])=O UNXRWKVEANCORM-UHFFFAOYSA-I 0.000 description 6
- 241000699666 Mus <mouse, genus> Species 0.000 description 5
- NKNFUMKGJYKPCT-UHFFFAOYSA-N N,N-diethylethanamine;sulfuric acid Chemical compound [O-]S([O-])(=O)=O.CC[NH+](CC)CC.CC[NH+](CC)CC NKNFUMKGJYKPCT-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 5
- 239000004695 Polyether sulfone Substances 0.000 description 5
- 239000002202 Polyethylene glycol Substances 0.000 description 5
- 230000002378 acidificating Effects 0.000 description 5
- VHUUQVKOLVNVRT-UHFFFAOYSA-N ammonium hydroxide Chemical compound [NH4+].[OH-] VHUUQVKOLVNVRT-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 5
- 229910052921 ammonium sulfate Inorganic materials 0.000 description 5
- 201000008275 breast carcinoma Diseases 0.000 description 5
- 238000005119 centrifugation Methods 0.000 description 5
- 125000000753 cycloalkyl group Chemical group 0.000 description 5
- 125000005131 dialkylammonium group Chemical group 0.000 description 5
- 238000000502 dialysis Methods 0.000 description 5
- KCXVZYZYPLLWCC-UHFFFAOYSA-N edta Chemical compound OC(=O)CN(CC(O)=O)CCN(CC(O)=O)CC(O)=O KCXVZYZYPLLWCC-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 5
- 150000002148 esters Chemical class 0.000 description 5
- 238000001914 filtration Methods 0.000 description 5
- 239000008187 granular material Substances 0.000 description 5
- 230000012010 growth Effects 0.000 description 5
- 238000006460 hydrolysis reaction Methods 0.000 description 5
- 239000007788 liquid Substances 0.000 description 5
- 239000002245 particle Substances 0.000 description 5
- 239000002953 phosphate buffered saline Substances 0.000 description 5
- 229920002496 poly(ether sulfone) Polymers 0.000 description 5
- 159000000000 sodium salts Chemical class 0.000 description 5
- 239000006228 supernatant Substances 0.000 description 5
- GETQZCLCWQTVFV-UHFFFAOYSA-O trimethylammonium Chemical compound C[NH+](C)C GETQZCLCWQTVFV-UHFFFAOYSA-O 0.000 description 5
- 230000004614 tumor growth Effects 0.000 description 5
- 229920002301 Cellulose acetate Polymers 0.000 description 4
- STQGQHZAVUOBTE-VGBVRHCVSA-N DAUNOMYCIN Chemical compound O([C@H]1C[C@@](O)(CC=2C(O)=C3C(=O)C=4C=CC=C(C=4C(=O)C3=C(O)C=21)OC)C(C)=O)[C@H]1C[C@H](N)[C@H](O)[C@H](C)O1 STQGQHZAVUOBTE-VGBVRHCVSA-N 0.000 description 4
- UAOMVDZJSHZZME-UHFFFAOYSA-N Diisopropylamine Chemical compound CC(C)NC(C)C UAOMVDZJSHZZME-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 4
- RCINICONZNJXQF-MZXODVADSA-N Intaxel Chemical compound O([C@@H]1[C@@]2(C[C@@H](C(C)=C(C2(C)C)[C@H](C([C@]2(C)[C@@H](O)C[C@H]3OC[C@]3([C@H]21)OC(C)=O)=O)OC(=O)C)OC(=O)[C@H](O)[C@@H](NC(=O)C=1C=CC=CC=1)C=1C=CC=CC=1)O)C(=O)C1=CC=CC=C1 RCINICONZNJXQF-MZXODVADSA-N 0.000 description 4
- XUJNEKJLAYXESH-REOHCLBHSA-N L-cysteine Chemical compound SC[C@H](N)C(O)=O XUJNEKJLAYXESH-REOHCLBHSA-N 0.000 description 4
- VODZWWMEJITOND-OWWNRXNESA-N N-Stearoylsphingosine Chemical compound CCCCCCCCCCCCCCCCCC(=O)NC(CO)C(O)\C=C\CCCCCCCCCCCCC VODZWWMEJITOND-OWWNRXNESA-N 0.000 description 4
- 229960001592 Paclitaxel Drugs 0.000 description 4
- JGSARLDLIJGVTE-MBNYWOFBSA-N Penicillin G Chemical compound N([C@H]1[C@H]2SC([C@@H](N2C1=O)C(O)=O)(C)C)C(=O)CC1=CC=CC=C1 JGSARLDLIJGVTE-MBNYWOFBSA-N 0.000 description 4
- 210000002966 Serum Anatomy 0.000 description 4
- FWYVLGJBTZNHEM-UHFFFAOYSA-H Sodiumpolyphosphate Chemical compound [Na+].[O-]P(=O)=O.[O-]P(=O)=O.[O-]P(=O)=O.[O-]P(=O)=O.[O-]P(=O)=O.[O-]P(=O)=O FWYVLGJBTZNHEM-UHFFFAOYSA-H 0.000 description 4
- 229960002190 Topotecan Hydrochloride Drugs 0.000 description 4
- 238000007792 addition Methods 0.000 description 4
- 125000001118 alkylidene group Chemical group 0.000 description 4
- XKRFYHLGVUSROY-UHFFFAOYSA-N argon Chemical compound [Ar] XKRFYHLGVUSROY-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 4
- OKTJSMMVPCPJKN-UHFFFAOYSA-N carbon Chemical group [C] OKTJSMMVPCPJKN-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 4
- 238000004113 cell culture Methods 0.000 description 4
- 230000010261 cell growth Effects 0.000 description 4
- 238000006243 chemical reaction Methods 0.000 description 4
- 238000004587 chromatography analysis Methods 0.000 description 4
- 230000000052 comparative effect Effects 0.000 description 4
- 230000003247 decreasing Effects 0.000 description 4
- 239000008367 deionised water Substances 0.000 description 4
- 238000010494 dissociation reaction Methods 0.000 description 4
- 230000005593 dissociations Effects 0.000 description 4
- 238000000605 extraction Methods 0.000 description 4
- 125000000623 heterocyclic group Chemical group 0.000 description 4
- 125000001183 hydrocarbyl group Chemical group 0.000 description 4
- 238000011081 inoculation Methods 0.000 description 4
- OKKJLVBELUTLKV-UHFFFAOYSA-N methanol Chemical compound OC OKKJLVBELUTLKV-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 4
- YMWUJEATGCHHMB-UHFFFAOYSA-N methylene dichloride Chemical compound ClCCl YMWUJEATGCHHMB-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 4
- 230000004048 modification Effects 0.000 description 4
- 238000006011 modification reaction Methods 0.000 description 4
- CPRSOZZDECJZKH-OJLTVDSHSA-F octasodium;[(2R,3R,4S,5R)-6-[(2S,3S,4R,5R)-3,4-disulfonatooxy-2,5-bis(sulfonatooxymethyl)oxolan-2-yl]oxy-4,5-disulfonatooxy-2-(sulfonatooxymethyl)oxan-3-yl] sulfate Chemical compound [Na+].[Na+].[Na+].[Na+].[Na+].[Na+].[Na+].[Na+].[O-]S(=O)(=O)O[C@H]1[C@H](OS([O-])(=O)=O)[C@@H](COS(=O)(=O)[O-])O[C@@]1(COS([O-])(=O)=O)OC1[C@H](OS([O-])(=O)=O)[C@@H](OS([O-])(=O)=O)[C@H](OS([O-])(=O)=O)[C@@H](COS([O-])(=O)=O)O1 CPRSOZZDECJZKH-OJLTVDSHSA-F 0.000 description 4
- 230000003287 optical Effects 0.000 description 4
- OZAIFHULBGXAKX-UHFFFAOYSA-N precursor Substances N#CC(C)(C)N=NC(C)(C)C#N OZAIFHULBGXAKX-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 4
- JUJWROOIHBZHMG-UHFFFAOYSA-N pyridine Chemical compound C1=CC=NC=C1 JUJWROOIHBZHMG-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 4
- 238000010791 quenching Methods 0.000 description 4
- 230000000171 quenching Effects 0.000 description 4
- 230000002829 reduced Effects 0.000 description 4
- 230000000717 retained Effects 0.000 description 4
- 235000019830 sodium polyphosphate Nutrition 0.000 description 4
- 229930003347 taxol Natural products 0.000 description 4
- 210000001519 tissues Anatomy 0.000 description 4
- UCSJYZPVAKXKNQ-HZYVHMACSA-N 1-[(1S,2R,3R,4S,5R,6R)-3-carbamimidamido-6-{[(2R,3R,4R,5S)-3-{[(2S,3S,4S,5R,6S)-4,5-dihydroxy-6-(hydroxymethyl)-3-(methylamino)oxan-2-yl]oxy}-4-formyl-4-hydroxy-5-methyloxolan-2-yl]oxy}-2,4,5-trihydroxycyclohexyl]guanidine Chemical compound CN[C@H]1[C@H](O)[C@@H](O)[C@H](CO)O[C@H]1O[C@@H]1[C@](C=O)(O)[C@H](C)O[C@H]1O[C@@H]1[C@@H](NC(N)=N)[C@H](O)[C@@H](NC(N)=N)[C@H](O)[C@H]1O UCSJYZPVAKXKNQ-HZYVHMACSA-N 0.000 description 3
- AZKSAVLVSZKNRD-UHFFFAOYSA-M 3-(4,5-dimethylthiazol-2-yl)-2,5-diphenyltetrazolium bromide Chemical compound [Br-].S1C(C)=C(C)N=C1[N+]1=NC(C=2C=CC=CC=2)=NN1C1=CC=CC=C1 AZKSAVLVSZKNRD-UHFFFAOYSA-M 0.000 description 3
- 229920000936 Agarose Polymers 0.000 description 3
- 230000037250 Clearance Effects 0.000 description 3
- 229960000975 Daunorubicin Drugs 0.000 description 3
- 229920002307 Dextran Polymers 0.000 description 3
- HPNMFZURTQLUMO-UHFFFAOYSA-N Diethylamine Chemical compound CCNCC HPNMFZURTQLUMO-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 3
- ZDZOTLJHXYCWBA-VCVYQWHSSA-N Docetaxel Chemical compound O([C@H]1[C@H]2[C@@](C([C@H](O)C3=C(C)[C@@H](OC(=O)[C@H](O)[C@@H](NC(=O)OC(C)(C)C)C=4C=CC=CC=4)C[C@]1(O)C3(C)C)=O)(C)[C@@H](O)C[C@H]1OC[C@]12OC(=O)C)C(=O)C1=CC=CC=C1 ZDZOTLJHXYCWBA-VCVYQWHSSA-N 0.000 description 3
- 102000004190 Enzymes Human genes 0.000 description 3
- 108090000790 Enzymes Proteins 0.000 description 3
- 230000036826 Excretion Effects 0.000 description 3
- 239000000232 Lipid Bilayer Substances 0.000 description 3
- 210000001178 Neural Stem Cells Anatomy 0.000 description 3
- 229940056360 Penicillin G Drugs 0.000 description 3
- LOUPRKONTZGTKE-LHHVKLHASA-N Quinidine Chemical class C([C@H]([C@H](C1)C=C)C2)C[N@@]1[C@H]2[C@@H](O)C1=CC=NC2=CC=C(OC)C=C21 LOUPRKONTZGTKE-LHHVKLHASA-N 0.000 description 3
- RYMZZMVNJRMUDD-HGQWONQESA-N Simvastatin Chemical compound C([C@H]1[C@@H](C)C=CC2=C[C@H](C)C[C@@H]([C@H]12)OC(=O)C(C)(C)CC)C[C@@H]1C[C@@H](O)CC(=O)O1 RYMZZMVNJRMUDD-HGQWONQESA-N 0.000 description 3
- GCLGEJMYGQKIIW-UHFFFAOYSA-H Sodium hexametaphosphate Chemical compound [Na]OP1(=O)OP(=O)(O[Na])OP(=O)(O[Na])OP(=O)(O[Na])OP(=O)(O[Na])OP(=O)(O[Na])O1 GCLGEJMYGQKIIW-UHFFFAOYSA-H 0.000 description 3
- 229960002385 Streptomycin Sulfate Drugs 0.000 description 3
- 238000000692 Student's t-test Methods 0.000 description 3
- 150000007513 acids Chemical class 0.000 description 3
- 230000004913 activation Effects 0.000 description 3
- 230000002776 aggregation Effects 0.000 description 3
- 238000004220 aggregation Methods 0.000 description 3
- 150000003797 alkaloid derivatives Chemical class 0.000 description 3
- 125000003342 alkenyl group Chemical group 0.000 description 3
- 239000000908 ammonium hydroxide Substances 0.000 description 3
- 239000003957 anion exchange resin Substances 0.000 description 3
- 230000000845 anti-microbial Effects 0.000 description 3
- 125000003118 aryl group Chemical group 0.000 description 3
- 150000001767 cationic compounds Chemical class 0.000 description 3
- 230000005591 charge neutralization Effects 0.000 description 3
- 230000035512 clearance Effects 0.000 description 3
- 238000003776 cleavage reaction Methods 0.000 description 3
- 238000004440 column chromatography Methods 0.000 description 3
- 239000002872 contrast media Substances 0.000 description 3
- 238000007796 conventional method Methods 0.000 description 3
- 125000000392 cycloalkenyl group Chemical group 0.000 description 3
- 238000010908 decantation Methods 0.000 description 3
- 230000001419 dependent Effects 0.000 description 3
- 230000005595 deprotonation Effects 0.000 description 3
- 238000010537 deprotonation reaction Methods 0.000 description 3
- 229960002086 dextran Drugs 0.000 description 3
- 238000007865 diluting Methods 0.000 description 3
- ROSDSFDQCJNGOL-UHFFFAOYSA-N dimethylamine Chemical compound CNC ROSDSFDQCJNGOL-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 3
- 229960003668 docetaxel Drugs 0.000 description 3
- 230000002255 enzymatic Effects 0.000 description 3
- 230000029142 excretion Effects 0.000 description 3
- 230000001605 fetal Effects 0.000 description 3
- 239000007789 gas Substances 0.000 description 3
- 238000001641 gel filtration chromatography Methods 0.000 description 3
- 230000036541 health Effects 0.000 description 3
- 238000005534 hematocrit Methods 0.000 description 3
- 125000005343 heterocyclic alkyl group Chemical group 0.000 description 3
- 230000036571 hydration Effects 0.000 description 3
- 238000006703 hydration reaction Methods 0.000 description 3
- 230000002209 hydrophobic Effects 0.000 description 3
- 238000003384 imaging method Methods 0.000 description 3
- 238000010253 intravenous injection Methods 0.000 description 3
- 238000004255 ion exchange chromatography Methods 0.000 description 3
- 238000006386 neutralization reaction Methods 0.000 description 3
- 229910052757 nitrogen Inorganic materials 0.000 description 3
- 125000004433 nitrogen atoms Chemical group N* 0.000 description 3
- 150000002894 organic compounds Chemical class 0.000 description 3
- 230000003204 osmotic Effects 0.000 description 3
- 125000004430 oxygen atoms Chemical group O* 0.000 description 3
- 125000002467 phosphate group Chemical group [H]OP(=O)(O[H])O[*] 0.000 description 3
- 239000002504 physiological saline solution Substances 0.000 description 3
- 238000001556 precipitation Methods 0.000 description 3
- 230000000750 progressive Effects 0.000 description 3
- 230000002035 prolonged Effects 0.000 description 3
- 239000000377 silicon dioxide Substances 0.000 description 3
- BZKBCQXYZZXSCO-UHFFFAOYSA-N sodium hydride Chemical compound [H-].[Na+] BZKBCQXYZZXSCO-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 3
- 238000007920 subcutaneous administration Methods 0.000 description 3
- 125000004434 sulfur atoms Chemical group 0.000 description 3
- 150000003467 sulfuric acid derivatives Chemical class 0.000 description 3
- 239000004094 surface-active agent Substances 0.000 description 3
- 230000002459 sustained Effects 0.000 description 3
- 238000003786 synthesis reaction Methods 0.000 description 3
- 230000002194 synthesizing Effects 0.000 description 3
- 230000001225 therapeutic Effects 0.000 description 3
- 238000002054 transplantation Methods 0.000 description 3
- 238000000108 ultra-filtration Methods 0.000 description 3
- 238000005303 weighing Methods 0.000 description 3
- LVNGJLRDBYCPGB-UHFFFAOYSA-N 1,2-distearoylphosphatidylethanolamine Chemical compound CCCCCCCCCCCCCCCCCC(=O)OCC(COP([O-])(=O)OCC[NH3+])OC(=O)CCCCCCCCCCCCCCCCC LVNGJLRDBYCPGB-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- LENZDBCJOHFCAS-UHFFFAOYSA-N 2-amino-2-(hydroxymethyl)propane-1,3-diol Chemical compound OCC(N)(CO)CO LENZDBCJOHFCAS-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- PNEYBMLMFCGWSK-UHFFFAOYSA-N AI2O3 Inorganic materials [O-2].[O-2].[O-2].[Al+3].[Al+3] PNEYBMLMFCGWSK-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- 206010002091 Anaesthesia Diseases 0.000 description 2
- 229940064005 Antibiotic throat preparations Drugs 0.000 description 2
- 229940083879 Antibiotics FOR TREATMENT OF HEMORRHOIDS AND ANAL FISSURES FOR TOPICAL USE Drugs 0.000 description 2
- 229940042052 Antibiotics for systemic use Drugs 0.000 description 2
- 229940042786 Antitubercular Antibiotics Drugs 0.000 description 2
- FERIUCNNQQJTOY-UHFFFAOYSA-N Butanoic acid Chemical compound CCCC(O)=O FERIUCNNQQJTOY-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- BVKZGUZCCUSVTD-UHFFFAOYSA-L Carbonate dianion Chemical compound [O-]C([O-])=O BVKZGUZCCUSVTD-UHFFFAOYSA-L 0.000 description 2
- 206010009944 Colon cancer Diseases 0.000 description 2
- PAFZNILMFXTMIY-UHFFFAOYSA-N Cyclohexylamine Chemical compound NC1CCCCC1 PAFZNILMFXTMIY-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- ZBCBWPMODOFKDW-UHFFFAOYSA-N Diethanolamine Chemical compound OCCNCCO ZBCBWPMODOFKDW-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- 230000036947 Dissociation constant Effects 0.000 description 2
- VYFYYTLLBUKUHU-UHFFFAOYSA-N Dopamine Natural products NCCC1=CC=C(O)C(O)=C1 VYFYYTLLBUKUHU-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- 102100009832 EPHB3 Human genes 0.000 description 2
- AOJJSUZBOXZQNB-VTZDEGQISA-N EPIRUBICIN Chemical compound O([C@H]1C[C@@](O)(CC=2C(O)=C3C(=O)C=4C=CC=C(C=4C(=O)C3=C(O)C=21)OC)C(=O)CO)[C@H]1C[C@H](N)[C@@H](O)[C@H](C)O1 AOJJSUZBOXZQNB-VTZDEGQISA-N 0.000 description 2
- 229960001904 EPIRUBICIN Drugs 0.000 description 2
- 108010055325 EphB3 Receptor Proteins 0.000 description 2
- KWGRBVOPPLSCSI-WPRPVWTQSA-N Ephedrine Chemical compound CN[C@@H](C)[C@H](O)C1=CC=CC=C1 KWGRBVOPPLSCSI-WPRPVWTQSA-N 0.000 description 2
- ULGZDMOVFRHVEP-RWJQBGPGSA-N Erythromycin Chemical group O([C@@H]1[C@@H](C)C(=O)O[C@@H]([C@@]([C@H](O)[C@@H](C)C(=O)[C@H](C)C[C@@](C)(O)[C@H](O[C@H]2[C@@H]([C@H](C[C@@H](C)O2)N(C)C)O)[C@H]1C)(C)O)CC)[C@H]1C[C@@](C)(OC)[C@@H](O)[C@H](C)O1 ULGZDMOVFRHVEP-RWJQBGPGSA-N 0.000 description 2
- SDUQYLNIPVEERB-QPPQHZFASA-N Gemcitabine Chemical compound O=C1N=C(N)C=CN1[C@H]1C(F)(F)[C@H](O)[C@@H](CO)O1 SDUQYLNIPVEERB-QPPQHZFASA-N 0.000 description 2
- 229940093922 Gynecological Antibiotics Drugs 0.000 description 2
- 229960002897 Heparin Drugs 0.000 description 2
- ZFGMDIBRIDKWMY-PASTXAENSA-N Heparin Chemical compound CC(O)=N[C@@H]1[C@@H](O)[C@H](O)[C@@H](COS(O)(=O)=O)O[C@@H]1O[C@@H]1[C@@H](C(O)=O)O[C@@H](O[C@H]2[C@@H]([C@@H](OS(O)(=O)=O)[C@@H](O[C@@H]3[C@@H](OC(O)[C@H](OS(O)(=O)=O)[C@H]3O)C(O)=O)O[C@@H]2O)CS(O)(=O)=O)[C@H](O)[C@H]1O ZFGMDIBRIDKWMY-PASTXAENSA-N 0.000 description 2
- 229940088597 Hormone Drugs 0.000 description 2
- RAXXELZNTBOGNW-UHFFFAOYSA-N Imidazole Chemical compound C1=CNC=N1 RAXXELZNTBOGNW-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- HNDVDQJCIGZPNO-YFKPBYRVSA-N L-histidine Chemical compound OC(=O)[C@@H](N)CC1=CN=CN1 HNDVDQJCIGZPNO-YFKPBYRVSA-N 0.000 description 2
- 229940035363 MUSCLE RELAXANTS Drugs 0.000 description 2
- FEWJPZIEWOKRBE-XIXRPRMCSA-N Mesotartaric acid Chemical compound OC(=O)[C@@H](O)[C@@H](O)C(O)=O FEWJPZIEWOKRBE-XIXRPRMCSA-N 0.000 description 2
- 210000004688 Microtubules Anatomy 0.000 description 2
- 102000028664 Microtubules Human genes 0.000 description 2
- 108091022031 Microtubules Proteins 0.000 description 2
- 210000004080 Milk Anatomy 0.000 description 2
- 229960004857 Mitomycin Drugs 0.000 description 2
- KKZJGLLVHKMTCM-UHFFFAOYSA-N Mitoxantrone Chemical compound O=C1C2=C(O)C=CC(O)=C2C(=O)C2=C1C(NCCNCCO)=CC=C2NCCNCCO KKZJGLLVHKMTCM-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- 229960001156 Mitoxantrone Drugs 0.000 description 2
- 229940083876 Muscle relaxants FOR TREATMENT OF HEMORRHOIDS AND ANAL FISSURES FOR TOPICAL USE Drugs 0.000 description 2
- NWIBSHFKIJFRCO-WUDYKRTCSA-N Mytomycin Chemical compound C1N2C(C(C(C)=C(N)C3=O)=O)=C3[C@@H](COC(N)=O)[C@@]2(OC)[C@@H]2[C@H]1N2 NWIBSHFKIJFRCO-WUDYKRTCSA-N 0.000 description 2
- WORLLILUGHBXRR-UHFFFAOYSA-N N,N-diethylethanamine;2-hydroxypropane-1,2,3-tricarboxylic acid Chemical compound CCN(CC)CC.CCN(CC)CC.CCN(CC)CC.OC(=O)CC(O)(C(O)=O)CC(O)=O WORLLILUGHBXRR-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- UEEJHVSXFDXPFK-UHFFFAOYSA-N N-dimethylaminoethanol Chemical compound CN(C)CCO UEEJHVSXFDXPFK-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- QZZGOJPCSBTTHI-UHFFFAOYSA-N N-ethylethanamine;sulfuric acid Chemical compound CC[NH2+]CC.CC[NH2+]CC.[O-]S([O-])(=O)=O QZZGOJPCSBTTHI-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- 229960002340 Pentostatin Drugs 0.000 description 2
- FPVKHBSQESCIEP-JQCXWYLXSA-N Pentostatin Chemical compound C1[C@H](O)[C@@H](CO)O[C@H]1N1C(N=CNC[C@H]2O)=C2N=C1 FPVKHBSQESCIEP-JQCXWYLXSA-N 0.000 description 2
- 239000004743 Polypropylene Substances 0.000 description 2
- 241001415846 Procellariidae Species 0.000 description 2
- 210000002356 Skeleton Anatomy 0.000 description 2
- 241000380058 Sostea Species 0.000 description 2
- AKEJUJNQAAGONA-UHFFFAOYSA-N Sulfur trioxide Chemical compound O=S(=O)=O AKEJUJNQAAGONA-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- LSNNMFCWUKXFEE-UHFFFAOYSA-L Sulphite Chemical compound [O-]S([O-])=O LSNNMFCWUKXFEE-UHFFFAOYSA-L 0.000 description 2
- 229940024982 Topical Antifungal Antibiotics Drugs 0.000 description 2
- 206010070863 Toxicity to various agents Diseases 0.000 description 2
- HRGUSFBJBOKSML-UHFFFAOYSA-N Tricin Chemical compound COC1=C(O)C(OC)=CC(C=2OC3=CC(O)=CC(O)=C3C(=O)C=2)=C1 HRGUSFBJBOKSML-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- IEDVJHCEMCRBQM-UHFFFAOYSA-N Trimethoprim Chemical compound COC1=C(OC)C(OC)=CC(CC=2C(=NC(N)=NC=2)N)=C1 IEDVJHCEMCRBQM-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- 229960001082 Trimethoprim Drugs 0.000 description 2
- 229920004890 Triton X-100 Polymers 0.000 description 2
- 150000001241 acetals Chemical class 0.000 description 2
- WEVYAHXRMPXWCK-UHFFFAOYSA-N acetonitrile Chemical compound CC#N WEVYAHXRMPXWCK-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- 239000011543 agarose gel Substances 0.000 description 2
- 239000002168 alkylating agent Substances 0.000 description 2
- 150000001413 amino acids Chemical class 0.000 description 2
- 125000003277 amino group Chemical group 0.000 description 2
- 230000037005 anaesthesia Effects 0.000 description 2
- RGHILYZRVFRRNK-UHFFFAOYSA-N anthracene-1,2-dione Chemical compound C1=CC=C2C=C(C(C(=O)C=C3)=O)C3=CC2=C1 RGHILYZRVFRRNK-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- 239000003242 anti bacterial agent Substances 0.000 description 2
- 230000001093 anti-cancer Effects 0.000 description 2
- 239000004599 antimicrobial Substances 0.000 description 2
- 229940045698 antineoplastic Taxanes Drugs 0.000 description 2
- 239000012062 aqueous buffer Substances 0.000 description 2
- 229910052786 argon Inorganic materials 0.000 description 2
- 239000003719 aurora kinase inhibitor Substances 0.000 description 2
- 239000003012 bilayer membrane Substances 0.000 description 2
- 238000004166 bioassay Methods 0.000 description 2
- 230000003115 biocidal Effects 0.000 description 2
- 229920002988 biodegradable polymer Polymers 0.000 description 2
- 239000004621 biodegradable polymer Substances 0.000 description 2
- BTBUEUYNUDRHOZ-UHFFFAOYSA-N borate Chemical compound [O-]B([O-])[O-] BTBUEUYNUDRHOZ-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- QGJOPFRUJISHPQ-UHFFFAOYSA-N carbon bisulphide Chemical compound S=C=S QGJOPFRUJISHPQ-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- 150000001768 cations Chemical class 0.000 description 2
- VEXZGXHMUGYJMC-UHFFFAOYSA-M chloride anion Chemical compound [Cl-] VEXZGXHMUGYJMC-UHFFFAOYSA-M 0.000 description 2
- 230000021615 conjugation Effects 0.000 description 2
- 238000001816 cooling Methods 0.000 description 2
- 235000018417 cysteine Nutrition 0.000 description 2
- 125000000151 cysteine group Chemical group N[C@@H](CS)C(=O)* 0.000 description 2
- 230000001472 cytotoxic Effects 0.000 description 2
- 230000002354 daily Effects 0.000 description 2
- 239000003599 detergent Substances 0.000 description 2
- BVJSHQWNXSXIBK-UHFFFAOYSA-N di(ethyl)azanide Chemical group [CH2]C[N-]C[CH2+] BVJSHQWNXSXIBK-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- 229940043279 diisopropylamine Drugs 0.000 description 2
- 238000010790 dilution Methods 0.000 description 2
- PSLWZOIUBRXAQW-UHFFFAOYSA-M dimethyl(dioctadecyl)azanium;bromide Chemical compound [Br-].CCCCCCCCCCCCCCCCCC[N+](C)(C)CCCCCCCCCCCCCCCCCC PSLWZOIUBRXAQW-UHFFFAOYSA-M 0.000 description 2
- 238000009826 distribution Methods 0.000 description 2
- 239000003937 drug carrier Substances 0.000 description 2
- 238000005516 engineering process Methods 0.000 description 2
- 229960003276 erythromycin Drugs 0.000 description 2
- 238000001704 evaporation Methods 0.000 description 2
- 230000005284 excitation Effects 0.000 description 2
- 239000000706 filtrate Substances 0.000 description 2
- 239000012530 fluid Substances 0.000 description 2
- OVBPIULPVIDEAO-LBPRGKRZSA-N folic acid Chemical compound C=1N=C2NC(N)=NC(=O)C2=NC=1CNC1=CC=C(C(=O)N[C@@H](CCC(O)=O)C(O)=O)C=C1 OVBPIULPVIDEAO-LBPRGKRZSA-N 0.000 description 2
- 238000007710 freezing Methods 0.000 description 2
- 238000002523 gelfiltration Methods 0.000 description 2
- 229960005277 gemcitabine Drugs 0.000 description 2
- 230000014509 gene expression Effects 0.000 description 2
- DHMQDGOQFOQNFH-UHFFFAOYSA-N glycine Chemical compound NCC(O)=O DHMQDGOQFOQNFH-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- 238000010438 heat treatment Methods 0.000 description 2
- 229920000669 heparin Polymers 0.000 description 2
- 238000004128 high performance liquid chromatography Methods 0.000 description 2
- 239000005556 hormone Substances 0.000 description 2
- 239000001257 hydrogen Substances 0.000 description 2
- 229910052739 hydrogen Inorganic materials 0.000 description 2
- KJUGUADJHNHALS-UHFFFAOYSA-O hydron;2H-tetrazole Chemical compound C1=NN=[NH+]N1 KJUGUADJHNHALS-UHFFFAOYSA-O 0.000 description 2
- 239000005457 ice water Substances 0.000 description 2
- 229940079866 intestinal antibiotics Drugs 0.000 description 2
- 239000003456 ion exchange resin Substances 0.000 description 2
- 229920003303 ion-exchange polymer Polymers 0.000 description 2
- XEEYBQQBJWHFJM-UHFFFAOYSA-N iron Chemical compound [Fe] XEEYBQQBJWHFJM-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- 230000002262 irrigation Effects 0.000 description 2
- 238000003973 irrigation Methods 0.000 description 2
- 150000002596 lactones Chemical class 0.000 description 2
- 231100000225 lethality Toxicity 0.000 description 2
- 201000005202 lung cancer Diseases 0.000 description 2
- 239000006166 lysate Substances 0.000 description 2
- 235000013336 milk Nutrition 0.000 description 2
- 239000008267 milk Substances 0.000 description 2
- 239000003158 myorelaxant agent Substances 0.000 description 2
- SJRJJKPEHAURKC-UHFFFAOYSA-N n-methylmorpholine Chemical compound CN1CCOCC1 SJRJJKPEHAURKC-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- 239000002353 niosome Substances 0.000 description 2
- 150000002829 nitrogen Chemical group 0.000 description 2
- IJGRMHOSHXDMSA-UHFFFAOYSA-N nitrogen Chemical compound N#N IJGRMHOSHXDMSA-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- 230000003000 nontoxic Effects 0.000 description 2
- 231100000252 nontoxic Toxicity 0.000 description 2
- 229940005935 ophthalmologic Antibiotics Drugs 0.000 description 2
- 230000002018 overexpression Effects 0.000 description 2
- 239000005365 phosphate glass Substances 0.000 description 2
- NBIIXXVUZAFLBC-UHFFFAOYSA-N phosphoric acid Chemical compound OP(O)(O)=O NBIIXXVUZAFLBC-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- NQRYJNQNLNOLGT-UHFFFAOYSA-N piperidine Chemical compound C1CCNCC1 NQRYJNQNLNOLGT-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- 229920000728 polyester Polymers 0.000 description 2
- 229920000137 polyphosphoric acid Polymers 0.000 description 2
- 229920001155 polypropylene Polymers 0.000 description 2
- WCUXLLCKKVVCTQ-UHFFFAOYSA-M potassium chloride Chemical compound [Cl-].[K+] WCUXLLCKKVVCTQ-UHFFFAOYSA-M 0.000 description 2
- 238000004313 potentiometry Methods 0.000 description 2
- 239000000843 powder Substances 0.000 description 2
- 230000002028 premature Effects 0.000 description 2
- 238000004321 preservation Methods 0.000 description 2
- 230000002633 protecting Effects 0.000 description 2
- RWRDLPDLKQPQOW-UHFFFAOYSA-N pyrrolidine Chemical compound C1CCNC1 RWRDLPDLKQPQOW-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- 239000011541 reaction mixture Substances 0.000 description 2
- 238000006722 reduction reaction Methods 0.000 description 2
- 230000029058 respiratory gaseous exchange Effects 0.000 description 2
- 230000004044 response Effects 0.000 description 2
- 230000002441 reversible Effects 0.000 description 2
- IRHWMYKYLWNHTL-UHFFFAOYSA-M sodium 2-(N-morpholino)ethanesulfonate Chemical compound [Na+].[O-]S(=O)(=O)CCN1CCOCC1 IRHWMYKYLWNHTL-UHFFFAOYSA-M 0.000 description 2
- PXIPVTKHYLBLMZ-UHFFFAOYSA-N sodium azide Chemical compound [Na+].[N-]=[N+]=[N-] PXIPVTKHYLBLMZ-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- 239000007787 solid Substances 0.000 description 2
- 239000003381 stabilizer Substances 0.000 description 2
- 230000000087 stabilizing Effects 0.000 description 2
- 125000000547 substituted alkyl group Chemical group 0.000 description 2
- 238000006467 substitution reaction Methods 0.000 description 2
- 229940086735 succinate Drugs 0.000 description 2
- KDYFGRWQOYBRFD-UHFFFAOYSA-L succinate(2-) Chemical compound [O-]C(=O)CCC([O-])=O KDYFGRWQOYBRFD-UHFFFAOYSA-L 0.000 description 2
- 150000003445 sucroses Chemical class 0.000 description 2
- XTHPWXDJESJLNJ-UHFFFAOYSA-N sulfurochloridic acid Chemical compound OS(Cl)(=O)=O XTHPWXDJESJLNJ-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- 239000003826 tablet Substances 0.000 description 2
- 229940095064 tartrate Drugs 0.000 description 2
- 150000003568 thioethers Chemical class 0.000 description 2
- 125000003396 thiol group Chemical group [H]S* 0.000 description 2
- WYWHKKSPHMUBEB-UHFFFAOYSA-N tioguanine Chemical compound N1C(N)=NC(=S)C2=C1N=CN2 WYWHKKSPHMUBEB-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- 230000002588 toxic Effects 0.000 description 2
- 231100000331 toxic Toxicity 0.000 description 2
- 231100000816 toxic dose Toxicity 0.000 description 2
- UWSCPROMPSAQOL-UHFFFAOYSA-N trimethylazanium;sulfate Chemical compound CN(C)C.CN(C)C.OS(O)(=O)=O UWSCPROMPSAQOL-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- 210000004881 tumor cells Anatomy 0.000 description 2
- 230000035899 viability Effects 0.000 description 2
- CILBMBUYJCWATM-HGBQGYOLSA-N vinorelbine D-tartrate Chemical compound OC(=O)[C@@H](O)[C@H](O)C(O)=O.OC(=O)[C@@H](O)[C@H](O)C(O)=O.C1N(CC=2C3=CC=CC=C3NC=22)CC(CC)=C[C@H]1C[C@]2(C(=O)OC)C1=CC([C@]23[C@H]([C@]([C@H](OC(C)=O)[C@]4(CC)C=CCN([C@H]34)CC2)(O)C(=O)OC)N2C)=C2C=C1OC CILBMBUYJCWATM-HGBQGYOLSA-N 0.000 description 2
- 229920002554 vinyl polymer Polymers 0.000 description 2
- SFLSHLFXELFNJZ-QMMMGPOBSA-N (-)-norepinephrine Chemical compound NC[C@H](O)C1=CC=C(O)C(O)=C1 SFLSHLFXELFNJZ-QMMMGPOBSA-N 0.000 description 1
- ZROHGHOFXNOHSO-BNTLRKBRSA-L (1R,2R)-cyclohexane-1,2-diamine;oxalate;platinum(2+) Chemical compound [H][N]([C@@H]1CCCC[C@H]1[N]1([H])[H])([H])[Pt]11OC(=O)C(=O)O1 ZROHGHOFXNOHSO-BNTLRKBRSA-L 0.000 description 1
- BIXYYZIIJIXVFW-UUOKFMHZSA-N (2R,3R,4S,5R)-2-(6-amino-2-chloropurin-9-yl)-5-(hydroxymethyl)oxolane-3,4-diol Chemical compound C1=NC=2C(N)=NC(Cl)=NC=2N1[C@@H]1O[C@H](CO)[C@@H](O)[C@H]1O BIXYYZIIJIXVFW-UUOKFMHZSA-N 0.000 description 1
- VPAWVRUHMJVRHU-VGDKGRGNSA-N (2R,4R)-N,N-bis(2-chloroethyl)-4-hydroperoxy-2-oxo-1,3,2$l^{5}-oxazaphosphinan-2-amine Chemical compound OO[C@@H]1CCO[P@@](=O)(N(CCCl)CCCl)N1 VPAWVRUHMJVRHU-VGDKGRGNSA-N 0.000 description 1
- FSIRXIHZBIXHKT-MHTVFEQDSA-N (2S)-2-[[4-[1-(2,4-diaminopteridin-6-yl)butan-2-yl]benzoyl]amino]pentanedioic acid Chemical compound C=1N=C2N=C(N)N=C(N)C2=NC=1CC(CC)C1=CC=C(C(=O)N[C@@H](CCC(O)=O)C(O)=O)C=C1 FSIRXIHZBIXHKT-MHTVFEQDSA-N 0.000 description 1
- LMGGOGHEVZMZCU-FGJMKEJPSA-N (2S,4S)-4-[(2R,4S,5S,6S)-4-amino-5-hydroxy-6-methyloxan-2-yl]oxy-2,5,7,12-tetrahydroxy-6,11-dioxo-3,4-dihydro-1H-tetracene-2-carboxylic acid Chemical compound C1[C@H](N)[C@H](O)[C@H](C)O[C@H]1O[C@@H]1C2=C(O)C(C(=O)C3=C(O)C=CC=C3C3=O)=C3C(O)=C2C[C@@](O)(C(O)=O)C1 LMGGOGHEVZMZCU-FGJMKEJPSA-N 0.000 description 1
- FJLGEFLZQAZZCD-JUFISIKESA-N (3S,5R)-fluvastatin Chemical compound C12=CC=CC=C2N(C(C)C)C(\C=C\[C@H](O)C[C@H](O)CC(O)=O)=C1C1=CC=C(F)C=C1 FJLGEFLZQAZZCD-JUFISIKESA-N 0.000 description 1
- NRUKOCRGYNPUPR-QBPJDGROSA-N (5S,5aR,8aR,9R)-5-[[(2R,4aR,6R,7R,8R,8aS)-7,8-dihydroxy-2-thiophen-2-yl-4,4a,6,7,8,8a-hexahydropyrano[3,2-d][1,3]dioxin-6-yl]oxy]-9-(4-hydroxy-3,5-dimethoxyphenyl)-5a,6,8a,9-tetrahydro-5H-[2]benzofuro[6,5-f][1,3]benzodioxol-8-one Chemical compound COC1=C(O)C(OC)=CC([C@@H]2C3=CC=4OCOC=4C=C3[C@@H](O[C@H]3[C@@H]([C@@H](O)[C@@H]4O[C@@H](OC[C@H]4O3)C=3SC=CC=3)O)[C@@H]3[C@@H]2C(OC3)=O)=C1 NRUKOCRGYNPUPR-QBPJDGROSA-N 0.000 description 1
- LVNGJLRDBYCPGB-LDLOPFEMSA-N (R)-1,2-distearoylphosphatidylethanolamine zwitterion Chemical compound CCCCCCCCCCCCCCCCCC(=O)OC[C@H](COP([O-])(=O)OCC[NH3+])OC(=O)CCCCCCCCCCCCCCCCC LVNGJLRDBYCPGB-LDLOPFEMSA-N 0.000 description 1
- GIIZNNXWQWCKIB-RUZDIDTESA-N (S)-salmeterol Chemical compound C1=C(O)C(CO)=CC([C@H](O)CNCCCCCCOCCCCC=2C=CC=CC=2)=C1 GIIZNNXWQWCKIB-RUZDIDTESA-N 0.000 description 1
- ARHYWWAJZDAYDJ-UHFFFAOYSA-N 1,2-dimethylpiperazine Chemical compound CC1CNCCN1C ARHYWWAJZDAYDJ-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- SNKAWJBJQDLSFF-NVKMUCNASA-O 1,2-dioleoyl-sn-glycero-3-phosphocholine(1+) Chemical compound CCCCCCCC\C=C/CCCCCCCC(=O)OC[C@H](COP(O)(=O)OCC[N+](C)(C)C)OC(=O)CCCCCCC\C=C/CCCCCCCC SNKAWJBJQDLSFF-NVKMUCNASA-O 0.000 description 1
- 229940096996 1,2-distearoyllecithin Drugs 0.000 description 1
- PIICEJLVQHRZGT-UHFFFAOYSA-N 1,2-ethanediamine Chemical compound NCCN PIICEJLVQHRZGT-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- RXYPXQSKLGGKOL-UHFFFAOYSA-N 1,4-dimethylpiperazine Chemical compound CN1CCN(C)CC1 RXYPXQSKLGGKOL-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- KOKTUHPFPWFELE-HCWSKCQFSA-N 1-[(2S,3R,4S,5R)-2-fluoro-3,4-dihydroxy-5-methyloxolan-2-yl]pyrimidine-2,4-dione Chemical compound O[C@@H]1[C@H](O)[C@@H](C)O[C@@]1(F)N1C(=O)NC(=O)C=C1 KOKTUHPFPWFELE-HCWSKCQFSA-N 0.000 description 1
- MHWLWQUZZRMNGJ-UHFFFAOYSA-N 1-ethyl-7-methyl-4-oxo-1,4-dihydro-1,8-naphthyridine-3-carboxylic acid Chemical compound C1=C(C)N=C2N(CC)C=C(C(O)=O)C(=O)C2=C1 MHWLWQUZZRMNGJ-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- WTJKGGKOPKCXLL-VYOBOKEXSA-N 1-hexadecanoyl-2-(9Z-octadecenoyl)-sn-glycero-3-phosphocholine Chemical compound CCCCCCCCCCCCCCCC(=O)OC[C@H](COP([O-])(=O)OCC[N+](C)(C)C)OC(=O)CCCCCCC\C=C/CCCCCCCC WTJKGGKOPKCXLL-VYOBOKEXSA-N 0.000 description 1
- PAMIQIKDUOTOBW-UHFFFAOYSA-N 1-methylpiperidine Chemical compound CN1CCCCC1 PAMIQIKDUOTOBW-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- AVFZOVWCLRSYKC-UHFFFAOYSA-N 1-methylpyrrolidine Chemical compound CN1CCCC1 AVFZOVWCLRSYKC-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- VOXZDWNPVJITMN-ZBRFXRBCSA-N 17β-estradiol Chemical compound OC1=CC=C2[C@H]3CC[C@](C)([C@H](CC4)O)[C@@H]4[C@@H]3CCC2=C1 VOXZDWNPVJITMN-ZBRFXRBCSA-N 0.000 description 1
- 238000005160 1H NMR spectroscopy Methods 0.000 description 1
- APXRHPDHORGIEB-UHFFFAOYSA-N 1H-pyrazolo[4,3-d]pyrimidine Chemical class N1=CN=C2C=NNC2=C1 APXRHPDHORGIEB-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- KWVJHCQQUFDPLU-YEUCEMRASA-N 2,3-bis[[(Z)-octadec-9-enoyl]oxy]propyl-trimethylazanium Chemical compound CCCCCCCC\C=C/CCCCCCCC(=O)OCC(C[N+](C)(C)C)OC(=O)CCCCCCC\C=C/CCCCCCCC KWVJHCQQUFDPLU-YEUCEMRASA-N 0.000 description 1
- NRJAVPSFFCBXDT-UHFFFAOYSA-N 2,3-di(octadecanoyloxy)propyl 2-(trimethylazaniumyl)ethyl phosphate Chemical compound CCCCCCCCCCCCCCCCCC(=O)OCC(COP([O-])(=O)OCC[N+](C)(C)C)OC(=O)CCCCCCCCCCCCCCCCC NRJAVPSFFCBXDT-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- YZQRAQOSAPWELU-UHFFFAOYSA-O 2,5,11-trimethyl-6H-pyrido[4,3-b]carbazol-2-ium-9-ol Chemical compound C[N+]1=CC=C2C(C)=C(NC=3C4=CC(O)=CC=3)C4=C(C)C2=C1 YZQRAQOSAPWELU-UHFFFAOYSA-O 0.000 description 1
- VKJCJJYNVIYVQR-UHFFFAOYSA-N 2-(3-bromopropyl)isoindole-1,3-dione Chemical compound C1=CC=C2C(=O)N(CCCBr)C(=O)C2=C1 VKJCJJYNVIYVQR-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- SXGZJKUKBWWHRA-UHFFFAOYSA-N 2-(N-morpholino)ethanesulfonic acid Chemical compound [O-]S(=O)(=O)CC[NH+]1CCOCC1 SXGZJKUKBWWHRA-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- KKFDCBRMNNSAAW-UHFFFAOYSA-N 2-(morpholin-4-yl)ethanol Chemical compound OCCN1CCOCC1 KKFDCBRMNNSAAW-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- KZTWONRVIPPDKH-UHFFFAOYSA-N 2-(piperidin-1-yl)ethanol Chemical compound OCCN1CCCCC1 KZTWONRVIPPDKH-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- BKOOMYPCSUNDGP-UHFFFAOYSA-N 2-Methyl-2-butene Chemical group CC=C(C)C BKOOMYPCSUNDGP-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- BSKHPKMHTQYZBB-UHFFFAOYSA-N 2-Methylpyridine Chemical compound CC1=CC=CC=N1 BSKHPKMHTQYZBB-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- VHVPQPYKVGDNFY-TUJWMRSMSA-N 2-[(2S)-butan-2-yl]-4-[4-[4-[4-[[(2R,4S)-2-(2,4-dichlorophenyl)-2-(1,2,4-triazol-1-ylmethyl)-1,3-dioxolan-4-yl]methoxy]phenyl]piperazin-1-yl]phenyl]-1,2,4-triazol-3-one Chemical compound O=C1N([C@@H](C)CC)N=CN1C1=CC=C(N2CCN(CC2)C=2C=CC(OC[C@@H]3O[C@](CN4N=CN=C4)(OC3)C=3C(=CC(Cl)=CC=3)Cl)=CC=2)C=C1 VHVPQPYKVGDNFY-TUJWMRSMSA-N 0.000 description 1
- KILNVBDSWZSGLL-UHFFFAOYSA-O 2-[2,3-di(hexadecanoyloxy)propoxy-hydroxyphosphoryl]oxyethyl-trimethylazanium Chemical compound CCCCCCCCCCCCCCCC(=O)OCC(COP(O)(=O)OCC[N+](C)(C)C)OC(=O)CCCCCCCCCCCCCCC KILNVBDSWZSGLL-UHFFFAOYSA-O 0.000 description 1
- LRYZPFWEZHSTHD-HEFFAWAOSA-O 2-[[(E,2S,3R)-2-formamido-3-hydroxyoctadec-4-enoxy]-hydroxyphosphoryl]oxyethyl-trimethylazanium Chemical class CCCCCCCCCCCCC\C=C\[C@@H](O)[C@@H](NC=O)COP(O)(=O)OCC[N+](C)(C)C LRYZPFWEZHSTHD-HEFFAWAOSA-O 0.000 description 1
- YMDNODNLFSHHCV-UHFFFAOYSA-N 2-chloro-N,N-diethylethanamine Chemical compound CCN(CC)CCCl YMDNODNLFSHHCV-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- ARLXEFZGGCEDPT-UHFFFAOYSA-N 2-hydroxypropane-1,2,3-tricarboxylate;trimethylazanium Chemical compound C[NH+](C)C.C[NH+](C)C.C[NH+](C)C.[O-]C(=O)CC(O)(CC([O-])=O)C([O-])=O ARLXEFZGGCEDPT-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- WUBBRNOQWQTFEX-UHFFFAOYSA-N 4-Aminosalicylic acid Chemical compound NC1=CC=C(C(O)=O)C(O)=C1 WUBBRNOQWQTFEX-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- TVZGACDUOSZQKY-LBPRGKRZSA-N 4-aminofolic acid Chemical compound C1=NC2=NC(N)=NC(N)=C2N=C1CNC1=CC=C(C(=O)N[C@@H](CCC(O)=O)C(O)=O)C=C1 TVZGACDUOSZQKY-LBPRGKRZSA-N 0.000 description 1
- HVCNXQOWACZAFN-UHFFFAOYSA-N 4-ethylmorpholine Chemical compound CCN1CCOCC1 HVCNXQOWACZAFN-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- SJRJJKPEHAURKC-UHFFFAOYSA-O 4-methylmorpholin-4-ium Chemical compound C[NH+]1CCOCC1 SJRJJKPEHAURKC-UHFFFAOYSA-O 0.000 description 1
- JWZZKOKVBUJMES-UHFFFAOYSA-N 4-{1-hydroxy-2-[(propan-2-yl)amino]ethyl}benzene-1,2-diol Chemical compound CC(C)NCC(O)C1=CC=C(O)C(O)=C1 JWZZKOKVBUJMES-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- UYBGABATOCWMIE-QXEWZRGKSA-N 5-[(3aS,4S,6aR)-2-oxo-1,3,3a,4,6,6a-hexahydrothieno[3,4-d]imidazol-4-yl]-N-(2-hydroxyethyl)pentanamide Chemical compound N1C(=O)N[C@@H]2[C@H](CCCCC(=O)NCCO)SC[C@@H]21 UYBGABATOCWMIE-QXEWZRGKSA-N 0.000 description 1
- 229930006677 A03BA01 - Atropine Natural products 0.000 description 1
- 229930000680 A04AD01 - Scopolamine Natural products 0.000 description 1
- 229940100198 ALKYLATING AGENTS Drugs 0.000 description 1
- 229940100197 ANTIMETABOLITES Drugs 0.000 description 1
- 229960003272 ASPARAGINASE Drugs 0.000 description 1
- 229940022663 Acetate Drugs 0.000 description 1
- UNFWWIHTNXNPBV-WXKVUWSESA-N Actinospectacin Chemical compound O([C@@H]1[C@@H](NC)[C@@H](O)[C@H]([C@@H]([C@H]1O1)O)NC)[C@]2(O)[C@H]1O[C@H](C)CC2=O UNFWWIHTNXNPBV-WXKVUWSESA-N 0.000 description 1
- ORILYTVJVMAKLC-UHFFFAOYSA-N Adamantane Chemical class C1C(C2)CC3CC1CC2C3 ORILYTVJVMAKLC-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 229940023808 Albuterol Drugs 0.000 description 1
- 229940045714 Alkyl sulfonate alkylating agents Drugs 0.000 description 1
- OFCNXPDARWKPPY-UHFFFAOYSA-N Allopurinol Chemical compound OC1=NC=NC2=C1C=NN2 OFCNXPDARWKPPY-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 206010001897 Alzheimer's disease Diseases 0.000 description 1
- DKNWSYNQZKUICI-UHFFFAOYSA-N Amantadine Chemical compound C1C(C2)CC3CC2CC1(N)C3 DKNWSYNQZKUICI-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 229960003805 Amantadine Drugs 0.000 description 1
- ROBVIMPUHSLWNV-UHFFFAOYSA-N Aminoglutethimide Chemical compound C=1C=C(N)C=CC=1C1(CC)CCC(=O)NC1=O ROBVIMPUHSLWNV-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 229960003437 Aminoglutethimide Drugs 0.000 description 1
- CBTVGIZVANVGBH-UHFFFAOYSA-N Aminomethyl propanol Chemical compound CC(C)(N)CO CBTVGIZVANVGBH-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 229960003896 Aminopterin Drugs 0.000 description 1
- IYIKLHRQXLHMJQ-UHFFFAOYSA-N Amiodarone Chemical compound CCCCC=1OC2=CC=CC=C2C=1C(=O)C1=CC(I)=C(OCCN(CC)CC)C(I)=C1 IYIKLHRQXLHMJQ-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 229960005260 Amiodarone Drugs 0.000 description 1
- 229920001276 Ammonium polyphosphate Polymers 0.000 description 1
- 239000004114 Ammonium polyphosphate Substances 0.000 description 1
- XCPGHVQEEXUHNC-UHFFFAOYSA-N Amsacrine Chemical compound COC1=CC(NS(C)(=O)=O)=CC=C1NC1=C(C=CC=C2)C2=NC2=CC=CC=C12 XCPGHVQEEXUHNC-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- YBBLVLTVTVSKRW-UHFFFAOYSA-N Anastrozole Chemical compound N#CC(C)(C)C1=CC(C(C)(C#N)C)=CC(CN2N=CN=C2)=C1 YBBLVLTVTVSKRW-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 206010003210 Arteriosclerosis Diseases 0.000 description 1
- 102000015790 Asparaginase Human genes 0.000 description 1
- 108010024976 Asparaginase Proteins 0.000 description 1
- RKUNBYITZUJHSG-SPUOUPEWSA-N Atropine Chemical compound O([C@H]1C[C@H]2CC[C@@H](C1)N2C)C(=O)C(CO)C1=CC=CC=C1 RKUNBYITZUJHSG-SPUOUPEWSA-N 0.000 description 1
- 229960000396 Atropine Drugs 0.000 description 1
- 229960002170 Azathioprine Drugs 0.000 description 1
- MQTOSJVFKKJCRP-BICOPXKESA-N Azithromycin Chemical compound O([C@@H]1[C@@H](C)C(=O)O[C@@H]([C@@]([C@H](O)[C@@H](C)N(C)C[C@H](C)C[C@@](C)(O)[C@H](O[C@H]2[C@@H]([C@H](C[C@@H](C)O2)N(C)C)O)[C@H]1C)(C)O)CC)[C@H]1C[C@@](C)(OC)[C@@H](O)[C@H](C)O1 MQTOSJVFKKJCRP-BICOPXKESA-N 0.000 description 1
- 101710042656 BQ2027_MB1231C Proteins 0.000 description 1
- KPYSYYIEGFHWSV-UHFFFAOYSA-N Baclofen Chemical compound OC(=O)CC(CN)C1=CC=C(Cl)C=C1 KPYSYYIEGFHWSV-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 229960000794 Baclofen Drugs 0.000 description 1
- GIJXKZJWITVLHI-PMOLBWCYSA-N Benzatropine Chemical compound O([C@H]1C[C@H]2CC[C@@H](C1)N2C)C(C=1C=CC=CC=1)C1=CC=CC=C1 GIJXKZJWITVLHI-PMOLBWCYSA-N 0.000 description 1
- 229940093239 Benztropine Drugs 0.000 description 1
- 230000037177 Biodistribution Effects 0.000 description 1
- YSXKPIUOCJLQIE-UHFFFAOYSA-N Biperiden Chemical compound C1C(C=C2)CC2C1C(C=1C=CC=CC=1)(O)CCN1CCCCC1 YSXKPIUOCJLQIE-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 229960001561 Bleomycin Drugs 0.000 description 1
- 108010006654 Bleomycin Proteins 0.000 description 1
- 230000035639 Blood Levels Effects 0.000 description 1
- KGBXLFKZBHKPEV-UHFFFAOYSA-N Boric acid Chemical compound OB(O)O KGBXLFKZBHKPEV-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 208000003174 Brain Neoplasms Diseases 0.000 description 1
- 241000219198 Brassica Species 0.000 description 1
- 235000003351 Brassica cretica Nutrition 0.000 description 1
- 235000003343 Brassica rupestris Nutrition 0.000 description 1
- XWTYSIMOBUGWOL-UHFFFAOYSA-N Bricaril Chemical compound CC(C)(C)NCC(O)C1=CC(O)=CC(O)=C1 XWTYSIMOBUGWOL-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- UQORYDLIGBDITI-UHFFFAOYSA-K C1=C2C(O)=CC=C(C=C3)C2=C2C3=C(S([O-])(=O)=O)C(S([O-])(=O)=O)=C(S([O-])(=O)=O)C2=C1 Chemical compound C1=C2C(O)=CC=C(C=C3)C2=C2C3=C(S([O-])(=O)=O)C(S([O-])(=O)=O)=C(S([O-])(=O)=O)C2=C1 UQORYDLIGBDITI-UHFFFAOYSA-K 0.000 description 1
- YQEZLKZALYSWHR-UHFFFAOYSA-N Calypsol Chemical compound C=1C=CC=C(Cl)C=1C1(NC)CCCCC1=O YQEZLKZALYSWHR-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- GAGWJHPBXLXJQN-UORFTKCHSA-N Capecitabine Chemical compound C1=C(F)C(NC(=O)OCCCCC)=NC(=O)N1[C@H]1[C@H](O)[C@H](O)[C@@H](C)O1 GAGWJHPBXLXJQN-UORFTKCHSA-N 0.000 description 1
- 229960004117 Capecitabine Drugs 0.000 description 1
- JNIIDKODPGHQSS-DHDCSXOGSA-N Capreomycin Chemical compound N1C(=O)\C(=C\NC(N)=O)NC(=O)C(CNC(=O)CC(N)CCCN)NC(=O)C(CO)NC(=O)C(N)CNC(=O)C1C1NC(N)=NCC1 JNIIDKODPGHQSS-DHDCSXOGSA-N 0.000 description 1
- 108010065839 Capreomycin Proteins 0.000 description 1
- FAKRSMQSSFJEIM-RQJHMYQMSA-N Captopril Chemical compound SC[C@@H](C)C(=O)N1CCC[C@H]1C(O)=O FAKRSMQSSFJEIM-RQJHMYQMSA-N 0.000 description 1
- FPPNZSSZRUTDAP-UWFZAAFLSA-N Carbenicillin Chemical compound N([C@H]1[C@H]2SC([C@@H](N2C1=O)C(O)=O)(C)C)C(=O)C(C(O)=O)C1=CC=CC=C1 FPPNZSSZRUTDAP-UWFZAAFLSA-N 0.000 description 1
- 229960003669 Carbenicillin Drugs 0.000 description 1
- 239000004215 Carbon black (E152) Substances 0.000 description 1
- BVKZGUZCCUSVTD-UHFFFAOYSA-N Carbonic acid Chemical compound OC(O)=O BVKZGUZCCUSVTD-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- OLESAACUTLOWQZ-UHFFFAOYSA-L Carboplatin Chemical compound O=C1O[Pt]([N]([H])([H])[H])([N]([H])([H])[H])OC(=O)C11CCC1 OLESAACUTLOWQZ-UHFFFAOYSA-L 0.000 description 1
- 229960004562 Carboplatin Drugs 0.000 description 1
- 102000013392 Carboxylesterase Human genes 0.000 description 1
- 108010051152 Carboxylesterase Proteins 0.000 description 1
- 206010007554 Cardiac failure Diseases 0.000 description 1
- YJQPYGGHQPGBLI-KGSXXDOSSA-N Cathomycin Chemical compound O1C(C)(C)[C@H](OC)[C@@H](OC(N)=O)[C@@H](O)[C@@H]1OC1=CC=C(C(O)=C(NC(=O)C=2C=C(CC=C(C)C)C(O)=CC=2)C(=O)O2)C2=C1C YJQPYGGHQPGBLI-KGSXXDOSSA-N 0.000 description 1
- MLYYVTUWGNIJIB-BXKDBHETSA-N Cefazolin Chemical compound S1C(C)=NN=C1SCC1=C(C(O)=O)N2C(=O)[C@@H](NC(=O)CN3N=NN=C3)[C@H]2SC1 MLYYVTUWGNIJIB-BXKDBHETSA-N 0.000 description 1
- 229960001139 Cefazolin Drugs 0.000 description 1
- SNBUBQHDYVFSQF-HIFRSBDPSA-N Cefmetazole Chemical compound S([C@@H]1[C@@](C(N1C=1C(O)=O)=O)(NC(=O)CSCC#N)OC)CC=1CSC1=NN=NN1C SNBUBQHDYVFSQF-HIFRSBDPSA-N 0.000 description 1
- 229960003585 Cefmetazole Drugs 0.000 description 1
- 229960004261 Cefotaxime Drugs 0.000 description 1
- WZOZEZRFJCJXNZ-ZBFHGGJFSA-N Cefoxitin Chemical compound N([C@]1(OC)C(N2C(=C(COC(N)=O)CS[C@@H]21)C(O)=O)=O)C(=O)CC1=CC=CS1 WZOZEZRFJCJXNZ-ZBFHGGJFSA-N 0.000 description 1
- 229960002682 Cefoxitin Drugs 0.000 description 1
- 210000003169 Central Nervous System Anatomy 0.000 description 1
- 108010022830 Cetuximab Proteins 0.000 description 1
- JWBOIMRXGHLCPP-UHFFFAOYSA-N Chloditan Chemical compound C=1C=CC=C(Cl)C=1C(C(Cl)Cl)C1=CC=C(Cl)C=C1 JWBOIMRXGHLCPP-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 229960004630 Chlorambucil Drugs 0.000 description 1
- JCKYGMPEJWAADB-UHFFFAOYSA-N Chlorambucil Chemical compound OC(=O)CCCC1=CC=C(N(CCCl)CCCl)C=C1 JCKYGMPEJWAADB-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- HAWPXGHAZFHHAD-UHFFFAOYSA-N Chlormethine Chemical compound ClCCN(C)CCCl HAWPXGHAZFHHAD-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- WHTVZRBIWZFKQO-UHFFFAOYSA-N Chloroquine Chemical compound ClC1=CC=C2C(NC(C)CCCN(CC)CC)=CC=NC2=C1 WHTVZRBIWZFKQO-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- MYSWGUAQZAJSOK-UHFFFAOYSA-N Ciprofloxacin Chemical compound C12=CC(N3CCNCC3)=C(F)C=C2C(=O)C(C(=O)O)=CN1C1CC1 MYSWGUAQZAJSOK-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 229940001468 Citrate Drugs 0.000 description 1
- PTOAARAWEBMLNO-KVQBGUIXSA-N Cladribine Chemical compound C1=NC=2C(N)=NC(Cl)=NC=2N1[C@H]1C[C@H](O)[C@@H](CO)O1 PTOAARAWEBMLNO-KVQBGUIXSA-N 0.000 description 1
- HEMJJKBWTPKOJG-UHFFFAOYSA-N Clearol Chemical compound CC1=CC=C(C)C(OCCCC(C)(C)C(O)=O)=C1 HEMJJKBWTPKOJG-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 102000015550 Cyclin-dependent kinase inhibitor Human genes 0.000 description 1
- 108050004829 Cyclin-dependent kinase inhibitor Proteins 0.000 description 1
- 229920000858 Cyclodextrin Polymers 0.000 description 1
- 229940097362 Cyclodextrins Drugs 0.000 description 1
- 229960004397 Cyclophosphamide Drugs 0.000 description 1
- CMSMOCZEIVJLDB-UHFFFAOYSA-N Cyclophosphamide Chemical compound ClCCN(CCCl)P1(=O)NCCCO1 CMSMOCZEIVJLDB-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- UFULAYFCSOUIOV-UHFFFAOYSA-N Cysteamine Chemical compound NCCS UFULAYFCSOUIOV-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 229960003067 Cystine Drugs 0.000 description 1
- UHDGCWIWMRVCDJ-CCXZUQQUSA-N Cytosar Chemical compound O=C1N=C(N)C=CN1[C@H]1[C@@H](O)[C@H](O)[C@@H](CO)O1 UHDGCWIWMRVCDJ-CCXZUQQUSA-N 0.000 description 1
- GUBGYTABKSRVRQ-CUHNMECISA-N D-Cellobiose Chemical compound O[C@@H]1[C@@H](O)[C@H](O)[C@@H](CO)O[C@H]1O[C@@H]1[C@@H](CO)OC(O)[C@H](O)[C@H]1O GUBGYTABKSRVRQ-CUHNMECISA-N 0.000 description 1
- WQZGKKKJIJFFOK-QTVWNMPRSA-N D-mannopyranose Chemical compound OC[C@H]1OC(O)[C@@H](O)[C@@H](O)[C@@H]1O WQZGKKKJIJFFOK-QTVWNMPRSA-N 0.000 description 1
- 229960000640 Dactinomycin Drugs 0.000 description 1
- 108010092160 Dactinomycin Proteins 0.000 description 1
- 229960002887 Deanol Drugs 0.000 description 1
- 239000004375 Dextrin Substances 0.000 description 1
- 229920001353 Dextrin Polymers 0.000 description 1
- 206010012735 Diarrhoea Diseases 0.000 description 1
- RCJVRSBWZCNNQT-UHFFFAOYSA-N Dichlorine monoxide Chemical class ClOCl RCJVRSBWZCNNQT-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- XBPCUCUWBYBCDP-UHFFFAOYSA-N Dicyclohexylamine Chemical compound C1CCCCC1NC1CCCCC1 XBPCUCUWBYBCDP-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- LGTLXDJOAJDFLR-UHFFFAOYSA-N Diethyl chlorophosphate Chemical compound CCOP(Cl)(=O)OCC LGTLXDJOAJDFLR-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- BFSVOASYOCHEOV-UHFFFAOYSA-N Diethylethanolamine Chemical compound CCN(CC)CCO BFSVOASYOCHEOV-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- RGLYKWWBQGJZGM-ISLYRVAYSA-N Diethylstilbestrol Chemical compound C=1C=C(O)C=CC=1C(/CC)=C(\CC)C1=CC=C(O)C=C1 RGLYKWWBQGJZGM-ISLYRVAYSA-N 0.000 description 1
- UXZFQZANDVDGMM-UHFFFAOYSA-N Diiodohydroxyquinoline Chemical compound C1=CN=C2C(O)=C(I)C=C(I)C2=C1 UXZFQZANDVDGMM-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- IZEKFCXSFNUWAM-UHFFFAOYSA-N Dipyridamole Chemical compound C=12N=C(N(CCO)CCO)N=C(N3CCCCC3)C2=NC(N(CCO)CCO)=NC=1N1CCCCC1 IZEKFCXSFNUWAM-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 229960002768 Dipyridamole Drugs 0.000 description 1
- JRWZLRBJNMZMFE-UHFFFAOYSA-N Dobutamine hydrobromide Chemical compound C=1C=C(O)C(O)=CC=1CCNC(C)CCC1=CC=C(O)C=C1 JRWZLRBJNMZMFE-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- ZQZFYGIXNQKOAV-OCEACIFDSA-N Droloxifene Chemical compound C=1C=CC=CC=1C(/CC)=C(C=1C=C(O)C=CC=1)\C1=CC=C(OCCN(C)C)C=C1 ZQZFYGIXNQKOAV-OCEACIFDSA-N 0.000 description 1
- 229950004203 Droloxifene Drugs 0.000 description 1
- 239000006144 Dulbecco’s modified Eagle's medium Substances 0.000 description 1
- 208000000059 Dyspnea Diseases 0.000 description 1
- 206010013975 Dyspnoeas Diseases 0.000 description 1
- 102000001301 EGF receptors Human genes 0.000 description 1
- 108060006698 EGF receptors Proteins 0.000 description 1
- 229960002549 ENOXACIN Drugs 0.000 description 1
- 102100009851 ERBB4 Human genes 0.000 description 1
- 241000196324 Embryophyta Species 0.000 description 1
- IDYZIJYBMGIQMJ-UHFFFAOYSA-N Enoxacin Chemical compound N1=C2N(CC)C=C(C(O)=O)C(=O)C2=CC(F)=C1N1CCNCC1 IDYZIJYBMGIQMJ-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 229940088598 Enzyme Drugs 0.000 description 1
- UCTWMZQNUQWSLP-VIFPVBQESA-N Epinephrine Chemical compound CNC[C@H](O)C1=CC=C(O)C(O)=C1 UCTWMZQNUQWSLP-VIFPVBQESA-N 0.000 description 1
- 229940082789 Erbitux Drugs 0.000 description 1
- OFKDAAIKGIBASY-VFGNJEKYSA-N Ergotamine Chemical class C([C@H]1C(=O)N2CCC[C@H]2[C@]2(O)O[C@@](C(N21)=O)(C)NC(=O)[C@H]1CN([C@H]2C(C3=CC=CC4=NC=C([C]34)C2)=C1)C)C1=CC=CC=C1 OFKDAAIKGIBASY-VFGNJEKYSA-N 0.000 description 1
- 241000588724 Escherichia coli Species 0.000 description 1
- 229960005309 Estradiol Drugs 0.000 description 1
- 229960000285 Ethambutol Drugs 0.000 description 1
- AEUTYOVWOVBAKS-UWVGGRQHSA-N Ethambutol Chemical compound CC[C@@H](CO)NCCN[C@@H](CC)CO AEUTYOVWOVBAKS-UWVGGRQHSA-N 0.000 description 1
- 229960005420 Etoposide Drugs 0.000 description 1
- 229960000304 Folic Acid Drugs 0.000 description 1
- NGGMYCMLYOUNGM-CSDLUJIJSA-N Fumagillin Chemical compound C([C@H]([C@H]([C@@H]1[C@]2(C)[C@H](O2)CC=C(C)C)OC)OC(=O)\C=C\C=C\C=C\C=C\C(O)=O)C[C@@]21CO2 NGGMYCMLYOUNGM-CSDLUJIJSA-N 0.000 description 1
- 206010059024 Gastrointestinal toxicity Diseases 0.000 description 1
- 108010010803 Gelatin Proteins 0.000 description 1
- 208000005017 Glioblastoma Diseases 0.000 description 1
- 239000004471 Glycine Substances 0.000 description 1
