RU2545792C2 - Method of simultaneous detection of antibodies of class g to antigens of agents of torch-infections using immunochip - Google Patents
Method of simultaneous detection of antibodies of class g to antigens of agents of torch-infections using immunochip Download PDFInfo
- Publication number
- RU2545792C2 RU2545792C2 RU2014111098/15A RU2014111098A RU2545792C2 RU 2545792 C2 RU2545792 C2 RU 2545792C2 RU 2014111098/15 A RU2014111098/15 A RU 2014111098/15A RU 2014111098 A RU2014111098 A RU 2014111098A RU 2545792 C2 RU2545792 C2 RU 2545792C2
- Authority
- RU
- Russia
- Prior art keywords
- antibodies
- antigens
- microregions
- microplate
- well
- Prior art date
Links
Images
Landscapes
- Peptides Or Proteins (AREA)
- Investigating Or Analysing Materials By The Use Of Chemical Reactions (AREA)
- Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)
Abstract
Description
Изобретение относится к иммунологическим методам анализа и может быть использовано для массового скрининга инфекций TORCH-группы у новорожденных, беременных женщин и женщин, планирующих беременность.The invention relates to immunological methods of analysis and can be used for mass screening of infections of the TORCH group in newborns, pregnant women and women planning a pregnancy.
Предшествующий уровень техникиState of the art
Вирусные и бактериальные инфекции играют важную роль в патологии беременных, плода и новорожденных. Актуальность проблемы инфекций в пре- и перинатальной диагностике в последние годы в значительной степени возросла в связи с неблагоприятными социально-экономическими изменениями в жизни общества, которые проявляются в повышении риска инфицирования женщин в период беременности. Из множества внутриутробных инфекций была выделена группа заболеваний, вызывающих у плода стойкие структурные дефекты многих органов и систем, особенно центральной нервной системы. Для обозначения этой группы используется аббревиатура TORCH-комплекс, объединяющая следующие внутриутробные инфекции: токсоплазмоз, краснуху, цитомегалию, а также инфекции, вызванные вирусом простого герпеса. Некоторые исследователи существенно расширяют этот список, в частности, заболеваниями, передающимися половым путем (сифилис, хламидиоз, мико- и уреаплазмоз, гепатиты В и С и др.).Viral and bacterial infections play an important role in the pathology of pregnant women, the fetus and newborns. The relevance of the problem of infections in pre- and perinatal diagnosis in recent years has increased significantly due to adverse socio-economic changes in society, which are manifested in an increased risk of infection of women during pregnancy. Of the many intrauterine infections, a group of diseases was identified that caused the fetus to have persistent structural defects in many organs and systems, especially the central nervous system. To denote this group, the abbreviation TORCH-complex is used, combining the following intrauterine infections: toxoplasmosis, rubella, cytomegaly, as well as infections caused by the herpes simplex virus. Some researchers significantly expand this list, in particular, sexually transmitted diseases (syphilis, chlamydia, myco- and ureaplasmosis, hepatitis B and C, etc.).
Необходимость диагностики TORCH-инфекций у беременных сформулирована в приказе МЗ РФ №50 от 10.02.2003 г.«О совершенствовании акушерско-гинекологической помощи амбулаторно-поликлинических учреждениях». Несмотря на это, нерешенными остается еще ряд вопросов, актуальных для лабораторной диагностики TORCH-инфекций у беременных и новорожденных: отсутствие стандартов диагностики, сложность интерпретации полученных результатов.The need for the diagnosis of TORCH infections in pregnant women is formulated in the order of the Ministry of Health of the Russian Federation No. 50 dated 02.10.2003 “On improving obstetric and gynecological care in outpatient facilities”. Despite this, a number of issues that are relevant for laboratory diagnosis of TORCH infections in pregnant women and newborns remain unresolved: the lack of diagnostic standards, the difficulty of interpreting the results.
