RU2549452C1 - Extraction-fluorimetric method of determining phenols in aqueous solutions - Google Patents
Extraction-fluorimetric method of determining phenols in aqueous solutions Download PDFInfo
- Publication number
- RU2549452C1 RU2549452C1 RU2013157505/15A RU2013157505A RU2549452C1 RU 2549452 C1 RU2549452 C1 RU 2549452C1 RU 2013157505/15 A RU2013157505/15 A RU 2013157505/15A RU 2013157505 A RU2013157505 A RU 2013157505A RU 2549452 C1 RU2549452 C1 RU 2549452C1
- Authority
- RU
- Russia
- Prior art keywords
- antipyrine
- phenols
- naphthalene
- water
- extraction
- Prior art date
Links
Images
Landscapes
- Investigating Or Analyzing Non-Biological Materials By The Use Of Chemical Means (AREA)
Abstract
Description
Изобретение относится к аналитической химии органических соединений и предназначено для химического контроля питьевых вод, воды объектов, а также может использоваться в очистке сточных вод от фенолов.The invention relates to the analytical chemistry of organic compounds and is intended for chemical control of drinking water, water objects, and can also be used in wastewater treatment from phenols.
Известны методы определения фенолов, рекомендованные для водных инспекций, санитарно-эпидемиологических станций и водоочистных сооружений, основанные на экстракции фенолов из водных растворов диэтиловым эфиром. Содержание фенолов определяют:Known methods for the determination of phenols recommended for water inspections, sanitary-epidemiological stations and wastewater treatment plants, based on the extraction of phenols from aqueous solutions with diethyl ether. The phenol content is determined by:
1. гравиметрически [1];1. gravimetrically [1];
2. бромометрически с пересчетом на C6H5OH [2];2. Bromometric with conversion to C 6 H 5 OH [2];
3. фотометрически с применением 4-амино-антипирина с пересчетом на C6H5OH [3];3. photometrically using 4-amino-antipyrine with conversion to C 6 H 5 OH [3];
4. хроматографически в тонком слое (ТСХ) [4];4. chromatography in a thin layer (TLC) [4];
5. газохроматографически [4].5. gas chromatography [4].
Методики 1-3 позволяют определять фенолы суммарно, 4, 5 - индивидуальные производные фенолов после стадии концентрирования на твердом полисорбенте с последующим элюированием. Все перечисленные методики имеют определенные недостатки, выбор методики связан с задачами химико-аналитического исследования химического состава контролируемого объекта.Methods 1-3 allow the determination of phenols in total, 4, 5 - individual derivatives of phenols after the stage of concentration on solid polysorbent, followed by elution. All of the above methods have certain disadvantages, the choice of methodology is associated with the tasks of chemical-analytical research of the chemical composition of the controlled object.
В качестве независимого контроля стандарта ПНД Ф 14.1:2:4.34-95 [5] рекомендуют флуориметрическую методику измерений массовой концентрации фенолов в пробах природной, питьевой и сточной воды с применением анализатора «Флюорат-02». Флуориметрический метод основан на извлечении фенолов из воды бутилацетатом, реэкстракции их в водный раствор гидроксида натрия и измерении массовой концентрации по интенсивности флуоресценции фенолов (табл.1). Для построения градуировочного графика готовят ряд смесей в диапазоне концентраций 0,05-1,00 мг/дм3, рис.1. Недостатки экстракционно-флуориметрического способа (аналога):As an independent control of the PND standard F 14.1: 2: 4.34-95 [5], they recommend a fluorimetric method for measuring the mass concentration of phenols in samples of natural, drinking and waste water using the Fluorat-02 analyzer. The fluorimetric method is based on the extraction of phenols from water with butyl acetate, their re-extraction into an aqueous solution of sodium hydroxide, and the measurement of mass concentration by phenol fluorescence intensity (Table 1). To build a calibration graph, a number of mixtures are prepared in the concentration range 0.05-1.00 mg / dm 3 , Fig. 1. The disadvantages of the extraction-fluorimetric method (analog):
- во-первых, применение органического растворителя - бутилацетата;- firstly, the use of an organic solvent - butyl acetate;
- во-вторых, обязательно требуется предварительное отделение нефтепродуктов экстракцией гексана и стадия реэкстракции фенолов гидроксидом натрия.- secondly, preliminary separation of oil products by hexane extraction and the stage of phenol reextraction with sodium hydroxide are necessarily required.