- ACGDKVXYNVEAGU-UHFFFAOYSA-N Guanethidine Chemical compound NC(N)=NCCN1CCCCCCC1 ACGDKVXYNVEAGU-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 229960003602 Guanethidine Drugs 0.000 description 1
- 239000007995 HEPES buffer Substances 0.000 description 1
- 206010019280 Heart failure Diseases 0.000 description 1
- VKYKSIONXSXAKP-UHFFFAOYSA-N Hexamethylenetetramine Chemical compound C1N(C2)CN3CN1CN2C3 VKYKSIONXSXAKP-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- RPTUSVTUFVMDQK-UHFFFAOYSA-N Hidralazin Chemical compound C1=CC=C2C(NN)=NN=CC2=C1 RPTUSVTUFVMDQK-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 229960002474 Hydralazine Drugs 0.000 description 1
- STECJAGHUSJQJN-GAUPFVANSA-N Hyoscine Natural products C1([C@H](CO)C(=O)OC2C[C@@H]3N([C@H](C2)[C@@H]2[C@H]3O2)C)=CC=CC=C1 STECJAGHUSJQJN-GAUPFVANSA-N 0.000 description 1
- 206010020772 Hypertension Diseases 0.000 description 1
- 102100014263 IGF1R Human genes 0.000 description 1
- 101700025802 IGF1R Proteins 0.000 description 1
- 229960000908 Idarubicin Drugs 0.000 description 1
- XDXDZDZNSLXDNA-TZNDIEGXSA-N Idarubicin hydrochloride Chemical compound C1[C@H](N)[C@H](O)[C@H](C)O[C@H]1O[C@@H]1C2=C(O)C(C(=O)C3=CC=CC=C3C3=O)=C3C(O)=C2C[C@@](O)(C(C)=O)C1 XDXDZDZNSLXDNA-TZNDIEGXSA-N 0.000 description 1
- 206010061218 Inflammation Diseases 0.000 description 1
- 229940047124 Interferons Drugs 0.000 description 1
- 102000014150 Interferons Human genes 0.000 description 1
- 108010050904 Interferons Proteins 0.000 description 1
- 229940047122 Interleukins Drugs 0.000 description 1
- 102000015696 Interleukins Human genes 0.000 description 1
- 108010063738 Interleukins Proteins 0.000 description 1
- 229940120520 Iodoquinol Drugs 0.000 description 1
- QRXWMOHMRWLFEY-UHFFFAOYSA-N Isoniazid Chemical compound NNC(=O)C1=CC=NC=C1 QRXWMOHMRWLFEY-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- JJWLVOIRVHMVIS-UHFFFAOYSA-N Isopropylamine Chemical compound CC(C)N JJWLVOIRVHMVIS-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 229940039009 Isoproterenol Drugs 0.000 description 1
- 102100013180 KDR Human genes 0.000 description 1
- XMAYWYJOQHXEEK-OZXSUGGESA-N Ketoconazole Chemical compound C1CN(C(=O)C)CCN1C(C=C1)=CC=C1OC[C@@H]1O[C@@](CN2C=NC=C2)(C=2C(=CC(Cl)=CC=2)Cl)OC1 XMAYWYJOQHXEEK-OZXSUGGESA-N 0.000 description 1
- SFLSHLFXELFNJZ-MRVPVSSYSA-N L-Noradrenaline Natural products NC[C@@H](O)C1=CC=C(O)C(O)=C1 SFLSHLFXELFNJZ-MRVPVSSYSA-N 0.000 description 1
- LEVWYRKDKASIDU-IMJSIDKUSA-N L-cystine zwitterion Chemical compound [O-]C(=O)[C@@H]([NH3+])CSSC[C@H]([NH3+])C([O-])=O LEVWYRKDKASIDU-IMJSIDKUSA-N 0.000 description 1
- 206010051602 Laziness Diseases 0.000 description 1
- 229940008250 Leuprolide Drugs 0.000 description 1
- 108010000817 Leuprolide Proteins 0.000 description 1
- 229960004338 Leuprorelin Drugs 0.000 description 1
- GSDSWSVVBLHKDQ-UHFFFAOYSA-N Levofloxacin Chemical compound FC1=CC(C(C(C(O)=O)=C2)=O)=C3N2C(C)COC3=C1N1CCN(C)CC1 GSDSWSVVBLHKDQ-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 210000004185 Liver Anatomy 0.000 description 1
- 229960005015 Local anesthetics Drugs 0.000 description 1
- 229940083877 Local anesthetics for treatment of hemorrhoids and anal fissures for topical use Drugs 0.000 description 1
- ZEKZLJVOYLTDKK-UHFFFAOYSA-N Lomefloxacin Chemical compound FC1=C2N(CC)C=C(C(O)=O)C(=O)C2=CC(F)=C1N1CCNC(C)C1 ZEKZLJVOYLTDKK-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 206010025482 Malaise Diseases 0.000 description 1
- 229960004961 Mechlorethamine Drugs 0.000 description 1
- SGDBTWWWUNNDEQ-LBPRGKRZSA-N Melphalan Chemical compound OC(=O)[C@@H](N)CC1=CC=C(N(CCCl)CCCl)C=C1 SGDBTWWWUNNDEQ-LBPRGKRZSA-N 0.000 description 1
- 229960003151 Mercaptamine Drugs 0.000 description 1
- ZOMNIUBKTOKEHS-UHFFFAOYSA-L Mercury(I) chloride Chemical compound Cl[Hg][Hg]Cl ZOMNIUBKTOKEHS-UHFFFAOYSA-L 0.000 description 1
- 229960004011 Methenamine Drugs 0.000 description 1
- RJQXTJLFIWVMTO-TYNCELHUSA-N Methicillin Chemical compound COC1=CC=CC(OC)=C1C(=O)N[C@@H]1C(=O)N2[C@@H](C(O)=O)C(C)(C)S[C@@H]21 RJQXTJLFIWVMTO-TYNCELHUSA-N 0.000 description 1
- 229960000282 Metronidazole Drugs 0.000 description 1
- BYBLEWFAAKGYCD-UHFFFAOYSA-N Miconazole Chemical compound ClC1=CC(Cl)=CC=C1COC(C=1C(=CC(Cl)=CC=1)Cl)CN1C=NC=C1 BYBLEWFAAKGYCD-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 229960000350 Mitotane Drugs 0.000 description 1
- 210000004400 Mucous Membrane Anatomy 0.000 description 1
- VMGAPWLDMVPYIA-HIDZBRGKSA-N N'-amino-N-iminomethanimidamide Chemical compound N\N=C\N=N VMGAPWLDMVPYIA-HIDZBRGKSA-N 0.000 description 1
- ZUHZZVMEUAUWHY-UHFFFAOYSA-N N,N-dimethylpropan-1-amine Chemical compound CCCN(C)C ZUHZZVMEUAUWHY-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- XWBWIAOWSABHFI-UHFFFAOYSA-N N-(1,3-dihydroxyoctadec-4-en-2-yl)icosanamide Chemical compound CCCCCCCCCCCCCCCCCCCC(=O)NC(CO)C(O)C=CCCCCCCCCCCCCC XWBWIAOWSABHFI-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- WMMDWCWHMHGCSH-OMLYRYIZSA-N N-[(2S,3S,4S,6R)-3-hydroxy-2-methyl-6-[[(1S,3S)-3,5,12-trihydroxy-3-(2-hydroxyacetyl)-10-methoxy-6,11-dioxo-2,4-dihydro-1H-tetracen-1-yl]oxy]oxan-4-yl]acetamide Chemical compound O([C@H]1C[C@@](O)(CC=2C(O)=C3C(=O)C=4C=CC=C(C=4C(=O)C3=C(O)C=21)OC)C(=O)CO)[C@H]1C[C@H](NC(C)=O)[C@H](O)[C@H](C)O1 WMMDWCWHMHGCSH-OMLYRYIZSA-N 0.000 description 1
- HTLZVHNRZJPSMI-UHFFFAOYSA-N N-ethylpiperidine Chemical compound CCN1CCCCC1 HTLZVHNRZJPSMI-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- GPXLMGHLHQJAGZ-JTDSTZFVSA-N Nafcillin Chemical compound C1=CC=CC2=C(C(=O)N[C@@H]3C(N4[C@H](C(C)(C)S[C@@H]43)C(O)=O)=O)C(OCC)=CC=C21 GPXLMGHLHQJAGZ-JTDSTZFVSA-N 0.000 description 1
- 229960000210 Nalidixic Acid Drugs 0.000 description 1
- ALWKGYPQUAPLQC-UHFFFAOYSA-N Neostigmine Chemical compound CN(C)C(=O)OC1=CC=CC([N+](C)(C)C)=C1 ALWKGYPQUAPLQC-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 229960002362 Neostigmine Drugs 0.000 description 1
- 229960002715 Nicotine Drugs 0.000 description 1
- SNICXCGAKADSCV-JTQLQIEISA-N Nicotine Chemical compound CN1CCC[C@H]1C1=CC=CN=C1 SNICXCGAKADSCV-JTQLQIEISA-N 0.000 description 1
- NXFQHRVNIOXGAQ-YCRREMRBSA-N Nitrofurantoin Chemical compound O1C([N+](=O)[O-])=CC=C1\C=N\N1C(=O)NC(=O)C1 NXFQHRVNIOXGAQ-YCRREMRBSA-N 0.000 description 1
- 229960000564 Nitrofurantoin Drugs 0.000 description 1
- 208000002154 Non-Small-Cell Lung Carcinoma Diseases 0.000 description 1
- 108009000071 Non-small cell lung cancer Proteins 0.000 description 1
- 229960002748 Norepinephrine Drugs 0.000 description 1
- 229960002950 Novobiocin Drugs 0.000 description 1
- 239000004677 Nylon Substances 0.000 description 1
- 229960001699 Ofloxacin Drugs 0.000 description 1
- 229950008017 Ormaplatin Drugs 0.000 description 1
- UWYHMGVUTGAWSP-JKIFEVAISA-N Oxacillin Chemical compound N([C@@H]1C(N2[C@H](C(C)(C)S[C@@H]21)C(O)=O)=O)C(=O)C1=C(C)ON=C1C1=CC=CC=C1 UWYHMGVUTGAWSP-JKIFEVAISA-N 0.000 description 1
- 206010061536 Parkinson's disease Diseases 0.000 description 1
- 210000004197 Pelvis Anatomy 0.000 description 1
- XDRYMKDFEDOLFX-UHFFFAOYSA-N Pentamidine Chemical compound C1=CC(C(=N)N)=CC=C1OCCCCCOC1=CC=C(C(N)=N)C=C1 XDRYMKDFEDOLFX-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 229960004448 Pentamidine Drugs 0.000 description 1
- 108090000284 Pepsin A Proteins 0.000 description 1
- 229950009351 Perfosfamide Drugs 0.000 description 1
- 241001662443 Phemeranthus parviflorus Species 0.000 description 1
- BPLBGHOLXOTWMN-MBNYWOFBSA-N Phenoxymethylpenicillin Chemical compound N([C@H]1[C@H]2SC([C@@H](N2C1=O)C(O)=O)(C)C)C(=O)COC1=CC=CC=C1 BPLBGHOLXOTWMN-MBNYWOFBSA-N 0.000 description 1
- PIJVFDBKTWXHHD-HIFRSBDPSA-N Physostigmine Chemical compound C12=CC(OC(=O)NC)=CC=C2N(C)[C@@H]2[C@@]1(C)CCN2C PIJVFDBKTWXHHD-HIFRSBDPSA-N 0.000 description 1
- 229960001697 Physostigmine Drugs 0.000 description 1
- 229940068041 Phytic Acid Drugs 0.000 description 1
- 230000037289 Plasma half life Effects 0.000 description 1
- 230000037240 Plasma half-life Effects 0.000 description 1
- 239000004698 Polyethylene (PE) Substances 0.000 description 1
- 229920002873 Polyethylenimine Polymers 0.000 description 1
- 239000004793 Polystyrene Substances 0.000 description 1
- TUZYXOIXSAXUGO-PZAWKZKUSA-N Pravastatin Chemical compound C1=C[C@H](C)[C@H](CC[C@@H](O)C[C@@H](O)CC(O)=O)[C@H]2[C@@H](OC(=O)[C@@H](C)CC)C[C@H](O)C=C21 TUZYXOIXSAXUGO-PZAWKZKUSA-N 0.000 description 1
- 229960002965 Pravastatin Drugs 0.000 description 1
- IENZQIKPVFGBNW-UHFFFAOYSA-N Prazosin Chemical compound N=1C(N)=C2C=C(OC)C(OC)=CC2=NC=1N(CC1)CCN1C(=O)C1=CC=CO1 IENZQIKPVFGBNW-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- REQCZEXYDRLIBE-UHFFFAOYSA-N Procainamide Chemical compound CCN(CC)CCNC(=O)C1=CC=C(N)C=C1 REQCZEXYDRLIBE-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- VVWYOYDLCMFIEM-UHFFFAOYSA-N Propantheline Chemical compound C1=CC=C2C(C(=O)OCC[N+](C)(C(C)C)C(C)C)C3=CC=CC=C3OC2=C1 VVWYOYDLCMFIEM-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- WGYKZJWCGVVSQN-UHFFFAOYSA-N Propylamine Chemical compound CCCN WGYKZJWCGVVSQN-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 102000004022 Protein-Tyrosine Kinases Human genes 0.000 description 1
- 108090000412 Protein-Tyrosine Kinases Proteins 0.000 description 1
- IPEHBUMCGVEMRF-UHFFFAOYSA-N Pyrazinamide Chemical compound NC(=O)C1=CN=CC=N1 IPEHBUMCGVEMRF-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 229960005206 Pyrazinamide Drugs 0.000 description 1
- WKSAUQYGYAYLPV-UHFFFAOYSA-N Pyrimethamine Chemical compound CCC1=NC(N)=NC(N)=C1C1=CC=C(Cl)C=C1 WKSAUQYGYAYLPV-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 229940048084 Pyrophosphate Drugs 0.000 description 1
- JSDRRTOADPPCHY-HSQYWUDLSA-N Quinapril Chemical compound C([C@@H](C(=O)OCC)N[C@@H](C)C(=O)N1[C@@H](CC2=CC=CC=C2C1)C(O)=O)CC1=CC=CC=C1 JSDRRTOADPPCHY-HSQYWUDLSA-N 0.000 description 1
- ATEBXHFBFRCZMA-VXTBVIBXSA-N RIFABUTIN Chemical compound O([C@](C1=O)(C)O/C=C/[C@@H]([C@H]([C@@H](OC(C)=O)[C@H](C)[C@H](O)[C@H](C)[C@@H](O)[C@@H](C)\C=C\C=C(C)/C(=O)NC(=C2N3)C(=O)C=4C(O)=C5C)C)OC)C5=C1C=4C2=NC13CCN(CC(C)C)CC1 ATEBXHFBFRCZMA-VXTBVIBXSA-N 0.000 description 1
- JQXXHWHPUNPDRT-WLSIYKJHSA-N RIFAMPICIN Chemical compound O([C@](C1=O)(C)O/C=C/[C@@H]([C@H]([C@@H](OC(C)=O)[C@H](C)[C@H](O)[C@H](C)[C@@H](O)[C@@H](C)\C=C\C=C(C)/C(=O)NC=2C(O)=C3C([O-])=C4C)C)OC)C4=C1C3=C(O)C=2\C=N\N1CC[NH+](C)CC1 JQXXHWHPUNPDRT-WLSIYKJHSA-N 0.000 description 1
- HDACQVRGBOVJII-JBDAPHQKSA-N Ramipril Chemical compound C([C@@H](C(=O)OCC)N[C@@H](C)C(=O)N1[C@@H](C[C@@H]2CCC[C@@H]21)C(O)=O)CC1=CC=CC=C1 HDACQVRGBOVJII-JBDAPHQKSA-N 0.000 description 1
- 229960003401 Ramipril Drugs 0.000 description 1
- 229940081190 Rifampin Drugs 0.000 description 1
- UBCHPRBFMUDMNC-UHFFFAOYSA-N Rimantadine Chemical compound C1C(C2)CC3CC2CC1(C(N)C)C3 UBCHPRBFMUDMNC-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 241000283984 Rodentia Species 0.000 description 1
- 229940100515 SORBITAN Drugs 0.000 description 1
- NDAUXUAQIAJITI-UHFFFAOYSA-N Salbutamol Chemical compound CC(C)(C)NCC(O)C1=CC=C(O)C(CO)=C1 NDAUXUAQIAJITI-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- STECJAGHUSJQJN-FWXGHANASA-N Scopolamine Chemical compound C1([C@@H](CO)C(=O)O[C@H]2C[C@@H]3N([C@H](C2)[C@@H]2[C@H]3O2)C)=CC=CC=C1 STECJAGHUSJQJN-FWXGHANASA-N 0.000 description 1
- 102000005632 Single-Chain Antibodies Human genes 0.000 description 1
- 108010070144 Single-Chain Antibodies Proteins 0.000 description 1
- 210000003491 Skin Anatomy 0.000 description 1
- 229940005581 Sodium Lactate Drugs 0.000 description 1
- NGSFWBMYFKHRBD-UHFFFAOYSA-M Sodium lactate Chemical compound [Na+].CC(O)C([O-])=O NGSFWBMYFKHRBD-UHFFFAOYSA-M 0.000 description 1
- JNYAEWCLZODPBN-CTQIIAAMSA-N Sorbitan Chemical compound OCC(O)C1OCC(O)[C@@H]1O JNYAEWCLZODPBN-CTQIIAAMSA-N 0.000 description 1
- 210000000952 Spleen Anatomy 0.000 description 1
- 229960001052 Streptozocin Drugs 0.000 description 1
- ZSJLQEPLLKMAKR-GKHCUFPYSA-N Streptozotocin Chemical compound O=NN(C)C(=O)N[C@H]1[C@@H](O)O[C@H](CO)[C@@H](O)[C@@H]1O ZSJLQEPLLKMAKR-GKHCUFPYSA-N 0.000 description 1
- 108060008443 TPPP Proteins 0.000 description 1
- YLJREFDVOIBQDA-UHFFFAOYSA-N Tacrine Chemical compound C1=CC=C2C(N)=C(CCCC3)C3=NC2=C1 YLJREFDVOIBQDA-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 229960001685 Tacrine Drugs 0.000 description 1
- NKANXQFJJICGDU-QPLCGJKRSA-N Tamoxifen Chemical compound C=1C=CC=CC=1C(/CC)=C(C=1C=CC(OCCN(C)C)=CC=1)/C1=CC=CC=C1 NKANXQFJJICGDU-QPLCGJKRSA-N 0.000 description 1
- 229960001603 Tamoxifen Drugs 0.000 description 1
- WFWLQNSHRPWKFK-UHFFFAOYSA-N Tegafur Chemical compound O=C1NC(=O)C(F)=CN1C1OCCC1 WFWLQNSHRPWKFK-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 229960001278 Teniposide Drugs 0.000 description 1
- 229960000195 Terbutaline Drugs 0.000 description 1
- YBRBMKDOPFTVDT-UHFFFAOYSA-N Tert-Butylamine Chemical compound CC(C)(C)N YBRBMKDOPFTVDT-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 229960005353 Testolactone Drugs 0.000 description 1
- 239000004098 Tetracycline Substances 0.000 description 1
- 229940040944 Tetracyclines Drugs 0.000 description 1
- 229960005454 Thioguanine Drugs 0.000 description 1
- 229960001295 Tocopherol Drugs 0.000 description 1
- 231100000765 Toxin Toxicity 0.000 description 1
- 102000004338 Transferrin Human genes 0.000 description 1
- 108090000901 Transferrin Proteins 0.000 description 1
- AVBGNFCMKJOFIN-UHFFFAOYSA-N Triethylammonium acetate Chemical compound CC(O)=O.CCN(CC)CC AVBGNFCMKJOFIN-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- GSEJCLTVZPLZKY-UHFFFAOYSA-N Tris Chemical compound OCCN(CCO)CCO GSEJCLTVZPLZKY-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- GKODZWOPPOTFGA-UHFFFAOYSA-N Tris(Hydroxyethyl)Aminomethane Chemical compound OCCC(N)(CCO)CCO GKODZWOPPOTFGA-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- HRXKRNGNAMMEHJ-UHFFFAOYSA-K Trisodium citrate Chemical compound [Na+].[Na+].[Na+].[O-]C(=O)CC(O)(CC([O-])=O)C([O-])=O HRXKRNGNAMMEHJ-UHFFFAOYSA-K 0.000 description 1
- UMKFEPPTGMDVMI-UHFFFAOYSA-N Trofosfamide Chemical compound ClCCN(CCCl)P1(=O)OCCCN1CCCl UMKFEPPTGMDVMI-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- IDPUKCWIGUEADI-UHFFFAOYSA-N Uramustine Chemical compound ClCCN(CCCl)C1=CNC(=O)NC1=O IDPUKCWIGUEADI-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 210000001635 Urinary Tract Anatomy 0.000 description 1
- MYPYJXKWCTUITO-LYRMYLQWSA-N VANCOMYCIN Chemical compound O([C@@H]1[C@@H](O)[C@H](O)[C@@H](CO)O[C@H]1OC1=C2C=C3C=C1OC1=CC=C(C=C1Cl)[C@@H](O)[C@H](C(N[C@@H](CC(N)=O)C(=O)N[C@H]3C(=O)N[C@H]1C(=O)N[C@H](C(N[C@@H](C3=CC(O)=CC(O)=C3C=3C(O)=CC=C1C=3)C(O)=O)=O)[C@H](O)C1=CC=C(C(=C1)Cl)O2)=O)NC(=O)[C@@H](CC(C)C)NC)[C@H]1C[C@](C)(N)[C@H](O)[C@H](C)O1 MYPYJXKWCTUITO-LYRMYLQWSA-N 0.000 description 1
- 229960003165 Vancomycin Drugs 0.000 description 1
- 108010059993 Vancomycin Proteins 0.000 description 1
- UGGWPQSBPIFKDZ-KOTLKJBCSA-N Vindesine Chemical compound C([C@@H](C[C@]1(C(=O)OC)C=2C(=CC3=C([C@]45[C@H]([C@@]([C@H](O)[C@]6(CC)C=CCN([C@H]56)CC4)(O)C(N)=O)N3C)C=2)OC)C[C@@](C2)(O)CC)N2CCC2=C1N=C1[C]2C=CC=C1 UGGWPQSBPIFKDZ-KOTLKJBCSA-N 0.000 description 1
- 229960004355 Vindesine Drugs 0.000 description 1
- NMDYYWFGPIMTKO-HBVLKOHWSA-N Vinflunine Chemical compound C([C@@](C1=C(C2=CC=CC=C2N1)C1)(C2=C(OC)C=C3N(C)[C@@H]4[C@@]5(C3=C2)CCN2CC=C[C@]([C@@H]52)([C@H]([C@]4(O)C(=O)OC)OC(C)=O)CC)C(=O)OC)[C@H]2C[C@@H](C(C)(F)F)CN1C2 NMDYYWFGPIMTKO-HBVLKOHWSA-N 0.000 description 1
- DDNCQMVWWZOMLN-IRLDBZIGSA-N Vinpocetine Chemical compound C1=CC=C2C(CCN3CCC4)=C5[C@@H]3[C@]4(CC)C=C(C(=O)OCC)N5C2=C1 DDNCQMVWWZOMLN-IRLDBZIGSA-N 0.000 description 1
- QDLHCMPXEPAAMD-QAIWCSMKSA-N Wortmannin Chemical compound C1([C@]2(C)C3=C(C4=O)OC=C3C(=O)O[C@@H]2COC)=C4[C@@H]2CCC(=O)[C@@]2(C)C[C@H]1OC(C)=O QDLHCMPXEPAAMD-QAIWCSMKSA-N 0.000 description 1
- BPICBUSOMSTKRF-UHFFFAOYSA-N Xylazine Chemical compound CC1=CC=CC(C)=C1NC1=NCCCS1 BPICBUSOMSTKRF-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 229960001600 Xylazine Drugs 0.000 description 1
- NNJVILVZKWQKPM-UHFFFAOYSA-N Xylocaine Chemical compound CCN(CC)CC(=O)NC1=C(C)C=CC=C1C NNJVILVZKWQKPM-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 229960002555 Zidovudine Drugs 0.000 description 1
- FBTUMDXHSRTGRV-ALTNURHMSA-N Zorubicin Chemical compound O([C@H]1C[C@@](O)(CC=2C(O)=C3C(=O)C=4C=CC=C(C=4C(=O)C3=C(O)C=21)OC)C(\C)=N\NC(=O)C=1C=CC=CC=1)[C@H]1C[C@H](N)[C@H](O)[C@H](C)O1 FBTUMDXHSRTGRV-ALTNURHMSA-N 0.000 description 1
- 125000004036 acetal group Chemical group 0.000 description 1
- QTBSBXVTEAMEQO-UHFFFAOYSA-M acetate Chemical compound CC([O-])=O QTBSBXVTEAMEQO-UHFFFAOYSA-M 0.000 description 1
- 238000000184 acid digestion Methods 0.000 description 1
- 239000003929 acidic solution Substances 0.000 description 1
- RJURFGZVJUQBHK-IIXSONLDSA-N actinomycin D Chemical compound C[C@H]1OC(=O)[C@H](C(C)C)N(C)C(=O)CN(C)C(=O)[C@@H]2CCCN2C(=O)[C@@H](C(C)C)NC(=O)[C@H]1NC(=O)C1=C(N)C(=O)C(C)=C2OC(C(C)=CC=C3C(=O)N[C@@H]4C(=O)N[C@@H](C(N5CCC[C@H]5C(=O)N(C)CC(=O)N(C)[C@@H](C(C)C)C(=O)O[C@@H]4C)=O)C(C)C)=C3N=C21 RJURFGZVJUQBHK-IIXSONLDSA-N 0.000 description 1
- 230000003213 activating Effects 0.000 description 1
- 231100000403 acute toxicity Toxicity 0.000 description 1
- 125000002252 acyl group Chemical group 0.000 description 1
- 239000000654 additive Substances 0.000 description 1
- 230000001800 adrenalinergic Effects 0.000 description 1
- 230000002411 adverse Effects 0.000 description 1
- 239000010441 alabaster Substances 0.000 description 1
- 150000001298 alcohols Chemical class 0.000 description 1
- 125000003172 aldehyde group Chemical group 0.000 description 1
- 150000008044 alkali metal hydroxides Chemical class 0.000 description 1
- 125000005741 alkyl alkenyl group Chemical group 0.000 description 1
- 125000005210 alkyl ammonium group Chemical group 0.000 description 1
- 150000008052 alkyl sulfonates Chemical class 0.000 description 1
- 238000005804 alkylation reaction Methods 0.000 description 1
- 229960003459 allopurinol Drugs 0.000 description 1
- 229910000147 aluminium phosphate Inorganic materials 0.000 description 1
- 150000001409 amidines Chemical class 0.000 description 1
- 235000001014 amino acid Nutrition 0.000 description 1
- 150000005022 aminoacridines Chemical class 0.000 description 1
- 229960004909 aminosalicylic acid Drugs 0.000 description 1
- 235000019826 ammonium polyphosphate Nutrition 0.000 description 1
- 238000005915 ammonolysis reaction Methods 0.000 description 1
- 229960002932 anastrozole Drugs 0.000 description 1
- 239000000921 anthelmintic agent Substances 0.000 description 1
- 230000003432 anti-folate Effects 0.000 description 1
- 230000000843 anti-fungal Effects 0.000 description 1
- 230000001387 anti-histamine Effects 0.000 description 1
- 230000003388 anti-hormone Effects 0.000 description 1
- 230000000340 anti-metabolite Effects 0.000 description 1
- 230000001946 anti-microtubular Effects 0.000 description 1
- 230000000840 anti-viral Effects 0.000 description 1
- 239000003416 antiarrhythmic agent Substances 0.000 description 1
- 239000000739 antihistaminic agent Substances 0.000 description 1
- 239000002220 antihypertensive agent Substances 0.000 description 1
- 239000003524 antilipemic agent Substances 0.000 description 1
- 239000002256 antimetabolite Substances 0.000 description 1
- 239000003926 antimycobacterial agent Substances 0.000 description 1
- 239000003904 antiprotozoal agent Substances 0.000 description 1
- 229940027983 antiseptics and disinfectants Quaternary ammonium compounds Drugs 0.000 description 1
- 239000003443 antiviral agent Substances 0.000 description 1
- 150000001480 arabinoses Chemical class 0.000 description 1
- 125000005018 aryl alkenyl group Chemical group 0.000 description 1
- 201000001320 atherosclerosis Diseases 0.000 description 1
- 239000012298 atmosphere Substances 0.000 description 1
- CPQAYCKAPBVIEP-UHFFFAOYSA-P azanium;triethylazanium Chemical compound [NH4+].CC[NH+](CC)CC CPQAYCKAPBVIEP-UHFFFAOYSA-P 0.000 description 1
- LMEKQMALGUDUQG-UHFFFAOYSA-N azathioprine Chemical compound CN1C=NC([N+]([O-])=O)=C1SC1=NC=NC2=C1NC=N2 LMEKQMALGUDUQG-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 229960004099 azithromycin Drugs 0.000 description 1
- 230000001580 bacterial Effects 0.000 description 1
- 159000000009 barium salts Chemical class 0.000 description 1
- 229960001081 benzatropine Drugs 0.000 description 1
- 125000003310 benzodiazepinyl group Chemical class N1N=C(C=CC2=C1C=CC=C2)* 0.000 description 1
- 229960000626 benzylpenicillin Drugs 0.000 description 1
- 239000002876 beta blocker Substances 0.000 description 1
- 239000011230 binding agent Substances 0.000 description 1
- 239000011942 biocatalyst Substances 0.000 description 1
- 238000006065 biodegradation reaction Methods 0.000 description 1
- 229960003003 biperiden Drugs 0.000 description 1
- 239000007844 bleaching agent Substances 0.000 description 1
- OYVAGSVQBOHSSS-UAPAGMARSA-O bleomycin A2 Chemical compound N([C@H](C(=O)N[C@H](C)[C@@H](O)[C@H](C)C(=O)N[C@@H]([C@H](O)C)C(=O)NCCC=1SC=C(N=1)C=1SC=C(N=1)C(=O)NCCC[S+](C)C)[C@@H](O[C@H]1[C@H]([C@@H](O)[C@H](O)[C@H](CO)O1)O[C@@H]1[C@H]([C@@H](OC(N)=O)[C@H](O)[C@@H](CO)O1)O)C=1N=CNC=1)C(=O)C1=NC([C@H](CC(N)=O)NC[C@H](N)C(N)=O)=NC(N)=C1C OYVAGSVQBOHSSS-UAPAGMARSA-O 0.000 description 1
- 239000005388 borosilicate glass Substances 0.000 description 1
- 201000008274 breast adenocarcinoma Diseases 0.000 description 1
- 239000006172 buffering agent Substances 0.000 description 1
- UXVMQQNJUSDDNG-UHFFFAOYSA-L cacl2 Chemical compound [Cl-].[Cl-].[Ca+2] UXVMQQNJUSDDNG-UHFFFAOYSA-L 0.000 description 1
- 239000011575 calcium Substances 0.000 description 1
- 229910052791 calcium Inorganic materials 0.000 description 1
- 159000000007 calcium salts Chemical class 0.000 description 1
- 238000004364 calculation method Methods 0.000 description 1
- 229940075397 calomel Drugs 0.000 description 1
- 229960004602 capreomycin Drugs 0.000 description 1
- 239000002775 capsule Substances 0.000 description 1
- 229960000830 captopril Drugs 0.000 description 1
- 150000001720 carbohydrates Chemical class 0.000 description 1
- 235000014633 carbohydrates Nutrition 0.000 description 1
- CURLTUGMZLYLDI-UHFFFAOYSA-N carbon dioxide Chemical compound O=C=O CURLTUGMZLYLDI-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 235000011089 carbon dioxide Nutrition 0.000 description 1
- 239000011203 carbon fibre reinforced carbon Substances 0.000 description 1
- 125000002915 carbonyl group Chemical group [*:2]C([*:1])=O 0.000 description 1
- 125000003178 carboxy group Chemical group [H]OC(*)=O 0.000 description 1
- 150000007942 carboxylates Chemical class 0.000 description 1
- 239000003054 catalyst Substances 0.000 description 1
- 230000003052 cation content Effects 0.000 description 1
- 239000003729 cation exchange resin Substances 0.000 description 1
- AZZMGZXNTDTSME-JUZDKLSSSA-M cefotaxime sodium Chemical compound [Na+].N([C@@H]1C(N2C(=C(COC(C)=O)CS[C@@H]21)C([O-])=O)=O)C(=O)\C(=N/OC)C1=CSC(N)=N1 AZZMGZXNTDTSME-JUZDKLSSSA-M 0.000 description 1
- 102000008395 cell adhesion mediator activity proteins Human genes 0.000 description 1
- 108040002558 cell adhesion mediator activity proteins Proteins 0.000 description 1
- 230000003833 cell viability Effects 0.000 description 1
- 150000001780 cephalosporins Chemical class 0.000 description 1
- 235000013339 cereals Nutrition 0.000 description 1
- 229960005395 cetuximab Drugs 0.000 description 1
- 239000002738 chelating agent Substances 0.000 description 1
- 238000001311 chemical methods and process Methods 0.000 description 1
- 239000003153 chemical reaction reagent Substances 0.000 description 1
- 239000002026 chloroform extract Substances 0.000 description 1
- WORJEOGGNQDSOE-UHFFFAOYSA-N chloroform;methanol Chemical compound OC.ClC(Cl)Cl WORJEOGGNQDSOE-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- LKYXEULZVGJVTG-UHFFFAOYSA-N chloromethane Chemical compound Cl[CH] LKYXEULZVGJVTG-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 230000001713 cholinergic Effects 0.000 description 1
- 229960003405 ciprofloxacin Drugs 0.000 description 1
- 229960004316 cisplatin Drugs 0.000 description 1
- KRKNYBCHXYNGOX-UHFFFAOYSA-N citric acid Chemical compound OC(=O)CC(O)(C(O)=O)CC(O)=O KRKNYBCHXYNGOX-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 150000001860 citric acid derivatives Chemical class 0.000 description 1
- 229960002303 citric acid monohydrate Drugs 0.000 description 1
- 229960002436 cladribine Drugs 0.000 description 1
- AGOYDEPGAOXOCK-KCBOHYOISA-N clarithromycin Chemical compound O([C@@H]1[C@@H](C)C(=O)O[C@@H]([C@@]([C@H](O)[C@@H](C)C(=O)[C@H](C)C[C@](C)([C@H](O[C@H]2[C@@H]([C@H](C[C@@H](C)O2)N(C)C)O)[C@H]1C)OC)(C)O)CC)[C@H]1C[C@@](C)(OC)[C@@H](O)[C@H](C)O1 AGOYDEPGAOXOCK-KCBOHYOISA-N 0.000 description 1
- 229960002626 clarithromycin Drugs 0.000 description 1
- 238000004140 cleaning Methods 0.000 description 1
- 201000003963 colon carcinoma Diseases 0.000 description 1
- 230000001268 conjugating Effects 0.000 description 1
- 239000003218 coronary vasodilator agent Substances 0.000 description 1
- 239000012043 crude product Substances 0.000 description 1
- 238000002425 crystallisation Methods 0.000 description 1
- 230000005712 crystallization Effects 0.000 description 1
- 238000010192 crystallographic characterization Methods 0.000 description 1
- 125000004122 cyclic group Chemical group 0.000 description 1
- 239000002875 cyclin dependent kinase inhibitor Substances 0.000 description 1
- 125000001316 cycloalkyl alkyl group Chemical group 0.000 description 1
- 125000005356 cycloalkylalkenyl group Chemical group 0.000 description 1
- 230000001086 cytosolic Effects 0.000 description 1
- 231100000433 cytotoxic Toxicity 0.000 description 1
- 239000002254 cytotoxic agent Substances 0.000 description 1
- 231100000599 cytotoxic agent Toxicity 0.000 description 1
- WREGKURFCTUGRC-POYBYMJQSA-N ddC Chemical compound O=C1N=C(N)C=CN1[C@@H]1O[C@H](CO)CC1 WREGKURFCTUGRC-POYBYMJQSA-N 0.000 description 1
- BXZVVICBKDXVGW-NKWVEPMBSA-N ddIno Chemical compound O1[C@H](CO)CC[C@@H]1N1C(NC=NC2=O)=C2N=C1 BXZVVICBKDXVGW-NKWVEPMBSA-N 0.000 description 1
- 238000006297 dehydration reaction Methods 0.000 description 1
- 238000004925 denaturation Methods 0.000 description 1
- 230000036425 denaturation Effects 0.000 description 1
- 238000000326 densiometry Methods 0.000 description 1
- 229920003013 deoxyribonucleic acid Polymers 0.000 description 1
- 230000001687 destabilization Effects 0.000 description 1
- 230000000368 destabilizing Effects 0.000 description 1
- 230000001066 destructive Effects 0.000 description 1
- 238000011161 development Methods 0.000 description 1
- 230000018109 developmental process Effects 0.000 description 1
- VPOCYEOOFRNHNL-RQDPQJJXSA-J dexormaplatin Chemical compound Cl[Pt](Cl)(Cl)Cl.N[C@@H]1CCCC[C@H]1N VPOCYEOOFRNHNL-RQDPQJJXSA-J 0.000 description 1
- 235000019425 dextrin Nutrition 0.000 description 1
- UAOMVDZJSHZZME-UHFFFAOYSA-O di(propan-2-yl)azanium Chemical compound CC(C)[NH2+]C(C)C UAOMVDZJSHZZME-UHFFFAOYSA-O 0.000 description 1
- 238000003745 diagnosis Methods 0.000 description 1
- 239000000032 diagnostic agent Substances 0.000 description 1
- 201000008286 diarrhea Diseases 0.000 description 1
- XBPCUCUWBYBCDP-UHFFFAOYSA-O dicyclohexylazanium Chemical compound C1CCCCC1[NH2+]C1CCCCC1 XBPCUCUWBYBCDP-UHFFFAOYSA-O 0.000 description 1
- 229960002656 didanosine Drugs 0.000 description 1
- GNVRJGIVDSQCOP-UHFFFAOYSA-O diethyl(methyl)azanium Chemical compound CC[NH+](C)CC GNVRJGIVDSQCOP-UHFFFAOYSA-O 0.000 description 1
- 229960000452 diethylstilbestrol Drugs 0.000 description 1
- 229960000691 diiodohydroxyquinoline Drugs 0.000 description 1
- CWLIWRWKTAVPMN-UHFFFAOYSA-N dimethylazanium;sulfate Chemical compound C[NH2+]C.C[NH2+]C.[O-]S([O-])(=O)=O CWLIWRWKTAVPMN-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 201000009910 diseases by infectious agent Diseases 0.000 description 1
- 238000004821 distillation Methods 0.000 description 1
- 229960001089 dobutamine Drugs 0.000 description 1
- 238000009509 drug development Methods 0.000 description 1
- 238000003255 drug test Methods 0.000 description 1
- 238000001035 drying Methods 0.000 description 1
- 239000000975 dye Substances 0.000 description 1
- 229950006700 edatrexate Drugs 0.000 description 1
- 238000003379 elimination reaction Methods 0.000 description 1
- 229950007539 elliptinium Drugs 0.000 description 1
- 239000003623 enhancer Substances 0.000 description 1
- 230000002708 enhancing Effects 0.000 description 1
- 239000002702 enteric coating Substances 0.000 description 1
- 238000009505 enteric coating Methods 0.000 description 1
- 239000002532 enzyme inhibitor Substances 0.000 description 1
- 229960002179 ephedrine Drugs 0.000 description 1
- 229960005139 epinephrine Drugs 0.000 description 1
- XBRDBODLCHKXHI-UHFFFAOYSA-N epolamine Chemical compound OCCN1CCCC1 XBRDBODLCHKXHI-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 238000005886 esterification reaction Methods 0.000 description 1
- 239000000262 estrogen Substances 0.000 description 1
- CCIVGXIOQKPBKL-UHFFFAOYSA-N ethanesulfonic acid Chemical compound CCS(O)(=O)=O CCIVGXIOQKPBKL-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- DBLXOVFQHHSKRC-UHFFFAOYSA-N ethanesulfonic acid;2-piperazin-1-ylethanol Chemical compound CCS(O)(=O)=O.OCCN1CCNCC1 DBLXOVFQHHSKRC-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- HZAXFHJVJLSVMW-UHFFFAOYSA-N ethanolamine Chemical compound NCCO HZAXFHJVJLSVMW-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 125000001033 ether group Chemical group 0.000 description 1
- 238000006266 etherification reaction Methods 0.000 description 1
- QUSNBJAOOMFDIB-UHFFFAOYSA-N ethyl amine Chemical compound CCN QUSNBJAOOMFDIB-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- RIVIDPPYRINTTH-UHFFFAOYSA-O ethyl(propan-2-yl)azanium Chemical compound CC[NH2+]C(C)C RIVIDPPYRINTTH-UHFFFAOYSA-O 0.000 description 1
- JGFZNNIVVJXRND-UHFFFAOYSA-O ethyl-di(propan-2-yl)azanium Chemical compound CC[NH+](C(C)C)C(C)C JGFZNNIVVJXRND-UHFFFAOYSA-O 0.000 description 1
- 238000011156 evaluation Methods 0.000 description 1
- 238000002474 experimental method Methods 0.000 description 1
- 239000000284 extract Substances 0.000 description 1
- SRMBQCVUAVULDJ-UHFFFAOYSA-N ferrioxamine B Chemical compound [Fe+3].CC(=O)N([O-])CCCCCNC(=O)CCC(=O)N([O-])CCCCCNC(=O)CCC(=O)N([O-])CCCCCN SRMBQCVUAVULDJ-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 239000003337 fertilizer Substances 0.000 description 1
- 239000000796 flavoring agent Substances 0.000 description 1
- 235000019634 flavors Nutrition 0.000 description 1
- 229960000390 fludarabine Drugs 0.000 description 1
- GIUYCYHIANZCFB-FJFJXFQQSA-N fludarabine phosphate Chemical compound C1=NC=2C(N)=NC(F)=NC=2N1[C@@H]1O[C@H](COP(O)(O)=O)[C@@H](O)[C@@H]1O GIUYCYHIANZCFB-FJFJXFQQSA-N 0.000 description 1
- 229960003765 fluvastatin Drugs 0.000 description 1
- 238000005187 foaming Methods 0.000 description 1
- 235000019152 folic acid Nutrition 0.000 description 1
- 239000011724 folic acid Substances 0.000 description 1
- 239000004052 folic acid antagonist Substances 0.000 description 1
- 239000012458 free base Substances 0.000 description 1
- 229960000936 fumagillin Drugs 0.000 description 1
- 230000004927 fusion Effects 0.000 description 1
- 201000003741 gastrointestinal carcinoma Diseases 0.000 description 1
- 231100000414 gastrointestinal toxicity Toxicity 0.000 description 1
- 229920000159 gelatin Polymers 0.000 description 1
- 239000008273 gelatin Substances 0.000 description 1
- 235000019322 gelatine Nutrition 0.000 description 1
- 235000011852 gelatine desserts Nutrition 0.000 description 1
- 229960003627 gemfibrozil Drugs 0.000 description 1
- 230000002068 genetic Effects 0.000 description 1
- 230000005484 gravity Effects 0.000 description 1
- 238000009499 grossing Methods 0.000 description 1
- 239000003102 growth factor Substances 0.000 description 1
- 125000005842 heteroatoms Chemical group 0.000 description 1
- 235000010299 hexamethylene tetramine Nutrition 0.000 description 1
- 239000012510 hollow fiber Substances 0.000 description 1
- OAKJQQAXSVQMHS-UHFFFAOYSA-N hydrazine Chemical compound NN OAKJQQAXSVQMHS-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 150000007857 hydrazones Chemical class 0.000 description 1
- 150000002430 hydrocarbons Chemical class 0.000 description 1
- UFHFLCQGNIYNRP-UHFFFAOYSA-N hydrogen Chemical compound [H][H] UFHFLCQGNIYNRP-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 230000003301 hydrolyzing Effects 0.000 description 1
- 125000001165 hydrophobic group Chemical group 0.000 description 1
- 125000002768 hydroxyalkyl group Chemical group 0.000 description 1
- 229960001330 hydroxycarbamide Drugs 0.000 description 1
- 229940027318 hydroxyurea Drugs 0.000 description 1
- 239000007943 implant Substances 0.000 description 1
- 239000012535 impurity Substances 0.000 description 1
- 230000004054 inflammatory process Effects 0.000 description 1
- 239000007972 injectable composition Substances 0.000 description 1
- 229910052816 inorganic phosphate Inorganic materials 0.000 description 1
- 201000002313 intestinal cancer Diseases 0.000 description 1
- 238000001361 intraarterial administration Methods 0.000 description 1
- 238000007917 intracranial administration Methods 0.000 description 1
- 238000007918 intramuscular administration Methods 0.000 description 1
- 238000007912 intraperitoneal administration Methods 0.000 description 1
- 238000007913 intrathecal administration Methods 0.000 description 1
- 201000010985 invasive ductal carcinoma Diseases 0.000 description 1
- 229920000831 ionic polymer Polymers 0.000 description 1
- 229910052742 iron Inorganic materials 0.000 description 1
- 231100000400 irritating Toxicity 0.000 description 1
- 229960003350 isoniazid Drugs 0.000 description 1
- 229960001317 isoprenaline Drugs 0.000 description 1
- 229960004130 itraconazole Drugs 0.000 description 1
- 238000005304 joining Methods 0.000 description 1
- 229960003299 ketamine Drugs 0.000 description 1
- 229960004125 ketoconazole Drugs 0.000 description 1
- 125000000468 ketone group Chemical group 0.000 description 1
- 210000002429 large intestine Anatomy 0.000 description 1
- 231100000636 lethal dose Toxicity 0.000 description 1
- GFIJNRVAKGFPGQ-LIJARHBVSA-N leuprolide Chemical compound CCNC(=O)[C@@H]1CCCN1C(=O)[C@H](CCCNC(N)=N)NC(=O)[C@H](CC(C)C)NC(=O)[C@@H](CC(C)C)NC(=O)[C@@H](NC(=O)[C@H](CO)NC(=O)[C@H](CC=1C2=CC=CC=C2NC=1)NC(=O)[C@H](CC=1N=CNC=1)NC(=O)[C@H]1NC(=O)CC1)CC1=CC=C(O)C=C1 GFIJNRVAKGFPGQ-LIJARHBVSA-N 0.000 description 1
- 229960004194 lidocaine Drugs 0.000 description 1
- 239000003589 local anesthetic agent Substances 0.000 description 1
- 229940064003 local anesthetic throat preparations Drugs 0.000 description 1
- 229960002422 lomefloxacin Drugs 0.000 description 1
- 231100000053 low toxicity Toxicity 0.000 description 1
- 239000008176 lyophilized powder Substances 0.000 description 1
- 239000011777 magnesium Substances 0.000 description 1
- 229910052749 magnesium Inorganic materials 0.000 description 1
- 159000000003 magnesium salts Chemical class 0.000 description 1
- 238000002595 magnetic resonance imaging Methods 0.000 description 1
- VZCYOOQTPOCHFL-UPHRSURJSA-L maleate(2-) Chemical compound [O-]C(=O)\C=C/C([O-])=O VZCYOOQTPOCHFL-UPHRSURJSA-L 0.000 description 1
- 238000004519 manufacturing process Methods 0.000 description 1
- 238000005259 measurement Methods 0.000 description 1
- PSGAAPLEWMOORI-PEINSRQWSA-N medroxyprogesterone acetate Chemical compound C([C@@]12C)CC(=O)C=C1[C@@H](C)C[C@@H]1[C@@H]2CC[C@]2(C)[C@@](OC(C)=O)(C(C)=O)CC[C@H]21 PSGAAPLEWMOORI-PEINSRQWSA-N 0.000 description 1
- 229960002985 medroxyprogesterone acetate Drugs 0.000 description 1
- 229960001924 melphalan Drugs 0.000 description 1
- 238000002844 melting Methods 0.000 description 1
- QSHDDOUJBYECFT-UHFFFAOYSA-N mercury Chemical compound [Hg] QSHDDOUJBYECFT-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 229910052753 mercury Inorganic materials 0.000 description 1
- 229910052751 metal Inorganic materials 0.000 description 1
- 239000002184 metal Substances 0.000 description 1
- 229960000485 methotrexate Drugs 0.000 description 1
- XHFGWHUWQXTGAT-UHFFFAOYSA-O methyl(propan-2-yl)azanium Chemical compound C[NH2+]C(C)C XHFGWHUWQXTGAT-UHFFFAOYSA-O 0.000 description 1
- BAVYZALUXZFZLV-UHFFFAOYSA-N methylamine Chemical compound NC BAVYZALUXZFZLV-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 229960003085 meticillin Drugs 0.000 description 1
- VAOCPAMSLUNLGC-UHFFFAOYSA-N metronidazole Chemical compound CC1=NC=C([N+]([O-])=O)N1CCO VAOCPAMSLUNLGC-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 239000000693 micelle Substances 0.000 description 1
- 229960002509 miconazole Drugs 0.000 description 1
- 238000001690 micro-dialysis Methods 0.000 description 1
- 239000003607 modifier Substances 0.000 description 1
- 230000000051 modifying Effects 0.000 description 1
- XJPIGTIOWBWIMP-UHFFFAOYSA-N morpholin-4-yl ethanesulfonate Chemical compound CCS(=O)(=O)ON1CCOCC1 XJPIGTIOWBWIMP-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- YNAVUWVOSKDBBP-UHFFFAOYSA-N morpholine Chemical compound C1COCCN1 YNAVUWVOSKDBBP-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 229940113083 morpholine Drugs 0.000 description 1
- 238000010172 mouse model Methods 0.000 description 1
- 239000003149 muscarinic antagonist Substances 0.000 description 1
- 235000010460 mustard Nutrition 0.000 description 1
- PMZURENOXWZQFD-UHFFFAOYSA-L na2so4 Chemical compound [Na+].[Na+].[O-]S([O-])(=O)=O PMZURENOXWZQFD-UHFFFAOYSA-L 0.000 description 1
- 229960000515 nafcillin Drugs 0.000 description 1
- 229930015196 nicotine Natural products 0.000 description 1
- NHNBFGGVMKEFGY-UHFFFAOYSA-N nitrate Chemical compound [O-][N+]([O-])=O NHNBFGGVMKEFGY-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- QJGQUHMNIGDVPM-UHFFFAOYSA-N nitrogen group Chemical group [N] QJGQUHMNIGDVPM-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 150000004957 nitroimidazoles Chemical class 0.000 description 1
- 238000010534 nucleophilic substitution reaction Methods 0.000 description 1
- 239000002777 nucleoside Substances 0.000 description 1
- 125000003835 nucleoside group Chemical group 0.000 description 1
- 239000002773 nucleotide Substances 0.000 description 1
- 125000003729 nucleotide group Chemical group 0.000 description 1
- 229920001778 nylon Polymers 0.000 description 1
- 102000025475 oncoproteins Human genes 0.000 description 1
- 108091008124 oncoproteins Proteins 0.000 description 1
- 229960001019 oxacillin Drugs 0.000 description 1
- 229960001756 oxaliplatin Drugs 0.000 description 1
- 230000003647 oxidation Effects 0.000 description 1
- 238000007254 oxidation reaction Methods 0.000 description 1
- 150000002923 oximes Chemical class 0.000 description 1
- 230000020477 pH reduction Effects 0.000 description 1
- 238000002559 palpation Methods 0.000 description 1
- 230000036961 partial Effects 0.000 description 1
- 238000010827 pathological analysis Methods 0.000 description 1
- 230000037361 pathway Effects 0.000 description 1
- 239000008188 pellet Substances 0.000 description 1
- 235000019371 penicillin G benzathine Nutrition 0.000 description 1
- 150000002960 penicillins Chemical class 0.000 description 1
- PQPFFKCJENSZKL-UHFFFAOYSA-N pentan-3-amine Chemical compound CCC(N)CC PQPFFKCJENSZKL-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 229940111202 pepsin Drugs 0.000 description 1
- 230000035699 permeability Effects 0.000 description 1
- 150000002978 peroxides Chemical class 0.000 description 1
- 239000003208 petroleum Substances 0.000 description 1
- 229960004331 phenoxymethylpenicillin Drugs 0.000 description 1
- 229920001523 phosphate polymer Polymers 0.000 description 1
- 150000008104 phosphatidylethanolamines Chemical class 0.000 description 1
- NJRWNWYFPOFDFN-UHFFFAOYSA-L phosphonate(2-) Chemical compound [O-][P]([O-])=O NJRWNWYFPOFDFN-UHFFFAOYSA-L 0.000 description 1
- 150000003013 phosphoric acid derivatives Chemical class 0.000 description 1
- 238000006303 photolysis reaction Methods 0.000 description 1
- 230000015843 photosynthesis, light reaction Effects 0.000 description 1
- 230000004962 physiological condition Effects 0.000 description 1
- 239000000467 phytic acid Substances 0.000 description 1
- GLUUGHFHXGJENI-UHFFFAOYSA-N piperazine Chemical compound C1CNCCN1 GLUUGHFHXGJENI-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 230000036470 plasma concentration Effects 0.000 description 1
- 150000003057 platinum Chemical class 0.000 description 1
- 229920001308 poly(aminoacid) Polymers 0.000 description 1
- 229920002401 polyacrylamide Polymers 0.000 description 1
- 229920000058 polyacrylate Polymers 0.000 description 1
- 229920000768 polyamine Polymers 0.000 description 1
- 229920000573 polyethylene Polymers 0.000 description 1
- 229920002223 polystyrene Polymers 0.000 description 1
- 229920003053 polystyrene-divinylbenzene Polymers 0.000 description 1
- 239000001267 polyvinylpyrrolidone Substances 0.000 description 1
- 229920000036 polyvinylpyrrolidone Polymers 0.000 description 1
- 235000013855 polyvinylpyrrolidone Nutrition 0.000 description 1
- 239000001103 potassium chloride Substances 0.000 description 1
- 235000011164 potassium chloride Nutrition 0.000 description 1
- 159000000001 potassium salts Chemical class 0.000 description 1
- 230000003334 potential Effects 0.000 description 1
- 238000003918 potentiometric titration Methods 0.000 description 1
- 239000002244 precipitate Substances 0.000 description 1
- 238000002203 pretreatment Methods 0.000 description 1
- 230000002265 prevention Effects 0.000 description 1
- 125000002924 primary amino group Chemical group [H]N([H])* 0.000 description 1
- 229960000244 procainamide Drugs 0.000 description 1
- 229960004919 procaine Drugs 0.000 description 1
- WYDUSKDSKCASEF-UHFFFAOYSA-N procyclidine Chemical compound C1CCCCC1C(C=1C=CC=CC=1)(O)CCN1CCCC1 WYDUSKDSKCASEF-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 229960005253 procyclidine Drugs 0.000 description 1
- DDBRXOJCLVGHLX-UHFFFAOYSA-O propane;trimethylazanium Chemical compound CCC.C[NH+](C)C DDBRXOJCLVGHLX-UHFFFAOYSA-O 0.000 description 1
- 229960000697 propantheline Drugs 0.000 description 1
- 125000001501 propionyl group Chemical group O=C([*])C([H])([H])C([H])([H])[H] 0.000 description 1
- 230000001681 protective Effects 0.000 description 1
- 239000003223 protective agent Substances 0.000 description 1
- 239000003528 protein farnesyltransferase inhibitor Substances 0.000 description 1
- 230000005588 protonation Effects 0.000 description 1
- 230000002685 pulmonary Effects 0.000 description 1
- 238000000746 purification Methods 0.000 description 1
- 150000003212 purines Chemical class 0.000 description 1
- YSAUAVHXTIETRK-AATRIKPKSA-N pyrantel Chemical compound CN1CCCN=C1\C=C\C1=CC=CS1 YSAUAVHXTIETRK-AATRIKPKSA-N 0.000 description 1
- 229960005134 pyrantel Drugs 0.000 description 1
- 229960000611 pyrimethamine Drugs 0.000 description 1
- 239000002718 pyrimidine nucleoside Substances 0.000 description 1
- 150000003230 pyrimidines Chemical class 0.000 description 1
- 239000002510 pyrogen Substances 0.000 description 1
- 150000003856 quaternary ammonium compounds Chemical class 0.000 description 1
- 229960001455 quinapril Drugs 0.000 description 1
- 229960001404 quinidine Drugs 0.000 description 1
- 150000007660 quinolones Chemical class 0.000 description 1
- 238000003608 radiolysis reaction Methods 0.000 description 1
- 238000011084 recovery Methods 0.000 description 1
- 239000003638 reducing agent Substances 0.000 description 1
- 230000008929 regeneration Effects 0.000 description 1
- 238000011069 regeneration method Methods 0.000 description 1
- 230000001105 regulatory Effects 0.000 description 1
- 238000001223 reverse osmosis Methods 0.000 description 1
- 229960000885 rifabutin Drugs 0.000 description 1
- 229960001225 rifampicin Drugs 0.000 description 1
- 229960000888 rimantadine Drugs 0.000 description 1
- 238000007363 ring formation reaction Methods 0.000 description 1
- 229960002052 salbutamol Drugs 0.000 description 1
- 229960002646 scopolamine Drugs 0.000 description 1
- 238000000926 separation method Methods 0.000 description 1
- 150000003384 small molecules Chemical class 0.000 description 1
- VMHLLURERBWHNL-UHFFFAOYSA-M sodium acetate Chemical compound [Na+].CC([O-])=O VMHLLURERBWHNL-UHFFFAOYSA-M 0.000 description 1
- 239000001632 sodium acetate Substances 0.000 description 1
- 235000017281 sodium acetate Nutrition 0.000 description 1
- 239000001509 sodium citrate Substances 0.000 description 1
- 238000002415 sodium dodecyl sulfate polyacrylamide gel electrophoresis Methods 0.000 description 1
- 235000019982 sodium hexametaphosphate Nutrition 0.000 description 1
- 239000001540 sodium lactate Substances 0.000 description 1
- 235000011088 sodium lactate Nutrition 0.000 description 1
- 229910052938 sodium sulfate Inorganic materials 0.000 description 1
- 235000011152 sodium sulphate Nutrition 0.000 description 1
- 235000019832 sodium triphosphate Nutrition 0.000 description 1
- 238000005063 solubilization Methods 0.000 description 1
- 239000002904 solvent Substances 0.000 description 1
- 238000000527 sonication Methods 0.000 description 1
- 229960000268 spectinomycin Drugs 0.000 description 1
- 238000001228 spectrum Methods 0.000 description 1
- 239000003351 stiffener Substances 0.000 description 1
- 230000004936 stimulating Effects 0.000 description 1
- 238000003756 stirring Methods 0.000 description 1
- WRWHFVRDUAQRIQ-UHFFFAOYSA-L sulfanylidenemethanediolate Chemical compound [O-]C([O-])=S WRWHFVRDUAQRIQ-UHFFFAOYSA-L 0.000 description 1
- 238000005670 sulfation reaction Methods 0.000 description 1
- 229910052717 sulfur Inorganic materials 0.000 description 1
- 230000001629 suppression Effects 0.000 description 1
- 230000004083 survival Effects 0.000 description 1
- 230000002522 swelling Effects 0.000 description 1
- 229920001059 synthetic polymer Polymers 0.000 description 1
- XQOIBQBPAXOVGP-UHFFFAOYSA-O tert-butyl(ethyl)azanium Chemical compound CC[NH2+]C(C)(C)C XQOIBQBPAXOVGP-UHFFFAOYSA-O 0.000 description 1
- BPEWUONYVDABNZ-DZBHQSCQSA-N testolactone Chemical compound O=C1C=C[C@]2(C)[C@H]3CC[C@](C)(OC(=O)CC4)[C@@H]4[C@@H]3CCC2=C1 BPEWUONYVDABNZ-DZBHQSCQSA-N 0.000 description 1
- DZLFLBLQUQXARW-UHFFFAOYSA-N tetrabutylammonium Chemical compound CCCC[N+](CCCC)(CCCC)CCCC DZLFLBLQUQXARW-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 235000019364 tetracycline Nutrition 0.000 description 1
- 150000003522 tetracyclines Chemical class 0.000 description 1
- QEMXHQIAXOOASZ-UHFFFAOYSA-N tetramethylammonium Chemical compound C[N+](C)(C)C QEMXHQIAXOOASZ-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 239000001577 tetrasodium phosphonato phosphate Substances 0.000 description 1
- VZWGHDYJGOMEKT-UHFFFAOYSA-J tetrasodium;phosphonato phosphate;decahydrate Chemical compound O.O.O.O.O.O.O.O.O.O.[Na+].[Na+].[Na+].[Na+].[O-]P([O-])(=O)OP([O-])([O-])=O VZWGHDYJGOMEKT-UHFFFAOYSA-J 0.000 description 1
- XVTUQDWPJJBEHJ-KZCWQMDCSA-N tetrastearoyl cardiolipin Chemical compound CCCCCCCCCCCCCCCCCC(=O)OC[C@@H](OC(=O)CCCCCCCCCCCCCCCCC)CO[P@@](O)(=O)OCC(O)CO[P@](O)(=O)OC[C@H](OC(=O)CCCCCCCCCCCCCCCCC)COC(=O)CCCCCCCCCCCCCCCCC XVTUQDWPJJBEHJ-KZCWQMDCSA-N 0.000 description 1
- 238000010257 thawing Methods 0.000 description 1
- 239000010409 thin film Substances 0.000 description 1
- 125000000101 thioether group Chemical group 0.000 description 1
- 150000003573 thiols Chemical class 0.000 description 1
- 238000007079 thiolysis reaction Methods 0.000 description 1
- 235000010384 tocopherol Nutrition 0.000 description 1
- 239000011732 tocopherol Substances 0.000 description 1
- 229930003799 tocopherols Natural products 0.000 description 1
- 230000000699 topical Effects 0.000 description 1
- 239000003053 toxin Substances 0.000 description 1
- 108020003112 toxins Proteins 0.000 description 1
- 239000012581 transferrin Substances 0.000 description 1
- RKBCYCFRFCNLTO-UHFFFAOYSA-O tri(propan-2-yl)azanium Chemical compound CC(C)[NH+](C(C)C)C(C)C RKBCYCFRFCNLTO-UHFFFAOYSA-O 0.000 description 1
- 150000003852 triazoles Chemical class 0.000 description 1
- IMFACGCPASFAPR-UHFFFAOYSA-O tributylazanium Chemical compound CCCC[NH+](CCCC)CCCC IMFACGCPASFAPR-UHFFFAOYSA-O 0.000 description 1
- 125000002264 triphosphate group Chemical class [H]OP(=O)(O[H])OP(=O)(O[H])OP(=O)(O[H])O* 0.000 description 1
- 239000011778 trisodium citrate Substances 0.000 description 1
- 229960000875 trofosfamide Drugs 0.000 description 1
- 238000005429 turbidity Methods 0.000 description 1
- 239000005483 tyrosine kinase inhibitor Substances 0.000 description 1
- 150000004917 tyrosine kinase inhibitor derivatives Chemical class 0.000 description 1
- 229940121358 tyrosine kinase inhibitors Drugs 0.000 description 1
- 238000000870 ultraviolet spectroscopy Methods 0.000 description 1
- 229960001055 uracil mustard Drugs 0.000 description 1
- 229960000922 vinflunine Drugs 0.000 description 1
- 229960000744 vinpocetine Drugs 0.000 description 1
- 229960000523 zalcitabine Drugs 0.000 description 1
- 229960000641 zorubicin Drugs 0.000 description 1
- GVJHHUAWPYXKBD-IEOSBIPESA-N α-tocopherol Chemical compound OC1=C(C)C(C)=C2O[C@@](CCC[C@H](C)CCC[C@H](C)CCCC(C)C)(C)CCC2=C1C GVJHHUAWPYXKBD-IEOSBIPESA-N 0.000 description 1
- SRBFZHDQGSBBOR-KKQCNMDGSA-N β-D-xylose Chemical compound O[C@@H]1CO[C@@H](O)[C@H](O)[C@H]1O SRBFZHDQGSBBOR-KKQCNMDGSA-N 0.000 description 1
Images
Abstract
Группа изобретений относится к области фармакологии и медицины и касается композиции, представляющей собой липосому в среде, имеющую внутреннее пространство, отделенное от среды мембраной, включающей один или несколько липидов, причем внутреннее пространство липосомы содержит катионный антинеопластический терапевтическоий агент, а также полиол или сахар, полианионизированный с помощью, по меньшей мере, двух сильноанионных функциональных групп, причем сахар представляет собой моносахарид или дисахарид, в которой катионный агент и полианионизированный полиол или полианионизированный сахар имеют форму кислоты или соли, а также содержатся внутри липосомы, где композиция представляет собой лекарственную форму для парентерального введения, а также касается способа инкапсулирования катионного антинеопластического терапевтического агента в липосому. Группа изобретений обеспечивает доставку терапевтических агентов с высокой нагрузочной эффективностью в то место, где локализуется патологический процесс. 2 н. и 64 з.п. ф-лы, 74 пр., 40 табл., 47 фиг.
