RU2566071C2 - Method of preparing biomaterial for pcr diagnostics of bovine leukaemia virus (blv) - Google Patents

Method of preparing biomaterial for pcr diagnostics of bovine leukaemia virus (blv) Download PDF

Info

Publication number
RU2566071C2
RU2566071C2 RU2013135036/15A RU2013135036A RU2566071C2 RU 2566071 C2 RU2566071 C2 RU 2566071C2 RU 2013135036/15 A RU2013135036/15 A RU 2013135036/15A RU 2013135036 A RU2013135036 A RU 2013135036A RU 2566071 C2 RU2566071 C2 RU 2566071C2
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
cattle
pcr
culture
biomaterial
blv
Prior art date
Application number
RU2013135036/15A
Other languages
Russian (ru)
Other versions
RU2013135036A (en
Inventor
Ирина Алексеевна Шкуратова
Ирина Михайловна Донник
Юлия Ярославовна Хрунык
Марина Витальевна Ряпосова
Александр Терентьевич Татарчук
Евгения Николаевна Шилова
Иван Владимирович Вялых
Максим Валерьевич Петропавловский
Original Assignee
Государственное науное учреждение Уральский научно-исследовательский ветеринарный институт (УрНИВИ)
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Государственное науное учреждение Уральский научно-исследовательский ветеринарный институт (УрНИВИ) filed Critical Государственное науное учреждение Уральский научно-исследовательский ветеринарный институт (УрНИВИ)
Priority to RU2013135036/15A priority Critical patent/RU2566071C2/en
Publication of RU2013135036A publication Critical patent/RU2013135036A/en
Application granted granted Critical
Publication of RU2566071C2 publication Critical patent/RU2566071C2/en

Links

Images

Landscapes

  • Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)

Abstract

FIELD: medicine.
SUBSTANCE: invention relates to field of veterinary. Method of preparing biomaterial for PCR diagnostics of bovine leukaemia virus (BLV) is claimed. Sampling of animal blood is realised. To prepare for PCR diagnostics samples of biomaterial in form of CC81cell culture, cultivated on Eagle MEM medium in form of multinuclear cell formations - syncytia. As negative control leukocytes from BLV-negative animal, as well as uninfected culture are used.
EFFECT: increased accuracy of BLV by means of PCR is achieved due to peculiarities of cell line of cat pulmonary fibroblasts CC81 to form syncytium in case of presence of virus in samples.
2 dwg, 1 ex

Description

Изобретение относится к области ветеринарии и вирусологии, в частности к методам лабораторной диагностики вируса лейкоза крупного рогатого скота (ВЛ КРС).The invention relates to the field of veterinary medicine and virology, in particular to methods for laboratory diagnosis of the cattle leukemia virus (VL cattle).

Лейкоз КРС - злокачественное вирусное лимфопролиферативное заболевание. Ретровирус ВЛ КРС, относящийся к семейству Retroviridae, роду Deltaretrovirus, интегрируется в ДНК лейкоцитов хозяина и пребывает в латентном состоянии в большом количестве клеток в течение длительного периода времени, что затрудняет его определение и выявление заболевших животных.Leukemia cattle - a malignant viral lymphoproliferative disease. Retroviridae family VL retrovirus, belonging to the family Retroviridae, genus Deltaretrovirus, integrates into the host leukocyte DNA and remains latent in a large number of cells for a long period of time, which makes it difficult to identify and identify diseased animals.

Известны различные диагностические методы для тестирования образцов крови КРС на наличие вируса ВЛ КРС, в частности и серологические методы (РИД, ИФА), и метод полимеразной цепной реакции (ПЦР). Однако с помощью серологических методов невозможно выявить ВЛ КРС на ранних стадиях инфекции, что особенно важно для своевременной изоляции здоровых телят от ВЛ КРС инфицированных животных. ПЦР является более чувствительным методом, но при низкой нагрузке провируса ВЛ КРС на начальных стадиях заболевания этот метод не всегда эффективен (см. патенты РФ №2377962; 2379683; 2445370).There are various diagnostic methods for testing cattle blood samples for the presence of cattle VL virus, in particular, serological methods (RID, ELISA) and the polymerase chain reaction (PCR) method. However, using serological methods, it is impossible to detect VL of cattle in the early stages of infection, which is especially important for the timely isolation of healthy calves from VL of cattle of infected animals. PCR is a more sensitive method, but with a low load of the VL overhead cattle provirus in the initial stages of the disease, this method is not always effective (see RF patents No. 2377962; 2379683; 2445370).

