RU2558231C2 - Method, test-system and primers for determination of haplogroups of human y-chromosome - Google Patents
Method, test-system and primers for determination of haplogroups of human y-chromosome Download PDFInfo
- Publication number
- RU2558231C2 RU2558231C2 RU2013140705/10A RU2013140705A RU2558231C2 RU 2558231 C2 RU2558231 C2 RU 2558231C2 RU 2013140705/10 A RU2013140705/10 A RU 2013140705/10A RU 2013140705 A RU2013140705 A RU 2013140705A RU 2558231 C2 RU2558231 C2 RU 2558231C2
- Authority
- RU
- Russia
- Prior art keywords
- oligonucleotide primers
- haplogroups
- chromosome
- multiplexes
- specific oligonucleotide
- Prior art date
Links
Images
Landscapes
- Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)
Abstract
Description
Изобретение относится к области ДНК-генеалогии, молекулярной биологии и биотехнологии и может быть использовано для установления гаплогрупп Y-хромосомы и этнической принадлежности человека. Изобретение будет представлять интерес для этнографов, антропологов, популяционных генетиков, людей, интересующихся историей своих предков или занимающихся поиском своих родственников среди однофамильцев, а также в криминалистике.The invention relates to the field of DNA genealogy, molecular biology and biotechnology and can be used to establish haplogroups of the Y chromosome and ethnicity of a person. The invention will be of interest to ethnographers, anthropologists, population geneticists, people interested in the history of their ancestors or searching for their relatives among namesakes, as well as in forensics.
В ДНК-генеалогии, чтобы определить гаплогруппу Y-хромосомы нужно последовательно протипировать примерно около 300 SNP полиморфизмов, т.к. протипировав только один SNP полиморфизм, исследователь не сможет определить к какой этнической принадлежности относится человек, что связано с последовательным накоплением мутаций на Y-хромосоме. Традиционно для генотипирования однонуклеотидных полиморфизмов (SNP) Y-хромосомы используется иерархический алгоритм, согласно установленной последовательности накопления мутаций на Y-хромосоме [Cinnioglu С, King R., Kivisild Т. et al. Excavating Y-chromosome haplotype strata in Anatolia // Hum. Genet. - 2004 - V. 114. - P. 127-148.; Cruciani F., Santolamazza P., Shen P., et al. A Back Migration from Asia to Sub-Saharan Africa Is Supported by High-Resolution Analysis of Human Y-Chromosome Haplotypes // Am. J. Hum. Genet. - 2002. - V. 70. - P. 1197-1214.; Hammer M.F. A recent common ancestry for human Y-chromosomes // Nature. - 1995a. - V. 378. - P. 376-378.; Karafet Т. M., Mendez F. L., Meilerman M. В., et al. New binary polymorphisms reshape and increase resolution of the human Y chromosomal haplogroup tree. // Genome Res. 2008 18:830-838 originally published online April 2, 2008. - P. 830-838.; Karafet T.M., Osipova L.P., Gubina M.A. et al. High Levels of Y-chromosome differentiation among Native Siberian Populations and the Genetic Signature of a Doreal-Galherer Way of Life // Human Biology. - 2002. - V. 74. - №6. - P. 761-789.; Underhill P. A., Passarino G., Lin A. A. et al. The phylogeography of Y chromosome binary haplotypes and the origins of modern human populations // Ann. Hum. Genet. - 2001. - V. 65. P. 43-62.; Underhill P.A., Shen P., Lin A.A. et al. Y chromosome sequence variation and the history of human populations // Nat. Genet. - 2000. - V. 26. - 358-361]. Однако данный алгоритм очень трудоемок и подходит больше для рутинного использования в научно-исследовательских лабораториях и совершенно не пригоден для коммерческой ДНК-генеалогии.В настоящее время для определения гаплогрупп Y-хромосомы известны такие способы типирования однонуклеотидных полиморфизмов, как ПДРФ-анализ и TaqMan метод [Браун Т.А. Геномы. - М. - Ижевск: Институт компьютерных исследований. - 2011. - 944 с.; Ребриков Д.В. и др. ПЦР в реальном времени. - М.: БИНОМ. Лаборатория знаний, 2009. - 223 с., Luo Ziyi, Wu Yumei. Real-time fluorescence quantification PCR (Polymerase Chain Reaction) kit and method for detecting Y-chromosome micro-deletion. CN102876776 (A) 2013-01-16.]. Суть ПДРФ-анализа сводится к следующему: фермент - эндонуклеаза рестрикции связывается с молекулой ДНК в области определенной последовательности и делает двунитевой разрез в этой последовательности или около нее. После обработки ДНК эндонуклеазами рестрикции полученные фрагменты могут быть исследованы электрофорезом в агарозном геле [Браун Т.А. Геномы. - М. - Ижевск: Институт компьютерных исследований. - 2011. - 944 с]. Суть метода TaqMan состоит в том, что в данном подходе олигонуклеотид, комплементарный продукту ПЦР, метят флуорофором и гасителем флуоресценции. В отсутствии мишени флуорофор и гаситель сближены и флуоресценция подавлена. При накоплении соответствующего продукта реакции, проба гибридизуется на ампликон, что ведет к ее разрушению за счет 5′-эндонуклеазной активности Taq-полимеразы. Интенсивность сигнала возрастает с каждым циклом ПЦР пропорционально накоплению ампликонов [Ребриков Д.В. и др. ПЦР в реальном времени. - М.: БИНОМ. Лаборатория знаний, 2009. - 223 с.].In DNA genealogy, in order to determine the haplogroup of the Y chromosome, approximately 300 SNP polymorphisms must be sequentially typed, because having typed only one SNP polymorphism, the researcher will not be able to determine which ethnicity a person belongs to, which is associated with the sequential accumulation of mutations on the Y chromosome. Traditionally, for the genotyping of single nucleotide polymorphisms (SNPs) of the Y chromosome, a hierarchical algorithm is used, according to the established sequence of accumulation of mutations on the Y chromosome [Cinnioglu C, King R., Kivisild T. et al. Excavating Y-chromosome haplotype strata in Anatolia // Hum. Genet. - 2004 - V. 114. - P. 127-148 .; Cruciani F., Santolamazza P., Shen P., et al. A Back Migration from Asia to Sub-Saharan Africa Is Supported by High-Resolution Analysis of Human Y-Chromosome Haplotypes // Am. J. Hum. Genet. - 2002. - V. 70. - P. 1197-1214 .; Hammer M.F. A recent common ancestry for human Y-chromosomes // Nature. - 1995a. - V. 378. - P. 376-378 .; Karafet T. M., Mendez F. L., Meilerman M. B., et al. New binary polymorphisms reshape and increase resolution of the human Y chromosomal haplogroup tree. // Genome Res. 2008 18: 830-838 originally published online April 2, 2008. - P. 830-838 .; Karafet T.M., Osipova L.P., Gubina M.A. et al. High Levels of Y-chromosome differentiation among Native Siberian Populations and the Genetic Signature of a Doreal-Galherer Way of Life // Human Biology. - 2002. - V. 74. - No. 6. - P. 761-789 .; Underhill P. A., Passarino G., Lin A. A. et al. The phylogeography of Y chromosome binary haplotypes and the origins of modern human populations // Ann. Hum. Genet. - 2001. - V. 65. P. 43-62 .; Underhill P.A., Shen P., Lin A.A. et al. Y chromosome sequence variation and the history of human populations // Nat. Genet. - 2000. - V. 26. - 358-361]. However, this algorithm is very time-consuming and more suitable for routine use in research laboratories and completely unsuitable for commercial DNA genealogy. Currently, methods for typing single nucleotide polymorphisms such as RFLP analysis and TaqMan method are known for determining Y-chromosome haplogroups [ Brown T.A. Genomes. - M. - Izhevsk: Institute for Computer Research. - 2011 .-- 944 p .; Rebrikov D.V. and other real-time PCR. - M .: BINOM. Laboratory of Knowledge, 2009 .-- 223 p., Luo Ziyi, Wu Yumei. Real-time fluorescence quantification PCR (Polymerase Chain Reaction) kit and method for detecting Y-chromosome micro-deletion. CN102876776 (A) 2013-01-16.]. The essence of RFLP analysis is as follows: the enzyme, restriction endonuclease, binds to a DNA molecule in the region of a specific sequence and makes a double-stranded incision in this sequence or near it. After DNA treatment with restriction endonucleases, the obtained fragments can be examined by agarose gel electrophoresis [Brown T.A. Genomes. - M. - Izhevsk: Institute for Computer Research. - 2011. - 944 s]. The essence of the TaqMan method is that in this approach, an oligonucleotide complementary to the PCR product is labeled with a fluorophore and a fluorescence quencher. In the absence of a target, the fluorophore and quencher are brought together and fluorescence is suppressed. Upon accumulation of the corresponding reaction product, the sample hybridizes to an amplicon, which leads to its destruction due to the 5′-endonuclease activity of Taq polymerase. The signal intensity increases with each PCR cycle in proportion to the accumulation of amplicons [D. Rebrikov and other real-time PCR. - M .: BINOM. Laboratory of Knowledge, 2009. - 223 p.].
Существенными недостатками вышеуказанных способов является то, что за одну реакцию можно определить лишь один однонуклеотидный полиморфизм (SNP), что делает эти методы дорогими, требующими значительных затрат времени и человеческого труда.Significant disadvantages of the above methods is that only one single nucleotide polymorphism (SNP) can be determined per reaction, which makes these methods expensive, requiring a significant investment of time and human labor.