Description
ОБЛАСТЬ ТЕХНИКИ
Настоящее изобретение в целом относится к липосомам, и, в частности, к липосомным композициям, используемым для доставки лекарственных и диагностических соединений.
ПРЕДПОСЫЛКИ СОЗДАНИЯ ИЗОБРЕТЕНИЯ
Липосомы, или липидные двухслойные везикулы, используют или предлагают использовать для различных целей: исследовательских, промышленных и медицинских, в частности, в качестве носителей диагностических и лекарственных соединений in vivo. См, например, Lasic, D. Liposomes: from physic to applications. Elsevier, Amsterdam, 1993. Lasic, D, и Papahadjopoulos, D., eds. Medical Applications of Liposomes. Elsevier, Amsterdam, 1998. Липосомы обычно характеризуются наличием внутреннего пространства, отделенного от окружающей среды мембраной из одного или более бислоев, таким образом, формируется микроскопический мешочек или везикула. Двухслойные мембраны липосом обычно формируются липидами, то есть синтетическими или природными амфифильными молекулами, которые имеют пространственно разделенные гидрофильные и гидрофобные домены. См. Lasic D., 1993, supra. Двухслойные мембраны липосом могут быть также сформированы амфифильными полимерами и сурфактантами (полимеросомами, ниосомами). Обычно липосома выполняет функцию носителя множества объектов, включая (без ограничений указанными) химическое соединение, комбинации соединений, высокомолекулярный комплекс синтетического или природного происхождения, генетический материал, живой организм, а также части и производные перечисленных выше объектов, которые обладают полезными свойствами или проявляют полезную активность. Для этих целей липосомы получают таким образом, чтобы они содержали необходимый объект. Процесс включения желаемого объекта в липосому обычно обозначают термином «нагрузка». Включенный в липосому объект может полностью или частично располагаться во внутреннем пространстве липосомы, находиться в пределах двухслойной мембраны липосомы или быть связанным с наружной поверхностью липосомной мембраны. Включение объектов в липосомы также обозначают терминами инкапсулирование или захват, и все три указанных термина используются в настоящем описании взаимозаменяемо и имеют одинаковое значение.
При инкапсулировании вещества в липосому обычно преследуется цель защитить указанное вещество от деструктивного влияния окружающей среды и обеспечить возможность проявления активности указанным веществом в том месте, где данная активность наиболее предпочтительна, и избежать ее реализации там, где это бесполезно или нежелательно. Указанное явление обеспечивается доставкой. Например, лекарственное средство в составе липосомы может быть защищено от ферментного расщепления в организме, при этом указанное средство будет высвобождаться из липосомы и оказывать нужный лечебный эффект в том месте, где локализуется патологический процесс.
В идеале, такие липосомы могут быть приготовлены таким образом, чтобы включать желаемое соединение (i) с высокой нагрузочной эффективностью, которая выражается как процентное соотношение количества инкапсулировавшегося вещества и общего количества вещества, задействованного в процессе; (ii) большое количество инкапсулированного вещества на одну единицу липосомного бислойного материала; (iii) высокую концентрацию инкапсулированного вещества, и (iv) в стабильной форме, что подразумевает незначительное высвобождение инкапсулированного вещества из липосомы во время хранения или непосредственно перед тем, как липосома достигнет места или среды, где вещество, заключенное в липосому должно проявлять свою внутреннюю активность.
Таким образом, существует необходимость создания различных липосомных композиций, которые можно использовать для доставки множества соединений, в частности, лекарственных, диагностических и контрастирующих веществ.
КРАТКОЕ ОПИСАНИЕ ИЗОБРЕТЕНИЯ
Настоящее изобретение основано на открытии, что замещенный аммоний и полианион могут использоваться для нагрузки и сохранения веществ внутри липосом. Соответственно, настоящее изобретение относится к способам и липосомным композициям, используемым для доставки различных соединений, в частности, терапевтических агентов, а именно, веществ, применяемых для диагностики, прогнозирования, тестирования, скринирования, лечения и профилактики нежелательных состояний, например, заболеваний у живых организмов, таких, как люди, растения или животные.
Согласно одному варианту своего осуществления, настоящее изобретение относится к композиции, включающей липосому в среде, при этом внутри указанной липосомы находится замещенный аммоний
где каждый R1, R2, R3 и R4 независимо друг от друга представляют собой водород или органическую группу, имеющую, включительно, вплоть до 18 атомов углерода, при этом, по крайней мере один из R1, R2, R3 или R4 представляет собой органическую группу, при этом органическая группа представляет собой углеводородную группу, имеющую вплоть до 8 атомов углерода, и является алкил, алкилиден, гетероциклический алкил, циклоалкил, арил, алкенил или циклоалкенил группой или их гидрокси-замещенным производным, и необязательно имеет в составе своей углеводородной цепи атомы S, О или N, формируя эфир, сложный эфир, тиоэфир, амин или амидную связь, при этом по крайней мере три из R1, R2, R3 или R4 представляют собой органические группы, или же замещенный аммоний представляет собой стерически затрудненный аммоний, такой, как, например, в котором по крайней мере одна из органических групп имеет вторичный или третичный атом углерода, непосредственно связанный с атомом азота аммония. Предпочтительно, соединение замещенного аммония, инкапсулированное в липосому, имеет отрицательный логарифм константы кислотной диссоциации (депротонирования) (рКа), равный, по крайней мере 8.0, по крайней мере, 8.5, по крайней мере, 9.0, по крайней мере, 9.5 или, по крайней мере, 10.0, что определяется в водном растворе при комнатной температуре.
Согласно другому варианту своего осуществления, настоящее изобретение относится к композиции, включающей липосому в среде, при этом во внутреннем пространстве липосомы находится полианион, при этом указанный полианион представляет собой полианионизированный полиол или полианионизированный сахар. Липосома, предпочтительно, имеет трансмембранный градиент, который способствует эффективной инкапсуляции вещества в липосому. Согласно одному варианту осуществления настоящего изобретения, трансмембранный градиент представляет собой градиент аммония, четвертичного аммония, или первичного, вторичного или третичного замещенного аммониевого соединения, который в водном растворе при комнатной температуре имеет константу кислотной диссоциации (депротонирования) (рКа), равную, по крайней мере, 8.0, по крайней мере, 8.5, по крайней мере, 9.0, по крайней мере, 9.5 или, по крайней мере, 10.0, Липосома может также содержать инкапсулированное соединение, например, лекарственное или выявляемое соединение, или полностью катионную органическую молекулу.
Согласно еще одному варианту осуществления настоящего изобретения, композиция, в соответствии с настоящим изобретением, содержит вещество, инкапсулированное в липосомы в соответствии с настоящим изобретением. Предпочтительно, вещество заключено во внутреннее пространство липосомы. Например, во внутреннем пространстве липосомы может содержаться противоопухолевый лекарственный агент, при этом уровень токсичности данной композиции для организма остается таким же или даже меньшим, чем в том случае, когда противовопухолевый агент вводится вне указанной композиции.
Согласно еще одному варианту осуществления настоящего изобретения, композиция в соответствии с настоящим изобретением представляет собой липосомную композицию, содержащую соединение камптотецина. Указанная композиция обладает противоопухолевой активностью, которая, по крайней мере, в два раза, по крайней мере, в четыре раза или, по крайней мере, в 10 раз превышает противоопухолевую активность камптотецина при его введении вне указанной композиции, при этом токсичность композиции не увеличивается, и, по крайней мере, в два раза, или, по крайней мере, в четыре раза ниже, чем токсичность камптотецина при его введении вне указанной композиции. Согласно одному варианту осуществления настоящего изобретения, соединение камптотецина представляет собой пролекарство и находится в составе липосомы в дозе по крайней мере 0,1 мг, по крайней мере, 0,2, по крайней мере, 0,3 мг, по крайней мере, 0,5 мг или по крайней мере 1 мг на 1 мг вещества липосомной мембраны, то есть липидов. Соединение камптотецина, предпочтительно, полностью инкапсулировано во внутреннее пространство липосомы. Согласно одному варианту, соединение камптотецина представляет собой иринотекан (СРТ-11).
Согласно еще одному варианту осуществления настоящего изобретения, композиция в соответствии с настоящим изобретением представляет собой липосомную композицию алкалоидов барвинка (винкаалкалоидов) или их производных. Указанная композиция сохраняется внутри липосомы в течение 24 часов после 24 часов экспозиции в крови млекопитающего in vivo, что составляет, по крайней мере, 50%, по крайней мере, 60%, по крайней мере, 70% исходной лекарственной нагрузки. Винкаалкалоид или его производное, предпочтительно, инкапсулировано во внутреннее пространство липосомы. Одним примером млекопитающего является крыса. Примерами винкаалкалоидов и их производных являются винкристин, винбластин и винорелбин.
Согласно еще одному варианту своего осуществления, настоящее изобретение относится к способу инкапсулирования объекта в липосому. Указанный способ включает обеспечение контакта липосом в соответствии с настоящим изобретением с веществом, например, лекарственным или контрастным веществом. Предпочтительно, указанный контакт осуществляют при таких условиях, когда концентрация замещенного аммония или полианиона, заявленного в соответствии с настоящим изобретением, в среде, меньше, чем во внутреннем пространстве липосом. Согласно одному варианту осуществления настоящего изобретения, контакт липосомной композиции и вещества происходит в водной среде.
Согласно еще одному варианту своего осуществления, настоящее изобретение относится к способу инкапсулирования объекта в липосому. Указанный способ включает обеспечение контакта липосомных композиций в соответствии с настоящим изобретением с предшественником вещества, при этом указанный предшественник может превращаться в активное вещество при определенных условиях, а также обеспечение таких условий внутри липосом, которые будут способствовать образованию активного вещества из его предшественника. Согласно одному варианту, вещество представляет собой органическое соединение, и предшественник является основным его производным.
Согласно еще одному варианту своего осуществления, настоящее изобретение относится к набору для приготовления веществ, заключенных в липосомы. Указанный набор включает контейнер с липосомой в соответствии с настоящим изобретением и, возможно, контейнер с веществом и/или инструкции по применению, то есть инкапсулированию вещества в липосому.
КРАТКОЕ ОПИСАНИЕ ФИГУР
На Фигуре 1 представлена фармакокинетика липидов липосом (окружности) и лекарственного средства (треугольники) в крови после внутривенного введения СРТ-11-нагруженных липосом крысам. Липосомы нагружают с помощью ТЕА-Pn способа (См. Пример 9).
На Фигуре 2 представлена динамика соотношения лекарственное средство/липосома в крови крыс in vivo после внутривенного болюсного введения СРТ-11-нагруженных липосом, полученных с помощью ТЕА-Pn способа (См. Пример 9).
На Фигуре 3 представлена противоопухолевая активность свободного СРТ-11 и липосомального СРТ-11 в отношении ксенотрансплантатов ВТ-474 рака легкого человека у голых мышей. «Контроль» включает мышей, получавших лечение только лекарственным средством или носителем без липосом (См. Пример 10).
На Фигуре 4 представлена динамика массы тела животных (голых мышей. имеющих ВТ-474 опухоль) во время лечения свободным СРТ-11 или липосомальным СРТ-11 «Контроль» включает мышей, получавших лечение только лекарственным средством или носителем без липосом (См. Пример 10).
На Фигуре 5 представлена динамика соотношения лекарственное средство/липосома в крови крыс in vivo после внутривенного болюсного введения липосом, нагруженных СРТ-11, с помощью TEA-SOS способа (См. Пример 14).
На Фигуре 6 представлена противоопухолевая активность свободного и липосомального СРТ-11 в отношении ксенотрансплантатов НТ-29 рака кишечника человека у голых мышей. На панели захвата представлен способ инкапсулирования лекарственного средства и доза на одну инъекцию. «Контроль» включает мышей, получавших лечение только лекарственным средством или носителем без липосом (См. Пример 15)
На Фигуре 7 представлена динамика массы тела животных (голых мышей с НТ-29 опухолью) во время лечения свободным СРТ-11 и липосомным СРТ-11. В прямых рамках выделены стандартные отклонения данных. «Контроль» включает мышей, получавших лечение только лекарственным средством или носителем без липосом (См. Пример 15).
На Фигуре 8А представлена фармакокинетика липидов липосом в крови после внутривенного болюсного введения липосом, нагруженных топотеканом, крысам. On-panel caption представлен способ инкапсуляции лекарственного средства и содержание лекарственного средства в липосомах (См. Пример 24).
На Фигуре 8В представлена динамика соотношения лекарственное средство/липосома в крови крыс in vivo после внутривенного болюсного введения липосом, нагруженных Топотеканом. На вставке представлен способ инкапсуляции лекарственного средства и содержание лекарственного средства в липосомах (См. Пример 24).
На Фигуре 9 представлена цитотоксичность свободного, липосомального или HER-2-направленного иммунолипосомального Топотекана (способ TEA-Pn) in vitro в отношении SKBr-3 клеток карциномы легкого (См. Пример 27).
На Фигуре 10 представлена цитотоксичность свободного, липосомального или HER-2-направленного иммунолипосомального Топотекана (способ TEA-SOS) in vitro в отношении SKBr-3 клеток карциномы легкого (См. Пример 32).
На Фигуре 11 представлена противоопухолевая активность различных композиций Топотекана (ТРТ) в отношении ВТ-474 ксенотрансплантатов карциномы легкого человека у голых мышей. «Контроль» включает мышей, получавших лечение только лекарственным средством и носителем без липосом (См. Пример 29).
На Фигуре 12 представлена динамика массы тела животных во время лечения голых мышей, имеющих ВТ-474 опухоль, свободным Топотеканом (ТРТ), липосомальным Топотеканом (Ls-TPT) или анти-НЕК-2 иммунолипосомальным Топотеканом (F5 ILs-TPT). «Контроль» включает мышей, получавших лечение только лекарственным средством или носителем без липосом. (См. Пример 29).
На Фигуре 13А представлена противоопухолевая активность различных композиций Топотекана в отношении ВТ-474 ксенотрансплантатов карциномы легкого человека у голых мышей. Свободный Топотекан (свободный ТРТ) или липосомальный Топотекан (Ls-TPT) вводили в дозе, составляющей одну восьмую их максимальной толерантной дозы. Величина ошибки показывает стандартное отклонение данных. «Контроль» включает мышей, получавших лечение только лекарственным средством или носителем без липосом (См. Пример 31).
На Фигуре 13В представлена противоопухолевая активность различных композиций Топотекана в отношении ВТ-474 ксенотрансплантатов карциномы легкого человека у голых мышей. Свободный Топотекан (свободный ТРТ) или липосомальный Топотекан (Ls-TPT) вводили в дозе, составляющей одну четвертую их максимальной толерантной дозы. Величина ошибки показывает стандартное отклонение данных. «Контроль» включает мышей, получавших лечение только лекарственным средством или носителем без липосом (См. Пример 31).
На Фигуре 13 С представлена противоопухолевая активность различных композиций Топотекана в отношении ВТ-474 ксенотрансплантатов карциномы легкого человека у голых мышей. Свободный Топотекан (свободный ТРТ) или липосомальный Топотекан (Ls-TPT) вводили в дозе, составляющей одну вторую их максимальной толерантной дозы. Величина ошибки показывает стандартное отклонение данных. «Контроль» включает мышей, получавших лечение только лекарственным средством или носителем без липосом (См. Пример 31).
На Фигуре 13D представлена противоопухолевая активность различных композиций Топотекана в отношении ВТ-474 ксенотрансплантатов карциномы легкого человека у голых мышей. Свободный Топотекан (свободный ТРТ) или липосомальный Топотекан (Ls-TPT) вводили в их максимальной толерантной дозе. Величина ошибки показывает стандартное отклонение данных. «Контроль» включает мышей, получавших лечение только лекарственным средством или носителем без липосом (См. Пример 31).
На Фигуре 14 представлена динамика массы тела животных во время лечения голых мышей, имеющих ВТ-474 опухоль, свободным Топотеканом (ТРТ) или липосомальным Топотеканом (Ls-TPT), которые вводят в их максимальной толерантной дозе. «Контроль» включает мышей, получавших лечение только лекарственным средством или носителем без липосом. (См. Пример 31).
На Фигуре 15 представлена цитотоксичность свободного 6-(3-аминопропил)-эллиптицина (свободный АЕ), липосомального 6-(3-аминопропил)-эллиптицина (Ls-АЕ) или HER-2-направленного иммунолипосомального 6-(3-аминопропил)-эллиптицина (F5 Ils-AE) в отношении ВТ-474 клеток карциномы легкого in vitro (См. Пример 35).
На Фигуре 16 представлена in vitro цитотоксичность свободного 6-(3-аминопропил)-эллиптицина (свободный АРЕ), липосомального 6-(3-аминопропил)-эллиптицина (Ls-APE) или EGFR-направленного иммунолипосомального 6-(3-аминопропил)-эллиптицина (C225-Ils-APE) в отношении клеток карциномы легкого с низкой (MCF-7) или высокой (MDA-MB468) экспрессией EGF-рецептора. (См. Пример 36).
На Фигуре 17 представлены характеристики фармакокинетики липосомных композиций 6-(3-аминопропил)эллиптицина (АРЕ) в крови: фармакокинетика липосомных липидов (рамка А, незакрашенные кружки), лекарственного средства (рамка В, закрашенные кружки) в крови и динамика соотношения лекарственное средство/липосомы (рамка С) после внутривенного болюсното введения липосом, содержащих винорелбин, крысам (См. Пример 43).
На Фигуре 18 представлены характеристики фармакокинетики композиций винорелбина в липосомах (Ls-VRB), и анти-НЕК2-иммунолипосомах (F5-Ils-VRB): фармакокинетика липосомных липидов (А), лекарственного средства (В) и динамика соотношения лекарственное средство/липосома (С) после внутривенного болюсного введения липосом, нагруженных винорелбином, крысам (См. Пример 43).
На Фигуре 19 представлена фармакокинетика липосомных липидов в крови после внутривенного болюсного введения липосом, нагруженных винорелбином, крысам. Липосомы нагружают, используя предварительно захваченный декстрансульфат триэтиламмония (DS-TEA), декстрансульфат аммония (DS-A) или сульфат аммония (S-A). (См. Пример 44).
На Фигуре 20 представлена динамика соотношения лекарственное средство/липосома в крови крыс in vivo после внутривенного болюсного введения липосом, нагруженных винорелбином с использованием предварительно захваченного декстрансульфата триэтиламмония (DS-TEA), декстрансульфат аммония (DS-A) или сульфата аммония (S-A). (См. Пример 44).
На Фигуре 21 представлена фармакокинетка липосомных липидов в крови после внутривенного болюсного введения липосом, нагруженных винорелбином, крысам, Липосомы нагружают, используя предварительно захваченный сукросеоктасульфат триэтиламмония (TEA-SOS); липосомы имеют размер, как показано во вставке на Фигуре. (См. Пример 45).
На Фигуре 22 представлена динамика соотношения лекарственное средство/липосома в крови крыс in vivo после внутривенного болюсного введения липосом, нагруженных винорелбином. Липосомы нагружают, используя предварительно захваченный сукрооктасульфат триэтиламмония (TEA-SOS); липосомы имеют размер, как показано на вставке на фигуре. (См. Пример 45).
На Фигуре 23 представлена фармакокинетика липосомных липидов в крови крыс после внутривенного болюсного введения винорелбина в составе липосом (Ls-VRB) или анти-НЕР2-иммунолипосом (F5-Ils-VRB), полученных с помощью tea-sos способа. (См. Пример 46).
На Фигуре 24 представлена динамика соотношения лекарственное средство/липосома в крови крыс in vivo после внутривенного болтосного введения винорелбина в составе липосом (Ls-VRB) или анти-НЕР2-иммунолипосом (F5-Ils-VRB), полученных с помощью TEA-SOS способа. (См. Пример 46).
На Фигуре 25 представлена in vitro цитотоксичность свободного винорелбина (свободный VRB), липосомального винорелбина (Ls-VRB) или HER-2-направленного иммунолипосомального винорелбина (F5-Ils-VRB) в отношении MDA-MB-453 клеток карциномы легкого человека, избыточно экспрессирующих HER-2, (См. Пример 48).
На Фигуре 26 представлена in vitro цитотоксичность свободного винорелбина (свободный VRB), липосомального винорелбина (Ls-VRB) или HER-2-направленного иммунолипосомального винорелбина (F5-Ils-VRB) в отношении CaLu-3 клеток немелкоклеточного рака легкого человека, избыточно экспрессирующих HER-2 (См. Пример 49).
На Фигуре 27 представлена in vitro цитотоксичность свободного винорелбина (свободный VRB), липосомального винорелбина (Ls-VRB) или HER-2-направленного иммунолипосомального винорелбина (F5-Ils-VRB/SOS-TEA) в отношении SKBr-3 клеток рака легкого человека, избыточно экспрессирующих HER-2. (См. Пример 50).
На Фигуре 28 представлена противоопухолевая активность свободного винорелбина (свободный VRB) или липосомального винорелбина (Ls VRB) в отношении НТ-29 ксенотрансплантатов рака толстого кишечника человека у голых мышей. «Контроль» включает мышей, получавших лечение только лекарственным средством или носителем без липосом. Величина ошибки показывает стандартное отклонение данных. (См. Пример 51).
На Фигуре 29 представлена динамика средней массы тела животных во время лечения голых мышей, имеющих НТ-29 опухоль, свободным винорелбином (свободный VRB), липосомальным винорелбином (Ls VRB) или только носителем (физиологический раствор). Величина ошибки показывает стандартное отклонение данных. (См. Пример 51).
На Фигуре 30 представлена противоопухолевая активность свободного винорелбина (свободный VRB) или липосомального винорелбина (Ls VRB) на сингенной мышиной модели С-26 карциномы толстого кишечника. Дозы лекарственного средства на одну инъекцию приведены на фигуре. Величина ошибки показывает стандартное отклонение данных. «Контроль» включает мышей, получавших лечение только лекарственным средством или носителем без липосом (См. Пример 52).
На Фигуре 31 представлена динамика средней массы тела мышей, имеющих сингенную С-26 опухоль толстого кишечника, во время лечения различными дозами свободного винорелбина (свободный VRB), липосомального винорелбина (Ls VRB) или только носителем (физиологический раствор). Дозы лекарственного средства на одну инъекцию приведены на фигуре. (См. Пример 52).
На Фигуре 32 представлена противоопухолевая активность свободного винорелбина (свободный VRB) или sc-Ру-Р5-конъюгированного, анти-НЕК-2 иммунолипосомального винорелбина, полученного с помощью TEA-SOS способа (F5-Ils-VRB TEA-SOS), анти-НЕК2 иммунолипосомального винорелбина, полученного с помощью ТЕА-Pn способа (F5-Ils-VRB TEA-Pn), в отношении ВТ-474 ксенотрансплантатов карциномы легкого человека, избыточно экспрессирующих HER-2, у голых мышей. «Контроль» включает мышей, получавших лечение только лекарственным средством или носителем без липосом. (См. Пример 53).
На Фигуре 33 представлена динамика средней массы тела мышей, имеющих ксенотрансплантаты карциномы легких (ВТ-474), избыточно экспрессирующие HER2, во время лечения свободным винорелбином, scFvF-5-конъюгированным, анти-НЕК2 иммунолипосомальным винорелбином, полученным с помощью TEA-SOS способа, анти-НЕК2 иммунолипосомальным винорелбином, полученным с помощью TEA-Pn способа, или только носителем. Для расшифровки символов, см, вставку на Фигуре 32. (См. Пример 53).
На Фигуре 34 представлена противоопухолевая активность свободного винорелбина (свободное лекарственное средство) или scFv-F5-конъюгированного, анти-НЕК2 иммунолипосомального винорелбина, полученного при использовании различных количеств PEG-липида, в отношении ксенотрансплантатов карциномы легких человека (ВТ-474), избыточно экспрессирующих HER2, у голых мышей. Величина ошибки показывает стандартное отклонение данных. «Контроль» включает мышей, получавших лечение только лекарственным средством или носителем без липосом (См. Пример 54).
На Фигуре 35 представлена противоопухолевая активность свободного винорелбина (свободный NAV), липосомального винорелбина (NAV Lip) или FC225Fab'-конъюгированного, анти-EGPK-иммунолипосомального винорелбина (C225-NAV Lip) в отношении ксенотрансплантатов глиобластомы (U87) человека избыточно экспрессирующей EGFR), у голых мышей. «Контроль» включает мыщей, получавших лечение только лекарственным средством или носителем без липосом (См. Пример 55).
На Фигуре 36 представлена фармакокинетика липосомальных липидов и динамика соотношения лекарственное средство/липосомные липиды в крови крыс после внутривенного болюсного введения доксорубицина в составе липосом, полученных с помощью сульфата триэтиламмония (См. Пример 56).
На Фигуре 37 представлена противоопухолевая активность липосомального доксорубицина (Ls-Dox) или scFv А5-конъюгированного, анти-НЕК2 иммунолипосомального доксорубицина (F5 ILs-Dox), полученного с помощью различных количеств PEG-липида, в отношении ксенотрансплантатов карциномы легких человека (ВТ-474), избыточно экспрессирующих HER2, у голых мышей. На вставке показаны количество PEG-липида, выраженное в мол.% от липосомных фосфолипидов. «Контроль» включает мышей, получавших лечение только лекарственным средством и носителем без липосом. (См. Пример 57).
На Фигуре 38 представлена фармакокинетика липосомального винбластина в крови у крыс.(См. Пример 58).
На Фигуре 39 представлена динамика соотношения лекарственное средство/липосомальные липиды в крови крыс после внутривенного болюсного введения липосомального винбластина (См. Пример 58).
На Фигуре 40 представлена in vitro цитотоксичность свободного винкристина (свободный VCR), липосомального винкристина (Ls-VCR), или НЕР2-направленного иммунолипосомального винкристина (F5-ILs-VCR) в отношении SKBr-3 клеток карциномы легкого человека, избыточно экспрессирующих HER2 (См. Пример 61).
На Фигуре 41 представлена фармакокинетика липосомальных липидов в крови крыс после внутривенного введения винкристина в составе липосом различного размера (размеры представлены на вставке). (См. Пример 62).
На Фигуре 42 представлена динамика соотношения лекарственное средство/липосомальные липиды в крови у крыс после внутривенного болюсного введения винкристина в составе липосом различного размера (размеры представлены на вставке). (См. Пример 62).
На Фигуре 43 представлена противоопухолевая активность свободного винкристина (свободный VCR), липосомального винкристина, полученного с помощью способа с использованием цитрата триэтиламмония (Ls-VCR Цитрат), липосомального винкристина, полученного с помощью способа с использованием сукрооктасульфата триэтиламмония (Ls-VCR SOS) или scFv А5-конъюгированного, анти-НЕК2 иммунолипосомального винкристина, полученного с помощью способа с использованием сукрооктасульфата триэтиламмония (F5 TLs-VCR SOS), в отношении ксенотрансплантатов карциномы легких человека (ВТ-474), избыточно экспрессирующих HER2, у голых мышей. «Контроль» включает мышей, получавших только лекарственное средство и носитель без липосом. (См. Пример 64).
На Фигуре 44 представлена динамика средней массы тела мышей, имеющих ксенотрансплантаты карциномы легких человека (ВТ-474), избыточно экспрессирующие HER2, во время лечения свободным винкристином (свободный VCR), липосомальным винкристином, полученным с помощью способа с использованием цитрата триэтиламмония (Ls-VCR Цитрат), липосомального винкристина, полученного с помощью способа с использованием сукрооктасульфата триэтиламмония (Ls-VCR SOS), scFv F5-конъюгированного, анти-НЕК2 иммунолипосомального винкристина, полученного с помощью способа с использованием сукрооктасульфата триэтиламмония (F5 ILs-VCR SOS), или только носителем (физиологический раствор, контроль). (См. Пример 64).
На Фигуре 45 представлена противоопухолевая активность свободного винкристина (винкристин), липосомального винкристина (nt-vcr) или С225 Fab'-конътогированного, анти-EGFR иммунолипосомального винкристина (C225-vcr) в отношении ксенотрансплантатов опухоли головного мозга людей (U87), избыточно экспрессирующих EGFRvIII, у голых мышей. «Контроль» включает мышей, получавших только лекарственное средство и носитель без липосом. (См. Пример 65).
На Фигуре 46 представлена фармакокинетика СРТ-11 и динамика присутствия СРТ-11 в активной (лактонной) в крови крыс, выраженная в процентах, после внутривенного болюсного введения липосомального СРТ-11. (См. Пример 69).
На Фигуре 47 представлена фармакокинетика СРТ-11 и динамика присутствия СРТ-11 в активной (лактонной) форме в крови крыс, выраженная в процентах, после внутривенного болюсного введения раствора СРТ-11 (свободный СРТ-11). (См. Пример 69).
ОПИСАНИЕ ПРЕДПОЧТИТЕЛЬНЫХ ВАРИАНТОВ ОСУЩЕСТВЛЕНИЯ ИЗОБРЕТЕНИЯ
Настоящее изобретение, в целом, относится к способам и липосомным композициям, используемым для доставки различных объектов, в особенности лекарственных и контрастных соединений. Авторами изобретения было обнаружено, что замещенный аммоний и полианион могут быть использованы для инкапсулирования объектов (то есть соединений) и их сохранения внутри липосом. Соответственно, настоящее изобретение относится к липосомным композициям и наборам, содержащим замещенный аммоний и/или полианион, а также к способам создания указанных липосомных композиций.
Согласно одному варианту своего осуществления, настоящее изобретение относится к липосомной композиции, содержащей в своем внутреннем пространстве одно или более соединений замещенного аммония, имеющее формулу
где каждый R1, R2, R3 и R4 независимо друг от друга представляет собой атом водорода или органическую группу, при этом по крайней мере один из R1, R2, R3 и R4 представляет собой органическую группу, такую, как алкил, алкилиден, гетероциклический алкил, циклоалкил, арил, алкенил или циклоалкенил, их гидрокси-замещенное производное, факультативно имеющее в своей углеводородной цепи атомы S, О или N, с формированием, например, эфира (включая ацеталь и кеталь), сложного эфира, сульфида (тиоэфира), амина или амидной связи. В том случае, если менее, чем три радикала из R1, R2, R3 и R4 представляют собой органические группы, тогда, согласно настоящему изобретению, по крайней мере одна, и, предпочтительно, две из органических групп имеют вторичные или третичные углеродные атомы (то есть углеродные атомы, имеющие 2 или 3 углерод-углеродные связи, соответственно), непосредственно связанные с азотом аммония, то есть замещенный аммоний представляет собой стерически затрудненный аммоний. В целом известно, что наличие третичного аммония, такого, как ион незамещенного аммония (NH4+), а также ионов первичного и вторичного алкиламмония с прямой цепью во внутреннем пространстве липосомы, заявленной в соответствии с настоящим изобретением, способствует усиленной инкапсуляции слабых амфифильных оснований, например, с помощью механизма «активной», «дистанционной» или «управляемой трансмембранным градиентом» нагрузки (Haran, et al., Biochim. Biophys. Acta, 1993, v.1152, p.253-258; Maurer-Spurej, et al., Biochim. Biophys. Acya, 1999, v.14161, p.1-10). Поскольку указанные соединения аммония имеют в своем составе атомы водорода, которые легко вступают в реакции нуклеофильного замещения, химически реагируют с соединениями, заключенными во внутреннее пространство липосом и, таким образом, обладают способностью нарушать химическую целостность соединений во время или после процесса их инкапсуляции в липосомы. Следовательно, желательно, чтобы захваченное соединение замещенного аммония было более химически инертным и не имело химических свойств, которые являются нестабильными или способствуют тому, что аммоний легко вступает в реакции с компонентами липосомы, к которым могут относиться вещества, заключенные в ее внутреннее пространство. Авторами изобретения неожиданно было обнаружено, что липосомные композиции, содержащие в своем внутреннем пространстве замещенный третичный или четвертичный аммоний, не имеющий в своем составе замещенного атома водорода, или стерически затрудненный первичный или вторичный аммоний, в котором дополнительный атом водорода пространственно защищен соседней объемной органической группой, например, такой аммоний, который в своем составе имеет один или два вторичных или третичных атомов углерода, связанных с азотом аммония, не только обладают исключительной способностью к инкапсуляции вещества, но также обеспечивают улучшенную стабильность указанного инкапсулированного вещества, например, лекарственного средства, и препятствуют его преждевременному высвобождению из липосомы в живом организме.
Согласно одному варианту осуществления настоящего изобретения, заключенное в липосомы соединение замещенного аммония является фармацевтически инертным, то есть оно не вызывает нежелательный физиологический ответ при введении в живой организм, например, в организм животного или человека, при этом количество вещества мембраны липосом является достаточным для доставки эффективной дозы заключенного в липосому соединения. Согласно другому варианту осуществления настоящего изобретения, замещенный аммоний, заявленный в соответствии с настоящим изобретением, имеет приемлемый уровень токсичности по отношению к живому организму. Обычно приемлемый уровень токсичности подразумевает, что токсичная доза, то есть максимальная толерантная доза (MTD, от англ. Maximum Tolerated Dose), или доза, вызывающая летальность в 50% случаев (LD50) замещенного аммония, заявленного в соответствии с настоящим изобретением, по крайней мере в два раза, по крайней мере в четыре раза, по крайней мере в восемь раз или по крайней мере в десять раз выше, чем токсичная доза соединения, заключенного в липосому, то есть лекарственного средства, инкапсулированного в липосому, заявленную в соответствии с настоящим изобретением. Например, сульфат триэтиламмония имеет приемлемый уровень токсичности в соответствии с настоящим изобретением, пока его LD50 приблизительно в 40 раз выше, чем LD50 доксорубицина, противоопухолевого средства. Уровни токсичности или те физиологические ответы, которые вызывают соединения замещенного аммония в организме, равно как и аналогичные показатели соединений, представляющих интерес, в том случае, если они еще не определены, могут быть легко установлены с помощью стандартных методик, хорошо известных специалистам в области биомедицины. См., например, S.C. Gad. Drug Safety Evaluation, Wiley, New York, 2002. Один из способов определения токсичности свободного и/или заключенного в липосому лекарственного средства описан в Примере 16 настоящего изобретения.
Согласно одному предпочтительному варианту осуществления настоящего изобретения, замещенные органические группы среди R1, R2, R3 или R4 имеют размер и физико-химические свойства, которые обеспечивают формирование соединениями замещенного аммония в водной среде истинного (молекулярного) раствора, а не мицелия, бислоя или аналогичных самоформирующихся систем. Таким образом, замещенный аммоний, заявленный в соответствии с настоящим изобретением, предпочтительно, незначительно или вовсе не проникает в бислойный участок липосомы, что сводит к минимуму риск дестабилизации, растворения или рассасывания липосом, содержащих замещенный аммоний.
Органическая группа замещенного аммония обычно имеет в своем составе углеводород, включающий вплоть до 8 атомов углерода, вплоть до 6 атомов углерода или вплоть до 4 атомов углерода, в целом вся замещенная органическая группа имеет в своем составе вплоть до 18, вплоть до 16, вплоть до 12 или вплоть до 9 атомов углерода. Указанные замещенные углеводородные группы могут включать любые комбинации взаимосвязанных первичных, вторичных или третичных атомов углерода, а также циклоалкильные группы, связанные на своих концах непосредственно с атомом азота аммония с формированием гетероциклической структуры, либо с атомом углерода водород-замещенной группы аммония. Указанные замещенные алкильные группы также могут иметь в своем составе гетероатомы, например, атомы кислорода, азота или серы, расположенные в углеродных цепях с формированием функциональных групп, например, эфирных, ацетальных, аминовых или сульфидных групп, а также функциональных групп, таких, как гидроксильные группы, связанные с углеродной цепью алкильной группы. Примерами органических групп, заявленных в соответствии с настоящим изобретением, являются, без ограничений указанными, алкилы, алкилидены, гетероциклические алкилы, циклоалкилы, арилы, алкенилы, циклоалкенилы или гидрокси-замещенные их производные, например, гидрокси-замещенный алкилиден, формирующий кольцо с включением атома N замещенного аммония.
Согласно другому варианту осуществления настоящего изобретения, замещенный аммоний представляет собой гетероциклический аммоний, то есть аммоний, в котором по крайней мере два радикала R1, R2, R3 или R4 формируют кольцо: стерически затрудненный первичный аммоний; или стерически затрудненный вторичный аммоний. В целом, первичный или вторичный аммоний представляет собой любой замещенный аммоний, в котором один или два радикала R1, R2, R3 или R4 замещены алкильными группами, которые стерически уплотняют молекулу, например, любой замещенный аммоний с одним или двумя радикалами R1, R2, R3 или R4, замещенными одной или двумя циклоалкильными группами или алкильными группами, имеющими, по крайней мере, один вторичный или третичный алкильный атом углерода, связанный с атомом азота замещенного аммония. Примерами таких гетероциклов, стерически затрудненных первичных аммониевых соединений и стерически затрудненных вторичных аммониевых соединений, являются, без ограничений указанными, изопропилэтиламмоний, изопропилметиламмоний, диизопропиламмоний, терт-бутилэтиламмоний, дициклогексиламмоний, протонизированные формы морфолина, пиридина, пиперидина, пирролидина, пиперазина, tetr-бутиламин, 2-амино-2-метилпропанол-1,2-амино-2-метил-пропандиол-1,3, и tris-(гидроксиэтил)-аминометан. Указанные соединения замещенного аммония являются коммерчески доступными в форме различных солей, или могут быть легко поучены на основе соответствующих аминов путем нейтрализации кислотами.
Согласно еще одному варианту осуществления настоящего изобретения, замещенный аммоний представляет собой третичный или четвертичный аммоний, включая, без ограничений указанными, триметиламмоний, триэтиламмоний, трибутиламмоний, диэтилметиламмоний, диизопропилэтиламмоний, триизопропиламмоний, N-метилморфолиний, N-гидроксиэтилпиперидиний, N-метилпирролидиний и N,N'-диметилпиперазоний, тетраметиламмоний и тетрабутиламмоний. Указанные соединения замещенного аммония являются коммерчески доступными в форме различных солей, или могут быть легко получены на основе соответствующих аминов путем нейтрализации кислотами.
Согласно еще одному варианту осуществления настоящего изобретения, соединение замещенного аммония, заявленного в соответствии с настоящим изобретением, является полностью катионным соединением, которое при условии полной инкапсуляции обычно в водном растворе при рН от 2 до 8, имеет полный положительный заряд, например, в результате ионизации (протонирования) атома азота.
Согласно еще одному варианту осуществления настоящего изобретения, соединение первичного, вторичного или третичного замещенного аммония, инкапсулированное в липосому, имеет отрицательный логарифм константы кислотной диссоциации (депротонирования) (рКа), равный, по крайней мере, 8,0, по крайней мере, 8.5, по крайней мере 9.0, по крайней мере, 9.5, или по крайней мере 10.0, что определяется в водном растворе при комнатной температуре (обычно при 25°С). Показатель рКа является известной характеристикой аммониевых соединений, который в целом характеризует их основные свойства, а способы определения рКа являются рутинными. Величины рКа для многих аминов и их протонированных форм (аммониевых соединений) известны и приведены в специальных таблицах в руководствах по химии и фармакологии. См., например, IUPAC Handbook of Pharmaceutical Salts, ed. By P.H. Stahl and C.G. Wermuth, Wiley-VCH, 2002; CRC Handbook of Chemistry and Physics, 82nd Edition, ed. by D.R. Lide, CRC Press, Florida, 2001, p.8-44 и 8-56. В общем, чем больше величина рКа, тем более выражены основные свойства соединения. Примерные соединения замещенного аммония, а также незамещенного аммония (представленные как их конъюгированные аминовые основания), имеют следующие значения рКа: пирролидин, 11,31; пиперидин, 11.12; диизопропиламин, 11,05; диэтиламин, 10,93; триэтиламин, 10.75; диметиламин, 10.73; терт-бутиламин, 10,68; циклогексиламин. 10,66; метиламин, 10,66; этиламин, 10,65; пропиламин, 10,54; изопропиламин, 10,53; N-этилпиперидин, 10,45; дициклогексиламин, 10,4; N-метилпиперидин, 10,38; диэтилметиламин, 10,35; диметилпропиламин, 10,15; триметиламин, 9,8; пиперазин, 9.73 (I), 5,53 (II); 2-амино-2-метилпропанол, 9,69; N,N'-диметилпиперазин, 9,66 (I), 5.2 (II); диэтил-(2-гидроксиэтил)амин, 9,58; этаноламин, 9,5; N-гидроксиэтилпирролидин, 9,44; диэтаноламин, 9,28; аммоний, 9,27; диметил-(2-гидроксиэтил)амин, 8.83; 2-амино-2-метилпропандиол-1,3, 8,8; морфолин, 8,5; трис-(гидроксиметил)-аминометан, 8,3; N-метилгликамин, 8,03; триэтаноламин, 7,76; N-этилморфолин, 7,67; N-гидроксиэтилморфолин, 7,39; имидазол, 7,03; пиридин, 5,23. Как правило, замещение алкильной или циклоалкильной группы аммониевого соединения водородом приводит к уменьшению рКа. Необходимо отметить, что гидроксильные или эфирные свойства замещенных алкильных групп или наличие ароматических свойств азот-содержащих гетероциклических групп уменьшают величину рКа, по сравнению с аналогичными замещенными аммониевыми соединениями, не имеющими групп с гидроксильными или эфирными свойствами. Соединения, имеющие в своем составе более чем одну аммониевую группу, обычно имеют величину рКа второй и замещенной аммониевой группы значительно меньшую, чем таковая величина первой группы. Авторы настоящего изобретения неожиданно обнаружили, что соединения замещенного аммония с большими величинами рКа, сформированные более сильными основными аминами, являются более эффективными для стабилизации лекарственного средства внутри липосом, чем соединения, сформированные слабыми аминами. Например, IHP и 80S соли триэтиламмония (рКа=10.75) являются значительно более эффективными, чем соответствующие соли триэтиламмония (рКа=7.76), для стабилизации иринотекана внутри липосом in vivo (Пример 73).
