RU2560581C2 - AGENT FOR PRODUCING PREPARATIONS FOR DIAGNOSTICS OF RICKETTSIOSES CAUSED BY RICKETTSIA SIBIRICA subsp. SIBIRICA BJ-90 - Google Patents

AGENT FOR PRODUCING PREPARATIONS FOR DIAGNOSTICS OF RICKETTSIOSES CAUSED BY RICKETTSIA SIBIRICA subsp. SIBIRICA BJ-90 Download PDF

Info

Publication number
RU2560581C2
RU2560581C2 RU2013136433/10A RU2013136433A RU2560581C2 RU 2560581 C2 RU2560581 C2 RU 2560581C2 RU 2013136433/10 A RU2013136433/10 A RU 2013136433/10A RU 2013136433 A RU2013136433 A RU 2013136433A RU 2560581 C2 RU2560581 C2 RU 2560581C2
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
sibirica
subsp
rickettsia
strain
genotype
Prior art date
Application number
RU2013136433/10A
Other languages
Russian (ru)
Other versions
RU2013136433A (en
Inventor
Татьяна Александровна Решетникова
Ирина Евгеньевна Самойленко
Станислав Николаевич Шпынов
Людмила Валерьевна Кумпан
Наталья Валерьевна Абрамова
Николай Викторович Рудаков
Original Assignee
Федеральное бюджетное учреждение науки "Омский научно-исследовательский институт природно-очаговых инфекций" Федеральной службы по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Федеральное бюджетное учреждение науки "Омский научно-исследовательский институт природно-очаговых инфекций" Федеральной службы по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека filed Critical Федеральное бюджетное учреждение науки "Омский научно-исследовательский институт природно-очаговых инфекций" Федеральной службы по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека
Priority to RU2013136433/10A priority Critical patent/RU2560581C2/en
Publication of RU2013136433A publication Critical patent/RU2013136433A/en
Application granted granted Critical
Publication of RU2560581C2 publication Critical patent/RU2560581C2/en

Links

Landscapes

  • Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)

Abstract

FIELD: chemistry.
SUBSTANCE: invention relates to biotechnology and concerns strain Rickettsia sibirica subsp. sibirica. Described use of strain R. sibirica subsp. sibirica "Primorye-32/84" of genotype BJ-90, deposited in the All-Russian museum of rickettsial cultures of FGBU NIIEM named after N.F. Gamalei with the accession number of 160, for the development of the preparations for diagnostics of rickettsioses caused by Rickettsia sibirica subsp. sibirica BJ-90. The strain was isolated in the RF from imago ixodic ticks D. silvarum, collected in Primorsky Krai in 1984. The strain is a pathogen for guinea pigs, successfully cultivated on cell culture Vero E6.
EFFECT: solution may be used for identification of tick spotted fever rickettsias on the basis of genotypic and phenotypic characters and for producing diagnostic preparations.
3 ex

Description

Изобретение относится к области биотехнологии и представляет собой оригинальный штамм риккетсий группы клещевой пятнистой лихорадки «Приморье-32/84». Штамм «Приморье-32/84» является представителем генотипа BJ-90 вида Rickettsia sibirica subsp. sibirica, впервые изолированным на территории РФ. На основании изучения фенотипических и генотипических признаков штамм отнесен к порядку Rickettsiales семейству Rickettsiaceae роду Rickettsia виду Rickettsia sibirica subsp. sibirica генотипу BJ-90.The invention relates to the field of biotechnology and is an original strain of rickettsia group of tick-borne spotted fever "Primorye-32/84". The strain "Primorye-32/84" is a representative of the genotype BJ-90 of the species Rickettsia sibirica subsp. sibirica, first isolated on the territory of the Russian Federation. Based on the study of phenotypic and genotypic characters, the strain is assigned to the Rickettsiales order of the Rickettsiaceae family, the genus Rickettsia, and the species Rickettsia sibirica subsp. sibirica genotype BJ-90.

