RU2557936C2 - Method for increasing diagnostic effectiveness of immunochromatographic systems of pathogen detection - Google Patents
Method for increasing diagnostic effectiveness of immunochromatographic systems of pathogen detection Download PDFInfo
- Publication number
- RU2557936C2 RU2557936C2 RU2012156167/15A RU2012156167A RU2557936C2 RU 2557936 C2 RU2557936 C2 RU 2557936C2 RU 2012156167/15 A RU2012156167/15 A RU 2012156167/15A RU 2012156167 A RU2012156167 A RU 2012156167A RU 2557936 C2 RU2557936 C2 RU 2557936C2
- Authority
- RU
- Russia
- Prior art keywords
- antigen
- sample
- test strip
- membrane
- test
- Prior art date
Links
Landscapes
- Investigating Or Analysing Biological Materials (AREA)
- Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)
Abstract
Description
Изобретение относится к иммунологии и медицинской диагностике и представляет собой способ иммунохроматографического анализа. Наличие в образцах кала антигенов (патогенных микроорганизмов, вирусов и маркеров) является эффективным критерием, позволяющим с высокой достоверностью диагностировать соответствующее инфекционное заболевание. Преимуществами данного подхода, особенно для диагностики заболеваний желудочно-кишечного тракта, является неинвазивность забора пробы, низкая стоимость и высокая достоверность результатов. Хотя в настоящее время активно используются как микробиологические, так и иммунологические способы диагностики инфекционных заболеваний, для проведения массового первичного скрининга оптимально определение наличия в образцах стула определяемых диагностически значимых антигенов, которое может быть реализовано с высокой экспрессностью и производительностью. Особенный интерес вызывают иммунохроматографические подходы в тех случаях, когда в силу особенностей роста микроорганизмов получение результатов микробиологического тестирования может потребовать значительного времени.The invention relates to immunology and medical diagnostics and is a method of immunochromatographic analysis. The presence of antigens in the stool samples (pathogenic microorganisms, viruses and markers) is an effective criterion that makes it possible to diagnose the corresponding infectious disease with high reliability. The advantages of this approach, especially for the diagnosis of diseases of the gastrointestinal tract, are non-invasiveness of the sampling, low cost and high reliability of the results. Although both microbiological and immunological methods for the diagnosis of infectious diseases are actively used at present, for conducting mass primary screening, it is optimal to determine the presence of detectable diagnostically significant antigens in stool samples, which can be realized with high expressivity and productivity. Of particular interest are immunochromatographic approaches in those cases where, due to the characteristics of the growth of microorganisms, obtaining the results of microbiological testing may require considerable time.
Всемирно, желудочно-кишечные нарушения, в ходе инфекционного заражения или токсического отравления, являются одной из основных причин заболеваемости и смертности. Всемирная организация здравоохранения подсчитала, что нарушение работы желудочно-кишечного тракта является причиной смертности около 25% всех смертей постнеонатального периода (Bryce J et al., 2005). Проблемы, связанные с нарушением функций кишечника, в настоящее время наблюдаются у 20% населения в развитых странах. В странах третьего мира они несут ответственность за множество смертей, а в развитых странах они являются основной причиной экономических потерь. В большинстве острых и хронических случаев нарушений работы желудочно-кишечного тракта возбудитель остается неизвестным, а единственным вариантом лечения является поддерживающая терапия, симптоматическое лечение и усердное внимание к питанию.Worldwide, gastrointestinal disturbances, through infection or toxic poisoning, are one of the leading causes of morbidity and mortality. The World Health Organization estimates that disruption of the gastrointestinal tract causes about 25% of all post-neonatal deaths (Bryce J et al., 2005). Problems associated with impaired bowel function are currently observed in 20% of the population in developed countries. In third world countries, they are responsible for many deaths, and in developed countries they are the main cause of economic losses. In most acute and chronic cases of disorders of the gastrointestinal tract, the pathogen remains unknown, and the only treatment option is maintenance therapy, symptomatic treatment, and diligent attention to nutrition.
Точная и своевременная диагностика лежит в основе всей медикаментозной терапии, но при этом современные возможности для диагностики кишечных инфекций остаются ограниченными, устаревшими и дорогими.Accurate and timely diagnosis is the basis of all drug therapy, but at the same time, modern opportunities for the diagnosis of intestinal infections remain limited, outdated and expensive.