Замещенный аммоний в составе липосомной композиции, заявленной в соответствии с настоящим изобретением, может находиться в любой подходящей форме, например, в форме соли. К подходящим солям относятся фармацевтически доступные соли. См., например, Р.Н. Wermuth (eds). Handbook of Pharmaceutical Salts, Wiley-VCH, Weinheim, 2002, Согласно одному варианту осуществления настоящего изобретения, замещенный аммоний представляет собой соль, имеющую в своем составе один или несколько полионов, заявленных в соответствии с настоящим изобретением. Оптимально, противоион (анион) в соли замещенного аммония, заявленной в соответствии с настоящим изобретением, обеспечивает растворимость соли в воде и является фармацевтически инертным, способным формировать преципитаты или гели при контактировании с терапевтическим или контрастным веществом, и/или в меньшей степени проникает через мембрану липосом, чем замещенный аммоний или его недиссоциирующая аминная форма. В целом, соль замещенного аммония, заявленного в соответствии с настоящим изобретением, формирует истинный раствор в интралипосомальном, например, водном пространстве, и не образует значительное количество конденсированных фаз, таких, как мицелий, бислой, гель или кристаллическая фаза. Соответствующее количество замещенного аммония и солеобразующего аниона, например, полианиона, находится в точке стехиометрического равновесия или около нее, и, обычно, имеет рН в пределах от 3 до 9, чаще, от 4 до 8 в зависимости, например, от константы диссоциации конъюгированного основания иона замещенного аммония.
В целом, замещенный аммоний находится во внутреннем пространстве липосом, заявленных в соответствии с настоящим изобретением. Согласно одному варианту осуществления настоящего изобретения, замещенный аммоний частично или полностью удален из среды, окружающей липосому. Это может быть достигнуто с помощью подходящих способов, хорошо известных специалистам в данной области, например, растворения, ионнобменной хроматографии, хроматографии с исключением по размеру, диализа, ультрафильтрации, преципитации т.д.
Согласно еще одному варианту своего осуществления, настоящее изобретение относится к липосомной композиции, содержащей полианион. Полианион, заявленный в соответствии с настоящим изобретением, может представлять собой любое химическое соединение, имеющее в своем составе более чем одну отрицательно заряженную группу, что обеспечивает полный отрицательный ионный заряд более чем двух единиц во внутреннем пространстве липосом, например, водном пространстве. Полианион, заявленный в соответствии с настоящим изобретением, может представлять собой двухвалентный анион, трехвалентный анион, поливалентный анион, полимерный поливалентный анион, полианиозированный полиол или полианиозированный сахар. Примерами указанных двух- и трехвалентных анионов являются сульфат, фосфат, пирофосфат, тартрат, сукцинат, малеат, борат и цитрат (без ограничений указанными). Согласно предпочтительному варианту осуществления настоящего изобретения, полианион, заявленный в соответствии с настоящим изобретением, представляет собой полианионный полимер, имеющий органический (углеродный) или неорганический скелет и множество анионных функциональных групп, то есть функциональных групп, ионизирующихся с отрицательным зарядом в водном растворе, которые интегрированы или прикреплены к скелету. Полимер представляет собой природное или синтетическое соединение, обычно с высокой молекулярной массой, состоящее из повторяющихся связанных между собой единиц, каждая из которых представляет собой относительно легкую и простую молекулу. Примерами полианионных полимеров являются полифосфат, поливинилсульфат, поливинилсульфонат, анионизированные полиакриловые полимеры, анионизированные, например, полисульфонированные полиамины, такие, как полисульфонированный поли(этиленимин); полисульфатированные, поликарбоксилированные или полифосфорилированные полисахариды; кислые полиаминокислоты; полинуклеотиды; другие полифосфорилированные, полисульфатированные, полисульфонированные, полиборированные или поликарбоксилированные полимеры. Указанные поливалентные анионы и полимеры хорошо известны специалистам в данной области, многие из них являются коммерчески доступными. Полимерный анион, заявленный в соответствии с настоящим изобретением, предпочтительно, является биологически разрушаемым, то есть в живом организме распадается на нетоксичные единицы. Примером такого биологически разрушаемого полимерного аниона является полифосфат.
Согласно другому предпочтительному варианту осуществления настоящего изобретения, полианион представляет собой полианиозированный полиол или полианиозированный сахар. Полиол представляет собой органическую молекулу, имеющую множество гидроксильных групп, связанных, например, с линейным, разветвленным или циклическим углеродным скелетом, Таким образом, полиол может быть охарактеризован термином полигидроксилированное соединение. Предпочтительно, большинство атомов углерода в полиоле являются гидроксилированными. Полиолы (полиатомарные спирты) представляют собой молекулы, которые хорошо известны специалистам в данной области. Могут использоваться полиолы с прямыми цепями (линейными или разветвленными) и циклические полиолы. Примерами полиолов, заявленных в соответствии с настоящим изобретением, являются (без ограничений указанными); этилен гликоль, глицерол, треитол, эритритол, пентаэритритол, маннитол, глицитол, сорбитол, сорбитан, ксилитол, лактитол, малтитол, фруктитол и иноситол. Сахар обычно имеет в своем составе циклический ацеталь, циклический кеталь, кетон или альдегидную группу, или их аддукты, в пределах группы взаимосвязанных предварительно гидроксилированных атомов углерода. Сахара обычно представляют собой существующие в природе соединения. Гидролиз Сахаров в водной среде приводит к образованию единиц, называемых моносахаридами. Обычно в водном растворе молекулы моносахаридов, состоящие из пяти или шести атомов углерода, формируют циклический гемиацеталь, кольцевую структуру. Предпочтительно, сахара, заявленные в соответствии с настоящим изобретением, представляют собой моносахариды или дисахариды, последние состоят из одной или двух моносахаридных единиц, каждая из которых содержит от трех до семи, предпочтительно, от трех до шести атомов углерода. Примерами Сахаров, заявленных в соответствии с настоящим изобретением, без ограничений указанными, являются: моносахаридные гексозы, такие, как глюкоза (декстроза), галактоза, манноза, фруктоза; моносахаридные пентозы, такие, как ксилоза, рибоза, арабиноза, и дисахариды, такие, как лактоза, трехалоза, сукроза, мальтоза и целлобиоза. Также могут быть использованы соединения, состоящие из нескольких взаимосвязанных единиц Сахаров с формированием кольца (циклодекстрины), и их производные. Восстановление Сахаров является одним из способов получения полиолов. Более стабильные «невосстановленные» и «неметаболизируемые» дисахариды, такие, как сахароза и трегалоза, являются предпочтительными. Различные полиолы, моносахариды и дисахариды являются коммерчески доступными.
Полианионизированный полиол или сахар представляет собой полиол или сахар, в котором гидроксильные группы полностью или частично модифицированы или замещены анионными группами (анионизированы). Следовательно, Полианионизированный полиол или Полианионизированный сахар имеет в своем составе молекулу полиола или сахара вместе со связанными анионными группами. Примерами анионных групп являются, без ограничений указанными, карбоксилат, карбонат, тиокарбонат, дитиокарбонат, фосфат, фосфонат, сульфат, сульфонат, нитрат и борат. Предпочтительно, чтобы по крайней мере одна анионная группа полианионизированного сахара или полиола представляла собой сильную анионную группу, то есть такую группу, которая более чем на 50% ионизируется при различных значениях рН, например, при рН от 3 до 12, предпочтительно, от 2 до 12, в водной среде, или, альтернативно, имеет логарифм константы диссоциации (рКа) равный 3 или менее, предпочтительно, 2 или менее. Полианионизация полиола или сахара может быть получена с помощью различных химических процессов, которые хорошо известны специалистам в данной области. Например, взаимодействие полиолов и/или сахаров с триоксидом серы или хлорсульфоновой кислотой в пиридине или 2-пиколине приводит к этерификации всех или некоторых гидроксильных групп серной кислотой (сульфатированию), что обеспечивает полисульфатирование сахара или полиола.
Примером сульфатированного сахара, заявленного в соответствии с настоящим изобретением, является сульфатированная сахароза, включая, без ограничений указанными, сахарозы гексасульфат, сахарозы гептасульфат и сахарозы октасульфат (См. Ochi. К., et al., 1980, Chem. Pharm. Bull. v.28, p.638-641). Аналогично, взаимодействие с фосфорированным оксихлоридом или диэтилхлорфосфатом в присутствии основного катализатора приводит к образованию полифосфорилированных полиолов и сахаров. Полифосфорилированные полиолы также можно выделить из природных источников. Например, инозитол полифосфаты, такие, как инозитол гексафосфат (phytic acid) может быть выделен из злаков. Примеры различных сульфатированных, сульфонированных и фосфорилированных Сахаров и полиолов, подходящих для использования в соответствии с настоящим изобретением, приведены, например, в патенте США 5,783,568 и патенте США 5,281,237, которые приведены здесь в качестве ссылки. Авторами настоящего изобретения было неожиданно обнаружено, что полианионизированные полигидроксилированные соединения только с сильными кислыми группами, например, группами, имеющими рКа менее 3.0, предпочтительно, менее 2.0, такие, как, например, сульфат моноэфиры (рКа 1.0 и менее), обеспечивают лучшее сохранение инкапсулированного вещества в липосоме, чем полианионизированные полигидроксилированные соединения, имеющие более слабые кислые группы, такие, как фосфат моноэфиры (шаг 1, рКа 1.5; шаг 2, рКа около 6; см. Stahl и Wermuth, Op. cit., 2002). Пример 73, приведенный ниже, иллюстрирует это открытие. Синтез полиолов и/или сахаров, имеющих в своем составе более чем одну молекулу борной кислоты также приводит к образованию полианионизированного (полиборированного) продукта. Взаимодействие полиолов и/или сахаров с дисульфидом углерода в присутствии щелочей приводит к образованию полианионизированных (полидитиокарбонированных, поликсантогенированных) производных. Полианионизированное производное сахара или полиола может быть получено на основании свободной кислоты и нейтрализовано подходящим основанием, например, гидроксидом щелочного металла, гидроксидом аммония или, предпочтительно, замещенным амином, например, амином, соответствующим замещенному аммонию, заявленному в соответствии с настоящим изобретением, в neat форме или в форме гидроксида замещенного аммония, что приводит к образованию полианионной соли замещенного аммония, заявленного в соответствии с настоящим изобретением. Альтернативно, натриевая, калиевая, кальциевая, бариевая или магниевая соль полианионизированного полиола/сахара может быть выделена и превращена в подходящую форму, например, в форму соли замещенного аммония, с помощью любого известного способа, например, с помощью обмена ионов.
Полианион, заявленный в соответствии с настоящим изобретением, обычно имеет плотность заряда, составляющую, по крайней мере, две, три или четыре отрицательно заряженные группы на одну единицу, например, на один атом углерода или кольцо в углеродной цепи или на одну моносахаридную единицу в сахаре. Полианионизированный сахар или циклический полиол, заявленный в соответствии с настоящим изобретением, имеет, по крайней мере, 75% доступных полианионизированных гидроксильных групп, и, более предпочтительно, 100% доступных полианионизированных гидроксильных групп.Кроме того, Полианионизированное соединение внутри липосом, заявленных в соответствии с настоящим изобретением, находится в количестве, достаточном для улучшения доставки и высвобождения вещества, инкапсулированного в липосомы, в то место, где оно проявляет свою активность, но при этом препятствует преждевременному высвобождению инкапсулированного вещества, то есть до того, как липосома достигнет места своего действия.
В соответствии с настоящим изобретением, уровень полианионизации внутри липосомы может использоваться для регулирования характеристик высвобождения липосом, например, скорости высвобождения и кинетики вещества, инкапсулированного в липосомы. В целом уровень полианионизации может регулироваться на основании количества полианионизированного сахара или полиола по отношению к общему количеству анионов или, в случае если полианион является единственным типом аниона, на основании процентного соотношения полианионизации по отношению к общей способности к полианионизации полианиона, например, полианионизированного сахара или полиола или их смеси внутри липосом, заявленных в соответствии с настоящим изобретением. Согласно одному варианту осуществления настоящего изобретения, полианионизированный сахар или полиол находится в смеси с одним или более другими анионами и, чем меньше количество полианионизированного сахара или полиола по сравнению с количеством других анионов, тем быстрее действующее вещество высвобождается из липосом.
В том случае, если инкапсулированное вещество высвобождается из липосом в месте своего действия слишком медленно, желаемая скорость высвобождения может быть достигнута с помощью использования смеси полианионизированного сахара или полиола с одним или более моновалентным или поливалентным анионом, например, хлоридом, сульфатом, фосфатом и т.д. Альтернативно, можно использовать смеси полианионизированных Сахаров и полиолов с различной степенью полианионизации. Согласно одному варианту осуществления настоящего изобретения, степень полианионизации внутри липосом, заявленных в соответствии с настоящим изобретением, находится в пределах от 0.1% до 99%, от 10% до 90% или от 20% до 80% от общего количества анионов внутри липосом, например, с инкапсулированным соединением.
В целом, липосомная композиция, заявленная в соответствии с настоящим изобретением, может содержать один или более полианион, заявленный в соответствии с настоящим изобретением, в любой подходящей форме, например, в форме кислоты или соли, включающей полианион и катион. Количество полианиона, например, полианионизированного сахара или полиола может быть стехиометрически эквивалентно количеству катиона или отличаться от последнего. Согласно одному варианту осуществления настоящего изобретения, липосомная композиция, заявленная в соответствии с настоящим изобретением, содержит одну или более полианионизированную соль катиона, при этом существует градиент концентрации или рН градиент через липосомные мембраны. Согласно другому варианту осуществления настоящего изобретения, липосомная композиция, заявленная в соответствии с настоящим изобретением, содержит одну или более полианионизированную соль замещенного аммония, заявленного в соответствии с настоящим изобретением. Согласно еще одному варианту осуществления настоящего изобретения, липосомная композиция, заявленная в соответствии с настоящим изобретением, содержит полианион во внутреннем пространстве липосом, при этом полианион частично или полностью уделен из среды, содержащей липосомы, с помощью способов, хорошо известных специалистам в данной области, например, растворения, ионообменной хроматографии, хроматографии с исключением по размеру, диализа, ультрафильтрации, абсорбции, преципитации и т.д. Согласно еще одному варианту осуществления настоящего изобретения, липосомы с инкапсулированным полианионом, например, полианионизированным полиолом или полианионизированным сахаром, также имеют трансмембранный градиент, способствующий сохранению активного вещества внутри липосом. Примеры такого трансмембранного градиента включают рН градиент, градиент электрохимических потенциалов, градиент аммониевых ионов, градиент замещенных аммониевых ионов, или градиент растворимости. Градиент замещенных аммониевых ионов обычно включает замещенную форму аммониевого иона, имеющую, по крайней мере, одну С-N связь, такую, как первичный, вторичный, третичный или четвертичный аммоний. Способы создания трансмембранного градиента являются рутинным и широко используются при создании липосом.
Согласно еще одному варианту осуществления настоящего изобретения, липосомная композиция, заявленная в соответствии с настоящим изобретением, содержит одно или более соединение замещенного аммония и/или полианиона, заявленного в соответствии с настоящим изобретением, а также химическое или биологическое вещество, например, лекарственное средство или контрастное соединение. Например, вещество, содержащееся в липосомной композиции, заявленной в соответствии с настоящим изобретением, может представлять собой лекарственное средство, чернила, магнитное вещество, удобрение, краситель, биокатализатор, усилитель вкуса или запаха, отбеливатель, или любое вещество, которое можно определить с помощью любого способа, известного специалистам, например, магнитно-резонансной визуализации (MRI), оптической визуализации, флуоресцентной/люминесцентной визуализации, или ядерных визуализирующих методик. Обычно вещество, включенное в состав липосомной композиции, заявленной в соответствии с настоящим изобретением, представляет собой слабое основание и проникает через мембрану, (то есть является липофильным), например, таким веществом может быть вещество, имеющее в своем составе амин или азот.
Согласно одному варианту осуществления настоящего изобретения, вещество, содержащееся в липосомной композиции, заявленной в соответствии с настоящим изобретением, представляет собой лекарственное средство.
Согласно другому варианту осуществления настоящего изобретения, вещество, содержащееся в липосомной композиции, представляет собой противоопухолевое лекарственное средство. Частичный список некоторых общеизвестных коммерчески доступных (или находящихся на стадии разработки) противоопухолевых агентов с классификацией представлен ниже.
Классы соединений по структуре: Фторпиримидины-5-FU, Фтордеоксиуридины, Фторафур, 5'-деоксифторуридин, UFT, S-1 Капецитабин; пиримидиновые Нуклеозиды - Деоксицитидин, Цитозина Арабинозид, 5-Азацитозин, Гемцитабин, 5-Азацитозин-Арабинозид; Пурины - 6-Меркаптопурин, Тиогуанин, Азатиоприн, Аллопуринол, Кладрибин, Флударабин, Пентостатин, 2-Хлораденозин; Аналоги платины -Цисплатин, Карбоплатин, Оксалиплатин, Тетраплатин, Платина-DACH, Ормаплатин, CI-973, JM-216; Антрациклины/Антраценедионы - Доксорубицин, Даунорубицин, Епирубицин, Идарубицин, Митоксантрон; Эпиподофиллотоксины - Этопозид, Тенипозид; Камптотецины - Иринотекан, Топотекан, Луртотекан, Силатекан, 9-Амино Камптотецин, 10,11-Метилдиоксикамптотецин, 9-Нитрокамптотецин, TAS 103, 7-(4-метил-пиперазино-метилен)-10,11 -этилендиокси-20(S)-камптотецин, 7-(2-N-изопропиламно)этил)-20(S)-камптотецин; Гормоны и их аналоги: Диэтилстилбестрол, Тамоксифен, Торемефин, Дролоксифен, Медроксипрогестерона ацетат, Магестрола ацетат, Аминоглутетимид, Тестолактон и др.; Ферменты, Протеины и Антитела -Аспарагиназа, Интерлейкины, Интерфероны, Леупролид, Пегаспарагаза и др.; Алкалоиды винки - Винкристин, Винбластин, Винорелбин, Виндезин; Таксаны -Паклитаксель, Доцетаксель.
Классы соединений по механизму действия: Антигормональные соединения -см. классификацию гормонов и их аналогов, Анастрозол; Антифолаты - Метотрексат, Аминоптерин, Триметрексат, Триметоприм, Пиритрексим, Пириметамин, Эдатрексат, MDAM; Антимикротубулярные агенты - Таксаны и Алкалоиды випки; Алкилирующие агенты (классические и неклассические) - азотистые mustard (Мехлорэтамин, Хлорамбуцил, Мелфалан, Урацила mustard), Оксафосфориньт (Изофамид, Циклофосфамид, Перфосфамид, Трофосфамид), Алкилсульфонаты (Бусульфан), препараты Нитрозомочевины (Кармустин, Ломустин, Стрептозоцин), Тиотепа, Дакарбазин и другие; Антиметаболиты - пурины, пиримидины и нуклеозиды, перечисленные выше; Антибиотики - Антрациклины/Антраценедионы, Блеомицин, Дактиномицин, Митомицин, Пликамицин, Пентостатин, Стрептозоцин; Ингибиторы топоизомеразы - Камптотецины (Торо I), Эпиподофиллотоксины, m-AMSA, Эллиптициньт (Торо II); Антивирусные средства - AZT, Зальцитабин, Гемцитабин, Диданозин и др; Мисцеллярные Цитотоксические Агенты - Гидроксимочевина, Митотан, Токсины слияния, PZA, Бриостатин, Ретиноиды, Масляная кислота и ее производные; Пентосан, Фумагиллин и др.
В дополнение к указанному, противораковое средство включает (без ограничения указанными) ингибитор топоизомеразы, алкалоид барвинка, например, винкристин, винбластин, винорелбин, винфлунин и винпоцетин, деполимеризующий или дестабилизирующий микротрубочки агент, стабилизирующий микротрубочки агент, например, таксан, аминоалкильный или аминоацильный аналог паклитакселя иди доцетакселя, например, 2'-[3-(N,N-Диэтиламино)пропионил]паклитаксель, 7-(N,N-Диметилглицил)паклитаксель и 7-L-аланилпаклитаксель, алкилирующий агент, рецептор-связывающий агент, ингибитор тирозинкиназы, ингибитор фосфатазы, зависимый от циклина ингибитор киназы, энзимный ингибитор, ингибитор ауроракиназы, нуклеотид, полинуклеотид и ингибитор фарнезилтрансферазы.
В другом случае средство, содержащееся в липосомах, заявленных согласно настоящему изобретению, представляет собой терапевтический агент антрациклинового ряда или его производные, терапевтический агент камптотецинового ряда или его производные, терапевтический агент эллиптицинового ряда или его производные, алкалоиды или их производные барвинка, вортманнин, его аналоги и производные, или пиразолопиримидиновые соединения со свойствами ингибитора ауроракиназы.
В другом случае средство, содержащееся в липосомах, заявленных согласно настоящему изобретению, представляет собой антрациклиновое соединение, например, доксорубицин, даунорубицин, митомицин С, эпирубицин, пирарубицин, рубидомицин, карциномицин, N-ацетиладриамицин, рубидазон, 5-имидодауномицин, N-ацетилдауномицин, даунорулин, митоксантрон; камптотециновое соединение, например, камптотецин, 9-аминокамптотецин, 7-этилкамптотецин, 10-гидроксикамптотецин, 9-нитро камптотецин, 10 11-метиллендиоксикамптотецин, 9-амино-10,11-метилендиоксикамптотецин, 9-хлор-10,11-метилендиоксикамптотецин, иринотекан, топотекан, луртотекан, силатекан, (7-(4-метилпиперазинометилен)-10,11-этилендиокси-20(S)-камптотецин, (7-(4-метилпиперазинометилен)-10,11-метилендиокси-20(S)-камптотецин, (7-(2-N-изопропиламино)этил)-20(S)-камптотецин; эллиптициновое соединение, например, эллиптицин, 6-3-аминопропил-эллиптицин, 2-диэтиламиноэтил-эллиптицин и их соли, дателлиптиум, ретеллиптин.
В другом случае средство, содержащееся в липосомах, заявленных согласно настоящему изобретению, представляет собой фармацевтическое соединение, выбранное из группы, включающей (без ограничений указанными): антигистаминовые производные этилендиамина (бромфенифамин, дифенигидрамин); антипротозойные средства: хинолоны (иодохинол); амидины (пентамидин); антигельминтные средства (пирантел); антишистосомальные средства (оксаминихин); противогрибковые производные триазола (фликоназол, итраконазол, кетоконазол, миконазол); антимикробные цефалоспорины (цефазолин, цефонисид, цефотаксим, цефтазимид, цефуоксим); антимикробные бата-лактамовые производные (азтреопам, цефметазол, цефокситин); антимикробные средства эритромициновой группы (эритромицин, азитромицин, кларитромицин, олеапдомицин); пенициллины (бензилпенициллин, феноксиметилпенициллин, хлоксациллин, метициллин, нафциллин, оксациллин, карбенициллин); тетрациклины; другие антимикробные средства, новобиоцин, спектиномицин, ванкомицин; антимикобактериальные средства: аминосалициловая кислота, капреомицин, этамбутол, изониазид, пиразинамид, рифабутин, рифампин, хлофазим; антивирусные адамантаны: амантадин, римантадин; хинидиновые производные: хлороквин, гидроксихлороквин, промаквин, квионон; антимикробные квионолоны: ципрофлоксацин, эноксацин, ломефлоксацин, налидиксиновая кислота, офлоксацин; сульфопамиды; анимикробные средства для лечения мочевыводящих путей: метенамин, нитрофурантоин, триметоприм; нитроимидазолы: метронидазол; холинергические четвертичные соединения аммония (амбетиниум, неостигмин, физостигмин); аминоакридины против болезни Альцгеймера (такрин); лекарственные средства против болезни Паркинсона (бензтропин, бипериден, проциклидин, триэксилэнидил); антимускариновые агенты (атропин, хиосциамин, скополамин, пропантелин); адренергические дофамины (албутерол, добутамин, эфедрин, эпинефрин, норепинефрин, изопротеренол, метапроперенол, салметрол, тербуталин); эрготаминовые производные; миорелаксанты или курановьте соединения; миорелаксанты центрального действия; баклофен, циклобензепин, дентролен; никотин; бета-адреноблокаторьт (ацебутил, амиодарон); бензодиазепины (дитиазем); антиаритмические препараты (диизопирамид, энкаидин, анестетики местного действия - прокаин, прокаинамид, лидокаин, флскаимид), квинидин; ингибиторы ЛСЕ: каптоприл, энелаприлат, фосинопрол, квинаприл, рамиприл; антилипидемические средства; флувастатин, гемфиброзил, ингибиторы HMG-coA (правастатин); гипотензивные препараты: хлонидин, квинабенз, празоцин, гуанетидин, гранадрил, гидралазин; и некоронарные сосудорасширяющие средства: дипиридамол.
В соответствии с настоящим изобретением, средство, содержащееся в заявленных липосомах, представляет собой пролекарство, например, пролекарство или агент, способный превращаться в нужную форму посредством одной или более стадий конверсии в условиях, связанных, например, с изменением рН или энзиматическим расщеплением лабильной цепи. Такая конверсия может осуществляться после высвобождения пролекарства из липосомы в определенном участке действия лекарства с липосомой. Однако, пролекарство может быть превращено в нужное активное вещество внутри липосомы до использования липосомы в качестве вектора доставки, например, при введении пациенту. Лекарство может быть модифицировано в пролекарство с тем, чтобы его было легче поместить в липосомы, и затем оно может быть конвертировано обратно в нужное лекарство при помещении его в заявленные липосомы. Таким образом, лекарства, которые обычно не могут быть эффективным образом помещены в липосомы с помощью методов активации, дистанцирования или других основанных на использовании градиента методов, в соответствии с заявленным изобретением могут быть помещены, например, во внутреннее пространство липосом в нативной, немодифицированной форме.
Полностью катионные соединения, представляющие собой соединения, способные поддерживать полный ионный заряд в условиях нагружения липосом, в основном, соединения, содержащие титруемые амины, как известно, эффективно помещаются в липосомы, обладающие трансмембранным ионным градиентом. Если нужное средство представляет собой органическое соединение и не является полностью катионным соединением, содержащим титруемый амин, может быть получено его производное, имеющее необходимые ионные свойства, посредством подходящей модификации, например, методом, описанным в WO 96/25147 (Woodle et al.). Например, аминогруппа может быть введена этерифзикацией гидроксильной группы соединения с аминокислотой. Альтернативно, гидрофобная группа может быть ведена в растворимое в воде соединение, чтобы оно могло проникнуть в липосомную мембрану и затем переместиться из мембраны в интралипосомальный компартмент, т.е. внутрь липосом. Другая полезная модификация способного нагружаться в липосомы пролекарства - это формирование карбонильной аддуктивной группы, например, гидразоновой, оксимной, ацетальной или кетальной. Модифицированная амино-содержащая группа может быть гидролизована или химически выщеплена из модифицированного соединения после его помещения в липосомы в соответствии с настоящим изобретением. Обычные способы внутрилипосомальной регенерации соединения из пролекарства включают гидролиз, фотолиз, радиолиз, тиолиз, аммонолиз, восстановление, замещение, оксидацию или элиминацию. Эти способы могут быть осуществлены (без ограничений указанным) изменением рН или действием ферментов. Например, паклитаксель или доцетаксель, неионные вещества, конвертируются в 2'-(диэтиламинопропионил)- или 7'-(диэтиламинопропионил)-сложные эфиры, которые являются слабыми основаниями (пролекарства). После помещения в липосомы любым известным методом, включающим (без ограничений указанными) методы активации, дистанцирования, основанные на трансмембранном градиента методы или основанные на градиенте растворимости методы, а также (или) методы, заявленные в соответствии с настоящим изобретением, внутрилипосомальный 2'-(диэтиламинопропионил)-паклитаксель превращается в исходный паклитаксель за счет стимуляции гидролиза при увеличении рН до около 7. Таким образом, липосомное инкапсулирование молекулы нейтрального таксана в пределах ее внутреннего пространства обеспечивается, когда отношение лекарство/липид составляет около 0.05 молей на моль липосомного липида, без помощи гидрофильных ковалентных модификаций молекулы таксана (например, прикреплением ПЭГа), использования циклодекстринтаксановых комплексов или же таксан-солюбилизирующих формирующих мицеллы сурфактантов.
В соответствии с настоящим изобретением, липосомы, содержащиеся в липосомной композиции, заявленной согласно настоящему изобретению, могут быть любыми известными липосомами или же липосомами, которые будут созданы в дальнейшем. В целом, липосомы, согласно настоящему изобретению, могут иметь любую липосомную структуру, например, структуру, имеющую внутреннее пространство, отделенное от внешней среды одним или более липидным бислоем, или же любую микрокапсулярную структуру, имеющую полупроницаемую мембрану с липофильной центральной частью, отделенной мембраной от внутреннего пространства. Липидный бислой может иметь любую структуру из амфифильных молекул, имеющих гидрофильную часть и гидрофобную часть. Обычно амфифильные молекулы в бислое структурированы в два двухмерных слоя, в которых гидрофобные части ориентированы внутрь слоя, а гидрофильные - наружу. Амфифильные молекулы, образующие липосомы в соответствии с настоящим изобретением, могут быть любыми известными или позднее обнаруженными амфифильными молекулами, например, липидами синтетического или природного происхождения или биосовместимыми липидами. Липосомы согласно настоящему изобретению могут быть также сформированы амфифильными полимерами и сурфактантами, например, полимеросомами и ниосомами. Для целей настоящего описания (без ограничений) указанные липосомоформирующие материалы также называются липидами.
В соответствии с настоящим изобретением, липосомы, содержащиеся в липосомной композиции, заявленной согласно настоящему изобретению, могут также быть нацеливающими липосомами, например, липосомами, содержащими одно или более нацеливающих соединений или модификаторов биораспределения на своей поверхности. Нацеливающим соединением может быть любой агент, способный специфически связываться или взаимодействовать с нужной мишенью. В одном случае нацеливающим соединением является лиганд, Лиганд, заявленный согласно настоящему изобретению, предпочтительно связывается с клеткой или интернализуется в клетку, в которой заключенное в липосому вещество проявляет желаемый эффект (клетка-мишень). Примерами лигандов, подходящих для осуществления настоящего изобретения, являются фолиевая кислота, белки, скажем, трансферрин, ростовой фактор, энзим, пептид, рецептор, антитело или фрагмент антитела, такой, как Fab', Fv, одноцепочечный Fv, антитело с одним доменом или любой другой полипептид, содержащий антиген-связывающие участки (CDRs) молекулы антитела. Направляемая лигандом липосома, когда нацеливающим веществом является антитело или его антиген-связывающий фрагмент, называется иммунолипосомой. В предпочтительном случае липосома, несущая нацеливающую молекулу, например, лиганд, интернализуется клеткой-мишенью. В другом случае нацеливающее вещество представляет собой лиганд, который специфически взаимодействует с тирозинкиназным рецептором, например, EGFR, HER2, HER3, HER4, PD-GFR, VEGFR, bFGFR или IGFR. В еще одном случае нацеливающее вещество специфически взаимодействует с рецептором ростового фактора, рецептором ангиогенного фактора, рецептором трансферрина, молекулой клеточной адгезии или рецептором витамина.
В соответствии с настоящим изобретением, липосомы, содержащиеся в липосомной композиции, заявленной согласно настоящему изобретению, проявляют трансмембранный концентрационный градиент замещенного аммония и/или полианиона. Предпочтительно, более высокая концентрация указанных веществ свойственна внутреннему пространству липосом. Кроме того, липосомная композиция согласно данному изобретению может обладать одним или более трансмембранным градиентом помимо градиента, созданного замещенным аммонием и/или полианионом. Например, липосомы, содержащиеся в липосомной композиции, заявленной согласно настоящему изобретению, могут дополнительно проявлять градиент рН, ионный градиент, электрохимический градиент и/или градиент растворимости.
В соответствии с настоящим изобретением, липосомы, содержащиеся в липосомной композиции, заявленной согласно настоящему изобретению, могут быть включены в набор, содержащий контейнер с липосомами, и, необязательно, контейнер с лекарственным средством и инструкциями, например, процедурными или информационными, имеющими отношение к использованию липосомной композиции при одном или более применениях. Такая инструкция может быть представлена по-разному, например, на плотной бумаге, в электронном виде или в виде доступа к базе данных или веб-сайту, содержащему инструкцию.
Липосомная мембранная композиция в соответствии с настоящим изобретением может быть получена любым подходящим методом, известным из уровня техники, или тем, который будет открыт позднее специалистом в данной области. В целом, для получения заявленных липосом могут быть использованы различные липидные компоненты. Обычно такие компоненты включают (без ограничений указанными) (1) незаряженные липидные компоненты, например, холестерол, церамид, диацилглицерол, ацил(полиэфиры) или алкил(полиэфиры); (2) нейтральные фосфолипиды, например, диацилфосфатидилхолины, сфингомиелины и диацилфосфатидилэтаноламины; (3) анионные липиды, например, диацилфосфатидилсерин, диацилфосфатидилглицерол, диацилфосфатидат, кардиолипин, диацилфосфатидилинозитол, диацилглицеролхемисукцинат, диацилглицеролхемиглутарат, холестерилхемисукцинат, холестерилхемиглутарат и подобные указанным соединения; (4) конъюгированные с полимером липиды, например, N- метокси(поли(этиленгликоль) диацилфосфатидилэтаноламин, поли(этиленгликоль)-диацилглицерол, поли(этиленгликль)-церамид; и (5) катионные липиды, например, 1,2-диацил-3-триметиламмоний-пропан (DOTAP), диметилдиоктадециламмоний бромид (DDAB) и 1,2-диацил-sn-глицеро-3-этилфосфохолин. Могут быть также использованы моноацилзамещенные производные указанных липидов, а также их ди- и моноалкил-аналоги.
Для выполнения или модификации каких-либо функций могут быть использованы различные компоненты липидов. Например, фосфолипид может быть использован как основной липид, формирующий везикулы. Включение холестерола полезно для поддержания ригидности мембран и уменьшения вытекания лекарственного препарата из липосом. Конъюгированные с полимерами липиды могут быть применены для получения липосом с целью увеличения времени их циркуляции в крови за счет снижения клиренса липосом в печени и селезенке или же для улучшения стабильности липосом и предотвращения их агрегации во время хранения, но при этом эффект увеличения времени их циркуляции отсутствует. В то время как включение ПЭГ-липидов в количестве 1 моль % или выше в липиды липосом по предположениям увеличивает время их циркуляции в крови в несколько раз (см., например, патент США 5013556), авторы изобретения неожиданно обнаружили, что полученные в соответствии с изобретением липосомы циркулируют в крови достаточно долго, а добавление ПЭГ-липида к липосомам увеличивает время их существования в циркуляции менее, чем в два раза, если вообще увеличивает. Кроме того, модулирующие заряд липиды (титруемые липиды) могут быть использованы для обеспечения доставки инкапсулированных в липосомы веществ к цитозольным или ядерным мишеням за счет облегчения высвобождения некоторых классов таких веществ в ограниченное пространство эндосомальных путей.
В одном случае заявленные липосомы включают лецитин, холестерол и амфипатический полимер. Лецитин, включаемый в состав липосом согласно настоящему изобретению, может быть природным лецитином, гидрогенизированным природным лецитином, синтетическим лецитином, 1,2-дистеароил-лецитином, дипальмитоил-лецитином, димиристо ил-лецитином, диолеоил-лецитином, 1-стеароил-2-олеоил-лецитином или 1-пальмитоил-2-олеоил-лецитином, а амфипатический полимер может быть может быть липидным производным полиэтиленгликоля, например, фосфатидилэтаноламипом полиэтиленгликоля, полиэтиленгликоль-диацилглицеролом или церамидным производным полиэтиленгликоля, причем мол. масса полиэтиленгликоля составляет от около 250 до около 20000, предпочтительно, от около 500 до около 5000. В другом случае амфипатический полимер находится в количестве по крайней мере 0,1 моль % от липосом-формирующего липида липосом, согласно заявленному изобретению. Еще в одном случае амфипатический полимер находится в количестве по крайней мере от 0,1 моль % до 1 моль% от липосом-формирующего липида липосом, согласно заявленному изобретению. Предпочтительно, амфипатический полимер является нейтральным полимером, т.е. условиях нагружения липосом лекарственным средством его полный ионный заряд, равен нулю; таким полимером может быть, например, ПЭГ-диацилглицерол, ПЭГ-диалкилглицерол или ПЭГ-церамид. Неожиданно было обнаружено, что включение ионно-нейтральных амфипатических липидов до содержания ПЭГ-липида около 5,7 моль% от общей липидной фракции обеспечивает высокую эффективность нагружения липосом, например, алколоидами барвинка, такими, как винорелбин, в то время как при использовании анионно-заряженных PEG-DSPE в состав липосом эффективность их нагружения существенно снижается при содержании ПЭГ-липида 1,6 моль% или более (Пример 72).
В еще одном варианте осуществления изобретения заявленные липосомы содержит производное камптотецина, например, камптотециновое пролекарство, такое, как иринотекан, и содержит лецитин и холестерол, например, при молярном соотношении 3:2, и амфипатический полимер, например, в количестве по крайней мере 0. 1 моль % или менее от липосом-формирующего липида.
Заявленные в соответствии с настоящим изобретением липосомы могут быть получены любым способом, который известен, или который станет известным в будущем. См., например, G. Gregoriadis (под редакцией), Liposome Technology, vol. 1-3, первое издание. 1983; второе издание, 1993, CRC Press, Boca Ration, FL. Примеры способов, которыми могут быть получены липосомы, заявленные согласно настоящему изобретению, включают экструзию, обратно-фазовое выпаривание, озвучивание, инъекцию растворителя (например, этанола), микрофлюидизацию, детергентный диализ, инъекцию простого эфира и дегидратацию/регидратацию. Размер липосом может быть проконтролирован определением размера пор мембран, используемых для экструзии при низком давлении, и числа проходов при микрофлюидизации или любым другим подходящим способом. В одном случае нужные липиды сначала гидратируют тонкопленочной гидратацией или инъекцией этанола и далее формируют их размер путем экструзии через мембраны с заданным размером пор, наиболее часто составляющим 0,05 мкм, 0,08 мкм или 0,1 мкм.
Липосомные композиции, содержащие замещенный аммоний и/или полианион в соответствии с настоящим изобретением, включают липосомы, которые могут получены любым подходящим способом, например, формированием липосом в присутствии замещенного аммония и/или полианиона, например, находящихся в виде соли. Замещенный аммоний и/или полианион за пределами липосом может быть удален или разбавлен после формирования липосом или до их пагружения или заключения в них активного вещества. Альтернативно, липосомные композиции, содержащие замещенный аммоний и/или полианион в соответствии с настоящим изобретением, могут быть получены ионообменным методом непосредственно или через промежуточную стадию с использованием свободной кислоты в градиенте замещенного аммония, например, соли замещенного аммония с полианионизированным сахаром или полиолом. Такие липосомы могут быть нейтрализованы при использовании амина или его соли с летучей кислотой, например, карбоната. Полученный раствор липосом может быть использован непосредственно или, альтернативно, содержащая его соль может быть удалена, если это требуется, путем выпаривания и кристаллизации после растворения в водной среде.
Предпочтительно, липосомные композиции, согласно настоящему изобретению, имеют трансмембранный концентрационный градиент замещенного аммония и/или полианиона, например, концентрация соли замещенного аммония и/или полианиона внутри липосомы выше, обычно, по крайней мере, в 100 раз по сравнению с концентрацией соли замещенного аммония и/или полианиона во внешней среде липосом.
В одном случае концентрация соли замещенного аммония и/или полианиона внутри липосомы выше, обычно, по крайней мере, в 100 раз по сравнению с концентрацией соли замещенного аммония и/или полианиона во внешней среде липосом и составляет, по крайней мере, около 10 мМ, 50 мМ, 0,1 М, 0,2 М, 0,5 М, 0,6 М, 0,7 М или 1,0 М, причем молярность вычисляют по замещенному аммонию. В другом случае концентрация соли замещенного аммония и/или полианиона внутри липосомы выше, обычно, по крайней мере, в 100 раз по сравнению с концентрацией соли замещенного аммония и/или полианиона во внешней среде липосом и составляет около 0,65 М или около 1,0 М.
Кроме того, липосомная композиция согласно изобретению обычно имеет внешний рН, совместимый со стабильностью нужного вещества в процессе нагружения липосом или полезный для поддержания такой стабильности, при сохранении эффективности нагружения, например, выше 90%. Например, рН в диапазоне 4-7 или 4, 5-6, 5 предпочтителен. В частности, согласно настоящему изобретению нагружение липосом камптотециновым соединением, например, топотеканом или иринотеканом, наилучшим образом осуществляется при рН внешней среды в диапазоне от около 4,0 до около 7,0, более предпочтительно, в диапазоне от около 5,0 до 6,5. Нагружение липосом винкаалкалоидами (барвинка), например, винкристином, винорелбином или винбластином наилучшим образом осуществляется при рН внешней среды в диапазоне от около 5,0 до около 7,0, более предпочтительно при рН 6,5.
В соответствии с заявленным изобретением, нужное вещество может быть нагружено или заключено в липосомы путем его инкубирования с липосомами, заявленными согласно настоящему изобретению, в водной среде при подходящей температуре; например, температура выше температуры фазового перехода липидного компонента липосом в процессе их нагружения нужным веществом снижается до значения ниже температуры фазового перехода липидного компонента липосом после их нагружения. Время инкубации обычно зависит от природы липидного компонента, природы вещества, заключаемого в липосомы, и температуры инкубации. Обычно, время инкубации составляет от нескольких минут до нескольких часов. Поскольку обеспечивается высокая эффективность нагружения, а именно более 85%, обычно более 90%, как правило не возникает необходимости удаления невключившегося в липосомы вещества. Если такая необходимость существует, невключившееся вещество может быть удалено различными способами, например, хроматографией с исключением по размеру, диализом, ультрафильтрацией, адсорбцией или преципитацией. Неожиданно было обнаружено, что поддержание низкой ионной силы в процессе инкубирования заявленных липосом с нагружаемым веществом, в частности, таким, как производное камптотецина или алкалоид барвинка, с последующим увеличением ионной силы в конце инкубирования приводит к повышению эффективности нагружения, лучшему удалению невключившегося вещества и лучшей устойчивости липосом к агрегации. Обычно, инкубирование проводят, например, в водном растворе при ионной силе менее, чем эквивалентной 50 мМ NaCl, или, более предпочтительно, менее, чем эквивалентной 30 мМ. После инкубирования раствор концентрированной соли, например, NaCl может быть добавлен для увеличения ионной силы более, чем 50 мМ NaCl или, более предпочтительно, более 100 мМ NaCl. Не желая ограничиваться какой-либо теорией, авторы изобретения предполагают, что увеличение ионной силы кислотной диссоциации нужного вещества через мембрану липосом высвобождает практически все вещество, заключенное во внутреннее пространство липосом.
В целом, отношение нагружаемого вещества к липиду липосом, например, отношение нагружаемого лекарства к липиду, полученное в результате его инкапсулирования, зависит от количества включившегося вещества во внутрь липосом, концентрации включившегося замещенного амина и/или полианиона, например, соли, физико-химических свойств инкапсулированного вещества и типа используемого противоиона (аниона), например, полианиона. Поскольку применительно к заявленным в соответствии с настоящим изобретением композициям и/или способам обеспечивается высокая эффективность нагружения липосом, отношение нагружаемого вещества к липиду липосом для вещества, инкапсулированного в липосомы, составляет более 80%, более 90% и, обычно, более 95%, что определяется на основании количества инкапсулируемого вещества и липида липосом, вовлеченных в процесс нагружения (отношение «захвата»). Действительно, в самом общем случае наблюдается 100% инкапсулирования (количественный показатель). Отношение нагружаемого вещества к липиду липосом может быть выражено в весовых показателях (весовое количество вещества в расчете на вес или молярную единицу липосомного липида) или в молярных показателях (число молей вещества в расчете на вес или молярную единицу липсомного липида). Одна единица отношения нагружаемого вещества к липиду липосом может быть преобразована в другие единицы обычными способами, как проиллюстрировано ниже. Весовое отношение вещества в заявленных липсомах обычно составляет, по крайней мере, 0,05, 0,1, 0,2, 0,35, 0,5 или, по крайней мере, 0,65 мг вещества в расчете на мг липида. При молярном отношении согласно заявленному изобретению отношение нагружаемого вещества к липиду липосом, обычно составляет, по крайней мере, от около 0,02 до около 5, предпочтительно, по крайней мере, от 0,1 до около 2 и, более предпочтительно, от около 0,15 до около 1, 5 молей лекарственного вещества в расчете на моль липосомного липида, В одном случае отношение нагружаемого вещества к липиду липосом, например, отношение при нагружении лекарственным веществом, а именно производными камптотецина, составляет, по крайней мере, 0,1, например, 0,1 моля производного камптотецина в расчете на один моль липосомного липида и, предпочтительно, по крайней мере, 0,2. В другом случае отношение нагружаемого вещества к липиду липосом, например, отношение при нагружении лекарственным веществом, составляет, по крайней мере, 300 мг вещества (винкаалкалоиды или их производные) в расчете на мг формирующего липосомы липида. Еще в одном случае отношение нагружаемого вещества к липиду липосом, например, отношение при нагружении лекарственным веществом, составляет, по крайней мере, 500 мг вещества (например, производное камптотецина или камптотециновое пролекарство) в расчете на мг формирующего липосомы липида. Неожиданно было обнаружено, что согласно изобретению обеспечивается стабильное и прочное количество липосомного инкапсулирования производными камптотецина, например, иринотеканом при отношении нагружаемого вещества к липиду липосом более 0,8 мМ вещества в расчете на 1 г липосомного липида, более 1, 3 мМ вещества в расчете 1 г липосомного липида и даже 1,7 мМ вещества в расчете на 1 г липосомного липида (см. Пример 74).
Если липосомы содержат фосфолипид, целесообразно выражать содержащееся в них лекарственное вещество в весовых (массовых) единицах, т.е. весовое количество вещества рассчитывается на молярную единицу фосфолипида липосом, например, мг лекарственного средства/мМ фосфолипида. Однако, специалист в данной области знаний должен понимать, что содержание лекарства может быть эквивалентным образом выражено независимо от присутствия фосфолипидов в липосоме и, более того, выражено, например, через молярное количество вещества в расчете на единицу (весовую или молярную) липосомного липида. Скажем, содержание лекарственного вещества в липосоме, состоящей из 3 молярных частей дистеароилфосфатидилхолина (DSPC, мол. масса 790), 2 молярных частей холестерола (мол. масса 387) и 0,015 молярных частей полиэтилепгликоль- дистеароилфосфатидилэтаноламина (PEG-DSPE, мол. масса 2750), в которую инкапсулирован доксорубицин (мол. масса 543,5) при отношении лекарственное вещество/липид 150 мг/мМ фосфолипида, может быть эквивалентным образом выражено в единицах мг лекарственного вещества/мг общего липида следующим образом.
(a) Вычисляют молярное количество компонентов липосомного липида, нормализованное к молярной единице липосомных фосфолипидов (DSPC и PEG-DSPE в этом примере) делением молярного количества компонента на общее молярное количество липосомных фосфолипидов:
DSPC 3/(3+0,015)=0,99502;
холестерол 2/(3+0,015)=0,66335
PG-DSPE 0,015/(3+0,015)=0,00498.
(b) Вычисляют весовое количество общего липосомного липида по отношению к единице молярного количества липосомного фосфолипида и мол. массе липосомных компонентов:
общий липид, мг/мМ фосфолипида=0,99502×790+0,66335×387+0,00498×2750=1056,48.
(c) Вычисляют массовое количество лекарственного вещества по отношению к единице массы общего липида делением содержания лекарственного средства в массовых единицах на молярную единицу фосфолипида на значение, полученное на стадии (b):
доксорубицин, мг/мг общего липида=150/1056,48=0,14198.
(d) Вычисляют ммолярное количество лекарственного вещества по отношению к единице массы общего липида делением значения, полученного на стадии (с) на мол. массу лекарственного вещества (в данном случае 543,5):
доксорубицин, мМ/г общего липида=0,14198/543,5×1000=0,261.
(e) Вычисляют молярную долю фосфолипидов в липосомном липидном матриксе:
молярная доля фосфолипидов=(общее число молей фосфолипидов)/(общее количество молей липидов)=(3+0,015)/(3+2+0,015)=0,6012.
(f) Вычисляют молярное отношение доксорубицина к общему липиду.
Доксорубицин, моль/моль общего липида=(молярпая доля фосфолипидов)×(доксорубицин, г/моль фосфолипидов)/(мол. масса доксорубицина)=0,6012×150/543,5=0,166.
Таким образом, существует взаимосвязь между отношением лекарственное вещество/липид и лекарственное вещество/фосфолипид, выраженное в различных единицах. Используемый здесь термин «липид» включает (без ограничений указанным) любые формирующие мембрану липосомы компоненты липосомной мембраны, такие как, например, полимеры и/или детергенты.
Липосомы, содержащие замещенный аммоний и/или соль полианиона, согласно настоящему изобретению, обычно имеют осмотическую силу (осмолярность), которая обеспечивает стабильность липосом по отношению к осмотическому повреждению (набухание и/или разрыв) без нарушения нагружающей способности липосом. В одном случае осмолярность липосом, согласно настоящему изобретению, находится в интервале от 0,1 до 1,5 моль/кг или, предпочтительно, от 0,2 до 1,0 моль/кг. Неожиданно было обнаружено, что заявленные согласно изобретению липосомы стабильны по отношению к неблагоприятному эффекту высокой внутрилипосомальной осмотической силы на нагружающую способность липосом. К внутрилипосомальной осмолярности 0,727 моль/кг липосомы хорошо толерабельны, что приводит к почти количественному нагружению их лекарственным препаратом до теоретически максимального стехиометрического обмена внутрилипосомального замещенного аммония на молекулы лекарственного вещества (в случае иринотекана одна молекула лекарственного вещества на одну молекулу замещенного аммония), даже при том, что осмолярность внелипосомальной водной среды в процессе совместного инкубирования лекарственного вещества и липосом близка к физиологическому значению около 0,3 моль/кг (Пример 74).
В целом, липосомы, заявленные согласно настоящему изобретению, достаточно стабильны во время хранения, например, это определяют по процентному содержанию включившегося вещества, которое высвобождается из липосом, или все еще находящегося внутри липосом после некоторого периода времени, прошедшего от момента первоначального включения вещества в липосомы. Например, заявленные липосомы стабильны при 4°С по крайней мере в течение 6 месяцев, т.е. менее 10% включившегося вещества высвобождается из липосом в течение 6 месяцев, прошедших с момента первоначального включения вещества в липосомы. В одном случае заявленные липосомы стабильны при 4°С по крайней мере в течение 2 лет, т.е. менее 20% включившегося вещества высвобождается из липосом в течение 2 лет, прошедших с момента первоначального включения вещества в липосомы.
Важно, что включившееся в липосомы вещество остается внутри липосом до того момента, когда липосомы достигнут нужного участка действия, например, в случае липосомальной доставки противоракового лекарственного средства к опухоли в организме больного. Заявленные липосомы обнаруживают неожиданную стабильность по отношению к «утечке» (высвобождению) включившегося вещества в условиях in vivo, например, в крови млекопитающего. Время, необходимое для 50%-ного высвобождения включившегося вещества, например, лекарственного вещества из липосом (время полу-высвобождения) в кровь крысы in vivo составляет более 24 ч. В частности, липосомы, нагруженные винкаалкалоидами, например, винбластином, винкристином и винорелбином, обладают значительной стабильностью по отношению к высвобождению из них лекарственного вещества in vivo (время полу-высвобождения составляет, по крайней мере, 24 ч или количество вещества, оставшегося в липосомах через 24 ч, находящихся в крови in vivo, составляет, по крайней мере, 50% от значения, измеренного перед введением липосом). Обычно время полу-высвобождения составляет более 33 ч или же количество вещества, оставшегося в липосомах через 24 ч, находящихся в крови in vivo, составляет, по крайней мере, 60% от значения, измеренного перед введением липосом; даже более часто время полу-высвобождения составляет более 46 ч или количество вещества, оставшегося в липосомах через 24 ч, находящихся в крови in vivo, составляет, по крайней мере, 70% от значения, измеренного перед введением липосом. Иногда время полу-высвобождения включившегося вещества в крови составляет более 93 ч и даже более 120 ч. Липосомы, нагруженные производными камптотецина, такими, как топотекан и иринотекан, также обнаруживают исключительную стабильность в крови in vivo, a именно 79-85% первоначально включенного в липосомы лекарственного средства остается в них чрез 24 ч. Немаловажно, что заявленные липосомы, имеющие такую низкую скорость высвобождения лекарственного вещества в крови in vivo, обнаруживают значительную противоопухолевую активность in vivo, превышающую активность свободного лекарственного препарата (при введении в форме раствора).
Заявленные в соответствии с изобретением липосомы проявляют неожиданное сочетание высокой эффективности включившегося в них терапевтического агента и низкой токсичности. В целом, активность включившегося в липосомы терапевтического агента, согласно изобретению, например, антинеопластическая активность производного камптотецина в организме млекопитающего, составляет, по крайней мере, от эквивалентной до, по крайней мере, в два раза превышающей или, по крайней мере, в четыре раза превышающей активность терапевтического агента, если он вводится в том же самом количестве посредством обычной нелипосомальной процедуры, например, без использования заявленных липосом. При этом токсичность включившегося в липосомы вещества не повышена и, по крайней мере, в два раза, или, по крайней мере, в три раза, или, по крайней мере, в четыре раза ниже, чем токсичность вещества терапевтического агента, который вводится в том же самом количестве и по той же самой схеме, но в свободной, нелипосомальной форме. Например, хорошо известно, что включение в липосомы противораковых производных камптотецина обычными методами среди прочего приводит к увеличению его токсичности (более низкая максимальная толерантная доза, менее 50% летальной дозы) по сравнению с неинкапсулированным препаратом. См. патент США 6355268, патент США 6465008, Colbern, et al. Clinical Cancer Res. 1998, v.4, p.3077-3082, Tardi, et al. Cancer Res., 2000, v.60, p.3389-3393, Emerson, et al. Clinical Cancer Res. 2000, v.6, p.2903-2912. Инкапсулированный в липосомы камптотециновые пролекарства, такие, как иринотекан (СРТ-11), который растворим в воде и представляет собой катионное камптотециновое пролекарство, имеет значительно более высокую (по крайней мере, в 4 раза и даже, по крайней мере, в 10 раз) противоопухолевую активность, измеренную на модели опухоли in vivo, по сравнению с лекарством, не заключенным в липосомы, т.е. находящимся в свободной (растворимой) форме. Это даже более важно, поскольку терапевтическое соединение, например, камптотециновое пролекарство, требует энзиматической активации, например, путем активации эндогенной неспецифической карбоксилэстеразы, но в соответствии с настоящим изобретением надежно заключено во внутреннее пространство липосом. С другой стороны, неожиданно, токсичность камптотецинового пролекарства, такого, как СРТ-11 в липосомальной форме (весовое отношение лекарство/липид более 0,1, например, 0,2-0,6 или более), согласно настоящему изобретению, более, чем в 2 раза, более, чем в 3 раза и даже более, чем в 4 раза ниже, чем пролекарство СРТ-11, находящееся в свободной, неинкапсулированной форме. Более того, достигается пролонгированное высвобождение лекарства СРТ-11 из липосом in vivo, так что более, чем с 50% и даже более, чем 70% (79-86%) исходного препарата все еще остается в липосомах через 24 ч после введения их в кровяное русло, а время высвобождения превышает 24 ч, обычно 48 ч. Пролонгированное сохранение лекарства in vivo ассоциируется с высоким противоопухолевым эффектом. Неожиданно оказалось, что наиболее медленное высвобождение СРТ-11 и наиболее высокая противоопухолевая активность наблюдаются в липосомах, содержащих полианионизированное сахарное производное низкой мол. массы (октасульфат сахарозы) по сравнению с полимерным анионом (полифосфатом) (Пример 15).
В соответствии с другим вариантом осуществления изобретения, заявленная липосомная композиция может быть представлена фармацевтической композицией, содержащей заявленные липосомы и носитель, например, фармацевтически приемлемый носитель. Примерами фармацевтически приемлемых носителей являются физиологический раствор, изотоническая декстроза, изотоническая сахароза, раствор Рингера и раствор Хэнкса. Можно добавлять буфер для поддержания оптимального рН для стабильности при хранении. Например, рН между 6,0 и 7,5, более предпочтительно, около 6,5 является оптимальным для стабильности липидов липосомных мембран и обеспечивает сохранение в липосомах включенного в них вещества. Гистидин, гидроксиэтилпиперазин-этилсульфонат (HEPES), морфолино-этилсульфонат (MES), сукцинат, тартрат и цитрат, обычно при концентрации 2-20 мМ, являются примерами буферных систем. Другие подходящие носители включают, например, воду, забуференный водный раствор, 0,4%-ный NaCl, 0,3% - глицин и т.д. Белок, углевод или полимерные стабилизаторы и агенты, повышающие ригидность, например, желатин, декстран или поливинилпирролидон, также могут быть добавлены. Ригидность композиции может поддерживаться на физиологическом уровне 0,25-0,35 моль/кг с помощью глюкозы или более инертного соединения, такого, как лактоза, сахароза, маннитол или декстрин. Указанные композиции могут быть стерилизованы при использовании удобных, хорошо известных методик, например, фильтрованием. Полученные водные растворы могут быть упакованы для использования или отфильтрованы в асептических условиях и лиофилизированы; затем лиофилизированные препараты разводят стерильной водной средой перед применением.
Фармацевтическая липосомная композиция может также содержать другие фармацевтически приемлемые добавки, необходимые в определенных физиологических условиях, такие, как соединения, регулирующие рН и ригидность, буферные агенты и т.д., например, ацетат натрия, лактат натрия, хлорид натрия, хлорид калия, хлорид кальция и т.д. Кроме того, суспензия липосом может включать защищающие липиды агенты, которые предохраняют липиды от свободно-радикального или пероксидного повреждения при хранении. Могут быть использованы липофильные свободно-радикальные вещества, например, токоферол и растворимые в воде железо-специфичные хелаторы, такие, как ферриоксамин.
Концентрация липосом в жидкой фармацевтической композиции, согласно настоящему изобретению, может широко варьировать, т.е. составлять (обычно) от менее чем около 0,05% или от, по крайней мере, около 2-10% до 30-50% по весу и может быть непосредственным образом выбрана в зависимости от объема жидкости, вязкости и т.д. в соответствии с используемым методом применения. Например, концентрация может быть повышена при необходимом снижении объема вводимой жидкости при лечении конкретных заболеваний. Это особенно желательно в отношении больных, страдающих связанной с атеросклерозом сердечной недостаточностью или серьезной гипертензией. Альтернативно, липосомные фармацевтические композиции, содержащие раздражающие липиды, могут быть разбавлены до более низких концентраций с целью уменьшения воспаления при области введения препарата.
Количество вводимой липосомной фармацевтической композиции зависит от терапевтически активного вещества, инкапсулированного в липосомы, природы заболевания, типа используемых липосом и решения лечащего врача. В целом, количество вводимой липосомной фармацевтической композиции должно быть достаточно для доставки терапевтически эффективной дозы препарата в область действия.
