RU2568876C1 - Способ определения оксима пиностробина в плазме крови - Google Patents
Способ определения оксима пиностробина в плазме крови Download PDFInfo
- Publication number
- RU2568876C1 RU2568876C1 RU2015104360/15A RU2015104360A RU2568876C1 RU 2568876 C1 RU2568876 C1 RU 2568876C1 RU 2015104360/15 A RU2015104360/15 A RU 2015104360/15A RU 2015104360 A RU2015104360 A RU 2015104360A RU 2568876 C1 RU2568876 C1 RU 2568876C1
- Authority
- RU
- Russia
- Prior art keywords
- oxime
- pinostrobin
- blood plasma
- concentration
- peak
- Prior art date
Links
Images
Landscapes
- Other Investigation Or Analysis Of Materials By Electrical Means (AREA)
- Investigating Or Analysing Biological Materials (AREA)
Abstract
Изобретение относится к медицине, а именно к фармакологии, и может быть использовано для количественного определения оксима пиностробина в плазме крови. Для этого проводят определение оксима пиностробина в плазме крови методом жидкостной хромато-масс-спектрометрии с использованием смеси плазмы крови с оксимом пиностробина и внутреннего стандарта - вещества, близкого по строению молекулы к анализируемому веществу. Разделение продуктов проводят методом обращенно-фазной хроматографии на колонке размером 4,6×100 мм, термостатируемой при 30°C, скорость элюирования 0,5 мл/мин. В качестве элюента используют смесь 10 мМ ацетата аммония и ацетонитрила в соотношении 10:90 соответственно. Пик оксима пиностробина детектируют по иону с m/z 269.10, образующемуся в результате фрагментации иона оксима пиностробина с m/z 286.10, а его концентрацию рассчитывают по формуле: Coxime=2,073299×RS, где Coxime - концентрация оксима пиностробина (мкг/мл); RS - отношение площади хроматографического пика оксима пиностробина к площади пика внутреннего стандарта. Изобретение обеспечивает метод количественного определения оксима пиностробина в плазме крови для использования в экспериментальной и клинической фармакокинетике. 2 табл., 6 ил.
Description
Изобретение относится к области медицины, а именно к фармакологии, и может быть использовано для количественного определения оксима пиностробина в плазме крови методом жидкостной хромато-масс-спектрометрии.
Оксим пиностробина в экспериментах на лабораторных животных демонстрировал целый ряд фармакологических эффектов, а именно антиоксидантный, гепатопротекторный, иммуностимулирующий и др. (Sariev A.K., Abaimov D.A., et al. Experimental study of pinostrobine oxime biotransformation. Eksp Klin Farmakol., 2014; 77 (8): 39-44).
На сегодняшний день известен ряд работ по количественному хромато-масс-спектрометрическому определению неизмененного фитофлавоноида пиностробина, являющегося родительским веществом, из которого синтезируется оксим пиностробин (5-гидрокси-7-метокси-2-фенил-хромон-4-оксим). Однако указанные методы не могут быть применены для определения оксима пиностробина в плазме крови без существенных модификаций, поскольку оксим пиностробина отличается от своего прекурсора по физико-химическим свойствам, спектральным характеристикам и характеру фрагментации в масс-спектрометре (Salvador M.J., Sartori F.T., Sacilotto A.C., Pral E.M., Alfieri S.C., Vichnewski W: Bioactivity of flavonoids isolated from Lychnophora markgravii against Leishmania amazonensis amastigotes. Z Naturforsch C, 2009, 64 (7-8): 509-512; Alvarez-Ospina H., Rivero Cruz I., Duarte G., Bye R., Mata R: HPLC Determination of the Major Active Flavonoids and GC-MS Analysis of Volatile Components of Dysphania graveolens (Amaranthaceae), Phytochem Anal., 2012).
В патентной литературе способы определения оксима пиностробина в плазме крови также не выявлены.
Таким образом, техническим результатом заявляемого изобретения является создание биоаналитического метода количественного определения оксима пиностробина в плазме крови с высокой воспроизводимостью и точностью, адаптированного для решения задач экспериментальной и клинической фармакокинетики.