Известны способы на основе чиповых технологий зарубежного производства, которые позволяют типировать большое количество одноноклеотидных полиморфизмов одновременно. Суть метода сводится к тому, что олигонуклеотиды синтезируются in situ на поверхности пластинки из стекла, кремния или полимера, в результате чего получается чип ДНК. При этом удается достичь плотности до 300000 олигонуклеотидов на см. кв., так что при использовании ДНК-чипов для типизации SNP в одном эксперименте могут быть типизированы 150000 полиморфизмов (при условии, что в наличии имеются олигонуклеотиды для обеих аллелей каждого SNP [Браун Т.А. Геномы. - М. - Ижевск: Институт компьютерных исследований. - 2011. - 944 с]. Однако данные технологии для определения этнической принадлежности очень дорогостоящи, требуют соответствующих технологических платформ для анализа чипов, расходные материалы очень дороги и, соответственно, дороги услуги, оказываемые на основе данных технологий.Known methods based on chip technologies of foreign production, which allow you to type a large number of single-nucleotide polymorphisms at the same time. The essence of the method is that oligonucleotides are synthesized in situ on the surface of a plate of glass, silicon or polymer, resulting in a DNA chip. In this case, it is possible to achieve a density of up to 300,000 oligonucleotides per cm2, so that when using DNA chips to typify SNPs, 150,000 polymorphisms can be typed in one experiment (provided that there are oligonucleotides for both alleles of each SNP [Brown T. A. Genomes. - M. - Izhevsk: Institute for Computer Research. - 2011. - 944 p.] However, these technologies for determining ethnicity are very expensive, require appropriate technology platforms for chip analysis, consumables are very expensive and, accordingly -retarded, road services provided by these technologies.
Известен способ по патенту США № US 20030225530 А1, опубл. 04.12.2003, предназначенный для судебной медицины и идентификации личности, позволяющий получить дополнительную информацию о этнических характеристиках личности по образцу ДНК, сущность которого заключается в использовании базы данных, содержащей информацию о наличии и/или идентичности одной или более вариаций в одном или нескольких локусах ДНК (HUMVWFA31, HUMTH01, HUMFIBRA, D8S1179, D21S11, D18S51, D3S1358, D2S1338, D16S539 или D19S433) для множества эталонных образцов с известной физической характеристикой, образующих группировки, имеющие общие признаки по частоте встречаемости конкретного локуса.The known method according to US patent No. US 20030225530 A1, publ. 12/04/2003, intended for forensic medicine and personality identification, which allows obtaining additional information about the ethnic characteristics of a person using a DNA sample, the essence of which is to use a database containing information about the presence and / or identity of one or more variations in one or more DNA loci (HUMVWFA31, HUMTH01, HUMFIBRA, D8S1179, D21S11, D18S51, D3S1358, D2S1338, D16S539 or D19S433) for a set of reference samples with a known physical characteristic, forming groups that share common characteristics in frequency a specific locus.
Недостатком способа является то, что его использование не позволяет определить этническую принадлежность человека по гаплогруппе Y-хромосомы.The disadvantage of this method is that its use does not allow to determine the ethnicity of a person by the haplogroup of the Y chromosome.
Известен способ определения детекции микроделеций Y-хромосомы [Luo Ziyi, Wu Yumei. Real-time fluorescence quantification PCR (Polymerase Chain Reaction) kit and method for detecting Y-chromosome micro-deletion. CN102876776 (A) 2013-01-16]. Изобретение реализуется с помощью флуоресцентной количественной полимеразной цепной реакции в реальном времени методом детекции микроделеций Y-хромосомы, в котором проведение ПЦР основано на том, что праймер-зонд подбирается для детекции определенного локуса: комбинация праймер-зонд для детекции локуса SY84, комбинация праймер-зонд для детекции локуса SY127, комбинация праймер-зонд для детекции локуса SY134, комбинация праймер-зонд для детекции локуса SY254, комбинация праймер-зонд для детекции локуса SY255. Микродилеции в локусах Y-хромосомы могут быть обнаружены посредством сочетания флуоресцентной количественной ПЦР в реальном времени и Taqman зондов с помощью флуоресцентной количественной ПЦР в реальном времени. Флуоресцентные сигналы каждого цикла ПЦР увеличиваются пропорционально накоплению продукта.A known method for determining the detection of microdeletions of the Y chromosome [Luo Ziyi, Wu Yumei. Real-time fluorescence quantification PCR (Polymerase Chain Reaction) kit and method for detecting Y-chromosome micro-deletion. CN102876776 (A) 2013-01-16]. The invention is realized using a fluorescence quantitative polymerase chain reaction in real time by the detection of Y-chromosome microdeletions, in which PCR is based on the fact that the primer probe is selected to detect a specific locus: primer probe combination for locus detection SY84, primer probe combination for locus detection SY127, primer probe combination for locus detection SY134, primer probe combination for locus detection SY254, primer probe combination for locus detection SY255. Microdilations at the Y chromosome loci can be detected by a combination of real-time fluorescence quantitative PCR and real-time Taqman probes using real-time fluorescence quantitative PCR. The fluorescent signals of each PCR cycle increase in proportion to the accumulation of the product.
Основным недостатком данного способа также является длительность определения полиморфизмов Y-хромосомы, так как для определения каждого SNP локуса необходимо последовательное проведение ПЦР реакции с каждым праймером.The main disadvantage of this method is the length of the determination of polymorphisms of the Y chromosome, since sequential PCR reaction with each primer is necessary to determine each SNP locus.
Этого недостатка лишен способ определения чистопородности животных - объектов сельскохозяйственного назначения, принятый за прототип, по патенту РФ №2477607, опубл. 20.03.2013, включающий выделение ДНК из биологического материала, проведение мультиплексной ПЦР реакции 13 локусов микросателлитов (TGLA126, ILSTS005, ЕТН185, TGLA122, INRA023, ILSTS006, TGLA227, ЕТН225, ЕТН10, ВМ1818, ВМ1824, SPS115), с использованием тест-системы для ДНК-экспертизы животных и анализ образующихся продуктов на ДНК-анализаторе.This disadvantage is deprived of a method for determining the pure breed of animals - agricultural objects, adopted as a prototype, according to the patent of the Russian Federation No. 2477607, publ. 03/20/2013, including the extraction of DNA from biological material, conducting a multiplex PCR reaction of 13 microsatellite loci (TGLA126, ILSTS005, ETN185, TGLA122, INRA023, ILSTS006, TGLA227, ETN225, ETN10, BM1818, BM-1111, SPS test, SPS ,24, SPS DNA examination of animals and analysis of the resulting products on a DNA analyzer.
Недостатком данного технического решения является то, что он предназначен для ДНК-экспертизы животных и не может быть использован для определения гаплогруппы Y-хромосомы и этнической принадлежности человека по образцу ДНК.The disadvantage of this technical solution is that it is intended for DNA examination of animals and cannot be used to determine the haplogroup of the Y chromosome and ethnicity of a person using a DNA sample.
В настоящее время из уровня техники не известен экспресс-способ на основе мультиплексного определения гаплогрупп Y-хромосомы и установления этнической принадлежности человека с помощью тест-системы, который мог быть использован в ДНК-генеалогических исследованиях, поэтому внедрение на рынок такого способа представляется очень актуальным.Currently, the express method is not known from the prior art based on the multiplex determination of haplogroups of the Y chromosome and the establishment of a person’s ethnicity using a test system that could be used in DNA genealogy studies, so the introduction of such a method on the market seems very relevant.
Известна тест-система «Набор для детекции микроделеций Y-хромосомы», которая включает в себя: 1) реагенты для ПЦР реакции; 2) праймеры для амплификации последовательности SY84 области AZFa Y-хромосомы; праймеры для амплификации последовательности SY86 области AZFa региона Y-хромосомы; праймеры для амплификации последовательность SY127 AZFb области Y-хромосомы; праймеры для амплификации последовательности SY134 AZFb области Y-хромосомы; праймеры для амплификации последовательности SY254 AZFc области Y-хромосомы; праймеры для амплификации последовательности SY255 AZFc области Y-хромосомы, и праймеры для амплификации гена SRY, описанная в источнике [Kun Song; Jiancheng Xu; Shuyi Wang; Cuilian Sun. Nanchang adicon clinical tersting inst со ltd. Kit for detecting microdeletion of Y chromosome CN102796819 (A) 2012-11-28.]. Данная тест-система, выбранная за прототип предлагаемой тест-системы, предусматривает последовательное проведение ПЦР реакции с каждым праймером. Недостатком является невозможность проведения мультиплексного анализа, что определяет длительность определения полиморфизмов Y-хромосомы человека.Known test system "Set for the detection of microdeletions of the Y-chromosome", which includes: 1) reagents for the PCR reaction; 2) primers for amplification of the SY84 sequence of the AZFa region of the Y chromosome; primers for amplification of the sequence of the SY86 region of the AZFa region of the Y-chromosome region; primers for amplification of the sequence of the SY127 AZFb region of the Y chromosome; primers for amplification of the sequence of the SY134 AZFb region of the Y chromosome; primers for amplification of the sequence of the SY254 AZFc region of the Y chromosome; primers for amplification of the sequence of SY255 AZFc region of the Y chromosome, and primers for amplification of the SRY gene described in the source [Kun Song; Jiancheng Xu; Shuyi Wang; Cuilian Sun. Nanchang adicon clinical tersting inst with ltd. Kit for detecting microdeletion of Y chromosome CN102796819 (A) 2012-11-28.]. This test system, selected for the prototype of the proposed test system, provides for a sequential PCR reaction with each primer. The disadvantage is the impossibility of conducting a multiplex analysis, which determines the duration of the determination of polymorphisms of the human Y-chromosome.
Известны праймерные последовательности для определения полимофизма Y-хромосомы человека, приведенные в публикациях [Cinnioglu С., King R., Kivisild Т. et al. Excavating Y-chromosome haplotype strata in Anatolia // Hum. Genet. - 2004. - V.114. - P.127-148; Underhill P. A., Passarino G., Lin A. A. et al. The phylogeography of Y chromosome binary haplotypes and the origins of modern human populations // Ann. Hum. Genet. - 2001. - V.65. P.43-62]. Однако данные праймерные последовательности (Табл.1) не отвечают требованиям для мультиплексного анализа SNP полиморфизмов Y-хромосомы, т.к. имеют различные физические характеристики.Known primer sequences for determining the polymophism of the human Y chromosome are given in the publications [Cinnioglu C., King R., Kivisild T. et al. Excavating Y-chromosome haplotype strata in Anatolia // Hum. Genet. - 2004. - V.114. - P.127-148; Underhill P. A., Passarino G., Lin A. A. et al. The phylogeography of Y chromosome binary haplotypes and the origins of modern human populations // Ann. Hum. Genet. - 2001. - V.65. P.43-62]. However, these primer sequences (Table 1) do not meet the requirements for multiplex analysis of SNP polymorphisms of the Y chromosome, because have different physical characteristics.