R.sibirica включает два подвида: R.sibirica subsp. sibirica, возбудитель сибирского клещевого тифа (СКТ) и R.sibirica subsp.mongolotimonae, - этиологический агент «ассоциированного с лимфангитом риккетсиоза» ("lymphangitis-associated rickettsiosis" или LAR). Первый из этих подвидов был впервые изолирован в России, а позднее обнаружен в северном Китае (Yu X., Y. Jin, M. Fan, G. Xu, Q. Liu, and D. Raoult. 1993. Genotypic and antigenic identification of two new strains of spotted fever group rickettsiae isolated from China. J. Clin. Microbiol. 31: 83-88). R. sibirica subsp. mongolotimonae была впервые изолирована во Внутренней Монголии, а затем выявлена в южной Европе и Африке (Fournier Р.Е., F.Gouriet, P. Brouqui, F. Lucht and D. Raoult. 2005. Lymphangitis-associated rickettsiosis, a new rickettsiosis caused by Rickettsia sibirica mongolotimonae: seven new cases and review of the literature. Clin. Infect. Dis. 40: 1435-1444, 12). В 1991 году был впервые описан риккетсиальный штамм с неизвестной патогенностью - Rickettsia sp. strain BJ-90, изолированный из клещей Dermacentor sinicus, собранных в окрестностях Beijing, Китай в 1990 году (Yu X.J., Fan M.Y., Bi D.Z. 1991. Isolation and primary identification of spotted fever group rickettsiae BJ-90 strain. Chin. J. Microbiol. Immunol. 1:31). Филогенетически Rickettsia sp. strain BJ-90 близка к Rickettsia sibirica subsp.sibirica и R.sibirica subsp. mongolotimonae, образуя с ними единый кластер, однако более тесно связана с Rickettsia sibirica subsp.sibirica и признана генетическим вариантом этого вида риккетсий (Zhang J.Z., Fan M.Y., Yu X.J., Raoult D. Phylogenetic analysis of the Chinese Rickettia isolate BJ-90. Emerg. Infect. Dis. 2000, 6: 432-433). В Китае штаммы генотипа BJ-90 были выделены только из одного вида клещей - D.sinicus и в одной местности на протяжении нескольких лет (Zhang J.Z., Jin J.L., Fu Х.Р., Raoult D. and Fournier, P.E. Genetic differentiation of Chinese isolates of Rickettsia sibirica by partial ompA gene sequencing and multispacer typing. 2006. J. Clin. Microbiol. 40: 2465-2467).R.sibirica includes two subspecies: R.sibirica subsp. sibirica, the causative agent of Siberian tick-borne typhus (SKT) and R. sibirica subsp.mongolotimonae, is the etiological agent of "associated with lymphangitis rickettsiosis" ("lymphangitis-associated rickettsiosis" or LAR). The first of these subspecies was first isolated in Russia and later discovered in northern China (Yu X., Y. Jin, M. Fan, G. Xu, Q. Liu, and D. Raoult. 1993. Genotypic and antigenic identification of two new strains of spotted fever group rickettsiae isolated from China. J. Clin. Microbiol. 31: 83-88). R. sibirica subsp. mongolotimonae was first isolated in Inner Mongolia and then identified in southern Europe and Africa (Fournier R.E., F. Gouriet, P. Brouqui, F. Lucht and D. Raoult. 2005. Lymphangitis-associated rickettsiosis, a new rickettsiosis caused by Rickettsia sibirica mongolotimonae: seven new cases and review of the literature. Clin. Infect. Dis. 40: 1435-1444, 12). In 1991, the rickettsial strain with unknown pathogenicity, Rickettsia sp. strain BJ-90 isolated from Dermacentor sinicus ticks collected around Beijing, China in 1990 (Yu XJ, Fan MY, Bi DZ 1991. Isolation and primary identification of spotted fever group rickettsiae BJ-90 strain. Chin. J. Microbiol Immunol. 1:31). Phylogenetically Rickettsia sp. strain BJ-90 is close to Rickettsia sibirica subsp.sibirica and R.sibirica subsp. mongolotimonae, forming a single cluster with them, however, is more closely associated with Rickettsia sibirica subsp.sibirica and is recognized as a genetic variant of this rickettsia species (Zhang JZ, Fan MY, Yu XJ, Raoult D. Phylogenetic analysis of the Chinese Rickettia isolate BJ-90. Emerg Infect. Dis. 2000, 6: 432-433). In China, strains of the BJ-90 genotype were isolated from only one tick species, D.sinicus, and in the same area for several years (Zhang JZ, Jin JL, Fu H.P., Raoult D. and Fournier, PE Genetic differentiation of Chinese isolates of Rickettsia sibirica by partial ompA gene sequencing and multispacer typing. 2006. J. Clin. Microbiol. 40: 2465-2467).

Заболеваемость риккетсиозом, вызываемым генотипом BJ-90 вида Rickettsia sibirica subsp. sibirica, в настоящее время в России не регистрируется, поскольку диагностические препараты для верификации данного риккетсиоза в РФ не выпускаются. Диагноз риккетсиоза, ассоцированного с генотипом BJ-90 вида Rickettsia sibirica subsp. sibirica, может быть поставлен только при лабораторном обследовании с использованием тест-систем на основе производственных штаммов генотипа BJ-90 вида Rickettsia sibirica subsp. sibirica.The incidence of rickettsiosis caused by the BJ-90 genotype of the species Rickettsia sibirica subsp. sibirica, is currently not registered in Russia, since diagnostic products for verification of this rickettsiosis in the Russian Federation are not available. The diagnosis of rickettsiosis associated with the BJ-90 genotype of the species Rickettsia sibirica subsp. sibirica, can only be delivered by laboratory examination using test systems based on production strains of the BJ-90 genotype of the species Rickettsia sibirica subsp. sibirica.

Штаммы Rickettsia генотипа BJ-90 вида Rickettsia sibirica subsp. sibirica, имеющиеся в коллекции Омского НИИ природно-очаговых инфекций - это первые штаммы данного генотипа риккетсий, выделенные из клещей Dermacentor silvarum за пределами Китая. Штамм генотипа BJ-90 вида Rickettsia sibirica subsp. sibirica "Приморье-32/84" выделен из имаго иксодовых клещей D.silvarum, собранных в Дальнереченском районе Приморского края в 1984 году, т.е. на 6 лет раньше изоляции первых китайских штаммов этой риккетсии.Rickettsia strains of genotype BJ-90 of the species Rickettsia sibirica subsp. sibirica, available in the collection of the Omsk Research Institute of Natural Focal Infections, is the first strains of this genotype of rickettsia isolated from Dermacentor silvarum ticks outside of China. The strain of the BJ-90 genotype of the species Rickettsia sibirica subsp. sibirica "Primorye-32/84" was isolated from adults of ixodid ticks D.silvarum collected in the Dalnerechensky district of Primorsky Krai in 1984, i.e. 6 years earlier than the isolation of the first Chinese strains of this rickettsia.