Известен также синцитиальный тест, который используется для исследований вируса лейкоза крупного рогатого скота (КРС) в Научно-исследовательском Ветеринарном Институте в Пулавы, Польша (Jan Stec, Leokadia Bicka, Bozenna Kozaczynska, Jacek Kuzmak. Lymphoproliferation assay in cattle naturally infected with bovine leukemia virus (BLV) and bovine immunodeficiency virus (BIV). Bulletin of Veterinary Institute. Pulawy 45, 117-123, 2001). Однако данный метод имеет ряд недостатков. Во-первых, при малейшем нарушении стерильности возможна контаминация образцов, тем более, если в одном культуральном планшете их находится несколько. Кроме того, в связи с тем, что культура клеток СС81 чувствительна к нескольким вирусам семейства Retroviridae, для подтверждения диагноза на ВЛ КРС инфекцию по методике необходимо проводить контрольный иммунопероксидазный тест, что требует дополнительных манипуляций, времени и дорогостоящих расходных материалов и растворов (при общем времени диагностики 10-11 суток).A syncytial test is also known that is used to study bovine leukemia virus (Bovine virus) at the Veterinary Research Institute in Pulawy, Poland (Jan Stec, Leokadia Bicka, Bozenna Kozaczynska, Jacek Kuzmak. Lymphoproliferation assay in cattle naturally infected with bovine leukemia (BLV) and bovine immunodeficiency virus (BIV). Bulletin of Veterinary Institute. Pulawy 45, 117-123, 2001). However, this method has several disadvantages. Firstly, with the slightest violation of sterility, contamination of samples is possible, especially if there are several of them in one culture plate. In addition, due to the fact that the culture of CC81 cells is sensitive to several viruses of the Retroviridae family, to confirm the diagnosis of VL cattle infection by the method, it is necessary to carry out a control immunoperoxidase test, which requires additional manipulations, time and costly consumables and solutions (for the total time diagnosis 10-11 days).

Задачей изобретения является создание способа подготовки биоматериала для ПЦР диагностики вируса лейкоза крупного рогатого скота, позволяющего определить наличие ВЛ КРС в образцах крови телят на ранних стадиях инфекции и проводить диагностику с использованием существующей серийной аппаратуры и тест-систем и не требующего дополнительного специального обучения и стажировки сотрудников диагностических лабораторий при сокращении общего времени постановки диагноза, способного выявлять заболевание у телят с 15-30 дневного возраста.The objective of the invention is to provide a method for preparing biomaterial for PCR for the diagnosis of cattle leukemia virus, which allows to determine the presence of VL cattle in blood samples of calves in the early stages of infection and to diagnose using existing serial equipment and test systems and not requiring additional special training and internships for employees diagnostic laboratories with a reduction in the total time of diagnosis, capable of detecting a disease in calves from 15-30 days of age.

