RU2547573C2 - Method for detecting phosphatidyl serine on erythrocyte membrane surface - Google Patents
Method for detecting phosphatidyl serine on erythrocyte membrane surface Download PDFInfo
- Publication number
- RU2547573C2 RU2547573C2 RU2013117230/15A RU2013117230A RU2547573C2 RU 2547573 C2 RU2547573 C2 RU 2547573C2 RU 2013117230/15 A RU2013117230/15 A RU 2013117230/15A RU 2013117230 A RU2013117230 A RU 2013117230A RU 2547573 C2 RU2547573 C2 RU 2547573C2
- Authority
- RU
- Russia
- Prior art keywords
- membrane surface
- phosphatidyl serine
- phosphatidylserine
- detecting
- erythrocyte membrane
- Prior art date
Links
Landscapes
- Investigating Or Analysing Biological Materials (AREA)
Abstract
Description
Предлагаемое изобретение относится к биологии и медицине, а именно к лабораторным методам исследования, и может использоваться для оценки присутствия фосфатидилсерина на поверхности мембран эритроцитов.The present invention relates to biology and medicine, namely to laboratory research methods, and can be used to assess the presence of phosphatidylserine on the surface of red blood cell membranes.
Известно, что в эритроцитах фосфолипиды расположены асимметрично. Фосфатидилхолин и сфингомиелин локализованы на внешней половине липидного бислоя, фосфатидилэтаноламин на внешней и внутренней половине мембраны. Отрицательно заряженный фосфолипид фосфатидилсерин локализован исключительно на внутренней стороне липидного бислоя (Zwaal R.F.A., Schroit A.J. Blood. 1997. Vol.89. P.1121-1132). Выход фосфатидилсерина на поверхность мембран клеток крови при многих патологических состояниях ускоряет свертывание крови, приводит к тромботическим состояниям (Zwaal R.F.A, Comfurius P., Bevers E.V. Cell.Mol.Life Sci. 2005. Vol.62. P.971-988).In erythrocytes, phospholipids are known to be asymmetrically located. Phosphatidylcholine and sphingomyelin are located on the outer half of the lipid bilayer, phosphatidyl ethanolamine on the outer and inner half of the membrane. Negatively charged phospholipid phosphatidylserine is located exclusively on the inside of the lipid bilayer (Zwaal R.F.A., Schroit A.J. Blood. 1997. Vol.89. P.1121-1132). The release of phosphatidylserine on the surface of blood cell membranes under many pathological conditions accelerates blood coagulation and leads to thrombotic conditions (Zwaal R.F.A, Comfurius P., Bevers E.V. Cell.Mol.Life Sci. 2005. Vol.62. P.971-988).
Лантан, являясь трехвалентным катионом, имеет высокое сродство к фосфатидилсерину и в низких концентрациях избирательно взаимодействует с отрицательно заряженным фосфатидилсерином (Bentz J., Alford О., Cohen J., Duzgunes N. Biophys J. 1988. Vol.53. P.593-607).Lanthanum, being a trivalent cation, has a high affinity for phosphatidylserine and, at low concentrations, selectively interacts with negatively charged phosphatidylserine (Bentz J., Alford O., Cohen J., Duzgunes N. Biophys J. 1988. Vol.53. P.593- 607).
Принцип предлагаемого способа оценки присутствия фосфатидилсерина на поверхности мембран эритроцитов основан на электростатическом взаимодействии положительно заряженного лантана с отрицательным фосфатидилсерином. В результате взаимодействия лантана с фосфатидилсерином происходит агрегация эритроцитов.The principle of the proposed method for assessing the presence of phosphatidylserine on the surface of erythrocyte membranes is based on the electrostatic interaction of positively charged lanthanum with negative phosphatidylserine. As a result of the interaction of lanthanum with phosphatidylserine, aggregation of red blood cells occurs.
В качестве прототипа выбран способ оценки присутствия фосфатидилсерина на поверхности мембран эритроцитов, который включает добавление к эритроцитам флюоресцентного белка аннексина V и последующее измерение флюоресценции с помощью проточного цитофлюориметра (Kuypers F.A., Lewis R.A., Hua M. Et al. Blood. l996. Vol.87. P.1179-1183).As a prototype, a method for assessing the presence of phosphatidylserine on the surface of erythrocyte membranes was selected, which includes adding annexin V fluorescence protein to red blood cells and then measuring fluorescence using a flow cytometer (Kuypers FA, Lewis RA, Hua M. Et al. Blood. L996. Vol. 87. Vol99. P.1179-1183).