Задачей предлагаемой группы изобретений является создание способа, тест-системы и праймеров для определения гаплогрупп Y-хромосомы и этнической принадлежности человека, которые путем мультиплексного анализа позволят определить одновременно несколько однонуклеотидных полиморфизмов Y-хромосомы человека.The objective of the proposed group of inventions is the creation of a method, test system and primers for determining haplogroups of the Y chromosome and ethnicity of a person, which by multiplex analysis will allow to simultaneously determine several single nucleotide polymorphisms of the human Y chromosome.
Техническим результатом предложенной группы изобретений является то, что при генотипировании SNP полиморфизмов Y-хромосомы человека путем мультиплексного анализа за два этапа можно протипировать сразу около 20 SNP маркеров для одного образца ДНК, т.е. быстро, абсолютно точно и надежно определить гаплогруппу, субгаплогруппу и этническую принадлежность человека по образцу ДНК.The technical result of the proposed group of inventions is that when genotyping SNP polymorphisms of a human Y chromosome by multiplex analysis in two stages, about 20 SNP markers for one DNA sample can be directly typed, i.e. quickly, absolutely accurately and reliably determine the haplogroup, subhaplogroup and ethnicity of a person using a DNA sample.
Для достижения поставленной задачи предложен способ, включающий выделение ДНК из биологического материала, проведение мультиплексной ПЦР реакции с использованием тест-системы, анализ образующихся продуктов на ДНК-анализаторе, в который внесены следующие новые признаки: способ осуществляют в два этапа с использованием тест-системы, содержащей два набора: при этом на первом этапе производят генотипирование путем мультиплексной ПЦР реакции с использованием мультиплексов 20-ти специфичных олигонуклеотидных праймеров для генотипирования по основным гаплогруппам N, J, I, Q, С, Е, D, G, О Y-хромосомного древа из первого набора тест-системы, затем очищают ПЦР-амплификат на колонках и путем мультиплексного анализа осуществляют SNaPshot реакцию с использованием мультиплексов 10-ти специфичных олигонуклеотидных праймеров для генотипирования по основным гаплогруппам из второго набора тест-системы, затем на втором этапе по результатам анализа, если на первом этапе мутация выявлена, проводят генотипирование путем мультиплексной ПЦР реакции по субгаплогруппам с использованием мультиплексов 62-х специфичных олигонуклеотидных праймеров для генотипирования по субгаплогруппам из первого набора тест-системы и затем после очистки амплификата помощью колонок проводят SNaPshot реакцию путем мультиплексного анализа с использованием мультиплексов 28-ми специфичных олигонуклеотидных праймеров для генотипирования по субгаплогруппам из второго набора тест-системы, либо, если на первом этапе мутация не выявлена, проводят генотипирование по редким гаплогруппам: А, С3, F, Н, K, L, O3, Т с использованием мультиплексов 16-ти специфичных олигонуклеотидных праймеров для генотипирования по редким гаплогруппам из первого набора тест-системы, после очистки амплификата помощью колонок проводят SNaPshot реакцию путем мультиплексного анализа с использованием мультиплексов 8-ми специфичных олигонуклеотидных праймеров для генотипирования по редким гаплогруппам из второго набора тест-системы, очищают образующиеся продукты ферментом TSAP, после чего осуществляют анализ.To achieve this goal, a method is proposed that includes the extraction of DNA from biological material, conducting a multiplex PCR reaction using a test system, analysis of the resulting products on a DNA analyzer, which introduced the following new features: the method is carried out in two stages using a test system, containing two sets: at the first stage, genotyping is performed by multiplex PCR reaction using multiplexes of 20 specific oligonucleotide primers for genotyping for the main haplogroups N, J, I, Q, C, E, D, G, O of the Y chromosome tree from the first set of the test system, then the PCR amplification on the columns is purified and SNaPshot reaction is performed using multiplexes of 10- specific oligonucleotide primers for genotyping according to the main haplogroups from the second set of the test system, then at the second stage according to the analysis results, if the mutation is detected at the first stage, genotyping is carried out by multiplex PCR reaction by subhaplogroups using multiplexes of 62 specific oligonucleotide primers for genotyping by subgaplogroups from the first set of the test system and then, after purification of the amplification using columns, the SNaPshot reaction is carried out by multiplex analysis using multiplexes of 28 specific oligonucleotide primers for genotyping by subgaplogroups from the second set of test system, or, if no mutation is detected at the first stage, genotyping is performed for rare haplogroups: A, C3, F, H, K, L, O3, T using multiplexes of 16 specific oligonuclei of leotide primers for genotyping by rare haplogroups from the first set of the test system, after purification of the amplification using columns, the SNaPshot reaction is carried out by multiplex analysis using multiplexes of 8 specific oligonucleotide primers for genotyping by rare haplogroups from the second set of test system, and the products are purified by enzyme TSAP, after which they are analyzed.
В результате, как при наличии мутации, так и без нее за два этапа будет генотипировано сразу около 20 SNP маркеров для одного образца ДНК и со 100% точностью будет определена субгаплогруппа, что значительно удешевляет и ускоряет само исследование. Нет необходимости последовательно генотипировать образец ДНК на все известные SNP маркеры Y-хромосомы, которых около 300, чтобы установить субгаплогруппу и этническую принадлежность человека.As a result, both in the presence of a mutation and without it, in two stages about 20 SNP markers for one DNA sample will be genotyped immediately and a subhaplogroup will be determined with 100% accuracy, which significantly reduces the cost and speeds up the study itself. There is no need to sequentially genotype a DNA sample for all known SNP markers of the Y chromosome, of which there are about 300, in order to establish the subhaplogroup and ethnicity of a person.
На фиг. 1 представлена схема генотипирования SNP Y-хромосомы соответственно предложенному способу.In FIG. 1 presents a scheme for genotyping SNPs of the Y chromosome according to the proposed method.
На фиг. 2 представлена схема определения субгаплогрупп Y-хромосомы с указанием соответствующих маркеров соответственно предложенному способу.In FIG. 2 presents a scheme for determining sub-haplogroups of the Y chromosome, indicating the corresponding markers according to the proposed method.
Для осуществления заявленного способа предложена тест-система, содержащая набор, в который входят смесь для ПЦР реакции и наборы праймеров для амплификации последовательности ДНК, в которую внесены следующие новые признаки: в состав тест-системы дополнительно входит второй набор для проведения SNaPshot реакции, при этом первый набор включает:To implement the claimed method, a test system is proposed that contains a kit that contains a mixture for the PCR reaction and primer sets for amplification of the DNA sequence, which contains the following new features: the test system additionally includes a second kit for the SNaPshot reaction, The first set includes:
1. Смесь для ПЦР реакции - 1,5 мл.1. The mixture for the PCR reaction is 1.5 ml.
2. Мультиплексные наборы специфичных олигонуклеотидных праймеров каждый по 1,5 мл.2. Multiplex sets of specific oligonucleotide primers of 1.5 ml each.
2.1. Мультиплексы 20 специфичных олигонуклеотидных праймеров для генотипирования по основным гаплогруппам R, N, J, I, Q, С, Е, D, G, О Y-хромосомного древа, SNP маркеры: М207, М231, М304, M170, М242, М216, М96, M174, M201, P186, последовательности которых и соответствующие им SNP маркеры представлены в Таблице 2;2.1. Multiplexes of 20 specific oligonucleotide primers for genotyping according to the main haplogroups R, N, J, I, Q, C, E, D, G, O of the Y chromosome tree, SNP markers: M207, M231, M304, M170, M242, M216, M96 , M174, M201, P186, the sequences of which and their corresponding SNP markers are presented in Table 2;
2.2. Мультиплексы 62 специфичных олигонуклеотидных праймеров для генотипирования по субгаплогруппам, последовательности которых и соответствующие им SNP маркеры представлены в Таблице 3;2.2. Multiplexes of 62 specific oligonucleotide primers for genotyping by subhaplogroups, the sequences of which and their corresponding SNP markers are presented in Table 3;
2.3. Мультиплексы 10 специфичных олигонуклеотидных праймеров для генотипирования редких гаплогрупп - А, С3, F, Н, K, L, O3, Т, последовательности которых и соответствующие им SNP маркеры представлены в Таблице 4.2.3. Multiplexes of 10 specific oligonucleotide primers for the genotyping of rare haplogroups - A, C3, F, H, K, L, O3, T, the sequences of which and their corresponding SNP markers are presented in Table 4.
Второй набор для проведения SNaPshot реакции содержит мультиплексные наборы специфичных олигонуклеотидных праймеров каждый по 1,5 мл:The second kit for conducting SNaPshot reactions contains multiplex sets of specific oligonucleotide primers of 1.5 ml each:
1. Мультиплексы 10 специфичных олигонуклеотидных праймеров для генотипирования по основньм гаплогруппам Y-хромосомы, последовательности которых и соответствующие им SNP маркеры представлены в Таблице 5;1. Multiplexes of 10 specific oligonucleotide primers for genotyping of the main haplogroups of the Y chromosome, the sequences of which and their corresponding SNP markers are presented in Table 5;
2. Мультиплексы 28 специфичных олигонуклеотидных праймеров для генотипирования по субгаплогруппам, последовательности которых и соответствующие им SNP маркеры представлены в Таблице 6;2. Multiplexes of 28 specific oligonucleotide primers for genotyping by subhaplogroups, the sequences of which and their corresponding SNP markers are presented in Table 6;
3. Мультиплексы 8 специфичных олигонуклеотидных праймеров для генотипирования редких гаплогрупп, последовательности которых и соответствующие им SNP маркеры представлены в Таблице 7.3. Multiplexes of 8 specific oligonucleotide primers for genotyping of rare haplogroups, the sequences of which and their corresponding SNP markers are presented in Table 7.
