RU2572482C1 - Method for simulating cerebral vascular spasm in non-traumatic subarachnoidal haemorrhage in vivo - Google Patents

Method for simulating cerebral vascular spasm in non-traumatic subarachnoidal haemorrhage in vivo Download PDF

Info

Publication number
RU2572482C1
RU2572482C1 RU2014148296/14A RU2014148296A RU2572482C1 RU 2572482 C1 RU2572482 C1 RU 2572482C1 RU 2014148296/14 A RU2014148296/14 A RU 2014148296/14A RU 2014148296 A RU2014148296 A RU 2014148296A RU 2572482 C1 RU2572482 C1 RU 2572482C1
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
blood
occipital
rat
introduction
cistern
Prior art date
Application number
RU2014148296/14A
Other languages
Russian (ru)
Inventor
Владимир Викторович Крылов
Александр Владиславович Природов
Галина Павловна Титова
Евгений Юрьевич Бахарев
Original Assignee
Государственное бюджетное учреждение здравоохранения города Москвы Научно-исследовательский институт скорой помощи имени Н.В. Склифосовского Департамента здравоохранения г. Москвы
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Государственное бюджетное учреждение здравоохранения города Москвы Научно-исследовательский институт скорой помощи имени Н.В. Склифосовского Департамента здравоохранения г. Москвы filed Critical Государственное бюджетное учреждение здравоохранения города Москвы Научно-исследовательский институт скорой помощи имени Н.В. Склифосовского Департамента здравоохранения г. Москвы
Priority to RU2014148296/14A priority Critical patent/RU2572482C1/en
Application granted granted Critical
Publication of RU2572482C1 publication Critical patent/RU2572482C1/en

Links

Images

Abstract

FIELD: medicine.
SUBSTANCE: method involves introducing fresh human venous blood into rat's occipital cistern. The introduction is preceded by puncturing or draining the occipital cistern with removing spinal fluid. After the first blood removal, the blood is re-introduced into the occipital cistern after a period of time providing continuous blood supply from the moment of the first introduction and required to develop cerebral vascular spasm.
EFFECT: method provides reproducing morphological changes of intracranial vessels as close to those in human individuals as possible, and ensures a possibility of studying vascular activity of preparations specific to human blood proteins.
9 cl, 4 dwg

Description

Область техники, к которой относится изобретениеFIELD OF THE INVENTION

Изобретение относится к области медицины, а именно нейрохирургии, патологической анатомии, и может быть использовано для изучения сосудистого спазма при нетравматических субарахноидальных кровоизлияниях в эксперименте и проведения исследований терапевтической эффективности препаратов для профилактики и лечения сосудистого спазма.The invention relates to medicine, namely to neurosurgery, pathological anatomy, and can be used to study vascular spasm in non-traumatic subarachnoid hemorrhages in an experiment and conduct studies of the therapeutic efficacy of drugs for the prevention and treatment of vascular spasm.

Уровень техникиState of the art

Из уровня техники известен способ моделирования нетравматического субарахноидального кровоизлияния у крыс (Solomon R.A., Antunes J.L., Chen R.Y., Bland L., Chien S.: Decrease in cerebral blood flow in rat after experimental subarachnoid hemorrhage: a new animal model. Stroke 16:58-64, 1985). При данной методике авторы производили однократное пункционное введение свежей артериальной аутокрови в затылочную цистерну крысы и проводили последующую оценку церебральной перфузии в сроки до 2 часов.The prior art method for modeling non-traumatic subarachnoid hemorrhage in rats (Solomon RA, Antunes JL, Chen RY, Bland L., Chien S .: Decrease in cerebral blood flow in rat after experimental subarachnoid hemorrhage: a new animal model. Stroke 16:58 -64, 1985). With this technique, the authors performed a single puncture injection of fresh arterial autologous blood into the occipital cistern of the rat and carried out a subsequent assessment of cerebral perfusion up to 2 hours.

Однако в известном способе производится однократное введение крови в затылочную цистерну, что позволяет наблюдать изменение церебрального кровотока в острую фазу спазма. В то же время при однократном способе введения изменения в отсроченном периоде эксперимента практически отсутствуют. Указанная модель не позволяет изучать терапевтическую эффективность препаратов, специфичных к белкам крови человека.However, in the known method, a single injection of blood into the occipital cistern is performed, which makes it possible to observe a change in cerebral blood flow in the acute phase of the spasm. At the same time, with a single method of introducing changes in the deferred period of the experiment are practically absent. This model does not allow us to study the therapeutic efficacy of drugs specific for human blood proteins.

Из уровня техники известен также способ моделирования нетравматического субарахноидального кровоизлияния у крыс (Bederson J.B., Germano I.M., Guarino L.: Cortical blood flow and cerebral perfusion pressure in a new noncraniotomy model of subarachnoid hemorrhage in the rat. Stroke 26:1086-1092, 1995). При данной методике авторы осуществляли эндоваскулярную перфорацию внутренней сонной артерии у крысы и оценивали изменения церебрального кровотока в первые 24 часа от эксперимента.A method for modeling non-traumatic subarachnoid hemorrhage in rats is also known in the art (Bederson JB, Germano IM, Guarino L .: Cortical blood flow and cerebral perfusion pressure in a new noncraniotomy model of subarachnoid hemorrhage in the rat. Stroke 26: 1086-1092, 1995 ) With this technique, the authors performed endovascular perforation of the internal carotid artery in rats and evaluated changes in cerebral blood flow in the first 24 hours from the experiment.