Применение гексана и бутилацетата как токсичных органических растворителей не соответствует методам «зеленой» аналитической химии. Гексан и бутилацетат имеют плотность меньше воды и концентрируют целевой продукт в верхней части экстрактора.The use of hexane and butyl acetate as toxic organic solvents does not correspond to the methods of "green" analytical chemistry. Hexane and butyl acetate have a density less than water and concentrate the target product on top of the extractor.
Выбираем прототип - экстракционно-фотометрический способ определения фенолов с помощью расслаивающейся экстракционной системы вода - антипирин-сульфосалициловая кислота.We select a prototype — an extraction-photometric method for the determination of phenols using an exfoliating water – antipyrine-sulfosalicylic acid extraction system.
Смешивают 4,0 мл анализируемого раствора фенола (рабочего раствора, приготовленного из ГСО методом последовательного разбавления) с 1,0 г антипирина (фармакопейный препарат) и 0,5 г сульфосалициловой кислоты (ч.д.а.) в мольном соотношении реагентов 2:1. После перемешивания и расслаивания системы на верхнюю водную и нижнюю - органическую фазы концентрат фенола в гидрато-сольвате сульфосалицилата антипириния исследуют на интенсивность оптического поглощения [5].4.0 ml of the analyzed phenol solution (working solution prepared from GSO by the method of sequential dilution) are mixed with 1.0 g of antipyrine (pharmacopeia drug) and 0.5 g of sulfosalicylic acid (analytical grade) in a molar ratio of reactants 2: one. After mixing and delaminating the system into the upper aqueous and lower organic phases, the phenol concentrate in the hydrate-solvate of antipyrine sulfosalicylate is examined for the intensity of optical absorption [5].
Для определения оптимальной длины волны поглощения фенолов готовят расслаивающуюся систему в 3 мерных градуированных пробирках. В систему вносят добавки 12,5; 50,0; 100,0 мкг/л рабочего раствора фенола, приготовленных из ГСО фенола соответственно. После расслаивания отделяют органическую фазу от водной. Спектр пропускания ОФ регистрируют в области от 333 до 714 нм (Specord UV - VIS) в кварцевой кювете толщиной 20 мм относительно контрольной органической фазы без добавок фенола (рис.2). Оптимальная длина волны поглощения фенолов в ОФ гидрато-сольватного концентрата выбрана в пределах 340 нм. Для построения градуировочного графика готовились системы с добавками рабочего раствора фенола (ГСО 7254-97) 5,00; 10,00; 20,00; 50,00 мкг/л соответственно. После расслаивания и отделения ОФ от водной измеряют оптическую плотность экстрактов фотометрически (СФ-46) при выбранной длине волны, рис.3. Недостатки прототипа: регистрация аналитического сигнала поглощения в ближней ультрафиолетовой области спектра (340 нм), мешающее влияние антипириновых соединений с нитрит-анионами (максимум поглощения 365 нм, коэффициент экстинции 360-420 моль-1·л·см-1 [6], сульфосалицилата железа (III) [1].To determine the optimal absorption wavelength of phenols, an exfoliating system is prepared in 3 graduated graduated tubes. Additives 12.5 are added to the system; 50.0; 100.0 μg / L of phenol working solution prepared from GSO phenol, respectively. After separation, the organic phase is separated from the aqueous phase. The transmission spectrum of RPs is recorded in the region from 333 to 714 nm (Specord UV - VIS) in a 20 mm thick quartz cuvette relative to the control organic phase without phenol additives (Fig. 2). The optimal absorption wavelength of phenols in the RP of the hydrate-solvate concentrate was chosen within 340 nm. To build a calibration graph, systems with the addition of a phenol working solution (GSO 7254-97) 5.00 were prepared; 10.00; 20.00; 50.00 μg / L, respectively. After delamination and separation of the RP from the water, the optical density of the extracts is measured photometrically (SF-46) at the selected wavelength, Fig. 3. The prototype disadvantages: registration of the analytical absorption signal in the near ultraviolet region of the spectrum (340 nm), the interfering effect of antipyrine compounds with nitrite anions (maximum absorption 365 nm, extinction coefficient 360-420 mol -1 · l · cm -1 [6], sulfosalicylate iron (III) [1].
Заявляемый экстракционно-флуориметрический способ определения фенолов в водных растворах и регистрации аналитического сигнала позволяет снизить предел обнаружения фенолов.The inventive extraction-fluorimetric method for the determination of phenols in aqueous solutions and registration of the analytical signal allows to reduce the detection limit of phenols.