Технический результат достигается тем, что определение оксима пиностробина в плазме крови проводят путем анализа вещества высокоселективным методом хромато-масс-спектрометрии с использованием матрицы в виде плазмы крови с оксимом пиностробина и внутреннего стандарта - вещества, близкого по строению молекулы к анализируемому веществу, при этом разделение продуктов экстракции проводят на обращенно-фазной хроматографической колонке 4,6×100 мм, в качестве элюента применяют 10 мМ ацетат аммония и ацетонитрил, взятые в процентном соотношении 10:90 соответственно, с температурой разделения 30°C и скоростью подачи элюента 0,5 мл/мин, детектирование оксима пиностробина проводят по выбранному дочернему иону с m/z 269.10, образующемуся в результате фрагментации родительского молекулярного иона оксима пиностробина с m/z 286.10, а его концентрацию рассчитывают по формуле: Cоxime=2,073299×RS, где
Cоxime - концентрация оксима пиностробина (мкг/мл); RS - отношение площади хроматографического пика оксима пиностробина к площади пика внутреннего стандарта.
Способ осуществляется следующим образом.
Приготовление рабочих стандартных растворов. В качестве стандартного раствора используют рабочий стандартный раствор оксима пиностробина с концентрацией 1 мг/мл в метаноле. Из данного раствора методом последовательных разведений готовят рабочие стандартные растворы оксима пиностробина с концентрацией 50; 25; 12,5; 6,25; 3,12; 1,56 и 0,78 мкг/мл в метаноле. Все приготовленные растворы хранят в холодильнике при +4°C. Приготовленные стандартные растворы оксима пиностробина стабильны в течение всего периода исследования, начиная с момента разработки методики и до последнего дня анализа биологических образцов.
Приготовление модельных растворов в плазме крови. Модельные растворы в плазме крови готовят из рабочих стандартных растворов с концентрациями 50; 25; 12,5; 6.25; 3,12; 1,56 и 0,78 мкг/мл методом внесения 25 мкл аликвоты последних в 225 мкл интактной плазмы крови крыс с таким расчетом, чтобы конечная концентрация оксима пиностробина в плазме составляла 5; 2,5; 1,25; 0.625; 0.312; 0.156 и 0.078 мкг/мл.
Приготовление образцов для анализа. Для выделения оксима пиностробина из плазмы крови и очистки экстракта используют метод жидкостной экстракции. К 250 мкл плазмы крови, с предварительно внесенным внутренним стандартом - (4′-гидрокси-4-метокси-халкон 25 мкл, 100 мкг/мл), добавляют 500 мкл 0,2 М щелочного боратного буфера (pH 9,0) и перемешивают на вортекс-миксере в течение 5 минут при 2000 об/мин. К полученной смеси добавляют 6 мл этилацетата. Полученную смесь встряхивают на вортекс-миксере в течение 5 минут. После этого пробирки со смесью центрифугируют в течение 5 минут при 3000 об/мин до полного разделения слоев. Надосадочный органический слой декантируют, переносят в чистую пробирку и упаривают под вакуумом при температуре 60°C. Сухой остаток растворяют в 250 мкл метанола. Полученный раствор вводят в петлю прибора в объеме 10 мкл. Определение концентрации оксима пиностробина проводят методом высокоэффективной жидкостной хроматографии с масс-спектрометрическим детектированием.
Для осуществления хромато-масс-спектрометрического анализа используют жидкостный хроматограф «Surveyor» производства «Thermo Fisher Scientific» (США), оснащенный насосом «Finnigan Surveyor LC Pump Plus», автосамплером «Finnigan Surveyor AS Plus» с колоночным термостатом и масс-спектрометрическим детектором «LCQ Fleet MS» (квадрупольная ионная ловушка). Масс-спектрометр работает в режиме регистрации ионов, положительно заряженных электроспреем (ESI), который создается напряжением в 5 кВ. Скорость потока газа-небулайзера (азота): 4 л/мин, давление на распылителе - 100 psi. Температура интерфейса капилляра составляет 350°C, температура нагревателя - 300°C. Амплитуда возбуждения на концевых электродах ловушки 0,1 В. Масс-спектрометрический анализ MS2 проводят в режиме мониторинга выбранных ионов (SRM).
Детектирование оксима пиностробина проводят по выбранному дочернему иону с m/z 269.10, образующемуся в результате распада родительского молекулярного иона оксима пиностробина (m/z 286.10) при нормализованной энергии соударений 24 eV. Масс-спектр второго порядка оксима пиностробина при нормализованной энергии соударений 24 eV. представлен на фигуре 1 (по вертикали интенсивность (Intensity) по горизонтали масса заряда (m/z).