Благодаря экспрессности, достаточно высокой чувствительности и специфичности иммунохроматографические тесты незаменимы при массовых обследованиях. Иммунохимический анализ может быть реализован в различных форматах. Однако, поскольку для массовых обследований первоочередное значение имеют скорость и производительность тестирования, в данной ситуации несомненными преимуществами обладает иммунохроматографический анализ.Due to the rapidity, sufficiently high sensitivity and specificity, immunochromatographic tests are indispensable for mass examinations. Immunochemical analysis can be implemented in various formats. However, since the speed and productivity of testing are of primary importance for mass examinations, in this situation immunochromatographic analysis has obvious advantages.
Особенностью иммунохроматографических тест-систем является то, что все необходимые для анализа реагенты предварительно нанесены на мембранные компоненты тест-полоски и ее контакт с тестируемой пробой непосредственно инициирует движение фронта жидкости по мембранам, протекание специфических реакций и формирование иммунных комплексов. Эти комплексы благодаря включению в их состав окрашенного маркера могут детектироваться визуально или с помощью оптического детектора.A feature of immunochromatographic test systems is that all reagents necessary for analysis are preliminarily applied to the membrane components of the test strip and its contact with the test sample directly initiates the movement of the liquid front across the membranes, the occurrence of specific reactions and the formation of immune complexes. These complexes, due to the inclusion of a colored marker in their composition, can be detected visually or using an optical detector.
Общая схема иммунохроматографии заключается в следующем.The general scheme of immunochromatography is as follows.
Проба, потенциально содержащая анализируемый антиген, под действием капиллярных сил перемещается вдоль тест-полоски. При этом она вначале взаимодействует с окрашенными частицами (коллоидное золото или иной маркер), на поверхности которых адсорбированы специфические антитела. Затем фронт жидкости преодолевает аналитическую (тестовую) зону, которая представляет собой участок мембраны с иммобилизованным специфическими антителами на другой эпитоп определяемого соединения. Степень связывания маркера в аналитической зоне, соответственно, интенсивность окрашивания мембраны определяются концентрацией антигена в пробе. Для проверки качества реагентов и сохранения функциональности тест-системы используется расположенная далее контрольная зона, в которой компонент, адсорбированный на окрашенной частице, связывается с соответствующим иммобилизованным на мембране реагентом (например, антивидовыми антителами).A sample that potentially contains the analyzed antigen, moves under the action of capillary forces along the test strip. Moreover, it first interacts with colored particles (colloidal gold or another marker), on the surface of which specific antibodies are adsorbed. Then, the front of the liquid overcomes the analytical (test) zone, which is a portion of the membrane immobilized with specific antibodies to another epitope of the defined compound. The degree of marker binding in the analytical zone, respectively, the intensity of membrane staining is determined by the concentration of antigen in the sample. To check the quality of the reagents and preserve the functionality of the test system, the control zone located below is used, in which the component adsorbed on the colored particle binds to the corresponding reagent immobilized on the membrane (for example, anti-species antibodies).
Эффективность иммунохроматографической тест-системы как диагностического средства в значительной степени зависит от того, какие иммунореагенты в ней используются и какие комплексы они образуют. Это относится к выбору и антител, и формата анализа.The effectiveness of the immunochromatographic test system as a diagnostic tool largely depends on which immunoreagents are used in it and what complexes they form. This applies to the selection of both antibodies and the format of the analysis.
Ниже представлено описание методики иммунохроматографического определения специфических антител к Helicobacter pylori, реализуемой в тест-системе «CerTest Н. pylori test» фирмы «CerTest» (Испания). Данная методика рассматривается в настоящей заявке в качестве прототипной.Below is a description of the method for immunochromatographic determination of specific antibodies to Helicobacter pylori, implemented in the test system "CerTest N. pylori test" company "CerTest" (Spain). This technique is considered in this application as a prototype.