Штамм «Приморье-32/84» культивируется в культуре клеток Vero, куриных эмбрионах, морских свинках.The strain "Primorye-32/84" is cultivated in a culture of Vero cells, chicken embryos, guinea pigs.

По результатам изучения и сравнения нуклеотидных последовательностей фрагментов генов gltA и ompA имеет 100% гомологии с типовым штамом генотипа BJ-90 вида Rickettsia sibirica subsp. sibirica.According to the results of studying and comparing the nucleotide sequences of gltA and ompA gene fragments, it has 100% homology with a typical strain of the BJ-90 genotype of the species Rickettsia sibirica subsp. sibirica.

Штамм генотипа BJ-90 вида Rickettsia sibirica subsp. sibirica "Приморье-32/84" хранится во Всероссийском музее риккетсиозных культур ФГБУ НИИЭМ им. Н.Ф. Гамалеи под инвентарным номером 160 от 4 марта 2013 г. Задача изобретения - оригинальный штамм генотипа BJ-90 вида Rickettsia sibirica subsp.sibirica "Приморье-32/84", который может быть использован для разработки и изготовления диагностических препаратов (наборов реагентов).The strain of the BJ-90 genotype of the species Rickettsia sibirica subsp. sibirica "Primorye-32/84" is stored in the All-Russian Museum of Rickettsial Cultures FSBI NIIEM them. N.F. Gamalei under inventory number 160 dated March 4, 2013. The objective of the invention is the original strain of the genotype BJ-90 of the species Rickettsia sibirica subsp.sibirica "Primorye-32/84", which can be used for the development and manufacture of diagnostic preparations (sets of reagents).

Технический результат - использование штамма генотипа BJ-90 вида Rickettsia sibirica subsp. sibirica "Приморье-32/84", в качестве производственного штамма при разработке и изготовлении препаратов для диагностики риккетсиоза, вызываемого генотипом BJ-90 вида Rickettsia sibirica subsp. sibirica. Заявляемый штамм обладает способностью активно размножаться в различных биологических системах (морские свинки, развивающиеся куриные эмбрионы, культура клеток Vero) и накапливать производственную биомассу в процессе культивирования, что позволяет использовать его для серийного (коммерческого) выпуска диагностических препаратов (наборов реагентов). Использование штамма генотипа BJ-90 вида Rickettsia sibirica subsp. sibirica "Приморье-32/84", в качестве продуцента диагностических препаратов позволяет оптимизировать лабораторную диагностику риккетсиозов и мониторинг сочетанных природных очагов риккетсиозов группы клещевой пятнистой лихорадки (КПЛ) в России.The technical result is the use of a strain of the genotype BJ-90 of the species Rickettsia sibirica subsp. sibirica "Primorye-32/84", as a production strain in the development and manufacture of preparations for the diagnosis of rickettsiosis caused by the BJ-90 genotype of the species Rickettsia sibirica subsp. sibirica. The inventive strain has the ability to actively reproduce in various biological systems (guinea pigs, developing chicken embryos, Vero cell culture) and accumulate production biomass during cultivation, which allows it to be used for serial (commercial) production of diagnostic preparations (reagent kits). Using a strain of the BJ-90 genotype of the species Rickettsia sibirica subsp. sibirica "Primorye-32/84", as a producer of diagnostic products, allows optimizing laboratory diagnosis of rickettsioses and monitoring of combined natural foci of rickettsioses of the group of tick-borne spotted fever (KPL) in Russia.

Выделенный штамм генотипа BJ-90 вида Rickettsia sibirica subsp. sibirica "Приморье-32/84" характеризуется следующими признаками:An isolated strain of the BJ-90 genotype of the species Rickettsia sibirica subsp. sibirica "Primorye-32/84" is characterized by the following features:

Морфологические признаки. Типичны для риккетсий, но чаще других встречаются палочковидные формы (тип b по классификации П.Ф. Здродовского). Грамотрицательны.Morphological signs. Typical for rickettsia, but rod-shaped forms are more common than others (type b according to the classification of P.F. Zdrodovsky). Gram-negative.

Кулътуральные свойства. Успешно пассируется в культуре клеток Vero-Е6, с максимальным накоплением риккетсий до 25-30 и более экземпляров в поле зрения. При культивировании на 5-6 дневных куриных эмбрионах, начиная со второго пассажа дает накопление 50 и более риккетсий в поле зрения.Cultural properties. It is successfully passaged in Vero-E6 cell culture, with a maximum accumulation of rickettsia up to 25-30 or more copies in sight. When cultivated on 5-6 day old chicken embryos, starting from the second passage it gives an accumulation of 50 or more rickettsia in the field of view.