Однако известный способ также не позволяет наблюдать отсроченные изменения сосудистого спазма и изучать терапевтическую эффективность препаратов, специфичных к белкам крови человека.However, the known method also does not allow to observe delayed changes in vascular spasm and to study the therapeutic efficacy of drugs specific for human blood proteins.

Одним из наиболее близких способов моделирования нетравматического субарахноидального кровоизлияния у крыс является метод двухкратного введения крови (Meguro Т., Clower B.R., Carpenter R., Parent A.D., Zhang J.H. Improved rat model for cerebral vasospasm studies. Neurol Res Oct 2001; 23(7):761-6). При данной методике авторы выполняли двухкратное введение свежей артериальной аутокрови в затылочную цистерну крысы с интервалом 48 часов между введениями и оценивали морфологические изменения интракраниальных сосудов в сроки до 7 суток.One of the closest methods for modeling non-traumatic subarachnoid hemorrhage in rats is the double blood injection method (Meguro T., Clower BR, Carpenter R., Parent AD, Zhang JH Improved rat model for cerebral vasospasm studies. Neurol Res Oct 2001; 23 (7) : 761-6). With this technique, the authors performed a double injection of fresh arterial autologous blood into the occipital cistern of the rat with an interval of 48 hours between administrations and evaluated the morphological changes of intracranial vessels up to 7 days.

Однако при всех перечисленных методиках невозможно апробировать профилактическое и лечебное воздействие препаратов, имеющих сродство к белкам крови человека, например, фибринолитическим препаратам группы рекомбинантной стафилокиназы, которые эффективны только у некоторых видов животных и человека, но неэффективны у крыс (Species Reactivity to Staphylokinase. Exp Biol Med (Maywood) June 1949 71:261-263, Lijnen H.R., De Cock F., Matsuo O. & Collen D. Comparative fibrinolytic and fibrinogenolytic properties of staphylokinase and streptokinase in plasma of different species in vitro. Fibrinolysis 6, 33-37 (1992)).However, with all these methods, it is impossible to test the preventive and therapeutic effect of drugs that have an affinity for human blood proteins, for example, fibrinolytic drugs of the recombinant staphylokinase group, which are effective only in some animal and human species, but ineffective in rats (Species Reactivity to Staphylokinase. Exp Biol Med (Maywood) June 1949 71: 261-263, Lijnen HR, De Cock F., Matsuo O. & Collen D. Comparative fibrinolytic and fibrinogenolytic properties of staphylokinase and streptokinase in plasma of different species in vitro. Fibrinolysis 6, 33-37 (1992)).

Раскрытие изобретенияDisclosure of invention

Задачей изобретения является создание удобной, доступной биологической модели для изучения способов профилактики и лечения церебрального сосудистого спазма при нетравматических субарахноидальных кровоизлияниях с использованием препаратов, специфичных к белкам крови человека (например, препараты группы рекомбинантной стафилокиназы).The objective of the invention is to create a convenient, affordable biological model for studying methods for the prevention and treatment of cerebral vascular spasm in non-traumatic subarachnoid hemorrhages using drugs specific for human blood proteins (for example, drugs of the recombinant staphylokinase group).

Техническим результатом, на достижение которого направлено заявленное изобретение, является воспроизведение морфологических изменений интракраниальных сосудов при сосудистом спазме у лабораторных белых крыс, наиболее близких к таковым у человека, обеспечивающих адекватное изучение терапевтической эффективности препаратов, специфичных к белкам крови человека.The technical result to which the claimed invention is directed is to reproduce the morphological changes of intracranial vessels during vascular spasm in laboratory white rats closest to those in humans, providing an adequate study of the therapeutic efficacy of drugs specific for human blood proteins.

Поставленная задача решается тем, что способ моделирования церебрального сосудистого спазма при нетравматическом субарахноидальном кровоизлиянии в эксперименте включает введение в затылочную цистерну крысы крови, при этом вводят свежую человеческую венозную кровь, причем перед введением выполняют пункцию или дренирование затылочной цистерны с выведением спинномозговой жидкости.The problem is solved in that the method of modeling cerebral vascular spasm in case of non-traumatic subarachnoid hemorrhage in an experiment involves the introduction of blood into the occipital cistern of the rat, while fresh human venous blood is introduced, and puncture or drainage of the occipital cistern with the removal of cerebrospinal fluid is performed before administration.