CerTest Н. pylori представляет собой иммунохроматографический тест для качественного выявления Helicobacter pylori в кале. В процессе анализа корпускулярные антигены бактериальной природы, находящиеся в растворенном образце кала, реагируют с окрашенным конъюгатом (моноклональные антитела-окрашенные латексные частицы), предварительно высушенном на мембране тест-полоски. Под действием капиллярных сил смесь продвигается вдоль по мембране. В случае положительного результата в аналитической зоне происходит связывание конъюгата коллоидного маркера с антителами, антигеном и иммобилизованным на мембране специфическими антителами, в результате чего появится линия красного цвета. Отсутствие этой линии указывает на отрицательный результат. При низкой концентрации антигена окрашенная полоса в тестовой зоне не образуется. Несвязавшийся конъюгат взаимодействует с реагентом в контрольной зоне тестового устройства, образуя окрашенную полосу, что указывает на правильное проведение теста.CerTest H. pylori is an immunochromatographic test for the qualitative detection of Helicobacter pylori in feces. In the process of analysis, bacterial particulate antigens in a dissolved stool sample react with a stained conjugate (monoclonal antibody-stained latex particles) pre-dried on the membrane of the test strip. Under the action of capillary forces, the mixture moves along the membrane. In the case of a positive result, the conjugate of the colloidal marker conjugates with antibodies, antigen and specific antibodies immobilized on the membrane, in the analytical zone, as a result of which a red line appears. The absence of this line indicates a negative result. At low antigen concentrations, a colored band does not form in the test area. The unbound conjugate interacts with the reagent in the control zone of the test device, forming a colored strip, which indicates the correct conduct of the test.
Существенным фактором, препятствующим достоверной диагностике заболеваний во всех случаях, является наличие некоторого количества антигена в образцах стула при отсутствии заболевания. Причинами этого может быть бактерионосительство и контакт с непатогенными микобактериями. В связи с этим медики вводят пороговый уровень содержания детектируемого антигена, превышение которого является основанием для вывода о наличии инфекционного процесса, а недостижение позволяет с высокой степенью достоверности делать вывод об отсутствии заболевания.A significant factor preventing reliable diagnosis of diseases in all cases is the presence of a certain amount of antigen in stool samples in the absence of the disease. The reasons for this may be bacterial carriage and contact with non-pathogenic mycobacteria. In this regard, doctors introduce a threshold level of detectable antigen, the excess of which is the basis for the conclusion about the presence of an infectious process, and failure to achieve a high degree of certainty makes a conclusion about the absence of the disease.
Однако контроль превышения порогового уровня легко реализуется лишь для систем количественного анализа, таких как микропланшетный иммуноферментный анализ с фотометрической регистрацией результатов. Такая диагностика требует использования специального оборудования для промывки планшетов и заключительной фотометрии, сопряжена с использованием ряда реагентов и поэтому существенно менее эффективна как средство высокопроизводительного массового скрининга по сравнению с иммунохроматографией. В случае же иммунохроматографии различение проб с концентрацией антигена выше и ниже установленного порогового уровня по яркости окрашивания в аналитической зоне становится исключительно субъективным решением, снижающим достоверность получаемых результатов.However, control of exceeding the threshold level is easily implemented only for systems of quantitative analysis, such as microplate enzyme-linked immunosorbent assay with photometric recording of results. Such diagnostics require the use of special equipment for washing tablets and final photometry, is coupled with the use of a number of reagents, and therefore significantly less effective as a means of high-throughput mass screening compared with immunochromatography. In the case of immunochromatography, the distinction between samples with antigen concentrations above and below the established threshold level for staining brightness in the analytical zone becomes an exclusively subjective decision that reduces the reliability of the results.
Для преодоления указанного ограничения в настоящей заявке предложен иммунохроматографический анализ Helicobacter pylori, в котором связывание в аналитической зоне антигена пробы предотвращается добавлением стандартного количества специфических антител, взаимодействующих с пробой до достижения ей аналитической зоны. Тем самым диагностический вывод становится основанным на отличии не между менее и более ярким окрашиванием, а между ее отсутствием (все специфические антигены блокированы антителами) и наличием (антигена достаточно много, и антител в используемом препарате недостаточно, чтобы блокировать его полностью).To overcome this limitation, an immunochromatographic assay of Helicobacter pylori is proposed in which the binding of a sample antigen in the assay zone is prevented by the addition of a standard amount of specific antibodies that interact with the assay until it reaches the assay zone. Thus, the diagnostic conclusion becomes based on the difference not between a less and more vivid staining, but between its absence (all specific antigens are blocked by antibodies) and presence (there is a lot of antigen, and there are not enough antibodies in the drug used to block it completely).