Пассажная характеристика. Штамм выделен в 1984 г. в биопробе на морских свинках-самцах и после восьми пассажей на морских свинках переведен на куриные эмбрионы. Культура штамма генотипа BJ-90 вида Rickettsia sibirica subsp. sibirica "Приморье-32/84" лиофильно высушена на 5-м пассаже на куриных эмбрионах.Passage characteristic. The strain was isolated in 1984 in a biological test on male guinea pigs and, after eight passages in guinea pigs, was transferred to chicken embryos. The culture of the strain of the genotype BJ-90 of the species Rickettsia sibirica subsp. sibirica "Primorye-32/84" is lyophilized dried on the 5th passage on chicken embryos.

Антигенные свойства. Антигенные детерминанты генотипа BJ-90 вида Rickettsia sibirica subsp. sibirica выявляются методом флюоресцирующих антител с иммуноглобулинами диагностическими для выявления риккетсий группы КПЛ.Antigenic properties. Antigenic determinants of the BJ-90 genotype of the species Rickettsia sibirica subsp. sibirica are detected by the method of fluorescent antibodies with diagnostic immunoglobulins to detect rickettsia of the CPL group.

Иммуногенные свойства. В реакции связывания комплемента (РСК) с антигеном R.sibirica и сыворотками морских свинок, зараженных штаммом генотипа BJ-90 вида Rickettsia sibirica subsp. sibirica "Приморье-32/84, отмечается сероконверсия в титрах 1:40-1:80. При исследовании методом ИФА сывороток крови лихорадящих больных, имевших в анамнезе присасывание клещей, с антигеном генотипа BJ-90 вида Rickettsia sibirica subsp. sibirica, приготовленным из штамма "Приморье-32/84", антитела класса IgM к данному виду риккетсий выявлены в 16,0±3,2%, антитела класса IgG - в 9,9±2,6%. Отмечается отсутствие перекрестных реакций при исследовании сывороток крови больных клещевым риккетсиозом на наличие антител классов IgM и IgG в ИФА с антигенами R.sibirica subsp. sibirica и R.sibirica subsp. sibirica генотипа BJ-90, что позволяет оценивать данный штамм как кандидат для разработки диагностических препаратов.Immunogenic properties. In the complement binding reaction (CSC) with the R.sibirica antigen and guinea pig sera infected with the BJ-90 strain of the species Rickettsia sibirica subsp. sibirica "Primorye-32/84, seroconversion in titers of 1: 40-1: 80 is observed. When ELISA examines the blood sera of febrile patients who had a history of sucking ticks with the BJ-90 genotype antigen of the species Rickettsia sibirica subsp. sibirica, prepared from strain "Primorye-32/84", antibodies of the IgM class to this type of rickettsia were detected in 16.0 ± 3.2%, antibodies of the IgG class in 9.9 ± 2.6%. There is a lack of cross-reactions in the study of blood serum of patients tick-borne rickettsiosis for the presence of antibodies of the IgM and IgG classes in ELISA with antigens of R. sibirica subsp. sibirica and R. sibirica subsp. sibirica genotype BJ-90, which allows to evaluate the strain as a candidate for the development of diagnostic products.

Вирулентные свойства. При внутрибрюшинном заражении морских свинок штамм вызывает 2-3 дневную лихорадочную реакцию с выраженным периорхитом. При вскрытии у животных наблюдается характерная для клещевого риккетсиоза патологоанатомическая картина.Virulent properties. With intraperitoneal infection of guinea pigs, the strain causes a 2-3-day febrile reaction with severe periorchitis. At autopsy in animals, a pathological anatomical picture characteristic of tick-borne rickettsiosis is observed.

Генотипические характеристики. Определена нуклеотидная последовательность гена цитрат синтазы (gltA) длиной 1234 пар оснований штамма "Приморье-32/84", которая имела 100% гомологии с последовательностью гена цитрат синтазы типового штамма R.sibirica subsp. sibirica генотип BJ-90, депонированной в GenBank под номером AF178035:Genotypic characteristics. The nucleotide sequence of the synthase citrate synthase (gltA) gene was determined with a length of 1234 base pairs of the strain Primorye 32/84, which had 100% homology with the sequence of the citrate synthase gene of the type strain R.sibirica subsp. sibirica genotype BJ-90 deposited in GenBank under the number AF178035:

Figure 00000001
Figure 00000002
Figure 00000001
Figure 00000002

Последовательность нуклеотидов гена белка наружной мембраны риккетсий (OmpA) длиной 590 пар оснований имеет 100% гомологии с депонентом GenBank под номером AF179365 Rickettsia sibirica subsp. sibirica генотип BJ-90. OmpA (ompA) gene:The nucleotide sequence of the rickettsia outer membrane protein (OmpA) gene length of 590 base pairs has 100% homology with GenBank member number AF179365 Rickettsia sibirica subsp. sibirica genotype BJ-90. OmpA (ompA) gene:

Figure 00000003
Figure 00000003

На основании морфологических, антигенных и генетических признаков изолированный штамм относят к роду Rickettsia виду Rickettsia sibirica subsp. sibirica генотипу BJ-90.Based on morphological, antigenic, and genetic characters, an isolated strain is assigned to the genus Rickettsia, the species Rickettsia sibirica subsp. sibirica genotype BJ-90.

Изобретение иллюстрируется следующими примерами. The invention is illustrated by the following examples.