Пункцию и введение крови выполняют под контролем частоты и глубины дыхания животного. Выведение спинномозговой жидкости из субарахноидального пространства крысы осуществляют в объеме от 0,05 до 0,2 мл в течение 3-7 мин. Введение человеческой крови в затылочную цистерну осуществляют в объеме от 0,05 до 0,25 мл в течение 5-10 мин.Puncture and blood injection are performed under the control of the frequency and depth of respiration of the animal. Excretion of cerebrospinal fluid from the subarachnoid space of the rat is carried out in a volume of from 0.05 to 0.2 ml for 3-7 minutes. The introduction of human blood into the occipital cistern is carried out in a volume of from 0.05 to 0.25 ml for 5-10 minutes.

В одном из вариантов выполнения изобретения возможно повторное введение крови в затылочную цистерну через время, обеспечивающее постоянное присутствие крови с момента первого введения, необходимое для развития церебрального сосудистого спазма. Указанное время составляет 24-48 ч.In one embodiment of the invention, it is possible to reintroduce blood into the occipital cistern after a time, ensuring the constant presence of blood from the moment of the first injection, necessary for the development of cerebral vascular spasm. The indicated time is 24-48 hours.

После введения крови выполняют послойное ушивание раны, включающее ушивание затылочной мембраны.After the introduction of blood, layered wound closure is performed, including closure of the occipital membrane.

В одном из вариантов исполнения при введении крови в затылочную цистерну выполняют одновременную сенсибилизацию животного путем внутривенного введения человеческой крови в объеме, не приводящем к нарушению витальных функций у крысы. Указанный объем составляет 0,5-2 мл.In one embodiment, when blood is introduced into the occipital cistern, the animal is simultaneously sensitized by intravenous administration of human blood in a volume that does not lead to a violation of vital functions in the rat. The indicated volume is 0.5-2 ml.

Перед введением крови выполняют гепаринизацию средств введения.Before the introduction of blood perform heparinization of the means of administration.

Для исключения агглютинации человеческих эритроцитов агглютининами крыс перед экспериментом у 10 произвольных животных была проведена оценка групповой принадлежности по системе АВО и резус-фактор с использованием цоликлонов и проведением пробы на индивидуальную совместимость со всеми группами человеческой крови. Помимо этого, перед каждым введением человеческой крови проводили пробу на индивидуальную совместимость. Агглютинации между сывороткой крысы и эритроцитами человека не наблюдали ни в одном случае, что позволяет предположить, что человеческие эритроциты не агглютинируют под воздействием плазмы крови крыс.To exclude agglutination of human erythrocytes by rat agglutinins, before experiment, in 10 arbitrary animals, the group affiliation was assessed using the ABO system and the Rh factor using coliclones and tested for individual compatibility with all groups of human blood. In addition, before each introduction of human blood, an individual compatibility test was performed. No agglutination between rat serum and human erythrocytes was observed in any case, which suggests that human erythrocytes do not agglutinate under the influence of rat plasma.

При сравнительной эффективности интрацистернального введения препаратов рекомбинантной стафилокиназы с последующим наружным дренированием цереброспинальной жидкости на модели с использованием свежей аутокрови у крыс нами были получены данные, говорящие об отсутствии фибринолитической активности как местно (в затылочной цистерне), так и системно (влияние на параметры гемостаза).With the comparative effectiveness of the intracisternal administration of recombinant staphylokinase preparations followed by external drainage of the cerebrospinal fluid in a model using fresh autologous blood in rats, we obtained data indicating the absence of fibrinolytic activity both locally (in the occipital cistern) and systemically (effect on hemostasis parameters).

По предварительным данным интрацистернальное применение препаратов рекомбинантной стафилокиназы на модели введения человеческой крови в затылочную цистерну на 3-4-е сутки эксперимента с последующим наружным дренирование цереброспинальной жидкости в объеме, не приводящем к нарушению витальных функций крысы (0,3-1,5 мл спинномозговой жидкости в сутки), снижает выраженность морфологических изменений при сосудистом спазме как в стенке интракраниальных сосудов, так и в ткани мозга.According to preliminary data, the intracisternal use of recombinant staphylokinase preparations on the model of introducing human blood into the occipital cistern on the 3-4th day of the experiment with subsequent external drainage of cerebrospinal fluid in a volume that does not lead to a violation of the vital functions of the rat (0.3-1.5 ml of cerebrospinal fluid fluid per day), reduces the severity of morphological changes in vascular spasm both in the wall of intracranial vessels and in brain tissue.