Для осуществления способа определения гаплогрупп Y-хромосомы и этнической принадлежности человека разработаны специфичные олигонуклеотидные праймеры, используемые в качестве мультиплексных наборов тест-системы для амплификации участков нерекомбинирующей части Y-хромосомы.To implement the method for determining haplogroups of the Y chromosome and ethnicity of a person, specific oligonucleotide primers have been developed that are used as multiplex sets of a test system for amplification of areas of the non-recombining part of the Y chromosome.
Дизайн специфичных олигонуклеотидных праймеров (таблицы 2, 3 и 4) для первого набора осуществлялся на основе следующих принципов: область отжига олигонуклеотидных праймеров должна быть вне зон мутаций в пределах видовой специфичности в диапазоне 55-64°С; GC-состав в диапазоне 40-60%; в последовательности праймера должны отсутствовать стабильные вторичные структуры - шпильки и димеры.The design of specific oligonucleotide primers (tables 2, 3 and 4) for the first set was carried out on the basis of the following principles: the annealing region of the oligonucleotide primers should be outside the mutation zones within species specificity in the range of 55-64 ° C; GC composition in the range of 40-60%; in the sequence of the primer there should be no stable secondary structures - hairpins and dimers.
Дизайн специфичных олигонуклеотидных праймеров (таблицы 5, 6 и 7) для второго набора осуществлялся на основе следующих принципов: область отжига олигонуклеотидных праймеров должна непосредственно примыкать к зоне мутации в пределах видовой специфичности в диапазоне 50°С±2°С; в последовательности праймера должны отсутствовать стабильные вторичные структуры - шпильки и димеры; к 5′ концам каждого праймера необходимо присоединить GACT-хвосты в соответствии с заданной длиной олигонуклеотидного праймера.The design of specific oligonucleotide primers (tables 5, 6 and 7) for the second set was carried out on the basis of the following principles: the annealing region of oligonucleotide primers should be directly adjacent to the mutation zone within species specificity in the range of 50 ° C ± 2 ° C; in the sequence of the primer there should be no stable secondary structures - hairpins and dimers; to the 5 ′ ends of each primer, GACT tails must be attached in accordance with the given length of the oligonucleotide primer.
Чтобы исключить амплификацию нецелевых локусов, уникальность каждого праймера была подтверждена поиском по базе данных секвенированных геномов http://www.ensembl.org.To exclude amplification of non-target loci, the uniqueness of each primer was confirmed by a search on the database of sequenced genomes http://www.ensembl.org.
Заявленный способ на основе предложенной тест-системы, содержащей разработанные специфичные олигонуклеотидные праймеры, осуществляют следующим образом.The claimed method based on the proposed test system containing the developed specific oligonucleotide primers is as follows.
ДНК выделяют из любого биологического материала (буккальный эпителий, волосы, ногти или кровь), любым способом, подходящим для выделения ДНК из конкретного вида биоматериала.DNA is isolated from any biological material (buccal epithelium, hair, nails or blood) by any method suitable for isolating DNA from a particular type of biomaterial.
Сначала на первом этапе выделенную ДНК подвергают мультиплексной полимеразной цепной реакции синтеза SNP локусов Y-хромосомы для геногенотипирования по основным гаплогруппам - R, N, J, I, Q, С, Е, D, G, О Y-хромосомного древа с использованием мультиплексов 20 специфичных олигонуклеотидных праймерных смесей из первого набора тест-системы (табл.2). Амплификат, наработанный при ПЦР, подвергают очистке с помощью колонок. Далее проводят SNaPshot реакцию с использованием мультиплексов 10 специфичных олигонуклеотидных праймеров (табл.5) из второго набора тест-системы, очищают продукты SNaPshot реакции ферментом TSAP, осуществляют анализ на ДНК анализаторе методом капиллярного гель-электрофореза. На втором этапе, в случае если на первом этапе выявлена мутация, проводят генотипирование по субгаплогруппам с использованием мультиплексов 62 специфичных олигонуклеотидных праймеров (табл.3) для генотипирования по субгаплогруппам из первого набора тест-системы, после очистки амплификата помощью колонок проводят SNaPshot реакцию путем мультиплексного анализа с использованием мультиплексов специфичных олигонуклеотидных праймеров (табл.6) для типирования по субгаплогруппам из второго набора тест-системы, а если на первом этапе мутация не выявлена, проводят генотипирование по редким гаплогруппам: А, С3, F, Н, K, L, O3, Т с использованием мультиплексов специфичных олигонуклеотидных праймеров (табл.4) для типирования по редким гаплогруппам из первого набора тест-системы, после очистки амплификата помощью колонок проводят SNaPshot реакцию с использованием мультиплексов специфичных олигонуклеотидных праймеров (табл.7) для типирования по редким гаплогруппам из второго набора тест-системы, очищают образующиеся на втором этапе продукты ферментом TSAP, после чего осуществляют анализ на ДНК анализаторе методом капиллярного гель-электрофореза.At the first stage, the extracted DNA is subjected to a multiplex polymerase chain reaction for the synthesis of SNP loci of the Y chromosome for genogenotyping in the main haplogroups - R, N, J, I, Q, C, E, D, G, O of the Y chromosome tree using multiplexes 20 specific oligonucleotide primer mixtures from the first set of test systems (table 2). The amplification obtained by PCR is subjected to purification using columns. Next, the SNaPshot reaction is carried out using multiplexes of 10 specific oligonucleotide primers (Table 5) from the second set of the test system, the products of the SNaPshot reaction are purified by the TSAP enzyme, and the DNA analyzer is analyzed by capillary gel electrophoresis. At the second stage, if a mutation is detected at the first stage, genotyping by subhaplogroups is performed using multiplexes of 62 specific oligonucleotide primers (Table 3) for genotyping by subhaplogroups from the first set of the test system; after purification of the amplification using columns, the SNaPshot reaction is performed by multiplex analysis using multiplexes of specific oligonucleotide primers (Table 6) for typing by subhaplogroups from the second set of the test system, and if at the first stage the mutation is not It has been shown that genotyping is performed for rare haplogroups: A, C3, F, H, K, L, O3, T using multiplexes of specific oligonucleotide primers (Table 4) for typing on rare haplogroups from the first set of the test system, after purification of the amplification using columns carry out SNaPshot reactions using multiplexes of specific oligonucleotide primers (Table 7) for typing on rare haplogroups from the second set of test systems, the products formed in the second stage are purified with TSAP enzyme, and then DNA analysis is performed on an analyzer by capillary gel electrophoresis.
Полимеразную цепную реакцию (ПЦР) синтеза SNP локусов Y-хромосомы выполняют в реакционной смеси объемом 25 мкл, 67 мМ трис-HCl (рН=8,8), 2,5 мМ MgCl2, 1 нг геномной ДНК, по 10 пМ каждого праймера, по 200 мкМ dATP, dGTP, dCTP, dTTP и 1 единицу активной Taq-полимеразы. Режим проведения ПЦР следующий: 1) денатурация 94°С - 3 мин. 30 сек.; 40 циклов: 2) денатурация 94°С - 30 сек.; отжиг праймеров: 55°С-64°С - 30 сек.; элонгация 72°С - 1 мин.; 3) финальная элонгация 72°С -10 мин.The polymerase chain reaction (PCR) of the synthesis of SNP loci of the Y chromosome is performed in a reaction mixture of 25 μl, 67 mM Tris-HCl (pH = 8.8), 2.5 mM MgCl2, 1 ng of genomic DNA, 10 pM of each primer, 200 μM dATP, dGTP, dCTP, dTTP and 1 unit of active Taq polymerase. The PCR regimen is as follows: 1) denaturation 94 ° C - 3 min. 30 sec .; 40 cycles: 2) denaturation 94 ° С - 30 sec .; primer annealing: 55 ° С-64 ° С - 30 sec .; elongation 72 ° C - 1 min .; 3) final elongation 72 ° C -10 min.
SNaPshot реакцию осуществляют по протоколу фирмы производителя: реакционная смесь - 5 мкл.; специфичные праймеры - 1 мкл.; деонизованная вода - 1 мкл; амплификат - 3 мкл. по следующему режиму: 25 циклов 1) денатурация 96°С - 10 сек.; 2) отжиг праймеров: 50°С - 5 сек.; 3) элонгация 60°С - 30 сек.SNaPshot reaction is carried out according to the protocol of the manufacturer: reaction mixture - 5 μl .; specific primers - 1 μl .; deionized water - 1 μl; the amplification is 3 μl. according to the following regime: 25 cycles 1) denaturation 96 ° С - 10 sec .; 2) annealing of primers: 50 ° С - 5 sec .; 3) elongation 60 ° C - 30 sec.
Для очистки продукта SNaPshot реакции ферментом TSAP: добавляют 1 мкл. фермента TSAP; схема проведения очистки: 37°С - 60 мин.; 75°С - 15 мин. Затем осуществляют детекцию на ДНК анализаторе методом капиллярного гель-электрофореза.To purify the SNaPshot reaction product with TSAP: 1 μl is added. TSAP enzyme; purification scheme: 37 ° С - 60 min .; 75 ° C - 15 min. Then, detection is carried out on a DNA analyzer by capillary gel electrophoresis.
Примеры осуществления группы заявленных изобретений.Examples of the implementation of the group of claimed inventions.