Лабораторная диагностика осуществляется путем прямого выявления самих возбудителей TORCH-инфекций в биоматериале, либо с использованием серологических методов, предназначенных для определения антител класса A, G и М к антигенам возбудителей инфекций TORCH-комплекса. Наибольшее диагностическое значение имеет детекция иммуноглобулинов класса М как показателя активности процесса, что может свидетельствовать об остром заболевании или реинфекции. Однако во многих случаях, в том числе при иммунной недостаточности при реинфекции, инфекционном процессе у новорожденных и пр., специфические IgM-антитела выявляются редко. В данном случае решающее значение в диагностическом плане имеет выявление антител класса G. Определение титра и авидности IgG-антител целесообразно не только с целью диагностики, но и с целью прогнозирования течения заболевания, оценки эффективности терапии и мониторинга.Laboratory diagnosis is carried out by directly identifying the causative agents of TORCH infections in the biomaterial, or using serological methods designed to determine antibodies of class A, G and M to the antigens of pathogens of the TORCH complex. The most diagnostic value is the detection of class M immunoglobulins as an indicator of the activity of the process, which may indicate an acute disease or reinfection. However, in many cases, including immune deficiency during reinfection, the infectious process in newborns, etc., specific IgM antibodies are rarely detected. In this case, the determination of class G antibodies is crucial in the diagnostic plan. Determining the titer and avidity of IgG antibodies is advisable not only for the purpose of diagnosis, but also for predicting the course of the disease, evaluating the effectiveness of therapy and monitoring.
В связи с тем, что используемые сегодня методы диагностики имеют ряд недостатков и ограничений в применении, необходимо их комплексное использование, представляющее собой длительную и дорогостоящую процедуру.Due to the fact that the diagnostic methods used today have a number of drawbacks and limitations in their application, their complex use is necessary, which is a lengthy and expensive procedure.
Также известно, что причиной тяжелых форм поражения детей, как правило, являются не моноинфекции, а ассоциированные вирусно-вирусные и вирусно-бактериальные инфекции, так называемые микст-инфекции.It is also known that the cause of severe forms of lesions in children, as a rule, is not mono-infections, but associated viral and bacterial viral infections, the so-called mixed infections.
Основным методом серологической диагностики является иммуноферментный анализ. В качестве теста, подтверждающего результаты исследования и позволяющего оценить реактивность того или иного класса антител к отдельным антигенам возбудителя инфекции, используют тест-системы в формате линейного иммуноблоттинга (ИБ) различных коммерческих фирм (например, «EUROIMMUN" и "MIKROGEN»). Однако метод ИБ не предусматривает объективной приборной регистрации результатов исследования, используется лишь в отдельных случаях в качестве подтверждающего теста и вследствие дороговизны анализа не может применяться для проведения массовых обследований.The main method of serological diagnosis is enzyme immunoassay. Test systems in the format of linear immunoblotting (IB) of various commercial companies (for example, EUROIMMUN and MIKROGEN) are used as a test to confirm the results of the study and to evaluate the reactivity of a particular class of antibodies to individual antigens of the pathogen. However, the IB method does not provide for objective instrumental recording of research results, it is used only in individual cases as a confirmatory test and, due to the high cost of analysis, cannot be used for mass examinations.
Разработка современных комплексов лабораторных средств диагностики инфекций TORCH-группы предусматривает применение методов и аппаратных решений, позволяющих при минимальных затратах времени и реагентов сохранить и повысить чувствительность и специфичность исследования. Это достигается комплексным использованием наряду с классическими методами анализа (ИФА - иммуноферментный анализ, ИБ - иммуноблоттинг и др.) скрининговых систем, позволяющих определять в исследуемом материале антитела одновременно к нескольким возбудителям. При этом способ детектирования должен быть адаптирован для проведения массовых обследований.The development of modern complexes of laboratory tools for diagnosing infections of the TORCH group involves the use of methods and hardware solutions that, with minimal time and reagents, save and increase the sensitivity and specificity of the study. This is achieved by complex use, along with classical methods of analysis (ELISA - enzyme-linked immunosorbent assay, IB - immunoblotting, etc.) screening systems that allow you to determine in the test material antibodies to several pathogens simultaneously. In this case, the detection method must be adapted for mass surveys.
На сегодняшний день известны наборы реагентов для проведения иммуноферментного анализа с целью определения антител того или иного класса (патент РФ №134329, патент РФ №134328) к токсоплазме, цитомегаловирусу, вирусу краснухи и герпеса 1 и 2 типов в одном анализе. В наборах используют смесь антигенов, иммобилизованных на твердой подложке, выявляя одновременно антитела ко всем 4 инфекциям в одной лунке.To date, kits of reagents for conducting an enzyme immunoassay are known to determine antibodies of one class or another (RF patent No. 134329, RF patent No. 134328) against toxoplasma, cytomegalovirus, rubella virus and herpes
Недостатком этих наборов является невозможность дифференцированного выявления маркеров отдельных возбудителей.The disadvantage of these kits is the impossibility of differentially identifying markers of individual pathogens.