Краткое описание чертежейBrief Description of the Drawings

Изобретение поясняется фотографиями изображения объекта исследования в эксперименте, где на фиг. 1 показана верификация САК: А - мозг интактного животного; Б - мозг изъят через 30 мин после введения 0,25 мл аутокрови в затылочную цистерну; на фиг. 2 - верхняя треть основной артерии (увеличение ×400), контроль, А - окраска гематоксилином и эозином, Б - окраска по Грамм-Вейгерту, на изображениях позициями обозначены: 1 - ядра эндотелиоцитов, 2 - ВЭМ, 3 - ГМК. Соответствует нормальному строению верхней трети основной артерии крысы; на фиг. 3 показана верхняя треть основной артерии на 5-е сутки после двухкратного введения крови (увеличение ×400), А - окраска гематоксилином и эозином, Б - окраска по Lie, на изображениях позициями обозначены: 1 - ядра эндотелиоцитов, 2 - ВЭМ, 3 - ГМК (имеются признаки вакуолизации цитоплазмы). Отмечается резкое сужение просвета сосуда, значительное утолщение стенки артерии, сближение ядер эндотелиоцитов. ВЭМ имеет выраженно извитые контуры, в цитоплазме ГМК - распространенная гидропическая дистрофия; на фиг. 4 представлено изображение верхних отделов моста крысы (окраска по Lie, увеличение ×1000), А - 3-и сутки после введения крови, Б - 7-е сутки после введения крови, на изображениях позициями обозначены: 4 - капилляры с сохраненным током крови (на фиг. А - полнокровные, на фиг. Б - со спавшимся просветом), 5 - зоны выраженного периваскулярного отека.The invention is illustrated by photographs of the image of the object of study in the experiment, where in FIG. Figure 1 shows the verification of NAO: A — brain of an intact animal; B - the brain was seized 30 minutes after the introduction of 0.25 ml of autologous blood into the occipital cistern; in FIG. 2 - the upper third of the main artery (magnification × 400), control, A - stained with hematoxylin and eosin, B - Gram-Weigert stained, the positions indicated in the images: 1 - endotheliocyte nuclei, 2 - VEM, 3 - MMC. Corresponds to the normal structure of the upper third of the rat’s main artery; in FIG. Figure 3 shows the upper third of the main artery on the 5th day after twice blood injection (magnification × 400), A - staining with hematoxylin and eosin, B - staining according to Lie, the positions indicated in the images: 1 - nuclei of endotheliocytes, 2 - VEM, 3 - MMC (there are signs of vacuolization of the cytoplasm). There is a sharp narrowing of the lumen of the vessel, a significant thickening of the artery wall, the convergence of the nuclei of endotheliocytes. VEM has pronouncedly convoluted contours; in the cytoplasm of MMC, it is a common hydropic dystrophy; in FIG. Figure 4 shows the image of the upper sections of the rat bridge (Lie staining, magnification × 1000), A - the 3rd day after the blood injection, B - the 7th day after the blood injection, the positions indicated on the images: 4 - capillaries with the saved blood flow ( in Fig. A - full-blooded, in Fig. B - with a declining lumen), 5 - areas of pronounced perivascular edema.

Осуществление изобретенияThe implementation of the invention

Ниже представлено подробное описание осуществления изобретения и результаты морфологических исследований полученной модели церебрального сосудистого спазма при двукратном введении в затылочную цистерну крысы свежей человеческой венозной крови. При этом данное подробное описание не ограничивает заявляемое изобретение, т.к. в эксперименте был получен заявленный результат и при однократном введении крови.Below is a detailed description of the implementation of the invention and the results of morphological studies of the resulting model of cerebral vascular spasm when twice introduced into the occipital cistern of the rat fresh human venous blood. However, this detailed description does not limit the claimed invention, because in the experiment, the claimed result was obtained with a single injection of blood.

1. Анестезия1. Anesthesia

Обезболивание животных осуществляли по следующей методике.Anesthetization of animals was carried out according to the following method.

Крысу помещали в замкнутую емкость, на дне которой уложена гигроскопичная вата, пропитанная диэтиловым эфиром. Через 1-2 мин крыса засыпала. После этого выполняли премедикацию для потенцирования основного наркоза: внутримышечно в область бедра инсулиновым шприцем вводили следующие препараты: дроперидол - 0,3 мг/кг массы тела (0,03 мл 0,25% раствора), димедрол 1,2 мг/кг массы тела (0,03 мл 1% раствора), атропин - 0,012 мг/кг массы тела (0,03 мл 0,1% раствора). Через 15 мин после премедикации в область бедра другой лапки крысы вводили следующие препараты: «золетил 100» - 24 мг/кг массы тела (0,06 мл раствора), ксилазин - 3,2 мг/кг массы тела (0,04 мл 2% раствора). Как правило, крыса засыпала в течение 5-15 мин. Оценку глубины анестезии проводили по выраженности корнеального рефлекса. При необходимости через 20 мин добавляли 0,02-0,04 мл «золетил 100».The rat was placed in a closed container, at the bottom of which hygroscopic cotton wool soaked in diethyl ether was laid. After 1-2 minutes, the rat fell asleep. After this, premedication was performed to potentiate the main anesthesia: the following drugs were injected intramuscularly into the thigh with an insulin syringe: droperidol - 0.3 mg / kg body weight (0.03 ml 0.25% solution), diphenhydramine 1.2 mg / kg body weight (0.03 ml of a 1% solution), atropine - 0.012 mg / kg body weight (0.03 ml of a 0.1% solution). 15 minutes after premedication, the following drugs were injected into the thigh area of another rat paw: “Zoletil 100” - 24 mg / kg body weight (0.06 ml of solution), Xylazine - 3.2 mg / kg body weight (0.04 ml 2 % solution). As a rule, the rat fell asleep within 5-15 minutes. The depth of anesthesia was assessed by the severity of the corneal reflex. If necessary, after 20 minutes 0.02-0.04 ml of Zoletil 100 was added.