Однако для этого требуется дорогостоящее дефицитное оборудование (проточный цитофлюориметр) и дорогие дефицитные реактивы.However, this requires expensive scarce equipment (flow cytometer) and expensive scarce reagents.
Задача предлагаемого изобретения - совершенствование способа.The objective of the invention is the improvement of the method.
Технический результат - упрощение способа оценки присутствия фосфатидилсерина на поверхности мембран эритроцитов.EFFECT: simplification of the method for assessing the presence of phosphatidylserine on the surface of erythrocyte membranes.
Технический результат достигается за счет того, что в способе? включающем фиксацию эритроцитов с помощью глутарового альдегида, их отмывание, помещение на предметное стекло, обработанное хлористым лантаном, наблюдение за появлением агрегатов, по появлению агрегатов эритроцитов судят о присутствии фосфатидилсерина на поверхности мембран эритроцитов.The technical result is achieved due to the fact that in the method? including the fixation of red blood cells with glutaraldehyde, their washing, placement on a glass slide treated with lanthanum chloride, monitoring the appearance of aggregates, the appearance of red blood cell aggregates judges the presence of phosphatidylserine on the surface of red blood cell membranes.
Способ осуществляется следующим образом. Эритроциты фиксируют в 1%-ном растворе глутарового альдегида, приготовленного на фосфатном буфере, в течение 60 мин при комнатной температуре. После фиксации эритроциты трижды отмывают дистиллированной водой с последующим центрифугированием при 3000 об/мин в течение 5 мин. Отмытые эритроциты переносят на предметное стекло, обработанное 0.5 мМ раствором хлористого лантана, перемешивают и наблюдают с помощью светового микроскопа за образованием агрегатов клеток. Появление агрегатов свидетельствует о присутствии фосфатидилсерина на поверхности мембран эритроцитов.The method is as follows. Red blood cells are fixed in a 1% solution of glutaraldehyde prepared in phosphate buffer for 60 minutes at room temperature. After fixation, red blood cells are washed three times with distilled water, followed by centrifugation at 3000 rpm for 5 minutes. The washed red blood cells are transferred to a glass slide treated with a 0.5 mM lanthanum chloride solution, mixed and observed using a light microscope to form cell aggregates. The appearance of aggregates indicates the presence of phosphatidylserine on the surface of erythrocyte membranes.
Известно, что эритроциты кренатной формы (эхиноциты) в отличие от эритроцитов нормальной формы (дискоциты) имеют на поверхности мембраны высокое содержание фосфатидилсерина (Wolfs J.L.N., Comfurius Р., Bevers E.M., Swaal R.F.A. Molecular Membrane Biology. 2003. Vol.20. P.83-91).It is known that erythrocytes of the krenate form (echinocytes), unlike normal erythrocytes (discocytes), have a high phosphatidylserine content on the membrane surface (Wolfs JLN, Comfurius P., Bevers EM, Swaal RFA Molecular Membrane Biology. 2003. Vol.20. P. 83-91).
В качестве примеров использовали дискоциты и эхиноциты. Эхиноциты получали путем истощения; по АТФ (Feo С., Mohandas N. Nature. 1977. Vol.265. P. 166-168) и после обработки лизофосфатидной кислотой (Chung S.M., Bae O.N., Lim K.M. et al. Arterioscler.Thromb. Vasc.Biol. 2007. Vol.27. P.414-421).Discocytes and echinocytes were used as examples. Echinocytes were obtained by depletion; by ATP (Feo C., Mohandas N. Nature. 1977. Vol.265. P. 166-168) and after treatment with lysophosphatidic acid (Chung SM, Bae ON, Lim KM et al. Arterioscler. Thromb. Vasc. Biol. 2007 Vol.27. P.414-421).
Пример 1. Фиксированные дискоциты помещают на предметное стекло, обработанное лантаном, перемешивают и наблюдают с помощью светового микроскопа. Наблюдается отсутствие агрегатов эритроцитов. На поверхности мембран эритроцитов фосфатидилсерин отсутствует.Example 1. Fixed discocytes are placed on a glass slide treated with lanthanum, mixed and observed using a light microscope. There is a lack of red blood cell aggregates. On the surface of the erythrocyte membranes, phosphatidylserine is absent.