Известен диагностический набор для многоаналитного Дот-иммуноанализа, включающий плоскую плотную подложку с нанесенными на ее поверхности антигенами, дополнительно блокированную неспецифическими природными или синтетическими полимерами; растворы для отмывок, разведения образца и конъюгата, конъюгат и систему проявления. При этом плотная подложка выполнена из непористого пластика, на поверхности которого нанесены антигены возбудителей TORCH-инфекций (Toxoplasma gondii, Chlamydia trachomatis, Rubella virus, Mycoplasma hominis, Ureaplasma urealyticum, Treponema pallidum, Cytomegalovirus, Herpes simplex virus-1), в качестве конъюгатов используют антитела к иммуноглобулинам G человека или стафилококковые белки А или G, связанные с каталитически активными солями золота или серебра (патент РФ 2298795, опубликован 10.05.2007).A known diagnostic kit for multi-analytic Dot immunoassay, including a flat dense substrate with antigens deposited on its surface, is additionally blocked by non-specific natural or synthetic polymers; solutions for washing, diluting the sample and conjugate, conjugate and development system. In this case, the dense substrate is made of non-porous plastic, on the surface of which the antigens of pathogens of TORCH infections (Toxoplasma gondii, Chlamydia trachomatis, Rubella virus, Mycoplasma hominis, Ureaplasma urealyticum, Treponema pallidum, Cytomegalovirus, Herpes simplex virus are applied) antibodies to human immunoglobulins G or staphylococcal proteins A or G associated with catalytically active salts of gold or silver (RF patent 2298795, published May 10, 2007).
Недостатками данного набора является:The disadvantages of this kit are:
1. Избыточность определения количества возбудителей восьми инфекций TORCH-группы (по нашим наблюдениям наиболее часто встречаемой комбинацией в клинике является токсоплазмоз, краснуха, цитомегаловирус, герпес первого и второго типа);1. The excess determination of the number of pathogens of eight infections of the TORCH group (according to our observations, the most common combination in the clinic is toxoplasmosis, rubella, cytomegalovirus, herpes of the first and second type);
2. Невозможность применения теста для определения антител к вирусу простого герпеса второго типа;2. The inability to use the test to determine antibodies to the herpes simplex virus of the second type;
3. Снижение точности анализа вследствие того, что результат анализа регистрируется лишь по одной точке на каждую инфекцию.3. The decrease in the accuracy of the analysis due to the fact that the result of the analysis is recorded only one point for each infection.
Известен способ одновременного детектирования антител класса G и М к возбудителям инфекций TORCH-комплекса (Чеканова Т.А., Маркелов М.Л., Пудова Е.А., Кирдяшкина Н.П., Судьина А.Е., Сажин А.И., Шипулин Г.А. "Иммуночипы - новый формат тест-систем для серологической диагностики инфекционных заболеваний", "Клиническая лабораторная диагностика", 2011, №10, с.3). Данный способ позволяет одновременно определять содержание антител класса G и М к 23 рекомбинантным аналогам антигенов 8 возбудителей TORCH-инфекций (вирусу краснухи, Эпштейн-Барра, цитомегаловирусу, парвовирусу B19, вирусу герпеса 1 и 2 типа, T. Gondii и Chlamydia trachomatis) в сыворотке крови. Все 23 рекомбинантных антигена сорбированы с помощью наноплоттеров для пьезоэлектрической микропечати в двух повторах на активированном предметном стекле (стеклянном слайде). Образующийся комплекс «антиген-антитело» выявляют взаимодействием конъюгата мультивидовых антител (анти-IgG и анти-IgM) с цианиновыми флуорофорами. Детекцию сигнала осуществляют с помощью многоканального флуоресцентного сканера.A known method for the simultaneous detection of class G and M antibodies to pathogens of the TORCH complex infections (Chekanova T.A., Markelov M.L., Pudova E.A., Kirdyashkina N.P., Sudyina A.E., Sazhin A.I. ., Shipulin GA "Immunochips - a new format of test systems for serological diagnosis of infectious diseases", "Clinical Laboratory Diagnostics", 2011, No. 10, p.3). This method allows you to simultaneously determine the content of class G and M antibodies to 23 recombinant antigen antigens of 8 pathogens of TORCH infections (rubella virus, Epstein-Barr virus, cytomegalovirus, parvovirus B19, herpes
Недостатком способа являются сложности в интерпретации результатов исследования из-за слишком большого числа антигенов, к которым определяются антитела. Кроме того, в данном анализе в качестве исследуемого образца может использоваться только сыворотка крови человека, что ограничивает возможности применения метода.The disadvantage of this method is the difficulty in interpreting the results of the study due to too many antigens to which antibodies are determined. In addition, in this analysis, only human blood serum can be used as a test sample, which limits the possibility of using the method.