2. Техника операции2. Operation technique

Введение крови в затылочную цистерну (выполняли на 1-е и 2-е сутки эксперимента с интервалом между введениями 24 часа). Животное фиксировали на операционном столике и брили область операции. После обработки кожи растворами антисептиков выполняли срединный разрез от области затылочного возвышения до остистого отростка VI-VII шейного позвонков. Мышцы шеи для снижения кровоточивости и потенцирования наркоза инфильтрировали комбинированным местным анестетиком «Ультракаин ДС 1:200000» (артикаина гидрохлорид 40 мг/мл + эпинефрина гидрохлорид 6 мг/мл) в разведении с физиологическим раствором 1:5. Далее мышцы в месте их прикрепления к черепу отсекали и скелетировали чешую затылочной кости, атлантоокципитальную мембрану и дугу I шейного позвонка. Выполняли пункцию затылочной цистерны с выведением 0,05-0,2 мл спинномозговой жидкости в течение 3-7 мин под контролем частоты и глубины дыхания животного. После этого в затылочную цистерну в течение 5-10 мин вводили 0,05-0,2 мл свежей человеческой венозной крови под контролем частоты и глубины дыхания животного. Для того чтобы большая часть крови скапливалась в области базальных цистерн, животное оставляли на 20 мин с опущенным на 20°-30° головным концом. После этого рану послойно ушивали. При необходимости компенсации кровопотери подкожно вводили смесь 5% раствора глюкозы и 0,9% раствора хлорида натрия объемом до 5-10 мл.The introduction of blood into the occipital cistern (performed on the 1st and 2nd day of the experiment with an interval between injections of 24 hours). The animal was fixed on the operating table and the area of operation was shaved. After treatment of the skin with antiseptic solutions, a midline incision was made from the occipital elevation to the spinous process of the VI-VII cervical vertebrae. To reduce bleeding and potentiate anesthesia, the neck muscles were infiltrated with the combined local anesthetic Ultracain DS 1: 200000 (articaine hydrochloride 40 mg / ml + epinephrine hydrochloride 6 mg / ml) diluted with saline 1: 5. Further, the muscles at the place of their attachment to the skull were cut off and skeletonized the scales of the occipital bone, the atlantooccipital membrane and the arch of the first cervical vertebra. A puncture of the occipital cistern was performed with the removal of 0.05-0.2 ml of cerebrospinal fluid for 3-7 minutes under the control of the frequency and depth of respiration of the animal. After that, 0.05-0.2 ml of fresh human venous blood was injected into the occipital cistern for 5-10 minutes under the control of the frequency and depth of respiration of the animal. In order for most of the blood to accumulate in the area of the basal cisterns, the animal was left for 20 min with the head end lowered by 20 ° -30 °. After this, the wound was sutured in layers. If necessary, compensation for blood loss was injected subcutaneously with a mixture of 5% glucose solution and 0.9% sodium chloride solution with a volume of up to 5-10 ml.

3. Оценка неврологического статуса3. Assessment of neurological status

Оценку неврологического статуса проводили 1 раз в сутки в течение 7 дней после введения крови по методике, предложенной J.B. Bederson с соавт. (1986) [Bederson J.B., Pitts L.H., Tsuji M., Nishimura M.C., Davis R.L., Bartkowski H.: Rat middle cerebral artery occlusion: Evaluation of the model and development of a neurologic examination. Stroke 17:472-476, 1986] по 4-балльной шкале:Assessment of neurological status was performed 1 time per day for 7 days after blood injection according to the method proposed by J.B. Bederson et al. (1986) [Bederson J.B., Pitts L.H., Tsuji M., Nishimura M.C., Davis R.L., Bartkowski H.: Rat middle cerebral artery occlusion: Evaluation of the model and development of a neurologic examination. Stroke 17: 472-476, 1986] on a 4-point scale:

0 баллов - отсутствие неврологических нарушений0 points - absence of neurological disorders

1 балл - крыса малоподвижна, вяло реагирует на прикосновение. Очаговая неврологическая симптоматика отсутствует1 point - the rat is inactive, sluggishly reacts to touch. No focal neurological symptoms

2 балла - имеется изолированный парез одной конечности (при приподнимании животного за хвост активность движений в одной из конечностей снижена)2 points - there is an isolated paresis of one limb (when lifting the animal by the tail, the activity of movements in one of the limbs is reduced)

3 балла - имеется односторонний гемипарез (при подталкивании животного в бок оно заваливается на пораженную сторону)3 points - there is unilateral hemiparesis (when pushing the animal to the side, it falls over on the affected side)

4 балла - имеется односторонняя гемиплегия (животное не может активно передвигаться, при движении вперед отмечается выраженное отклонение в пораженную сторону - движение по кругу).4 points - there is unilateral hemiplegia (the animal cannot actively move, when moving forward there is a pronounced deviation to the affected side - movement in a circle).

