RU2567845C1 - METHOD OF SEPARATION OF LARVAE T.canis BY METHOD OF DIGESTING LUNG AND LIVER PARENCHYMA OF CARNIVORES - Google Patents
METHOD OF SEPARATION OF LARVAE T.canis BY METHOD OF DIGESTING LUNG AND LIVER PARENCHYMA OF CARNIVORES Download PDFInfo
- Publication number
- RU2567845C1 RU2567845C1 RU2014137093/15A RU2014137093A RU2567845C1 RU 2567845 C1 RU2567845 C1 RU 2567845C1 RU 2014137093/15 A RU2014137093/15 A RU 2014137093/15A RU 2014137093 A RU2014137093 A RU 2014137093A RU 2567845 C1 RU2567845 C1 RU 2567845C1
- Authority
- RU
- Russia
- Prior art keywords
- larvae
- gastric juice
- poured
- artificial gastric
- carnivores
- Prior art date
Links
Landscapes
- Peptides Or Proteins (AREA)
Abstract
Description
Изобретение относится к области ветеринарии (паразитологии) и может быть использовано для посмертной диагностики токсокароза плотоядных животных и выделения мигрирующих личинок токсокар II-й стадии из паренхимы легких или печени с целью получения паразитарных белков, обладающих антигенными свойствами.The invention relates to the field of veterinary medicine (parasitology) and can be used for the posthumous diagnosis of toxocariasis of carnivores and the isolation of migrating second-stage toxocari larvae from lung or liver parenchyma in order to obtain parasitic proteins with antigenic properties.
Применение данного метода в практической ветеринарии позволит существенно уточнить эпизоотологическую обстановку по токсокарозу плотоядных и оценить риск заражения людей этими гельминтами, обосновать необходимость контроля над развитием популяции паразита в городах, получить специфический материал для создания тест-систем или вакцин.The application of this method in practical veterinary medicine will significantly clarify the epidemiological situation of carnivores toxocariasis and assess the risk of people becoming infected with these helminths, justify the need for control over the development of the parasite population in cities, and obtain specific material for creating test systems or vaccines.
Токсокароз-инвазионная зоонозная болезнь, имеющая важное эпидемиолого-эпизоотическое и большое социальное значение, возбудителем которого является нематода семейства Anisakidae, рода Toxocara, вид Toxocara canis (Werner, 1782) - паразит псовых. Значительное скопление собак в городских поселениях, частая их инвазированность гельминтами, отсутствие средств дезинвазии конкрементов создает высокий уровень обсемененности почвы яйцами нематод, что делает их одним из важных эпидемиологических компонентов урбанистической среды. Поражения человека в этих условиях мигрирующими личинками токсокар (т.н. «larva migrans») нередки, а для некоторых групп населения, например детей, несут существенную угрозу здоровью.Toxocariasis is an invasive zoonotic disease that has important epidemiological and epizootic and great social significance, the causative agent of which is the nematode of the family Anisakidae, genus Toxocara, a species of Toxocara canis (Werner, 1782) - canine parasite. A significant accumulation of dogs in urban settlements, their frequent invasion by helminths, and the lack of stone disinfestation agents creates a high level of soil contamination with nematode eggs, which makes them one of the important epidemiological components of the urban environment. Defeats of a person under these conditions by migrating toxocar larvae (the so-called “larva migrans”) are not uncommon, and for some groups of the population, for example children, pose a significant threat to health.
Наиболее интенсивно заражаются молодые собаки, а щенки от рождения до 30 дней заражены токсокарами на 90-100%, что обусловлено способностью личинок в период беременности животных и повышения гормонального фона при лактации возобновить свою активность и продолжить миграцию, при этом они попадают в органы и ткани плода. Большинство личинок, вышедшие из яиц в желудочно-кишечном тракте совершают законченную гепато-пульмональную миграцию и достигают половозрелой стадии в кишечнике. Впоследствии начинается выделение яиц токсокар во внешнюю среду. Одна самка токсокары способна выделить 200.000 яиц в день с калом, поэтому контаминация окружающей среды растет очень быстро. У собак старше года личинки обычно накапливаются в соматических тканях и остаются жизнеспособными на протяжении 2-3 лет [1]. Высокий процент зараженности собак токсокарами является следствием пожизненного бессимптомного носительства личинок [2].Young dogs are most infected, and puppies from 90 to 100% are infected with toxocaras from birth to 30 days, due to the ability of the larvae to resume their activity and continue migration during lactation during lactation, while they enter the organs and tissues fetus. Most of the larvae that emerge from the eggs in the gastrointestinal tract complete a hepatopulmonary migration and reach a mature stage in the intestine. Subsequently, the release of toxocar eggs into the external environment begins. One female toxocara is capable of secreting 200,000 eggs per day with feces, so environmental contamination is growing very quickly. In dogs older than one year, larvae usually accumulate in somatic tissues and remain viable for 2–3 years [1]. A high percentage of dogs infected with toxocaras is the result of lifelong asymptomatic carriage of larvae [2].