Известен способ раздельного детектирования IgM- и IgG-антител к возбудителям TORCH-инфекций (Yi Liu, Fengling Yu, Haiyan Huang, Jinxiang Han, «Development of Recombinant Antigen Array for Simultaneous Detection of Viral Antibodies», «PLoSONE», vol. 8, 2013). Способ предназначен для выявления антител класса G или М в образцах сыворотки крови или спинномозговой жидкости (СМЖ). На активированные стеклянные слайды наносят рекомбинантные и пептидные антигены цитомегаловируса (pp150), вируса герпеса 1 типа (gG-1) и 2 типа (gG-2) и краснухи (смесь антигенов Е1, Е2 и core), а также человеческие иммуноглобулины G или М в пяти концентрациях. Результат анализа определяют как эмиссию флуоресцентной метки, связанной с антивидовыми антителами, которые связываются с комплексом, образующимся между антигенами иммуносорбента и антителами в исследуемом образце. Интенсивность флуоресценции измеряют на флуориметре.A known method for the separate detection of IgM and IgG antibodies to pathogens of TORCH infections (Yi Liu, Fengling Yu, Haiyan Huang, Jinxiang Han, "Development of Recombinant Antigen Array for Simultaneous Detection of Viral Antibodies", "PLoSONE", vol. 8, 2013). The method is intended to detect antibodies of class G or M in samples of blood serum or cerebrospinal fluid (CSF). Recombinant and peptide antigens of cytomegalovirus (pp150), herpes simplex virus type 1 (gG-1) and type 2 (gG-2) and rubella (a mixture of E1, E2 and core antigens), as well as human immunoglobulins G or M, are applied to activated glass slides in five concentrations. The result of the analysis is defined as the emission of a fluorescent label associated with antispecies antibodies that bind to the complex formed between the immunosorbent antigens and the antibodies in the test sample. Fluorescence intensity is measured on a fluorimeter.
Недостатком способа является снижение чувствительности анализа вследствие использования одного антигена для определения одной инфекции, в то время как антителообразование происходит к нескольким иммунодоминантным антигенам и преимущественно зависит от стадии инфекционного процесса. Кроме того, данный способ не предусматривает определение маркеров токсоплазмоза, что существенно ограничивает применение теста.The disadvantage of this method is the decrease in the sensitivity of the analysis due to the use of a single antigen to determine one infection, while antibody formation occurs to several immunodominant antigens and mainly depends on the stage of the infectious process. In addition, this method does not provide for the determination of toxoplasmosis markers, which significantly limits the use of the test.
Наиболее близким аналогом к настоящему изобретению является способ обнаружения антител класса G или М к иммунодоминантным антигенам возбудителей TORCH-инфекций (Т. Bacarese-Hamilton, L. Mezzasoma, A. Ardizzoni, F. Bistoni, A. Crisanti, «Serodiagnosis of infectious diseases with antigen microarrays», J Appl Microbiol. 2004; 96(1), pp.7-10). Способ позволяет выявлять антитела к пяти возбудителям (краснухе, токсоплазме, краснухе, герпесу 1 и 2 типа). Анализ осуществляют на активированных слайдах, на поверхности которых иммобилизовано пять антигенов в шести повторах, отрицательный контроль (миозин кролика) и человеческие иммуноглобулины М или G в четырех концентрациях, нанесенные в дублях. Для выявления антител G или М в качестве меток используют флуорофоры Alexa 546 и Alexa 594 соответственно, меченные антителами. Регистрацию результатов осуществляют с помощью флуоресцентного сканера.The closest analogue to the present invention is a method for detecting class G or M antibodies to immunodominant antigens of pathogens of TORCH infections (T. Bacarese-Hamilton, L. Mezzasoma, A. Ardizzoni, F. Bistoni, A. Crisanti, "Serodiagnosis of infectious diseases with antigen microarrays ", J Appl Microbiol. 2004; 96 (1), pp. 7-10). The method allows to detect antibodies to five pathogens (rubella, toxoplasma, rubella,
Недостатком способа является использование в качестве твердой подложки стеклянных слайдов с нанесенными на их поверхности антигенами, позволяющих осуществить последовательное детектирование антител: исследование в режиме «один тест - один анализ», что не отвечает требованиям скрининговых обследований, а также обладает меньшей эффективностью и большей длительностью.The disadvantage of this method is the use as a solid substrate of glass slides with antigens deposited on their surface, allowing sequential detection of antibodies: a study in the "one test - one analysis" mode, which does not meet the requirements of screening examinations, and also has lower efficiency and longer duration.