Повышение достоверности определения фенолов в водных растворах и регистрации аналитического сигнала флуоресценции фенолов под углом 90 градусов к направлению падающего на измерительную кювету света, методом градуировочного графика с вычетом сигнала контрольного опыта, то есть флуоресценции органической фазы системы вода-антипирин-нафталин-2-сульфокислота без добавок фенолов.Improving the reliability of the determination of phenols in aqueous solutions and recording the analytical phenol fluorescence signal at an angle of 90 degrees to the direction of the light incident on the measuring cuvette by the calibration graph with the subtraction of the control experiment signal, i.e., fluorescence of the organic phase of the water-antipyrine-naphthalene-2-sulfonic acid system additives of phenols.
Замена сульфокислоты на нафталин-2-сульфокислоту обеспечивает достижение нового технического результата.Replacing sulfonic acid with naphthalene-2-sulfonic acid ensures the achievement of a new technical result.
Сущность изобретенияSUMMARY OF THE INVENTION
В предлагаемом экстракционно-флуориметрическом способе определения фенолов в водных растворах используется расслаивающаяся система вода-антипирин - органическая кислота, отличающаяся заменой одной кислоты - сульфосалициловой (СК) на другую - нафталин 2-сульфокислоту (НСК), при молярном соотношении антипирина и НСК (1:1) нагревают до температуры плавления 97°C, добавляют 1 мл расплава органической соли нафталин - 2 сульфонат антипириния, добавляют 10,0 мл анализируемого водного раствора, затем интенсивно встряхивают и выдерживают до расслаивания на верхнюю - водную и нижнюю - органическую фазы и исследуют на интенсивность флуоресценции нижнюю - органическую фазу.The proposed extraction-fluorimetric method for the determination of phenols in aqueous solutions uses an exfoliating water-antipyrine-organic acid system, characterized by the replacement of one acid, sulfosalicylic acid (SC), with another, naphthalene 2-sulfonic acid (NSC), with a molar ratio of antipyrine and NSC (1: 1) heated to a melting point of 97 ° C, add 1 ml of a melt of the organic salt of naphthalene - 2 antipyrine sulfonate, add 10.0 ml of the analyzed aqueous solution, then shake vigorously and hold until delaminated tions at the top - and bottom aqueous - organic phase and analyzed for fluorescence intensity bottom - an organic phase.
Осуществление изобретенияThe implementation of the invention
ПримерExample
Берут 5 г нафталин 2-сулъфокислоты (НСК) марки «ч», тщательно очищают смесью дистиллированной воды и концентрированной хлороводородной кислоты в объемном соотношении 1:1 порцией 10 мл, затем фильтруют через полимерную мембрану с диаметром пор 0,1 мкм от механических примесей. Фильтрат упаривают для удаления следов летучих фенолов. После упаривания продукт хранят при комнатной температуре. Чистота НСК очень важна, так как микропримеси фенольных соединений влияют на величину контрольного опыта (фонового сигнала флуоресценции органической фазы системы без введения добавок фенолов).Take 5 g of naphthalene 2-sulfonic acid (NSC) grade “h”, thoroughly clean with a mixture of distilled water and concentrated hydrochloric acid in a volume ratio of 1: 1 in a portion of 10 ml, then filter through mechanical impurities with a pore diameter of 0.1 μm. The filtrate was evaporated to remove traces of volatile phenols. After evaporation, the product is stored at room temperature. The purity of the NSC is very important, since microimpurities of phenolic compounds affect the value of the control experiment (background fluorescence signal of the organic phase of the system without the addition of phenols).
Модельные расслаивающиеся системы готовят, контролируя общий объем в пределах 11,0±0,1 мл, следующим образом.Model exfoliating systems are prepared by controlling the total volume within 11.0 ± 0.1 ml, as follows.