В связи с этим актуальным является разработка и совершенствование способов диагностики, позволяющих повысить эффективность обнаружения тканевых, мигрирующих личинок токсокар до попадания гельминтов в кишечник и достижения ими половой зрелости (пока еще не происходит выделение инвазионных элементов во внешнюю среду). С другой стороны, представленный метод позволяет уточнять диагноз в случаях внезапной гибели щенков при низкой степени инвазирования или при патологии неясной этиологии.In this regard, it is urgent to develop and improve diagnostic methods to increase the efficiency of detection of tissue, migrating toxocar larvae before helminths enter the intestines and reach puberty (no invasive elements are released into the external environment). On the other hand, the presented method allows us to clarify the diagnosis in cases of sudden death of puppies with a low degree of invasion or with pathology of an unclear etiology.
Известен метод получения культуры личинок Toxocara canis, разработанный П.А. Солоповым (2009) [2] из оплодотворенных яиц. Суспензию яиц токсокар выдерживают в помещении лаборатории при температуре +22°C, относительной влажности воздуха 85% и естественном освещении. Культивирование яиц токсокар выполняют в среде, содержащей 1% глютамин. При культивировании в физиологическом растворе по истечении десяти суток с начала опыта 97,5% яиц разрушилось. К созревшим яйцам добавляли искусственный желудочный сок, состоящий из панкреатина, свиной желчи и 1% соляной кислоты. Обработка яиц токсокар искусственным желудочным соком проводилась в термостате при температуре 37,5°C в течение 8-10 часов. После освобождения личинок нематод из яйцевых оболочек их отделяли от жидкости путем центрифугирования при 2500 об/мин в течение 15 минут. При микроскопическом исследовании после центрифугирования в осадке содержались подвижные личинки токсокар второй стадии.A known method of obtaining a culture of larvae of Toxocara canis, developed P.A. Solopov (2009) [2] from fertilized eggs. The toxocar egg suspension is kept in the laboratory at a temperature of + 22 ° C, relative humidity of 85% and natural light. The cultivation of toxocar eggs is performed in an environment containing 1% glutamine. When cultured in saline after ten days from the start of the experiment, 97.5% of the eggs were destroyed. Artificial gastric juice consisting of pancreatin, pork bile and 1% hydrochloric acid was added to the ripened eggs. Processing of toxocar eggs with artificial gastric juice was carried out in a thermostat at a temperature of 37.5 ° C for 8-10 hours. After liberation of the nematode larvae from the egg membranes, they were separated from the liquid by centrifugation at 2500 rpm for 15 minutes. Microscopic examination after centrifugation in the sediment contained mobile second stage toxocar larvae.
Автор делает вывод, что оптимальными параметрами культивирования яиц Toxocara canis являются: температура +23-25°C, влажность 82-85%. Завершение формирования личинок и проявление активности наблюдается через 25-30 дней при культивировании яиц, выделенных из матки токсокар, в 1% растворе глютамина с добавлением стрептомицина и нистатина [2].The author concludes that the optimal parameters for the cultivation of Toxocara canis eggs are: temperature + 23-25 ° C, humidity 82-85%. The completion of larval formation and manifestation of activity is observed after 25-30 days during the cultivation of eggs isolated from the uterus of toxocar in a 1% glutamine solution with the addition of streptomycin and nystatin [2].
Метод получения культуры личинок Т.canis 2-й стадии П.А. Солопова требует затраты длительного временного промежутка (30 суток) и является трудоемким. Также для проведения данной работы необходимо иметь половозрелых самок Т. canis, выделить культуру оплодотворенных яиц из матки, подготовить питательную среду и подобрать оптимальные условия культивирования. Необходимо отметить, что полученные личинки не проходили миграцию в организме хозяина и могут не иметь в своем белковом составе необходимых антигенных белков и ферментов проникновения. К тому же метод, предложенный П.А. Солоповым, не может являться инструментом для посмертной диагностики токсокароза при отсутствии гельминтов в кишечнике животного, а исследователь имеет постоянный контакт с инвазионным материалом, обладающим гипераллергенными свойствами.A method for obtaining a culture of T.canis larvae of the 2nd stage P.A. Solopova requires a long time period (30 days) and is time consuming. Also, to carry out this work, it is necessary to have sexually mature females of T. canis, isolate the culture of fertilized eggs from the uterus, prepare a nutrient medium and select optimal cultivation conditions. It should be noted that the obtained larvae did not migrate in the host organism and may not have the necessary antigenic proteins and penetration enzymes in their protein composition. In addition, the method proposed by P.A. Solopov, cannot be a tool for the posthumous diagnosis of toxocariasis in the absence of helminths in the intestines of the animal, and the researcher has constant contact with invasive material with hypeallergenic properties.