Цель и сущность изобретенияThe purpose and essence of the invention
Целью настоящего изобретения является создание способа одновременного детектирования иммуноглобулинов класса G к отдельным антигенам возбудителей инфекций TORCH-комплекса.The aim of the present invention is to provide a method for the simultaneous detection of class G immunoglobulins to individual antigens of pathogens of the TORCH complex.
Техническим результатом, достигаемым при использовании изобретения, является повышение точности, чувствительности и специфичности детектирования IgG-антител как маркеров TORCH-инфекций при их одновременном детектировании по сравнению с известными решениями.The technical result achieved by using the invention is to increase the accuracy, sensitivity and specificity of detection of IgG antibodies as markers of TORCH infections when they are simultaneously detected in comparison with known solutions.
Технический результат достигается тем, что в качестве твердой фазы для иммуносорбента используется полистироловый микропланшет из низко люминесцирующего сорта пластика.The technical result is achieved by the fact that a polystyrene microplate from a low-luminescent grade of plastic is used as the solid phase for the immunosorbent.
Технический результат достигается тем, что дискретные микрообласти наносятся на дно лунки микропланшета в виде по крайней мере двух микрозон.The technical result is achieved by the fact that discrete microregions are deposited on the bottom of the microplate well in the form of at least two microzones.
Технический результат достигается тем, что в качестве первого иммуноспецифического компонента используются смеси рекомбинантных антигенов.The technical result is achieved by the fact that as the first immunospecific component, mixtures of recombinant antigens are used.
Технический результат достигается также тем, что в качестве второго иммуноспецифического компонента используются моноклональные мышиные антитела.The technical result is also achieved by the fact that monoclonal murine antibodies are used as the second immunospecific component.
Технический результат достигается также последовательным применением биотилированных антител и конъюгата стрептавидина с Pt-копропорфирином.The technical result is also achieved by the consistent use of biotylated antibodies and conjugate of streptavidin with Pt-coproporphyrin.
Технический результат достигается также тем, что в качестве исследуемого образца для проведения анализа может использоваться как сыворотка крови, так и сухие пятна цельной крови.The technical result is also achieved by the fact that as a test sample for analysis, both blood serum and dry spots of whole blood can be used.
Технический результат достигается также тем, что в качестве антигенов применяют р30[SAG1], p29[GRA7], p35[GRA8] для выявления антител к Toxoplasmagondii, gB, Pp150 для выявления антител к ЦМВ, gG-1, gD-1 для выявления антител к ВПГ-1, gG-2, gD-2 для выявления антител кВПГ-2, E1, Е2 для выявления антител к вирусу краснухи.The technical result is also achieved by the fact that p30 [SAG1], p29 [GRA7], p35 [GRA8] are used as antigens to detect antibodies to Toxoplasmagondii, gB, Pp150 to detect antibodies to CMV, gG-1, gD-1 to detect antibodies to HSV-1, gG-2, gD-2 for the detection of antibodies kVPG-2, E1, E2 for the detection of antibodies to rubella virus.
Авторам не известны технические решения с заявляемой совокупностью признаков, следовательно, данное изобретение соответствует критерию новизны.The authors are not aware of technical solutions with the claimed combination of features, therefore, this invention meets the criterion of novelty.
Известные технические решения, используемые для определения IgG-антител, основаны на образовании иммунных комплексов между антигеном или антигенами четырех, пяти или восьми возбудителей инфекций, иммобилизованными на активированных слайдах, антителами класса G исследуемого образца (сыворотки крови или СМЖ) и биоспецифическими компонентами, включающими конъюгаты антител с различными флуоресцентными метками, с последующим детектированием эмиссии метки тем или иным способом.Known technical solutions used to determine IgG antibodies are based on the formation of immune complexes between an antigen or antigens of four, five or eight infectious agents immobilized on activated slides, class G antibodies of a test sample (blood serum or CSF) and biospecific components, including conjugates antibodies with various fluorescent labels, followed by detection of label emission in one way or another.