Поставленная задача решается за счет особенностей клеточной линии фибробластов легкого кошки СС81 формировать синцитий при наличии в образцах вируса ВЛ КРС, увеличивая копийность вируса за счет репликации вириона в исследуемых образцах для повышения точности выявления вируса с помощью ПЦР, при этом способ подготовки биоматериала для ПЦР диагностики вируса лейкоза крупного рогатого скота (ВЛ КРС), включающий взятие образцов крови животного, подготовку образца для исследований и диагностику подготовленного образца, характеризуется тем, что для подготовки к ПЦР диагностике используют образцы биоматериала в виде клеточной культуры СС81, культивированной на среде Игла MEM в виде многоядерных клеточных образований - синтициев, при этом для культивирования клеток СС81 используют питательную среду Игла MEM с L-глутамином и двойным набором аминокислот с добавлением эмбриональной телячьей сыворотки, причем концентрация сыворотки в питательной среде равна 10%, а для стерилизации сыворотки используют прогревание при температуре 56°C в течение 30 минут, причем культуру культивируют в пластиковых флаконах при температуре 37°C с полной сменой среды 3 раза в неделю, а при заражении СС81 в среду Игла MEM с 10% эмбриональной сывороткой КРС вместе с лейкоцитами добавляют три антибиотика: пенициллин 100 ЕД/см3, стрептомицин 100 мкг/см3, амфотерицин 5 ЕД/мл, а также глутамин, при этом в качестве отрицательного контроля используют лейкоциты от животного, отрицательного по ВЛ КРС, а также незараженную культуру.The problem is solved due to the characteristics of the CC81 lung cat fibroblast cell line to form syncytium in the presence of VL cattle virus samples, increasing the copy number of the virus by replicating the virion in the studied samples to increase the accuracy of virus detection using PCR, while the method of preparing biomaterial for PCR virus diagnosis bovine leukemia (VL cattle), including taking blood samples of an animal, preparing a sample for research and diagnosing a prepared sample, is characterized by that in order to prepare for PCR diagnostics, biomaterial samples are used in the form of a CC81 cell culture cultured on Eagle MEM medium in the form of multinuclear cell formations - syntyceia, while for the cultivation of CC81 cells, Eagle MEM nutrient medium with L-glutamine and a double set of amino acids with the addition of embryonic calf serum, and the concentration of serum in the nutrient medium is 10%, and for sterilization of serum use heating at a temperature of 56 ° C for 30 minutes, and the culture is cultivated in eraser bottles at a temperature of 37 ° C with a complete change of medium 3 times a week, and when infected with CC81 on Wednesday, a MEM needle with 10% fetal bovine serum and three leukocytes are added with antibiotics: penicillin 100 U / cm 3 , streptomycin 100 μg / cm 3 , amphotericin 5 IU / ml, as well as glutamine, while leukocytes from an animal negative for cattle VL negative, as well as an uninfected culture, are used as a negative control.

Предложенный способ подготовки биоматериала для ПЦР диагностики вируса лейкоза крупного рогатого скота основан на известных наблюдениях аргентинского ученого Ferrer J.F., который описал способность культуры клеток к образованию синцития под воздействием вируса ВЛ КРС (см. Ferrer J.F., Piper С.Е., Abt D.A., Marshak R.R. Diagnosis of bovine leukemia virus infection: evaluation of serologic and hematologic tests by a direct infectivity detection assay. American Journal of Veterinary Research, 1997; Dec. 38(12): 1977-81).The proposed method for preparing biomaterial for PCR for the diagnosis of cattle leukemia virus is based on well-known observations of the Argentinean scientist Ferrer JF, who described the ability of a cell culture to form syncytium under the influence of VL cattle virus (see Ferrer JF, Piper C.E., Abt DA, Marshak RR Diagnosis of bovine leukemia virus infection: evaluation of serologic and hematologic tests by a direct infectivity detection assay. American Journal of Veterinary Research, 1997; Dec. 38 (12): 1977-81).

Разработанный способ выявления ВЛ КРС с помощью культуры клеток СС81 в отличие от прототипа включает ряд существенных изменений, что и является новизной изобретения.The developed method for detecting VL of cattle using a CC81 cell culture, unlike the prototype, includes a number of significant changes, which is the novelty of the invention.

В отличие от методики, которая послужила прототипом для данного изобретения, последующую концентрацию эмбриональной сыворотки КРС в среде снижают до 6% и 2%, вместо 8% и 6% (через 2 и 4 дня после заражения соответственно). По наблюдениям используемые концентрации сыворотки положительно влияют на заражение клеточной культуры вирусом, предположительно содержащимся в лейкоцитах ВЛ КРС положительного животного.Unlike the methodology that served as the prototype for this invention, the subsequent concentration of fetal bovine serum in the medium is reduced to 6% and 2%, instead of 8% and 6% (2 and 4 days after infection, respectively). According to observations, the used serum concentrations have a positive effect on the infection of the cell culture with a virus, presumably contained in the leukocytes of VL cattle of a positive animal.

Также новизной является то, что вместо затратного по времени и экономически невыгодного пероксидазного теста для подтверждения наличия вируса ВЛ КРС в образцах с образованием синцития в способе используется дополнительный уточняющий тест клеточной культуры в 7-й день после заражения методом полимеразной цепной реакции (ПЦР).Also new is that instead of time-consuming and economically disadvantageous peroxidase test, to confirm the presence of VL cattle virus in samples with the formation of syncytium, the method uses an additional refinement test of cell culture on the 7th day after infection by polymerase chain reaction (PCR).