Попытки разработать способы переваривания мышечной ткани предпринимались более 100 лет назад. Для изучения патологии, вызванной трихинеллами, и выделения личинок Ströbel (1911) [3] впервые применил переваривание мышечной ткани в искусственном желудочном соке (ИЖС) с содержанием 0,5%-ной соляной кислоты и 0,7%-ного пепсина (5,0 мл концентрированной HCl и 7,0 г пепсина на 1 литр раствора). Переваривание проводилось при 38°C. Данный метод искусственного переваривания мышц получил широкое распространение и постоянно совершенствовался [4, 5].Attempts to develop ways to digest muscle tissue were made more than 100 years ago. To study the pathology caused by Trichinella and the isolation of larvae, Ströbel (1911) [3] first used the digestion of muscle tissue in artificial gastric juice (IZHS) with a content of 0.5% hydrochloric acid and 0.7% pepsin (5, 0 ml of concentrated HCl and 7.0 g of pepsin per 1 liter of solution). Digestion was carried out at 38 ° C. This method of artificial muscle digestion was widespread and constantly improved [4, 5].
Впервые для диагностики трихинеллеза свиней метод искусственного переваривания мышц был применен Ransom (1916) [6], который 50,0 г измельченных мышц заливал 600,0 мл желудочного сока (1% соляной кислоты и 0,25% пепсина или 10,0 мл и 2,5 г на 1 литр раствора, соответственно), а смесь инкубировал в мензурке при 37-40°C в течение 18-24 часов.For the first time, Ransom (1916) [6] was used for the diagnosis of pig trichinosis with the use of muscle digestion method, which filled 50.0 g of crushed muscles with 600.0 ml of gastric juice (1% hydrochloric acid and 0.25% pepsin or 10.0 ml and 2.5 g per 1 liter of solution, respectively), and the mixture was incubated in a beaker at 37-40 ° C for 18-24 hours.
Оригинальную методику ускоренного переваривания мышц, ставшую классической и позволяющую получать результат исследования через 3,5-4,5 часа, разработала П.А. Владимирова (1963, 1965, 1968, 1969, 1972) [7, 8, 9, 10, 11]. 10,0 г измельченных мышц она вносила в колбу и заливала 15-20-кратным (к весу фарша) количеством ИЖС, составленного из расчета 1% соляной кислоты и 3% пепсина (10,0 мл HCl и 30,0 г пепсина на 1 литр раствора). Инкубирование проводили при температуре 37-42°C при периодическом перемешивании, осадок после окончания переваривания исследовала в чашке Петри.The original technique of accelerated muscle digestion, which has become classical and allows you to get the result of the study after 3.5-4.5 hours, was developed by P.A. Vladimirova (1963, 1965, 1968, 1969, 1972) [7, 8, 9, 10, 11]. She introduced 10.0 g of crushed muscles into a flask and poured 15-20 times (by weight of minced meat) the amount of IZHS, calculated on the basis of 1% hydrochloric acid and 3% pepsin (10.0 ml of HCl and 30.0 g of pepsin per 1 liter of solution). Incubation was carried out at a temperature of 37-42 ° C with periodic stirring, the precipitate after digestion was studied in a Petri dish.
Данными методами проводилось исследование мышечной ткани, преимущественно для диагностики трихинеллеза.These methods were used to study muscle tissue, mainly for the diagnosis of trichinosis.
Наиболее близким к заявленному способу является способ обнаружения трофозоитов саркоцист [12]. Способ обнаружения трофозоитов саркоцист, включающий отбор проб мышечной ткани, измельчение, раскладку в колбы, внесение искусственного желудочного сока, инкубирование, центрифугирование, исследование осадка, отличается тем, что искусственный желудочный сок составляют по прописи: вода дистиллированная температуры 41-42°C до 1000,0 мл, кислота соляная концентрированная удельной массой 1,2 12,0-15,0 мл, пепсин пищевой свиной 20,0-30,0 г, а инкубирование проводят в аппарате «Гастрос» при температуре 41-42°C, перевар отстаивают, после чего осадок подвергают центрифугированию, из пробирки аспирируют 8,0 мл верхнего слоя жидкости, из нижнего слоя берут каплю и делают мазок на предметном стекле, а оставшуюся часть наносят пипеткой на предметные стекла и высушивают, далее приготовленные препараты окрашивают по Романовскому-Гимза в течение 10 мин и исследуют под микроскопом при увеличении ×400 и ×1250 с иммерсией.Closest to the claimed method is a method for detecting trophozoites of sarcocysts [12]. A method for detecting trophozoites of a sarcocyst, including sampling muscle tissue, grinding, laying in flasks, introducing artificial gastric juice, incubation, centrifugation, sediment testing, characterized in that the artificial gastric juice is made up according to the recipe: distilled water at a temperature of 41-42 ° C to 1000 , 0 ml, concentrated hydrochloric acid with a specific gravity of 1.2 12.0-15.0 ml, food pork pepsin 20.0-30.0 g, and incubation is carried out in the Gastros apparatus at a temperature of 41-42 ° C, digest defend, after which the precipitate is subjected centrifugation, 8.0 ml of the upper liquid layer is aspirated from the test tube, a drop is taken from the lower layer and a smear is made on a glass slide, and the remainder is pipetted onto a glass slide and dried, then the prepared preparations are stained according to Romanovsky-Giemsa for 10 minutes and examined under a microscope at magnification × 400 and × 1250 with immersion.