Эффективность предложенного в патенте подхода подтверждается представленным ниже примером.The effectiveness of the approach proposed in the patent is confirmed by the example below.
Пример 1. Определение Helicobacter pylori иммунохроматографическим методом Example 1. Determination of Helicobacter pylori by immunochromatographic method
Для изготовления тест-системы использовали набор мембран «mdi Easypack» фирмы «Advanced Microdevices» (Индия), включающий рабочую мембрану CNPC-SN12 L2-P25 (размер пор 15 мкм), подложку под конъюгат PT-R5, мембрану для нанесения образца GFB-R4, адсорбирующую мембрану АР 045 и ламинирующую защитную пленку МТ-1.For the manufacture of the test system, a set of mdi Easypack membranes from Advanced Microdevices (India) was used, including a CNPC-SN12 L2-P25 working membrane (pore size 15 μm), a PT-R5 conjugate substrate, and a GFB-applied sample membrane. R4, AP 045 adsorbent membrane and MT-1 laminating protective film.
На мембраны были нанесены следующие реагенты:The following reagents were applied to the membranes:
1. Конъюгат коллоидного золота со средним диаметром частиц 30 нм и специфических антител 2 в смеси со свободными специфическими антителами 1.1. The conjugate of colloidal gold with an average particle diameter of 30 nm and specific antibodies 2 in a mixture with free specific antibodies 1.
2. Специфические антитела на отличный эпитоп определяемого антигена - аналитическая зона тест-полоски (антитела 1).2. Specific antibodies to an excellent epitope of a detectable antigen - the analytical zone of the test strip (antibody 1).
3. Препарат антивидовых антител против иммуноглобулинов мыши - контрольная зона тест-полоски.3. Anti-mouse antibodies against mouse immunoglobulins - control zone of the test strip.
На 1 см полосы наносили 2 мкл раствора специфических антител (1,0 мг/мл) и 2 мкл раствора антивидовых антител (0,5 мг/мл) в 50 мМ фосфатном буфере, рН 7,4. Конъюгат коллоидного золота со специфическими антителами наносили в разведении, соответствующем D520=2,0, в объеме 8 мкл на 1 см полосы, и добавляли раствор антител из расчета 0,02 мкг на 1 см полосы. Для нанесения реагентов использовали диспенсер «IsoFlow» фирмы «Imagene Technology» (США). Листы мембран с нанесенными иммунореагентами нарезали на индивидуальные тест-полоски шириной 4 мм.On 1 cm of the strip, 2 μl of a solution of specific antibodies (1.0 mg / ml) and 2 μl of a solution of antispecies antibodies (0.5 mg / ml) in 50 mM phosphate buffer, pH 7.4 were applied. A colloidal gold conjugate with specific antibodies was applied at a dilution corresponding to D 520 = 2.0, in a volume of 8 μl per 1 cm of band, and an antibody solution of 0.02 μg per 1 cm of band was added. For the application of reagents, an IsoFlow dispenser from Imagene Technology (USA) was used. Membrane sheets coated with immunoreagents were cut into individual test strips 4 mm wide.
Иммунохроматографический анализ проводили при комнатной температуре. Тест-полоску погружали в пробу на 1 мин в вертикальном положении, а затем извлекали и помещали на горизонтальную поверхность. Детекцию связывания коллоидного золота осуществляли через 10 мин визуально или получая цифровое изображение тест-полоски с помощью сканера.Immunochromatographic analysis was performed at room temperature. The test strip was immersed in the sample for 1 min in a vertical position, and then removed and placed on a horizontal surface. Colloidal gold binding was detected after 10 min visually or by receiving a digital image of the test strip using a scanner.