1). У гражданина М. взят образец биологического материала - буккальный эпителий. Произведено выделение ДНК стандартным методом. Далее проведена ПЦР реакция по следующему протоколу: деонизованная вода - 12,8; буфер - 2,5; MgCl2 - 2,5 мкл; мультиплексы специфичных олигонуклеотидных праймеров для генотипирования по основным гаплогруппам (табл.2) из первого набора тест-системы - 5,5 мкл.; dNTP - 0,2 мкл.; Taq-полимераза - 0,5 мкл.; ДНК - 1 мкл. Режим ПЦР: 1) денатурация 94°С - 3 мин. 30 сек.; 40 циклов: 2) денатурация 94°С - 30 сек.; отжиг праймеров: 64°С - 30 сек.; элонгация 72°С - 1 мин.; 3) финальная элонгация 72°С - 10 мин. Амплификат очищен на колонках согласно инструкции фирмы производителя. Далее проведена SNaPshot реакция по протоколу фирмы производителя: реакционная смесь - 5 мкл; мультиплексы специфичных олигонуклеотидных праймеров (табл.5) для генотипирования по основным гаплогруппам из второго набора тест-системы - 1 мкл.; деонизованная вода - 1 мкл; амплификат - 3 мкл. по следующему режиму: 25 циклов 1) денатурация 96°С - 10 сек.; 2) отжиг праймеров: 50°С - 5 сек.; 3) элонгация 60°С - 30 сек. Проведена очистка SNaPshot продукта ферментом TSAP путем добавления 1 мкл. фермента TSAP; схема проведения очистки: 37°С - 60 мин.; 75°С - 15 мин. Проведен анализ на ДНК анализаторе методом капиллярного гель-электрофореза по следующему протоколу фирмы производителя: Hi-Di формамид - 9 мкл.; LIZ120 - 0,5 мкл.; продукт - 0,5 мкл. Результат оценивался по следующим признакам: аллель А - зеленый сигнал; аллель Т - красный сигнал; аллель G - синий сигнал; аллель С - черный сигнал. Каждому локусу должен соответствовать один из нижеприведенных вариантов:one). Citizen M. took a sample of biological material - buccal epithelium. DNA was isolated by the standard method. Next, a PCR reaction was carried out according to the following protocol: deionized water - 12.8; buffer - 2.5; MgCl 2 - 2.5 μl; multiplexes of specific oligonucleotide primers for genotyping according to the main haplogroups (Table 2) from the first set of the test system — 5.5 μl .; dNTP - 0.2 μl .; Taq polymerase - 0.5 μl .; DNA - 1 μl. PCR mode: 1) denaturation 94 ° C - 3 min. 30 sec .; 40 cycles: 2) denaturation 94 ° С - 30 sec .; primer annealing: 64 ° С - 30 sec .; elongation 72 ° C - 1 min .; 3) final elongation 72 ° C - 10 min. The amplification was purified on columns according to the manufacturer's instructions. Next, the SNaPshot reaction was carried out according to the manufacturer's protocol: reaction mixture - 5 μl; multiplexes of specific oligonucleotide primers (Table 5) for genotyping according to the main haplogroups from the second set of the test system - 1 μl; deionized water - 1 μl; the amplification is 3 μl. according to the following regime: 25 cycles 1) denaturation 96 ° С - 10 sec .; 2) annealing of primers: 50 ° С - 5 sec .; 3) elongation 60 ° C - 30 sec. Purification of the SNaPshot product with TSAP enzyme by adding 1 μl. TSAP enzyme; purification scheme: 37 ° С - 60 min .; 75 ° C - 15 min. The analysis was performed on a DNA analyzer by capillary gel electrophoresis according to the following protocol of the manufacturer: Hi-Di formamide - 9 μl .; LIZ120 - 0.5 μl .; the product is 0.5 μl. The result was evaluated according to the following criteria: allele A - green signal; allele T - red signal; G allele - blue signal; allele C is a black signal. Each locus must correspond to one of the following options:
М96 - С→А (38-41 bp) гаплогруппа ЕM96 - C → A (38-41 bp) haplogroup E
М231 - G→A (42-45 bp) гаплогруппа NM231 - G → A (42-45 bp) haplogroup N
M216 - G→A (48-51 bp) гаплогруппа СM216 - G → A (48-51 bp) haplogroup C
M170 - A→G (54-57 bp) гаплогруппа IM170 - A → G (54-57 bp) haplogroup I
M174 - T→C (60-63 bp) гаплогруппа DM174 - T → C (60-63 bp) haplogroup D
M201 - C→A (66-69 bp) гаплогруппа GM201 - C → A (66-69 bp) haplogroup G
M207 - A→G (72-75 bp) гаплогруппа RM207 - A → G (72-75 bp) haplogroup R
M304 - A→ (78-81 bp) гаплогруппа JM304 - A → (78-81 bp) haplogroup J
P186 - C→A (90-93 bp) гаплогруппа ОP186 - C → A (90-93 bp) haplogroup O
M242 - G→A (96-99 bp) гаплогруппа QM242 - G → A (96-99 bp) haplogroup Q
Получен следующий результат:The following result is obtained:
М96 - С (38-41 bp)M96 - C (38-41 bp)
M231 - G (42-45 bp)M231 - G (42-45 bp)
M216 - G (48-51 bp)M216 - G (48-51 bp)
M170 - A (54-57 bp)M170 - A (54-57 bp)
M174 - Т (60-63 bp)M174 - T (60-63 bp)
M201 - С (66-69 bp)M201 - C (66-69 bp)
M207 - G (72-75 bp)M207 - G (72-75 bp)
M304 - A (78-81 bp)M304 - A (78-81 bp)
P186 - С (90-93 bp)P186 - C (90-93 bp)
M242 - G (96-99 bp)M242 - G (96-99 bp)
Результат анализа по основным гаплогруппам показал выявление европейской гаплогруппы R, поэтому на втором этапе определения субгаплогруппы использовали специфичные праймеры (табл.3) для генотипирования по субгаплогруппам из первого набора тест-системы.The analysis result for the main haplogroups showed the identification of the European haplogroup R, therefore, at the second stage of determining the subhaplogroup, specific primers were used (Table 3) for genotyping by subhaplogroups from the first set of the test system.
ПЦР реакция на втором этапе проведена по следующему протоколу: деонизованная вода - 12,8; буфер - 2,5; MgCl2 - 2,5 мкл; мультиплексы специфичных олигонуклеотидных праймеров (табл.3) для генотипирования по субгаплогруппам - 5,5 мкл; dNTP - 0,2 мкл; Taq-полимераза - 0.5 мкл; ДНК - 1 мкл. Режим ПЦР: 1) денатурация 94°С - 3 мин. 30 сек.; 40 циклов: 2) денатурация 94°С - 30 сек.; отжиг праймеров: 64°С - 30 сек.; элонгация 72°С - 1 мин.; 3) финальная элонгация 72°С - 10 мин. Амплификат очищен на колонках согласно инструкции фирмы производителя. Далее проведена SNaPshot реакция по протоколу фирмы производителя: реакционная смесь - 5 мкл; мультиплексы специфичных олигонуклеотидных праймеров (табл.6) для генотипирования по субгаплогруппам из второго набора тест-системы - 1 мкл; деонизованная вода - 1 мкл; амплификат - 3 мкл, по следующему режиму: 25 циклов 1) денатурация 96°С - 10 сек.; 2) отжиг праймеров: 50°С - 5 сек.; 3) элонгация 60°С - 30 сек. Проведена очистка SNaPshot продукта ферментом TSAP путем добавления 1 мкл. фермента TSAP по схеме проведения очистки: 37°С - 60 мин.; 75°С - 15 мин. Проведен анализ на ДНК анализаторе методом капиллярного гель-электрофореза по следующему протоколу фирмы производителя: Hi-Di формамид - 9 мкл.; LIZ120 - 0,5 мкл.; продукт - 0,5 мкл. Результат оценивался по следующим признакам: аллель А - зеленый сигнал; аллель Т - красный сигнал; аллель G - синий сигнал; аллель С - черный сигнал. Каждому локусу должен соответствовать один из нижеприведенных вариантов:The PCR reaction in the second stage was carried out according to the following protocol: deionized water - 12.8; buffer - 2.5; MgCl 2 - 2.5 μl; multiplexes of specific oligonucleotide primers (Table 3) for genotyping by subhaplogroups - 5.5 μl; dNTP - 0.2 μl; Taq polymerase - 0.5 μl; DNA - 1 μl. PCR mode: 1) denaturation 94 ° C - 3 min. 30 sec .; 40 cycles: 2) denaturation 94 ° С - 30 sec .; primer annealing: 64 ° С - 30 sec .; elongation 72 ° C - 1 min .; 3) final elongation 72 ° C - 10 min. The amplification was purified on columns according to the manufacturer's instructions. Next, the SNaPshot reaction was carried out according to the manufacturer's protocol: reaction mixture - 5 μl; multiplexes of specific oligonucleotide primers (Table 6) for genotyping by subhaplogroups from the second set of the test system - 1 μl; deionized water - 1 μl; amplification - 3 μl, according to the following regime: 25 cycles 1) denaturation 96 ° С - 10 sec .; 2) annealing of primers: 50 ° С - 5 sec .; 3) elongation 60 ° C - 30 sec. Purification of the SNaPshot product with TSAP enzyme by adding 1 μl. TSAP enzyme according to the scheme of purification: 37 ° С - 60 min .; 75 ° C - 15 min. The analysis was performed on a DNA analyzer by capillary gel electrophoresis according to the following protocol of the manufacturer: Hi-Di formamide - 9 μl .; LIZ120 - 0.5 μl .; the product is 0.5 μl. The result was evaluated according to the following criteria: allele A - green signal; allele T - red signal; G allele - blue signal; allele C is a black signal. Each locus must correspond to one of the following options:
М173 - Т→С (80-83 bp) гаплогруппа R1M173 - T → C (80-83 bp) haplogroup R1
М343 - А→С (56-59 bp) гаплогруппа R1bM343 - A → C (56-59 bp) haplogroup R1b
M17 - del G (44-47 bp) - при выявлении del G будет выявляться аллель Т соответствующий гаплогруппе R1a1, отсутствие del G соответствует отсутствию мутацииM17 - del G (44-47 bp) - when del G is detected, the T allele corresponding to haplogroup R1a1 will be detected, the absence of del G corresponds to the absence of a mutation
М417 - G→A (68-71 bp) гаплогруппа R1a1a1M417 - G → A (68-71 bp) haplogroup R1a1a1
М73 - del AC (38-41 bp) гаплогруппа R1b1b1M73 - del AC (38-41 bp) haplogroup R1b1b1
M269 - T→C (50-53 bp) гаплогруппа R1b1b2M269 - T → C (50-53 bp) haplogroup R1b1b2
M124 - G→A (62-65 bp) гаплогруппа R2M124 - G → A (62-65 bp) haplogroup R2
Получен следующий результат:The following result is obtained:
М173 - С (80-83 bp) гаплогруппа R1M173 - C (80-83 bp) haplogroup R1
М343 - А (56-59 bp) гаплогруппа R1bM343 - A (56-59 bp) haplogroup R1b
M17 - del G (44-47 bp) - выявлен аллель ТM17 - del G (44-47 bp) - T allele detected
М417 - G (68-71 bp) гаплогруппа R1a1a1M417 - G (68-71 bp) haplogroup R1a1a1
М73 - nondel AC (38-41 bp) гаплогруппа R1b1b1M73 - nondel AC (38-41 bp) haplogroup R1b1b1
M269 - Т (50-53 bp) гаплогруппа R1b1b2M269 - T (50-53 bp) haplogroup R1b1b2
M124 - G (62-65 bp) гаплогруппа R2M124 - G (62-65 bp) haplogroup R2
Результат анализа по субгаплогруппам выявил субгаплогруппу R1a1.The result of the analysis by subhaplogroups revealed a subhaplogroup R1a1.