Данный способ применяется для диагностики тканевых форм простейших в мышечной ткани крупного рогатого скота.This method is used to diagnose tissue forms of protozoa in the muscle tissue of cattle.
Технической задачей заявляемого изобретения является разработка способа посмертной диагностики токсокароза плотоядных животных и выделения мигрирующих личинок токсокар II-й стадии из паренхимы легких и/или печени.The technical task of the invention is the development of a method for the posthumous diagnosis of toxocariasis of carnivores and the isolation of migrating second-stage toxocari larvae from the lung and / or liver parenchyma.
Технический результат решается тем, что для выделения личинок токсокар применили метод переваривания в ИЖС паренхимы легких и печени плотоядных животных. Для этого отбирали пробы легочной ткани и ткани печени, измельчали, искусственный желудочный сок готовили по следующей прописи: кислоту соляную концентрированную удельной массой 1,2 11,0 см3 доводили водой водопроводной температуры 41-42°C до 1000,0 см3 и добавляли пепсин пищевой свиной 7,0 г. Измельченную пробу с ИЖС помещали в реактор аппарата «Гастрос», инкубировали 50 минут, перевар отстаивался 10 минут, исследовали осадок в объеме 20,0 см3. Для концентрации и сохранения личинок полученный материал центрифугировали при 5000 об/мин 10 мин, далее из пробирки аспирировали 10,0 см3 верхнего слоя жидкости, оставшийся осадок с личинками сохраняли для дальнейших исследований замораживанием при -20°C.The technical result is solved by the fact that to isolate toxocar larvae, a method of digestion of the parenchyma of the lungs and liver of carnivores in IHL was used. For this, samples of lung tissue and liver tissue were taken, crushed, artificial gastric juice was prepared according to the following recipe: concentrated hydrochloric acid with a specific gravity of 1.2 11.0 cm 3 was brought with water of tap temperature 41-42 ° C to 1000.0 cm 3 and added food pork pepsin 7.0 g. The ground IHL sample was placed in the reactor of the Gastros apparatus, incubated for 50 minutes, the digest settled for 10 minutes, and the sediment was examined in a volume of 20.0 cm 3 . To concentrate and preserve the larvae, the obtained material was centrifuged at 5000 rpm for 10 min, then 10.0 cm 3 of the upper liquid layer was aspirated from the tube, the remaining sediment with larvae was stored for further studies by freezing at -20 ° C.
Преимущество метода искусственного переваривания заключается в том, что этим методом можно исследовать сразу большую массу проб и обнаружить очень слабое заражение. Аппарат «Гастрос» предназначен разработчиком для выделения личинок червей (трихинелл), которые локализуются в поперечнополосатой мускулатуре свиньи. Нами разработан способ с использованием аппарата «Гастрос» для выделения личинок токсокар, которые локализуются в паренхиме легких и печени плотоядных животных в процессе миграции.The advantage of the artificial digestion method is that with this method you can immediately examine a large mass of samples and detect a very weak infection. The device "Gastros" is designed by the developer to isolate the larvae of worms (trichinella), which are localized in the striated musculature of the pig. We have developed a method using the Gastros apparatus to isolate toxocari larvae, which are localized in the parenchyma of the lungs and liver of carnivores during migration.
Известные методы направлены на переваривание мышечной ткани, нашей целью было переварить легочную и печеночную ткань, для которых необходимо увеличение концентрации кислоты и пепсина для ускорения и лучшего переваривания.Known methods are aimed at the digestion of muscle tissue, our goal was to digest the lung and liver tissue, which requires an increase in the concentration of acid and pepsin to accelerate and better digest.
Для выделения личинок нами предложена пропись искусственного желудочного сока: кислоту соляную концентрированную (уд. масса 1,2) 11,0 см3 доводить до 1000,0 см3 водой водопроводной температуры 41-42°C и добавлять пепсина пищевого свиного 7,0 г.To isolate the larvae, we proposed a recipe for artificial gastric juice: concentrated hydrochloric acid (specific mass 1.2) 11.0 cm 3, bring to 1000.0 cm 3 with tap water at 41-42 ° C and add food pork pepsin 7.0 g .