Количество вводимой липосомной фармацевтической композиции для доставки терапевтически эффективной дозы препарата в область действия может быть определено рутинными методами in vivo и in vitro, обычно используемыми для тестирования лекарственных веществ. См., например, D.B. Budman, A.M. Calvert, E.K. Rowinsky (под редакцией). Handbook of Anticancer Drug Development, LWW, 2003. Терапевтически эффективные дозы различных препаратов хорошо известны специалистам в данной области знаний; согласно настоящему изобретению терапевтический агент, доставляемый с помощью заявленной липосомной композиции, обеспечивает, по крайней мере, ту же самую или двукратную, четырехкратную или десятикратную активность по отношению к активности при введении этого же препарата обычными методами без использования липосом. Обычно дозы терапевтически активных препаратов для липосомной фармацевтической композиции в соответствии с настоящим изобретением находятся в пределах от около 0,005 до около 500 мг в расчете на кг веса тела, более часто, между примерно 0,1 мг и примерно 100 мг терапевтически активного препарата на кг веса тела.
Как правило, липосомную фармацевтическую композиции в соответствии с настоящим изобретением приготавливают для местного или инъецируемого введения как в жидкой форме, так и в виде суспензии. Однако если приготавливают твердые формы, подходящие для введения в виде раствора или суспензии, то необходимо приготовить также и жидкие носители. Композиция может быть получена и в форме таблеток с энетерическим покрытием или гелевых капсул в соответствии с методами, известными из уровня техники.
Липосомная фармацевтическая композиция в соответствии с настоящим изобретением может быть введена любым способом, приемлемым с медицинской точки зрения, что зависит от заболевания и степени его тяжести. Возможные пути введения включают инъекции, в том числе парентеральные (внутримышечные, подкожные, внутривенные, внутриартериальные, интраперитонеальные, внутрисуставные, внутриэпидуральные, интратекальные и другие, а также пероральный, назальный, офтальмический, ректальный, вагинальный, местный, пульмонарный (например, путем вдыхания) способы. Для доставки заключенных в липосомы лекарств согласно настоящему изобретению к опухолям центральной нервной системы используют медленную поддерживаемую внутричерепную инъекцию липосом непосредственно в опухоль (конвекционно-усиленная доставка, CED). См. Saito, et al., Cancer Research, vol.64, p.2572-2579, 2004; Mamot, et al., J. Neuro-Oncology, vol.68, p.1-9, 2004. Композиции также могут быть доставлены к поверхности тканей. Поддерживаемое высвобождение, зависимое от рН высвобождение или другие специфические химические условия или условия, обеспечиваемые окружением, также включены в объем изобретения, например, инъекции в виде депо или распадасмых имплантов.
ПРИМЕРЫ
Нижеследующие примеры предназначаются для того, чтобы иллюстрировать, но не ограничивать каким-либо образом данное изобретение в части его объема или формы, прямо или косвенно. Поскольку они носят общий характер, исходя из того, что может быть использовано, иные процедуры, приемы и способы или методики, известные специалистам в данной области, также альтернативно могут использоваться.
Пример 1. Приготовление растворов солей замещенного аммония.
Растворы сульфатов триалкиламмония и диалкиламмония, пригодные для загрузки лекарственных средств (например, доксорубицина) в липосомы, готовили разбавлением серной кислоты водой до концентрации 0,25 М с последующим титрованием раствора серной кислоты одним из ряда аминов. Замещенными аминами, использованными в данном примере, были триэтиламин, триметиламин, диметиламин, диэтиламин или диэтаноламин. После прибавления аминов полученный в результате раствор разбавили до конечной концентрации 0,2 М замещенного аммония. Осмолярность определяли с помощью осмометра, используя точку росы. Свойства полученных растворов замещенных алкиламмонийных сульфатных солей показаны ниже в таблице 1.
Таблица 1. | ||
Свойства растворов сульфатов диалкиламмония и триалкиламмония | ||
Соль | Осмолярность, ммоль/кг | рН |
Диметиламмонийсульфат | 472 | 5,65 |
Диметилэтаноламмопийсульфат | 509 | 5,72 |
Диэтиламмонийсульфат | 519 | 5,85 |
Триметиламмопийсульфат | 497 | 5,81 |
Триэтиламмонийсульфат | 559 | 5,33 |
Пример 2. Получение липосом с захваченными диалкиламмониевыми и триалкиламмониевыми солями и загрузка вещества в эти липосомы.
Дистеароилфосфатидилхолин (DSPC), холестерин (Chol) и N-(метоксиполи(этиленгликоль)-оксикарбонил)-дистеароилфосфатидилэтано-ламин (PEG-DSPE) (приготовленный из поли(этиленгликоль) с мол. массой 2000) были сорастворены в хлороформе в мольном соотношении 3:2:0,015, и хлороформ удаляли при 55-60°С в ротационном испарителе. Высушенная липидная пленка была затем гидратирована раствором одного (каждого) из приведенных в примере 1 диалкил- или триалкиламмониевых сульфатов при 60°С в течение 30 минут. Липидную суспензию экструдировали под давлением через два объединенных в набор поликарбонатных мембранных фильтра с протравленными желобами и с размером пор 0,1 цм (Coming Nuclepore). Размер липосом, определяемый методом квазиупругого светорассеяния составлял приблизительно 110-120 нм. Неинкапсулированные соли триалкиламмония или диалкиламмония удаляли из внешней среды липосом гель-фильтрацией с помощью колонки с поперечносшитым декстрановым гелем (Сефадекс G-75, Amersham Pharmacia Biotechnology) при элюировании HEPES-буферным солевым раствором, рН 7,2-7,4, и собирали липосомы в виде фракции свободного объема колонки. Доксорубицин в форме гидрохлорида USP (лиофилизированный порошок, содержащий 5 вес. частей лактозы на 1 часть доксорубицина) добавили к липосомам в концентрации 150 µг лекарства на 1 µмоль фосфолипида липосомы. Смесь инкубировали при 55°С в течение 45 мин., охлаждали на льду в течение 10 минут и неинкапсулированное лекарство удалили гель-фильтрационной хроматографией, используя колонку с Сефадексом G-75, элюируя HEPES-солевым буферным раствором, рН 7,4. Наличие свободного доксорубицина (характеризующееся появлением более медленно движущейся полосы, окрашенной в красный цвет) визуально не детектировано. Нагруженные доксорубицином липосомы исследовали на фосфолипиды и доксорубицин в соответствии с примером 70 и 71 (спектрофотометрический метод), соответственно. Получившиеся в результате уровни нагруженности лекарством приведены ниже в таблице 2.
Таблица 2. | ||
Нагруженность доксорубицином липосом с захваченными растворами солей диалкил- и триалкиламмония. Исходное соотношение лекарство/фосфолипид 150 (µг/µмоль) | ||
Захваченная в липосомы соль | Соотношение лекарство/фосфолипид в липосомах (µг/µмоль) | Коэффициент включения (%) |
Сульфат триметиламмония | 140,74±10,35 | 93,8±5,7 |
Сульфат триэтиламмония | 163,81±1б,41 | 109,2±11,6 |
Сульфат диэтиламмония | 158,16±18,34 | 105,4±7,8 |
Сульфат диметилэтаноламмония | 155,08±8,51 | 103,4±11,6 |
Пример 3. Получение липосом, содержащих различные диалкил-, триалкил- и гетероцикл-замещенные аммониевые соли серной кислоты, и нагружение этих липосом доксорубицином
Растворы сульфатов замещенного аммония готовили как описано в примере 1, используя коммерчески доступные алкилзамещенные, гидроксиалкилзамещенные и гетероциклические амины. Липосомы сформировали как в примере 1, за исключением того, что вместо стадии гидратации липидной пленки чистые липиды растворяли в этаноле (приблизительно 100 µл этанола на каждые 50 µл фосфолипидов) и смешивали с раствором соли замещенного аммония при 60-65°С так, что получившаяся липидная дисперсия содержала около 10% об. этанола.
Нагружение доксорубицином осуществляли путем добавления раствора доксорубицина (2 мг/мл в HEPES-буферном солевом растворе рН 6,5) к липосомам в соотношении 155 µг лекарства/цмоль фосфолипида липосомы (PL) и нагревания до 58°С в течение 45 минут в горячей водяной бане. Полученные липосомы отделяли от оставшегося неинкапсулированного доксорубицина и анализировали на содержание лекарства и липида как описано в примере 1. Результаты показаны в таблице 2.
Таблица 3. | |||
Загрузка доксорубицина в липосомы с захваченными растворами создающих пространственные затруднения алкил-, диалкил-, триалкил- и гетероцикл-замещенных аммониевых солей. | |||
Амин, используемый для получения соли замещенного аммония | Осмолярность, ммоль/кг | Загрузка лекарства, мг/ммоль фосфолипида | Коэффициент включения, % |
Триметиламин | 497 | 149,4±7,9 | 96,4±4,9 |
Триэтиламин | 559 | 149,6±6,9 | 96,5±4,3 |
Диметилэтаноламин | 509 | 163,1±6,6 | 105,3±4,5 |
Диметиламин | 472 | 158,6±7,4 | 102,3±4,9 |
Диэтиламин | 519 | 156,7±13,0 | 101,1±8,5 |
Диизопропиламин | 533 | 159,9±6,2 | 103,2±4,1 |
Трис(гидроксиметил)-аминометан | 423 | 179,9±15,3 | 116,1±11,5 |
1-Пиперидинэтанол | 506 | 153,5±7,1 | 99,0±4,5 |
4-Метилморфолин | 465 | 152,4±9,8 | 98,3±6,2 |
Пиперидин | 479 | 158,5±12,5 | 102,3±8,2 |
1-Метилпиролидин | 492 | 153,6±12,3 | 99,1±7,8 |
Диметилпиперазин | 378 | 158,0±6,5 | 101,9±4,3 |
Пример 4. Получение раствора триэтил-аммоний-полифосфата (ТЕА-Pn)
Линейный поли(фосфат) натрия, имеющий 13-18 фосфатных групп на молекулу (Phosphate Glass, CALGON®, полученный от Sigma Chemical Company) был растворен в воде до концентрации примерно 1,3 М фосфата. Раствор пропустили через колонку, набитую 120 мл зернистой катионообменной смолы на основе сульфонированного полистирол-дивинилбензольного сополимера (Dowex 50W x 8-200, Dow Chemical G.) в водородной форме. Колонку предварительно уравновесили 3-3,6 М водным раствором HCl для того, чтобы привести смолу в водородную форму, и промыли деионизированной водой до нейтрального значения рН. Пятнадцать мл раствора полифосфата натрия нанесли на колонку и элюировали деионизированной водой. Элюент с колонки подвергали мониторингу, используя детектор проводимости. Вытекающее из колонки количество жидкости, которое соответствовало пику проводимости, оттитровывали чистым триэтиламином до рН 5,5-6,0. Раствор проверяли на остаточный натрий потенциометрическим методом, используя натрий-чувствительный стеклянный электрод, и на содержание фосфата, используя анализ неорганического фосфата, как описано в примере 1. Раствор с содержанием остаточного натрия менее, чем 1%, был разбавлен до конечной концентрации фосфата 0,55 М. Этот раствор обычно имеет TEA концентрацию 0,52-0,55 М, рН 5,5-6,0 и осмолярность 430-480 ммоль/кг.
Пример 5. Удаление незахваченных полифосфатных солей из препаратов липосом
Согласно методике Kirpotin et al., Biochemistry 36:66-75, 1997, получали липосомы (120 нм по размеру) с включенным флуоресцентным маркером трисульфонатом 8-гидроксипирена и смешивали их с раствором полифосфоната натрия. Эту смесь загружали на колонки, работающие на исключение по размеру, заполненные гранулами поперечносшитого декстрана (Сефадекс G-75), гранулами 6% агарозы (Сефароза 6В-Cl) или гранулами 4% агарозы (Сефароза 4В-Cl), все - из Amersham Pharmacia, и элюировали MES-Dextrose буфером (рН 5,5). Элюенты проверяли на содержание фосфата с помощью метода определения фосфата Bartlett (1959) и на содержание липосом спектрофотометрией. При проведении гель-хроматографических исследований Сефароза Cl-6В обеспечила полное отделение полифосфата от липосом при соотношении объема пробы и объема слоя в колонке, равном 13.
Пример 6. Приготовление раствора сахарозооктасульфата триэтиламмония (TEA-SOS)
Сахарозооктасульфат натрия (эквивалентный вес 144.8) - это натриевая соль производного сахарозы, в котором все гидроксильные группы образовали эфиры с серной кислотой. Сахарозооктасульфат натрия был закуплен в Toronto Research Chemicals, Toronto, Canada, p/n S 699020. Шесть граммов сахарозооктасульфата натрия растворили в 16,57 мл деионизированной воды до конечной концентрации около 2,5 Н сульфатных групп. Раствор подвергли ионному обмену как описано в примере 4. Раствор сахарозооктасерной кислоты, полученный как элюент с ионообменной колонки, был оттирован чистым триэтиламином до рН 5,7 (точка нейтрализации) и определены рН и осмолярность раствора. В полученном растворе была определена концентрация триэтиламмония, равная 0,643 М, рН 5,7 и осмолярность 530 ммоль/кг. Наличие остаточного натрия не могло быть определено потенциометрическим методом (менее, чем 0,1%).
Пример 7. Липосомы, нагруженные Иринотеканом (СРТ-11) с использованием солей замещенного аммония: получение и in vitro выделение лекарства в присутствии плазмы крови.
В этом примере сульфат, цитрат, пирофосфат, трифосфат и линейный полифосфат (13-18 mer) изучались как анионы в растворах захваченных в липосомы солей замещенного аммония. Были выбраны фосфатные полимеры благодаря их биодеградируемости и из-за того, что полифосфаты естественным образом содержатся в клетках, в противоположность другим синтетическим полимерным анионам (полиакрилат, декстрансульфат и т.д.). Кроме того, вязкость растворов полифосфатов с низкой молекулярной массой была ниже, чем у других полимеров, что делает полифосфатьт более подходящими и пригодными для процесса.
Для приготовления растворов солей были использованы следующие материалы.
1. Полифосфат натрия, NaO-[PO3Na]n-Na, n=13-18, закуплен у Sigma (Product № Р-8510, «Phosphate Glass, Practical Grade», известный также как гексаметафосфат натрия или под брендовым наименованием CALGON);
2. Триполифосфат пентанатрия; Na5P3O10, закупленный у Sigma (Product № Т-5883); 3. Декагидрат тетранатрия пирофосфата, Na4P2O7·10H2O, закупленный у Sigma (Product № Р-9146).
3. Ионообменные смолы Dowex 50Wx4 (4% поперечносшитая сульфонированная полистироловая смола, 100-200 меш), закупленная у Sigma (Product № 50х4-200) или Dowex HCR-W2 (8% поперечносшитая сульфонированная полистироловая смола 50-100 меш), закупленная у Sigma (Product №1-8880), использовались взаимозаменительно. Смолы были промыты при декантации следующим образом: три раза деионизированной водой, два раза 1 н HCl (трехкратным избытком по сравнению с объемом смолы), три раза водой, два раза 1 н NaOH, три раза водой, три раза 1 н HCl, три раза водой. После декантации смолы были в Н+-форме.
4. Триметиламин (ТМА), 40% водный раствор, от Aldrich Chemical Co. (Product №43, 326-8). Концентрации устанавливались кислотным титрованием до около 5,9 N.
5. Триэтиламин (TEA), 99%, ВЭЖХ-степень, от Fisher (Product №04884). Концентрация, согласно кислотному титрованию, составляла 6,9-7,1 N.
Вода была очищена обратным осмосом, ионообменом и удалением органики до достижения свободного от органических примесей качества «16-18 MOhm».
Водные растворы пирофосфатных, трифосфатных и полифосфатных солей готовили методом ионообмена. Растворы полифосфата натрия (3 г в 25 мл воды), пирофосфата (4 г в 27 мл воды) или полифосфата (6,7 г в 30 мл воды) были загружены в колонку, содержащую 100 мл (объем слоя) ионообменной смолы, приготовленной как указано выше. Колонку элюировали водой, фракции собирали. Фракции, показывающие кислый рН (рН<3), объединяли. Тройные 0,5-мл аликвоты объединенной фракции, содержащей фосфаты (фосфорную кислоту), разбавляли 20 мл воды и титровали 0,100 н NaOH до конечной точки рН 4,5-5,0 (Fisher раствор для анализа) для определения нормальности. Объединенные фракции после ионообмена были оттитрованы триметиламином (чтобы получить соли триметиламмония) до рН 5,4-5,5. После титрования растворы разбавляли, если необходимо, чтобы получить конечную концентрацию триметиламмония, близкую к 0,5 Н.
Сульфаты триметиламмония и триэтиламмония готовили разбавлением 1,39 мл концентрированной (17,9 М) серной кислоты 80 мл воды к титрованию разбавленного раствора чистым триэтиламином или водным триметиламином под контролем рН-метра до точки эквивалентности (рН 5,1-5,5). Объем доводили водой до 100 мл.
Раствор цитрата триметиламмония готовили растворением 1,572 г моногидрата лимонной кислоты ACS от Sigma (Product № С-1909) в 20 мл воды и титрованием раствора водным триметиламином до точки эквивалентности. Объем доводили водой до 25 мл.
Растворы фильтровали через ацетатцеллюлозный фильтр с размером пор 0,2 µм с применением давления. Осмолярность и рН растворов измеряли с помощью осмометра (работающего с давлением пара) и рН-метра со стеклянным и каломельным электродами, соответственно. Нормальность аниона в фосфатных растворах определяли спектрофотометрическим методом с помощью голубого фосфомолибдата (см. пример 70) после гидролиза кислотой (5 мин., 100°С, 3 Н H2SO4). Нормальность по аниону принимали в расчет только по кислотным функциональным группам, которые существенно ионизированы при рН 5,5. Нормальность катионная определялась на основе добавленного основания триалкиламмония. Полученные растворы имели следующие свойства (таблица 4):
Таблица 4. | ||||
Свойства растворов солей замещенного аммония для загрузки СРТ-11 в липосомы | ||||
Соль | Катионная нормальность | Анионная нормальность | рН | Осмолярность (ммоль/кг) |
ТМА цитрат | 0,58 | 0,60 | 5,1 | 791 |
ТМА сульфат | 0,50 | 0,50 | 5,4 | 625 |
ТМА пирофосфат | 0,44 | 0,54 | 5,4 | 651 |
ТМА трифосфат | 0,57 | 0,68 | 5,4 | 695 |
ТМА полифосфат | 0,49 | 0,58 | 5,5 | 336 |
TEA сульфат | 0,54 | 0,50 | 5,35 | 719 |
Холестерол и DSPC были закуплены у Avanti Polar Lipids, Alabaster, Alabema, USA. PEG-DSPE (PEG мол. масса 2000) был от Shearwater Polymers, Huntsville, AL, USA. DSPC, холестерол и PEG-DSPE в весовом соотношении 3:1:0,1 (мольное соотношение приблизительно 3:2:0,03) были растворены в хлороформе (Fisher; Optima-grade, стабилизирован амиленом) при 60 мг/мл DSPC. Раствор разливали в Ругех пробирки по 30 мг DSPC (0,5 мл) на пробирку и медленно выпаривали при пониженном давлении, используя роторный испаритель при 60°С. Липидные пленки высушивали под вакуумом (100 микрон ртутного столба, масляный насос) в течение 30-60 минут при комнатной температуре.
Сухие липидные пленки гидратировали при осторожном встряхивании в вышеупомянутых водных растворах солей при 60°С в течение 15-20 минут. Липиды образовали суспензию, напоминающую молоко (мультиламеллярные пузырьки). Эту молочную суспензию подвергали пяти циклам замораживания в смеси сухого льда и изопропанола (-80°С, 3 минуты) и оттаивания в водяной бане при 60°С в течение 3 минут. Затем суспензию липидов экструдировали 10 раз (двойным ударом) через два объединенных поликарбонатных мембранных фильтра (Nucleopore, Whatman, размер пор 0,1 цм), используя управляемый вручную совершающий возвратно-поступательное движение экструдер (Avanti Polar Lipids), нагретый до 60°С.
Экструдированные липосомы выдерживали при 60°С в течение пяти минут и резко охлаждали в ледяной воде (0-4°С) в течение пяти минут. Затем липосомы выделяли из раствора, создающего градиент соли, в загружающий буфер (буфер загрузки), содержащий MES-Dextrose (50 г/л Dextrose ACS, 0,975 г/л 2-(N-морфолино)-этансульфокислоты (MES), и значительное количество 5 М NaOH, чтобы довести рН до 6.4) гель-хроматографией на Сефадоксе G-75. Липосомы выявлялись во фракции свободного объема (приблизительно 30% объема слоя в колонке).
Препарат СРТ-11 (Иринотекан гидрохлорид), содержащий 0,860 мг СРТ-11 основания на 1 мг твердого вещества, был растворен в 0,001 н HCl для того, чтобы получить основной (исходный) раствор 16,5 мг/мл СРТ-11 основания. Этот раствор смешали с липосомами в MES-Dextrose буфере для достижения соотношения 150 рт СРТ-11 на 1 µмоль фосфолипидов липосомы. Смесь инкубировали при 55°С в водяной бане, осторожно встряхивая (приблизительно каждые пять минут) в течение 30 минут, а затем быстро вылили в ледяную воду (0-4°С). Липосомы отделяли от неинкапсулированного лекарства гель-хроматографией на Сефадексе G-75, используя MES-Dextrose в качестве элюента. Инкапсулированное лекарство определяли спектрофотометрическим способом (пример 71), а фосфолипиды определяли, используя экстракционный анализ (пример 70).
Выделение in vitro лекарства в полученных таким образом СРТ-11-нагруженных липосомах в присутствии 50% плазмы человека изучали следующим образом. Замороженную донорскую плазму человека размораживали 37°С, центрифугировали при 14500 g в течение 10 минут и фильтровали через 0,45-µм ацетатцеллюлозный фильтр с орошением. Препарат липосом, нагруженных СРТ-11, был стерилизован пропусканием через 0,2-µм свободный от сурфактантов ацетатцеллюлозный (SFCA) стерильный фильтр с орошением. 0,5 мл липосом смешивали с 0,5 мл плазмы в стерильных 1,5 мл Eppendorf пробирках, их закрывали и инкубировали при 37°С, поместив на вращающуюся подставку, в течение 24 часов. Образец слепого опыта содержал 0,5 мл стерильного MES-Dextrose вместо липосом. Липосомы выделяли гель-хроматографией на гранулированном 2% геле поперечно-сшитой агарозы (Сефароза Cl-2В, Pharmacia; 10 мл объема слоя), используя 144 мМ NaCl, 5 мМ HEPES-Na, pH 7,4 буфер (HBS-5). Липосомы появлялись во фракции свободного объема, в то время как белки плазмы и выделившееся лекарство (если таковое было) удерживались гелем. Липосомные фракции исследовали на содержание СРТ-11 и фосфолипидов и определяли соотношение (окончательное значение) лекарство/фосфолипиды. Значения для образцов слепого опыта (только плазма) вычитали из значений для образцов, содержащих липосомы. Долю лекарства, остающегося в липосомах после инкубации, определяли делением окончательного значения соотношения лекарство/липиды к исходному соотношению лекарство/липиды (соотношение лекарство/липиды до инкубации с плазмой). Данные по загрузке и выделению объединены и приведены в таблице 5.
Таблица 5. | ||||
Загрузка СРТ-11 в липосомы с солями третичного алкиламмония и in vitro выделение лекарства в присутствии плазмы человека | ||||
Включенный раствор соли | До инкубации с плазмой | После инкубации с плазмой | ||
соотношение лекарство/липид | коэффициент включения (%) | соотношение лекарство/липид | лекарство, оставшееся включенным (%) | |
ТМА сульфат | 127,2±5,5 | 84,8±3,8 | 132,1±6,9 | 103,8±10,0 |
ТМА пирофосфат | 136,2±9,0 | 90,8±6,0 | 132,3±5,0 | 97,1±10,1 |
ТМА трифосфат | 132,9 | 88,6 | 129,2 | 97,3 |
ТМА-Pn | 134,4±9,3 | 89,6±6,2 | 135,0±7,4 | 100,4±12,4 |
TEA сульфат | 131,1±6,5 | 87,4±4,4 | 125,2±5,0 | 95,5±8,6 |
Пример 8. In vivo стабильность липосом, нагруженных СРТ-11 с использованием пирофосфатов, трифосфатов, полифосфатов, цитратов и сульфатов триалкиламмония
Хотя липосомы с кампотецином могут демонстрировать приемлемую просачиваемость лекарства в плазму крови in vitro, это лекарство может более быстро просачиваться в кровоток in vivo. Поэтому ряд составов СРТ-11 липосом проверили на стабильность лекарства в них при помещении в кровоток in vivo с помощью исследования на мышах методом намеченных временных точек.
Получали липосомы и нагружали их СРТ-11, как описано в примере 6 со следующими модификациями. Вместо использования PEG-DSPE от Shearwater Polymers, был использован аналогичный PEG-DSPE от Avanti Polar Lipids. Чтобы произвести количественное определение липидной основы липосом в пробах крови/ткани, использовали неизменную радиоактивную метку [3H]-холестерил-гексадециловый эфир ([3Н]-СНЕ; Amersham, USA), ее добавили к раствору липидов в хлороформе в количестве 0,25 мКи/ммоль фосфолипидов. Липидный раствор распределяли в Ругех пробирки по 12 мг DSPC/пробирку и создавали липидные пленки с помощью роторного испарителя и сушки в вакууме. Липидные пленки гидратировали в 0,7 мл в градиент-образующих растворах солей замещенного аммония. Концентрацию липидов в липосомах с включенными фосфат-содержащими солями определяли подсчитывая сцинтилляцию радиоактивности. Препараты без включенных фосфатсодержащих солей также исследовались на фосфолипиды без экстракции, описанной в примере 70, и использовались как стандарты радиоактивности липидов. Часть из смесей липосом и лекарств, приготовленных для загрузки, сохраняли и исследовали для того, чтобы подтвердить изначальное соотношение до загрузки добавляемого СРТ-11 к липидам липосомы, т.е. в момент перед загрузкой (исходное соотношение). Усредненное значение объема и распределение стандартного отклонения размера липосом определяли методом квазиупругого светорассеяния (QELS), используя модель Гаусса. Свойства этих липосом объединены и показаны в таблице 6.
Таблица 6. | ||||
Характеристика загрузки СРТ-11 в [3H]-СНЕ - меченые липосомы для in vivo исследования стабильности | ||||
Захваченный раствор соли | Соотношение лекарство/липид до загрузки | Соотношение лекарство/липид после загрузки | Коэффициент включения (%) | Размер липосом (значение ±SD) им |
ТМА цитрат | 159,2±3,5 | 156,7±3,6 | 98,5±4,4 | 122,1±25,3 |
ТМА сульфат | 156,1±2,5 | 156,1±3,1 | 100,0±3,6 | 122,2±28,4 |
ТМА пирофосфат | 164,6±5,8 | 156,6±4,3 | 95,2±6,0 | 121,1±19,9 |
ТМА трифосфат | 163,6±5,7 | 156,0±3,2 | 95,3±5,3 | 122,4±12,9 |
ТМА полифосфат | 170,5±8,0 | 162,4±4,0 | 95,3±6,8 | 123,0±12,7 |
TEA сульфат | 153±3,3 | 154,9±4,9 | 101,0±53 | 121,1±18,0 |
Самкам CD-мышей (Charles River) 6-недельного возраста в хвостовую вену инъецировали эти липосомные СРТ-11 составы в дозе 10 мг/кг (0,2 мг СРТ-11 на мышь) в двух повторностях. Через восемь часов мышей анестезировали и обескровливали путем прямого прокола сердца. Кровь собирали в гепаринизированные шприцы (10-20 цл 1000 Ед/мл гепарина USP) и переносили в две взвешенные пробирки, содержащие 0,4 мл забуференного фосфатом физиологического раствора (PBS), содержащего 0,04% ЭДТА (Gibco BRL), хранящегося на льду. Эти пробирки взвешивали, чтобы определить массу образцов крови, кровяные клетки отделяли центрифугированием при 3000 g в течение 5 минут и супернатанты, содержащие PBS-разбавленную плазму, хранили для использования в анализах липидов и лекарства в липосомах. СРТ-11 количественно определяли путем флуорометрического анализа (пример 71). Липосомные липиды количественно определяли, подсчитывая корректируемую гашением сцинтилляцию радиоактивности. Стандартную радиоактивность липосом и фосфолипидов обеспечивали параллельно с образцами плазмы. Долю лекарства, которая осталась невключенной, подсчитывали делением соотношения лекарства/радиоактивности в образцах плазмы к соотношению лекарства/радиоактивности в инъецируемых липосомах. Вследствие быстрого удаления свободного СРТ-11 из крови (см. пример 69) и известной стабильности [3H]-CHE в зависимости от замены липидов, результаты анализов считаются показательными в отношении содержания в крови липосомального СРТ-11 и липидов. Долю вводимой дозы липидов (% I.D.), остающейся в кровотоке, вычисляли, принимая за 100% инъецируемого болюса, вводимого в кровоток; объем крови принимали за 6,3% массы тела мыши, и гематокрит - 45%. Результаты собраны и показаны в таблице 7.
Таблица 7. | |||
In vivo стабильность СРТ-11 инкапсулирования и долговечность СРТ-11-нагруженных липосом в мышах в намеченный момент времени (8 часов) после инъекции. % I.D., % инъецируемой дозы. | |||
Захваченная в липосомы соль | Соотношение лекарство/липиды, % перед инъекцией | Липосомные липиды, % I.D. в крови | |
ТМА цитрат | 80,2±7,8 | 18,8±3,4 | |
ТМА сульфат | 70,1±4,8 | 23,6±1,8 | |
ТМА пирофосфат | 67,3±9,2 | 23,2±3,1 | |
ТМА трифосфат | 70,6±6,0 | 24,9±8,2 | |
ТМА полифосфат | 107,5±8,9 | 24,3±3,4 | |
TEA сульфат | 76,6±13,1 | 23,6±0,1 |
Все препараты показали уровень инкапсулирования лекарства, составляющий 70-80% после 8 часов в крови in vivo, по отношению к уровню перед инъекцией, в то время как липосомы, содержащие полифосфат, оказались самыми стабильными (степень инкапсулирования оставалась на уровне почти 100%).
Пример 9. Фармакокинетические характеристики в крови СРТ-11 липосом, полученных при использовании полифосфата триэтиламмония.
Состав липосомального СРТ-11 с использованием полифосфата триэтиламмония готовили как выделено в примере 3. Липиды - DSPC, холестерин и N-(метокси-поли(этиленгликоль) (М.м. 2000)-оксикарбонил) - DSPE (PEG-DSPE) (все от Avanti Polar Lipids, Inc.) - были объединены в виде сухих порошков при мольном соотношении 3:2:0,015 и растворены в 100% этаноле (USP качества, приблизительно 0,15 мл/100 мг липидов) при 62-65°С. Для изучения фармакокинетики ЗН-холестерил-гексадециловый эфир (3Н-СНЕ, получен от Amersham Pharmacia) был добавлен к липидам в количестве 0,5 мКи фосфолипидов как неизмененного радиоактивной метки липидов. Водный раствор ТЕА-Pn (0,5 М триэтиламмоний, рН 5,7-6,2) готовили как в примере 4. Раствор ТЕА-Pn (10-кратный по объему от добавленного этанола) смешали с липидным раствором при 60-65°С и перемешивали при этой температуре до тех пор, пока не образовалась гомогенная молочная суспензия мультиламеллярных пузырьков. Эту суспензию экструдировали 15 раз через 2 объединенных поликарбонатных фильтра с протравленными желобами (Corning Nuclepore) с размером пор 100 нм с использованием экстру дера, работающего при давлении аргона (Lipex Biomembranes), при 60-65°С и получившиеся в результате одноламеллярные липосомы быстро охлаждали на льду и затем давали липосом достичь уровня комнатной температуры. Этанол и невключенные полифосфатные соли удаляли гель-хроматографией на колонке с Sepharose CL-4B с элюцией MES-Dextrose буфером (5 мМ MES, 50 г/л декстрозы, рН доводили NaOH до 6,5).
Основной раствор СРТ-11 (Иринотекан гидрохлорид), содержащий 20 мг/мл Иринотекана основания в воде, добавили к липосомам в концентрации 60 лекарство/липиды 150-200 мг/мл фосфолипидов, и эту смесь инкубировали при осторожном встряхивании в течение 45-60 минут при 60-62°С. Инкубированную смесь быстро охлаждали и инкубировали в течение 10 минут при 0°С, затем давали достичь комнатной температуры. 1/20 объема 2,88 М NaCl добавили для достижения физиологического значения ионной силы, чтобы улучшить перемещение связанного с мембранами СРТ-11 (в противоположность лекарству, инкапсулированному внутрь липосомного внутреннего пространства). Неинкапсулированное лекарство удаляли гель-хроматографией на колонке с Сефадексом G-25 или G-75 (Amersham Pharmacia) с элюцией HBS-6,5 буфером (5 мМ 2-(4-2-гидроксиэтил)-пиперазино)-этилсульфокислота (HEPES), 144 мМ NaCl, рН 6,5). Липосомные фракции, элюированные в свободном объеме, объединяли, стерилизовали фильтрацией при размере пор 0,2 мк и хранили при 4-6°С до использования. Липосомы были исследованы в отношении липидной концентрации, концентрации лекарства и размера частиц как в примере 7. Эти липосомы имели средний размер 108 нм и содержание СРТ-11, соответствующее 139±18 мг СРТ-11 основания на ммоль фосфолипидов.
Долговечность липосомных липидов и лекарство в липосомах в крови и характеристики выделения лекарства из липосом in vivo изучали на самках Spraque-Dawley крыс (190-210 г) с введенными в центральную вену катетерами. Крысам инъецировали 0,2-0,3 мл болюсных липосом с 3Н-СНЕ-меченным Иринотеканом (0,05 ммоль фосфолипидов или 7-8 мг СРТ-11 на кг массы тела). Отбирали пробы крови в различные моменты времени после инъекции с помощью обработанного гепарином шприца. Отобранный объем крови восполняли фосфатным физиологическим солевым раствором. Пробы крови разбавляли 0,3 мл ледяным PBS, содержащим 0,04% ЭДТА, взвешивали, отделяли клетки крови центрифугированием. Надосадочные супернатанты собирали и исследовали на СРТ-11, используя флуорометрический метод примера 71, а для липосом измеряли радиоактивную сцинтилляцию липидной метки, используя общеизвестные методы. Препараты липосом с известной концентрацией лекарства и 3H-СНЕ-липид использовали как стандарты. Стандарты радиоактивности содержат равные количества разбавленной плазмы крыс для учета гашения. Количество СРТ-11 и липосомных липидов в крови вычисляли, принимая объем крови в мл как 6,5% массы тела в граммах и гематокрит 40%. Общее количество липидов и лекарства в крови выражали в % инъецируемой дозы (% ID., % ID) и наносили против пост-инъекционного временного периода. Долю лекарства, оставшегося в липосомах, вычисляли делением соотношения лекарство/липид в пробах крови на соотношение лекарство/липид в инъецируемых липосомах (принято за 100%). Поскольку графики в целом показали хорошее соответствие с моноэкспоненциальными кинетическими характеристиками (линейность на полулогарифмической шкале), время полужизни в крови для лекарства, липида и просачивания лекарства из липосом вычисляли, исходя из наилучшего соответствия данных уравнению моноэкспоненциального убывания, используя trend-опцию программного обеспечения Microcoft EXEL (Microsoft Corp., USA), Результаты показаны на Фиг.1. Исходя из наилучшего соответствия параметров, время полужизни в крови для липида и для лекарства было 16,4 часа и 6,61 часа соответственно. При этих условиях свободный СРТ-11 удаляется из кровотока очень быстро (см. пример 69).
Соотношение лекарство/липид в крови обнаруживает двухфазный характер выделения СРТ-11 из липосом (Фиг.2). Спустя первые 24 часа характер выделения лекарства был линейным во времени (R=0,992), показывая очевидность нулевого порядка кинетики выделения. Только после того, как выделилось примерно 75% лекарства на 24-ом часу, последующее выделение носило нелинейный характер. В течение 24 часов липосомы выделяли лекарство с постоянной скоростью примерно 3,6% от начальной загрузки в час. Так что 50% лекарства просочилось в период приблизительно 14 часов. Нулевой порядок характера выделения лекарства является привлекательным свойством составов для непрерывного выделения, так как скорость выделения лекарства остается постоянной в течение периода времени.
Пример 10. Антиопухолевый эффект СРТ-11 липосом, полученных с использованием полифосфата триэтиламмония, в отношении рака молочной железы, привитого бесшерстным мышам.
Антиопухолевое действие СРТ-11 липосом изучали на модели карциномы молочной железы ВТ-474 человека, эстрогензависимой дуктальной аденокарциномы, которая обуславливает сверхэкспрессию C-ErbB2 (HER2) рецептора. ВТ-474 клетки получали из American Type Culture Collection (Rockville, MD). ВТ-474 подлиния с более высокой скоростью роста была получена из быстрорастущего опухолевого узелка ксенотрансплантата, выращенного как описано ниже. Клетки культивировали in vitro в RPMI-1460 среде с 10% фетальной сыворотки теленка, 0,1 мг/мл сульфата стрептомицина и 100 Ед/мл пенициллина G в Т-150 колбах, и разводили (1:3) каждую неделю. Самкам мышей NCR nu/nu (возраст 4-6 недель; 4-6 недель; Taconic Farms) подкожно имплантировали (в основание хвоста) гранулы, непрерывно в течение 60 дней выделяющие 0,72 мг 17β-эстрадиол (Innovative Research of America, Inc.) и через два дня инокулировали подкожно в зону верхней части спины 0,1 мл суспензии, содержащей 2×10 ВТ-474 клеток в среде для роста клеток. Рост опухоли проверяли пальпированием и с помощью измерений опухоли циркулем по длине (больший размер) и ширине (меньший размер) дважды в неделю. Размеры опухоли определяли дважды в неделю по измерениям циркулем, используя формулу (Geran, R.I., et al., 1972 Cancer Chemother. Per. 3:1-88):
Объем опухоли=[(длина)×(ширина)2]/2
Липосомальный СРТ-11 получали как описано в примере 8 (соотношение лекарство/фосфолипид 192 мг/ммоль; средний размер липосомы 86,8 нм). Свободный и липосомальный СРТ-11 разбавили MES-декстрозной средой до 5 мг/мл СРТ-11 основания. Животным инъецировали в хвостовую вену свободный СРТ-11, липосомальный СРТ-11 или среду только на 14, 18, 21 и 25-ый дни после инокуляции опухоли. Составы, содержащие лекарство, давали в дозе 50 мг СРТ-11/кг на инъекцию, что есть среднее из доз СРТ-11, указываемых в литературе по исследованию опухолей на моделях грызунов.
Для того, чтобы оценить токсичность в зависимости от лечения, животных взвешивали дважды в неделю. Наблюдения делали до 60-ого дня после инокуляции, в течение этого времени гранула, добавляющая эстроген, исчерпывалась. Средние объемы опухолей в группах отмечали на графиках и через некоторое время сравнивали. Как показано на Фиг.3, пока свободный СРТ-11 уменьшал скорость роста опухоли, в группе, которая получала лечение липосомами, опухоли резко регрессировали. В то время как на 36-ой день в контрольной группе опухоли достигли максимально возможного размера, в среднем соответствующего 3500 мм, а на 46-ой день в группе, леченной свободным лекарством, опухоли были около 1000 мм3 в среднем, а в тот же самый момент времени ни у одного из животных в группе, которая получала лечение липосомами, не было пальпируемых опухолей.
Токсичность в зависимости от лечения оценивалась по динамике веса тела животного (Фиг.4). Ни в одной группе не обнаруживалось никакой значительной токсичности. Вес животных в контрольной группе непрерывно рос. Небольшое снижение среднего веса животных, получавших липосомальный СРТ-11, было около 3,3% - на последний лень лечения. Эта потеря веса была обратимой, и вес животных вернулся к ожидаемой величине. Это снижение значения веса тела не было статистически значимым по Student's t-тесту по сравнению с весом до лечения (р=0,274). Таким образом, все виды лечения допустимы без значительной токсичности.
Так, липосомы с СРТ-11, полученные загрузкой лекарства через предварительно захваченную имеющую стерические затруднения замещенную соль захваченного аммония (триэтиламмоний) полианионного, биодеградируемого полимера (полифосфата), показали повышенную долговечность в крови, свойство непрерывного выделения и повышенную антиопухолевую активность в изученных моделях опухолей без предполагаемого увеличения токсичности.
Пример 11. Сравнительные оценки содержащих СРТ-11 липосом, полученных с использованием предварительно захваченных солей триэтиламмония: влияние размера липосом, соотношения лекарство/липид и природы ранее включенного аниона.
Готовили два прототипа составов СРТ-11-нагруженных липосом, в одном использовались липосомы с предварительно захваченным ТЕА-Pn, а в другом - с предварительно захваченным TEA-SOS. Получение этих липосом включало следующие технологические стадии.
1) Сочетание липидов сорастворением в этаноле
Матричная липидная композиция состояла из 1,2-дистеароил-SN-фосфатидилхолина (DSPC) (М.м. 790) 3 мольные части (59,8% моль.); холестерина (Chol) (М.м. 387) 2 мольные части (39,9% моль.) и N-(омега-метокси-поли(этиленгликоль)-оксикарбонил)-1,2-дистеароилфосфатидил-этаноламина (М.м. 2787) (PEG-DSPE) 0,015 мольных частей (приблизит, 0,3% моль.). DSPC и PEG-DSPE были закуплены у Avanti Polar Lipids, Birmingham, Alabama. Холестерин (высокой степени чистоты) был закуплен у Calbiochem. Сухие липиды взвешивали с точностью ±0,1 мг в контейнере из боросиликатного стекла и соединяли с абсолютным этанолом в соотношении, подходящем для стадии диспергирования липидов, приведенной ниже. Из-за высокой температуры перехода DSPC (55°С) растворение обычно проводили при 55-60°С до тех пор, пока не получали прозрачного раствора.
2) Получение ТЕА-Pn и TEA-SOS растворов. Полифосфат натрия (n=13-18) был получен из Sigma Chemical Co., p/n P 8510. Сахарозооктасульфат натрия был закуплен у Toronto Research Chemicals, Toronto, Canada, p/n S699020. Соли взвешивали и растворяли в воде, чтобы получить 1,2-2,5 н растворы. Анионообменные смолы Dowex 50Wx8-200 или Dowex HCR-W2 в Н+-форме (поставляются Sigma) использовалось для того, чтобы перевести натриевые соли в свободные кислоты. Перед первым использованием смолы промывали, перемешивая их с 3 объемами следующих растворов с последующим декантированием: (1) 1,0-1,2 М водный раствор HCl - 2 раза; (2) Вода - 2 раза; (3) 1,0-1,2 М водный раствор NaOH - 2 раза; (4) Вода - 2 раза; (5) 1,0-1,2 М водный раствор HCl - 2 раза. Суспензию промытой смолы в воде загружали в хроматографическую колонку подходящего размера, чтобы получить, по меньшей мере, 8 мл установленной смолы на каждый мл растворов натриевых солей. Затем смолу уравновешивали, пропустив 2 объема колонки 3,0-3,6 М водной HCl, затем - 5 объемов колонки воды, пока электропроводность элюата не опускалась ниже 1 микро-S. После использования колонки регенерировали, последовательно пропуская: 1-1,2 М HCl - 3 колоночных объема; 3,0-3,6 М HCl - 2 колоночных объема; вода - по меньшей мере, 5 колоночных объемов, или пока электропроводность элюата не станет ниже 1 p,S, и хранили под водой, отфильтрованной на 0,2-мкм фильтре, при комнатной температуре. Растворы Pn и SOS-натриевых солей наносили на окрашенную поверхность колонки (приблизительно 1 мл на каждые 4 мл объема загруженной смолы) и обеспечивали протекание под действием силы тяжести со скоростью около 1-2 мл/мин при объеме слоя смолы 75-150 мл. Элюцию с колонки осуществляли с помощью воды. В полученном элюате исследовали электропроводность. Фракции с электропроводностью 10 mS и выше собирали. Если требовались более концентрированные растворы поликислот, сбор фракции начинали при 20-50 mS, но за счет отчасти большей потери градиент-образующей соли. В случае полифосфорной кислоты собранный раствор хранят охлажденным (0-4°С) до стадии титрования амина из-за гидролитической нестабильности фосфодиэфирных связей при низких значениях рН. Собранные элюаты должны иметь рН менее 0,7 (обычно около 0,4) и электропроводность около 120-200 mS. Обычно стадию титрования амина проводят сразу из-за стабильности полифосфата при низких значениях рН. ВЭЖХ-очищенный триэтиламин (99,5 + % чистоты) от Fisher, p/n 04884, был использован для титрования кислых растворов, полученных после ионного обмена. Нормальность чистого TEA определялась потенциометрическим титрованием. 0,100-мл аликвоты TEA (0,100 мл) отбирали в 20 мл воды в трех повторностях. Эти аликвоты титровали 0,1 н стандартным раствором HCl до конечной точки рН 5,5-6,0 (стеклянный электрод). Вычисленная нормальность (7,07 н) была близка к теоретической величине 7,17 н. Отмеренный объем раствора полифосфорной кислоты (Pn) или сахарозооктасерной кислоты (SOS) оттитровывали чистым TEA под контролем рН (стеклянный электрод). Для того, чтобы амин диспергировался, требовалось тщательное перемешивание. Титрование до конечной точки достигало значения рН 5,6-6,2. Объем добавляемого TEA тщательно регистрировали. Объем оттитрованного раствора измеряли, а концентрацию TEA вычислили, исходя из объема добавленного TEA и нормальности. Воду добавляли по мере необходимости, чтобы довести концентрацию TEA до требуемого значения 0,55±0,05 н или 0,65±0,03 н, как показано ниже. Количество остаточного натрия в полученных растворах ТЕА-Pn или TEA-SOS определяли потенциометрически, используя натрий-селективный стеклянный электрод (Corning). Один мл раствора разбавляли 19 мл воды, и концентрацию натрия определяли, используя инкрементный метод согласно инструкции изготовителя электродов. Количество остаточного натрия было меньше, чем 1 мМ, обычно менее, чем 0,5 мМ. Полученные ТЕА-Pn или TEA-SOS растворы пропускали под давлением через стерильный ацетатцеллюлозный фильтр. Измеряли конечные значения рН и осмолярности растворов и регистрировали эти значения. Использовались рН-каломель в микрокомбинации с полностью стеклянным электродом для измерений рН и осмометр, учитывающий давление пара и точку росы - для измерения осмолярности. До использования растворы хранили в охлажденном виде.
3) Приготовление дисперсии липидов в градиент-образующем буфере путем смешения этанолсодержащего раствора липидов с градиент-образующим буфером.
Липиды были диспергированы в градиент-образующем растворе соли с использованием метода этанольного смешения. Все стадии выполнялись при 60-65°С. Липиды растворяли в 100% этаноле USP при концентрации около 0,5-0,6 М DSPC в химически инертной стеклянной колбе грушевидной формы или пробирке. Градиент-образующий раствор соли (ТЕА-Pn или TEA-SOS) был предварительно подогрет до 60-65°С и немедленно добавлен к этанолсодержащему липидному раствору, компоненты таза тщательно только перемешивались при вращении и/или при вихревом движении. Конечное количество этанола было около 10% об. Для препаратов с содержанием фосфолипидов более 0,1 ммоль, получившуюся в результате суспензию помещали в роторный испаритель при 60-65°С и создавали вакуум при вращении до тех пор, пока отгонка этанола не прекращалась, что показывало прекращение пенообразования. Если содержание фосфолипидов соответствовало 0,1 ммоль или менее, этанол не удалялся из липидной дисперсии на этой стадии. Полученные липидные суспензии хранили при 60-65°С и использовали точно перед стадией экструзии.
4) Последовательная экструзия липидной дисперсии через мембраны с определенным размером пор
Для липидных суспензий объемом до 1 мл использовали экструдер возвратнопоступательного действия, работающий при ручном управлении, поставляемый Avanti Polar Lipids. Экструдер снабжен 19-мм фильтровальными мембранами с протравленными желобами и термостатирован в металлическом нагревающем блоке. Для объемов от 1 до 10 мл использовался термостатированный, управляемый сжатым газом, однонаправленный проточный экструдер от Lipex Biomembranes. Экструдер загружен 25 мм фильтровальными мембранами. Суспензию липидов быстро экструдировали при 60-65°С, используя ручную загрузку или давление газа, соответственно, через серию объединенных по 2 поликарбонатных мембранных фильтров (фильтры от Coming-Nuclepore and Osmonics Corp. были одинаково пригодны), имеющих номинальный размер пор 100 им, 80 нм или 50 нм. В тех случаях, если влияние размера липосом представляло интерес, экструзию прекращали в точке 100 нм, 80 нм или 50 нм. Точный тип используемых фильтров и количество стадий экструзии показано ниже для каждого опыта. Экструдированные липосомы сохраняли при 60-65°С около 15 минут и быстро охлаждали до 2-4° на ледяной бане. После примерно 15-минутного выдерживания на ледяной бане липосомам давали нагреться до комнатной температуры.
5) Удаление экстралипосомального градиент-образующего буфера и перенос липосом в буфер загрузки лекарства. Неинкапсулированные градиент-образующие соли удаляли и липосомы перенесли в буфер для загрузки лекарства с помощью хроматографии исключения по размеру (sige-exclusion chromatography - SEC). Фильтрация при тангенциальном направлении потока, диализ через полые волокна, другие приемы очистки могут использоваться в расширенном масштабировании. Эти процедуры выгодно использовать для того, чтобы обеспечить полное удаление электролипосомальных полианионов обработкой липосом анионообменной смолой (например, Dowex-1 или Dowex-2 поперечносшитый четвертичным аммонием полистирол). Буфер для загрузки лекарства содержал 50 г/л безводной декстрозы USP и 5 мМ проверенного на тканевых культурах HEPES в воде с доведенным с помощью NaOH pH 6,5. Буфер был профильтрован под вакуумом через 0,2-микронный нейлоновый фильтр (Whatman). Экструдированные липосомы были подвергнуты хроматографии на колонке с Сефарозой CL-4B (Pharmacia) и элюированы буфером для загрузки лекарства. Липосомы появлялись во фракции свободного пространства, были собраны с учетом мутности элюата, в объеме, примерно вдвое превышающем нанесенный объем. В элюированных липосомах исследовали концентрации фосфолипидов согласно примеру 70, размер частиц - по QELS и хранили их при 4-6°С.
6) Инкубирование липосом с лекарством. Исходный раствор РСТ-11 (Иринотекан гидрохлорид) готовили непосредственно перед смешиванием с липосомами растворением гидрохлорида Иринотекана в виде с достижением концентрации 20 мг/мл Иринотекана основания. pH раствора был между 4,0 и 5,0. Раствор лекарства фильтровали через 0,2-микронный полиэфирсульфоновый (PES) стерильный фильтр под давлением. Аликвоты липосом в буфере для загрузки лекарства, полученных на стадии 5, смешивали при комнатной температуре с исходным раствором Иринотекана с достижением исходного соотношения лекарство/липид в диапазоне 0,15-0,55 г лекарства на ммоль фосфолипида липосомы. Конкретные значения исходных соотношений лекарство/липид показаны ниже, где это уместно, pH смесей был доведен 1 М NaOH до 6,5, смеси в стеклянных емкостях инкубировали при термостатировании в водяной бане при 58-62°С при легком перемешивании в течение 30-45 минут, быстро охлаждали в ледяной бане (0-2°С) и оставляли при этой температуре на 15 минут.Затем липосомам давали нагреться до комнатной температуры для следующей стадии (удаление неинкапсулированного лекарства и перенос в буфер для хранения). Эта стадия привела к достижению значения коэффициента инкапсулирования более чем 95%, как правило 98-100%, во всем диапазоне исследованных соотношений лекарство/липид.
7) Удаление неинкапсулированного СРТ-11, перенос липосом в буфер для хранения, финальная фильтрация и хранение. Неинкапсулированное лекарство было удалено, а липосомы перенесли в буфер для хранения, используя хроматографию с исключением по размеру. Буфер для хранения содержал 20 мМ HEPES, 135 мМ NaCl, pH 6,5 (доведено NaOH) в виде, перед использованием он был отфильтрован через 0,2-микронный вакуум-фильтр. Сразу после этого проводили гель-хроматографию на Сефадексе G-75 (Amersham Pharmacia Biotech) согласно описанному выше - стадия 2: СРТ-11 липосомы, элюированньте с колонки (фракция свободного объема), исследовали на фосфолипиды в липосомах и СРТ-11 (путем спектрофотометрии) см.примеры 70 и 71) и значения размера частиц с замеренным объемом - по QELS. Если это было необходимо, концентрацию лекарства доводили до значения, входящего в интервал 2,0-4,0 мг/мл. Липосомы фильтровали через 0,2-микронные полиэфирсульфонные стерильные фильтры и асептически распределяли в стерильные полипропиленовые емкости (Coming Cryo-Vials) или 4-мл стеклянные пробирки с боросиликатными прикручивающимися крышечками примерно на 70% по объему пробирки. Пробирки асептически закрывали (в воздухе), маркировали и хранили при 4-6°С.
Пример 12. Влияние соотношения лекарство/липид на коэффициент включения лекарства и in vivo удерживание лекарства ТЕА-Pn-содержащими липосомами
Липосомы с захваченным водным 0,65 н раствором ТЕА-Pn, рН 6,1, осмолярностью 531 ммоль/кг, готовили после процедур примера 11. Липидную дисперсию экструдировали десять раз через два объединенных поликарбонатных фильтра с размером пор 100 нм. Липосомная липидная матрица включала также [3Н]-СНЕ при 0,5 мКи/ммоль фосфолипида. Размер липосом перед загрузкой лекарства был 98,5±34,3 нм. Липосомы загружали при исходных соотношениях лекарство-фосфолипид, равных 200, 300, 400 и 500 мг СРТ-11/ммоль фосфолипида. Количества лекарства и фосфолипидов в липосомах определяли спектрофотометрическим способом в соответствии с примером 71 и анализом с помощью фосфомолибдата голубого фосфолипидной экстракции - расщепления по примеру 72, соответственно.
Чтобы оценить скорость выделения лекарства in vivo, способ примера 8 был следующим.
Липосомы вводили через хвостовую вену 6-недельным самкам Swiss Webster мышей (масса тела животного 18-22 г) при дозе инъекции 5 мг СРТ-11/кг. Спустя 8 и 24 часа после инъекции, мыши были подвергнуты анестезии (в каждой группе по 3 животных) и обескровлены прямым проколом сердца. Кровь смешивали с 0,4 мл ледяного 0,04% EDTA в PBS, кровяные клетки отделяли центрифугированием, концентрацию СРТ-11 в плазме измеряли спектрофлуорометрическим способом как описано в примере 71. Липиды определяли измерением количества [3Н]-CHE, учитывая корректируемую гашением сцинтилляцию жидкости, а количество лекарства, оставшегося в липосомах, вычисляли, деля определенное соотношение лекарство/липид на соотношение лекарство/липид в инъецируемых липосомах. Вследствие быстрого удаления свободного СРТ-11 из крови, приводящего к снижению его уровня в крови, принимается, что все исследуемое лекарство было в липосомальной форме.
Результаты показаны в таблице 8. Разница между величинами, характеризующими удерживание лекарства в разных группах, статистически незначительна. В результате проведенных исследований был сделан вывод, что повышение дозы загрузки лекарства до 500 мг/ммоль не будет отрицательно влиять на включаемость лекарства или in vivo стабильность. Это соотношение принимали при дальнейших анализах.
Таблица 8. | ||||
Влияние соотношения лекарство/липид на загружаемость (включаемость) лекарства и in vivo удержание лекарства в Иринотекан ТЕА-Pn липосомах (среднее значение ± стандартное отклонение) | ||||
Соотношение лекарство/липид, мг/ммоль фосфолипида | Доля лекарства, оставшегося в липосомах, % от величины перед инъекцией | |||
Начальное | Конечное | % загрузки | Через 8 часов | Через 24 часа |
200 | 208,4 | 104,2 | 54,6±9,9 | 9,72±2,23 |
300 | 286,3 | 95,4 | 85,2±14,3 | 14,52±2,51 |
400 | 348,8 | 87,2 | 81,5±18,3 | 17,31±6,14 |
500 | 518,9 | 103,8 | 66,8±19,6 | 13,47±1,44 |
Пример 13. Коэффициент включения лекарства при загружении СРТ-11 в TEA-SOS-содержащие липосомы: влияние размера липосом и in vivo удержание лекарства в исследовании на мышах.
Липосомы, содержащие захваченные растворы, готовили как описано в примере 11, используя градиент-образующий раствор, имеющий 0,643 н TEA-SOS, рН 5,7, осмолярность 530 ммоль/кг. Липидную дисперсию десять раз экструдировали через два поликарбонатных фильтра с размером пор 50 нм, 80 нм или 100 нм. Липосомная липидная матрица содержала также [3H]-CHE при 1,5 мКи/ммоль фосфолипидов липосомы. Размер липосом определяли динамическим светорассеянием. Липосомы нагружали СРТ-11 при начальных соотношениях лекарство/фосфолипид приблизительно 550 Иринотекан/ммоль фосфолипида. Нагруженные лекарством липосомы измеряли с помощью QELS и исследовали как описано в примерах 70 и 71.
Самкам Swiss Webster мышей (8-10-недельного возраста, вес в среднем 27-30 г) инъецировали в хвостовую вену эти СРТ-11 липосомные составы при дозе лекарства 10 мг/кг. Мышей умерщвляли через 24 часа, собирали кровь и исследовали на СРТ-11 и липосомные липиды как в примере 11. Результаты показаны в таблице 9.
Таблица 9. | |||
Включаемость Иринотекана и in vivo удержание лекарства в ТЕА-SOS липосомах. | |||
Размер пор экструзионной мембраны, нм | Размер липосомы, нм, значение SD | Загрузка лекарства, мг Иринотекана/ммоль фосфолипида | Удержание лекарства липосомами в мышах после 24 часов, % от величины перед инъекцией |
50 | 87,6±28,1 | 579,3±24,2 | 79,2±3,8 |
80 | 98,5±15,1 | 571,1±69,7 | 82,6±2,1 |
100 | 110,8±25,2 | 567,7±37,7 | 86,2±2,7 |
Удивительно, что липосомы с сахарозооктасульфатом триэтиламмония, неполимерным полианионным органическим гидроксилированным органическим соединением (сахаром), обеспечивали существенно лучшее (в 4-5 раз) in vivo удерживание лекарства в липосомах по сравнению с аналогичными липосомами с полианионным полимером (полифосфатом).
Пример 14. Фармакокинетические характеристики в крови крыс СРТ-11-нагруженных SOS-TEA липосом
Липосомы (экструзионная мембрана с размером пор 100 нм) готовили как описано в примере 12. Эти липосомы вводили внутривенно в дозе 10 мг СРТ-11/кг двум самкам Spraque Dawley крыс (Harlan) 9-недельного возраста (массой около 200 г) с установленным в центральной вене катетером с дозой 10 мг СРТ-11/кг (17,6 µмоль фосфолипида/кг). Пробы крови отбирали в намеченные моменты времени и анализировали на содержание лекарства и липосомных липидов как в примере 9. Эти данные выражали в % инъецируемой дозы липидов/мл плазмы и в % лекарства, удержанного в липосоме в каждый момент времени, нанесенных на графике против постинъекционного времени, и времени полужизни для липосомного липида, а также времени полужизни для выделения лекарства из липосом и вычисляли при наилучшем соответствии на основе моноэкспоненциальной кинетической модели (Фиг.5). Время полужизни выделения лекарства из СРТ-11 нагруженных TEA-SOS липосом было 56,8 часов, гораздо более продолжительное, чем у аналогичных ТЕА-Pn липосом.