Пример 1. Идентификация на основании генотипических признаков. Экстракция ДНК.Example 1. Identification based on genotypic traits. DNA extraction.

Экстракцию риккетсиальной ДНК из пробы культур клеток осуществляют, применяя QIAamp Tissue Kit (QIAGEN, Hilden, Germany) и протеиназу К в концентрации 2,0 мг/мл (Boehringer Mannheim, Mannheim, Germany) в соответствии с протоколом QIAamp Tissue Kit. Полимеразная цепная реакция (ПЦР) и секвенс-реакция.Rickettsial DNA was extracted from a cell culture sample using the QIAamp Tissue Kit (QIAGEN, Hilden, Germany) and proteinase K at a concentration of 2.0 mg / ml (Boehringer Mannheim, Mannheim, Germany) according to the QIAamp Tissue Kit protocol. Polymerase chain reaction (PCR) and sequencing reaction.

Полимеразную цепную реакцию (ПЦР) и секвенс-реакцию выполняют, применяя праймеры, специфичные для Rickettsiae, используют две пары праймеров, амплифицирующие gltA ген, кодирующий цитрат синтетазу: CS1d (5-ATGACTAATGGCAATAATAA-3) и CS535r (5-GAATATTTATAAGACAT-TGC-3), CS409d (5-CCTATGGCTATTATGCTTGC-3) и RP1258n (5-ATTGCAAAAAGTACAGTGAACA-3), а также праймеры 190.70 (ATG GCGAATATTTCTCCAAAA), 190.180 (GCAGCGATAATGCTGAGTA) и 190.701 (GTTCCGTTAATGGCAGCATCT), амплифицирующие ompA ген, кодирующий белок наружной мембраны (Roux V. et al., 1997; Fournier P-E. et al., 1998).The polymerase chain reaction (PCR) and the sequencing reaction are performed using Rickettsiae-specific primers using two pairs of primers amplifying the gltA gene encoding citrate synthetase: CS1d (5-ATGACTAATGGCAATAATAA-3) and CS535r (5-GAATATTTATA ), CS409d (5-CCTATGGCTATTATGCTTGC-3) and RP1258n (5-ATTGCAAAAAGTACAGTGAACA-3), as well as primers 190.70 (ATG GCGAATATTTCTCCAAAA), 190.180 (GCAGCGATAATGGCTGTA protein), GTCGATGTGTAGTA code . et al., 1997; Fournier PE. et al., 1998).

ПЦР выполняют в термоциклере Peltier модель PTC-200 (Mj Research, Inc, Watertown, MA). Реакционная смесь для каждой пробы содержит 10 pmol каждого праймера, 0,5 единиц полимеразы (Elongase, GibcoBRL), 20 mM каждого дезоксинуклеозидтрифосфата, 1,8 mM MgCl2 и 7,5 мкл ДНК от каждой пробы, финальный объем составляет 25 мкл. Амплификацию выполняют по следующей программе: 3 мин инициальной денатурации при 94°С, в последующих 44 циклах 30 с денатурации при 94°С, 30 с отжиг праймеров при температуре 55°С, 90 с элонгации при 68°С и 7 мин финальная элонгация при температуре 68°С. Каждая постановка ПЦР включает отрицательный контроль (дистиллированная вода) и положительный контроль (ДНК R.montanensis).PCR was performed on a Peltier thermal cycler model PTC-200 (Mj Research, Inc, Watertown, MA). The reaction mixture for each sample contains 10 pmol of each primer, 0.5 polymerase units (Elongase, GibcoBRL), 20 mM of each deoxynucleoside triphosphate, 1.8 mM MgCl 2 and 7.5 μl of DNA from each sample, the final volume is 25 μl. Amplification is carried out according to the following program: 3 min of initial denaturation at 94 ° C, in the next 44 cycles 30 s of denaturation at 94 ° C, 30 s of primer annealing at 55 ° C, 90 s of elongation at 68 ° C and 7 min final elongation at temperature 68 ° С. Each PCR setup includes a negative control (distilled water) and a positive control (R.montanensis DNA).

Пурификацию ПЦР-продукта проводят, применяя QIAquick PCR Purification Kit (Germany) в соответствии с протоколом.Purification of the PCR product is carried out using the QIAquick PCR Purification Kit (Germany) in accordance with the protocol.

Секвенс-реакцию с ПЦР-продуктами выполняют, применяя d-Rhodamine Terminator Cycle Sequencing Ready Reaction kit (Applied Biosistems, Warrington, UK). Секвенирование выполняют на ABI 3100 PRISM (Applied Biosystems) в автоматическом секвенаторе. Анализ полученных нуклеотидных последовательностей для сравнения степени гомологии с последовательностями Банка данных GenBank проводят с помощью программы BLAST в режиме прямого доступа.A sequencing reaction with PCR products was performed using the d-Rhodamine Terminator Cycle Sequencing Ready Reaction kit (Applied Biosistems, Warrington, UK). Sequencing is performed on an ABI 3100 PRISM (Applied Biosystems) in an automatic sequencer. Analysis of the obtained nucleotide sequences to compare the degree of homology with the sequences of the GenBank data bank is carried out using the BLAST program in direct access mode.