Предложенный метод позволяет эффективно обнаруживать возбудителя токсокароза при посмертной диагностике данной болезни, в случаях, если инвазия незначительная и когда в кишечнике еще нет половозрелых гельминтов, с другой стороны, таким образом можно получать чистую культуру личинок, что будет служить материалом для дальнейших генетических исследований, а также для получения белков с хорошими диагностическими или протективными свойствами. Результаты проведенных исследований позволят разрабатывать и совершенствовать методы диагностики токсокароза плотоядных на стадии миграции паразитов и эффективнее проводить противоэпизоотические мероприятия, направленные на борьбу с зоонозами.The proposed method allows you to effectively detect the causative agent of toxocariasis in the posthumous diagnosis of this disease, in cases where the invasion is insignificant and when there are no sexually mature helminths in the intestine, on the other hand, in this way a pure culture of larvae can be obtained, which will serve as material for further genetic studies, and also for the production of proteins with good diagnostic or protective properties. The results of the research will allow us to develop and improve methods for the diagnosis of carnivore toxocariasis at the stage of parasite migration and more effectively carry out anti-epizootic measures aimed at combating zoonoses.
Способ осуществляют следующим образом.The method is as follows.
Отобранные пробы паренхимы легких и/или печени массой 50,0 г тщательно измельчают на мясорубке с диаметром решетки 3-4 мм. Искусственный желудочный сок готовят предварительно отдельно по следующей прописи: 11,0 см3 концентрированной соляной кислоты (удельная масса 1,2) доводят до 1000,0 см3 водопроводной водой, подогретой до 41-42°C, добавляют 7,0 г пищевого свиного пепсина. ИЖС заливают в реактор аппарата «Гастрос» НПО «Петролайзер» (Санкт-Петербург), после прогрева до 41-42°C в него помещают стакан с измельченной пробой, и аппарат устанавливают в режим работы продолжительностью 60 минут при 41-42°C (время переваривания 50 минут, время отстоя перевара 10 минут), при этом автоматически осуществляется перемешивание пробы и поддержание выбранной температуры. После отстаивания из реактора осадок сливают в объеме 20,0 см3. Наличие личинок определяют под лупой. Для концентрации применяют метод центрифугирования при 5000 об/мин 10 мин, далее из пробирки аспирируют 10,0 см3 верхнего слоя жидкости, оставшийся осадок с личинками сохраняют для дальнейших исследований замораживанием при -20°C.The selected samples of lung and / or liver parenchyma weighing 50.0 g are carefully ground in a meat grinder with a grid diameter of 3-4 mm. Artificial gastric juice is prepared previously separately according to the following recipe: 11.0 cm 3 of concentrated hydrochloric acid (specific gravity 1.2) is adjusted to 1000.0 cm 3 with tap water, heated to 41-42 ° C, 7.0 g of edible pork is added pepsin. IZHS are poured into the reactor of the Gastros apparatus of the NPO Petrolizer (St. Petersburg), after warming up to 41-42 ° C, a glass with crushed sample is placed in it, and the apparatus is set into operation for 60 minutes at 41-42 ° C ( the digestion time is 50 minutes, the digestion time is 10 minutes), while the sample is automatically mixed and the selected temperature is maintained. After settling out of the reactor, the precipitate is drained in a volume of 20.0 cm 3 . The presence of larvae is determined under a magnifying glass. For concentration, the centrifugation method is used at 5000 rpm for 10 min, then 10.0 cm 3 of the upper liquid layer is aspirated from the tube, the remaining sediment with larvae is stored for further studies by freezing at -20 ° C.
Способ выделения личинок T.canis методом переваривания паренхимы легких и печени плотоядных животных иллюстрируется следующим примером. The method of isolation of T.canis larvae by digesting the parenchyma of the lungs and liver of carnivores is illustrated by the following example.
Пример.Example.
В клинику были доставлены 3 трупа беспородных уличных щенка, 1,5-месячного возраста, погибшие внезапно без ярко-выраженных клинических признаков. Всего в помете 8 щенков, 5 других остались клинически здоровы, погибшие были ослабленными и менее развитыми. По результатам проведенного вскрытия гельминты в кишечнике обнаружены не были.Three corpses of an outbred street puppy, 1.5 months of age, who died suddenly without pronounced clinical signs, were delivered to the clinic. A total of 8 puppies in the litter, 5 others remained clinically healthy, the dead were weakened and less developed. According to the results of an autopsy, helminths were not detected in the intestine.