В кварцевую чашку объемом 50 мл помещают навески антипирина Ант (0,94 г) и очищенную нафталин 2-сульфокислоту НСК (0,65 г), нагревают до температуры плавления 97°C. В результате химического протолитического взаимодействия получают органическую соль нафталин - 2 сульфонат антипириния - C11H12N2O*C10H7SO3H. Первоначально твердые реагенты: основание (антипирин, Ант) и кислота (нафталин-2-сульфокислота НСК) превращаются при молярном отношении 1:1 в органическую соль сульфонат антипириния - C11H12N2O*C10H7SO3H. При температуре, близкой к температуре кипения воды, соль представляет собой легкоплавкий расплав - аналог ионной жидкости, вещество светлого цвета, без запаха с плотностью около 2,3 г/мл, то есть в два раза плотнее чистой воды, с растворимостью 0,09 г/10 г H2O. В расплавленном состоянии соль имеет вязкую структуру и желтоватый цвет. Полученный расплав сливают в пробирку, вносят добавку фенола рабочего раствора, предварительно приготовленного из стандарта ГСО, доводят водой до общего объема 11,0 мл. Нижняя фаза в контрольном образце представляет собой желтоватую, достаточно подвижную жидкость. В присутствии железа (III) в воде органическая фаза окрашивается в красный цвет. Объем органической фазы составляет в пределах 0,70 мл. Оптимальные количественные компоненты, обеспечивающие расслаивание и объем нижней фазы (0,7 мл), 0,01 моль - 10 ммоль Антипирина и 0,01 моль - 10 ммолъ НСК, при общем объеме 11,0 мл. Расслаивание имеет место в широком интервале концентраций составляющих веществ: от 28 до 97 мас.% воды при соотношении по массе антипирин (Ант) : нафталин-2-сульфокислота (НСК) от 25:75 до 70:30 по данным [8].Weighed portions of Antipyrine Ant (0.94 g) and purified Naphthalene 2-sulfonic acid NSC (0.65 g) are placed in a 50 ml quartz cup, heated to a melting point of 97 ° C. As a result of chemical protolytic interaction, an organic salt of naphthalene - 2 antipyrine sulfonate - C 11 H 12 N 2 O * C 10 H 7 SO 3 H is obtained. Initially solid reagents: base (antipyrine, Ant) and acid (naphthalene-2-sulfonic acid NSC) are converted at a molar ratio of 1: 1 into an organic salt of antipyrine sulfonate - C 11 H 12 N 2 O * C 10 H 7 SO 3 H. At a temperature close to the boiling point of water, the salt is a low-melting melt - an analog of an ionic liquid, a light substance colorless, odorless with a density of about 2.3 g / ml, i.e. twice denser than pure water, with a solubility of 0.09 g / 10 g H 2 O. In the molten state, the salt has a viscous structure and a yellowish color. The resulting melt is poured into a test tube, phenol is added with a working solution, previously prepared from the GSO standard, adjusted with water to a total volume of 11.0 ml. The lower phase in the control sample is a yellowish, fairly mobile liquid. In the presence of iron (III) in water, the organic phase turns red. The volume of the organic phase is within 0.70 ml. The optimal quantitative components providing delamination and volume of the lower phase (0.7 ml), 0.01 mol - 10 mmol of Antipyrine and 0.01 mol - 10 mmol of NSC, with a total volume of 11.0 ml. The delamination takes place in a wide range of concentrations of constituent substances: from 28 to 97 wt.% Water with a ratio by weight of antipyrine (Ant): naphthalene-2-sulfonic acid (NSC) from 25:75 to 70:30 according to [8].
Содержание фенола определяют по градуировочному графикуThe phenol content is determined by the calibration graph
Iф.=1,10+0,12С [мкг/л](r=0,981), рис.4.Iph. = 1.10 + 0.12C [μg / L] (r = 0.981), Fig. 4.
В качестве контрольной пробы используют органическую фазу (ОФ) расслаивающейся системы без добавки фенола. Массовую концентрацию фенолов в водной фазе вычисляют по градуировочному графику Iф.=0,014+0,331Сф. [мкг/л] (r=0,987), рис.5.As a control sample, use the organic phase (RP) of the exfoliating system without the addition of phenol. The mass concentration of phenols in the aqueous phase is calculated according to the calibration curve Iph. = 0.014 + 0.331Cph. [μg / L] (r = 0.987), Fig. 5.
Контрольную пробу готовят, используя водную фазу модельной системы без добавки фенола.A control sample is prepared using the aqueous phase of the model system without phenol addition.