Более подробно проведение синцитиального теста описывается в следующей последовательности в приведенном примере:The syncytial test is described in more detail in the following sequence in the above example:

Предварительно готовят клеточную культуру СС81, раскапывают по 2 мл на лунку в 12-луночную плашку и инкубируют в течение 2-х дней при 37°C в СО2-термостате. Через 2 суток в сформировавшийся монослой СС81 добавляют лейкоцитарную взвесь, полученную из образцов крови исследуемых КРС следующим образом:A CC81 cell culture is pre-prepared, 2 ml per well are instilled into a 12-well plate and incubated for 2 days at 37 ° C in a CO 2 thermostat. After 2 days, a leukocyte suspension obtained from blood samples of the studied cattle is added to the formed CC81 monolayer as follows:

Параллельно с подготовкой клеточной культуры СС81 у животных с подозрением на лейкоз проводят забор крови в вакуумные пробирки с ЭДТА объемом 10 мл. Взятую кровь центрифугируют при 2600 об/мин в течение 30 мин. Далее нужно удалить пипеткой супернатант и собрать интерфазу светлого цвета на границе плазмы и эритроцитов, содержащую лейкоциты. В данную жидкость добавляют 4 мл стерильной дистиллированной холодной воды, охлажденной до температуры 4-8°C, перемешивают в течение 30 сек и добавляют 1 мл стерильного 4,5% хлорида натрия с последующим перемешиванием. После этого повторяют центрифугирование при 2600 об/мин в течение 30 мин. Пипеткой удаляют супернатант и ресуспендируют осадок в 8 мл стерильного фосфатного буфера. Проводят центрифугирование при 1500 об/мин в течение 15 мин. Удаляют супернатант и повторно промывают осадок путем добавления 8 мл фосфатного буфера, сильно взбалтывают. Еще раз центрифугируют при 1500 об/мин в течение 15 мин. Полученную лейкоцитарную взвесь ресуспендируют в 6 мл 10% среды с добавлением 3-х антибиотиков: пенициллин, стрептомицин (по 100 ЕД (мкг/см3), амфотерицин (5 ЕД/мл) и глутамина. Все этапы центрифугирования проводят при комнатной температуре. В качестве положительного контроля используют лейкоциты от животного, положительного по ВЛ КРС. В качестве отрицательного контроля используют лейкоциты от животного, отрицательного по ВЛ КРС, а также незараженную культуру. Лейкоцитарную взвесь, ресуспендированную в 10% среде с антибиотиками, раскапывают в лунки планшета, содержащие 2-дневный монослой (по три лунки на каждую пробу) (фиг. 1).In parallel with the preparation of the CC81 cell culture in animals with suspected leukemia, blood sampling was carried out in vacuum tubes with 10 ml EDTA. The collected blood is centrifuged at 2600 rpm for 30 minutes. Next, you need to remove the supernatant with a pipette and collect the light-colored interphase at the border of plasma and red blood cells containing white blood cells. To this liquid was added 4 ml of sterile distilled cold water, cooled to a temperature of 4-8 ° C, stirred for 30 seconds and 1 ml of sterile 4.5% sodium chloride was added, followed by stirring. Then centrifugation is repeated at 2600 rpm for 30 minutes. The supernatant is removed with a pipette and the precipitate is resuspended in 8 ml of sterile phosphate buffer. Centrifugation is carried out at 1500 rpm for 15 minutes Remove the supernatant and re-wash the precipitate by adding 8 ml of phosphate buffer, shake vigorously. Centrifuge again at 1,500 rpm for 15 minutes. The resulting leukocyte suspension is resuspended in 6 ml of 10% medium with the addition of 3 antibiotics: penicillin, streptomycin (100 units (μg / cm 3 ), amphotericin (5 units / ml) and glutamine. All centrifugation steps are carried out at room temperature. White blood cells from an animal positive for VL cattle are used as a positive control. White blood cells from an animal negative for VL cattle and an uninfected culture are used as a negative control. A leukocyte suspension resuspended in 10% antibiotic medium is digested in lunches of the tablet containing a 2-day monolayer (three wells per sample) (Fig. 1).