У щенков были отобраны пробы паренхимы легочной ткани и печени. Пробу массой 50 г измельчали на мясорубке с диаметром решетки 3-4 мм. ИЖС готовили отдельно: 11,0 см3 концентрированной соляной кислоты (удельная масса 1,2) доводили до 1000,0 см3 водопроводной водой, подогретой до 41-42°C, и добавляли 7,0 г пепсина свиного. Полученную смесь тщательно перемешивали и заливали в аппарат «Гастрос» для переваривания, в реактор помещали стакан с измельченной пробой. Параметры культивирования: температура 41-42°C, время переваривания 50 минут, время отстоя перевара 10 минут. Степень переваривания определяли визуально. Полученный перевар представляет собой мутный бульон без крупных оформленных частиц ткани, на дне реактора остался тонкий коричневатый осадок.Puppy samples of lung parenchyma and liver were collected from puppies. A sample weighing 50 g was ground in a meat grinder with a grid diameter of 3-4 mm. IZHS were prepared separately: 11.0 cm 3 of concentrated hydrochloric acid (specific gravity 1.2) was brought to 1000.0 cm 3 with tap water heated to 41-42 ° C, and 7.0 g of pork pepsin was added. The resulting mixture was thoroughly mixed and poured into the Gastros apparatus for digestion, and a beaker with ground sample was placed in the reactor. Cultivation parameters: temperature 41-42 ° C, digestion time 50 minutes, digestion time 10 minutes. The degree of digestion was determined visually. The resulting digest is a muddy broth without large framed tissue particles; a thin brownish precipitate remains at the bottom of the reactor.
После этого 20,0 см3 осадка сливали в чашку Петри и под лупой определяли наличие личинок, после чего переливали в центрифужную пробирку и центрифугировали при 5000 об/мин 10 мин, далее из пробирки аспирировали 10,0 см3 верхнего слоя жидкости, оставшийся осадок с личинками сохраняли для дальнейших исследований замораживанием при -20°C.After that, 20.0 cm 3 of sediment was poured into a Petri dish and the presence of larvae was determined under a magnifying glass, then it was poured into a centrifuge tube and centrifuged at 5000 rpm for 10 minutes, then 10.0 cm 3 of the upper liquid layer was aspirated, the remaining sediment with larvae were kept for further studies by freezing at -20 ° C.
В результате методом переваривания легочной и печеночной ткани была установлена инвазия мигрирующими личинками токсокар II-й стадии у двух из трех погибших щенков.As a result, an invasion of stage II toxocar larvae was detected by the method of digesting lung and liver tissue in two of the three dead puppies.
Выводыfindings
1. Установлено, что разработанный метод выделения личинок T.canis методом переваривания паренхимы легких и печени плотоядных животных является легко выполнимым, высокоэффективным и не имеет аналогов.1. It has been established that the developed method for isolating T.canis larvae by digesting the parenchyma of the lungs and liver of carnivores is easily feasible, highly effective, and has no analogues.
2. Время выделения личинок токсокар методом переваривания в ИЖС, включающий подготовку проб и оценку результат, 80 минут.2. The time of isolation of toxocar larvae by digestion in IZHS, including sample preparation and evaluation of the result, 80 minutes.
3. Установлено, что в предложенных режимах выделяется чистая без примесей паренхимы органов культура личинок токсокар II-й стадии.3. It has been established that in the proposed modes, a pure culture of organ parenchyma of impurities of toxocar larvae of the second stage is released.
Список литературыBibliography
1. Тумольская Н.И., Сергиев В.П., Лебедева М.Н., Мазманян М.В., Полетаева О.Г. и др. Токсокароз. Клиника. Диагностика. Лечение. Профилактика - Новосибирск, 2004. - 48 с.1. Tumolskaya N.I., Sergiev V.P., Lebedeva M.N., Mazmanyan M.V., Poletaeva O.G. and other Toxocariasis. Clinic. Diagnostics. Treatment. Prevention - Novosibirsk, 2004 .-- 48 p.
2. Солопов П.А. Иммуноферментный метод диагностики токсокароза собак, сероэпизоотологический мониторинг и терапия. Дисс. канд. вет. наук. Рязань, 2009. - 114 с.2. Solopov P.A. Enzyme-linked immunosorbent assay for the diagnosis of dog toxocariasis, seroepizootological monitoring and therapy. Diss. Cand. vet. sciences. Ryazan, 2009 .-- 114 p.
3. Ströbel Н., 1911. - "Münchener med. Wochenschr.", 58, 6, S. 121-125.3. Ströbel N., 1911. - "Münchener med. Wochenschr.", 58, 6, S. 121-125.
4. Бессонов А.С., 1970. Эпизоотология (эпидемиология), диагностика и профилактика трихинеллеза (монографический анализ и собственные исследования). Докторская дисс., Москва.4. Bessonov AS, 1970. Epizootology (epidemiology), diagnosis and prevention of trichinosis (monographic analysis and own research). Doctoral diss., Moscow.
5. Бессонов А.С. Диагностика трихинеллеза (часть вторая). Вильнюс, «Минтис», 1975, 383 с.5. Bessonov A.S. Diagnosis of trichinosis (part two). Vilnius, Mintis, 1975, 383 pp.
6. Ransom В.Н., 1916. - " J. Agric. Res.", 5, 18, p. 819-854.6. Ransom V.N., 1916. - "J. Agric. Res.", 5, 18, p. 819-854.