Пример 15. Антиопухолевая активность свободного СРТ-11 и СРТ-11, включенного в ТЕА-Pn и TEA-SOS-содержащие липосомы, в бестимусных бесшерстных мышах с подкожными ксенотрансплантатами карциномы кишечника человека (НТ-29).
Липосомы получали как в примере 11, используя ТЕА-Pn раствор с 0,65 М TEA, рН 6,1 и осмолярностью 531 ммоль/кг или TEA-SOS раствор с 0,643 М TEA, pH 5,7, и осмолярностью 530 ммоль/кг. Экструзия включала 10 пассажей через две объединенные поликарбонатные мембраны размером пор 100 нм. Получившиеся в результате ТЕА-Pn и TEA-SOS липосомы имели размер 112,3±15,5 нм и 120,5±42,5 нм, соответственно (значение ± SD распределения размеров).
Липосомы нагружали СРТ-11 при начальном соотношении лекарство/фосфолипиды 500 мг/ммоль. Полученные липосомы содержали лекарство в концентрации 465,6±26,5 (93% коэффициент загрузки) и 499,9±22,5 мг (100% коэффициент загрузки) СРТ-11/ммоль фосфолипида для ТЕА-Pn и TEA-SOS составов, соответственно.
НТ-29 клетки получали из American Type Culture Collection, Rockville, MD и культивировали в DMEM среде, содержащей 10% фетальной сыворотки теленка, 50 Ед/мл пенициллина G и 50 µг/мл сульфата стрептомицина, при 37°С в атмосфере 5% CO2, как рекомендовано поставщиком. NCR nu/nu гомозиготные бестимусные бесшерстные мыши - самцы (возраст - 6 недель, вес по меньшей мере - 16 г) были получены от Charles River. Мышей подкожно заражали в правый бок 0,1 мл суспензии, содержащей 5×106 клеток, суспендированных в ростовой среде без антибиотиков. Одиннадцать дней спустя животных с размером опухоли между 150 мм3 и 350 мм3 собирали в группы для лечения следующим образом. Животных классифицировали согласно размеру опухоли и поделили на 6 категорий по убывающему размеру опузоли. Было сформировано шесть групп для лечения (по 11 животных в группе) путем произвольного выбора животного, соответствующего каждой размерной категории, так что в каждой группе для лечения было равно представлены опухоли всех размеров.
Начиная с 13-го дня животные получали 4 инъекции в хвостовую вену с интервалом 4 дня следующих препаратов: 1) Контроль (HEPES-забуференный солевой раствор, рН 6,5); 2) Свободный СРТ-11 50 мг/кг, введенный в виде свежеприготовленного 5 мг/мл раствора в небуферированном физиологическом растворе; 3) ТЕА-Pn липосомальный СРТ-11 при 25 мг/кг на инъекцию; 4) ТЕА-Pn липосомальный СРТ-11 при 50 мг/кг на инъекцию; 5) TEA-SOS липосомальный СРТ-11 при 25 мг/кг на инъекцию; 6) TEA-SOS липосомальный СРТ-11 при 50 мг/кг на инъекцию. Вес животного и размер опухоли регистрировали дважды в неделю как описано в примере 10. Вес опухоли вычитали из результатов взвешивания животного, чтобы получить вес тела животного. Животных наблюдали в течение 60 дней после инокуляции опухоли. Когда вес опухоли в группе достигал 20% веса тела животного, животных группы умерщвляли. В некоторых группах наблюдали полную регрессию опухолей без признаков возобновления роста опухоли по завершении исследования. Ткани из района инокуляции опухоли от этих животных собирали и консервировали для патологического анализа на остаточные опухолевые клетки.
Результаты этого исследования показаны на Фиг.6 и 7. Свободный СРТ-11 обладал только минорным эффектом на рост опухоли. Все липосомы обладали явно выраженным эффектом, приводящим к регрессии опухоли, за которым следует возобновление ее роста у большинства животных. Доза 50 мг/кг была более эффективной, чем 25 мг/кг и в ТЕА-Pn, и в TEA-SOS СРТ-11 липосомах. Среднее время удвоения опухоли, вычисленное по данным размеров опухоли (Фиг.7) было: контроль - 4,2 дня; свободное лекарство, 50 мг/кг - 4,8 дня; ТЕА-Pn липосомальное лекарство, 25 мг/кг - 43,6 дня; ТЕА-Pn липосомальное лекарство, 50 мг/кг - 47,5 дня; TEA-SOS липосомальное лекарство при 25 мг/кг - 48,2 дня; TEA-SOS липосомальное лекарство при 50 мг/кг - более 56 дней (время удвоения не было достигнуто). Таким образом, липосомальный СРТ-11, приготовленный согласно настоящему изобретению, был, по крайней мере, почти в 10 раз более активным, чем свободное лекарство, данное в той же дозе и по той же схеме. Неожиданно TEA-SOS СРТ-11 липосомы оказались заметно более Эффективными в уменьшении роста опухоли, чем TEA-Pn CPT-11 липосомы, введенные в той же самой дозе. Так как в группах, получавших лечение свободным лекарством и TES-Pn липосомальным лекарством при 50 мг/кг на инъекцию, не было животных без повторного роста опухоли, в группах, получавших 25 мг/кг каждого липосомального состава, у одного животного (9,1%) не было опухоли в конце исследования, а в группе, получавшей 50 мг/кг TEA-SOS липосомального CPT-11 состава, в конце исследования у 4 животных (36,4%) не было опухоли без признаков повторного роста опухоли.
Лекарство обладало некоторой токсичностью. Животные, получившие свободный CPT-11, но не липосомальный CPT-11, испытывали временное недомогание (потеря резвости, живости, поза нахохленности, собранный в складки мех, меньшая подвижность) в течение около одного часа после инъекции лекарства. Животные, получившие свободный СРТ-11, страдали от долговременной потери примерно 6% веса во время лечения и так и не поправлялись. Животные, получившие оба липосомалные CPT-11 составы, испытывали кратковременную потерю веса во время между второй и третьей инъекциями, составляющую в среднем около 5% (при 25 мг/кг) или около 9% (при 50 мг/кг) того веса, который был до лечения и в конце концов возвращались к нормальному весу. Следовательно, токсичность липосомального лекарства была не более токсичности свободного (нелипосомального) лекарства, в то время как эффективность липосомального лекарства была существенно выше. Потеря веса была обратимой, когда лечение лекарством заканчивалось, и все животные возвращались к своему весу без неизлечимо-болезненного состояния или гибели из-за токсичности лекарства. В конце животные достигали веса, сопутствующего регрессии опухоли. В контрольной группе (с физраствором) у животных с развившимися большими по размеру опухолями наблюдалась потеря веса, которая с очевидностью была следствием болезни, связанной с опухолью. В целом было доказано, что липосомальный состав лекарства, которое было загружено в липосомы с предварительно включенным полианионизированным сахаром (сахарозо-октасульфатом), является самым эффективным, при этом менее токсичным, чем нелипосомальное лекарство.
Пример 16. Токсичность свободного и липосомального СРТ-11, исследованная на мышах.
Сравнивали острую токсичность свободного СРТ-11 и СРТ-11, включенного в липосомы согласно способу настоящего изобретения, определяя максимально допустимую дозу (МТД) при осуществлении единичной внутривенной инъекции обычным (иммунокомпетентным) мышам.
Использовались следующие материалы:
1) Препарат СРТ-11 (гидрохлорид Иринотекана), содержащий гидрохлорид Иринотекана - 98,9% (ВЭЖХ) и воду 7,6%. В этом исследовании лекарственные составы готовили по принципу «как есть», без поправки на содержание влаги или содержание Иринотекана основания.
2) Липосомальный СРТ-11 (Ls-CPT-11) готовили по примеру 11 с использованием липидной матрицы DSPC 200 мольных частей, холестерола 133 мольные части, PEG-DSPE 1 мольная часть; захваченный раствор TEA-SOS, имеющий 0,65 М TEA, pH 6,4; лекарство включали в липосомы в 5 мМ HEPES буфера, 5% декстрозы, pH 6,5, при 60°С в течение 30 минут при начальном соотношении лекарство/липид 500 мг лекарства на ммоль фосфолипида. Коэффициент включения был более 99%. Размер липосом (среднее значение размера±стандартное отклонение по QELS): 101±37 нм. Липосомы получали в среде, 20 мМ HEPES-Na, 135 мМ NaCl; pH 6,5. Концентрации лекарства в инъецируемых составах были такими, которые приведены ниже в таблицах.
3) Раствор свобоного СРТ-11. Готовили исходный раствор свободного лекарства, растворяя гидрохлорид Иринотекана в 5% водном растворе декстрозы с концентрацией 22 мг/мл, стерилизовали фильтрацией (размер пор 0,2 µм). Этот исходный раствор разбавили стерильным 5% раствором декстрозы перед инъекцией.
4) Животные. Самки Swiss Webster мышей, возраст 6-8 недель, от Harlan, USA. Определение МТД в целом осуществляли по протоколу, принятому согласно Исследовательской Терапевтической Программе Национального Института Рака в США. Этот протокол имеет три следующих этапа:
1 этап: стадия поиска диапазонов при коэффициенте повышения дозы 1,8. Группам, состоящим из двух животных, инъецировали в хвостовую вену повышающиеся дозы свободного или липосомального Иринотекана, начиная с дозы 60 мг/кг и продолжая это повышение с коэффициентом увеличения дозы 1,8, пока у каких-либо животных не наблюдалась летальность или предсмертное состояние (в пределах >1 дня после инъекции). При этом отмечали дозу, которая на ступень ниже той, которая вызывала гибель или предсмертное состояние.
2 этап: стадия поиска диапазонов при коэффициенте повышения дозы 1,15. Группам, состоящим из двух животных, инъецировали в хвостовую вену увеличивающиеся дозы свободного или липосомального Иринотекана, начиная с дозы, зарегистрированной в примере 1, и повышали дозу с коэффициентом повышения дозы 1,15 до тех пор, пока у каких либо животных не наступала гибель или предсмертное состояние. Дозу, предшествующую той дозе, при которой наблюдалась гибель или предсмертное состояние, регистрировали как экспериментальную МТД.
3 этап: Стадия подтверждения. Группе из 5 животных инъецировали внутривенно (хвостовая вена) свободный или липосомальный Иринотекан в экспериментальной МТД, определенной на 2-ом этапе. Животных наблюдали в течение 7 дней, дважды в неделю регистрировали массу тела и сравнивали с массой перед инъекцией. Следили в целом за состоянием здоровья животных (потеря резвости, вылизывание и приглаживание шерсти, интерес к кормлению, выделение экскрементов, состояние меха, шкурки, состояние слизистых оболочек, способность передвигаться, дыхание, положение тела, позы). Если в течение периода наблюдений не происходило гибели животных, не наблюдалось прогрессирующей потери жизненных сил или потери веса более чем на 15% от значения веса перед инъекций, делали заключение о том, что эта доза считается подтвержденной как МТД (максимально допустимая доза) при неотложной единичной инъекции. Если любой из вышеперечисленных эффектов имеет место, опыт повторяют при следующей более низкой дозе с коэффициентом 1,15.
Для того, чтобы получить дополнительные статистические данные по стадии подтверждения, отслеживали динамику изменения веса тела животных в период выживания, который длится вплоть до 11 дней после инъекции. Доза липосомального Иринотекана, превышающая 324 мг/кг, была невозможна для введения из-за ограничений по концентрации и объема введения. Результаты показаны в таблице 10.
Таблица 10. | ||||||||||||
Эксперимент по подбору МТД СРТ-11 составов на мышах | ||||||||||||
РезультатыЭтап 1. Повышение дозы с коэффициентом 1,8 | ||||||||||||
Лекарство | Инъецируемая доза (мг/кг) | Концентрация лекарства (мг/кг) | Инъецируемый объем (µл) | Масса тела животного в определенный по счету день после инъекции | ||||||||
мыть № | D (г) | 1 (г) | 2 (г) | 4 (г) | 5 (г) | 6 (г) | 7 (г) | 11 (г) | ||||
Липосомаль ный | 60 | 8 | 150 | 1 | 19,2 | 18,0 | не опр. | 20,3 | 20,6 | 20,6 | 20,0 | 19,7 |
2 | 19,3 | 19,3 | не опр. | 20,6 | 20,4 | 19,6 | 19,7 | 20,7 | ||||
СРТ-11 | 100 | 12 | 165 | 1 | 19,5 | 18,6 | не опр. | 19,6 | 20,0 | 20,1 | 19,4 | 19,9 |
2 | 20,1 | 18,9 | не опр. | 20,2 | 21,5 | 22,2 | 21,8 | 22,5 | ||||
180 | 22 | 165 | 1 | 19,4 | 18,4 | не опр. | 18,9 | 19,7 | 20,5 | 19,5 | 20,5 | |
2 | 20,0 | 19,3 | не опр. | 19,6 | 20,6 | 21,4 | 21,6 | 21,7 | ||||
324 | 33,6 | 210 | 1 | 21,8 | 21,2 | 21,2 | не опр. | 20,2 | не опр. | 20,2 | не опр. | |
2 | 21,6 | 20,4 | 21,3 | не опр. | 20,8 | не опр. | 21,4 | не опр. | ||||
Свободный | 60 | 8 | 150 | 1 | 20,6 | 20,4 | не опр. | 22,1 | 22,1 | 22,2 | 32,0 | 22,5 |
2 | 19,5 | 19,1 | не опр. | 20,2 | 20,1 | 20,4 | 20,5 | 21,1 | ||||
СРТ11 | 100 | 12 | 165 | 1 | 19,3 | + гибель через 1-2 мин. после инъекции | ||||||
2 | 20,1 | гибель через 1-2 мин. после инъекции | ||||||||||
3 | 19,9 | гибель через 1 -2 мин. после инъекции |
После инъекции все мыши, леченные СРТ-11, имели болезненные симптомы, дыхание с одышкой наблюдалось около 1 часа, потом - состояние снова стало нормальным.
После инъекции все мыши с липосомальным СРТ-11 выглядели нормально.
Этап 2. Повышение дозы с коэффициентом 1,15. | |||||||||||
Лекарство | Инъец, доза (мг/кг) | Кон-ция лекарства (мг/мл) | Инъец. объем (µл) | Масса тела животного в определенный день после инъекции | |||||||
мышь № | 0 (г) | 1 (г) | 2 (г) | 5 (г) | 7 (г) | ||||||
Свободный | 60 | 8 | 150 | 3 | 19,9 | 20,0 | 20,9 | 19,9 | 21,3 | ||
4 | 19,5 | 18,7 | 19,4 | 18,8 | 18,9 | ||||||
СРТ-11 | 70 | 8 | 175 | 5 | 20,9 | 20,0 | 20,6 | 19,3 | 20,4 | ||
6 | 22,3 | 21,8 | 22,4 | 22,4 | 22,8 | ||||||
80 | 8 | 200 | 7 | 20,6 | 19,9 | 20,4 | 19,9 | 20,9 | |||
8 | 20,6 | 20,8 | 21,1 | 21,1 | 21,4 | ||||||
90 | 12 | 150 | 9 | 22,3 | умерла спустя 1-2 мин после инъекции | ||||||
10 | 22,4 | умерла спустя 1-2 мин после инъекции | |||||||||
8 | 225 | 11 | 20,6 | умерла спустя 1 -2 мин после инъекции | |||||||
Этап 3. Подтверждение | |||||||||||
Лекарство | Инъец. доза (мг/кг) | Кон-ция лекарства (мг/мл) | Инъец. объем (µл) | мышь № | Масса тела животного в определенный день после инъекции | ||||||
0 (г) | 3 (г) | 5 (г) | 7 (г) | ||||||||
Свобод ный | 80 | 8 | 200 | 1 | 20,2 | 19,3 | 20,0 | 21,7 | |||
СРТ-11 | 2 | 20,5 | 20,6 | 20,5 | 21,2 | ||||||
3 | 20,7 | 20,6 | 20,8 | 21,9 | |||||||
4 | 20,8 | 21,4 | 22,1 | 23,0 | |||||||
5 | 21,9 | 21,9 | 21,6 | 21,5 | |||||||
Липосо-мальный | 324 | 36,5 | 180 | 6 | 21,0 | 20,0 | 20,1 | 20,2 | |||
7 | 20,4 | 20,4 | 20,2 | 19,2 | |||||||
СРТ-11 | 8 | 20,4 | 19,8 | 20,3 | 20,7 | ||||||
9 | 20,9 | 19,9 | 20,5 | 21,5 | |||||||
10 | 20,7 | 19,5 | 19,9 | 20,2 |
Таким образом, тогда как MTD свободного СРТ-11 была 80 мг/кг, МТД липосомалыюго СРТ-11 не достигалась даже при более высокой введенной дозе 324 мг/кг.Следовательно, включение СРТ-11 в липосомы, согласно изобретению, понизило токсичность лекарства, по крайней мере, в 4 раза.
Пример 17. Стабильность при хранении СРТ-11-нагруженных TEA-SOS-липосомы в зависимости от просачивания (утечки) лекарства.
Приготовили пять серий липосомального СРТ-11 с использованием TEA-SOS метода (пример 11) и при начальном соотношении лекарство/липид 500-550 мг/ммоль фосфолипида. Липосомы готовили, используя мембранную экструзию с помощью поликарбонатной мембраны с размером пор 80 нм или 100 нм, как показано ниже в таблице. Липосомы стерильно отфильтровали через фильтр с 0,2 цм размером пор и хранили при 3,4-14,5 мг/мл СРТ-11 в 135 мМ NaCl, 20 мМ HEPES-Na, pH 6,5 (буфер хранения), при 4-8°С. После указанного срока хранения просочившееся лекарство удаляли гель-хроматографией на Сефадексе G-75, используя буфер хранения в качестве элюента. Концентрации лекарства и фосфолипида в липосомах до и после гель-хроматографии исследовали спектрофотометрическим методом и методом голубого фосфомолибдата и кислотного расщепления, соответственно, как описано в примерах 70 и 71. СРТ-11 липосомы, полученные в соответствии с настоящим изобретением, были очень стабильными. Утечка СРТ-11 из этих липосом во время хранения была меньше 5% через 6 месяцев (Таблица 10).
Таблица 11 | ||||
Инкапсуляционная стабильность СРТ-11 липосом во время хранения (данные представляют собой значение ± SE) | ||||
Липосомы Лот № | Размер пор при экструзии, нм | СРТ-11 концентрация, мг/мл | Время хранения, месяцы | % лекарства, остающегося инкапсулированным |
1 | 80 | 3,44±0,06 | 6 | 99,02±3,77 |
2 | 80 | 7,88±0,19 | 6 | 102,38±4,78 |
3 | 100 | 4,57±0,0б | 6 | 96,38±4,69 |
4 | 100 | 4,62±0,11 | 6 | 95,72±4,36 |
5 | 80 | 14,52±0,42 | 3 | 103,4±5,92 |
Пример 18. Липосомы, нагруженные Топотеканом
Липосомы с захваченным ТЕА-Pn раствором и TEA-SOS раствором получали как описано в примере 11. Исходный раствор солянокислого топотекана (GlaxoSmith-Kline, PA, USA) готовили непосредственно перед смешиванием с липосомами путем растворения солянокислого Топотекана в воде при 15-20 мг/мл, подсчитывая подлинное текущее содержание Топотекана · HCl. рН доводили до 3,0 с помощью 1 н HCl. Раствор лекарства фильтровали под давлением через 0,2-микронный полиэфирсульфонный (PES) стерильный фльтр. Аликвоты ТЕА-Pn или TEA-SOS-содержащих липосом в буфере для загрузки лекарства смешивали при комнатной температуре с исходным раствором Топотекана · HCl с достижением начального соотношения лекарство/липид в диапазоне 0,15-0,45 г/ммоль липосомного фосфолипида. Предпочтительное соотношение было 0,35 г Топотекана · HCl на ммоль липосомного фосфолипида. Эти смеси в стеклянных контейнерах инкубировали в термостатированной водяной бане при 55-62°С со слабым встряхиванием в течение 30-60 минут, быстро охлаждали в ледяной бане (0-2°С) и оставили при этой температуре в течение 5-15 минут. Эта стадия обеспечила коэффициент инкапсулирования 89-90% (ТЕА-Pn градиент) или 97-100% (TEA-SOS градиент). Неинкапсулированный Топотекан удаляли и переносили липосомы в буфер для хранения, используя колоночную хроматографию исключения по размеру. Перед нанесением на колонку ионную силу препарата липосом повышали смешиванием с 1/20 объема 2,88 М водного раствора хлорида натрия, и смесь инкубировали в течение около 15 минут. Неожиданно было обнаружено, что регулирование ионной силы липосомной среды от низкого значения во время нагружения (обычно эквивалентного менее чем 20 мМ NaCl) до более высокого значения выше 20 мМ NaCl, прдпочтительно до 50 м NaCl и выше, улучшало удаление нинкапсулированного лекарства и повышало стабильность Топотекан-нагруженных липосом против агрегации, возможно, за счет облегчения удаления связанного с мембранами Топотекана, в противоположность лекарству, инкапсулированному внутри липосом. Окончание процедуры следует в примере 11, стадия 7. Результаты - см. ниже в таблице 12.
Пример 19. Получение специфичных к HER2 иммунолипосомальных составов Топотекана
Иммунолипосомы с Топотеканом могут специфически интернализоваться раковыми клетками, сверхэкспрессирующими HER2 (С-ErbB-2) поверхностный рецептор онкопротеина тирозинкиназы, были получены конъюгированием липосом, нагруженных топотеканом, со специфичным к HER2 Fv фрагментом одноцепочечного антитела человека, F5, отобранного из библиотеки фагового дисплея по его высокой интернационализации в НЕР2-сверхэкспресирующие клетки (Poul et al. 2000, J. Molecular Biology, v.301, p.1149-1161). F5 представляет собой 27-КВДа белок, который связывается с экстрацеллюлярным доменом HER2 рецептора с аффинностью около 150 нм, вызывающей быструю интернационализацию (Neve, et al., Bioplys. Biochim. Res. Commun., v.280, p.274-279). Для липосомной конъюгации можно воспользоваться следующими методами (US патент №6210707 и Nielsen et al. (2002), Biochim. Biophys. Acta, v.1591, p.109-118). Сначала готовили гидрофильный липополимерный конъюгат F5. С-конец аминокислотной цепочки F5 имел дополнительную терминальную цистеиновую группу (F5 Cys). F5 Cys-конструкт экспрессировали в E.coli и выделяли из бактериального лизата хроматографией на колонке с носителем, содержащим Белок А. Элюированные фракции с белком А адсорбировали на анионообменной смоле, чтобы удалить пирогены и хозяйскую ДНК, и обрабатывали тиол-восстанавливающим агентом, чтобы высвободить тиольнуто группу терминального цистеина. Восстановленный F5Cys был затем очищен ионообменной хроматографией с использованием SP Сефарозы быстропроточной (Amersham Pharmacia). Очищенный белок конъюгировали со взаимодействующим с тиолом липид-поли(этиленгликоль) линкером, N-(3-(N-малеимидо)пропиониламидо)-поли(оксиэтилен)-оксикарбонил)-1,2-дистеароилфосфатидил этаноламином (Mal-PEG-DSPE), производным PEG с м.м. 2000 (Фигура 4.1), поставляемый Avanti Polar Lipids, Inc., Alabama, USA. Белок и линкер инкубировали в водном буферном растворе при молярном соотношении 1:4, непрорегировавший линкер был подавлен 1 мМ цистином. Во время реакции терминальный цистеин F5 Cys ковалентно присоединяют к малеимидогруппе линкера. Полученный F5-PEG-DSPE конъюгат был водорастворимым в форме мицелл, имея явно высокий молекулярный вес (500-850 кДа) и его отделяли от непрореагировавшего протеина (около 25%) хроматографией исключения по размеру. Количество белка в очищенном конъюгате определяли УФ спектрофотометрией при 280 нм, а количество линкера исследовали спектрофотометрическим методом, идентичным тому, что использовался для обсчета фосфолипидов (см. пример 70). Очищенный F5-PEG-DSPE конъюгат был стабилен в воде, вполне иммунореактивен, и был устойчив к денатурации и потере реактивности в течение, по крайней мере, 1 часа при 65°С, и по крайней мере, 3-х месяцев при 37°С.
Для того, чтобы приготовить специфичный к HER2 иммунолипосомальный Топотекан, нагруженные Топотеканом липосомы примера 18 смешивали с F5-PEG-DSPE в водном солевом буфере при соотношении 15 микрограмм белка на 1 микромоль фосфолипида (около 45 F5 копий на липосому). Смесь инкубировали при 60°С в течение 40 минут, охлаждали на льду и хроматографировали на колонке с Сефарозой CL-4B (гранулы поперечносшитого 4% агарозного геля, Amersham Pharmacia), чтобы удалить остаточный мицеллярный конъюгат, неконъюгированный белок и следы экстралипосомного лекарства, которые могли выделиться во время инкубирования. Липосомы с мембрано-включенным F5-PEG-DSPE элюировали 5 мМ HEPES-144 мМ NaCl-буфером, рН 7,4, собирали в свободном пространстве колонки, стерильно отфильтровали и расфасовали для хранения (4-6°С). Содержание F5, включенного в липосомы, было, как правило, более 80% добавленного конъюгата. Это определяли по SDS-PAGE липосом при количественном определении денситометрией окрашенной Coomassie F5 полосы. Концентрации лекарства и липида в иммунолипосомных препаратах определяли аналогично ненацеленным липосомам. Свойства Топотекан-липосом и F5-иммунолипосом (Примеры 1819) объединены и показаны в таблице 12.
Таблица 12. | |||||
Свойства Топотекан-липосом и иммунолипосом | |||||
Соль, захваченная липосомами | Присоединение F5 sc Fv | Соотношение лекарство/липид, г/моль фосфолипида | % инкапсулирования | размер липосом, значение ± SD, Нм | |
Начальное | Конечное | ||||
ТЕА-Pn | нет | 173,6 | 155,2±5,9 | 89,4±3,4 | 36,4±38,7 |
ТЕА-Pn | да | 173,6 | 156,2±5,2 | 90,0±3,0 | 96,2±33,8 |
TEA-SOS | нет | 340,8±14,7 | 98,2±4,2 | 99,1±32,6 |
Пример 20. Влияние рН буфера загрузки и соотношения лекарство/липид на характер загружения топотекана в липосомы.
Липосомы (DSPC /Chol/ PEG-DSPE, 3:2:0,015 - молярное соотношение) с захваченными 0,5 н ТЕА-Pn, рН 6,2, осмолярностью 413 ммоль/кг, готовили, используя метод этанольной инъекции (пример 18), экструдировали через два объединенных поликарбонатных фильтра с размером пор 100 нм - 5 раз и с размером пор 50 нм - 10 раз. В качестве буфера загрузки использовали 5 мМ MES, с 50 г/л декстрозы, с поддержанием различных значений рН в диапазоне 5,0-6,5. Размер липосом был 73,1±21,3 нм, определенный по QELS. Липосомы нагружали, смешивая исходный раствор Топотекана (20 мг/мл) с липосомами в буфере загрузки при начальном соотношении лекарства и фосфолипида 100 мг/ммоль, инкубируя смесь при 60°С в течение 45 мин., охлаждая ее на льду и удаляя неинкапсулированное лекарство на колонке с Сефадексом G-75 с элюцией 200 мМ HEPES, 135 мМ NaCl, рН 6,5. Топотекан и фосфолипид были учтены методом спектрофотометрии (примеры 70 и 71). Результаты (Таблица 13) показали, что загрузка Топотекана была почти количественной в диапазоне рН 5,5-6,5.
Таблица 13. | |
Влияние рН буфера загрузки на % инкапсулирования Топотекана в липосомы с захваченным ТЕА-Pn | |
рН буфера загрузки | % инкапсулирования |
5,0 | 50,1±2,1 |
5,5 | 97,2±8,1 |
6,0 | 115,5±15,0 |
6,5 | 102,1±8,1 |
Влияние соотношения лекарства и липида (0,15-0,45 мг/ммоль фосфолипида) на коэффициент включения также изучалось. Липосомы с включенным ТЕА-Pn (0,5 М TEA, рН 5,8, осмолярность 480 ммоль/кг) готовили как описано выше, за исключением того, что конечную стадию экструзии проводили 10 раз через два объединенных 0,08 µм поликарбонатных фильтра. Загрузку осуществляли при рН 6,5. Размер липосом по QELS был 93,1±15,1 нм. Результаты (Таблица 14) показали, что коэффициент включения (инкапсулирования) был свыше 85% во всем анализируемом диапазоне соотношений лекарство/липид.
Таблица 14. | ||
Эффект соотношения лекарство/липид на коэффициент инкапсулирования Топотекана в липосомы, содержащие ТЕА-Pn. | ||
Соотношение Топотекан/фосфолипид, мг/ммоль | % инкапсулирования (значение ± SE) | |
Начальное соотношение | Конечное соотношение (после загрузки) | |
168,2 | 166,9±11,1 | 99,2±6,6 |
224,4 | 232,5±47,6 | 103,7±21,2 |
280,3 | 253,5±19,8 | 90,4±7,0 |
336,4 | 298,3±18,0 | 88,7±5,3 |
392,5 | 361,2±36,8 | 92,0±9,4 |
448,5 | 394,9±29,5 | 88,0±6,6 |
Пример 21. Стабильность Топотекан-липосом in vitro в присутствии плазмы
Липосомы (DSPC/Chol/PEG-DSPE, мольное соотношение 3:2:0,015) с захваченным 0,5 н ТЕА-Pn, рН 6,2, осмолярностью 413 ммоль/кг, готовили как описано в примере 18. Липосомы с размером 96,4±29,3 нм получали экструзией 10 раз через два объединенных поликарбонатных фильтра с размером пор 100 нм. Для подсчета липосомных липидов в плазме [3H]-СНЕ включали в липидный раствор при 0,5 µКи/µмоль DSPC. Топотекан загружали при рН 6,0, 58°С в течение 45 минут при соотношении лекарство/фосфолипид 150 мг/ммоль. Эффективность включения составляла 148,48±10,26 µг Топотекана/цмоль фосфолипида (99,0±6,8%).
Липосомы инкубировали с 50% человеческой плазмы в мультилуночном приспособлении для микродиализа (Spectra-Por MicroDialyzer, 10 лунок, Spectrum, USA). Донорскую плазму человека разбавляли водным раствором HEPES-солевым буфером (20 мМ HEPES, 135 мМ NaCl), рН 6,5, содержащим 0,02% азида натрия, и заливали ее в нижний резервуар диализера (32 мл). Ячейки (0,4 мл) были отделены от резервуара поликарбонатной мембраной с размером пор 30 нм, чтобы избежать свободного прохождения белков плазмы и маленьких молекул, но не липосом. Липосомы смешивали с заданными количествами плазмы и HEPES-буферного солевого раствора, чтобы достигнуть концентрации 2,5 мМ фосфолипида и 50% об. плазмы.
Устройство инкубировали при 37°С, и содержимое резервуара медленно перемешивалось. После 8 часов инкубации содержимое нижнего резервуара было заменено свежей 50% плазмой. В указанные моменты времени (см. ниже) 50-µм аликвоты были отобраны из лунок и подвергнуты хроматографии на колонках, содержащих 2,2-2,4 мл Сефарозы CL-2B, с элюентом - HEPES - буферным солевым раствором для отделения липосом от белков плазмы и свободного лекарства. Липосомы собирали в фракциях свободного объема. Топотекан учитывали флуорометрическим способом при возбуждении 384 нм и эмиссии при 524 нм после солюбилизации образцов плазмы в 90% водном растворе изопропанола - 0,1 н HCl, липиды количественно учитывали с использованием сцинтилляции, подсчитывая [3Н]-CHE (с коррекцией гашения). Определенное в каждом конкретном случае соотношение лекарства и липида сравнивали с начальным соотношением до инкубации, чтобы получить % Топотекана, который оставался инкапсулированным в каждый момент времени. После 8 часов инкубации количество лекарства, остающегося в липосоме, было около 55% от его первоначальной величины (Таблица 15).
Таблица 15. | |
In vitro утечка Топотекана из липосом, загруженных при ТЕА-Pn градиенте в 50% человеческой плазме при 37°С. | |
Время инкубации, часы | % лекарства, остающегося инкапсулированным |
1 | 95,5±5,4 |
4 | 76,8±7,3 |
8 | 55,9±4,1 |
24 | 55,4±16,8 |
Пример 22. Топотекан-липосомы с захваченным ТЕА-Pn градиентом при различных соотношениях лекарство/липид: in vivo утечка лекарства и долговечность циркулирования в кровотоке мышей.
Липосомы (DSPC/Chol/PEG-DSPE при молярном соотношении 3:2:0,15, содержание [3H]-CHE при 0,5 мКи/ммоль DSPC) с инкапсулированным градиент-образующим солевым раствором (0,5 н ТЕА-Pn, рН 6,2, осмолярность 413 ммоль/кг) готовили как в примере 18, используя 12-кратную экструзию через два объединенных поликарбонатных фильтра с размером пор 100 нм. Размер липосом составлял 107,7±19,1 нм с помощью QELS. Липосомы в 5 мМ HEPES, 50 г/л декстрозы, рН 6,5, смешивали с исходным водным раствором Топотекана (20 мг/мл) при соотношениях лекарство/фосфолипид в диапазоне 130-360 µг/µмоль с последующей инкубацией смеси при 58°С в течение 45 минут, помещением на лед на 15 минут и удалением неинкапсулированного лекарства путем хроматографии на Сефадексе G-75. Самкам FvB мышей (возраст 12 недель) инъецировали липосомы в хвостовую вену в дозе 5 мг Топотекана на кг массы тела (приблизительно 0,2 мг Топотекана/животное) в трех повторностях. В указанные моменты времени, обычно через 8 часов или спустя 24 часа после инъекций, мышам давали анастезию, обескровливали и пробы крови исследовали на содержание лекарства и липиды липосом как в примере 8. Результаты показаны в таблице 16. Через 24 часа около 6-32% первоначально введенного (загруженного) лекарства оставалось инкапсулированным. Более высокая степень загрузки лекарства (более 200 мг/ммоль фосфолипида) приводила к более длительному периоду просачивания.
Таблица 16. | ||||
In vivo утечка лекарства и долговечность циркулирования прототипных Топотекан-липосом, загруженных с использованием ТЕА-Pn градиентного метода для обеспечения различных соотношений лекарство/липид. | ||||
Соотношения инкапсулированных лекарство/фосфолипид, мг/ммоль | Липид, оставшийся в кровотоке, % от инъецированной дозы | Топотекан, оставшийся инкапсулированным, % от начальной загрузки | ||
Через 8 часов | Через 24 часа | Через 8 часов | Через 24 часа | |
127,2±10,9 | 36,1±2,0 | 18,7±8,1 | 51,77,1 | 6,72±2,5 |
207,2±21,6 | 32,1±5,2 | 9,84±1,88 | 75,6±13,0 | 13,8±3,5 |
301,3±24,5 | 34,4±3,2 | 8,04±425 | 79,2±4,2 | 25,6±4,4 |
360,3±35,6 | 33,6±2,4 | 8,68±4,96 | 73,5±7,0 | 32,3±9,8 |
Пример 23. In vivo утечка лекарства и долговечность циркулирования Топотекан-липосом, загруженных с использованием различных захваченных солей аммония и триэтиламмония.
Липосомы на основе DSPE, холестерола, PEG-DSPE (3:1:0,1 по весу), содержащие также [3H]-CHE при 0,22 мКи/ммоль DSPE, получали как примере 18, за исключением 10-кратной экструзии через 2 объединенных фильтра с размером пор 200 нм, 10-кратный экструзии через 2 объединенных фильтра с размером пор 100 нм и 20-кратной экструзии через 2 объединенных фильтра с размером пор 50 нм. Липосомы содержали следующие солевые растворы.
0,5 н Раствор декстран-сульфата аммония (A-DS) готовили из декстран-сульфата натрия (М.м. 5000), поставляемого Sigma, и переводили в аммониевую соль ионообменной процедурой, аналогичной той, что представлена в примере 4. Раствор декстран-серной кислоты сразу же титровали 12,4 М водным раствором аммиака. A-DS раствор имел рН 5,66 и осмолярность 208 ммоль/кг.
0,48 н сахарозо-октасульфат аммония (A-SOS) готовили аналогично описанному в примере 6, только для титрования использовали гидроксид аммония. Раствор имел рН 6,27, осмолярность 258 ммоль/кг.
0,47 М сахарозо-октасульфат триэтиламмония (TEA-SOS) готовили как в примере 6. Раствор имел рН 6,6 осмолярность 297 ммоль/кг.
Топотекан загружали в липосомы в водном растворе 10 мМ MES-Na, 50 г/л декстрозы, рН 6,5, путем инкубирования липосом с лекарством при 61-62°С и начальном соотношении лекарство/фосфолипид 346±1 мг/ммоль в течение 40 минут с последующим инкубированием на льду в течение 10 минут. Липосомы очищали от неинкапсулированного лекарства хроматографией на Сефадексе G-75, элюент-водный 2 мМ гистидин, 144 мМ NaCl, рН 6,6 (HCl).
Самцам Swiss Webster мышей 7-9 недельного возраста инъецировали в хвостовую вену эти липосомные составы с Топотеканом в дозе 5 мг Топотекана на кг веса тела (приблизительно 0,2 мг Топотекана/животное) в трех повторностях. Через 8 часов или 24 часа после инъекции кровь собирали и исследовали на Топотекан и липосомные липиды как в примере 22.
Результаты представлены ниже в таблице 17.
В то время как все три липосомные составы продемонстрировали очень близкую долговечность циркуляции, характеризующуюся примерно 23-28% остающихся в крови через 24 часа после инъекции (в расчете на инъецируемую дозу), неожиданным оказалось, что утечка лекарства из TEA-SOS липосом и A-SOS липосом была лучше, чем в A-DS липосомах, как в плане величины (примерно 2-кратное увеличение просачиваемости лекарства), так и в плане статистической значимости (статистическая значимость на 95% достоверном уровне согласно 2-полосному неспаренному t-тексту Стьюдента р=0,0257 и р=0,00995 соответственно; и по Mann's U-тесту расхождение было осуществлено при α=0,01). Просачиваемость лекарства в TEA-SOS содержащих Топотекан липосомах была лучше, чем в A-SOS содержащих Топотекан липосомах.
Таблица 17. | |||||||
In vivo Просачиваемость лекарства и долговечность циркулирования липосом с Топотеканом, полученных на основе TEA-SOS, аммоний-SOS (A-SOS) и декстрансульфата аммония (A-DS) | |||||||
Градиент | Соотношение лекар./фосфолипид, мг/ммоль | Коэффициент включаемости, % | Размер липосом, нм | Липиды.оставшиеся в кровотоке, % инъецирумой дозы | Топотекан,остающийся инкапсулированным, % от начальной загрузки | ||
После 8 часов | После 24 часов | После 8 часов | После 24 часов | ||||
A-DS | 288,1±20,6 | 83,3±6,0 | 76,9±22,7 | 43,7±1,2 | 27,7±1,5 | 43,6±6,8 | 18,7±1,5 |
A-SOS | 346,2±14,3 | 100,00±4,1 | 99,7±28,9 | 42,3±2,2 | 23,4±2,0 | 53,3±0,8 | 31,3±3,2 |
TEA-SOS | 340,8±14,7 | 98,5±4,2 | 99,1±32,6 | 42,1±2,3 | 23,0±2,9 | 57,0±5,6 | 38,1±6,1 |
Пример 24. Фармакокинетические характеристики в плазме лекарства и липидов липосомального Топотекана, исследованные на крысах
Параметры долговечности циркулирования в кровотоке и просачивания Топотекана оценивали с помощью анализа на крысах. Липосомы (DSPC/XonecTepon/PEG-DSPE молярное соотношение 3:2:0,15) готовили методом смешивания с этанолом и экструзии и загружали Топотекан, используя TEA Pn градиент или ТЕА-сахарозооктасульфатный (TEA-SOS) градиент как описано в примере 18 и загружали при различных соотношениях лекарство/липид (15-450 мг/ммоль фосфолипида). Для обсчитывания липидной матрицы липосомный липид содержал [3H]-СНЕ при 6,5-1,5 мКи/ммоль DSPC.
Самкам Spraque Dawley крыс (возраст 6-8 недель, массой около 200 г) через введенный в центральную вену катетер внутривенно вводили (через катетер) липосомы с Топотеканом при дозе 4-5 мг/кг веса тела. Катетер промыли физраствором. В выбранные моменты времени (в пределах 48 часов после инъекции) пробы крови (0,2-0,3 мл) отбирали через катетер в гепаринизированные шприцы, смешивали с 0,4 мл холодного забуференного солевого раствора с 0,04% ЭДТА, клетки крови отделяли центрифугированием, а супернатанты (PBS-разбавленная плазма) исследовали на содержание липидов учетом 3H-СНЕ радиоактивности (с коррекцией гашения) и Топотекана методом флуорометрии (Пример 71). Результаты анализа были скорректированы с учетом разбавления плазмы, обсчитаны с учетом веса взятой пробы крови и приняты как гематокрит 40%. Общее содержание лекарства и липидов в крови было вычислено, исходя из объема крови, принятого как 6,5% от веса тела. Долю оставшегося в липосомах Топотекана определяли сравнением соотношения лекарство/липид в инъецируемых липосомах. В таблице 18, приведенной ниже, собраны значения «полужизни» липида, лекарства и «полужизни» для выделения лекарства, а также другие свойства липосом. Фармакокинетические (РК) кривые показаны на фигурах 8А (липид) и 8В (соотношение лекарство/липид). В целом кривые РК в крови хорошо соответствуют простой экспонентной модели (R2 0,984-0,999). Несмотря на размер 90-100 нм и очень малое количество PEG-ированных липидов (0,3 моль.%), липосомы неожиданно показали хорошую долговечность циркулирования (полужизнь в плазме для липидного компонента была в пределах 11-16 часов). Более медленное выделение Топотекана (время полужизни составляет 22,9 часа) наблюдалось у липосом, нагруженных с использованием TEA-SOS.
Таблица 18. | |||||||
Время полужизни (t1/2) обращения липида и лекарства в кровотоке и время полужизни для выделения лекарства из прототипных липосом Топотеканом, исследованные на крысах | |||||||
Захваченная соль и концентрация | Загрузка Топотекана, мг/ммоль фосфолипида | Размер липосом, нм (значение ± SD) | Инъецир. доза, мг/кг | t1/2 липида, часы | t1/2 лекарства, часы | t1/2 выделения лекарства, часы | Кол-во животных в группе |
ТЕА-Pn 0,5 н | 124,3±9,7 | 92,3±23,3 | 4 | 15,8 | 4,13 | 5,34 | 3 |
ТЕА-Pn 0,5 н | 360,3±35,6 | 107,7±19,1 | 5 | 12,8 | 6,06 | 9,97 | 2 |
TEA-SOS 0,643 н | 439,2±15,9 | 108,8±13,4 | 5 | 10,8 | 7,36 | 22,87 | 2 |
Пример 25. Устойчивость лекарства к просачиванию во время хранения липосом с Топотеканом.
Образцы нескольких ранее описанных составов, которые готовили для вышеописанных исследований, хранили при 4-6°С в течение разных по продолжительности периодов времени, чтобы оценить стабильность инкапсулированного Топотекана в отношении утечки или просачивания из липосом. Образцы липосом пропускали через колонки с Сефадексом G-75, элюировали 20 мМ HEPES, 135 мМ NaCl, pH 6,5, чтобы удалить лекарство, которое вне липосом, и анализировали на содержание лекарства спектрофотометрий, а на содержание липида, подсчитывая [3H]-СНЕ радиоактивность. Результаты (Таблица 19) показали хорошую удерживаемость Топотекана в липосомах в процессе хранения.
Таблица 19. | ||||
Удержание лекарства в ранее полученных липосомах с Топотеканом во время хранения. | ||||
Липосомная градиент-образующая соль | Размер липосом, значение ± SD, нм | Начальная загрузка лекарства, мг лек-ва/ммоль фосфолипида | Время хранения, месяцы | Загрузка лекарства после хранения как % от начальной |
ТЕА-Pn 0,500 н рН 6,2 | 96,4±29,3 | 148,5±10,3 | 8 | 101,6±5,5 |
ТЕА-Pn 0,500 н рН 6,2 | 107,7±19,1 | 127,2±10,9 | 6 | 94,6±6,2 |
ТЕА-Pn 0,500 н рН 6,2 | 107,7±19,1 | 207,2±21,6 | 6 | 113,9±9,4 |
ТЕА-Pn 0,500 н рН 6,2 | 107,7±19,1 | 301,3±24,5 | 6 | 112,9±9,3 |
TEA-SOS 0,643 н рН5,6 | 108,8±13,4 | 439,2±15,9 | 2 | 97,8±9,4 |
Пример 26. In vitro поглощение липосомального и иммунолипосомального Топотекана НЕК2-сверхэкспрессирующими раковыми клетками.
Это исследование касалось способности нагруженных Топотеканом иммуннолипосом, специфичных к HER2, полученных в соответствии с данным изобретением, доставлять Топотекан специально в клетки, сверхэкспрессирующие HER2 при культивировании клеточной культуры. Эти (иммуно) липосомы готовили и нагружали Топотеканом, используя ТЕА-Pn метод примера 19. Клетки карциномы молочной железы человека (SKBr-3, ATCC), сверхэкспрессирующие HER-2, выращивали в модифицированной McCoy 5A среде (без трицина), содержащей дополнительно 10% фетальной сыворотки теленка, 50 рг/мл сульфата стрептомицина и 50 Ед/мл пенициллина G (полная ростовая среда), в Т-75 колбах при 37°С, 5% СО2. Клетки собирали при трипсинизации, инокулировали в 24-луночные планшеты для клеточных культур при концентрации 150000 клеток/на лунку в 0,5 мл полной ростовой среды и давали адаптироваться в течение ночи. Среду заменяли 0,5 мл полной ростовой среды, содержащей состав Топотекана в выбранных концентрациях в пределах диапазона 0,01-0,1 мМ фосфолипида. Для каждого условия использовали лунки в трех повторностях. Контрольные лунки инкубировали в отсутствии лекарства и/или липосом (чтобы получить фоновую интерпретацию для исследования). Планшеты инкубировали при медленном встряхивании при 37°С, 5% CO2 в течение 4-8 часов. Среду удаляли отсасыванием, а клетки промывали 4 раза порциями по 1 мл холодным сбалансированным солевым раствором Hanks', содержащим соли Са и Mg. Клетки солиболизировали добавлением 0,1 мл 1% Тритон Х-100 в воде и количество лекарства в клеточных лизатах определяли флуорометрическим способом (пример 71). Стандартную кривую получали при значении 10-2500 нг Топотекана/на лунку, и она соответствовала многочлену второго порядка (чем объясняется убывание при более высоких концентрациях лекарства) после вычитания фоновой (собственной) автофлуоресценции клеток. При использовании микроплатированного флуорометра выбирали фильтр 400/30 нм для возбуждения, 530/25 нм - для эмиссии. И кюветный, и микроплатированный флуорометры давали одни и те же результаты.
Результаты обоих экспериментов объединены в таблице 20, приведенной ниже. Имеет место заметное поглощение клетками НЕК2-нацеленного липосомального лекарства (в 50-300 раз выше, чем ненацеленного липосомального Топотекана). Интересно, что поглощение свободного Топотекана было также значительно ниже, чем НЕК2-нацеленного иммунолипосомального Топотекана. Это может быть объяснено быстрым гидролизом лактонного кольца камптотецина в молекуле Топотекана в среде для роста клеток в присутствии сыворотки, что приводит к образованию карбоксильной формы лекарства, которая может обладать более низкой клеточной проницаемостью и более низкой цитотоксичностью. В итоге была подтверждена способность нацеленных в клетки, интернализуемых, конъюгированных с лигандом иммунолипосом к выделению Топотекана внутри клеток.
Таблица 20. | |||||
In vivo поглощение клетками липосом с Топотеканом и специфичных к HER2 иммунолипосом, содержащих ТЕА-Pn.Характеристики липосом -см. таблицу 12. | |||||
Концентрация липосом, мМ фосфолипида | Концентрация Топотекана, µг/мл | Время выдержки, часы | Поглощение клетками, мг/100000 клеток | Топотекана | SK-Br-3 |
Ненасыщенные липосомы | F5-иммуно-липосомы | Свободное лекарство | |||
0,1 | |15,5 | 4 | 1,45±0,09 | 163±5,7 | не опред. |
0,01 | 1,55 | 4 | 0,185±0,03 | 60,2±2,0 | не опред. |
0,033 | 5,0 | 8 | 3,62±2,03 | 169,6±13,7 | 5,56±0,91 |
Пример 27. Цитотоксичность липосомального и иммунолипосомального Топотекана в отношении раковых клеток, сверхэкспрессирующих HER-2, in vitro.
Как только способность специфичных к HER-2 Топотекан-иммунолипосом к внутриклеточному выделению лекарства в НЕК2-сверхэкспрессирующие раковые клетки была установлена (пример 26), стало важно обеспечить, чтобы интернализованные липосомы могли выделять лекарство в его активной форме. С этой целью изучалась in vitro цитотоксичность свободного Топотекана (т.е. Топотекана в растворе), липосомального Топотекана и анти-НЕК2-иммунолипосомального Топотекана. Готовили препараты липосомального Топотекана и выращивали и собирали SKBr-3 клетки как описано в примере 26. Клетки засевали в 96-луночные планшеты для клеточных культур в концентрации 5000 клеток в 0,1 мл полной ростовой среды, в трех повторностях, и оставляли адаптироваться на ночь. Самые крайние продольные и поперечные ряды (лунок) в планшете оставляли свободными. Стерильные препараты Топотекансодержащих липосом, иммунолипосом или свободного лекарства (свежеприготовленного - путем разбавления исходного раствора Топотекана с концентрацией 20 мг/мл, рН 3, небуферированным физраствором до концентрации 2 мг/мл) были разбавлены полной средой с лекарством для достижения концентраций, начиная с 90,30 или 10 µг/мл и далее серийно - с разбавлением в среде при коэффициенте 3. Среду в лунках заменяли 0,2 мл разведенным раствором лекарства относительно липосом (лекарство/липосомы) и инкубировали при 37°С, 5% СО2, в течение определенного времени (4-6 часов). Одну ячейку в каждом ряду инкубировали со средой, не содержащей лекарства, в качестве контроля (без обработки). Среду, содержащую лекарство, удаляли из лунок, клетки промывали 0,2 мл среды, не содержащей лекарство, и 0,2 мл свежей среды без лекарства добавляли во все лунки. Планшеты инкубировали в течение 4 дней при 37°С, 5% СО2. Без замены среды в каждую лунку добавили 0,03 мл раствора тетразолиевого красителя с концентрацией 2 мг/мл (Thiazolyl Blue, MTT) (Sigma Chemical Co.) в бессыворотчной среде. Планшеты инкубировали еще 2-3 часа при 37°С, 5% СО2. Среду удаляли, в лунки вносили по 0,2 мл 70% об. водного изопропанола, 0,075 н HCl и осторожно встряхивали до тех пор, пока формазановый краситель не растворится (15-30 минут). Оптическую плотность растворов формазона определяли, используя микроплатный фотометр при 540 нм. Жизнеспособность клеток как %-ную долю необработанного контроля вычисляли в виде отношения оптической плотности содержимого в экспериментальных лунках к оптической плотности содержимого в лунках с необработанными клетками, с поправкой на фоновое значение. Строя график, эти данные наносили против концентрации лекарства и дозу IC50 определяли графически по пересечению кривой с линией 50% жизнеспособности в координатах «жизнеспособность-концентрация».
Эти результаты представлены на фигуре 9. Доза лекарства, приводящая к 50% ингибированию роста (IC50) для свободного Топотекана или ненацеленного липосомального Топотекана была свыше 30 µг/мл, для F5 - иммунолипосомального Топотекана - 0,15 µг/мл. Эти результаты соответствовали данным по поглощению нацеливаемого лекарства.
Пример 28. Сравнение стабильности и фармакокинетических характеристик в плазме для липосомального и F5-иммунолипосомального Топотекапа, осуществленное на мышах.
Липосомы с Топотеканом, содержащие радиоактивную липидную метку [3Н]-СНЕ при 1,5 мКи/ммоль фосфолипида, готовили согласно примерам 11 и 19, используя процедуры смешения этанола с липидным раствором и последующей экструзии при следующих условиях: 0,643 н сахарозооктасульфат триэтиламмония, экструзия через поликарбонатные мембраны: 15 пассажей через 2 объединенных РСТЕ фильтра с размером пор 80 нм; загрузка Топотекана: начальное соотношение лекарство/фосфолипид, равное 350 мг/ммоль (вычислено из расчета на Топотекан в форме свободного основания); F5scFv конъюгацию выполняли согласно описанному в Примере 19. Липосомы имели следующие характеристики:
Размер по QELS: среднее значение согласно оценке: 101,2 нм; стандартное отклонение 20,1 нм.
Инкапсулирование лекарства: липосомы с Топотеканом (Topo-Ls) 359,3±27,4 мг/ммоль фосфолипида; Топотекан F58scFv-иммунолипосомы (торо-F5-ILs) 326±15,9 мг/ммоль фосфолипида.
Исследование проводили, в основном, как в примере 22. Группы по 9 мышей-самцов Swiss Webster (возраст 8-10 недель, масса 24-27 г) получали инъекции в хвостовую вену Topo-Ls, Topo-F5Ls или свежеприготовленного раствора Топотекана с концентрацией 1 мг/мл в незабуференном физрастворе и в дозе 5 мг Топотекана основания на кг массы тела (эквивалентно дозе липида 14-16 µмоль фосфолипида на кг массы тела). Через 1 час, 8 часов или 24 часа после инъекции трех животных обескровливали посредством прямого укола в сердце над анестезией с применением Кетамина/Ксилазина, кровь собрали в пробирки, содержащие PBS-ЭДТА, и анализировали на содержание Топотекана (флуорометрией) и липосомные липиды (подсчитывая радиоактивную сцинтилляцию). Количественное содержание лекарства и липида, остающихся в крови в заданные моменты времени, вычисляли, принимая введенную дозу за 100% и принимая, что количество крови в животном составляет 6,3% веса тела животного, а фракция отделенных клеток крови - 45%. Доля лекарства, остающегося инкапсулированным в липосомах в каждый из указанных определенных моментов времени, вычислялась отдельно для каждого животного путем сравнения соотношения радиоактивности лекарства и липида в образцах плазмы с аналогичным же соотношением инъецируемых липосом. Количество свободного Топотекана в образцах плазмы, отобранной через 1 час после инъекции, было меньше, чем 1% инъецируемой дозы (в действительности, они были ниже предела определения применяемого аналитического метода); поэтому группу, получавшую свободный Топотекан, с более поздним сроком не исследовали. Из-за быстрого клиренса крови и низких уровней свободного Топотекана в крови, было сделано предположение, что практически весь Топотекан, обнаруженный в крови во все указанные точки времени, представлял собой включенный в липосомы (инкапсулированый) Топотекан.
Эти результаты приведены ниже в таблице 21.
Примечательно, что липосомы, полученные согласно изобретению, сохраняли 79-85% от исходного уровня загрузки даже через 24 часа после инъекции в кровоток животных. Различия между средними значениями содержания в плазме липида или лекарства между группами, получавшими липосомы и иммунолипосомы, были в пределах 1,8-13,6% и приближались или были в пределах диапазона ошибки опыта. Вероятности недействительности предположения в отношении липосомной и иммунолипосомной группы в части количеств лекарства или липида, вычисленные в каждый момент времени с использованием t-тест Стьюдента, были в пределах 0,543±0,938. Было сделано заключение о том, что различия в остаточных значениях содержания лекарства или липида в крови между двумя препаратами были ничтожно малы и статистически неразличимы.
Таблица 21. | |||
Количества липосомных липидов, Топотекана и Топотекана, оставшегося включенным в липосомы, в плазме мышей в различные моменты времени после внутривенной инъекции | |||
Время после инъекции | Липид, % от инъецируемой дозы | Лекарство, % от инъецируемой дозы | Лекарство/Липид, % от значения перед инъекцией |
F5 конъюгатный Липосомальный Топотекан (Торо-F5ILs) | |||
1 час | 57,58±4,95 | 55,45±7,23 | 96,14±7,32 |
8 часов | 35,37±3,84 | 34,18±5,87 | 96,31±11,92 |
24 часа | 15,51±11,84 | 12,30±9,02 | 79,36±8,03 |
Липосомальный Топотекан (неконъюгатный) (Topo-Ls) | |||
1 час | 58,88±9,51 | 57,63±9,45 | 97,90±5,29 |
8 часов | 39,61±1,99 | 38,82±1,49 | 98,06±4,44 |
24 часа | 15,84±3,85 | 13,45±2,64 | 85,25±7,03 |
Пример 29. Антиопухолевая эффективность липосомального и анти-НЕК2-иммунолипосомального Топотекапа в ВТ-474 ксенотрансплантатах.
В этом исследовании использовались первые упомянутые иммунолипосомы с Топотеканом, в которых использовали триэтиламмоний - полифосфатный градиент для включения лекарства. Эти липосомы получали, в основном, по способам, описанным в примерах 11 и 19. Компоненты липидной матрицы DSPC (Avanti Polar Lipids; 3 моль.части), Холестерол (Calbiochem, 98,3%, 2 моль. части) и метокси-PEG (2000)-DSPE Avanti Polar Lipids, 0,015 моль, частей) - соединяли с 100% этанолом USP с получением раствора, содержащего 0,5 мМ фосфолипида при 60°С. Этанольно-липидный раствор разбавляли при 60°С водным раствором полифосфата триэтиламмония (0,608 М триэтиламина, 0,65 Н фосфата, рН 6,1, осмолярность 531 ммоль/кг), тщательно перемешивали и экструдировали 10 раз через 2 объединенных поликарбонатных фильтра с размером пор 100 нм (Nucleopore, Corning), используя термостатируемый экструдер, работающий под давлением газа (Lipex Biomembranes) при 60°С. Экструдированные липосомы охлаждали на льду и неинкапсулированный полифосфат триэтиламмония удаляли гель-хроматографией на Сефарозе CL-4B, используя содержащий 5% декстрозы 5 мМ HEPES-Na буфер, рН 6,5, в качестве элюента. Размер липосом был 103,8±35,1 по QELS. Липосомы в этом буфере инкубировали с гидрохлоридом Топотекана при 60°С в течение 30 минут при соотношении 0,35 мг Топотекана основания на µмоль фосфолипида. В конце инкубации липосомы охлаждали на льду и хроматографировали на Сефадексе G-75 с элюентом 20 мМ HEPES-Na, 135 мМ NaCl, рН 6,5, чтобы удалить неинкапсулированное лекарство. Содержание лекарства определяли флуорометрией, а содержание липида анализом фосфата, как сообщалось ранее. Полученный таким образом липосомальный Топотекан имел 365,4±23,1 мг Топотекана основания на ммоль фосфолипида. Для того, чтобы получить НЕК2-нацеленные иммунолипосомы с Топотеканом, порцию этого препарата липосом с Топотеканом инкубировали с очищенным конъюгатом анти-НЕК2 scFv F5 и малеимидо-PEG-DSPE линкера в целом так, как описано в примере 19. Кратко говоря, F5-PEG-DSPE конъюгат в водном 10 мМ растворе цитрата натрия, содержащем 10% сахарозы, соединяли с липосомами с Топотеканом в соотношении 0,15 мг белка на ммоль липосомного фосфолипида и инкубировали при 60°С в течение 30 минут. Инкубационную смесь охлаждали на льду и хроматографировали на Сефарозе CL-4B с элюцией элюентом 20 мМ HEPES-Na, 135 мМ NaCl, pH 6,5, чтобы удалить невключенный scFv конъгат. Соотношение количеств лекарства и липида уменьшилось до 14% после этой дополнительной инкубации,
Составы липосом с Топотеканом и иммунолипосом, содержащих 1-2 мг/мл Топотекана, пропускали через 0,2-микронный стерильный шприцевой фильтр, расфасовывали асептически в полипропиленовые сосуды и хранили при 4-6°С в течение до 1 месяца перед использованием.