Следовательно, этническая принадлежность гражданина М. - европейская, а конкретнее - восточно-европейская.Consequently, the ethnicity of citizen M. is European, and more specifically, Eastern European.
2). У гражданина N. взят образец биологического материала - буккальный эпителий. Произведено выделение ДНК стандартным методом. На первом этапе проведена ПЦР реакция по следующему протоколу: деонизованная вода - 12,8; буфер - 2,5; MgCl2 - 2,5 мкл; мультиплексы специфичных олигонуклеотидных праймеров (табл.2) для генотипирования по основным гаплогруппам из первого набора тест-системы - 5,5 мкл.; dNTP - 0,2 мкл.; Taq-полимераза - 0,5 мкл.; ДНК - 1 мкл. Режим ПЦР: 1) денатурация 94°С - 3 мин. 30 сек.; 40 циклов: 2) денатурация 94°С - 30 сек.; отжиг праймеров: 64°С - 30 сек.; элонгация 72°С - 1 мин.; 3) финальная элонгация 72°С - 10 мин. Амплификат очищен на колонках согласно инструкции фирмы производителя. Далее проведена SNaPshot реакция по протоколу фирмы производителя: реакционная смесь - 5 мкл; мультиплексы специфичных олигонуклеотидных праймеров (табл.5) для генотипирования по основным гаплогруппам из второго набора тест-системы - 1 мкл.; деонизованная вода - 1 мкл; амплификат - 3 мкл. по следующему режиму: 25 циклов 1) денатурация 96°С - 10 сек.; 2) отжиг праймеров: 50°С - 5 сек.; 3) элонгация 60°С - 30 сек. Проведена очистка SNaPshot продукта ферментом TSAP путем добавления 1 мкл. фермента TSAP.; схема проведения очистки: 37°С - 60 мин.; 75°С - 15 мин. Проведен анализ на ДНК анализаторе методом капиллярного гель-электрофореза по следующему протоколу фирмы производителя: Hi-Di формамид - 9 мкл; LIZ120 - 0,5 мкл.; продукт - 0,5 мкл. Результат оценивался по следующим признакам: аллель А - зеленый сигнал; аллель Т - красный сигнал; аллель G - синий сигнал; аллель С - черный сигнал. Каждому локусу должен соответствовать один из нижеприведенных вариантов:2). Citizen N. took a sample of biological material - buccal epithelium. DNA was isolated by the standard method. At the first stage, a PCR reaction was carried out according to the following protocol: deionized water - 12.8; buffer - 2.5; MgCl2 - 2.5 μl; multiplexes of specific oligonucleotide primers (Table 2) for genotyping according to the main haplogroups from the first set of the test system — 5.5 μl .; dNTP - 0.2 μl .; Taq polymerase - 0.5 μl .; DNA - 1 μl. PCR mode: 1) denaturation 94 ° C - 3 min. 30 sec .; 40 cycles: 2) denaturation 94 ° С - 30 sec .; primer annealing: 64 ° С - 30 sec .; elongation 72 ° C - 1 min .; 3) final elongation 72 ° C - 10 min. The amplification was purified on columns according to the manufacturer's instructions. Next, the SNaPshot reaction was carried out according to the manufacturer's protocol: reaction mixture - 5 μl; multiplexes of specific oligonucleotide primers (Table 5) for genotyping according to the main haplogroups from the second set of the test system - 1 μl; deionized water - 1 μl; the amplification is 3 μl. according to the following regime: 25 cycles 1) denaturation 96 ° С - 10 sec .; 2) annealing of primers: 50 ° С - 5 sec .; 3) elongation 60 ° C - 30 sec. Purification of the SNaPshot product with TSAP enzyme by adding 1 μl. TSAP enzyme .; purification scheme: 37 ° С - 60 min .; 75 ° C - 15 min. The analysis was performed on a DNA analyzer by capillary gel electrophoresis according to the following protocol of the manufacturer: Hi-Di formamide - 9 μl; LIZ120 - 0.5 μl .; the product is 0.5 μl. The result was evaluated according to the following criteria: allele A - green signal; allele T - red signal; G allele - blue signal; allele C is a black signal. Each locus must correspond to one of the following options:
М96 - С→А (38-41 bp) гаплогруппа ЕM96 - C → A (38-41 bp) haplogroup E
М231 - G→A (42-45 bp) гаплогруппа NM231 - G → A (42-45 bp) haplogroup N
M216 - G→A (48-51 bp) гаплогруппа СM216 - G → A (48-51 bp) haplogroup C
M170 - А→G (54-57 bp) гаплогруппа IM170 - A → G (54-57 bp) haplogroup I
M174 - T→C (60-63 bp) гаплогруппа DM174 - T → C (60-63 bp) haplogroup D
M201 - C→A (66-69 bp) гаплогруппа GM201 - C → A (66-69 bp) haplogroup G
M207 - А→G (72-75 bp) гаплогруппа RM207 - A → G (72-75 bp) haplogroup R
M304 - A→C (78-81 bp) гаплогруппа JM304 - A → C (78-81 bp) haplogroup J
P186 - C→A (90-93 bp) гаплогруппа ОP186 - C → A (90-93 bp) haplogroup O
M242 - G→A (96-99 bp) гаплогруппа QM242 - G → A (96-99 bp) haplogroup Q
Получен следующий результат:The following result is obtained:
М96 - С (38-41 bp)M96 - C (38-41 bp)
М231 - G (42-45 bp)M231 - G (42-45 bp)
M216 - G (48-51 bp)M216 - G (48-51 bp)
M170 - A (54-57 bp)M170 - A (54-57 bp)
M174 - Т (60-63 bp)M174 - T (60-63 bp)
M201 - С (66-69 bp)M201 - C (66-69 bp)
M207 - A (72-75 bp)M207 - A (72-75 bp)
M304 - A (78-81 bp)M304 - A (78-81 bp)
P186 - С (90-93 bp)P186 - C (90-93 bp)
M242 - G (96-99 bp)M242 - G (96-99 bp)
Результат анализа по основным гаплогруппам показал отсутствие мутаций, ни одна гаплогруппа не определилась, поэтому на втором этапе использованы мультиплексы специфичных олигонуклеотидных праймеров (табл.4) для генотипирования по редким гаплогруппам из первого набора тест-системы.The analysis result for the main haplogroups showed the absence of mutations, not a single haplogroup was identified, therefore, at the second stage, multiplexes of specific oligonucleotide primers were used (Table 4) for genotyping by rare haplogroups from the first set of the test system.