Пример 2. Определение Helicobacter pylori иммунохроматографическим методом Example 2. Determination of Helicobacter pylori by immunochromatographic method
Для изготовления тест-системы использовали набор мембран «mdi Easypack» фирмы «Advanced Microdevices» (Индия), включающий рабочую мембрану CNPC-SN12 L2-P25 (размер пор 15 мкм), подложку под конъюгат PT-R5, мембрану для нанесения образца GFB-R4, адсорбирующую мембрану АР 045 и ламинирующую защитную пленку МТ-1. На мембраны были нанесены следующие реагенты:For the manufacture of the test system, a set of mdi Easypack membranes from Advanced Microdevices (India) was used, including a CNPC-SN12 L2-P25 working membrane (pore size 15 μm), a PT-R5 conjugate substrate, and a GFB-applied sample membrane. R4, AP 045 adsorbent membrane and MT-1 laminating protective film. The following reagents were applied to the membranes:
4. Конъюгат коллоидного золота со средним диаметром частиц 30 нм и специфических антител 2 в смеси со свободными специфическими антителами 1.4. The conjugate of colloidal gold with an average particle diameter of 30 nm and specific antibodies 2 in a mixture with free specific antibodies 1.
5. Специфические антитела на отличный эпитоп определяемого антигена - аналитическая зона тест-полоски (антитела 2).5. Specific antibodies for an excellent epitope of a detectable antigen - the analytical zone of the test strip (antibodies 2).
6. Препарат антивидовых антител против иммуноглобулинов мыши - контрольная зона тест-полоски.6. Antiviral antibody preparation against mouse immunoglobulins - control zone of the test strip.
На 1 см полосы наносили 2 мкл раствора специфических антител (1,0 мг/мл) и 2 мкл раствора антивидовых антител (0,5 мг/мл) в 50 мМ фосфатном буфере, рН 7,4. Конъюгат коллоидного золота со специфическими антителами наносили в разведении, соответствующем D520=2,0, в объеме 8 мкл на 1 см полосы, и добавляли раствор антител из расчета 0,02 мкг на 1 см полосы. Для нанесения реагентов использовали диспенсер «IsoFlow» фирмы «Imagene Technology» (США). Листы мембран с нанесенными иммунореагентами нарезали на индивидуальные тест-полоски шириной 4 мм.On 1 cm of the strip, 2 μl of a solution of specific antibodies (1.0 mg / ml) and 2 μl of a solution of antispecies antibodies (0.5 mg / ml) in 50 mM phosphate buffer, pH 7.4 were applied. A colloidal gold conjugate with specific antibodies was applied at a dilution corresponding to D 520 = 2.0, in a volume of 8 μl per 1 cm of band, and an antibody solution of 0.02 μg per 1 cm of band was added. For the application of reagents, an IsoFlow dispenser from Imagene Technology (USA) was used. Membrane sheets coated with immunoreagents were cut into individual test strips 4 mm wide.
Иммунохроматографический анализ проводили при комнатной температуре. Тест-полоску погружали в пробу на 1 мин в вертикальном положении, а затем извлекали и помещали на горизонтальную поверхность. Детекцию связывания коллоидного золота осуществляли через 10 мин визуально или получая цифровое изображение тест-полоски с помощью сканера.Immunochromatographic analysis was performed at room temperature. The test strip was immersed in the sample for 1 min in a vertical position, and then removed and placed on a horizontal surface. Colloidal gold binding was detected after 10 min visually or by receiving a digital image of the test strip using a scanner.
Проведено тестирование выборки из 20 проб кала больных и 20 лиц без симптоматики заболевания (см. Таблицу 1). Окрашивание в аналитической зоне выявлено для 18 больных и 1 здорового обследуемого, т.е. диагностическая эффективность тест-системы превосходит 90% (для традиционных аналитических систем эта величина варьирует от 50 до 90%), данные результаты были достигнуты как при реализации схемы анализа по примеру 1, так и по схеме анализа на основе примера 2.A test was conducted of a sample of 20 samples of feces of patients and 20 individuals without symptoms of the disease (see Table 1). Staining in the analytical zone was revealed for 18 patients and 1 healthy subject, i.e. diagnostic efficiency of the test system exceeds 90% (for traditional analytical systems, this value varies from 50 to 90%), these results were achieved both when implementing the analysis scheme in Example 1, and in the analysis scheme based on Example 2.