Детектирование внутреннего стандарта - 4′-гидрокси-4-метокси-халкона (1-(4-гидроксифенил)-3-(4-метоксифенил)проп-2-ен-1-он) проводят по выбранному дочернему иону с m/z 161.00, образующемуся в результате распада родительского молекулярного иона халкона (m/z 255.20) при нормализованной энергии соударений 29 eV. Масс-спектр второго порядка внутреннего стандарта - 4′-гидрокси-4-метокси-халкона при нормализованной энергии соударений 29 eV представлен на фигуре 2.
В качестве демпфирирующего газа в ионной ловушке используют гелий. Данные обрабатываются с помощью программы Xcalibur 2.1 w/Foundation 1.0.1.
Разделение осуществляют на обращенно-фазной хроматографической колонке Hypersil Gold, 5 мкм, 4,6×100 мм. Температура разделения 30°C. Элюирование осуществляют в изократическом режиме. Подвижная фаза состоит из двух растворов: 10 мМ ацетата аммония (раствор А) и смеси ацетонитрил - 10 мМ ацетат аммония (90:10; v/v) (раствор Б), взятых в процентном соотношении 10:90 соответственно. Скорость потока подвижной фазы 0,5 мл/мин. Объем пробы 10 мкл. Время удерживания RT оксима пиностробина составляет в среднем 3,3±0,1 мин. Время анализа единичного образца составляет 5,0±0,5 минут.
На фигурах 3, 4, 5 представлены масс-хроматограммы экстрактов интактной плазмы крови и плазмы, содержащей оксим пиностробина в концентрациях 0,078 и 1,25 мкг/мл соответственно. На фигуре 3 показана масс-хроматограмма интактной плазмы крови (по вертикали относительное содержание (Relative abundance), по горизонтали время (Time) в минутах). На фигуре 4 представлена масс-хроматограмма экстракта плазмы крови, содержащей 0,078 мкг/мл оксима пиностробина. Пик с RT 3,28 мин - пик оксима пиностробина. Пик с RT 2,98 мин - пик внутреннего стандарта (4′-гидрокси-4-метокси-халкон). На фигуре 5 представлена масс-хроматограмма экстракта плазмы крови, содержащей 1,25 мкг/мл оксима пиностробина. Пик с RT 3,28 мин - пик оксима пиностробина. Пик с RT 3,00 мин - пик внутреннего стандарта (4′-гидрокси-4-метокси-халкон).
На фигуре 6 представлена калибровочная кривая зависимости концентрации оксима пиностробина от отношения площадей хроматографических пиков анализируемого вещества и внутреннего стандарта (Area Ratio).
Количественный анализ проводят методом внутреннего стандарта с использованием программного обеспечения «Quan Browser» компании «Termo Fisher Scientific». Калибровочную кривую получают в результате анализа проб плазмы с добавками известных количеств стандарта определяемого соединения (оксима пиностробина). Для построения калибровочной кривой готовят рабочий стандартный раствор оксима пиностробина в метаноле - 1 мг/мл. Из него далее методом последовательных разведений готовят серию стандартных растворов оксима пиностробина в плазме крови с концентрациями: 5; 2,50; 1,25; 0,625; 0,312; 0,156 и 0,078 мкг/мл. В каждый образец плазмы крови добавляют 25 мкл раствора внутреннего стандарта с концентрацией 100 мкг/мл. Для определения калибровочной зависимости применяют регрессионный метод наименьших квадратов. Калибровочная зависимость линейна в изучаемом диапазоне концентраций. График описывается линейным уравнением:
Y=0,482323×Х,
где Y - отношение площадей пиков оксима пиностробина к площадям пиков внутреннего стандарта в условных единицах интегрирования;
X - концентрация оксима пиностробина, мкг/мл.
Концентрация оксима пиностробина рассчитывается по формуле: Coxime=2,073299×RS,
где Coxime - концентрация оксима пиностробина (мкг/мл),
RS - отношение площади хроматографического пика оксима пиностробина к площади пика внутреннего стандарта. Предел количественного обнаружения в плазме без предварительного концентрирования - 0,078 мкг/мл. Для определения меньших концентраций применяли метод концентрирования - объем плазмы крови увеличивают до 1 мл, сухой остаток растворяют 100 мкл метанола.
Прецизионность и правильность методики оценивается по трем концентрационным уровням рабочих стандартных растворов оксима пиностробина после 6 определений каждого уровня (таблица 1). Для концентрации 0,078 мкг/мл ошибка метода не превышала 15%.