Приготовление фосфатного буфера (без Са++ и Mg++), который используется для получения лейкоцитарной взвеси, проводят следующим образом:The preparation of phosphate buffer (without Ca ++ and Mg ++ ), which is used to obtain leukocyte suspension, is carried out as follows:

NaCl - 4 грNaCl - 4 g

KCl - 0.1 грKCl - 0.1 g

Na2HPO4 × 12Н2О - 1.45 грNa 2 HPO 4 × 12H 2 O - 1.45 g

КН2РО4 - 0.1 грKN 2 RO 4 - 0.1 g

Вода редистиллят - до 500 млRedistillate water - up to 500 ml

Подсчет количества лейкоцитов производят в камере Горяева. Для заражения монослоя СС81 необходимо наличие не менее 5×106 клеток в 1 мл среды.Counting the number of leukocytes is carried out in the Goryaev’s chamber. To infect the CC81 monolayer, at least 5 × 10 6 cells in 1 ml of medium must be present.

Через 2 и 4 дня после заражения культуры среду из лунок удаляют и добавляют свежую среду с концентрацией сыворотки 6% и 2% соответственно. На фиг. 2А изображен монослой СС81 через 2 дня после добавления питательной среды, содержащей лейкоциты от ВЛ КРС положительного барана. В 7-й день после заражения культуры клетки трехкратно промывают фосфатным буфером и окрашивают по методу Грунвальда-Гимза следующим образом:2 and 4 days after infection of the culture medium from the wells is removed and fresh medium is added with a serum concentration of 6% and 2%, respectively. In FIG. 2A depicts a CC81 monolayer 2 days after adding a nutrient medium containing leukocytes from VL cattle positive ram. On the 7th day after infection of the culture, the cells are washed three times with phosphate buffer and stained according to the Grunwald-Giemsa method as follows:

Раствор Грунвальда добавляют на 3 минуты, при этом лунки должны быть полностью покрыты жидкостью. Далее раствор Грунвальда аккуратно удаляют дозатором и несколько раз промывают клетки дистиллированной водой. Затем добавляют на 15 минут свежий раствор Гимза (готовят из расчета 1,5 мл раствора и 23,5 мл дистиллированной воды). После этого планшет осторожно промывают водой. Окрашенную клеточную культуру исследуют с помощью микроскопа. ЦПД, вызванное ВЛ КРС, наблюдают в виде синцитиев - многоядерных клеточных образований (фиг. 2, В, Г). Монослой интактной клеточной культуры СС81 в качестве отрицательного контроля изображен на фиг. 2Б. Далее полученную клеточную культуру направляют на ПЦР диагностику.Grunwald's solution is added for 3 minutes, while the wells should be completely covered with liquid. Next, the Grunwald solution is carefully removed with a dispenser and the cells are washed several times with distilled water. Then, a fresh Giemsa solution is added for 15 minutes (1.5 ml of solution and 23.5 ml of distilled water are prepared). After that, the tablet is carefully washed with water. The stained cell culture is examined using a microscope. CPD caused by VL of cattle is observed in the form of syncytia - multinuclear cell formations (Fig. 2, C, D). A monolayer of intact CC81 cell culture as a negative control is depicted in FIG. 2B. Next, the resulting cell culture is sent for PCR diagnosis.

На фиг. 1. Представлено схематическое изображение 12-луночного культурального планшета, содержащего 2-дневный монослой СС81 после добавления 10% среды Игла MEM (смотрите выше) в виде 12 розовых кружков. Маленькие желтые кружки изображают лейкоциты. Лунки A1, В1, С1: в среду добавлена лейкоцитарная взвесь от отрицательного животного по ВЛКРС (отрицательный контроль); лунки А2, В2, С2: в среду добавлена лейкоцитарная взвесь от исследуемого животного; лунки A3, В3, С3: в среду добавлена лейкоцитарная взвесь от положительного по ВЛ КРС животного (положительный контроль); лунки А4, В4, С4: незаряженный монослой в качестве дополнительного отрицательного контроля.In FIG. 1. A schematic representation of a 12-well culture plate containing a 2-day CC81 monolayer after adding 10% medium MEM needle (see above) in the form of 12 pink circles is shown. Small yellow circles represent white blood cells. Wells A1, B1, C1: a leukocyte suspension from a negative animal by VLCRS (negative control) was added on Wednesday; wells A2, B2, C2: a leukocyte suspension from the test animal was added to the medium; wells A3, B3, C3: a leukocyte suspension from an animal positive for VL cattle was added on Wednesday (positive control); wells A4, B4, C4: uncharged monolayer as an additional negative control.