По нашим данным изменения неврологического статуса наблюдались в течение первых суток после любого вмешательства под наркозом до 1 балла и не были связаны с проявлением сосудистого спазмаAccording to our data, changes in neurological status were observed during the first day after any intervention under anesthesia up to 1 point and were not associated with the manifestation of vascular spasm

4. Морфологическое исследование4. Morphological study

Перед изъятием головного мозга животное усыпляли смесью препаратов «золетил 100» (0,4 мл), ксилазина гидрохлорид (0,3 мл 2% р-ра) и рокурония бромида (0,1 мл 1% р-ра). По имевшемуся разрезу рану вскрывали. Выполняли декапитацию на уровне III-IV шейного позвонков, вскрывали черепную коробку и, по возможности не травмируя твердую и мягкую мозговую оболочки, извлекали препарат головного мозга вместе с верхнешейным отделом спинного мозга. Далее препарат помещали на 24 ч в 5% р-р формалина и заливали в парафин. Для морфологического исследования использовали срезы на уровне верхней трети базилярной артерии.Before the brain was removed, the animal was euthanized with a mixture of preparations “Zoletil 100” (0.4 ml), xylazine hydrochloride (0.3 ml 2% solution) and rocuronium bromide (0.1 ml 1% solution). According to the existing section, the wound was opened. Decapitation was performed at the level of III-IV of the cervical vertebrae, the skull was opened and, if possible, without damaging the hard and soft meninges, the brain preparation was removed along with the upper cervical spinal cord. Next, the drug was placed for 24 hours in 5% formalin solution and embedded in paraffin. Sections at the level of the upper third of the basilar artery were used for morphological studies.

Окраску парафиновых срезов осуществляли следующими способами:Paraffin sections were stained in the following ways:

- Обзорная: гематоксилином и эозином,- Overview: hematoxylin and eosin,

- Для оценки состояния эластических волокон стенки артерии: по Грамм-Вейгерту (определение морфологического типа стенки базилярной артерии),- To assess the state of elastic fibers of the artery wall: according to Gram-Weigert (determination of the morphological type of the wall of the basilar artery),

- Для оценки состояния сократительного аппарата гладкомышечных клеток (миофибрилл): по Lie.- To assess the condition of the contractile apparatus of smooth muscle cells (myofibrils): by Lie.

Описание микропрепаратов проводили на светооптическом микроскопе Leica DM 1000 при увеличении 400-1000 раз, микрофотосъемку выполняли на цифровой камере Leica ЕС 3.Description of micropreparations was carried out using a Leica DM 1000 optical microscope with an increase of 400-1000 times, microphotography was performed on a Leica EC 3 digital camera.

Были получены прямые качественные признаки церебрального сосудистого спазма в виде характерных морфологических изменений интракраниальных сосудов и ишемических изменений ткани мозга.Direct qualitative signs of cerebral vascular spasm were obtained in the form of characteristic morphological changes in intracranial vessels and ischemic changes in brain tissue.

При исследовании верхней трети базилярной артерии у крыс после двухкратного введения аутокрови в затылочную цистерну были выявлены следующие изменения:In the study of the upper third of the basilar artery in rats after a double injection of autoblood into the occipital cistern, the following changes were revealed:

4-е сутки - морфологически прослеживались признаки умеренного спадения просвета сосуда без значительного утолщения стенки основной артерии и изменений внутренней эластической мембраны (ВЭМ). При окрасках по Lie и MSB выявлялись признаки гиперконтрактурных изменений гладкомышечных клеток (ГМК).4th day - morphologically traced signs of moderate subsidence of the lumen of the vessel without significant thickening of the wall of the main artery and changes in the internal elastic membrane (VEM). When stained for Lie and MSB, signs of hypercontractual changes in smooth muscle cells (GMC) were detected.

5-е сутки - отмечали утолщение стенки сосуда, подчеркнутую извитость эластической мембраны с углублением ее складок, сужением межскладочных промежутков, сближением эндотелиоцитов с выступающими в просвет ядрами, ориентированными по верхушкам сладок ВЭМ. При гистохимической реакции (окраска по Lie) в цитоплазме ГМК появлялись признаки дистрофических изменений от очаговой до распространенной гидропической дистрофии цитоплазмы в виде перинуклеарной и внутриклеточной вакуолизации, а также признаки внутриклеточной фуксинофилии цитоплазмы, указывающие на гиперконтрактурные изменения сократительных миофибрилл.5th day — thickening of the vessel wall, emphasized tortuosity of the elastic membrane with deepening of its folds, narrowing of the interfold gaps, the convergence of endotheliocytes with nuclei protruding into the lumen, oriented along the tops of the sweet VEM, were noted. During the histochemical reaction (Lie stain), signs of dystrophic changes from focal to widespread hydropic cytoplasmic dystrophy in the form of perinuclear and intracellular vacuolization, as well as signs of intracellular fuchsinophilia of the cytoplasm, indicating hypercontractual changes in contractile myofibrils appeared in the MMC cytoplasm.

6-е и 7-е сутки - отмечали умеренное спадение просвета сосуда с распространенными дистрофическими изменениями цитоплазмы ГМК, как проявления остаточных признаков нарушения сократительной способности миоцитов при разрешении спазма.6th and 7th days — a moderate decrease in the lumen of the vessel with widespread dystrophic changes in the MMC cytoplasm was noted as manifestations of residual signs of impaired contractility of myocytes with resolution of the spasm.