Claims (1)
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
RU2012156167/15A RU2557936C2 (en) | 2012-12-25 | 2012-12-25 | Method for increasing diagnostic effectiveness of immunochromatographic systems of pathogen detection |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
RU2012156167/15A RU2557936C2 (en) | 2012-12-25 | 2012-12-25 | Method for increasing diagnostic effectiveness of immunochromatographic systems of pathogen detection |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
RU2012156167A RU2012156167A (en) | 2014-08-10 |
RU2557936C2 true RU2557936C2 (en) | 2015-07-27 |
Family
ID=51354743
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
RU2012156167/15A RU2557936C2 (en) | 2012-12-25 | 2012-12-25 | Method for increasing diagnostic effectiveness of immunochromatographic systems of pathogen detection |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
RU (1) | RU2557936C2 (en) |
Citations (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
WO1981002344A1 (en) * | 1980-02-04 | 1981-08-20 | Collaborative Res Inc | Immunoassay products and methods |
-
2012
- 2012-12-25 RU RU2012156167/15A patent/RU2557936C2/en active
Patent Citations (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
WO1981002344A1 (en) * | 1980-02-04 | 1981-08-20 | Collaborative Res Inc | Immunoassay products and methods |
Non-Patent Citations (2)
Title |
---|
CERTEST, Human Diagnostics. Helicobacter Pyroli, 2012, найдено в Интернет, [онлайн] 12.11.2013. Найдено на http://www.certest.es/iu/IU-P8V.pdf . * |
Урусов А.Е. Разработка и сравнительная характеристика систем экспрессного иммунохимического определения микотоксинов. Автореферат диссертации на соискание ученой степени кандидата химических наук, 28.02.2013, С1-24. Голубев С.С. и др. Метод калибровачных кривых для иммунохроматографических экспресс-тестов. Часть 1. 01.10.2012, найдено в Интернет, [онлайн] 12.11.2013. Найдено на http://www.vniims.ru/download/pub/2012/metrol_10_2012_gold.pdf * |
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
RU2012156167A (en) | 2014-08-10 |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
JP6742978B2 (en) | Signal amplification in lateral flow and related immunoassays | |
Kinkel et al. | Evaluation of eight serological tests for diagnosis of imported schistosomiasis | |
CN107765002B (en) | Colloidal gold immunochromatography test strip and preparation method and application thereof | |
Anderson et al. | Comparison of three immunoassays for detection of antibodies to Strongyloides stercoralis | |
US20060105406A1 (en) | Cytoplasmic antigens for detection of Candida | |
US11714084B2 (en) | Method and associated device for rapid detection of target biomolecules with enhanced sensitivity | |
US20080227208A1 (en) | Devices and Methods for Detection of Occult Blood | |
US20210072235A1 (en) | Method for diagnosing tuberculosis | |
RU2395092C2 (en) | Method of determining antibodies to tuberculosis germ | |
Kunakorn et al. | Gold blot for detection of immunoglobulin M (IgM)-and IgG-specific antibodies for rapid serodiagnosis of melioidosis | |
RU2532352C2 (en) | Method of carrying out immunochromatographic analysis for serodiagnostics | |
RU2557936C2 (en) | Method for increasing diagnostic effectiveness of immunochromatographic systems of pathogen detection | |
WO2022259991A1 (en) | Stool specimen test method and immunochromatographic test piece therefor | |
KR101726181B1 (en) | Immunochromatography Analysis Device | |
US20210302424A1 (en) | Methods for dual detection and differentiation of infection by mycobacterium tuberculosis complex and nontuberculous mycobacteria | |
Henrique et al. | Large-scale evaluation of a rapid diagnostic test for diarrhea caused by enterotoxigenic Escherichia coli targeting the heat-labile toxin | |
WO2022259990A1 (en) | Fecal sample test method and immunochromatographic test piece therefor | |
RU2545909C2 (en) | Method of immunochromatographic determination of specific antibodies | |
KR102124260B1 (en) | Cholera diagnostic detection kit using rapid immunochromatography, its specific antibody and antibody-producing cell lines | |
Truyts | Towards paper-based micro bio-sensing of biomarker anti-mycolic acid antibodies for TB diagnosis | |
CA3217475A1 (en) | Devices, methods, and kits for diagnosing sars cov-2 infection | |
RU2197736C1 (en) | Reagent for immunoenzyme analysis and method of immunoenzyme testing of specific antibody in opisthorchiasis caused by hepatic trematode opisthorchis felineus | |
RU2319152C2 (en) | Method for predicting toxoplasma infection in children | |
EP3232197A1 (en) | A novel substrate and device for detecting an analyte and method for rapid diagnosis |