Пример 2. Идентификация на основании фенотипических (культуральных и антигенных) свойств. Культивирование риккетсий.Example 2. Identification based on phenotypic (cultural and antigenic) properties. The cultivation of rickettsia.

Культивирование риккетсий проводят на культуре клеток Vero Е6. Культуру выращивают по стандартной методике Соловьева, Бектемирова 1972 г., в качестве ростовой среды используют Игла MEM с двойным набором аминокислот с добавлением 5% эмбриональной сыворотки. Оптимальная посевная доза 100-150 тыс. клеток на 1 мл. На следующие сутки после образования монослоя клеточную культуру используют для заражения.Rickettsia is cultured on a Vero E6 cell culture. The culture was grown according to the standard method of Solovyov, Bektemirov 1972, as the growth medium used MEM Needle with a double set of amino acids with the addition of 5% fetal serum. The optimal seeding dose of 100-150 thousand cells per 1 ml. The next day after the formation of a monolayer, the cell culture is used for infection.

Заражение культур клеток.Infection of cell cultures.

Клеточную культуру в матрасе заражают 50% суспензией, полученной из высушенной культуры штамма, в дозе 1 мл на матрац. Во все матрацы с зараженными клетками добавляют среду поддержки (Игла MEM с добавлением 1% эмбриональной сыворотки) в объеме 9 мл на матрац (Raoult D., 2000). Матрацы с зараженными клетками культивируют в термостате при температуре 37°С в течение 10-14 суток. Максимальное накопление наблюдается со второго 2 пассажа и составляет 25-30 и более экземпляров в каждом поле зрения, с преимущественной локализацией микроорганизма в цитоплазме клеток. Инфицированность и стерильность культуры клеток определяют в мазках, окрашивая их по Романовскому-Гимза.The cell culture in the mattress is infected with a 50% suspension obtained from the dried strain culture at a dose of 1 ml per mattress. In all mattresses with infected cells, support medium (MEM needle with the addition of 1% fetal serum) is added in a volume of 9 ml per mattress (Raoult D., 2000). Mattresses with infected cells are cultured in a thermostat at a temperature of 37 ° C for 10-14 days. The maximum accumulation is observed from the second 2 passage and is 25-30 or more copies in each field of view, with the predominant localization of the microorganism in the cytoplasm of the cells. Infection and sterility of cell culture is determined in smears, staining them according to Romanovsky-Giemsa.

Полученные образцы исследуют методом флюоресцирующих антител по стандартной методике, используют иммуноглобулины диагностические для выявления риккетсий группы КПЛ, люминесцирующие сухие (ФГУП «НПО «Микроген» г. Пермь). Изучение морфологических и тинкториальных свойств проводят по методу Здродовского и Голиневич (1972), для подтверждения принадлежности к риккетсиям используют ПЦР с родоспецифическими праймерами.The obtained samples are examined by the method of fluorescent antibodies according to the standard method, diagnostic immunoglobulins are used to detect rickettsia of the CPL group, luminescent dry (FSUE NPO Mikrogen, Perm). The study of morphological and tinctorial properties is carried out according to the method of Zdrodovsky and Golinevich (1972), to confirm belonging to rickettsia, PCR with rhodospecific primers is used.

Пример 3. Приготовление цельнорастворимых антигеновExample 3. Preparation of Fully Soluble Antigens

Для приготовления антигена зараженные культуры клеток подвергают центрифугированию при 6000 оборотах в минуту в течение 20 минут, далее удаляют супернатант, а из полученной взвеси делают мазки, которые окрашивают по Романовскому-Гимза.To prepare the antigen, the infected cell cultures are centrifuged at 6,000 rpm for 20 minutes, then the supernatant is removed, and smears are made from the resulting suspension, which are stained according to Romanovsky-Giemsa.

После микроскопического контроля во взвесь зараженных клеток добавляют физиологический раствор и 0,5% фенол. После встряхивания в шейкере пробирки с зараженной клеточной взвесью помещают в рефрижератор на 3-4 дня для осаждения посторонних белковых примесей.After microscopic control, physiological saline and 0.5% phenol are added to the suspension of infected cells. After shaking in a shaker, tubes with infected cell suspension are placed in a refrigerator for 3-4 days to precipitate foreign protein impurities.

После этого клеточную взвесь подвергают многократной эфирной обработке по Craigie (1945 г.). При первой эфирной обработке к материалу добавляют 1,5-2 объема наркозного эфира и после встряхивания оставляют при комнатной температуре до следующего дня в темном месте. Затем водную фазу отделяют и второй раз обрабатывают эфиром (равный объем эфира в отношении водной фазы), встряхивают и оставляют на 2 часа, затем водную фазу вновь отделяют и в третий раз обрабатывают эфиром (1/2 объема эфира по отношению к объему водной фазы) таким же образом.After this, the cell suspension is subjected to repeated ether treatment according to Craigie (1945). During the first ether treatment, 1.5-2 volumes of anesthetic ether are added to the material and, after shaking, they are left at room temperature until the next day in a dark place. Then the aqueous phase is separated and treated with ether a second time (equal volume of ether in relation to the aqueous phase), shaken and left for 2 hours, then the aqueous phase is separated again and treated with ether for the third time (1/2 volume of ether relative to the volume of the aqueous phase) in the same way.