Каждый из образцов, предназначенных для контроля качества, анализируют в течение 1 рабочего дня (6 определений). Предел количественного определения для оксима пиностробина составляет 0,078 мкг/мл. Для 0,078 мкг/мл средняя точность составляет 3,09% C.V., средняя воспроизводимость - 0,64% dev. Остальные пробы с концентрациями 1,25 и 5 мкг/мл имеют точность от 1,44 до 4,21% C.V. Воспроизводимость варьирует от -0,80 до 2,67% dev. Результаты представлены в таблице 1.
Точность выражается в виде коэффициента вариации (% C.V.) для каждой серии образцов согласно уравнению:
где SD - стандартное отклонение серии определений в течение рабочего дня концентраций оксима пиностробина;
Воспроизводимость измеряется как процент отклонения (% dev.) от теоретического значения по формуле:
где x - среднее арифметическое значение полученных концентраций оксима пиностробина;
Метрологические характеристики разработанной методики представлены в таблице 2. Относительная ошибка определения оксима пиностробина не превышает 15%.
SD - стандартное отклонение серии определений концентраций оксима пиностробина;
ε % - ошибка среднего результата полученных значений концентраций оксима пиностробина.
Таким образом, заявленный способ обладает высокой эффективностью, не требует проведения многочисленных предварительных химических реакций и не предусматривает использование большого количества химических реактивов.
Высокая точность и воспроизводимость биоаналитического метода количественного определения оксима пиностробина в плазме крови обеспечивает идентификацию вещества с установленными характеристиками погрешности, что позволяет использовать данную методику как в экспериментальной, так и клинической фармакокинетики.
Claims (1)
- Способ количественного определения оксима пиностробина в плазме крови, включающий анализ вещества высокоселективным методом хромато-масс-спектрометрии с использованием матрицы в виде плазмы крови с оксимом пиностробина и внутреннего стандарта - вещества, близкого по строению молекулы к анализируемому веществу, разделение продуктов экстракции проводят на обращенно-фазной хроматографической колонке 4,6×100 мм, при этом в качестве элюента применяют 10 мМ ацетат аммония и ацетонитрил, взятые в процентном соотношении 10:90 соответственно, с температурой разделения 30°C и скоростью подачи элюента 0,5 мл/мин, детектирование оксима пиностробина проводят по выбранному дочернему иону с m/z 269.10, образующемуся в результате фрагментации родительского молекулярного иона оксима пиностробина с m/z 286.10, а его концентрацию рассчитывают по формуле: Coxime = 2,073299×RS, где Coxime - концентрация оксима пиностробина (мкг/мл); RS - отношение площади хроматографического пика оксима пиностробина к площади пика внутреннего стандарта.
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
RU2015104360/15A RU2568876C1 (ru) | 2015-02-11 | 2015-02-11 | Способ определения оксима пиностробина в плазме крови |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
RU2015104360/15A RU2568876C1 (ru) | 2015-02-11 | 2015-02-11 | Способ определения оксима пиностробина в плазме крови |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
RU2568876C1 true RU2568876C1 (ru) | 2015-11-20 |
Family
ID=54598195
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
RU2015104360/15A RU2568876C1 (ru) | 2015-02-11 | 2015-02-11 | Способ определения оксима пиностробина в плазме крови |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
RU (1) | RU2568876C1 (ru) |
Cited By (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
RU2650968C1 (ru) * | 2017-06-29 | 2018-04-18 | Федеральное государственное бюджетное научное учреждение "Научный центр неврологии" (ФГБНУ НЦН) | Способ количественного определения амантадина в плазме крови |
CN111175252A (zh) * | 2020-03-06 | 2020-05-19 | 山东省化工研究院 | 一种阿贝折光仪检测丁酮肟含量的方法 |
Citations (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN103073530B (zh) * | 2013-02-04 | 2014-07-23 | 河南中医学院 | 一种从山橿中制备球松素的方法 |
WO2014163512A1 (en) * | 2013-04-05 | 2014-10-09 | Manuka Health New Zealand Limited | Therapeutic compositions comprising extracts of propolis and uses thereof |
-
2015
- 2015-02-11 RU RU2015104360/15A patent/RU2568876C1/ru active
Patent Citations (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN103073530B (zh) * | 2013-02-04 | 2014-07-23 | 河南中医学院 | 一种从山橿中制备球松素的方法 |
WO2014163512A1 (en) * | 2013-04-05 | 2014-10-09 | Manuka Health New Zealand Limited | Therapeutic compositions comprising extracts of propolis and uses thereof |