На фиг. 2 представлены изображения клеточной культуры СС81, полученные на инвертированном микроскопе Карл Цейс Axio Observer A1. А: монослой клеточной культуры СС81 через 2 суток после добавления 10% среды (смотрите выше), содержащей лейкоциты, полученные из крови барана, положительного по ВЛ КРС. Лейкоциты отмечены стрелками; Б: монослой незараженной культуры СС81 в 7-й день синцитиального теста. В, Г: примеры образования синцитиев в монослое клеточной культуры СС81 на 7-й день после заражения лейкоцитами от ВЛ КРС положительного барана. Стрелки указывают на образование синцитиев, содержащих 4 ядра (В) и 5 ядер (Г) соответственно. Клеточную культуру окрашивали по методу Грунвальда-Гимза. Ядра и цитоплазма окрашены в розовый и фиолетовый цвет соответственно.In FIG. Figure 2 shows images of a CC81 cell culture obtained with an inverted Carl Zeiss Axio Observer A1 microscope. A: monolayer of cell culture CC81 2 days after adding 10% of the medium (see above) containing leukocytes obtained from sheep blood positive for VL cattle. White blood cells are marked by arrows; B: monolayer of uninfected CC81 culture on the 7th day of the syncytial test. B, D: examples of the formation of syncytia in a monolayer of CC81 cell culture on the 7th day after leukocyte infection from VL cattle of a positive ram. The arrows indicate the formation of syncytia containing 4 nuclei (B) and 5 nuclei (G), respectively. Cell culture was stained according to the method of Grunwald-Giemsa. The nuclei and cytoplasm are pink and purple, respectively.

Опыты по отработке параметров предложенного способа проводили на базе отдела мониторинга и прогнозирования инфекционных заболеваний животных ФГБНУ «Уральский научно-исследовательский ветеринарный институт» г. Екатеринбург. Предложенный способ апробирован с положительными результатами и регулярной воспроизводимостью на пробах и образцах крови, полученных из неблагополучных хозяйств Свердловской, Курганской и Тюменской областей Уральского федерального округа, включая диагностику образцов крови телят в возрасте от 15 дней до 3 месяцев, что путем других диагностических методик ранее было сделать практически невозможно.The experiments to refine the parameters of the proposed method were carried out on the basis of the department for monitoring and predicting infectious animal diseases of the Federal State Budget Scientific Institution "Ural Scientific Research Veterinary Institute" in Yekaterinburg. The proposed method has been tested with positive results and regular reproducibility on samples and blood samples obtained from dysfunctional farms of the Sverdlovsk, Kurgan and Tyumen regions of the Urals Federal District, including the diagnosis of blood samples of calves aged 15 days to 3 months, which by other diagnostic methods previously almost impossible to do.

Вторичные признаки способа, - как использование в качестве добавки вместе с лейкоцитами пенициллина, стрептомицина (по 100 ЕД (мкг/см3)), амфотерицина (5 ЕД/мл) и глутамина, концентрация эмбриональной сыворотки в питательной среде 10%, а также другие признаки, определены и обоснованы практически опытным путем и обеспечивают заявленный конечный результат.Secondary signs of the method, such as the use of penicillin, streptomycin (100 PIECES (μg / cm 3 )), amphotericin (5 PIECES / ml) and glutamine, the concentration of fetal serum in the nutrient medium 10%, as well as others, as an additive along with leukocytes signs, identified and justified almost empirically and provide the stated end result.

Внедрение предложенного способа, который можно считать ранней диагностикой возбудителя лейкоза на основе ПЦР, позволит определить вирусоносителей у молодняка крупного рогатого скота уже с возраста 15-20 дней.Implementation of the proposed method, which can be considered an early diagnosis of the causative agent of leukemia based on PCR, will determine the virus carriers in young cattle from the age of 15-20 days.

Разработанная ранняя диагностика лейкоза позволит повысить эффективность оздоровления сельскохозяйственных предприятий от инфекции.The developed early diagnosis of leukemia will increase the efficiency of recovery of agricultural enterprises from infection.