После третьей обработки при образовании среднего тканевого слоя делают повторную эфирную обработку. После окончания эфирной обработки производят отгонку эфира под небольшим вакуумом. Пробирки с антигеном оставляют в течение суток в холодильнике для испарения эфира. Полученные серии антигенов испытывают в реакции связывания комплемента РСК на антикомплементарность, специфичность, чувствительность и устанавливают титр. Также антигены стандартизуют по уровню аминного азота методом формольного титрования (%) и белка с помощью биуретовой реакции (%). После испытания антигены разливают в ампулы по 1,0 мл и лиофильно высушивают. Высушенный антиген хранят при температуре - 20°C.After the third treatment, a secondary ether treatment is done to form the middle tissue layer. After completion of the ether treatment, the ether is distilled off under a small vacuum. Test tubes with antigen are left in the refrigerator for one day to evaporate the ether. The resulting series of antigens are tested in the complement binding reaction of CSCs for anticomplementarity, specificity, sensitivity and a titer is established. Also, antigens are standardized by the level of amine nitrogen by formol titration (%) and protein using a biuret reaction (%). After the test, antigens are poured into 1.0 ml ampoules and freeze-dried. The dried antigen is stored at a temperature of -20 ° C.

Приготовление корпускулярного антигена.Preparation of corpuscular antigen.

После завершения культивирования культуру зараженных клеток замораживают при - 20°С, а потом оттаивают для разрушения клеток и максимального выхода из них риккетсий. Материал центрифугируют 10 минут при 3000 оборотах в минуту. Супернатант используют для нанесения корпускулярного антигена на стекла и проведения реакции непрямой иммунофлюоресценции для исследования сывороток больных клещевыми инфекциями.After cultivation, the culture of infected cells is frozen at -20 ° C, and then thawed to destroy the cells and maximize the yield of rickettsia from them. The material is centrifuged for 10 minutes at 3000 rpm. The supernatant is used to apply particle antigen to glass and conduct an indirect immunofluorescence reaction to study the sera of tick-borne infections.

Таким образом, штамм имеет 100% гомологии с типовым штаммом генотипа BJ-90 вида Rickettsia sibirica subsp. sibirica по результатам сравнения нуклеотидных последовательностей гена gltA и гена ompA, активно размножается в культуре клеток Vero и в развивающихся куриных эмбрионах, что позволяет в процессе культивирования накапливать производственную биомассу. С учетом этого, он может быть использован в качестве производственного штамма при разработке и изготовлении препаратов для диагностики риккетсиоза, вызываемого генотипом BJ-90 вида Rickettsia sibirica subsp. sibirica.Thus, the strain has 100% homology with a typical strain of the BJ-90 genotype of the species Rickettsia sibirica subsp. sibirica, based on a comparison of the nucleotide sequences of the gltA gene and ompA gene, actively propagates in Vero cell culture and in developing chicken embryos, which allows the accumulation of production biomass during cultivation. With this in mind, it can be used as a production strain in the development and manufacture of drugs for the diagnosis of rickettsiosis caused by the BJ-90 genotype of the species Rickettsia sibirica subsp. sibirica.

Claims (1)

Применение штамма Rickettsia sibirica subsp. sibirica "Приморье-32/84" генотипа BJ-90, депонированного во Всероссийском музее риккетсиозных культур ФГБУ НИИЭМ им. Н.Ф. Гамалеи под номером 160, для разработки препаратов для диагностики риккетсиоза, вызываемого Rickettsia sibirica subsp. sibirica BJ-90. The use of the strain Rickettsia sibirica subsp. sibirica "Primorye-32/84" of the genotype BJ-90, deposited in the All-Russian Museum of Rickettsial Cultures FSBI NIIEM them. N.F. Gamalei at number 160, for the development of drugs for the diagnosis of rickettsiosis caused by Rickettsia sibirica subsp. sibirica BJ-90.
RU2013136433/10A 2013-08-02 2013-08-02 AGENT FOR PRODUCING PREPARATIONS FOR DIAGNOSTICS OF RICKETTSIOSES CAUSED BY RICKETTSIA SIBIRICA subsp. SIBIRICA BJ-90 RU2560581C2 (en)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2013136433/10A RU2560581C2 (en) 2013-08-02 2013-08-02 AGENT FOR PRODUCING PREPARATIONS FOR DIAGNOSTICS OF RICKETTSIOSES CAUSED BY RICKETTSIA SIBIRICA subsp. SIBIRICA BJ-90

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2013136433/10A RU2560581C2 (en) 2013-08-02 2013-08-02 AGENT FOR PRODUCING PREPARATIONS FOR DIAGNOSTICS OF RICKETTSIOSES CAUSED BY RICKETTSIA SIBIRICA subsp. SIBIRICA BJ-90

Publications (2)

Publication Number Publication Date
RU2013136433A RU2013136433A (en) 2015-02-10
RU2560581C2 true RU2560581C2 (en) 2015-08-20

Family

ID=53281742

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
RU2013136433/10A RU2560581C2 (en) 2013-08-02 2013-08-02 AGENT FOR PRODUCING PREPARATIONS FOR DIAGNOSTICS OF RICKETTSIOSES CAUSED BY RICKETTSIA SIBIRICA subsp. SIBIRICA BJ-90