Пример 2. Фиксированные эхиноциты, полученные после истощения по АТФ, помещают на предметное стекло, обработанное лантаном, перемешивают и наблюдают с помощью световой микроскопии. Наблюдаются агрегаты эритроцитов. На поверхности мембран эритроцитов присутствует фосфатидилсерин.Example 2. Fixed echinocytes obtained after depletion by ATP, placed on a glass slide treated with lanthanum, mixed and observed using light microscopy. Red blood cell aggregates are observed. Phosphatidylserine is present on the surface of erythrocyte membranes.
Пример 3. Фиксированные эхиноциты, полученные после обработки лизофосфатидной кислотой, помещают на предметное стекло, обработанное лантаном, перемешивают и наблюдают с помощью световой микроскопии. Наблюдаются агрегаты эритроцитов. На поверхности мембран эритроцитов присутствует фосфатидилсерин.Example 3. Fixed echinocytes obtained after treatment with lysophosphatidic acid, placed on a glass slide treated with lanthanum, mixed and observed using light microscopy. Red blood cell aggregates are observed. Phosphatidylserine is present on the surface of erythrocyte membranes.
Таким образом, предлагаемый способ оценки присутствия фосфатидилсерина на поверхности мембран эритроцитов не требует специального оборудования.Thus, the proposed method for assessing the presence of phosphatidylserine on the surface of erythrocyte membranes does not require special equipment.
Преимуществом предлагаемого способа является простота, доступность, быстрота, отсутствие необходимости в сложном дорогостоящем оборудовании и дорогих дефицитных реактивов.The advantage of the proposed method is simplicity, accessibility, speed, the absence of the need for complex expensive equipment and expensive scarce reagents.
Claims (1)
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
RU2013117230/15A RU2547573C2 (en) | 2013-04-15 | 2013-04-15 | Method for detecting phosphatidyl serine on erythrocyte membrane surface |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
RU2013117230/15A RU2547573C2 (en) | 2013-04-15 | 2013-04-15 | Method for detecting phosphatidyl serine on erythrocyte membrane surface |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
RU2013117230A RU2013117230A (en) | 2014-10-20 |
RU2547573C2 true RU2547573C2 (en) | 2015-04-10 |
Family
ID=53296738
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
RU2013117230/15A RU2547573C2 (en) | 2013-04-15 | 2013-04-15 | Method for detecting phosphatidyl serine on erythrocyte membrane surface |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
RU (1) | RU2547573C2 (en) |
Cited By (3)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
RU2665169C1 (en) * | 2017-04-03 | 2018-08-28 | Федеральное государственное бюджетное военное образовательное учреждение высшего образования Военно-медицинская академия им. С.М. Кирова Министерства обороны Российской Федерации (ВМедА) | Erythrometric method of assessment the intensity of tissue respiration |
RU2665171C2 (en) * | 2016-08-15 | 2018-08-28 | Федеральное Государственное Бюджетное Образовательное Учреждение Высшего Образования "Нижегородская Государственная Сельскохозяйственная Академия" (ФГБОУ ВО НГСХА) | Method for detecting phosphatidylserine on the erythrocyte membrane surface |
RU2701520C1 (en) * | 2019-05-06 | 2019-09-27 | Федеральное Государственное Бюджетное Образовательное Учреждение Высшего Образования "Нижегородская Государственная Сельскохозяйственная Академия" (ФГБОУ ВО НГСХА) | Method of assessing the degree of presence of phosphatidylserine on the surface of erythrocyte membranes |
Citations (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
RU2277711C1 (en) * | 2004-10-26 | 2006-06-10 | ФГОУ ВПО Нижегородская государственная сельскохозяйственная академия (ФГОУ ВПО НГСХА) | Method for evaluating stable state of erythrocytic membranes |
RU2309754C2 (en) * | 2005-05-11 | 2007-11-10 | Нижегородская государственная сельскохозяйственная академия (НГСХА) | Method for production of erythrocyte membranes |
-
2013
- 2013-04-15 RU RU2013117230/15A patent/RU2547573C2/en not_active IP Right Cessation
Patent Citations (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
RU2277711C1 (en) * | 2004-10-26 | 2006-06-10 | ФГОУ ВПО Нижегородская государственная сельскохозяйственная академия (ФГОУ ВПО НГСХА) | Method for evaluating stable state of erythrocytic membranes |
RU2309754C2 (en) * | 2005-05-11 | 2007-11-10 | Нижегородская государственная сельскохозяйственная академия (НГСХА) | Method for production of erythrocyte membranes |