На втором этапе для определения редких гаплогрупп проведена ПЦР реакция для определения редких гаплогрупп по следующему протоколу: деонизованная вода - 12,8; буфер - 2,5; MgCl2 - 2,5 мкл; мультиплексы специфичных олигонуклеотидных праймеров (табл.4) для генотипирования по редким гаплогруппам - 5,5 мкл.; dNTP - 0,2 мкл; Taq-полимераза - 0,5 мкл; ДНК - 1 мкл. Режим ПЦР: 1) денатурация 94°С - 3 мин. 30 сек.; 40 циклов: 2) денатурация 94°С - 30 сек.; отжиг праймеров: 64°С - 30 сек.; элонгация 72°С - 1 мин.; 3) финальная элонгация 72°С - 10 мин. Амплификат очищен на колонках согласно инструкции фирмы производителя. Далее проведена SNaPshot реакция по протоколу фирмы производителя: реакционная смесь - 5 мкл; мультиплексы специфичных олигонуклеотидных праймеров (табл.7) для генотипирования по редким гаплогруппам - 1 мкл; деонизованная вода - 1 мкл; амплификат - 3 мкл по следующему режиму: 25 циклов 1) денатурация 96°С - 10 сек.; 2) отжиг праймеров: 50°С - 5 сек.; 3) элонгация 60°С - 30 сек. Проведена очистка SNaPshot продукта ферментом TSAP путем добавления 1 мкл фермента TSAP; схема проведения очистки: 37°С - 60 мин.; 75°С - 15 мин. Проведен анализ на ДНК анализаторе методом капиллярного гель-электрофореза по следующему протоколу фирмы производителя: Hi-Di формамид - 9 мкл.; LIZ120 - 0,5 мкл; продукт - 0,5 мкл Результат оценивался по следующим признакам: аллель А - зеленый сигнал; аллель Т - красный сигнал; аллель G - синий сигнал; аллель С - черный сигнал. Каждому локусу должен соответствовать один из нижеприведенных вариантов:At the second stage, to determine rare haplogroups, a PCR reaction was performed to determine rare haplogroups according to the following protocol: deionized water - 12.8; buffer - 2.5; MgCl2 - 2.5 μl; multiplexes of specific oligonucleotide primers (Table 4) for genotyping by rare haplogroups - 5.5 μl .; dNTP - 0.2 μl; Taq polymerase - 0.5 μl; DNA - 1 μl. PCR mode: 1) denaturation 94 ° C - 3 min. 30 sec .; 40 cycles: 2) denaturation 94 ° С - 30 sec .; primer annealing: 64 ° С - 30 sec .; elongation 72 ° C - 1 min .; 3) final elongation 72 ° C - 10 min. The amplification was purified on columns according to the manufacturer's instructions. Next, the SNaPshot reaction was carried out according to the manufacturer's protocol: reaction mixture - 5 μl; multiplexes of specific oligonucleotide primers (Table 7) for genotyping by rare haplogroups - 1 μl; deionized water - 1 μl; amplification - 3 μl according to the following regime: 25 cycles 1) denaturation 96 ° С - 10 sec .; 2) annealing of primers: 50 ° С - 5 sec .; 3) elongation 60 ° C - 30 sec. Purified SNaPshot of the product with TSAP enzyme by adding 1 μl of TSAP enzyme; purification scheme: 37 ° С - 60 min .; 75 ° C - 15 min. The analysis was performed on a DNA analyzer by capillary gel electrophoresis according to the following protocol of the manufacturer: Hi-Di formamide - 9 μl .; LIZ120 - 0.5 μl; product - 0.5 μl. The result was evaluated according to the following criteria: allele A - green signal; allele T - red signal; G allele - blue signal; allele C is a black signal. Each locus must correspond to one of the following options:
М91 - А→G (50-54 bp) гаплогруппа АM91 - A → G (50-54 bp) haplogroup A
М217 - А→С (68-70 bp) гаплогруппа С3M217 - A → C (68-70 bp) haplogroup C3
М89 - С→T (56-59 bp) гаплогруппа FM89 - C → T (56-59 bp) haplogroup F
М69 - А→G (62-65 bp) гаплогруппа НM69 - A → G (62-65 bp) haplogroup H
М9 - С→G (84-87 bp) гаплогруппа KM9 - C → G (84-87 bp) haplogroup K
M11 - A→G (38-42 bp) гаплогруппа LM11 - A → G (38-42 bp) haplogroup L
M122 - A→G (50-54 bp) гаплогруппа O3M122 - A → G (50-54 bp) haplogroup O3
М70 - Т→G (44-47 bp) гаплогруппа ТM70 - T → G (44-47 bp) haplogroup T
Получен следующий результат:The following result is obtained:
М91 - А (50-54 bp) гаплогруппа АM91 - A (50-54 bp) haplogroup A
М217 - А (68-70 bp) гаплогруппа С3M217 - A (68-70 bp) haplogroup C3
М89 - С (56-59 bp) гаплогруппа FM89 - C (56-59 bp) haplogroup F
М69 - A (62-65 bp) гаплогруппа НM69 - A (62-65 bp) haplogroup H
М9 - G (84-87 bp) гаплогруппа KM9 - G (84-87 bp) haplogroup K
M11 - G (38-42 bp) гаплогруппа LM11 - G (38-42 bp) haplogroup L
M122 - A (50-54 bp) гаплогруппа O3M122 - A (50-54 bp) Haplogroup O3
M70 - Т (44-47 bp) гаплогруппа ТM70 - T (44-47 bp) haplogroup T
Результат анализа по редким гаплогруппам выявил гаплогруппу L, следовательно этническая принадлежность гражданина N - южно-азиатская.The analysis of rare haplogroups revealed haplogroup L, therefore, the ethnicity of citizen N is South Asian.
Таким образом, приведенные примеры подтверждают, что заявленный способ, который осуществляется предложенной тест-системой, содержащей разработанные специфичные олигонуклеотидные праймеры, позволяет всего за два этапа генотипировать сразу около 20 SNP маркеров для одного образца ДНК и со 100% точностью определить гаплогруппу и этническую принадлежность человека, что значительно удешевляет и ускоряет само исследование.Thus, the above examples confirm that the claimed method, which is carried out by the proposed test system containing the developed specific oligonucleotide primers, allows genotyping about 20 SNP markers for one DNA sample in just two steps and determining the human haplogroup and ethnicity with 100% accuracy , which significantly reduces the cost and speeds up the study itself.
Список литературыBibliography
1. Bosch Е., Calafell F., Comas D. et al. High-resolution analysis of human Y-chromosome variation shows a sharp discontinuity and limited gene flow between northwestern Africa and the Iberian Peninsula // Am. J. Hum. Genet. - 2001. - V. 68. - P. 1019-1029.1. Bosch E., Calafell F., Comas D. et al. High-resolution analysis of human Y-chromosome variation shows a sharp discontinuity and limited gene flow between northwestern Africa and the Iberian Peninsula // Am. J. Hum. Genet. - 2001. - V. 68. - P. 1019-1029.
2. Cruciani F., La Fratta R., Santolamazza P. et al. Phylogeographic Analysis of Haplogroup ЕЗЬ (E-M215) Y Chromosomes Reveals Multiple Migratory Events Within and Out Of Africa // Am. J. Hum. Genet. - 2004. - V. 74. - P. 1014-1022.2. Cruciani F., La Fratta R., Santolamazza P. et al. Phylogeographic Analysis of Haplogroup EZ (E-M215) Y Chromosomes Reveals Multiple Migratory Events Within and Out Of Africa // Am. J. Hum. Genet. - 2004. - V. 74. - P. 1014-1022.
3. Cruciani F., La Fratta R., Torroni A. et al. Molecular Dissection of the Y Chromosome Haplogroup E-M78 (E3bla): A Posteriori Evaluation of a Microsatellite-Network-Based Approach Through Six New Biallelic Markers // Human mutation Mutation in Brief. - 2006. - P. 1-10.3. Cruciani F., La Fratta R., Torroni A. et al. Molecular Dissection of the Y Chromosome Haplogroup E-M78 (E3bla): A Posteriori Evaluation of a Microsatellite-Network-Based Approach Through Six New Biallelic Markers // Human mutation Mutation in Brief. - 2006. - P. 1-10.
4. Di Giacomo F., Luca F., Popa L. O. et al. Y chromosomal haplogroup J as a signature of the post-neolithic colonization of Europe // Hum. Genet. - 2004. - V. 115. - P. 357-371.4. Di Giacomo F., Luca F., Popa L. O. et al. Y chromosomal haplogroup J as a signature of the post-neolithic colonization of Europe // Hum. Genet. - 2004. - V. 115. - P. 357-371.
5. Hammer M.F., Karafet Т., Rasanayagam A. et al. Out of Africa and back again: nested cladistic analysis of human Y chromosome variation // Mol. Biol. Evol. - 1998. - V. 15. - P. 427-441.5. Hammer M.F., Karafet T., Rasanayagam A. et al. Out of Africa and back again: nested cladistic analysis of human Y chromosome variation // Mol. Biol. Evol. - 1998. - V. 15. - P. 427-441.
6. Hammer M. F., Chamberlain V. F, Kearney V. F. et al. Population structure of Y chromosome SNP haplogroups in the United States and forensic implications for constructing Y chromosome STR databases // Forensic Science International. - 2005. - P. 1-11.6. Hammer M. F., Chamberlain V. F, Kearney V. F. et al. Population structure of Y chromosome SNP haplogroups in the United States and forensic implications for constructing Y chromosome STR databases // Forensic Science International. - 2005 .-- P. 1-11.
7. Karafet T.M., Zegura S.L., Posukh O. et al. Ancestral Asian source of New World Y-chromosome founder haplotypes // Am. J. Hum. Genet. - 1999. - V. 64. - P.817-831.7. Karafet T. M., Zegura S. L., Posukh O. et al. Ancestral Asian source of New World Y-chromosome founder haplotypes // Am. J. Hum. Genet. - 1999. - V. 64. - P.817-831.
8. Karafet T.M., Mendez F. L., Meilerman M. В., et al. New binary polymorphisms reshape and increase resolution of the human Y chromosomal haplogroup tree // Genome Res. - 2008. - P. 830-838.8. Karafet T.M., Mendez F. L., Meilerman M. B., et al. New binary polymorphisms reshape and increase resolution of the human Y chromosomal haplogroup tree // Genome Res. - 2008 .-- P. 830-838.
9. Rootsi S, Magri C, Kivisild T. et. al. Phylogeography of Y-Chromosome Haplogroup I Reveals Distinct Domains of Prehistoric Gene Flow in Europe // Am. J. Hum. Genet. - 2004. - V. 75. - P. 128-137.9. Rootsi S, Magri C, Kivisild T. et. al. Phylogeography of Y-Chromosome Haplogroup I Reveals Distinct Domains of Prehistoric Gene Flow in Europe // Am. J. Hum. Genet. - 2004. - V. 75. - P. 128-137.
10. Rootsi S., Zhivotovsky L.A., Baldovic M. et al. A counter-clockwise northern route of the Y-chromosome haplogroup N from Southeast Asia towards Europe // European Journal of Human Genetics. - 2006. - P. 1-8.10. Rootsi S., Zhivotovsky L.A., Baldovic M. et al. A counter-clockwise northern route of the Y-chromosome haplogroup N from Southeast Asia towards Europe // European Journal of Human Genetics. - 2006. - P. 1-8.
11. Semino O., Passarino G., Brega A. et al. A view of the Neolithic demic diffusion in Europe through two Y chromosome-specific markers // Am. J. Hum. Genet. - 1996 - V. 59. - P. 964-968.11. Semino O., Passarino G., Brega A. et al. A view of the Neolithic demic diffusion in Europe through two Y chromosome-specific markers // Am. J. Hum. Genet. - 1996 - V. 59. - P. 964-968.
12. Semino O., Passarino G., Oefner P. J. et al. The Genetic Legacy of Paleolithic Homo sapiens sapiens in Extant Europeans: A Y Chromosome Perspective // Science. - 2000. - V. 290. - P. 1155-1159.12. Semino O., Passarino G., Oefner P. J. et al. The Genetic Legacy of Paleolithic Homo sapiens sapiens in Extant Europeans: A Y Chromosome Perspective // Science. - 2000. - V. 290. - P. 1155-1159.
13. The Y Chromosome Consortium 1. A Nomenclature System for the Tree of Human Y-Chromosomal Binary Haplogroups // Genome Research. - 2002. - V. 12. - P. 339-348.13. The Y Chromosome Consortium 1. A Nomenclature System for the Tree of Human Y-Chromosomal Binary Haplogroups // Genome Research. - 2002. - V. 12. - P. 339-348.