Помимо этого, были выявлены признаки нарушения капиллярного кровотока в ткани мозга крысы, что является прямым признаком ишемии мозга на микроциркуляторном уровне.In addition, signs of impaired capillary blood flow in rat brain tissue were identified, which is a direct sign of cerebral ischemia at the microcirculatory level.

Предложенный способ может быть использован для апробации методов профилактики и лечения церебрального сосудистого спазма в эксперименте, в том числе при интратекальном введении препаратов и использовании препаратов, имеющих сродство к белкам крови человека.The proposed method can be used to test methods for the prevention and treatment of cerebral vascular spasm in an experiment, including the intrathecal administration of drugs and the use of drugs that have an affinity for human blood proteins.

Claims (9)

1. Способ моделирования церебрального сосудистого спазма при нетравматическом субарахноидальном кровоизлиянии в эксперименте для изучения сосудистой активности препаратов, специфичных к белкам крови человека, включающий введение в затылочную цистерну крысы свежей крови, отличающийся тем, что вводят свежую человеческую венозную кровь, причем перед введением выполняют пункцию или дренирование затылочной цистерны с выведением спинномозговой жидкости, после первого введения крови осуществляют повторное введение крови в затылочную цистерну через время, обеспечивающее постоянное присутствие крови с момента первого введения, необходимое для развития церебрального сосудистого спазма.1. A method for simulating cerebral vascular spasm in non-traumatic subarachnoid hemorrhage in an experiment to study the vascular activity of drugs specific for human blood proteins, comprising introducing fresh blood into the occipital cistern of a rat, characterized in that fresh human venous blood is introduced, and puncture is performed before or drainage of the occipital cistern with the removal of cerebrospinal fluid, after the first injection of blood, reintroduction of blood into the occipital qi is carried out Terni after a time that ensures the constant presence of blood from the first administration, necessary for the development of cerebral vasospasm. 2. Способ по п. 1, отличающийся тем, что пункцию или дренирование затылочной цистерны и введение крови выполняют под контролем частоты и глубины дыхания животного.2. The method according to p. 1, characterized in that the puncture or drainage of the occipital cistern and the introduction of blood is performed under the control of the frequency and depth of respiration of the animal. 3. Способ по п. 1, отличающийся тем, что выведение спинномозговой жидкости из субарахноидального пространства крысы осуществляют в объеме от 0,05 до 0,2 мл в течение 3-7 мин.3. The method according to p. 1, characterized in that the removal of cerebrospinal fluid from the rat subarachnoid space is carried out in a volume of from 0.05 to 0.2 ml for 3-7 minutes. 4. Способ по п. 1, отличающийся тем, что введение человеческой крови в затылочную цистерну осуществляют в объеме от 0,05 до 0,25 мл в течение 5-10 мин.4. The method according to p. 1, characterized in that the introduction of human blood into the occipital cistern is carried out in a volume of from 0.05 to 0.25 ml for 5-10 minutes 5. Способ по п. 1, отличающийся тем, что повторное введение крови осуществляют через 24-48 ч после первого введения.5. The method according to p. 1, characterized in that the repeated administration of blood is carried out 24-48 hours after the first injection. 6. Способ по п. 1, отличающийся тем, что после введения крови выполняют послойное ушивание раны, включающее ушивание затылочной мембраны.6. The method according to p. 1, characterized in that after the introduction of blood perform layer-by-layer suturing of the wound, including suturing the occipital membrane. 7. Способ по п. 1, отличающийся тем, что при введении крови в затылочную цистерну выполняют одновременную сенсибилизацию животного путем внутривенного введения человеческой крови в объеме, не приводящем к нарушению витальных функций у крысы.7. The method according to p. 1, characterized in that when blood is introduced into the occipital cistern, the animal is simultaneously sensitized by intravenous administration of human blood in a volume that does not lead to impaired vital functions in the rat. 8. Способ по п. 7, отличающийся тем, что указанный объем составляет 0,5-2 мл.8. The method according to p. 7, characterized in that said volume is 0.5-2 ml. 9. Способ по п. 1, отличающийся тем, что перед введением крови выполняют гепаринизацию средств введения. 9. The method according to p. 1, characterized in that before the introduction of blood perform heparinization of the means of administration.
RU2014148296/14A 2014-12-02 2014-12-02 Method for simulating cerebral vascular spasm in non-traumatic subarachnoidal haemorrhage in vivo RU2572482C1 (en)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2014148296/14A RU2572482C1 (en) 2014-12-02 2014-12-02 Method for simulating cerebral vascular spasm in non-traumatic subarachnoidal haemorrhage in vivo

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2014148296/14A RU2572482C1 (en) 2014-12-02 2014-12-02 Method for simulating cerebral vascular spasm in non-traumatic subarachnoidal haemorrhage in vivo

Publications (1)

Publication Number Publication Date
RU2572482C1 true RU2572482C1 (en) 2016-01-10

Family

ID=55072184

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
RU2014148296/14A RU2572482C1 (en) 2014-12-02 2014-12-02 Method for simulating cerebral vascular spasm in non-traumatic subarachnoidal haemorrhage in vivo