Non-Patent Citations (1)
Title |
---|
САРИЕВ А.К., Экспериментальное изучение биотрансформации оксима пиностробина, Экспериментальная и клиническая фармакология, 2014, N 8, стр. 39-44, найдено 24.07.2015 в Интернете на сайте http://www.fesmu.ru/elib/Article.aspx?id=302545. БРАСЛАВСКИЙ В.Б., Комплексные фармакогностические исследования растений семейства ивовых и прополиса как источников лекарственных средств, Известия Самарского научного центра РАН, 2011, 13, N1-8, стр. 1978-1981, найдено 24.07.2015 в Интернете на сайте. http://www.ssc.smr.ru/media/journals/izvestia/2011/2011_1_1978_1981.pdf. * |
Cited By (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
RU2650968C1 (ru) * | 2017-06-29 | 2018-04-18 | Федеральное государственное бюджетное научное учреждение "Научный центр неврологии" (ФГБНУ НЦН) | Способ количественного определения амантадина в плазме крови |
CN111175252A (zh) * | 2020-03-06 | 2020-05-19 | 山东省化工研究院 | 一种阿贝折光仪检测丁酮肟含量的方法 |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
Makarov et al. | Coupling liquid chromatography to Orbitrap mass spectrometry | |
Georgakopoulos et al. | Preventive doping control analysis: liquid and gas chromatography time‐of‐flight mass spectrometry for detection of designer steroids | |
Porta et al. | Gas-phase separation of drugs and metabolites using modifier-assisted differential ion mobility spectrometry hyphenated to liquid extraction surface analysis and mass spectrometry | |
Aranda et al. | Simultaneous determination of caffeine, ergotamine, and metamizol in solid pharmaceutical formulation by HPTLC-UV-FLD with mass confirmation by online HPTLC-ESI-MS | |
Virus et al. | Introduction of HPLC/orbitrap mass spectrometry as screening method for doping control | |
Stolker et al. | Liquid chromatography with triple-quadrupole and quadrupole-time-of-flight mass spectrometry for the determination of micro-constituents–a comparison | |
Hsieh et al. | Simultaneous determination of nicotinic acid and its metabolites using hydrophilic interaction chromatography with tandem mass spectrometry | |
Chen et al. | Analysis of active alkaloids in the Menispermaceae family by nonaqueous capillary electrophoresis‐ion trap mass spectrometry | |
Yousefi‐Taemeh et al. | Analysis of tetrahydrocannabinol derivative from cannabis‐infused chocolate by QuEChERS‐thin layer chromatography‐desorption electrospray ionization mass spectrometry | |
Drouin et al. | Evaluation of ion mobility in capillary electrophoresis coupled to mass spectrometry for the identification in metabolomics | |
Cimlová et al. | In situ derivatization–liquid liquid extraction as a sample preparation strategy for the determination of urinary biomarker prolyl‐4‐hydroxyproline by liquid chromatography–tandem mass spectrometry | |
Nikam et al. | Bioanalysis-method development, validation, sample preparation, its detection techniques and its application | |
RU2568876C1 (ru) | Способ определения оксима пиностробина в плазме крови | |
US6808933B1 (en) | Methods of enhancing confidence in assays for analytes | |
Mathias et al. | Assessment of atmospheric solids analysis probe as a tool for the rapid determination of drug purity | |
Temghare et al. | Rapid and sensitive method for quantitative determination of lopinavir and ritonavir in human plasma by liquid chromatography‐tandem mass specrtometry | |
Mirabelli et al. | Determining fatty acids by desorption/ionization mass spectrometry using thin-layer chromatography substrates | |
Chen et al. | Development and validation of a liquid chromatographic/tandem mass spectrometric method for the determination of sertraline in human plasma | |
RU2585115C1 (ru) | Способ определения карнозина в биологических материалах | |
Luosujärvi et al. | Analysis of selective androgen receptor modulators by gas chromatography-microchip atmospheric pressure photoionization-mass spectrometry | |
Durner et al. | Principles of analytical chemistry for toxicology | |
Schuhmacher et al. | Recent developments in the application of liquid chromatography–tandem mass spectrometry for the determination of organic residues and contaminants | |
Rivera et al. | Application of liquid chromatography-tandem mass spectrometry to the analysis of benzodiazepines in blood | |
RU2473079C1 (ru) | Способ обнаружения комплекса ксенобиотиков в биологической жидкости при допинговом контроле и устройство для его осуществления | |
RU2650968C1 (ru) | Способ количественного определения амантадина в плазме крови |