Неочевидным эффектом предложенного способа является то, что за счет подготовки биоматериала для ПЦР диагностики по предложенной схеме с выращиванием культуры клеток СС81 на среде Игла MEM при заданных параметрах увеличивается копийность вируса, что повышает эффективность ПЦР диагностики и позволяет выявлять вирусоносителей среди телят эмбрионального заражения в возрасте 15-30 дней, снижая затраты на оздоровление стада.An unobvious effect of the proposed method is that due to the preparation of biomaterial for PCR diagnostics according to the proposed scheme with growing a culture of CC81 cells on Igla MEM medium at specified parameters, the copy number of the virus increases, which increases the efficiency of PCR diagnostics and allows detection of virus carriers among calves of embryonic infection at the age of 15 -30 days, reducing the cost of improving the herd.

Claims (1)

Способ подготовки биоматериала для ПЦР диагностики вируса лейкоза крупного рогатого скота (ВЛ КРС), включающий взятие образцов крови животного, подготовку образца для исследований и диагностику подготовленного образца, характеризующийся тем, что для подготовки к ПЦР диагностике используют образцы биоматериала в виде клеточной культуры СС81, культивированной на среде Игла MEM в виде многоядерных клеточных образований - синтициев, при этом для культивирования клеток СС81 используют питательную среду Игла MEM с L-глутамином и двойным набором аминокислот с добавлением эмбриональной телячьей сыворотки, причем концентрация сыворотки в питательной среде равна 10%, а для стерилизации сыворотки используют прогревание при температуре 56°C в течение 30 минут, причем культуру культивируют в пластиковых флаконах при температуре 37°C с полной сменой среды 3 раза в неделю, а при заражении СС81 в среду Игла MEM с 10% эмбриональной сывороткой КРС вместе с лейкоцитами добавляют три антибиотика: пенициллин 100 ЕД/см3, стрептомицин 100 мкг/см3, амфотерицин 5 ЕД/мл, а также глутамин, при этом в качестве отрицательного контроля используют лейкоциты от животного, отрицательного по ВЛ КРС, а также незараженную культуру. A method for preparing biomaterial for PCR for diagnosis of cattle leukemia virus (VL cattle), including taking blood samples of an animal, preparing a sample for research and diagnosing a prepared sample, characterized in that for preparation for PCR diagnosis using biomaterial in the form of a cell culture CC81 cultured on the medium Needle MEM in the form of multinuclear cell formations - syntyntia, while for the cultivation of CC81 cells using nutrient medium Needle MEM with L-glutamine and a double set mineral acids with the addition of fetal calf serum, and the serum concentration in the nutrient medium is 10%, and for sterilization of the serum, heating is used at 56 ° C for 30 minutes, and the culture is cultivated in plastic bottles at 37 ° C with a complete change of medium 3 times per week, and when infected with CC81 on Wednesday, a MEM Eagle with 10% fetal bovine serum and three leukocytes are added with antibiotics: penicillin 100 IU / cm 3 , streptomycin 100 μg / cm 3 , amphotericin 5 IU / ml, and glutamine, as neg -negative control leukocytes from the animal is used, negative for VL RNC and uninfected culture.
RU2013135036/15A 2013-07-25 2013-07-25 Method of preparing biomaterial for pcr diagnostics of bovine leukaemia virus (blv) RU2566071C2 (en)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2013135036/15A RU2566071C2 (en) 2013-07-25 2013-07-25 Method of preparing biomaterial for pcr diagnostics of bovine leukaemia virus (blv)

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2013135036/15A RU2566071C2 (en) 2013-07-25 2013-07-25 Method of preparing biomaterial for pcr diagnostics of bovine leukaemia virus (blv)

Publications (2)

Publication Number Publication Date
RU2013135036A RU2013135036A (en) 2015-01-27
RU2566071C2 true RU2566071C2 (en) 2015-10-20

Family

ID=53281372

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
RU2013135036/15A RU2566071C2 (en) 2013-07-25 2013-07-25 Method of preparing biomaterial for pcr diagnostics of bovine leukaemia virus (blv)

Country Status (1)

Country Link
RU (1) RU2566071C2 (en)

Citations (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2263312C1 (en) * 2004-03-17 2005-10-27 Государственное учреждение Дальневосточный зональный научно-исследовательский ветеринарный институт Method for detecting animals suffering with cattle leukosis at aleukemic and leukopenic manifestations of the disease
RU2445370C1 (en) * 2010-10-28 2012-03-20 Государственное научное учреждение Всероссийский научно-исследовательский институт экспериментальной ветеринарии им. Я.Р. Коваленко (ВИЭВ) Diagnostic technique for cattle leukaemia by polymerase chain reaction
WO2012053666A1 (en) * 2010-10-21 2012-04-26 Riken Kit for detecting bovine leukemia virus(blv), and use thereof