Non-Patent Citations (2)
Title |
---|
Kuypers FA et al. Detection of altered membrane phospholipid asymmetry in subpopulations of human red blood cells using fluorescently labeled annexin V. Blood. 1996 Feb 1;87(3):1179-87. * |
Liu F, Burgess J et al. Sample preparation and imaging of erythrocyte cytoskeleton with the atomic force microscopy. Cell Biochem Biophys. 2003;38(3):251-70 * |
Cited By (3)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
RU2665171C2 (en) * | 2016-08-15 | 2018-08-28 | Федеральное Государственное Бюджетное Образовательное Учреждение Высшего Образования "Нижегородская Государственная Сельскохозяйственная Академия" (ФГБОУ ВО НГСХА) | Method for detecting phosphatidylserine on the erythrocyte membrane surface |
RU2665169C1 (en) * | 2017-04-03 | 2018-08-28 | Федеральное государственное бюджетное военное образовательное учреждение высшего образования Военно-медицинская академия им. С.М. Кирова Министерства обороны Российской Федерации (ВМедА) | Erythrometric method of assessment the intensity of tissue respiration |
RU2701520C1 (en) * | 2019-05-06 | 2019-09-27 | Федеральное Государственное Бюджетное Образовательное Учреждение Высшего Образования "Нижегородская Государственная Сельскохозяйственная Академия" (ФГБОУ ВО НГСХА) | Method of assessing the degree of presence of phosphatidylserine on the surface of erythrocyte membranes |
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
RU2013117230A (en) | 2014-10-20 |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
Crescitelli et al. | Isolation and characterization of extracellular vesicle subpopulations from tissues | |
Gelibter et al. | The impact of storage on extracellular vesicles: A systematic study | |
Karimi et al. | Detailed analysis of the plasma extracellular vesicle proteome after separation from lipoproteins | |
Pretorius et al. | Erythrocytes and their role as health indicator: Using structure in a patient-orientated precision medicine approach | |
Carayon et al. | Proteolipidic composition of exosomes changes during reticulocyte maturation | |
Nguyen et al. | Regulation of phosphatidylserine exposure in red blood cells | |
Thompson et al. | Reduced lateral mobility of a fluorescent lipid probe in cholesterol-depleted erythrocyte membrane | |
WO2018070479A1 (en) | Method for recovering extracellular vesicles | |
RU2547573C2 (en) | Method for detecting phosphatidyl serine on erythrocyte membrane surface | |
Gaspar et al. | Simple and fast SEC-based protocol to isolate human plasma-derived extracellular vesicles for transcriptional research | |
Gorudko et al. | Binding of human myeloperoxidase to red blood cells: Molecular targets and biophysical consequences at the plasma membrane level | |
Churchman et al. | Serum albumin enhances the membrane activity of ZnO nanoparticles | |
KR20190012022A (en) | Method for isolating extracellular vesicles by hydrophobic interaction | |
KR20200139154A (en) | Lipoprotein cholesterol quantification method, quantitative reagent, and quantitative kit | |
Ahyayauch et al. | Effects of chronic and acute lead treatments on the biophysical properties of erythrocyte membranes, and a comparison with model membranes | |
Pelissier Vatter et al. | Recent advances in experimental models of breast cancer exosome secretion, characterization and function | |
RU2665171C2 (en) | Method for detecting phosphatidylserine on the erythrocyte membrane surface | |
Conde-Vancells et al. | Isolation of urinary exosomes from animal models to unravel noninvasive disease biomarkers | |
JP6652873B2 (en) | Prothrombin time measuring reagent, method for producing the same and method for measuring prothrombin time | |
KR20130041775A (en) | Method for avoiding influence of endogenous lipoprotein and reagent | |
RU2701520C1 (en) | Method of assessing the degree of presence of phosphatidylserine on the surface of erythrocyte membranes | |
EP2711712A1 (en) | Composition and kit for isolating vesicles and method of isolating the vesicles using the same | |
Koulov et al. | Biophysical studies of a synthetic mimic of the apoptosis‐detecting protein annexin v | |
Hermann et al. | Real-time live confocal fluorescence microscopy as a new tool for assessing platelet vitality | |
Dong et al. | Establishment of a method for measuring total complement activity based on a hemolysis system using own red blood cells |
Legal Events
Date | Code | Title | Description |
---|---|---|---|
MM4A | The patent is invalid due to non-payment of fees |
Effective date: 20160416 |