В табл.2 наблюдают распределение фенола между водной (ВФ) и органической (ОФ) фазой, по результатам флуоресцентного анализа. В табл.3, представлены сравнительные результаты известного и заявляемого способов. Более высокие содержания фенолов в речной воде после экстракции без органического растворителя связаны с нижним положением концентрата в системе. Заявляемая система без органического растворителя работает эффективнее, чем бутилацетат, не требует реэкстракции. По справочным данным [9], коэффициент распределения фенола в бутилацетат 48,5, в заявляемом способе достигает 70±3 (табл.2).In table 2, the phenol distribution between the aqueous (WF) and organic (RP) phases is observed, according to the results of fluorescence analysis. In table 3, presents the comparative results of the known and proposed methods. The higher phenol content in river water after extraction without an organic solvent is associated with the lower position of the concentrate in the system. The inventive system without an organic solvent is more efficient than butyl acetate, does not require reextraction. According to the reference data [9], the distribution coefficient of phenol in butyl acetate 48.5, in the present method reaches 70 ± 3 (table 2).
Количественное извлечение фенола в предлагаемом способе обеспечивается высаливанием, например хлоридом натрия, также наблюдается при однократной экстракции фенола расплавом нафталин-2-сульфоната антипириния из соленых вод.Quantitative extraction of phenol in the proposed method is provided by salting out, for example, sodium chloride, is also observed during a single extraction of phenol with a melt of naphthalene-2-sulfonate antipyrine from salt water.
В заявляемом способе без органического растворителя применяется однократная экстракция, которая обеспечивает переход фенола в нижнюю фазу на 80% и с учетом средних величин R увеличивается (пример 1, для соленых вод). ОФ системы без органического растворителя образует концентрат в нижней фазе и также экстрагирует фенолы из взвесей (планктона). ОФ концентрирует железо (III), которое можно анализировать в той же пробе фотометрически (анализатор «Флюорат» позволяет получать сигнал оптической плотности).In the inventive method, without an organic solvent, a single extraction is used, which ensures the transition of phenol to the lower phase by 80% and taking into account the average values of R increases (example 1, for salt waters). The RP system without an organic solvent forms a concentrate in the lower phase and also extracts phenols from suspensions (plankton). The RP concentrates iron (III), which can be analyzed photometrically in the same sample (the Fluorat analyzer allows you to obtain an optical density signal).
Заявляемый способ прост, не требуется предварительной отгонки летучих фенолов, отделения нефтепродуктов, применения твердых сорбентов или органического растворителя. Концентрат нижней фазы используется для регистрации сигналов поглощения железа (III) и других ионов по величине оптической плотности относительно контрольного опыта с дистиллированной водой.The inventive method is simple, it does not require preliminary distillation of volatile phenols, separation of petroleum products, the use of solid sorbents or an organic solvent. The lower phase concentrate is used to record the absorption signals of iron (III) and other ions in terms of optical density relative to the control experiment with distilled water.
ЛитератураLiterature
1. Лурье Ю.Ю. Унифицированные методы анализа вод // изд. «Химия», М., 1971. 375 с.1. Lurie Yu.Yu. Unified methods of water analysis // ed. “Chemistry”, M., 1971. 375 p.
2. Мазор Л. Методы органического анализа // М.: «Мир», 1986, 584 с.2. Mazor L. Methods of organic analysis // M .: "World", 1986, 584 S.
3. Лурье Ю.Ю. Аналитическая химия промышленных и сточных вод // М.: Химия, 1984, 448 с.3. Lurie Yu. Yu. Analytical chemistry of industrial and waste waters // M .: Chemistry, 1984, 448 p.
4. Фомин Г.С. Вода. Контроль химической, бактериальной и радиационной безопасности по международным стандартам. Энциклопедический справочник. - 3-е изд., перераб. и дополн. - М., изд-во «Протектор», 2000. - 848 с. С.465-470.4. Fomin G.S. Water. Chemical, bacterial and radiation safety control according to international standards. Encyclopedic reference book. - 3rd ed., Revised. and add. - M., publishing house "Protector", 2000. - 848 p. S.465-470.
5. Ускова А.Ю., Темерев С.В. Особенности определения фенолов в природных поверхностных водах // Известия Алтайского государственного университета. 2012. 3/1(75). С.207-209.5. Uskova A.Yu., Temerev S.V. Features of the determination of phenols in natural surface waters // Bulletin of Altai State University. 2012.3 / 1 (75). S.207-209.
6. Носкова В.В., Темерев С.В. Применение расслаивающейся системы вода - антипирин-сульфосалициловая кислота в химическом мониторинге нитрит-ионов // Известия Алтайского государственного университета. 2011. 3/2(71). С.148-153.6. Noskova V.V., Temerev S.V. The use of an exfoliating water-antipyrine-sulfosalicylic acid system in chemical monitoring of nitrite ions // News of Altai State University. 2011.3 / 2 (71). S.148-153.