Country Status (1)

Country Link
RU (1) RU2572482C1 (en)

Citations (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
SU1767518A1 (en) * 1990-11-23 1992-10-07 Институт Высшей Нервной Деятельности И Нейрофизиологии Ан Ссср Method for simulating hemorrhagic cerebral thrombosis
RU2152039C1 (en) * 1998-12-09 2000-06-27 БРЮХОВЕЦКИЙ Андрей Степанович Bioengineering method for remodeling cerebral vascular system
CN101023864A (en) * 2007-01-22 2007-08-29 河北医科大学第二医院 Method for setting up model of hemorrhagic cerebral infraction large mouse

Patent Citations (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
SU1767518A1 (en) * 1990-11-23 1992-10-07 Институт Высшей Нервной Деятельности И Нейрофизиологии Ан Ссср Method for simulating hemorrhagic cerebral thrombosis
RU2152039C1 (en) * 1998-12-09 2000-06-27 БРЮХОВЕЦКИЙ Андрей Степанович Bioengineering method for remodeling cerebral vascular system
CN101023864A (en) * 2007-01-22 2007-08-29 河北医科大学第二医院 Method for setting up model of hemorrhagic cerebral infraction large mouse

Non-Patent Citations (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
SOLOMON R.A. et al. Decrease in cerebral blood flow in rat after experimental subarachnoid hemorrhage: a new animal model. Stroke,1985, 16:58-64. *
ФАДЮКОВА О.Е. Вазомоторные реакции церебральных артерий при нарушениях мозгового кровообращения у крыс, М., 1998, Автореф. дисс. канд. биол. наук http://earthpapers.net/vazomotornye-reaktsii-tserebralnyh-arteriy-pri-narusheniyah-mozgovogo-krovoobrascheniya-u-krys#ixzz3jFphGiSh. MEGURO Т. et al. Improved rat model for cerebral vasospasm studies. Neurol Res Oct 2001; 23(7):761-6. XU H et al. Effect of recombinant streptokinase on the development of chronic cerebral vasospasm after subarachnoid hemorrhage in a swine model. Acta Neurochir (Wien). 2011 Jun;153(6):1333-8. *

Similar Documents

Publication Publication Date Title
US9595206B2 (en) System and method for in vitro blood vessel modeling
Weed Meninges and cerebrospinal fluid
Fitzgerald et al. Transfusing red blood cells stored in citrate phosphate dextrose adenine-1 for 28 days fails to improve tissue oxygenation in rats
Paulsen et al. The cavernous body of the human efferent tear ducts: function in tear outflow mechanism
Negrini et al. Subatmospheric pressure in the rabbit pleural lymphatic network
Suzuki et al. Surfactant reduction in embolism bubble adhesion and endothelial damage
Nakayama et al. Correction of congenital hydrocephalus in utero I. The model: intracisternal kaolin produces hydrocephalus in fetal lambs and rhesus monkeys
Subileau et al. Lymphatics in eye fluid homeostasis: minor contributors or significant actors?
RU2572482C1 (en) Method for simulating cerebral vascular spasm in non-traumatic subarachnoidal haemorrhage in vivo
Li et al. The relationship between myodural bridges, hyperplasia of the suboccipital musculature, and intracranial pressure
Hummer et al. Cerebral open flow microperfusion to monitor drug transport across the blood‐brain barrier
Chen et al. Management of primary brainstem hemorrhage: a review of outcome prediction, surgical treatment, and animal model
Carelli et al. Neural stem cell transplantation in experimental contusive model of spinal cord injury
Gopalakrishnan et al. In vivo liver endocytosis followed by purification of liver cells by liver perfusion
Bi et al. Synaptosomal Actin Dynamics in the Developmental Visual Cortex Regulate Behavioral Visual Acuity in Rats
Zheng et al. Pathologic changes of wound tissue in rats with stage III pressure ulcers treated by transplantation of human amniotic epithelial cells
Eberlova et al. Bony canal and grooves of the middle meningeal artery: mythic structures in anatomy and neurosurgery?
Phadke et al. Downbeat nystagmus--a false localising sign due to communicating hydrocephalus.
Hartung et al. Volume Transmission–Mediated Encephalopathies: A Possible New Concept?
Yuan et al. A case of accidental intrathecal injection of a large dose of ropivacaine during cesarean section
Sinuraya et al. Pemenuhan Kebutuhan Mobilisasi Dini terhadap Penyembuhan Luka pada Pasien Sectio Caesarea di Rumah Sakit Tk. II Putri Hijau Medan
Miki et al. Construction and evaluation of a subcutaneous splenic injection port for serial intraportal vein cell delivery in murine disease models
Xiang et al. Could postmortem hemorrhage occur in the brain?: a preliminary study on the establishment and investigation of postmortem hypostatic hemorrhage using rabbit models
Joyeux et al. Fetoscopic insufflation of heated‐humidified carbon dioxide during simulated spina bifida repair is safe under controlled anesthesia in the fetal lamb
Das et al. Intrasplenic transplantation of hepatocytes after partial hepatectomy in NOD. SCID mice