Country Status (1)

Country Link
RU (1) RU2560581C2 (en)

Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2616287C1 (en) * 2015-12-07 2017-04-13 Федеральное бюджетное учреждение науки "Омский научно-исследовательский институт природно-очаговых инфекций" Федеральной службы по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека Agent for producing preparations for diagnostics of typhus caused by rickettsia raoultii with genotype dns28

Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2235769C2 (en) * 2001-10-09 2004-09-10 Омский научно-исследовательский институт природноочаговых инфекций Apathogenic rickettsia strain of tick-borne tobia fever group used for differentiation of pathogenic and apathogenic rickettsia in tick-borne tobia fever group

Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2235769C2 (en) * 2001-10-09 2004-09-10 Омский научно-исследовательский институт природноочаговых инфекций Apathogenic rickettsia strain of tick-borne tobia fever group used for differentiation of pathogenic and apathogenic rickettsia in tick-borne tobia fever group

Non-Patent Citations (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
JIAN Z.ZHANG et al., Phylogenetic Analysis of the Chinese Rickettsia Isolate BJ-90, Emerging Infectious Diseases, 2000 July-August, Vol. 6, No. 4, pp.432-433 *
А.Н. КОЛОМЕЕЦ и др., Использование комплекса молекулярно-генетических методов (ПЦР-ПДРФ) для изучения риккетсий группы клещевой пятнистой лихорадки, Бюллетень ВСНЦ СОРАМН, 2007, N3 (55) приложение, стр.117-120. *

Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2616287C1 (en) * 2015-12-07 2017-04-13 Федеральное бюджетное учреждение науки "Омский научно-исследовательский институт природно-очаговых инфекций" Федеральной службы по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека Agent for producing preparations for diagnostics of typhus caused by rickettsia raoultii with genotype dns28

Also Published As

Publication number Publication date
RU2013136433A (en) 2015-02-10

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Higgins et al. Rickettsia felis: a new species of pathogenic rickettsia isolated from cat fleas
US8277814B2 (en) Avian Astrovirus
RU2654586C2 (en) Recombinational cartridge containing the ep153r and ep364r genes of the congo (kk-262) strain of the african swine fever virus and recombinant δcongocd2v strain of the african swine fever virus
WO2015053455A1 (en) Severe fever with thrombocytopenia syndrome virus, and sfts diagnostic method and kit using same
CN109022369A (en) The novel country of South Korea porcine reproductive and respiratory syndrome virus
Khalifa et al. Sequencing analysis of Mycoplasma gallisepticum wild strains in vaccinated chicken breeder flocks
Magouz et al. Detection and characterisation of rabbit haemorrhagic disease virus strains circulating in Egypt.
Zhang et al. Studies on bluetongue disease in the People’s Republic of China
CN111057682B (en) Avian H9N2 subtype avian influenza strain separation identification and application
RU2560581C2 (en) AGENT FOR PRODUCING PREPARATIONS FOR DIAGNOSTICS OF RICKETTSIOSES CAUSED BY RICKETTSIA SIBIRICA subsp. SIBIRICA BJ-90
CN112379105A (en) Method for detecting IPMA (ionic polymer antigen) neutralizing antibody of PRRSV (porcine reproductive and respiratory syndrome Virus)
RU2560422C2 (en) Means of obtaining preparations for diagnosing rickettsiosis caused by rickettsia slovaca
RU2571858C1 (en) Recombinational cartridge containing genes ep153r and ep402r of strain f-32 of african swine fever virus and recombinant strain dswcongo/francelectincd2 of african swine fever virus
RU2723410C2 (en) Agent for preparing preparations for diagnosing rickettsial disease caused by rickettsia sibirica subsp_ sibirica
CN106480003B (en) The combination of helicobacter pylori dominant antigen and screening technique based on CD4+T cellular immunity
RU2616287C1 (en) Agent for producing preparations for diagnostics of typhus caused by rickettsia raoultii with genotype dns28
RU2607025C1 (en) Synthetic oligonucleotide primers and method for detecting rna atypical pestivirus of cattle
RU2708335C1 (en) Strain "privolzhsky" of a virus of nodular dermatitis in cattle dermatitis nodularis bovum, a genus capripoxvirus for manufacturing biopreparations for diagnostics and specific prevention of infectious dermatitis of bovine animals
RU2583286C2 (en) Tick-borne spotted fever rickettsia strain of rickettsia heilongjiangensis type, used for identification of rickettsia and production of diagnostic preparations
CN108707589B (en) Bovine viral diarrhea virus SMU-Z6/1a/SC/2016 isolate and application thereof
RU2704449C2 (en) AGENT FOR PREPARING PREPARATIONS FOR DIAGNOSING RICKETTSIOSIS CAUSED BY RICKETTSIA RAOULTII GENOTYPE DnS14
RU2354691C1 (en) Strain of rickettsiaceae "candidatus rickettsia tarasevichiae''-candidate to new species used for rickettsiaceae identification and obtaining diagnostic preparations
CN105861448B (en) Novel enterovirus71 strain and application thereof
CN110760485B (en) Avian reovirus strain and application thereof
El-Nahas et al. Recent Isolation and Identification of Sheep Pox Virus from Menofeia Province, Egypt