Свободный Топотекан был свежеприготовленным при растворении порошка гидрохлорида Топотекана (2 мг/мл) в 5% растворе декстрозы, его стерилизовали, пропуская через 0,2-микронный шприцевой фильтр.
Была использована модель ксенотрансплантата аденокарциномы молочной железы человека ВТ-477, сверхэкспресирующая HER-2, как описано в примере 10.
На 13-ый день после пересадки опухоли животных с опухолями в пределах 120-350 кубических миллиметров отобрали и произвольно разделили на группы по 12 животных: 1 контрольную группу и 3 группы для проведения лечения. На 14-ый, 18-ый и 21-ый день после пересадки опухоли мышам вводили внутривенно инъекции составов с Топотеканом с дозой 5 мг/кг веса тела, или такого же объема физраствора. Состояние здоровья животных ежедневно отслеживали. Размеры опухоли и массу тела регистрировали дважды в неделю вплоть до 53-го дня после пересадки опухоли. Животных, у которых опухоли достигали 20% от массы тела, или те, у которых прогрессирующая потеря массы тела достигла 20% или более, подвергали эвтаназии.
На фигурах 11 и 12 показаны данные, характеризующие рост опухоли и массу тела животного, соответственно. Препараты липосомального Топотекана были более активными в подавлении роста опухолей, чем свободное лекарство, а F5-нацеленный липосомальный препарат был более активным, чем такой же, но ненацеленный. Средние размеры опухолей в конце периода наблюдения значительно различались в группах, подвергающихся лечению (Р величины по неспаренному 2-полосному Student's t-тесту были 1,2×10-6 для свободного v. иммунолипосомального лекарства, 0,000…,114 для свободного v. липосомального лекарства и 0,00718 для липосомального v. иммунолипосомального лекарства). Таким образом, липосомально инкапсулированный Топотекан был более активным, чем свободное лекарство, а анти-НЕК2-иммунолипосомальный Топотекан был более активным, чем ненацеленное липосомальное лекарство. В группе с лечением липосомами и иммунолипосомами, после первоначальной регрессии, повторный рост опухоли происходил в течение 10 дней, считая от последнего проведенного лечения. В группе, где лечили свободным лекарством, не наблюдалось регрессии опухоли. Отмечалось, что липосомальные препараты Топотекана при данной дозе были более токсичными, чем свободное лекарство. Имела место гастроинтестинальная токсичность. У животных, получавших липосомальный Топотекан, развивалась диарея и потеря веса, достигающая в среднем 14% от исходного. В то время как в группе, леченной ненацеленными липосомами, животные выздоравливали, за исключением одного (12,5%), которое имело устойчивую 15% потерю веса в конце исследования, 5 животных (41,6%) в группе леченных F5-нацеленными липосомами окончательно заболели и умерли; а еще два животных (16,7%) имели устойчивую потерю веса около 15%. В контрольной группе и группе, получавшей свободное лекарство, не наблюдалось потери веса или вызванной лечением заболеваемости.
Пример 30. Максимально допустимая доза (MTD) свободного и липосомального Топотекана, установленная на мышах, получавших внутривенные инъекции в течение 3 недель.
В этом исследовании использовали препарат липосомального Топотекана, полученного по примеру 29, за исключением того, что раствор полифосфата триэтиламмония был заменен раствором сахарозооктасульфата триэтиламмония с 0,65 М триэтиламмония, рН 6,2; и для экструзии использовали 80-нм поликарбонатные мембранные фильтры вместо 100-нм. Размер липосом по объему и весу, определенный методом квазиупругого светорассеяния в Gaussian приближении (QELS) был 95,1±19,6 нм (среднее значение±SD); соотношение лекарство-липид было 369,1±18,3 мг/ммоль фосфолипида. Пяти-шестинедельным мышам-самкам Swiss-Webster (18-20 г), в группах по два животных, делали три внутривенные (хвостовая вена) инъекции свободного или липосомального Топотекана по графику «раз-в-неделю», начиная с дозы 2 мг/кг Топотекана основания за инъекцию с увеличением ее для каждой последующей группы в 1,8 раза до достижения дозы 37,8 мг/кг. Иммунолипосомальный Топотекан не включали в это исследование. Вес тела животных и общее состояние здоровья регистрировали ежедневно. Прогрессирующая потеря веса более чем в 20% случаев или естественная смерть в любое время любого из двух животных в группе в течение периода десяти дней с начала эксперимента позволяли судить о токсичности дозы. В соответствии со смертностью животных или весом данные по MTD определяли как падение в пределах диапазона 11,7-21 мг/кг для свободного Топотекана к 2,0-3,6 мг/кг для липосомального (Прототип 2) Топотекана. Во втором опыте мыши получали инъекции свободного, липосомального или F5-иммунолипосомального Топотекана (полученного из липосомального Топотекана этого примера, который описан в примере 29) с дозами от 2,0 мг/кг (липосомальньтй/иммунолипосомальный Топотекан) или 12 мг/кг (свободный Топотекан) с увеличением дозы для каждой последующей группы в 1,15 раза до тех пор, пока не будет достигнута доза, превосходящая нижний предел установленного интервала MTD. Самую высокую дозу, которая не приводила к смерти или окончательному заболеванию любого из животных, считали MTD, и было обнаружено, что она составляет 18,4 мг/кг для свободного Топотекана, 3,0 мг/кг для липосомального Топотекана, 3,0 мг/кг для иммунолипосомального Топотекана. Таким образом, липосомальный Топотекан показал большую токсичность, чем свободные лекарства.
Пример 31. Антиоухолевая эффективность липосомального Топотекана в ВТ-474 модельных ксенотрансплантатах в диапазоне 0,125-1,0 × MTD
В этом исследовании использовались липосомы с Топотеканом и F5-иммунолипосомы из примера 30. ВТ-474 подкожные трансплантаты были пересажены бесшерстным мышам как в примере 29. На 18-ый день заражения клетками опухоли животных с опухолями (105-345 кубич. мм в среднем - 200 кубич. мм) произвольно разделили группы для лечения по 6 животных в каждой группе и контрольную группу из 8 животных. Животные получали свободный или липосомальный Топотекан в дозе 1×MTD, 0,5×MTD, 0,25×MTD или 0,125×MTD в три i.v. (хвостовая вена) инъекции на 19, 23 и 27 день после пересадки опухоли. Контрольная группа получала инъекции физиологического раствора. Размеры опухоли и вес тела животного регистрировали как в примере 29. Для того, чтобы получить вес тела животного, вес опухоли (вычисленный по ее размеру и при принятии условий ее плотности, равной 1,0) вычитали из общего измеренного веса животного. Все составы (препараты) при MTD показали антиопухолевую активность (фигуры 13A-13D). Существенной разницы в эффективности между свободным или липосомальным лекарством, заданными в соответствующей их MTD или в их идентичных долях (1/2, 1/4 или 1/8). Так что инкапсулирование лекарства в липосомы с использованием TEA-SOS градиента приводило к почти 6-кратному увеличению антиопухолевой активности, но не только при таком же увеличении токсичности лекарства. Динамика веса тела животных показала, что все введения лекарства были нетоксичными, за исключением лечения свободным Топотеканом при MTD, которое показало кратковременное снижение веса тела (около 15% от начальной величины), которое позже восстановилось (фигура 14).
Пример 32. Получение и нацеленная in vitro цитотоксичность липосом с Топотеканом методом захвата сахарозооктасульфата триэтиламмония.
Липосомальный Топотекан получали, в основном, следуя процедуре примера 18, используя захваченный раствор TEA-SOS, имеющий 643 мМ TEA, pH 5,7, осмолярность 530 ммоль/кг и соотношение лекарство/фосфолипид 170 мг/ммоль. Липосомы имели соотношение 155 мг лекарства на ммоль фосфолипида; 90%-коэффициент включения и размер частиц 105 нм. Эти липосомы инкубировали с мицеллярным раствором F5-PEG-DSPE конъюгата при приблизительно 30 scFv на липосомы (15 мг антитела/ммоль фосфолипида) при 60°С в течение 1 часа, в целом так, как описано в примере 19. Антитело-конъюгированные липосомы отделяли с помощью SEC, используя Сефарозу CL-4B и соединяли с HBS-6,5 HEPES-буферным солевым раствором. В процессе присоединения анти-НЕК2 scFv (F5) заметных изменений соотношения лекарство/липид не было.
Поглощение препаратов Топотекана раковыми клетками определяли следующим образом. НЕК2-сверхэкспрессирующие клетки карциномы молочной железы человека (SK-Br-3, АТСС НТВ-30) помещали в 24-луночные планшеты для культивирования клеток при дозе 150000 клеток на лунку и оставляли на ночь. Клетки (в трех повторностях) инкубировали с F5-нацеленным и ненацеленным липосомальным Топотеканом в полной ростовой среде при концентрации липосом 0,1 мМ и 0,01 мМ в течение 4 часов при 57°С. Клетки промывали 4 раза сбалансированным солевым раствором HanK's, солюбилизировали в смеси 0,1% Тритона-Х-100 - 70% подкисленного изопропанола (1:10) и количество связанного с клетками Топотекана на лунку определяли флуорометрией. Результаты (значение ± стандартное отклонение) объединены и приведены в таблице 22. Нацеленные липосомы доставили в 100-300 раз больше лекарства в клетки-мишени, чем ненацеленные липосомы.
Таблица 22. | ||
Поглощение липосомального Топотекана SK-Br-3 клетками карциномы молочной железы. | ||
Состав | Поглощение Топотекана при 0,1 мМ фосфолипида нг/на лунку | Поглощение Топотекана при 0,01 мМ фосфолипида, нг/на лунку |
Ненацеленная липосома | 4,76±0,24 | 0,607±0,088 |
НЕК2-нацеленная липосома | 533,8±13,7 | 197,0±4,6 |
Соотношение: | 112,1±8,6 | 324±55 |
Нацеленная/Ненацеленная |
Цитотоксичность этих препаратов Топотекана в отношении SKBr-3 клеток рака молочной железы определялась как описано в примере 27. SKBr-3 клетки засевали в 96-луночные планшеты в дозе 5000 клеток/на лунку, оставляли на ночь и инкубировали при повышающихся концентрациях (0,004-30 рт/мл) свободного, липосомального или F5-иммунолиполисомального Топотекана в среде для роста клеток в течение 4 часов при 37°С. Среду, содержащую лекарство, удаляли, а клеткам давали расти в среде без лекарства в течение 72 часов. Количество жизнеспособных клеток на лунку определяли, используя Thiazolyl Blue (MTT) тетразолиевый анализ, и выражали в % по сравнению с контролем (необработанные клетки). Результаты представлены на фигуре 10. Иммунолипосомы с Тепотеканом были более цитотоксичными (IC50 0,15-0,5 µг/мл), чем ненацеленные липосомы с Топотеканом (IC50≥3,1 µг/мл) и свободный Топотекан (IC50≥2,3 µг/мл).
Пример 33. In vivo стабильность липосом с Топотеканом различных размеров.
Липосомы, содержащие ТЕА-Pn, получали как в примере 22, используя 12-кратную экструзию через поликарбонатные мембраны с размером пор 100 нм или дополнительно - 12 раз через поликарбонатные мембраны с размером пор 50 нм. Топотекан (ТРТ) был добавлен при соотношении 150 µг на рмоль фосфолипида. Загрузку завершали при 58°С в течение 45 минут в бане с горячей водой с последующим охлаждением на льду. Эффективность включения для экструдированных при 50 нм и 100 им липосом составила 126,80±19,24 µг ТРТ/µмоль PL (84,5±12,8%) и 148,48±10,26 µг ТРТ/µмоль PL (99,0±6,8%), соответственно. Мышам-самкам Swiss-Webster (по 3 в группах) инъецировали внутривенно один или два состава Ls-TPT в дозе 5 мг ТРТ/кг. Мышей умерщвляли через 6 часов и кровь собирали. Плазму анализировали на ТРТ и липосомный липид как описано в примере 22. Результаты показаны в таблице 23.
Таблица 23. | |||
In vivo стабильность Ls-TPT различного размера, загруженных методом ТЕА-Pn захвата | |||
Размер липосом, нм | Лекарство в плазме, % от инъециров. дозы | Липосомный липид в плазме, % от инъецируемой дозы | Соотношение лекарство/липид, % от величины перед инъекцией |
74,2±21,6 | 32,93±1,97 | 45,7±2,2 | 72,06±5,51 |
96,4±29,3 | 33,26±3,56 | 37,6±5,3 | 88,41±15,68 |
Пример 34. Синтез и включение в липосомы 6-(3-аминопропил)эллиптицина (6-АРЕ)
6-(3-аминопропил)эллиптицин получили из эллиптицина двух стадийным способом, основанным на процедуре Werbel et al., J.Med.Chem. 1986, v.29, p.1321-1322.
501,4 мг эллиптицина основания (NSC 71795 (Aldrich Chemical Co.) перемешивали с приблизительно 100 мг гидрида натрия (Sigma, промыт безводным петролейным эфиром) в 5 мл сухого диметилформамида (DMF) при комнатной температуре в течение 30 минут.К этой смеси по каплям добавили раствор 678 мг N-бромпропилфталимида (Aldrich) в 2 мл сухого DMF. Реакционную смесь, окрашенную в лиловый цвет, перемешивали под аргоном в течение ночи, обрабатывали 1 мл воды и вливали в 60 мл воды. Смесь дважды экстрагировали 25 мл метиленхлорида, экстракт высушили над безводным сульфатом натрия и пропустили через слой нейтрального оксида алюминия. Слой оксида алюминия дважды прополаскивали в 10 мл метиленхлорида и объединенные фильтрат и промывочная жидкость были высушены под вакуумом. Продукт вместе с 20 мл абсолютного этанола и 2 мл безводного гидразина перемешивали в течение ночи при комнатной температуре. Полученный осадок был отфильтрован под вакуумом, фильтрат желтого цвета был разбавлен 50 мл 0,2 н NaOH и проэкстрагирован двумя порциями (75 мл и 50 мл) хлороформа. Хлороформный экстракт был высушен над Na2SO4 и доведен до сухости в вакууме. Неочищенный продукт (выход 408 мг) хроматографировали на колонке с диоксидом кремния 60 и элюировали изократно смесью хлороформа-метанола (7:3 по объему), насыщали сухим триметиламином. Было показано, что фракции, элюированные во второй окрашенной в желтый цвет полосе, после непрореагировавшего эллиптицина, содержали целевое соединение примерно с 30% выходом. Структура была подтверждена 1Н-ЯМР ТСХ: Rf 0,29-0,31 (Диоксид кремния 60; CHCl3-NaOH 7:3 по объему, насыщ. триметиламином). Эллиптицин, R1 0,81-0,83. Полученное соединение превращали в дигидрохлоридную соль растворением в безводном этаноле и титрованием
6 н раствором HCl в сухом изопропаноле. Оранжевые кристаллы дигидрохлорида 6-АРЕ (NSC 176328) отфильтровывали, промывали эфиром и сушили в вакууме. Выход дигидрохлорида 86%.
Липосомы получали гидратированием липидной пленки DSPC, холестерина и PEG (М.м. 2000) - DSPE (3:2:0,015 мольное соотношение) в растворе полифосфата триметиламмония (ТМА-Pn) при 0,5 М ТМА, рН 5,6, температуре 60°С, с последующими шестью циклами быстрого замораживания (-78°С) и таяния (60°С) и 10-кратной экструзии через два объединенных поликарбонатных фильтра с размером пор 50 нм. Неинкапсулированный ТМА-Pn удаляли, используя колонку с Сефарозой CL-4B с элюцией HEPES-Декстроза (5 мМ HEPES, 5% Декстрозы, рН 5,5). Размер липосом был 85,7±32,1 нм.
Концентрированный 6-АРЕ раствор (10 мг/мл) добавляли к ТМА-Pn-со держащим липосомам при соотношении лекарство/фосфолипид 100 µг APE/µмоль фосфолипида, смесь инкубировали при 58°С в течение 45 минут и быстро охлаждали на льду в течение 15 минут. Неинкапсулированное лекарство удаляли гель-хроматографией на колонке с Сефадексом G-75 с элюцией HEPES-Декстрозным буфером (5 мМ HEPES-Na, 5% декстрозы, рН 6,5). Липосомы с включенным АРЕ затем оценивали спектрофотометрическим методом как описано в примере 71, алипосомный фосфолипид определяли экстракционным анализом по примеру 70. Инкапсулирование лекарства было практически количественным.
Пример 35. Изготовление НЕК2-нацеленного иммунолипосомального 6-АРЕ и in vitro цитотоксичность 6-АРЕ препаратов, специфичных к Вт-474 клеткам рака молочной железы, сверхэкспрессирующим HER2.
Липосомы с инкапсулированным 6-АРЕ (Ls-APE) готовили как описано в примере 34. Анти-НЕР2-иммунолипосомы с инкапсулированным 6-АРЕ (F5-ILs-APE) были получены из Ls-APE способом примера 19. Основанный на МТТ анализ жизнеспособности клеток по примеру 27 использовали для определения цитотоксичности 6-АРЕ, доставленного (к клеткам) в виде раствора, Ls-APE или в виде НЕК2-нацеленных F5-ILs-APE, специфичных к сверхэкспрессирующим HER2 клеткам карциномы молочной железы человека (Вт-474). Эти клетки выдерживали в среде, содержащей лекарство, в течение 6 часов, а затем - в среде без лекарства в течение 3 дней. Результаты показаны на фигуре 15. IC50 для свободного АРЕ составило 0,26 µг АРЕ/мл, для F5-ILs-APE было 0,756 µг АРЕ/мл, а для ненацеленных Ls-APE было 51,0 µг АРЕ/мл. Разница активности для нацеленного и ненацеленного липосомального 6-АРЕ составила 67,5 раза, что показало значительный эффект нацеленного средства доставки лекарства.
Пример 36. EGFR-нацеленные иммунолипосомальные составы 6-АРЕ и цитотоксичность в отношении раковых клеток in vitro.
6-АРЕ-нагруженные липосомы получали как описано в примере 34. EGFR-нацеленные иммунолипосомами получали присоединением EGFR-специфичных Fab'-фрагментов антитела следующим образом. EGFR-специфичное IgG MAb C225 (cetuximab, ERBITUX™, Imclone Systems) было расщеплено пепсином с получением (Fab')2 фрагментов. Очищенные (Fab')2 фрагменты обрабатывали 10-20 мМ 2-меркаптоэтиламина в течение 15 минут при 37°С и полученные Fab' фрагменты очищали гель-фильтрацией, используя Сефадекс G-25. Содержание реакционноспособных тиольных групп было обычно около 0,9 тиольных групп на молекулу белка (вычислено с использованием реагента Ellmann'a), C22Fab' ковалентно конъюгировали с амфифильным линкером Mal-PEG-DSPE (Avanti Polar Lipids, AL) в водном растворе при рН 6,2-6,5 и мольном соотношении 1:4 в течение 2-4 часов при комнатной температуре или в течение ночи при 4-6°С с получением C225Fab'-PEG-DSPE конъюгата с выходом 30-50% по белку. Этот мицеллообразующий конъюгат отделили от непрореагировавшего белка колоночной хроматографией исключения по размеру на гранулированном геле из 3% агарозы - 4% полиакриламида (Ultrogel AcA 34, получен из Sigma Chem Co.) с элюцией HBS-6,5 буфером. Конъюгат выделился во фракциях свободного объема. Иммунолипосомальный 6-АРЕ готовили инкубированием этих липосом с С225 Fab'-PEG-DSPE с получением липосом, нагруженных лекарством, при соотношении 30 мг С225 белка/ммоль липосомного фосфолипида в течение 30 минут при 60°С, охлажденном на льду в течение 15 минут и очисткой иммунолипосом гель-хроматографией на колонке с Сефарозой CL-4B и элюцией HBS-6,5 буфером (липосомы появлялись в свободном объеме колонки или вблизи него).
MDA-MB-468 EGFR-сверхэкспрессирующие клетки рака молочной железы человека и MCF-7 клетки рака молочной железы человека с низкой степенью экспрессии EGFR (ATCC, Rockville, MD) культивировали в их среде, рекомендуемой для роста клеток, и изучали цитотоксичность свободного, липосомального и анти-EGFR-иммунолипосомального 6-АРЕ по отношению к этим клеткам согласно способу примера 27. Эти клетки инкубировали со средой, содержащей лекарство, в течение 6 часов, а затем - со средой, не содержащей лекарства, в течение 3 дней. Результаты показаны на фигуре 16. В MDA-MB-468 клетках IC50 для свободного 6-АРЕ составил около 0,1 µг/мл, а для C225-ILs-APE около 0,9 µг/мл. В MCF-7 клетках IC50 составил (около 0,1) для свободного 6-АРЕ около 0,5 µг/мл, а для C225-ILs-APE около 14 µг/мл. IC50 для Ls-APE в обеих линиях клеток была более 30 µг/мл. Так что EGFR-нацеленные 6-АРЕ-нагруженные иммунолипосомы продемонстрировали антигенспецифичную цитотоксическую активность в сверхэкспрессирующих EGFR клетках рака молочной железы MDA-MB-468, но не в MCF-7 клетках рака молочной железы, для которых не характерна сверхэкспрессия EGFR. В MCF-7 клетках нацеленные и ненацеленные 6-АРЕ липосомы были одинаково активны.
Пример 37. Фармакокинетика липосомального 6-АРЕ, изученного на крысах.
Липососы с захваченными ТЕА-Pn раствором (557 мМ фосфатных групп, 500 мМ TEA, pH 5,8, осмолярность 480 ммоль/кг) и липидной композицией DSPC, холестерола и PEG-DSPE (мольное соотношение 3:2:0,015) готовили как в примере 11. Этанольный раствор липидов соединили при 60°С с 10 объемами водного ТЕА-Pn раствора и экструдировали 10 раз через две объединенные поликарбонатные мембраны с размером пор 80 нм. Неинкапсулированный ТЕА-Pn удаляли с использованием колонки с Сефарозой CL-4B и элюцией MES-Декстрозой (5 мМ MES-Na, 5% Декстрозы, рН 5,5). Размер липосом по QELS был 92,3±23,3 нм. Неизменяемая радиоактивная липидная метка [3H]-CHE была включена в липидную матрицу при 0,5 мКи/ммоль фосфолипида. Липосомы были загружены 6-АРЕ, как описано в примере 34.
Исследования фармакокинетики проводили по протоколу примера 9. Крысам-самкам Sim Albino (9 недель, 200 г) инъецировали i.v. 6-АРЕ в дозе 10 мг/мл. Отбирали кровь в предназначенные моменты времени и плазму анализировали на 6-АРЕ флуорометрией. Аликвоты плазмы (0,05-0,2 мл) смешивали с 1-2 мм 90% водного изопропанола - 0,1 н HCl и 6-АРЕ количественно определяли по флуоресценции как в примере 71. Содержание липида количественно оценивали по [3H]-СНЕ радиоактивной сцинтилляции.
Результаты показаны на фигуре 17. Время полужизни (t1/2) лекарства в крови составляло 13,7 часов, а липида липосомы - 16,6 часов (группа А). Время полужизни выделения лекарства из липосомы была 77,9 часов, показывая совершенно замечательную стабильность инкапсулирования (группа В).
Пример 38. Синтез и инкапсулирование в липосомы 2-(2-(N,N-диэтиламино)этил)эллиптициния(2-ВАЕ).
2-(2-(N,N-диэтиламино)этил-эллиптициний-хлорид (NSC 359449) является противораковым производным эллиптицина, который получают алкилированием эллиптицина 2-(N,N-диэтиламино)этилхлоридом в метаноле в присутствии триэтиламина (см. Werbel L.M., Angelo M., Fry D.M., Worth D.F. J. Med. Chem. 1986, 29:1321-1322).
Липосомы, содержащие захваченные ТЕА-Pn, готовили как описано в примере 37. 2-DAE-2HCl инкубировали с ТЕА-Pn липосомами в 5 мМ HEPES-Na, 5% Декстрозы, рН 7,4, при соотношении 2-DAE/фосфолипид 100 µг/µмоль. Количество загруженного лекарства было 88,2 µг APE/µмоль PL (эффективность 88,2%).
Пример 39. Фармакокинетика липосомального 2-DAE, исследованная на крысах.
Фармакокинетику липосомального 2-DAE в крови (пример 38) изучали на крысах как в примере 37. t1/2 для 2-DAE был 17,8 часов, а для липосомной липидной матрицы - 18,2 часа (А). Время полужизни выделения лекарства из липосомы в крови t1/2=677 час. (В). Таким образом, эти липосомы были чрезвычайно стабильными в плане просачиваемости лекарства в кровоток.
Пример 40. Включение винорелбина в липосомы с помощью ТЕА-Pn метода. Влияние рН.
Липосомы получали методом впрыскивания этанола как в примере 11, используя ТЕА-Pn раствор 0,608 М TEA, 0,65 М фосфатных групп, рН 6,1 и осмолярность 531 ммоль/кг, и 15-кратную экструзию липидной суспензии через две объединенные поликарбонатные мембраны с размером пор 100 нм. Размер пор полученных липосом по QELS был 108,3±17,1 нм. Винорелбин (VRB) в виде исходного раствора битартрата винорелбина 10 мг/мл USP добавили к липосомам в водном 5 мМ HEPES-Na, 5% декстрозы, рН 6,5, при соотношении лекарство/фосфолипид 350 µг/µмоль, рН доводили до нужной величины, используя 1-5 н NaOH. Смесь инкубировали при 58±2°С в течение 30 минут. Смесь затем охлаждали на льду в течение 15 минут, а неинкапсулированное лекарство удаляли гель-фильтрационной хроматографией на Сефадаксе G-75 с элюцией HBS-6,5 буфером (20 мМ HEPES-Na, 135 мМ NaCl, рН 6,5). Аликвоты очищенных липосом были затем солюбилизированы в кислом изопропаноле и проанализированы на содержание винорелбина, используя спектрофотометрию при 270 нм. Фосфолипиды липосом количественно определяли после экстракции, используя анализ фосфатов Bartlett'a (1959) смесью метанола и хлороформа.
Подсчитанные соотношения лекарство/липид после загрузки были такими, что указаны в таблице 24. Включение винорелбина было количественным (т.е. практически 100%) и не зависело от рН в изученном диапазоне значений.
Таблица 24. | ||
Включение винорелбина в липосомы с захваченным ТЕА-Pn при различных величинах рН наружного буфера | ||
рН | Соотношение лекарства: липид, рг/цмоль | Эффективность включения, % |
4,5 | 351,2±52,88 | 100,4±15,2 |
5,0 | 347,6±6,35 | 99,3±1,8 |
5,75 | 355,2±11,2 | 101,5±3,2 |
6,25 | 377,0±21,5 | 107,7±6,6 |
7,0 | 374,3±29,58 | 106,9±9,0 |
Пример 41. Липосомальный винорелбин, полученный ТЕА-Pn методом при различных соотношениях лекарство/липид: эффективность включения и in vivo стабильность, исследованные на мышах.
Липосомы с захваченным ТЕА-Pn раствором получали согласно примеру 40, за исключением того, что [3H]-CHE включали в липидную матрицу при 1,5 мКи/ммоль фосфолипида. Размер липосом по QELS был 98,5±34,3 нм. Липосомы смешивали с битартратом винорелбина USP в водном буфере 5 мМ HEPES-Na, 5% декстрозы, рН 6,5, при соотношении лекарство/фосфолипид 150-450 мг VRB/ммоль, и инкубировали при 58±2°С в течение 30 минут. Доведения рН не проводили, затем добавляли лекарство. Нагруженные винорелбином липосомы (Ls-VRB) отделяли и анализировали на содержание лекарства и фосфолипида как в примере 40.
Самкам Swiss Webster мышей возрастом 5-6 недель, по 3 животных в группе, внутривенно инъецировали Ls-VRB-Pn в дозе 5 мг VRB/кг. Липидная доза варьировалась согласно степени загрузки и могла быть определена по вышеуказанному вычисленному соотношению лекарство/липид. Через 8 часов или 24 часа после инъекции животным давали анестезию, обескровливали, кровь собирали на льду во взвешенные пробирки, содержащие известные количества PBS с 0,04% ЭДТА. Клетки крови отделяли центрифугированием, а супернатанты исследовали на липосомные липиды подсчетом [3H]-СНЕ радиоактивной сцинтилляции винорелбина с помощью ВЭЖХ следующим образом. В пробы впрыскивали винбластин (внутривенный стандарт), экстрагировали диэтиловым эфиром, выпаривали и остатки растворяли в Подвижной фазе, состоящей из водного 50 мМ ацетата триэтиламмония (рН 5,5) и ацетонитрила (58:42 по объему). Пробы загружали на колонку с диоксидом кремния с C18-обращенной фазой (Supeico С-18 колонка, 250 мм × 4 мм i.d. размер частиц 5 µм), которой предшествовала С-18 защитная колонка. Элюцию с колонки проводили изократически вышеуказанной подвижной фазой при скорости 1,0 мл/мин. VRB детектировали с помощью детектора поглощения при 280 нм. Типичное время удерживания для VRB и винбластина (внутренний стандарт) составило 9,1 мин. и 7,8 мин. соответственно.
Эти результаты показаны в таблице 25. Эффективность включения уменьшалась с повышением соотношения лекарство/липид от практически 100% при 150 мг/ммоль до примерно 66% при 450 мг/ммоль. При этом отмечалось, что добавление батартрата винорелбина при соотношениях свыше 250 мг винорелбина на ммоль фосфолипида вызывало значительное подкисление суспензии липосом (рН<4,0), что приводило к снижению эффективности включения. Таким образом, была установлена необходимость контроля рН на стадии загрузки лекарства. Количества липосомной матрицы, определенные в крови через 8 часов, были в пределах от 30,4±6,6% от инъецируемой дозы (% id) до 38,6±5,2% независимо от абсолютного значения инъецируемого липида. Через 24 часа они были еще от 6,4% ID до 14,8% ID липидной матрицы, которую можно определить в крови. Количество лекарства, которое оставалось инкапсулированным через 8 часов, колебалось от 37% до 65%. Однако, через 24 часа после инъекции уровни лекарства падали ниже предела определения используемого аналитического метода.
Таблица 25. | |||
Эффективность включения и in vivo удержание лекарства в липосомальном винорелбине, полученном при различных соотношениях лекарство/липид с использованием ТЕА-Pn метода (без регулировки рН буфером загрузки). Данные по удержанию лекарства: значение ± SD (n=3) | |||
Соотношение винорелбина/фосфолипид | % лекарства, оставшегося инкапсулированным через 8 часов после инъекции | ||
Начальное, мг/ммоль вычислено | Конечное, мг/ммоль, измерено | Эффективность инкапсулирования, % | |
150 | 156 | 104,0 | 36,6±4,2 |
250 | 238 | 95,2 | 5б,3±1,3 |
350 | 260 | 74,3 | 65,9±2,3 |
450 | 299 | 66,4 | 63,0±4,1 |
Пример 42. Включение винорелбина в липосомы с использованием ТЕА-SOS метода при различных соотношениях лекарство/липид.
TEA-SOS липосомы для включения лекарства готовили по примеру 40, за исключением того, что TEA-SOS раствор с 0,65 М TEA, рН 5,4, осмолярностью 521 ммоль/кг использовали вместо ТЕА-Pn раствора, а липосомы экструдировали через поликарбонатные мембраны с размером пор 80 нм. Размер липосом по QELS был 86,6±12,9 нм. VRB добавляли к липосомам в водном 5 мМ HEPES-Na, 5% Декстрозы, рН 6,5, при различных соотношениях лекарство/фосфолипид и смесь затем инкубировали при 60°С в течение 30 минут. VRB-нагруженные липосомы были затем выделены и подвергнуты анализу как в примере 40.
Вычисленные значения соотношения лекарство/липид для VRB липосом показана в таблице 26. Примечательно, что в отличие от полимерного аниона, способствующего загрузке, включение винорелбина в липосомы с полианионизированным сахаром (сахарозооктасульфат) было практически количественным независимо от соотношения лекарство/липид, достигающего почти 450 мг VRB/ммоль фосфолипида, и только немного меньшим (88%) при 550 мг VRB/ммоль фосфолипида.
Таблица 26. | ||
Зависимость включения винорелбина в липосомы от соотношения лекарство/липид | ||
Соотношение винорелбин/фосфолипид, мг/ммоль | Эффективность включения (%) | |
В целом | Инкапсулировано в липосомы | |
150 | 159,9±11,5 | 106,6±8,1 |
250 | 255±12,4 | 102,2±5,1 |
350 | 381,8±16,3 | 109,1±5,1 |
450 | 456,1±29,5 | 101,4±6,6 |
550 | 486,2±26,0 | 88,4±4,2 |
Пример 43. Получение НЕК2-нацеленных иммунолипосом с включенным винорелбином ТЕА-Pn методом и сравнительные фармакокинетические данные НЕК2-нацеленных и ненацеленных липосом с винорелбином, полученные на крысах.
Анти-НЕК2 scFv F5-PEG-DSPE конъюгат получали как в примере 19. HER2-нацеленные иммунолипосомы с винорелбином получали инкубацией ненацеленных липосом и винорелбином (пример 41, нагруженные при соотношении лекарство/фосфолипид 350 мг/ммоль) с F5-PEG-DSPE конъюгатом (пример 19) в водном 20 мМ HEPES-Na, 135 мМ NaCl, pH 6,5, буфере при соотношении белок/фосфолипид 15 мг/ммоль при 60°С в течение 30 минут. Невключенный F5 конъюгат удаляли гель-хроматографией на колонке с Сефарозой 4В и с элюцией тем же самым буфером. Ненацеленные липосомы (Ls-Pn-VRB) и НЕК2-нацеленные липосомы (F5-ILs-Pn-VRB) вводили i.v. самкам Albino крыс (возраст 8-9 недель, 200 г) в дозе 5 мг VRB/кг. В различные моменты времени кровь собирали как описано в примере 9 и анализировали на содержание VRB и липида как в примере 41. Время полужизни в крови для липосомных липидов и время выделения 50% лекарства были вычислены на основе графиков «концентрация липида - время» или графиков «соотношение лекарство/липид - время», соответственно, находя наилучшее соответствие моноэкспоненциальной кинетике, исползуя MICROSOFT EXCEL (Microsoft Corp.) при развертывании TREND функции. Результаты (фигура 18) показали, что оба типа липосом, как нацеленные, так и ненацеленные липосомы с винорелбином, имели идентичные фармакокинетические характеристики для лекарства и для липида при времени полужизни липида около 12,1 часа и времени выделения 50% лекарства, равном примерно 4,3 часа.
Пример 44. Получение и сравнительная in vivo стабильность липосом с винорелбином, получаемых с использованием солей аммония и замещенного аммония.
Раствор декстрансульфата аммония (DS-A) с рН 5,8, 0,65 М NH4 +, осмолярностью 390 ммоль/кг и раствор декстрансульфата триэтиламмония (DS-TEA) с рН 6,0, 0,65 М NH4 +, осмолярностью 465 ммоль/кг готовили из декстрансульфата с мол, массой 1000 (Sigma Chemical Co.) в соответствии со способом примера 4, используя титрование 12,4 М водным аммиаком или чистым триэтиламином, соответственно. Водный раствор сульфата аммония (S-A), 325 мМ, рН 5,1, осмолярностью 703 ммоль/кг, готовили из сульфата аммония аналитической степени чистоты. Все три раствора содержали менее чем 1% Na от общего содержания катионов. Липосомы, включающие эти растворы, были получены смешиванием с этанолом с последующей экструзией - методом примера 41 (DSPC/XonecTepon/PEG-DSPE 3:2:0,015 мольное соотношение). Радиоактивную липидную метку [3H]-CHE включили в липидную матрицу при 1,5 мКи/ммоль фосфолипида. Стадия экструзии состояла из 10 пассажей через две объединенных 0,1 µм поликарбонатные мембраны. VRB добавили к липосомам в 5 мМ HEPES-Na, 5% Декстрозы, рН 6,5 при соотношении лекарство/фосфолипид 350 мг/ммоль, рН доводили до 6,5, используя 1 н NaOH, и смесь инкубировали при 58-60°С в течение 30 минут. Затем реакционную смесь охладили на льду в течение 15 минут и неинкапсулированное лекарство удаляли гельфильтрационной хроматографией на Сефадексе G-75 и элюцией водным 20 мМ HEPES-Na, 135 мМ NaCl, рН 6,5. Очищенные нагруженные винорелбином липосомы анализировали на VRB спектрофотометрически и на фосфолипид - анализом на фосфаты по Bartlett (1959) (См. примеры 70, 71). Фармакокинетические характеристики в крови для липосомного липида и лекарства изучали на крысах как в примере 43.
Результаты показаны на фигурах 19-20 и в таблице 27. Липосомы, нагруженные декстрансульфатом триэтиламмония, сравнивали с липосомами, нагруженными с использованием аммониевой соли декстрансульфата. Неожиданно оказалось, что те липосомы, что были нагружены с помощью соли триэтиламмония, были значительно более стабильными, чем тем, что были нагружены с помощью соли аммония. Фармакокинетика самого липосомального носителя была близка аналогичным данным трех различных составов и была поэтому прежде всего зависима от применяемой липидной композиции. Утечка винорелбина из Ls-VRB, нагруженных с использованием декстрансульфата триэтиламмония, была почти в три раза медленнее, чем из липосом, нагруженных с помощью декстрансульфата аммония. Липосомы, нагруженные с помощью аммонийсульфата, имели самую высокую скорость утечки лекарства из них.
Таблица 27. | |||
Сравнительная in vivo стабильность инкапсулирования лекарства в липосомы с помощью захваченных солей аммония и замещенного аммония | |||
Состав, захваченная липосомой соль | Размер липосом, нм, значение ± SD (по QELS) | Время полужизни в крови липидной матрицы, часы | Время выделения в кровь 50% лекарства, часы |
DS-TEA | 120,8±28,5 | 9,5±3,3 | 66,3±13,4 |
DS-A | 107,8±15,4 | 11,2±0,6 | 22,9±1,7 |
S-A | 114,5±15,6 | 10,7±0,2 | 1,77±0,16 |
Пример 45. Получение и in vivo стабильность нагруженных винорелбином липосом с различным размером.
[3H]-СНЕ-меченные липосомы (1,5 мКи/ммоль фосфолипида) с захваченным раствором сахарозооктасульфата триэтиламмония (0,65 М TEA, pH 6,4, осмолярность 502 ммоль/кг) получали смешением с этанолом и экструзией по способу примера 11. Стадия экструзии включала 15 пассажей через две объединенные поликарбонатные мембраны с размером пор 0,05, 0,08 или 0,1 µм. Загрузка винорелбина, выделение липосом с винорелбином и оценку свойств этих липосом проводилась по способу, описанному в примере 40. Крысы-самки Albino (возраст 8-9 недель, 200 г) использовались для изучения липосомной in vivo стабильности. Липосомные липиды и фармакокинетика лекарства изучались на крысах как в примере 43.
Результаты показаны на фигурах 21, 22 и в таблице 28, приведенной ниже. Липосомы, экструдированные через 0,05, 0,08 и 0,1 µм поликарбонатные фильтры, сравнивали, и было показано, что они обладают близкими фармакокинетическими свойствами в плане как лекарства, так и липосомного носителя, а также аналогичной степенью просачиваемости (утечки) содержимого. Выделение лекарства из липосом в кровь характеризовалось временем (продолжительностью) выделения 50% лекарства в пределах примерно 40-80 часов, значительно выше 24 часов.
Таблица 28. | ||||
Характеристика свойств липосом с винорелбином. | ||||
Размер липосом, нм, значение ± SD (по QELS) | Загрузка лекарства, мг/ммоль фосфолипида | Эффективность включения, % | Время полужизни липидной матрицы в крови, часы | Время воздействия в кровь 50% лекарства, часы |
87,6±28,1 | 352,4±13,9 | 100,7±4,0 | 14,6±0,7 | 39,7±3,1 |
98,5±15,1 | 322,6±22,7 | 92,2±6,5 | 13,0±0,2 | 47,9±3,8 |
109,6±24,6 | 357,0±10,5 | 102,0±3,0 | 14,3±0,3 | 78,0±1,4 |
Пример 46. Получение НЕКД-нацеленных липосом с винорелбином с использованием метода захвата TEA-SOS и фармакокинетические характеристики HER2 scFv-нацеленного и ненацеленного иммунолипосомального винорелбина, исследованные на крысах.
Липосомы получали, нагружали винорелбином при соотношении лекарство/фосфолипид 350 мг/ммоль и исследовали как описано в примере 43, за исключением того, что TEA-SOS раствор примера 45 был заменен ТЕА-Pn раствором. Стадия экструзии включала 15 пассажей через поликарбонатные фильтры с размером пор 0,08 µм. Размер липосом по QELS составлял 95,0±26 нм. F5 scFv-сшитые анти-НЕК2-иммунолипосомы с винорелбином получали из липосом с винорелбином, а фармакокинетику липосомальных липидов и лекарства НЕК2-нацеленного и ненацеленного липосомального винорелбина изучали на крысах как описано в примере 43. Время полужизни циркулирующего в крови липосомального липида было 11,4 часа и 10,3 часа, а время выделения 50% лекарства составило 30,9 часа и 30,3 часа для F5-ILs-VRB и Ls-VRB, соответственно. Таким образом, фармакокинетические характеристики для липида и для лекарства Ls-VRB и F5-ILs-VRB были очень близкими, показывая, что введение scFv-PEG-DSPE конъюгата и не влияет на клиренс самого носителя, и не приводит к повышенной просачиваемости (утечке) лекарства через носитель в процессе циркулирования (фигуры 23, 24).
Пример 47. Получение и фармакокинетические свойства липосом с винорелбином, включающих неионные липидные производные поли-(этиленгликоля).
Метокси-PEG (мол. вес 2000)-производное синтетического С20-керамида (PEG-керамид) бьшо получено от Northern Lipids, Inc., Canada. Метокси-PEG (Мол. вес. 2000)-дистеароилглицерин (PEG-DSG)(SUNBRIGHT G-S20) был получен от NOF Corp., Japan.
Липосомы, имеющие липидную композицию DSPC, холестерин и PEG-липид (PEG-керамид или PEG-DSG) при мольном соотношении 3:2:0,3 и захваченном TEA-SOS растворе (М TEA, pH 6,4, осмолярность 502 ммоль/кг) готовили методом смешивания с этанолом и экструзией по примеру 11. Стадия экструзии включала два пассажа через два объединенных поликарбонатных мембранных фильтра с размером пор 0,2 µм и 10 пассажей с использованием фильтров с размером пор 0,08 µм. Липосомы нагружали винорелбином при соотношении лекарство/фосфолипид 350 мг/ммоль, характеризуемым размером, концентрацией липида и лекарства, и их фармакокинетика изучалась на крысах как описано в примере 46. Оба состава показали пролонгированное время циркуляции липидной матрицы и медленное выделение лекарства in vivo при почти 50% доле лекарства, остающегося инкапсулированным после 24 часов в крови in vivo, как показано в таблице 29 ниже.
Таблица 29. | |||||
Характеристики липосом с винорелбином с различными PEG-липидами. | |||||
PEG-липид | Размер липосом, нм, значение ±SD (по QELS) | Загрузка. лекарства, мг/ммоль фосфолипида | Эффективность включения, % | Время полужизни липидной матрицы в крови, часы | Время выделения в кровь 50% лекарства часы |
PEG-керамид | 103,3±30,9 | 291,4±18,0 | 83,26±5,14 | 14,0 | 102,7 |
PEG-DSG | 101,9±20,1 | 359,3±7,2 | 102,7±2,1 | 15,1 | 24,6 |
Примечательно, что повышенное PEG-илирование этих липосом (содержание PEG липида около 5,7 моль.% от общего количества липидов) практически не оказывало влияния на долговечность циркуляции липосом в крови, сопоставимую с подобными, подобранными по размеру липосомами, имеющими низкую степень PEG-илирования около 0,3 моль.% от общего количества липида) (Пример 45, 109,6 нм, t1/2=14,3 часа; 98,5 нм, t1/2=13,0 часов).
Пример 48. Получение HER2-нацеленного липосомального винорелбина и цитотоксичность свободного, НЕК2-нацеленного и ненацеленного липосомального винорелбина в отношении MDA-MB-453 клеток in vitro.
Винорелбин-нагруженные липосомы (Ls-VRB) получали как в примере 42 (без [3H]-CHE), используя загрузку лекарства при рН 6,0 и 350 иг винорелбина/имоль фосфолипида. Анти-НЕЕ2 иммунолипосомальный винорелбин (F5-ILs-VRB) был получен инкубированием этих липосом с F5-PEG-DSPE конъюгатом, как описано в примерах 19 и 42, выше, за исключением того, что [3H]-СНЕ не добавляли. «Свободный» винорелбин получали разбавлением раствора битартрата винорелбина (10 мг/мл) USP в среде для культуры клеток.
MDA-MB-453 представляет собой клетки аденокарциномы молочной железы человека (American Type Culture Collection, Rockville, MD), которые умеренно сверхэкспрессируют HER2 рецептор (около от 3х104 до 1×105 копий на клетки). Цитотоксичность VRB, выделившегося как свободное лекарства, как ненацеленный липосомальный винорелбин или как НЕК2-нацеленный (F5)-иммунолипосомальный винорелбин, специфичный к MDA-MB-453 клеткам, определяли как указано в примере 27, за исключением того, что клетки помещали в 96-луночные микротитровальные планшеты в рекомендуемых поставщиком условиях роста (Leibowitz L-15 с 10% фетальной сыворотки теленка, без подачи СО2) при концентрации 10000 клеток/на лунку, и композиции лекарства добавляли в серии 1:3 ступенчатых разбавлений, начиная с 0,03-0,1 мг/мл. Данные по жизнеспособности клеток наносят, строя график, против концентрации лекарства (фигура 25) и концентрации лекарства, требовавшиеся для уменьшения жизнеспособности клеток до 50% (IC50), вычисляли по графику, IC50 F5-нацеленных липосом и винорелбином (0,06 µг/мл) близка к IC50 свободного лекарства (0,07 µг/мм) и существенно ниже IC50 для ненацеленных липосом (2,2 µг/мл). Это показывает 37-кратное увеличение активности как результат выделения лекарства специфично нацеленного на раковые клетки.
Пример 49. Цитотоксичность свободного, НЕК2-нацеленного и ненацеленного липосомального винорелбина в отношении CaLu-3 клеток in vitro.
Липосомы и методы предыдущего примера (пример 48) использовались для изучения цитотоксичности свободного винорелбина, Ls-VRB и F5-ILs-VRB в HER2-суперэкспрессирующих CaLu-3 клетках крупноклеточной карциномы легкого человека (American Type Culture Collection, Rockville, MD). Клетки выращивали в RPMI среде с 10% фетальной сыворотки теленка в присутствии 5% CO2.
Результаты показаны на фигуре 26. IC50 для свободного VRB было 1,2 µг/мл, 10 µг/мл для F5-ILs-VRB и 50 µг/мл до ненацеленного Ls-VRB. Это показывает 5-кратное увеличение активности инкапсулированного в липосоме лекарства как функции направленной доставки в клетки.
Пример 50. Цитотоксичность свободного, НЕБД-нацеленного и ненацеленного лпосомального винорелбина в отношении SKBr-3 клеток in vitro.
Липосомы и методы примера 18 использовались для изучения цитотоксичности свободного винорелбина, Ls-VRB и F5-ILs-VRB в НЕР2-суперэкспрессирующих SKBk-3 клетках карциномы молочной железы человека (American Type Culture Collection, Rockville, MD), за исключением того, что клетки выращивали на модифицированной Me Coy 5A среде с 10% фетальной сыворотки теленка в присутствии 5% CO2, помещали в планшеты с концентрацией 5000 клеток/на лунку и лекарства инкубировали с клетками в течение 6 часов.
Результаты показаны на фигуре 27. IC50 для свободного VRB было 0,28 µг/мл, 0,17 µг/мл - для F5-ILs-VRB и 0,8 µг/мл - для ненацеленного Ls-VRB. Это показывает 4,7-кратное увеличение активности лекарства как функции нацеленной доставки.
Пример 51. In vivo противоопухолевая активность липосомального винорелбина в НТ29 ксенотрансплантатах рака кишечника человека, изученная на мышах.
Маленькие униламеллярные (однослойные) липосомы (93,2±26,4 по QELS) готовили из дистеароилфосфатидилхолина, холестерола и PEG-DSPW (3:2:0,045 мольное соотношение) гидратацией из концентрированного этанольного раствора в водный раствор сахарозооктасульфата триэтиламмония (0,6 М триэтиламмоний, рН 5,7-6,2) с последующей неоднократной экструзией через поликарбонатные мембраны (размер пор 100 нм), удалением экстралипосомальной полианионной соли и нагруженном винорелбином путем инкубации липосом в изоосмотическом буфере рН 6,5, соотношение лекарство/липид равно 325 мг VRB) ммоль фосфолипида при 60°С, как описано в примере 42.
Самкам BALB/c гомозиготных бесшерстных мышей (6-8 недель, вес 17-20 г) инъецировали подкожно в боковую область 1×106 НТ-29 клеток карциномы кишечника человека (American Type Culture Collection, Rockville, MD). Начиная с 16-го дня после инокулирования опухоли, когда опухоль достигала в диаметре 5-8 мм, мышей произвольно делили на группы по шесть животных в каждой группе и обрабатывали свободным или липосомальным винорелбином в дозе 5 мг/кг через хвостовую вену каждые три дня, введя в общей сложности четыре инъекции. В контрольной группе мышей обрабатывали равным объемом физраствора. Размер опухоли каждой мыши измеряли с помощью циркуля, а объем опухоли вычисляли по формуле: (длина опухоли) х (ширина опухоли) 2/2. Чтобы оценить токсичность, связанную с лечением, животных взвешивали также дважды в неделю. Было показано, что липосомальный винорелбин, значительно более эффективен в подавлении роста НТ-29 опухолей, чем свободный винорелбин, вызывая регрессию опухолей, в то время как в группах, где применялось свободное лекарство, опухоли по-прежнему продолжали расти (фигура 28). Было небольшое изменение веса животных во время курса лечения, показывающего, что лечение было успешным, хорошо воспринималось и что включение в липосомы не увеличивало токсичности лекарства (фигура 29).
Пример 52. In vivo противоопухолевая активность липосомального винорелбина по отношению к С-26 сингенным опухолям рака кишечника мыши.
Липосомальный винорелбин и свободный винорелбин готовили по примеру 48. Мышам-самцам BALB/c (6-8 недель, вес 17-20 г) вводили подкожно 2×105 С-26 клеток карциномы кишечника мыши. На 17-ый день после инокуляции, когда диаметр опухоли достигал 5-8 мм, мышей произвольно разделили на шесть групп для лечения по 5 животных в группе. Мышам с опухолями инъецировали через хвостовую вену свободный винорелбин в концентрации 6 мг/кг, 8 мг/кг, или 12 мг/кг и липосомальный винорелбин в концентрации 4 мг/кг или 6 мг/кг каждые три дня в виде четырех инъекций. В контрольной группе мышам вводили равный объем обычного физраствора. Размеры опухоли и вес тела животных определяли как в примере 51. Липосомальный винорелбин, даже при 4 мг/кг, был значительно более эффективен в уменьшении роста опухоли, чем свободное лекарство при 12 мг/кг (фигура 30.). Вес тела животных в курсе лечения показал небольшое изменение (<10% уменьшение), показывающее, что токсичность липосомального винорелбина не увеличивалась по сравнению со свободным лекарством (фигура 31).
Пример 53. In vivo противоопухолевая активность HER2 - нацеленного липосомального винорелбина в отношении ВТ-474 трансплантированной опухоли рака молочной железы человека, изученная на мышах: влияние загрузки противоиона.
VRB - нагруженные липосомы размером 99,5±10,2 нм получали ТЕА-Pn методом примера 41 и TEA-SOS методом примера 42 соответственно, при этом не добавлялся [3H]-CHE. VRB загружали при соотношении лекарство/фосфолипид, равном 350 мг/ммоль. НЕК2-нацеленный липосомальный винорелбин получали инкубированием этих липосом с F5-PEG-DSPE конъюгатом (см. пример 19) как описано в примере 43. Трансплантаты ВТ 474 HER2-сверхэкспрессирующей карциномы молочной железы человека выращивали на гомозиготных бесшерстных мышах как в примере 10. На 25-ый день после заражения клетками опухоли, когда опухоли достигали размера почти 200 мм3 (порядка 144-309 мм3), мышей произвольно разделили на четыре группы, по восемь животных в группе и обрабатывали i.v. в дозе 5 мг/кг VRB, F5-ILs-VRB с Pn в качестве противоиона или F5-ILs-VRB с 80S в качестве противоиона при еженедельной дозе 5 мг/кг за все три инъекции. Контрольная группа получала равный объем обычного физраствора. Размер опухоли и вес тела животных регистрировали как в примере 10. HER-2-нацеленной липосомальный винорелбин, загруженный с использованием сахарозооктасульфата, был заметно более эффективным в подавлении роста опухоли, чем точно такой же нацеленный конструкт, загруженный с использованием поли(фосфата), и оба иммунолипосомальных препарата оказались значительно более эффективными, чем свободный винорелбин при введении в дозе 5 мг VRB на кг (фигура 32). Получившие лекарство мыши характеризовались небольшим изменением веса, что показано хорошую переносимость лекарства (фигура 33).
Пример 54. In vivo противоопухолевая активность НЕК2-нацеленного липосомального винорелбина в отношении ВТ-474 трансплантированной опухоли рака молочной железы человека, изученная на мышах: влияние PEG-илирования.
Липосомы на основе DSPC и холестерола при молярном соотношении 3:2 получали согласно примеру 48 гидратацией липидной матрицы DSPC, холестерола и PEG-дистероилглицерина с PEG мол. массы 2000 (GS-20, NOF Corp., Japan) при молярном соотношении 3:2:0,015 («0,5% PEG») или 3:2:0,3 («10% PEG») посредством этанольного метода в водном сахарозооктасульфате триэтиламмония с последующей мембранной экструзией соответственно примеру 48. VRB загружали в липосомы при соотношении лекарство/фосфолипид 350 мг/ммоль. F5 иммунолипосомальный винорелбин получали инкубированием этих липосом с F5-PEG-DSPE конъюгатом (пример 19) как описано в примере 43.
Бесшерстных мышей с введенными ВТ-474 ксенотрансплантатами обрабатывали i.v. свободным VRB, F5-ILs-VRB - «0,5% PEG» или F5-ILs-VRB - «10%PEG» в дозе 5 мг/кг как в примере 53. Как показано на фигуре 34, F5-ILs-VRB с большей степенью PEG-илирования, обеспеченной неионным PEG производным липида PEG-DSG, был значительно более эффективным в подавлении роста опухоли, чем F5-ILs-VRB с более низким количеством PEG-DSG, хотя оба препарата были более активными, чем свободное лекарство.
Пример 55. In vivo противоопухолевая активность EGFR-нацеленного липосомального винорелбина в отношении U87 ксенотрансплантированной опухоли рака мозга человека, изученная на мышах.
Липосомы (размером 86,6±12,9 нм по QELS) с инкапсулированным 0,65 М ТЕА-SOS раствором получали и нагружали VRB согласно примеру 42. Анти-EGFR-иммунолипосомальный VRB (C225 Fab'-ILs-VRB) получали инкубированием VRB липосом с PEG-DSPE конъюгатом Fab'-фрагментов анти-EGFR антитела, как описано в примере 36.
Самцам NCR nu/nu мышей (5-6 недель, 17-20 г) подкожно в область бока инъецировали 1×107 U87 клеток глиобластомы человека (АТСС), суспендированных в ростовой среде при общем объеме 150 µл. Когда опухоль достигла среднего размера 250 мм3, мышей произвольно разделили на четыре группы по 10-12 животных. Трижды в неделю мышам делали i.v. инъекции «свободного» VRB, ненацеленного Ls-VRB или С225 Fab'-ILs-VRB в дозе 5 мг VRB/кг. Контрольная группа получала такой же объем физраствора. Размер опухолей и вес тела животных регистрировались как в примере 10. C225-Fab'-ILs-VRB был значительно более эффективным в подавлении роста трансплантатов EGFR-сверхэкспрессирующей опухоли рака головного мозга человека, чем ненацеленный липосомальный винорелбин и свободный винорелбин в той же дозе (фигура 35).
Пример 56. Получение и фармакокинетика доксорубицина, инкапсулированного в липосомы методом триэтиламмонийсульфата.
Липосомы с различным составом липидной матрицы (как показано в нижеприведенной таблице) получали как описано в примере 2. N-rnyrapHn-DSPE (Glu-DSPE) был от Avanti Polar Lipids, AL, USA. Чистая липидная пленка образовывалась из липидного раствора в хлороформе при роторном испарении, следы летучих веществ удалялись под вакуумом (90 µм Hg, 2 часа), липидную пленку гидратировали в растворе триэтиламмоний-сульфата (TEA-804)/0,65 н TEA), подвергали шести циклам быстрого замораживания и оттаивания и экструдировали через два объединенных поликарбонатных фильтра с размером пор 0,1 µм десять раз и через два объединенных поликарбонатных фильтра с размером пор 0,05 µм десять раз. Для обсчета липидной матрицы в пробах крови в липидную матрицу включали [3H]-CHE при 0,5-1,5 мКи/ммоль фосфолипида. Липосомы с захваченным раствором TEA-SO4 нагружали доксорубицином согласно примеру 2. Липосомы в HEPES-буферном солевом растворе (20 мМ HEPES-Na, 135 мМ NaCl, pH 6,5) инкубировали с гидрохлоридом доксорубицина (при соотношениях лекарство/фосфолипид 140-170 мг/ммоль) при 60°С в течение 45 минут с последующим охлаждением на льду и удалением неинкапсулированного доксорубицина гель-хроматографией. Доксорубицин анализировали спектрофотометрией (пример 71), а анализ фосфолипидов проводили методом Bartlett'a (пример 70).