7. ПНД Ф 14.1:2:4.117-97 Методика выполнения измерений массовых концентраций фенолов в пробах природной, питьевой и сточной воды на анализаторе «Флюорат-02».7. PND F 14.1: 2: 4.117-97 Methodology for measuring mass concentrations of phenols in samples of natural, drinking, and wastewater using the Fluorat-02 analyzer.
8. Петров Б.И., Денисова С.А., Леснов А.Е., Шестакова Г.Е. Межфазное распределение некоторых элементов в системе вода - антипирин-нафталин-2-сульфокислота // Известия вузов. Химия и химическая технология. 1999. Т.42, №1. С 21-23.8. Petrov B.I., Denisova S.A., Lesnov A.E., Shestakova G.E. Interphase distribution of some elements in the water - antipyrine-naphthalene-2-sulfonic acid system // News of universities. Chemistry and chemical technology. 1999. Vol. 42, No. 1. S 21-23.
9. Коренман Я.И. Коэффициенты распределения органических соединений. - Воронеж: Изд-во ВГУ, 1992. - 336 с. С.153.9. Korenman Ya.I. The distribution coefficients of organic compounds. - Voronezh: Publishing House of the Voronezh State University, 1992. - 336 p. S.153.
Claims (1)
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
RU2013157505/15A RU2549452C1 (en) | 2013-12-23 | 2013-12-23 | Extraction-fluorimetric method of determining phenols in aqueous solutions |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
RU2013157505/15A RU2549452C1 (en) | 2013-12-23 | 2013-12-23 | Extraction-fluorimetric method of determining phenols in aqueous solutions |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
RU2549452C1 true RU2549452C1 (en) | 2015-04-27 |
Family
ID=53289745
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
RU2013157505/15A RU2549452C1 (en) | 2013-12-23 | 2013-12-23 | Extraction-fluorimetric method of determining phenols in aqueous solutions |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
RU (1) | RU2549452C1 (en) |
Cited By (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
RU2775466C1 (en) * | 2021-03-11 | 2022-07-01 | федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования "Алтайский государственный университет" | Extraction-fluorimetric method for determining phenols in the solid component of snow cover |
Citations (6)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
SU376700A1 (en) * | 1970-06-18 | 1973-04-05 | Государственный научно исследовательский , проектный институт ИБЛ. ГЕКА обогащению руд цветных металлов | METHOD FOR QUANTITATIVE DETERMINATION OF PHENOL IN WASTEWATER |
SU321163A1 (en) * | 1970-02-25 | 1976-07-25 | Государственный Научно-Исследовательский И Проектный Институт По Обогащению Руд Цветных Металлов | Method for quantitative determination of phenol |
RU2091766C1 (en) * | 1994-08-30 | 1997-09-27 | Крашенинников Анатолий Александрович | Method of determining concentration of phenol and its fluorescent derivatives in aqueous media |
RU2128331C1 (en) * | 1997-04-09 | 1999-03-27 | Воронежская государственная технологическая академия | Method of separately determining aniline and phenol in aqueous solutions |
CN101576501A (en) * | 2009-05-08 | 2009-11-11 | 广东海洋大学 | Method for determining volatile phenol in water |
CN101738389A (en) * | 2008-11-18 | 2010-06-16 | 盐城工学院 | Method for measuring volatile phenol with low content in water body by using ionic liquid as extractant |
-
2013
- 2013-12-23 RU RU2013157505/15A patent/RU2549452C1/en not_active IP Right Cessation
Patent Citations (6)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
SU321163A1 (en) * | 1970-02-25 | 1976-07-25 | Государственный Научно-Исследовательский И Проектный Институт По Обогащению Руд Цветных Металлов | Method for quantitative determination of phenol |
SU376700A1 (en) * | 1970-06-18 | 1973-04-05 | Государственный научно исследовательский , проектный институт ИБЛ. ГЕКА обогащению руд цветных металлов | METHOD FOR QUANTITATIVE DETERMINATION OF PHENOL IN WASTEWATER |
RU2091766C1 (en) * | 1994-08-30 | 1997-09-27 | Крашенинников Анатолий Александрович | Method of determining concentration of phenol and its fluorescent derivatives in aqueous media |
RU2128331C1 (en) * | 1997-04-09 | 1999-03-27 | Воронежская государственная технологическая академия | Method of separately determining aniline and phenol in aqueous solutions |