Patent Citations (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2263312C1 (en) * 2004-03-17 2005-10-27 Государственное учреждение Дальневосточный зональный научно-исследовательский ветеринарный институт Method for detecting animals suffering with cattle leukosis at aleukemic and leukopenic manifestations of the disease
WO2012053666A1 (en) * 2010-10-21 2012-04-26 Riken Kit for detecting bovine leukemia virus(blv), and use thereof
RU2445370C1 (en) * 2010-10-28 2012-03-20 Государственное научное учреждение Всероссийский научно-исследовательский институт экспериментальной ветеринарии им. Я.Р. Коваленко (ВИЭВ) Diagnostic technique for cattle leukaemia by polymerase chain reaction

Non-Patent Citations (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
FERRER J.F. et al. Diagnosis of bovine leukemia virus infection: evaluation of serologic and hematologic tests by a direct infectivity detection assay. Am J Vet Res. 1977 Dec; 38(12): 1977-1981. *
SENTSUI H. et al. Experimental Infection of Bovine Leukemia Virus in Small Laboratory Animals. Nihon Juigaku Zasshi. 1988 Dec; 50(6): 1245-1251. ГЛИК Б. и др. Молекулярная биотехнология. Принципы и применение. Пер. с англ. М.: Мир, 2002, стр.94 левая колонка *

Also Published As

Publication number Publication date
RU2013135036A (en) 2015-01-27

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Stirk et al. Use of monoclonal antibodies for the diagnosis of cytomegalovirus infection by the detection of early antigen fluorescent foci (DEAFF) in cell culture
Smith et al. Isolation of field rabies virus strains in CER and murine neuroblastoma cell cultures
Berkowitz et al. Practical medical microbiology for clinicians
Forghani et al. Solid phase radioimmunoassay for identification of Herpesvirus hominis types 1 and 2 from clinical materials
Samuel et al. Laboratory maintenance of Coxiella burnetii
Yoon et al. Comparison of a commercial H1N1 enzyme-linked immunosorbent assay and hemagglutination inhibition test in detecting serum antibody against swine influenza viruses
Oğuzoğlu et al. A sheeppox virus outbreak in Central Turkey in 2003: isolation and identification of capripoxvirus ovis
Melville et al. Bluetongue virus does not persist in naturally infected cattle
Pearson et al. Diagnostic procedures for avian influenza
RU2566071C2 (en) Method of preparing biomaterial for pcr diagnostics of bovine leukaemia virus (blv)
Al-Bayati Assessment of Contagious Ecthyma Virus in Camels of Wasit Province, Iraq
CN108866008A (en) The monoclonal antibody and its cell strain of anti-Koi herpesvirus and application
Stirk et al. Comparative sensitivity of three methods for the diagnosis of cytomegalovirus lung infection
Ehimiyein et al. Efficacy of a direct rapid immunohistochemical test (DRIT) for rabies detection in Nigeria
Dacheux et al. Virus isolation in cell culture: the rabies tissue culture infection test
Fattal et al. Enterovirus types in Israel sewage
Chhabra et al. Development and evaluation of an in vitro isolation of street rabies virus in mouse neuroblastoma cells as compared to conventional tests used for diagnosis of rabies
Feyisa et al. Review on Pen-Side Tests: Prospects in Animal Disease Diagnosis and Eradication Program
De Noronha et al. Virus isolation test for feline leukemia virus
Hussin et al. An Overview of Laboratory Diagnosis of Central Nervous System Viral Infections
RU2810589C1 (en) Method of performing an immunofluorescence reaction for diagnosing bovine leukemia
Divya et al. Challenges associated with Herpes Simplex Virus isolation using Vero cell culture
RU2767688C1 (en) Method for staging indirect immunofluorescence reaction for diagnosing bovine leukaemia
Rahman Early detection of influenza virus in cell culture by means of immunofluorescence
Molyneux Isolation of Trypanosoma (Trypanozoon) brucei gambiense in rabbits by the intratesticular inoculation technique

Legal Events

Date Code Title Description
MM4A The patent is invalid due to non-payment of fees

Effective date: 20160726