Свойства полученных в результате липосом объединены в таблице 30, ниже.
Таблица 30. | ||
Свойства липосомального доксорубицина при различных липидных составах. | ||
Липидный состав (мольное соотношение) | Размер липосом, нм (значение ± SD по QELS) | лекарство/фосфолипид (мг/ммоль) |
DSPC/Chol/PEG-DSPE (3:2:0,015) | 81,8±27,3 | 163,6±4,4 |
DSPC/Chol(3:2) | 79,1±27,9 | 137,0±17,5 |
DSPC/Chol/Glu-DSPE (2,85:2:0,015) | 83,6±27,2 | 141,7±10,4 |
DSPC/Chol/PEG-DSPE (2,7:2:0,3) | 83,7±23,1 | 175,0±6,8 |
Пример 57. Доксорубицин-нагруженные липосомы и анти-НЕК2 иммунолипосомы, полученные ТЕА-сульфатным методом: получение и in vivo противоопухолевая активность в отношении НЕК2-сверхэкспрессирующих ксенотрансплантатов рака молочной железы человека.
Доксорубицин-нагруженные липосомы с различным липидным составом и свойствами (перечисленными в таблице, ниже) получали как описано в примере 56. Доксорубицин-нагруженные анти-НЕК2 иммунолипосомы готовили из доксорубицин-нагруженных липосом совместной инкубацией с анти-НЕК2 scFv F5-PEG-DSPE конъюгатом (приблизительно 30 scFv/липосома) как описано в примере 19. На NCR nu/nu мышах выращивались подкожные ксенотрансплантаты (ВТ-474) опухоли молочной железы человека, животных (в группах по 10-12 мышей) обрабатывали липосомальным или анти-НЕК2 иммунолипосомальным доксорубицином в дозе 5 мг/кг еженедельно один раз в течение трех недель, пока опухоли не достигали среднего размера 200 мм3, а рост опухоли и вес тела животных подвергали мониторингу как описано в примере 29. Для составов ненацеленного липосомального доксорубицина изучали липидные композиции, которые не содержали PEG-DSPE, содержали 0,5% моль. PEG-DSPE или 10% моль. PEG-DSPE (здесь количества PEG-DSPE выражены в мольных % к липосомальному фосфолипиду). Результаты (фигура 37, таблица 31) показали, что все процедуры по введению доксорубицина были эффективными в плане торможения роста опухоли. На основе размеров опухоли на 53-ий день после заражения различия в ингибировании роста опухоли среди трех ненацеленных типов липосом не увеличились до статистической значимости (ANOVA ρ=0,08), а иммунолипосомальный доксорубицин был значительно более эффективным, чем ненацеленный липосомальный доксорубицин (ANOVA ρ=5,5×10-10), притом что «10% PEG-DSPE» состав был более эффективным, чем «0,5% PEG-DSPE» (t - тест Стьюдента, ρ=0,027). В «10% PEG-DSPE» F5-ILs группе опухоли регрессировали до 1 мм3 или меньше у 67% животных, тогда как в «0,5% PEG-DSPE» F5-ILs группе только у 9%. В контрольной группе (введение физраствора) опухоли превышали приемлемую предельную степень веса тела на 15% на 38-43 день.
Таблица 31. | |||
Исследование in vivo противоопухолевого эффекта липосомального доксорубицина: характеристики липосом и результаты лечения. | |||
Липидный состав | Размер липосом, нм (значение ± SD) | Соотношение лекарство/фосф олипид, мг/ммоль, (значение ± SD) | Средний размер опухоли на 58 день, мм3 (значение ± SD) |
DSPC/Chol/PEG-DSPE (3:2:0,015) | 83,4±23,3 | 136,7±6,7 | 490±74 |
DSPC/Chol (3:2) | 80,5±26,6 | 151,2±1,9 | 587±61 |
DSPC/Chol/PEG-DSPE (2,7:2:0,3) | 81,0±24,7 | 140,1±4,2 | 365±60 |
DSPC/Chol/PEG-DSPE (3:2:0,015) + F5 scFv-PEG-DSPE | не измеряли | 140,7±2,8 | 119±39 |
DSPC/Chol/PEG-DSPE (2,7:2:0,3)+F5 scFv-PEG-DSPE | не измеряли | 132,9±2,2 | 15,5±7,6 |
Пример 58. Получение липосомального винбластина и фармакокинетика в крови липосомального винбластина у крыс.
Липосомы с захваченным водным раствором TEA-SOS (0,65 М TEA, pH 6,4, осмолярность 502 ммоль/кг) и с размером 99,5±10,2 нм (значение ± SD no QELS) получали способом по примеру 11, используя двукратную экструзию через две объединенные поликарбонатные мембраны с размером пор 0,2 µм и десятикратную через две объединенные поликарбонатные мембраны с размером 0,08 µм. Винбластин (VBL) в форме винбластин-сульфата USP добавляли при соотношении лекарство/фосфолипид 150 мг/ммоль. рН смеси лекарство/липосомы доводили до 6,5, используя 1 н NaOH и смесь затем инкубировали при 60°С в течение 30 минут. Реакцию потом охлаждали на льду в течение 15 минут и неинкапсулированное лекарство удаляли гельфильтрационной хроматографией с Сефадексом G-75, проводя элюцию 5 мМ HEPES-Na, 135 мМ NaCl, pH 6,5. Очищенные липосомы затем подвергали анализу на VBL спектрофотометрией и на фосфолипиды методом Bartlett'a как в примерах 70 и 71. [3Н]-СНЕ включали в состав при соотношении 1,5 мКи/ммоль фосфолипида. Липосомальный винбластин содержал 152,4±12,0 мг VBL/ммоль фосфолипида (количественное инкапсулирование).
Фармакокинетику в крови липосомального винбластина изучали на самках крыс Albino (возраст 8-9 недель, 200 г) при дозе 5 мг VBL/кг как описано в примере 9. Винбластин количественно определяли в пробах плазмы крови как описано в примере 41 (используя винорелбин как внутренний стандарт). Липосомы с винбластином показали хорошую долговечность циркуляции (время полужизни липидного компонента в плазме составило 12,8±0,04 часа) (фигура 38) и очень хорошую стабильность в плане просачиваемости лекарства через липосомы, обеспечивающую после 24 часов сохранение инкапсулированным более чем 70% винбластина по сравнению с первоначальной загрузкой (Фигура 39). Было установлено, что постинъекционное время достижения выделения 50% инкапсулированного лекарства составляло 40,6±1,2 часа.
Пример 59. Получение липосом, нагруженных винкристином с помощью TEA-SOS методам и влияние рН на эффективность включения.
Липосомы с размером 86,6±12,9 нм (по QELS), липидным составом DSPC/Chol/PEG-DSPE в молярном соотношении 3:2:0,015 и захваченным водным раствором TEA-SOS (0,65 М TEA, рН 5,4, осмолярность 521 ммоль/кг) готовили способом примера 11, используя стадию 16-кратной экструзии через две объединенные поликарбонатные мембраны с размером пор 0,08 µм. Винокристин (VCR) добавили к липосомам в 5 мМ HEPES-Na водном буфере с 5% декстрозы, рН 6,5 в виде сульфата винкристина при соотношении лекарство/фосфолипид 350 µг винкристина/ммоль фосфолипида, рН доводили до указанного значения, используя 1 н NaOH, смесь инкубировали при 60°С в течение 30 минут, охлаждали на льду 15 минут и липосомы отделяли от неинкапсулированного лекарства, используя гель-фильтрационную хроматографию на Сефадексе G-75 с элюцией HBS-6,5 (20 мМ HEPES, 135 мМ NaCl, рН 6,5). Очищенные липосомы анализировали затем на винкристин спектрофотометрическим методом при поглощении при 265 нм после солюбилизации в кислом изопропаноле, а на содержание фосфолипидов - методом фосфатов Bartlett'a (1959).
Результаты показаны ниже в таблице 32. Загрузка лекарства была более 90% в интервале рН 4,5-7,5 и практически количественной при рН 5,0-7,5. При рН 3,5, т.е. при рН, который наблюдается в смеси липосом после добавления лекарства, но без доведения рН, степень включения была значительно ниже.
Таблица 32. | ||
рН-зависимость включения винкристина в липосомы с захваченным TEA-SOS | ||
рН | Соотношение лекарство/фосфолипид, µг /µмоль | Эффективность включения (%) |
3,5 | 39,7±4,9 | 11,3±0,2 |
4,5 | 327,2±20,6 | 93,5±5,4 |
5,0 | 360,6±5,8 | 103,0±1,7 |
5,5 | 371,2±30,2 | 106,1±9,1 |
6,0 | 347,7±20,4 | 99,3±5,8 |
6,5 | 347,7±20,9| | 99,4±5,9 |
7,0 | 377,3±22,2 | 107,8±6,8 |
7,5 | 371,5±24,9 | 106,1±7,6 |
Пример 60. Получение липосом, нагруженных винкристином с помощью TEA-SOS метода: влияние соотношения лекарство/липид на эффективность включения.
SOS-TEA - содержащие липосомы получали как в примере 59 и загружали винкристин-сульфатом при соотношении лекарство/фосфолипид 150-550 µг винкристина/рмоль фосфолипида при рН 6,5 в соответствии с процедурой примера 59. Липосомы, отделенные от неинкапсулированного лекарства, затем подвергали анализу на VCR спектрофотометрией и на липосомные фосфолипиды с помощью метода Bartlett'a (1959). Эффективность включения лекарства была выше 90% во всем исследованном диапазоне соотношений лекарство/липид и была практически количественной при 150-450 µг винкристина/µмоль фосфолипида (таблица 33).
Таблица 33. | ||
Включение винкристина в липосомы, содержащие TEA-SOS при различных соотношениях лекарство/липид | ||
Начальное соотношение лекарство/фосфолипид (µг/µмоль) | Инкапсулированные лекарство/фосфолипид (µг/µмоль) | Эффективность включения (%) |
150 | 163,6±6,6 | 109,0±4,8 |
250 | 251,1±17,0 | 100,5±6,8 |
350 | 347,7±20,9 | 99,4±5,9 |
450 | 452,0±18,8 | 100,4±4,2 |
550 | 521,6±24,9 | 94,8±4,3 |
Пример 61. Получение иммунолипосомального винкристина и цитотоксичность липосомального и иммунолипосомального винкристина в отношении раковых клеток in vitro.
Липосомальный винкристин (Ls-VCR) получали как описано в примере 59 при соотношении лекарство/фосфолипид 350 мг/ммоль. НБК2-специфичный F5-иммунолипосомалный винкристин (F5-ILs-VCR) готовили из липосомального винкристина соинкубацией с анти-НЕК2 scPv F5-PEG-DSPE конъюгатом как описано в примере 19. Раствор «свободного» винкристина (VCR) готовили растворением сульфата винкристина USP в воде с последующей стерилизующей фильтрацией. Цитотоксичность VCR, Ls-VCR и F5-ILs-VCR в отношении HER2-сверхэкспрессирующих клеток SKBr-3 (ATCC) карциномы молочной железы человека определяли анализом основанной на МТТ жизнеспособности клеток по процедуре 27, согласно которой клетки инокулировали в 96-луночные микротитровальные планшеты в концентрации 5000 клеток/на лунку, оставляли на ночь, инкубировали со средой, содержащей лекарство, в течение 4 часов, с последующей инкубацией в среде, не содержащей лекарство, в течение 3 дней. Результаты показаны на фигуре 40. IC50 составляла 75 нг/мл для свободного VCR, 11 нг/мл для F5-ILs-VCR и 3 µг/мл для Ls-VCR. Нацеленный липосомальный винкристин, полученный согласно изобретению, бьш в 6,8 раз более активным, чем свободное лекарство, и в 273 раза более активный, чем ненацеленное липосомальное лекарство, показывая значительное увеличение противораковой активности как проявление специфичной в отношении клеток доставки лекарства.
Пример 62. Фармакокинетика Ls-VCR в крови крыс.
Липосомы с захваченным SOS-TEA раствором (0,65 М TEA, pH 5,8, осмолярность 530 ммоль/кг) и липидным составом DSPC/Chol/PEG-DSPE (молярное соотношение 3:2:0,015), содержащим также [3H]-СНЕ при 1,5 мКи/ммоль фосфолипида, готовили способом примера 11, используя стадию 10-кратной экструзии через две объединенные поликарбонатные мембраны с размером пор от 80 до 100 нм. Липосомы загружали VCR при pH 6,5, соотношении лекарство/фосфолипид 350 мг/ммоль, как описано в примере 59. VCR-нагруженные липосомы вводили i.v. самкам Albino крыс (180-220 г) при дозе 5 мг VCR/кг, и фармакокинетику лекарства и липосомного липида в крови изучали как описано в примере 9. Количество VCR в пробах крови определяли ВЭЖХ как описано в примере 41, за исключением того, объемное соотношение водного ацетата триэтиламмония (pH 5,5) и ацетонитрила в подвижной фазе было 65:35. Типичное время удерживания составляло для VCR 8,8 мин. Результаты показаны на фигуре 41 и в таблице 34. Оба препарата имели большую долговечность циркуляции (время полужизни в крови составляло 12-17 часов). Липосомальный винкристин был замечательно стабилен в отношении утечки лекарства в обоих препаратах (время полужизни более 120 часов) (фигура 42).
Таблица 34. | |||||
Характеристики липосом, нагруженных винкристином при 350 мг/ммоль фосфолипида с использованием TEA-SOS метода. | |||||
Экструзия, размер пор, нм | Размер липосом, нм (значение ± SD) | Загрузка лекарства, мг/ммоль фосфолипида | t1/2β липида, часы | t1/2β VCR, часы | t1/2 выделения VCR, часы |
80 | 101,2±20,2 | 347,7±20,93 | 17,5±1,5 | 16,0±2,0 | >120 |
100 | 125,6±32,0 | 366,8±18,11 | 12,1±0,7 | 12,0±0,8 | Не определено |
Пример 63. Фармакокинетика Ls-VCR в крови крыс при различных соотношениях лекарство/липид.
Липосомы с захваченным SOS-TEA раствором (0,65 М TEA, pH 6,4 осмолярность 485 ммоль/кг) и липидным составом DSPC/Chol/PEG-DSPE (молярное соотношение 3:2:0,015), содержащим также [3H]-СНЕ при 1,5 мКи/ммоль фосфолипида, получали по способу примера 11 с использованием 10-кратной экструзии через две объединенные поликарбонатные мембраны с размером пор 50 нм или 80 нм. Липосомы загружали винкристином при pH 6,5 как описано в примере 59 добавлением исходного 20 мг/мл водного раствора сульфата винкристина при вычисленном соотношении лекарство/липид 100,200 или 350 мг/ммоль фосфолипида. Эффективность загрузки лекарства была выше 96% для всех препаратов. VCR-нагруженные липосомы вводили i.v. самкам Albino крыс (возраст 8-9 недель, 190-220 г) в дозе 5 мг VCR/кг, и фармакокинетику лекарства и липосомного липида в крови изучали как описано в примере 62. Результаты показаны в таблице 35. Липосомальный винкристин имел хорошую долговечность циркуляции (время полужизни лекарства составило около 20-30 часов) и был исключительно стабильным при всех исследованных размерах (липосом) и соотношениях лекарство/липид (время выделения ½ лекарства было свыше 93 часов).
Таблица 35. | ||||||
Характеристики липосом, нагруженных винкристином с использованием TEA-SOS метода, при различных соотношениях лекарство/липид. | ||||||
Экструзия, размер пор, нм | Размер липосом, нм (значение± SD) | VCR, мг/ммоль фосфолипида | t1/2 липида, часы | t1/2 VCR, часы | t1/2 выделения лекарства, часы | |
добавленный | инкапсулированный | |||||
50 | 76,8±27,2 | 100 | 96,1±3,0 | 35,6±2,7 | 30,3±4,0 | 227±96 |
50 | -»- | 200 | 193,3±3,9 | 20,8±2,2 | 18,4±0,7 | 244±130 |
50 | -»- | 350 | 375,2±10,0 | 24,8±0,9 | 19,6±0,9 | 93,2±6,7 |
80 | 101,6±25,3 | 100 | 104,5±2,1 | 33,0±7,6 | 26,8±4,8 | 153±10 |
Пример 64. Получение НЕК2-нацеленного липосомального винкристина и противоопухолевая активность ненацеленного и НЕК2-нацеленного липосомального винкристина в отношении НЕК2-сверхэкспрессирующих ксенотрансплантатов опухоли рака молочной железы человека у мышей.
Винкристин-нагруженные липосомы (Ls-VCR-SOS) были получены с использованием TEA-SOS метода по примеру 63 (с исключением [3H]-CHE компонента) с помощью экструдирования через мембрану с размером пор 50 нм и загрузки лекарства при соотношении лекарство/фосфолипид 100 мг/ммоль. F5 иммунолипосомальный винкристин (F5-ILs-VCR) получали инкубированием Ls-VCR-SOS с анти-НЕР2 scFv F5-PEG-DSPE конъюгатом (пример 19) как описано в примере 43. Винкристин-нагруженные липосомы с использованием ТЕА-цитрата (Ls-VCR-Cit) были получены подобно Ls-VCR-SOS липосомам, за исключением того, что раствором цитрата триэтиламмония (полученным титрованием водной лимонной кислоты чистым триэтиламином до рН 5,1; и доведением концентрации до 0,65 М триэтиламина) был заменен TEA-SOS раствор. Схема исследования соответствовала способу примера 10. Подкожные опухоли ксенотрансплантатов ВТ-474 клеток карциномы молочной железы человека выращивали в бесшерстных мышах и, когда размер опухоли достигал 250 мм3 (порядка 144-309 мм3), мышей в группах по 8-9 животных обрабатывали свободным VCR, Ls-VCR или F5-ILs-VCR раз в неделю i.v. при дозе 2 мг VCR/кг в течение трех недель, начиная с 19-го дня после заражения клетками опухоли. Размеры опухоли и вес тела животных регистрировали как описано в примере 10. В контрольной группе мыши получали физраствор в том же объеме. Различия в размерах опухоли между группами, получавшими лечение, статистически оценивали на 63-ий день после инокуляции опухоли, используя Mann-Whitney тест. Динамика среднего размера опухоли в группах показана на фигуре 43. F5-ILs-VCR продемонстрировал максимальную эффективность по сравнению и с Ls-VCR, и со свободным VCR, вызывая к 63-ему дню полную регрессию опухоли у шести из восьми животных (75%). Ls-VCR-Cit также был эффективным, вызывая полную регрессию опухоли у еще наблюдавшихся на 63-ий день у двух из девяти животных (22%), однако, он был менее эффективным, чем F5-ILs-VCR (ρ<0,005). Ls-VCR-SOS и свободный VCR были одинаково эффективны (ρ<0,2) и менее эффективны, чем F5-ILs-VCR или Ls-VCR-Cit. Таким образом, удивительно, что при клеточной направленности доставки лекарства липосомальное лекарство, инкапсулированное с использованием поливалентного аниона настоящего изобретения, показало большую эффективность, чем лекарство, включенное в липосому с помощью несвязывающего аниона. Динамика веса животных показала, что все липосомальные препараты VCR были менее токсичны, чем свободный VCR, вызывая меньшую потерю веса в процессе лечения (фигура 44).
Пример 65. Получение EGFR-нацеленного липосомального винкристина и противоопухолевая активность ненацеленного и EGFR-нацеленного липосомального винкристина в отношении EGFR-сверхэкспрессирующих ксенотрансплантатов рака мозга человека, изученная на мышах.
Винкристин-нагруженные липосомы (Ls-VCR) получали, используя TEA-SOS метод, как в примере 64, EGFR-нацеленный иммунолипосомальный винкристин получали соинкубацией липосом с анти-НЕР2 Fab' C225 Fab-PEG-DSPE конъюгатом как описано в примере 36.
Самцам NCR nu/nu мышей (5-6 недель, весом 17-20 г) подкожно инъецировали в область бока 0,15 мл культуральной среды для роста клеток, содержащей 1×107 U87 клеток глиобластомы человека, стабильно экспрессирующих мутантный рецептор EGFR vIII эпидермального фактора роста (HER1). Но 11-ый день, когда значение размера опухоли достигло 300-400 мм3, мышей произвольно разделили на четыре группы по 10-12 животных в группе. Лечение свободным VCR (сульфат винкристина в физрастворе - 1 мг/мл), Ls - VCR или C225Fab-ILs-VCR при i.v. дозе 1,5 мг/кг проводили на 11,18 и 25 дни после инокуляции опухоли. Мышам в контрольной группе аналогично вводили равный объем физраствора. Размеры опухоли и вес тела животных регистрировали как в примере 10. Результаты показаны на фигуре 45. Все животные, получившие препараты VCR, показали замедление роста опухолей, сравнимое с контрольными животными. Значительной разницы между группами, леченными свободным винкристином и Ls-VCR, не наблюдалось. EGFR-нацеленный C225Fab-ILs-VCR был более эффективен, чем свободный или ненасыщенный липосомальный VCR.
Пример 66. Получение липосом с захваченным раствором инозитолгексафосфататриэтиламмония.
Полианионизированный полиол, додеканатриевая соль инозитолгексафосфата (TEA-IHP), был получен от Sigma (St. Louis, МО). Водный раствор, содержащий 0,65 М триэтиламмония и 0,681 М фосфатных групп, рН 6,5, осмолярность 718 ммоль/кг, готовили ионным обменом используя поперечносшитую сульфополистирольную смолу Dowex 50Wx8-200 с последующим титрованием чистым TEA и разбавлением водой согласно способу примера 4. Остаточное содержание натрия было меньше, чем 1% от суммы катионов. Сухие липиды (150 цмоль DSPC, 100 µмоль Chol, 0,75 µмоль PEG-DSPE) растворяли в 0,5 мл 100% этанола USP при 60°С и смешивали с 4,5 мл раствора инозитолгексафосфата триэтиламмония, предварительно нагретого до той же температуры. Этанол частично удаляли роторным испарением при 30-40 мм Hg и 40-45°С, пока смесь не прекращала кипеть. Липидную суспензию затем экструдировали при 60-65°С 15 раз через две объединенные поликарбонатные мембраны с размером пор 0,1 µм. Полученные липосомы имели размер 104,3±39,0 нм по QELS. Неинкапсулированный IHP триэтиламмония удаляли гельхроматографией на колонке с Сефарозой 4В с элюцией 5 мМ HEPES-Na буфером 5% декстрозы, рН 6,5, и липосомы анализировали на количественное содержание фосфолипидов методом Bartlett'a с экстракцией согласно примеру 70.
Пример 67. Загрузка лекарств в липосомы с захваченным раствором ТЕА-IHP.
Липосомы примера 67 нагружали СТР11 или винорелбином. Винорелбин загружали при соотношении лекарство/фосфолипид 175 или 350 г/моль, а СРТ-11 при соотношении 250 или 500 г/моль. Лекарства добавляли к липосомам в HEPES-декстрозном буфере (пример 67) при начальных соотношениях лекарство/фосфолипид, показанных ниже (см. таблицу 36). Если необходимо, рН доводили до 6,5-6,8 с помощью 1 н NaOH. Смеси инкубировали при 60°С в течение 30 минут, охлаждали на льду 15 минут и хроматографировали на гельфильтрационной колонке с Сефадексом G-25 с элюцией 5 мМ HEPES-Na, 145 мМ NaCl, рН 6,5. Аликвоты очищенных липосом солюбилизировали в подкисленном метаноле и анализировали спектрофотометрией (пример 71). Фосфолипиды количественно оценивали методом Bartlett'a (1959) с экстракцией (пример 70). Оба лекарства включались в липосомы количественно (т.е. практически 100%), как показано ниже, в таблице 36.
Таблица 36. | |||
Свойства лекарств, включенных в липосомы с захваченным инозитолгексафосфатом. | |||
Лекарство | Начальное соотношение лекарство/липид, г/моль фосфолипида | Соотношение инкапсулиров. лекарство/липид, г/моль фосфолипида | Эффективность загрузки,% |
Винорелбин | 175 | 175,3±8,0 | 100,2±4,5 |
Винорелбин | 350 | 352,3±11,8 | 100,6±3,3 |
СРТ-11 | 250 | Зб5,1±11,2 | 106,1±4,7 |
СРТ-11 | 500 | 518,7±27,8 | 103,7±5,8 |
Пример 68. Химическая стабильность свободного или липосомального СРТ-11 в присутствии мышиной плазмы in vitro.
СРТ-11, который является пролекарством, в организме подвергается химической трансформации и превращается в активное лекарство, известное как SN-38. И SN-38, и СРТ-11 превращаются также из их активных лактонных форм в неактивные продукты, известные как SN-38 - или СРТ-11-карбоксилаты. В этом примере изучалось влияние включения в липосомы СРТ-11 в соответствии с настоящим изобретением на химическое превращение СРТ-11 в эти продукты в присутствии плазмы крови. Липосомы с захваченным сахарозооктасульфатом триэтиламмония (0,65 М TEA, pH 6,4, осмолярность 485 ммоль/кг) и липидным составом, включающим DSPC, холестерол и PEG-DSPE в молярном соотношении 3:2:0,015, готовили согласно примеру 11, используя 10-кратную экструзию через два объединенных поликарбонатных фильтра с размером пор 0,08 цм. Получали липосомы с размером 87,4±19,2 нм по QELS. СРТ-11 загружали при соотношении примерно 500 мг СРТ-11 основания на ммоль липосомного фосфолипида инкубацией в водном 5 мМ HEPES-Na, 5% декстрозы, pH 6,5, при 60°С в течение 30 минут с последующим охлаждением на льду в течение 15 минут. СРТ-11-нагруженные липосомы затем очищали на колонке с Сефадексом G-75 с элюцией HEPES-солевым буфером (5 мМ HEPES, 145 мМ NaCl, pH 6,5). Полученные липосомы содержали 536,5±20,1 мг СРТ-11 на ммоль фосфолипида. Раствор свободного СРТ-11 готовили непосредственно растворением гидрохлорида Иринотекана USP в концентрации 1 мг/мл в 144 мМ водного NaCl, подкисленного разбавленной HCl до pH 3. Десяти - µл аликвоты свободного или липосомального СРТ-11 или свободного СРТ-11 смешивали с 90 µм стабилизированной гепарином плазмы мышей (Harlan Bioproducts, USA) и инкубировали при 37°С в водяной бане со встряхиванием. В определенные моменты времени образцы липосом, в трех повторностях, хроматографировали на колонках с Сефарозой CL-4B, с исключением по размеру (2 мл объема слоя) с элюцией HBS-6,5 и фракции, содержащие лекарство, определяли флуоресценцией. Первый (свободный объем) и второй (замыкающий) пики, содержащие лекарство, собирали и считали их включенными в липосомы фракциями, которые выделяют лекарство. Эти образцы экстрагировали 400 µл ледяного метанола при перемешивании (Vortex) в течение 10 с с последующим центрифугированием при 14000 g в течение 5 минут. Супернатанты исследовали на СРТ-11 и продукты его превращения методом ВЭЖХ, используя модификацию Wamer и Burke, J. Chromatogr. Ser. В Biomed. Sci. Appl. 1997, vol.691, p.161-71. Подвижная фаза состояла из 3% ацетата триэтиламмония рН 5,5 (раствор А) и ацетонитрила (раствор В), выходящих со скоростью 1,0 мл/мин при линейном градиенте от 20% об. В до 50% об. В за 14 минут.Элюированные продукты определяли флуоресценцией с возбуждением при 375 нм и эмиссии при 500 нм. Время удерживания составило 5,3 мин. (СРТ-11 карбоксилат), 6,8 мин. (SN-38 карбоксилат), 9,3 мин. (СРТ-11) и 11,0 мин. (SN-38). Результаты (таблица 37) показали, что, несмотря на то, что свободный СРТ-11 и СРТ-11, выделенный из липосом, подверглись превращению, внутрилипосомальный СРТ-11 оставался абсолютно стабильным.
Таблица 37. | |||||
Превращение свободного и липосомального СРТ-11 в SN-38 и карбоксилатные формы в плазме мышей in vitro | |||||
Образец | Время, часы | СРТ-11,% | SN-38, % | ||
лактон | карбоксилат | лактон | карбоксилат | ||
Свободный | 2 | 1,9±0,4 | 35,2±1,9 | 4,4±0,1 | 58,4±2,1 |
СРТ-11 | 12 | 0,1 | 11,5±0,9 | 9,9±0,8 | 78,6±1,3 |
24 | 0,1 | 0,1 | 22,5±9,8 | 77,5±9,9 | |
Ls-CPT-11 | 12 | 97,7±0,1 | 0,1 | 2,3±0,1 | 0,1 |
(инкапсулированный) | 24 | 97,7±0,1 | 0,1 | 2,3±0,1 | 0,1 |
Ls-CPT-11 | 12 | 60,5±10,4 | 25,0±7,1 | 5,0±0,3 | 9,5±3,0 |
(выделенный) | 24 | 78,3±6,7 | 14,0±5,2 | 6,5±0,5 | 1,2±1,7 |
Пример 69. In vivo химическая стабильность свободного или липосомального СРТ-11, изученная на крысах.
Липосомальный СРТ-11 получали как в примере 68, используя сахарозооктасульфат триэтиламмония с 0,65 М TEA, pH 6,4 и осмолярностью 502 ммоль/кг. Размер липосом был 98,5±18,4 нм. и инкапсулирование СРТ-11 осуществлялось при 510,1±16,5 мг СРТ-11/ммоль фосфолипида. Липосомальный и свободный СРТ-11 вводили внутривенно в дозе 25 мг/кг самкам крыс Albino (180-220 г) с установленным в центральную вену катетером и пробы крови отбирали через определенные интервалы времени в течение периода 48 часов. Пробы крови смешивали с ледяным PBS, содержащим 0,04% ЭДТА, и быстро отцентрифутировали, чтобы удалить клетки крови. Аликвоты супернатанта исследовали на СРТ-11, SN-38 и их карбоксилатные производные с помощью ВЭЖХ как в примере 68. Результаты показаны на фигурах 46 и 47. В то время как СРТ-11 очищался очень быстро при отсутствии детектируемости спустя 30 минут, Липосомальный СРТ-11 был непрерывно циркулирующим (t1/2 15,2 часа) с 37,8% лекарства в крови на 24-ом часу и спустя 18 часов приблизительно 10% лекарства еще было в кровотоке. Недетектируемой оказалась конверсия липосомальной формы СРТ-11, SN-38, а также карбоксилатная форма СРТ-11. Свободный СРТ-11, например вводимый в виде раствора, исчезал из кровотока совсем быстро (время полужизни составляло около 16 минут) и конверсия лекарства до карбоксилатной формы была заметной.
Пример 70. Количественный учет фосфолипидов в липосомах.
Модифицированный метод I кислотного расщепления голубым фосфомолибдатом.
Этот метод был модифицирован Bartlett (1959).
10-20 мл аликвот липосом помещают в пробирки из термоустойчивого стекла, подвергают расщеплению, нагреванием с 0,5 мл 10 N серной кислоты в течение 2 часов при 110-130°С, минерализуют добавлением 50 мл 9% пероксида водорода и нагревают еще 30 минут, пока не прекращается выделение пероксида водорода, детектируемое с помощью бумажной полоски. Образцы после расщепления разбавляют при комнатной температуре 1 мл 0,2% водного молибдата аммония, смешивают с 0,1 мл 5% водной аскорбиновой кислоты и инкубируют в кипящей водяной бане в течение 10 минут. Поглощение восстановленного фосфомолибдатного комплекса измеряют при 800 нм и сравнивали с калибровочной кривой, конкурентно полученной с использованием стандартных растворов неорганического фосфата.
Модифицированный метод II кислотного расщепления голубым фосфомолибдатиом.
Этот метод является модификацией метода Morrison (1964). 5 µл аликвоты липосом, содержащих 1-10 мМ фосфолипида, смешивают с 60 µл концентрированной серной кислоты и 10 µл 30% пероксида водорода в пробирках из термоустойчивого стекла. Смеси нагревают при 200-220°С в течение 10 минут, разбавляют 0,7 µл деионизированной воды, смешивают с 10 µл 10% водного сульфита натрия, инкубируют в кипящей водяной бане в течение 5 минут и охлаждают при комнатной температуре. Добавляют 260 µл 2% водного молибдата аммония и 10 µл 10% водной аскорбиновой кислоты, пробы инкубируют в кипящей водяной бане 10 минут. Пробы быстро охлаждают до комнатной температуры и поглощение восстановленного фосфомолибдатного комплекса определяют при 825 нм по сравнению со слепым опытом. Количество фосфолипида определяют по калибровочной кривой, полученной в тех же условиях при использовании стандартных растворов с 2, 4, 6, 8 и 10 мМ дигидрофосфата натрия.
Экстракционный метод. 25-100 µл аликвоты липосом экстрагируют 3 раза 200 µл порциями смеси метанол-хлороформ (1:2 по объему). Органические фазы собирают в пробирку из термоустойчивого стекла, растворители удаляют в вакууме. Остатки обрабатывают Юн серной кислотой и затем определяют фосфор по вышеприведенному методу I.
Если иное не оговорено, результаты анализов представлены как значение ± стандартное отклонение (полученное на основе трех повторностей).
Пример 71. Количественное определение лекарства в липосомах.
Спектрофотометрическое количественное определение.
Аликвоты липосом (10-50 µл) смешивают с 1 мл 70% об. водного изопропанола, содержащего 0,075-0,1 н HCl и измеряют поглощение против слепого опыта при следующих длинах волн: доксорубицин - 485 нм; СРТ-11 и топотекан - 372 нм, эллиптицины - 306 нм, винорелбин - при 270 нм, винкристин и винбластин - 265 нм. Количество лекарства определяют в сравнении с построенной конкурентно калибровочной кривой.
Флуорометрическое количественное определение.
Аликвоты липосомсодержащих проб (например, плазмы крови) разбавляют подкисленным изопропанолом (0,02 - 0,1 нм аликвоты: 1 мл 70% изопропанол - 0,075 н HCl; >0,1 мл аликвоты: 90% изопропанол - 0,1 н HCl до 1 мл). Если происходит осаждение белков, пробы инкубируют на льду в течение 1-2 часов и очищают центрифугированием в течение 10 минут при 12100×g. Флуоресценцию супернатантов измеряют при следующих длинах волн: СРТ-11, возбуждение 370 нм, излучение 423-425 нм; Топотекан, возбуждение 380-385 нм, возбуждение (эмиссия ?) 520-525 нм; эллиптицины, возбуждение 306 нм, излучение 520 нм. Содержание лекарства вычисляют по конкурентно построенным калибровочным кривым после вычитания значений холостого опыта.
Пример 72. Влияние липополимеров на эффективность включения винорелбина в липосомы.
Липосомы, в состав которых входили DSPC - 200 мольных частей, холестерол - 133 мольные части и липиды на основе поли(этиленгликоля) (мол. масса 2000) PEG-DSPE (1-20 мольных частей или PEG-DSG (20 мольных частей) и содержащие инкапсулированный 0,65 М раствор TEA-SOS, получали в соответствии со способом примера 11, используя при экструзии мембрану с размером пор 80 нм. Липосомы загружали винорелбином при соотношении лекарство/фосфолипид. 350 мг/ммоль и очищали от невключенного лекарства согласно способу по примеру 40. В липосомах определяли содержание лекарства и липида, как описано в примерах 70, 71, и размер липосом по QELS с использованием Gaussian принципа тождественности объема весу. Результаты (таблица 38) показали, что хотя анионное PEG-производное, PEG-DSPE в количестве менее 1% моль липосомного фосфолипида (0,3% моль от общего липидного содержания) оказывало отрицательное воздействие на эффективность включения лекарства в липосомы, нейтральное производное, PEG-DSG не оказывало влияния на эффективность включения даже при концентрации 9,1% моль. от общего содержания фосфолипида в липосомах (5,7% моль. от общего липидного количества).
Таблица 38. | ||||
Свойства липосом с винорелбином, полученных TEA-SOS способом при различном содержании PEG-липидных производных. | ||||
PEG-липид | Количество PEG-липида, мол.% к общему липидному содержанию | Размер липосом, нм (значение ± SD) | Загрузка лекарства, мг/ммоль фосфолипида | Эффективность включения, % инкапсулирования |
PEG-DSPE | 0,3 | 108±32 | 359,5±17,8 | 102,7±5,2 |
PEG-DSPE | 0,6 | 110±18 | 346,6±14,5 | 99,0±4,1 |
PEG-DSPE | 1,8 | 104±35 | 332,0±14,0 | 94,9±3,8 |
PEG-DSPE | 2,9 | 94±33 | 259,8±9,5 | 74,2±2,0 |
PEG-DSPE | 4,0 | 100±36 | 155,4±7,0 | 44,4±0,9 |
PEG-DSPE | 5,7 | 103±31 | 61,2±5,2 | 17,5±0,3 |
PEG-DSG | 5,7 | 97±36 | 362,7±14,2 | 103,6±4,2 |
Пример 73. Влияние внутрилипосомального захватывающего лекарство агента на долговечность сохранения СРТ-11 в кровотоке, исследованное на мышах.
Липосомы с захваченным 0,65 н растворами инозитолгексафосфата (IHP, фитиновая кислота) триэтиламмония (TEA) или триэтаноламмония (ТЕОА) или сахарозооктасульфата TEA или ТЕОА получали и нагружали СРТ-11 при 500 г/моль фосфолипида с последующими общими приемами примера 66. Эти липосомы внутривенно вводили Swiss-Webster мышам в дозе 5 мг СРТ-11/кг веса. Через 24 часа мышей подвергали анестезированию и обескровливали пункцией сердца. Кровь собирали, анализировали на содержание СРТ-11 в плазме крови путем ВЭЖХ, как описано в примере 68, и количество лекарства, оставшегося в крови, выражали в % от инъецируемой дозы (% ID). TEAO-IHP был менее эффективен в повышении долговечности сохранения лекарства в крови, чем TEA-IHP, TEOA-SOAS и TEA-SOS (Таблица 39).
Таблица 39. | |
Остаток СРТ-11 в крови через 24 часа после внутривенного введения мышам липосом с СРТ-11. | |
Внутрилипосомальный захватывающий лекарство агент | % ID оставшаяся в крови |
ТЕОА-IHP | 2,74±0,54 |
ТЕА-IHP | 5,86±0,20 |
TEOA-SOS | 7,03±0,17 |
TEA-SOS | 11,32±0,46 |
Пример 74. Включение лекарства в липосомы, содержащие 1,05 н сахарозооктасульфатдиэтиламмония.
Водный раствор 1,05 н сахарозооктасульфата диэтиламмония (DEA-SOS), рН 6,0, осмолярнось 727 ммоль/кг, получали путем ионного обмена/титрования по примеру 6, используя чистый диэтиламин (99,5% чистоты). Липидную матрицу составляли из 3 мольных частей DSPC, 2 мольных частей холестерола и 0,015 мольных частей PEG-2000-DSPE для липосом (средний размер 92,4 нм по методу «объем-вес») в присутствии раствора DEA-SOS и загружали СРТ-11 в липосомы при различных исходных соотношениях лекарство/липид, используя способ примера 11. Неинкапсулированное лекарство удаляли гель-хроматографией, а количество инкапсулированного лекарства на единицу липида (конечное соотношение лекарство/липид) определяли. Эффективность инкапсулирования вычисляли как % конечного соотношения лекарство/липид к начальному соотношению. Результаты показаны в таблице 40. Уровень загрузки достигал своего максимума приблизительно 1,76 моль лекарства на моль фосфолипида (1,67-1,70 моль лекарства/г общего липида), что хорошо согласуется с содержанием (1,78 моль диэтиламмония/моль фосфолипида), основанным на содержании диэтиламмония в липосомах, допуская стехиометрический обмен интралипосомальных ионов диэтиламмония на молекулы лекарства и вычисленным объемом захвата внутри липосом, представляющим приблизительно 1,7 л/моль фосфолипида.
Таблица 40. | ||
Включение СРТ-11 в DSPC/Chol/PEG-DSPE липосомы, содержащие 1,05 н DEA-SOS. | ||
Начальное соотношение лекарство/липид, моль/г | Конечное соотношение лекарство/липид, моль/г | Эффективность инкапсуляции, % |
1,25 | 1,247±0,038 | 99,8±3,0 |
1,50 | 1,534±0,052 | 102,3±3,5 |
1,80 | 1,669±0,043 | 92,7±2,4 |
2,06 | 1,690±0,054 | 82,0±2,6 |
2,20 | 1,704±0,062 | 77,5±2,8 |
2,42 | 1,685±0,103 | 69,6±4,3 |
Если не указано иное, результаты анализов представлены как значение ± стандартное отклонение трех повторностей. Фармакокинетические данные в плазме крыс представлены как значение ± стандартное отклонение двух повторностей.
Хотя изобретение описано с отсылкой к предпочтительному в настоящий момент варианту осуществления, следует понимать, что могут быть сделаны различные модификации без искажения идеи изобретения. Соответственно объем изобретения следует определять согласно прилагаемой формуле изобретения вместе с полнообъемными эквивалентами, к которым относятся пункты формулы изобретения. Ссылки на полное содержание всех цитируемых статей и ссылок, включая описания к патентам и патентным заявкам, включены здесь для использования в любых целях.
Claims (66)
1. Композиция, представляющая собой липосому в среде, имеющую внутреннее пространство, отделенное от среды мембраной, включающей один или несколько липидов, причем внутреннее пространство липосомы содержит катионный антинеопластический терапевтический агент, а также полиол или сахар, полианионизированный с помощью, по меньшей мере, двух сильноанионных функциональных групп, причем сахар представляет собой моносахарид или дисахарид, в которой катионный агент и полианионизированный полиол или полианионизированный сахар имеют форму кислоты или соли, а также содержатся внутри липосомы, где композиция представляет собой лекарственную форму для парентерального введения.
2. Композиция по п. 1, в которой, по меньшей мере, одна из сильноосновных функциональных групп представляет собой эфир серной кислоты, эфир фосфорной кислоты, эфир борной кислоты, группу сульфокислоты, группу фосфоновой кислоты, группу тиокарбоновой кислоты или группу дитиокарбоновой кислоты.
3. Композиция по п. 1, в которой моносахарид выбран из группы, состоящей из арабинозы, рибозы, ксилозы, глюкозы, галактозы, сорбозы и фруктозы, дисахарид выбран из группы, состоящей из мальтозы, сахарозы, лактозы и трегалозы, а полиол выбран из группы, состоящей из этиленгликоля, пропиленгликоля, глицерина, треитола, эритритола, пентаэритритола, рибитола, арабитола, сорбитола, маннитола, лактитола, мальтитола, фруктитола, глюцитола, ксилитола или инозитола.
4. Композиция по п. 1, в которой полианионизированный сахар является сахарозооктасульфатом, имеющим от 3 до 8 сульфатных групп на молекулу, а полианионизированный полиол представляет собой инозитол полифосфат.
5. Композиция по п. 4, в которой полианионизированный сахар представляет собой сахарозооктасульфат, а инозитол полифосфат представляет собой инозитол гексафосфат.
6. Композиция по п. 1, в которой терапевтический агент содержится во внутреннем пространстве в концентрации, которая превосходит концентрацию вещества в среде.
7. Композиция по п. 1, в которой среда практически свободна от терапевтического агента.
8. Композиция по п. 1, в которой, по меньшей мере, 90% терапевтического агента остается инкапсулированным в липосоме спустя 6 месяцев при температуре 2-8°C.
9. Композиция по п. 1, в которой, по меньшей мере, 80% терапевтического агента остается инкапсулированным в липосоме спустя 2 года при температуре 2-8°C.
10. Композиция по п. 1, в которой терапевтический агент содержится в липосомах композиции при первом соотношении вещество/липид, а также спустя 24 часа после введения композиции в кровоток млекопитающего терапевтический агент остается внутри липосом при втором значении соотношения вещество/липид, которое составляет свыше 50%, по меньшей мере, 60%, или по меньшей мере 70% от первого соотношения вещество/липид.
11. Композиция по п. 10, отличающаяся тем, что млекопитающее является крысой.
12. Композиция по п. 1, имеющая мольное соотношение антинеопластический терапевтический агент/липид, равное, по меньшей мере, приблизительно 0,10, причем липосомная композиция имеет in vivo антинеопластическую активность, по крайней мере, в четыре раза выше, чем антинеопластическая активность вещества в свободной, нелипосомальной форме, а токсичность липосомной композиции, введенной млекопитающему, равна или меньше токсичности вещества, введенного млекопитающему, в свободной, нелипосомальной форме.
13. Композиция по п. 12, в которой токсичность липосомной композиции, введенной млекопитающему, по меньшей мере, в два раза меньше или, по меньшей мере, в три раза меньше токсичности антинеопластического терапевтического агента, введенного млекопитающему в свободной, нелипосомальной форме.
14. Композиция по п. 12, в которой токсичность липосомной композиции, введенной млекопитающему, по меньшей мере, в четыре раза меньше токсичности антинеопластического терапевтического агента, введенного млекопитающему в свободной, нелипосомальной форме.
15. Композиция по п. 1, в которой антинеопластический терапевтический агент является ингибитором камптотецин-топоизомеразы I или его камптотециновым пролекарством.
16. Композиция по п. 15, в которой ингибитором камптотецин-топоизомеразы I является иринотекан.
17. Композиция по п. 15, при введении которой в кровоток млекопитающего время полувыведения антинеопластического терапевтического агента из липосом составляет, по крайней мере, 10 часов.
18. Композиция по п. 15, при введении которой в кровоток млекопитающего время полувыведения антинеопластического терапевтического агента из липосом составляет, по крайней мере, 24 часа.
19. Композиция по п. 15, в которой полианионизированный сахар является сахарозооктасульфатом, имеющим от 3 до 8 сульфатных групп на молекулу, а полианионизированный полиол представляет собой инозитол полифосфат.
20. Композиция по п. 19, в которой полианионизированный сахар представляет собой сахарозооктасульфат, а инозитол полифосфат представляет собой инозитол гексафосфат.
21. Композиция по п. 15, в которой ингибитор топоизомеразы захвачен в липосому при концентрации, составляющей, по меньшей мере, от приблизительно 0,1 до приблизительно 2,0 моль препарата на моль липида.
22. Композиция по п. 21, в которой ингибитор топоизомеразы захвачен в липосому при концентрации, составляющей, приблизительно от, по меньшей мере, 0,15 моль препарата на моль липида до приблизительно 1,5 моль препарата на моль липида.
23. Композиция по п. 18, отличающаяся тем, что млекопитающее представляет собой мышь.
24. Композиция по п. 12, у которой антиопухолевую активность определяют in vivo на НТ-29 опухолевой модели или на ВТ-474 опухолевой модели.
25. Композиция по п. 17 или 18, отличающаяся тем, что млекопитающее представляет собой крысу.
26. Композиция по п. 1, в которой липиды включают липидное производное - продукт взаимодействия липида с гидрофильным полимером.
27. Композиция по п. 26, в которой содержание липидного производного - продукта взаимодействия липида с гидрофильным полимером - составляет до 20% моль от общего содержания липидов.
28. Композиция по п. 26, в которой содержание липидного производного - продукта взаимодействия липида с гидрофильным полимером - составляет менее 1% моль от общего содержания липидов.
29. Композиция по п. 26, в которой липосома обладает долговечностью циркуляции в крови млекопитающего менее чем в 2 раза более высокой, чем долговечность циркуляции липосомы идентичного состава, не содержащей липидного производного с гидрофильным полимером.
30. Композиция по п. 29, отличающаяся тем, что млекопитающее представляет собой крысу.
31. Композиция по п. 28, в которой липидное производное с гидрофильным полимером содержится в количестве от приблизительно 0,1% моль до приблизительно 0,9% моль от общего содержания липидов.
32. Композиция по п. 31, в которой гидрофильный полимер представляет собой поли(этиленгликоль).
33. Композиция по п. 32, в которой липидное производное с гидрофильным полимером представляет собой поли(этиленгликольное) производное фосфолипида, поли(этиленгликольное) производное диацилглицерина, поли(этиленгликольное) производное диалкилглицерина, поли(этиленгликольное) производное церамида, поли(этиленгликольное) производное жирной кислоты, поли(этиленгликольное) производное жирного спирта или поли(этиленгликольное) производное стерола.
34. Композиция по п. 26, в которой гидрофильный полимер представляет собой поли(этиленгликоль) с молекулярной массой от приблизительно 200 до приблизительно 10000.
35. Композиция по п. 26, в которой гидрофильный полимер представляет собой поли(этиленгликоль) с молекулярной массой от приблизительно 500 до приблизительно 5000.
36. Композиция по п. 1, в которой липосома дополнительно включает нацеливающую часть.
37. Композиция по п. 36, в которой нацеливающая часть представляет собой белок, пептид, полисахарид, полинуклеотид, природное вещество небольших размеров, синтетическое вещество небольших размеров или их сочетание.
38. Композиция по п. 36, в которой нацеливающая часть представляет собой естественным, синтетическим или рекомбинантным путем полученный белок, включающий антиген-связывающую последовательность антитела.
39. Композиция по п. 36, в которой нацеливающая часть представляет собой антитело, его антиген-связывающий фрагмент, одноцепочечный белок, включающий антиген-связывающие полипептидные последовательности антитела или одно доменное антитело.
40. Композиция по п. 36, в которой нацеливающая часть связана с мембраной липосомы и обращена по направлению к среде.
41. Композиция по п. 40, в которой связанная нацеливающая часть включает гидрофильный полимер, который связывает мембрану липосомы с нацеливающей частью.
42. Композиция по п. 41, в которой гидрофильный полимер представляет собой поли(этиленгликоль).
43. Композиция по п. 42, в которой поли(этиленгликоль) имеет молекулярную массу от приблизительно 250 до приблизительно 30000.
44. Композиция по п. 36, в которой нацеливающая часть осуществляет интернализацию липосомы в клетку.
45. Композиция по п. 36, в которой нацеливающая часть селективно связывается с рецептором тирозинкиназы, рецептором фактора роста, рецептором ангиогенного фактора, рецептором трансферрина, адгезионным веществом клетки или рецептором витамина.
46. Композиция по п. 45, в которой рецептор тирозинкиназы является рецептором фактора роста.
47. Композиция по п. 36, в которой нацеливающая часть селективно связывается с EGFR, ErbB-2 (HER-2), ErbB-3 (HER3) или ErbB-4 (HER4).
48. Композиция по п. 45, в которой рецептор ангиогенного фактора представляет собой bFGF-рецептор или VEGF-рецептор.
49. Композиция по п. 45, в которой адгезионное вещество клетки является интегрином.
50. Композиция по п. 44, отличающаяся тем, что клетка является злокачественной клеткой.
51. Способ инкапсулирования катионного антинеопластического терапевтического агента в липосому, включающий стадию контактирования композиции, включающей липосомы в среде, имеющие внутреннее пространство и мембрану, отделяющую внутреннее пространство от среды и включающую один или несколько липидов, причем внутреннее пространство содержит полиол или сахар, полианионизированные с помощью, по меньшей мере, двух сильноанионных функциональных групп, причем сахар представляет собой моносахарид или дисахарид, и липосома включает трансмембранный градиент иона аммония, расположенный между липосомой и средой, эффективный для удерживания вещества внутри липосомы на протяжении времени, достаточного для преобразования терапевтического агента, а также полианионизированного полиола или полианионизированного сахара в форму кислоты или соли, захваченной в липосому.
52. Способ по п. 51, при котором, по крайней мере, часть вещества попадает во внутреннее пространство липосомы.
53. Способ по п. 51, при котором, по крайней мере, 90% вещества попадает во внутреннее пространство липосомы.
54. Способ по п. 51, при котором часть вещества, которая становится инкапсулированной в липосомах, составляет, по крайней мере, 80%, по крайней мере, 90% или, по крайней мере, 95%.
55. Способ по п. 51, при котором вещество является полностью катионным веществом, терапевтическим агентом или детектируемым маркером.
56. Способ по п. 51, при котором мольное соотношение вещества к общему содержанию липидов составляет, по крайней мере, около 0,05, около 0,1, около 0,2 или около 0,3.
57. Способ по п. 51, при котором контактирование проводят в водном растворе.
58. Способ по п. 57, при котором водный раствор имеет pH от приблизительно 4 до приблизительно 7.
59. Способ по п. 57, при котором водный раствор имеет ионную силу, эквивалентную или меньшую, чем у 50 мМ хлорида натрия.
60. Способ по п. 57, при котором водный раствор имеет ионную силу, эквивалентную или меньшую, чем у 20 мМ хлорида натрия.
61. Способ по п. 60, при котором pH водного раствора находится между приблизительно 5 и приблизительно 7, а вещество выбрано из группы, включающей камптотецин, 9-аминокамптотецин, 7-этилкамптотецин, 10-гидроксикамптотецин, 9-нитрокамптотецин, 10,11-метилендиоксикамптотецин, 9-амино-10,11-метилендиоксикамптотецин, 9-хлор-10,11-метилендиоксикамптотецин, иринотекан, топотекан, луртотекан, силатекан, TAS 103, (7-(4-метилпиперазинометилен)-10,11-этилендиокси-20(S)-камптотецин, 7-(4-метилпиперазинометилен)-10,11-метилендиокси-20(S)-камптотецин, а также 7-(2-N-изопропиламино)этил)-(20S)-камптотецин.
62. Способ по п. 61, при котором pH водного растора находится между приблизительно 5 и приблизительно 6,5, а вещество является Топотеканом или Иринотеканом.
63. Способ по п. 59, при котором после контактирования ионная сила водного раствора увеличивается, превышая ионную силу 50 мМ хлорида натрия.
64. Способ по п. 63, при котором величина ионной силы повышается, по меньшей мере, до величины ионной силы 100 мМ хлорида натрия.
65. Способ по п. 64, при котором величина ионной силы повышается, по меньшей мере, до величины ионной силы 150 мМ хлорида натрия.
66. Способ по п. 51, при котором катионное вещество выбрано из группы, включающей камптотецин, 9-аминокамптотецин, 7-этилкамптотецин, 10-гидроксикамптотецин, 9-нитрокамптотецин, 10,11-метилендиоксикамптотецин, 9-амино-10,11-метилендиоксикамптотецин, 9-хлор-10,11-метилендиоксикамптотецин, иринотекан, топотекан, луртотекан, силатекан, TAS 103, (7-(4-метилпиперазинометилен)-10,11-этилендиокси-20(S)-камптотецин, 7-(4-метилпиперазинометилен)-10,11-метилендиокси-20(S)-камптотецин, а также 7-(2-N-изопропиламино)этил)-(20S)-камптотецин.
Applications Claiming Priority (2)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
US56792104P | 2004-05-03 | 2004-05-03 | |
US60/567,921 | 2004-05-03 |
Related Parent Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
RU2006142766/15A Division RU2424792C2 (ru) | 2004-05-03 | 2005-05-02 | Липосомы, используемые для доставки лекарственных средств |
Related Child Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
RU2015155368A Division RU2757110C2 (ru) | 2004-05-03 | 2015-12-23 | Липосомные композиции, используемые для доставки лекарственных средств |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
RU2011112461A RU2011112461A (ru) | 2012-10-10 |
RU2574926C2 true RU2574926C2 (ru) | 2016-02-10 |
Family
ID=
Cited By (5)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
RU2706356C1 (ru) * | 2018-12-27 | 2019-11-18 | Федеральное государственное автономное образовательное учреждение высшего образования "Национальный исследовательский технологический университет "МИСиС" | Способ лечения онкологических заболеваний с помощью инъекций лекарственного препарата |
RU2706427C1 (ru) * | 2018-12-27 | 2019-11-19 | Федеральное государственное автономное образовательное учреждение высшего образования "Национальный исследовательский технологический университет "МИСиС" | Способ лечения онкологических заболеваний с помощью инъекций лекарственного препарата |
RU2711908C1 (ru) * | 2019-05-22 | 2020-01-24 | федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования "Воронежский государственный университет" (ФГБОУ ВО "ВГУ") | Способ определения величины адсорбции винпоцетина липосомами |
RU2712212C1 (ru) * | 2019-10-28 | 2020-01-27 | Федеральное государственное автономное образовательное учреждение высшего образования "Национальный исследовательский технологический университет "МИСиС" | Способ лечения онкологических заболеваний с помощью инъекций лекарственного препарата |
RU2765736C2 (ru) * | 2017-01-18 | 2022-02-02 | Темасек Лайф Сайенсиз Лаборатори Лимитед | Гиперстабилизированные липосомы, повышающие направленное таргетирование митотических клеток |
Citations (3)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
RU2125868C1 (ru) * | 1991-02-02 | 1999-02-10 | Ника Хелт Продактс Лимитед | Синтетические мембранные везикулы, содержащие функционально активные слитые пептиды как системы для введения лекарственных средств, способ из получения, применение для изготовления лекарственных средств против спида |
RU2130771C1 (ru) * | 1998-06-01 | 1999-05-27 | Автушенко Сергей Сергеевич | Способ получения липосомальных препаратов |
US6110491A (en) * | 1996-10-22 | 2000-08-29 | Hermes Biosciences, Inc. | Compound-loaded liposomes and methods for their preparation |
Patent Citations (3)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
RU2125868C1 (ru) * | 1991-02-02 | 1999-02-10 | Ника Хелт Продактс Лимитед | Синтетические мембранные везикулы, содержащие функционально активные слитые пептиды как системы для введения лекарственных средств, способ из получения, применение для изготовления лекарственных средств против спида |
US6110491A (en) * | 1996-10-22 | 2000-08-29 | Hermes Biosciences, Inc. | Compound-loaded liposomes and methods for their preparation |
RU2130771C1 (ru) * | 1998-06-01 | 1999-05-27 | Автушенко Сергей Сергеевич | Способ получения липосомальных препаратов |
Cited By (5)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
RU2765736C2 (ru) * | 2017-01-18 | 2022-02-02 | Темасек Лайф Сайенсиз Лаборатори Лимитед | Гиперстабилизированные липосомы, повышающие направленное таргетирование митотических клеток |
RU2706356C1 (ru) * | 2018-12-27 | 2019-11-18 | Федеральное государственное автономное образовательное учреждение высшего образования "Национальный исследовательский технологический университет "МИСиС" | Способ лечения онкологических заболеваний с помощью инъекций лекарственного препарата |
RU2706427C1 (ru) * | 2018-12-27 | 2019-11-19 | Федеральное государственное автономное образовательное учреждение высшего образования "Национальный исследовательский технологический университет "МИСиС" | Способ лечения онкологических заболеваний с помощью инъекций лекарственного препарата |
RU2711908C1 (ru) * | 2019-05-22 | 2020-01-24 | федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования "Воронежский государственный университет" (ФГБОУ ВО "ВГУ") | Способ определения величины адсорбции винпоцетина липосомами |
RU2712212C1 (ru) * | 2019-10-28 | 2020-01-27 | Федеральное государственное автономное образовательное учреждение высшего образования "Национальный исследовательский технологический университет "МИСиС" | Способ лечения онкологических заболеваний с помощью инъекций лекарственного препарата |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
RU2574926C9 (ru) | Липосомные композиции, используемые для доставки лекарственных средств | |
AU2016203354B2 (en) | Liposomes useful for drug delivery | |
RU2574926C2 (ru) | Липосомные композиции, используемые для доставки лекарственных средств |