CN101738389A (en) * | 2008-11-18 | 2010-06-16 | 盐城工学院 | Method for measuring volatile phenol with low content in water body by using ionic liquid as extractant |
CN101576501A (en) * | 2009-05-08 | 2009-11-11 | 广东海洋大学 | Method for determining volatile phenol in water |
Non-Patent Citations (2)
Title |
---|
ИСО 7875-84. Качество воды. Определение фенольного индекса-4 амино- . антипирино. " Москва, 1987, 11 с., УДК 543.38:547.56. Группа Т58 * |
УСКОВА А.Ю. и др. Особенности определения фенолов в природных . поверхностных водах.//Известия Алтайского госуниверситета, 2012. 3/1(75). С. 207-209. * |
Cited By (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
RU2775466C1 (en) * | 2021-03-11 | 2022-07-01 | федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования "Алтайский государственный университет" | Extraction-fluorimetric method for determining phenols in the solid component of snow cover |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
Salter et al. | The association between biogenic and inorganic minerals and the amino acid composition of settling particles | |
Nassiri et al. | Spectrophotometric determination of formaldehyde in seawater samples after in-situ derivatization and dispersive liquid-liquid microextraction | |
Almeida et al. | A study of the ammonium ion extraction properties of polymer inclusion membranes containing commercial dinonylnaphthalene sulfonic acid | |
Lvova et al. | Non-enzymatic portable optical sensors for microcystin-LR | |
RU2549452C1 (en) | Extraction-fluorimetric method of determining phenols in aqueous solutions | |
Yuan et al. | Comparison of two methods for the determination of geosmin and 2-methylisoborneol in algae samples by stable isotope dilution assay through purge-and-trap or headspace solid-phase microextraction combined with GC/MS | |
Beiraghi et al. | Separation, Preconcentration and determination of Hg (II) Ion in Water Samples by Cloud Point Extraction Technique Coupled with UV-VIS Spectrophotometry using a New Complexing Agent | |
Jamali et al. | Determination of nickel using cold-induced aggregation microextraction based on ionic liquid followed by flame atomic absorption spectrometry | |
Iwasaki et al. | So-called silica content of natural waters | |
Hata et al. | Micro-phase sorbent extraction for trace analysis via in situ sorbent formation: Application to the preconcentration and the spectrophotometric determination of trace ammonia | |
Lemos et al. | Spectrophotometric determination of mercury in water samples after preconcentration using dispersive liquid–liquid microextraction | |
RU2327157C1 (en) | Indicating method for ferrocene determination in petrol | |
Hata et al. | Micro-organic Ion-associate Phase Extraction via in situ Fresh Phase Formation for the Preconcentration and Determination of Di (2-ethylhexyl) phthalate in River Water by HPLC | |
Coles et al. | Komarowsky Color Reaction for Aliphatic Alcohols. Liminations and Sensitivity | |
RU2313076C1 (en) | Method of determining mercury in water | |
Bazel’ et al. | A combination of microextraction separation, preconcentration, and spectrophotometric detection for the determination of sodium dodecyl sulfate with quinaldine red | |
RU2567844C1 (en) | Method of determining selenium(iv) | |
Mali et al. | Thin-layer chromatographic determination of diazepam, phenobarbitone, and saccharin in toddy samples | |
CN111537456B (en) | Application of ionic liquid aqueous two-phase system in determination of organic matter hydrophobicity | |
RU2758197C1 (en) | Method for determining mass concentration of 1,1-dimethylhydrazine degradation products in plant samples | |
Tikhomirova et al. | Modification of the alumina surface with polyfunctional organic reagents | |
SU423036A1 (en) | METHOD OF QUANTITATIVE DETERMINATION OF CHLORAMINE IN WATER IN THE PRESENCE OF HYPOCHLORITES | |
RU2395803C1 (en) | Method of determining time of contact between diesel fuel and water | |
RU2484457C2 (en) | Method of determining contamination of water with diesel fuel | |
UA151617U (en) | Method for extraction-photometric determination of 2-methyl-4-chlorophenoxyacetic acid |
Legal Events
Date | Code | Title | Description |
---|---|---|---|
MM4A | The patent is invalid due to non-payment of fees |
Effective date: 20171224 |