14. Underhill P.A., Jin, L. Zemans R. et al. A pre-Columbian Y chromosome-specific transition and its implications for human evolutionary history // Proc. Natl. Acad. Sci. - 1996. - V. 93. - P. 196-200.14. Underhill P.A., Jin, L. Zemans R. et al. A pre-Columbian Y chromosome-specific transition and its implications for human evolutionary history // Proc. Natl. Acad. Sci. - 1996. - V. 93. - P. 196-200.
15. Underhill P.A., Jin L., Lin A. A. et al. Detection of numerous Y chromosome biallelic polymorphisms by denaturing high-performance liquid chromatography // Genome Res. - 1997. - V. 7. - P. 996-1005.15. Underhill P.A., Jin L., Lin A. A. et al. Detection of numerous Y chromosome biallelic polymorphisms by denaturing high-performance liquid chromatography // Genome Res. - 1997. - V. 7. - P. 996-1005.
16. Underhill P.A., Shen P., Lin A.A. et al. Y chromosome sequence variation and the history of human populations // Nat. Genet. - 2000. - V. 26. - 358-361.16. Underhill P.A., Shen P., Lin A.A. et al. Y chromosome sequence variation and the history of human populations // Nat. Genet. - 2000. - V. 26. - 358-361.
17. Underhill P. A., Passarino G., Lin A. A. et al. The phylogeography of Y chromosome binary haplotypes and the origins of modern human populations // Ann. Hum. Genet. - 2001. - V. 65. P. 43-62.17. Underhill P. A., Passarino G., Lin A. A. et al. The phylogeography of Y chromosome binary haplotypes and the origins of modern human populations // Ann. Hum. Genet. - 2001. - V. 65. P. 43-62.
18. Wells R. S., Yuldasheva N., R. Ruzibakiev et al. The Eurasian Heartland: A continental perspective on Y-chromosome diversity // PNAS. - 2001. - V. 98, №18. - P. 10244-10249.18. Wells R. S., Yuldasheva N., R. Ruzibakiev et al. The Eurasian Heartland: A continental perspective on Y-chromosome diversity // PNAS. - 2001. - V. 98, No. 18. - P. 10244-10249.
19. Whit Athey T. and Nordtvedt K. Resolving the Placement of Haplogroup I-M223 in the YChromosome Phylogenetic Tree // Journal of Genetic Genealogy. - 2005. - P. 54-55.19. Whit Athey T. and Nordtvedt K. Resolving the Placement of Haplogroup I-M223 in the YChromosome Phylogenetic Tree // Journal of Genetic Genealogy. - 2005 .-- P. 54-55.
20. Zegura S.L., Karafet T.M., Zhivotovsky L.A. et al. High-Resolution SNPs and Microsatellite Haplotipes Point to a Single, Recent Entry of Native American Y-Chromosomes into the Americas // Moi. Biol. Evol. - 2004. - V. 21. - P. 164-175.20. Zegura S.L., Karafet T.M., Zhivotovsky L.A. et al. High-Resolution SNPs and Microsatellite Haplotipes Point to a Single, Recent Entry of Native American Y-Chromosomes into the Americas // Moi. Biol. Evol. - 2004. - V. 21. - P. 164-175.
21. Zerjal Т., Dashnyman В., Pandya A et al. Genetic relationship of Asians and Northern European, revealed by Y-chromocomal DNA analysis // Am. J. Hum. Genet. - 1997. - V. 60. - P. 1174-1183.21. Zerjal T., Dashnyman B., Pandya A et al. Genetic relationship of Asians and Northern European, revealed by Y-chromocomal DNA analysis // Am. J. Hum. Genet. - 1997. - V. 60. - P. 1174-1183.
22. 1. Степанов В.А., Харьков B.H., Пузырев B.H. Эволюция и филогения линий Y-хромосомы человека // Вестник ВОГиС. - 2006. - т. 10, №1. - С. 57-73.22. 1. Stepanov V.A., Kharkov B.H., Bubbles B.H. Evolution and phylogeny of the lines of the human Y-chromosome // Vestnik VOGiS. - 2006. - T. 10, No. 1. - S. 57-73.
Claims (3)
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
RU2013140705/10A RU2558231C2 (en) | 2013-09-03 | 2013-09-03 | Method, test-system and primers for determination of haplogroups of human y-chromosome |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
RU2013140705/10A RU2558231C2 (en) | 2013-09-03 | 2013-09-03 | Method, test-system and primers for determination of haplogroups of human y-chromosome |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
RU2013140705A RU2013140705A (en) | 2015-03-10 |
RU2558231C2 true RU2558231C2 (en) | 2015-07-27 |
Family
ID=53279692
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
RU2013140705/10A RU2558231C2 (en) | 2013-09-03 | 2013-09-03 | Method, test-system and primers for determination of haplogroups of human y-chromosome |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
RU (1) | RU2558231C2 (en) |
Cited By (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
RU2635994C1 (en) * | 2016-06-08 | 2017-11-17 | Федеральное государственное бюджетное научное учреждение "Научный центр проблем здоровья семьи и репродукции человека" | Method for ethnicity determination for adolescent girls by biochemical parameters |
RU2740575C1 (en) * | 2020-05-21 | 2021-01-15 | Иван Дмитриевич Ивановский | Set of synthetic oligonucleotides for simultaneous genotyping 63 dna-markers associated with blood group av0, main haplogroups of y-chromosome, color of iris of eye, hair, skin and gender, by pcr with subsequent hybridisation |
Families Citing this family (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN113981102A (en) * | 2021-08-30 | 2022-01-28 | 司法鉴定科学研究院 | Primer composition, kit and method for detecting Y-SNP (Y-single nucleotide polymorphism) haplotype group based on next-generation sequencing technology and application of primer composition, kit and method |
Citations (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
US20030224372A1 (en) * | 2002-05-31 | 2003-12-04 | Denise Syndercombe-Court | Method for determining ethnic origin by means of STR profile |
RU2012145062A (en) * | 2012-10-24 | 2014-04-27 | Общество с ограниченной ответственностью "БИОЧИП-ИМБ" | BIOCHIP FOR GENOTYPING A RANGE OF HUMAN Y-CHROMOSOMA HAPLOGRAPH MARKERS: M130 (C), M145 (DE) |
-
2013
- 2013-09-03 RU RU2013140705/10A patent/RU2558231C2/en not_active IP Right Cessation
Patent Citations (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
US20030224372A1 (en) * | 2002-05-31 | 2003-12-04 | Denise Syndercombe-Court | Method for determining ethnic origin by means of STR profile |
RU2012145062A (en) * | 2012-10-24 | 2014-04-27 | Общество с ограниченной ответственностью "БИОЧИП-ИМБ" | BIOCHIP FOR GENOTYPING A RANGE OF HUMAN Y-CHROMOSOMA HAPLOGRAPH MARKERS: M130 (C), M145 (DE) |
Cited By (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
RU2635994C1 (en) * | 2016-06-08 | 2017-11-17 | Федеральное государственное бюджетное научное учреждение "Научный центр проблем здоровья семьи и репродукции человека" | Method for ethnicity determination for adolescent girls by biochemical parameters |
RU2740575C1 (en) * | 2020-05-21 | 2021-01-15 | Иван Дмитриевич Ивановский | Set of synthetic oligonucleotides for simultaneous genotyping 63 dna-markers associated with blood group av0, main haplogroups of y-chromosome, color of iris of eye, hair, skin and gender, by pcr with subsequent hybridisation |
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
RU2013140705A (en) | 2015-03-10 |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
Quintáns et al. | Typing of mitochondrial DNA coding region SNPs of forensic and anthropological interest using SNaPshot minisequencing | |
JP5680304B2 (en) | Rapid forensic DNA analysis | |
EP3450569A1 (en) | Dna amplification method | |
US20150322504A1 (en) | Sequence amplification with loopable primers | |
JP4263612B2 (en) | Annealing control primers and uses thereof | |
JP6100933B2 (en) | Allelic ladder locus | |
AU2002329104A1 (en) | Annealing control primer and its uses | |
WO2009059049A1 (en) | Methods and kits for multiplex amplification of short tandem repeat loci | |
KR101667526B1 (en) | Method for Extended Autosomal STR Analysing Human Subject of Analytes using a Next Generation Sequencing Technology | |
JP2005511096A6 (en) | Annealing control primers and uses thereof | |
US20110306505A1 (en) | X-STR multiplex PCR amplification system | |
CN110331193A (en) | A kind of mankind kill the PCR-SBT method and reagent of cell immunoglobulin receptor KIR3DL2 Genotyping | |
CN104357569A (en) | Method for detecting deafness mutant gene based on peptide nucleic acid (PNA)-clamped polymerase chain reaction (PCR) | |
RU2558231C2 (en) | Method, test-system and primers for determination of haplogroups of human y-chromosome | |
WO2016165591A1 (en) | Mgmt gene promoter methylation detection based on pyrosequencing technology | |
WO2011021508A1 (en) | Marker for predicting therapeutic effect on hepatitis c, method for predicting therapeutic effect on hepatitis c, and prophylaxis or therapeutic agent for hepatitis c | |
US9029088B2 (en) | Human single nucleotide polymorphisms within CODIS loci D13S317, TH01, vWA, D12S391, and D6S1043 | |
Lee et al. | ABO genotyping by mutagenically separated polymerase chain reaction | |
CN110029162B (en) | SNP marker for detecting susceptibility of systemic lupus erythematosus in non-coding gene region and application thereof | |
US20120021427A1 (en) | Methods For Rapid Forensic DNA Analysis | |
KR101210657B1 (en) | Kit and method for identifying body fluid | |
KR100874378B1 (en) | Method for identifying hanwoo meat by using single nucleotide polymorphisms | |
KR102237248B1 (en) | SNP marker set for individual identification and population genetic analysis of Pinus densiflora and their use | |
JP6245796B2 (en) | Markers, probes, primers and kits for predicting the risk of developing primary biliary cirrhosis and methods for predicting the risk of developing primary biliary cirrhosis | |
KR101341943B1 (en) | Kit for detecting STRs and method for detecting STRs using the same |
Legal Events
Date | Code | Title | Description |
---|---|---|---|
MM4A | The patent is invalid due to non-payment of fees |
Effective date: 20160904 |