7. Владимирова П.А., 1963. Мат. докладов Всесоюзной научной конференцииБ посвященной 90-летию Казанского ветеринарного института. Казань, с. 134-135.7. Vladimirova P.A., 1963. Mat. reports of the All-Union Scientific Conference dedicated to the 90th anniversary of the Kazan Veterinary Institute. Kazan, s. 134-135.
8. Владимирова П.А., 1965. Влияние различных факторов на ускорение процесса переваривания мышц в искусственном желудочном соке для выявления личинок трихинелл в свинине. - Кандидатская дисс., Москва.8. Vladimirova PA, 1965. The influence of various factors on accelerating the process of digestion of muscles in artificial gastric juice to identify trichinella larvae in pork. - Candidate diss., Moscow.
9. Владимирова П.А., 1968. Работы молодых ученых. Животноводство и ветеринария. - В кн.: мат. конференций, состоявшихся в 1965 и 1966 гг. М., с. 337-340.9. Vladimirova PA, 1968. The work of young scientists. Livestock and veterinary medicine. - In the book: mat. conferences held in 1965 and 1966 M., p. 337-340.
10. Vladimirova Р.А., 1969. - In: II International Conference on Trichinellosis, Wroclaw, June 26-29, 1969. Abstract of Papers. Wroclaw, p. 173-174.10. Vladimirova R.A., 1969. - In: II International Conference on Trichinellosis, Wroclaw, June 26-29, 1969. Abstract of Papers. Wroclaw, p. 173-174.
11. Владимирова П.А. Перспективы использования в практике метода переваривания проб мышц в искусственном желудочном соке для диагностики трихинеллеза. // Мат. докл. Всес. конф. по проблеме трихинеллеза человека и животных. - Вильнюс. - 1972, - с. 124.11. Vladimirova P.A. Prospects for the use in practice of the method of digesting muscle samples in artificial gastric juice for the diagnosis of trichinosis. // Mat. doc. All conf. on the problem of trichinosis of humans and animals. - Vilnius. - 1972, - p. 124.
12. Уша Б.В., Гламаздин И.Г., Давыдов Е.В. Способ обнаружения трофозоитов саркоцист. Патент РФ 2415416 C1, 11.08.2009.12. Usha B.V., Glamazdin I.G., Davydov E.V. A method for detecting trophozoites of a sarcocyst. RF patent 2415416 C1, 08/11/2009.
Claims (1)
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
RU2014137093/15A RU2567845C1 (en) | 2014-09-15 | 2014-09-15 | METHOD OF SEPARATION OF LARVAE T.canis BY METHOD OF DIGESTING LUNG AND LIVER PARENCHYMA OF CARNIVORES |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
RU2014137093/15A RU2567845C1 (en) | 2014-09-15 | 2014-09-15 | METHOD OF SEPARATION OF LARVAE T.canis BY METHOD OF DIGESTING LUNG AND LIVER PARENCHYMA OF CARNIVORES |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
RU2567845C1 true RU2567845C1 (en) | 2015-11-10 |
Family
ID=54537208
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
RU2014137093/15A RU2567845C1 (en) | 2014-09-15 | 2014-09-15 | METHOD OF SEPARATION OF LARVAE T.canis BY METHOD OF DIGESTING LUNG AND LIVER PARENCHYMA OF CARNIVORES |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
RU (1) | RU2567845C1 (en) |
Cited By (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
RU2763673C1 (en) * | 2021-02-19 | 2021-12-30 | Алена Аркадьевна Линовицкая | Method for cultivating toxocara larvae for diagnosing toxocariasis in cats |
RU2783666C1 (en) * | 2022-02-22 | 2022-11-15 | Федеральное государственное бюджетное научное учреждение "Федеральный научный центр - Всероссийский научно-исследовательский институт экспериментальной ветеринарии им. К.И. Скрябина и Я.Р. Коваленко Российской академии наук" (ФГБНУ ФНЦ ВИЭВ РАН) | Method for extraction of toxocara canis larvae from eggs for diagnostic antigen production |
Citations (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
RU2218080C1 (en) * | 2002-05-06 | 2003-12-10 | Государственное учреждение Научный центр клинической и экспериментальной медицины СО РАМН | Method for diagnosing the cases of toxocarosis |
RU2415416C1 (en) * | 2009-08-11 | 2011-03-27 | Государственное образовательное учреждение высшего профессионального образования "Московский государственный университет прикладной биотехнологии" | Method to detect sarcocyst trophozoites |
-
2014
- 2014-09-15 RU RU2014137093/15A patent/RU2567845C1/en not_active IP Right Cessation
Patent Citations (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
RU2218080C1 (en) * | 2002-05-06 | 2003-12-10 | Государственное учреждение Научный центр клинической и экспериментальной медицины СО РАМН | Method for diagnosing the cases of toxocarosis |
RU2415416C1 (en) * | 2009-08-11 | 2011-03-27 | Государственное образовательное учреждение высшего профессионального образования "Московский государственный университет прикладной биотехнологии" | Method to detect sarcocyst trophozoites |
Non-Patent Citations (1)
Title |
---|
АЙДЕНИЗОЗ-ОЗКАЙХАН М. И ДР, Исследование яиц Toxocara canis в покрове собак различных пород и потенциального пути передачи токсокароза человеку// Российский ветеринарный журнал. Мелкие и домашние животные. 2013, N5, с.45-46.WO 2010068084 A1, 17.06.2010 * |
Cited By (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
RU2763673C1 (en) * | 2021-02-19 | 2021-12-30 | Алена Аркадьевна Линовицкая | Method for cultivating toxocara larvae for diagnosing toxocariasis in cats |
RU2783666C1 (en) * | 2022-02-22 | 2022-11-15 | Федеральное государственное бюджетное научное учреждение "Федеральный научный центр - Всероссийский научно-исследовательский институт экспериментальной ветеринарии им. К.И. Скрябина и Я.Р. Коваленко Российской академии наук" (ФГБНУ ФНЦ ВИЭВ РАН) | Method for extraction of toxocara canis larvae from eggs for diagnostic antigen production |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
Jori et al. | Review of the sylvatic cycle of African swine fever in sub-Saharan Africa and the Indian ocean | |
El Hamzaoui et al. | Fleas and flea-borne diseases of North Africa | |
Martínez-Jiménez et al. | Epizootiology and pathologic findings associated with a newly described adenovirus in the red squirrel, Sciurus vulgaris | |
Geresu et al. | Isolation and identification of Brucella species from dairy cattle by biochemical tests: the first report from Ethiopia | |
Slotved et al. | Comparison of two methods for recovering migrating Ascaris suum larvae from the liver and lungs of pigs | |
Rashid et al. | Coprological detection of Toxocariosis in domicile and stray dogs and cats in Sulaimani province, Iraq | |
RU2567845C1 (en) | METHOD OF SEPARATION OF LARVAE T.canis BY METHOD OF DIGESTING LUNG AND LIVER PARENCHYMA OF CARNIVORES | |
RU2557973C1 (en) | METHOD OF INTRAVITAL COLLECTION OF FERTILISED EGGS (in vitro) FROM CAUSATIVE AGENT OF PARASITIC ZOONOSIS Trichuris (=Trichocephalus) vulpis | |
Oehm et al. | Diagnosing bovine parafilariosis: utility of the cytochrome c oxidase subunit 1 gene and internal transcribed spacer region for PCR detection of Parafilaria bovicola in skin biopsies and serohemorrhagic exudates of cattle | |
Tiberti | Widespread bacterial infection affecting Rana temporaria tadpoles in mountain areas | |
Parija et al. | Echinococcosis | |
Osiak-Wicha et al. | Gene expression level and immunohistochemical localization of cannabinoid and cannabinoid-related receptors in the small intestine of Holstein bulls () | |
Trudeau et al. | Muskrats (Ondatra zibethicus) are competent intermediate hosts of Echinococcus multilocularis in North America | |
Zaria | Biochemical responses of yankasa sheep to experimental fasciola gigantica infection in Zaria, Nigeria | |
RU2525688C2 (en) | METHOD FOR PRODUCING PURIFIED SOMATIC ANTIGEN OF Dirofilaria immitis | |
RU2783666C1 (en) | Method for extraction of toxocara canis larvae from eggs for diagnostic antigen production | |
RU2415416C1 (en) | Method to detect sarcocyst trophozoites | |
Macpherson et al. | Man’s best friend and our shared infectious diseases | |
Hosseini et al. | Helminths of veterinary and public health importance in Iran: the great neglected parasitic diseases as important challenge for the country | |
Maggioli et al. | Liver Fluke Vaccine Assessment in Cattle | |
RU2609145C2 (en) | Method of collecting maximum amount of mature (=fertilized) eggs (in vitro) of females of parasitic zoonosis infectious agent trichuris (=trichocephalus) suis | |
AbouLaila et al. | Infection rate and molecular characterization of Echidnophaga gallinacea in chickens from Matrouh Governorate, Egypt | |
Leech | Investigation into the vector competence of Ixodes ricinus ticks to Hazara virus and Crimean-Congo Haemorrhagic Fever virus | |
Branco | Old enemies, new differentials: canine leishmaniosis as a cause of refractory enteritis | |
RU2712892C1 (en) | Method of in-vitro egg collection from trichuris (= trichocephalus) ovis, which causes trichuriasis of domestic and wild ruminant |
Legal Events
Date | Code | Title | Description |
---|---|---|---|
MM4A | The patent is invalid due to non-payment of fees |
Effective date: 20160916 |