Предлагаемое техническое решение за счет использования микропланшетного формата исследования, применения нескольких биоспецифических реагентов в пределах одной микрозоны, а также последовательного введения биотин-стрептавидинового комплекса и высоко фосфоресцирующей метки, способа детектирования фосфоресцентного сигнала и оценки уровня искомых аналитов в совокупности с остальными признаками определяет возможность повышения точности и чувствительности анализа при минимальных временных затратах.The proposed technical solution through the use of a microplate format of the study, the use of several biospecific reagents within the same microzone, as well as the sequential introduction of a biotin-streptavidin complex and a highly phosphorescent label, a method for detecting a phosphorescent signal and assessing the level of the desired analytes together with other signs determines the possibility of increasing the accuracy and sensitivity analysis with minimal time.
Следовательно, предлагаемое изобретение обладает эффективностью по отношению к известным техническим решениям, является новым и неочевидным из уровня техники.Therefore, the present invention is effective in relation to the known technical solutions, is new and not obvious from the prior art.
Промышленная применимостьIndustrial applicability
Изобретение может быть использовано в здравоохранении, в частности для скрининга беременных женщин, новорожденных и детей с целью предупреждения и снижения риска развития внутриутробных и врожденных аномалий развития. Следовательно, предлагаемое изобретение соответствует критерию промышленной применимости.The invention can be used in health care, in particular for screening pregnant women, newborns and children in order to prevent and reduce the risk of intrauterine and congenital malformations. Therefore, the present invention meets the criterion of industrial applicability.
Описание иллюстрацийDescription of illustrations
На рис.1 представлен иммуносорбент - лунка микропланшета, сенсибилизированная антигенами и антителами, нанесенными в виде микрообластей. На рис.2, 3 и 4 представлены схемы различных стадий анализа детектирования антител класса G к антигенам пяти возбудителей инфекций TORCH-группы, где 1 - микрообласти для детектирования IgG-антител к Т. gondii, 2 - микрообласти для детектирования IgG-антител к цитомегаловирусу, 3 - микрообласти для детектирования IgG-антител к ВПГ 1 типа, 4 - микрообласти для детектирования IgG-антител к ВПГ 2 типа, 5 - микрообласти для детектирования IgG-антител к вирусу краснухи, 6 - человеческие IgG (10 мг/мл), 7 - человеческие IgG (50 мг/мл), 8 - человеческие IgG (100 мг/мл), 9 - лунка 96-луночного микропланшета, 10 - дно лунки, 11 - исследуемые IgG-антитела, 12 - антивидовые антитела, меченные биотином, 13 - конъюгат - стрептавидин - Pt-копропорфирин. На рис.5 представлен график зависимости величины сигнала фосфоресценции от концентрации IgG-антителиммуносорбента.Figure 1 shows an immunosorbent - a microplate well sensitized with antigens and antibodies applied as microregions. Figures 2, 3, and 4 show diagrams of the various stages of the analysis of the detection of class G antibodies to antigens of five TORCH group infection pathogens, where 1 are microregions for detecting IgG antibodies to T. gondii, 2 are microregions for detecting IgG antibodies to cytomegalovirus , 3 - microregions for detecting IgG antibodies to
Изобретение осуществляют следующим образом.The invention is as follows.
В образцах сыворотки крови одновременно детектируют наличие/отсутствие IgG-антител к антигенам возбудителей ToRCH-инфекций. Высокий титр антител свидетельствует об острой, подострой стадии инфекционного процесса или реинфекции. Низкий титр антител наблюдается при скрытом течении, начальной стадии инфекционного процесса, либо является показателем перенесенного заболевания.In the blood serum samples, the presence / absence of IgG antibodies to the antigens of ToRCH pathogens is simultaneously detected. A high titer of antibodies indicates an acute, subacute stage of the infectious process or reinfection. A low titer of antibodies is observed with a latent course, the initial stage of the infectious process, or is an indicator of the disease.
Схема детектирования антител класса G показана на рис.2, 3 и 4.The detection scheme for class G antibodies is shown in Figs. 2, 3, and 4.
На дне каждой лунки микропланшета формируют дискретные микрообласти, представляющие собой смеси рекомбинантных аналогов иммунодоминантных антигенов возбудителей инфекций TОRCH-группы:Discrete microregions are formed at the bottom of each well of the microplate, which are mixtures of recombinant analogues of immunodominant antigens of TORCH group infection pathogens:
Микрообласть 1 - смесь антигенов (p30[SAG1], p29[GRA7], p35[GRA8]) для выявления антител к Toxoplasmagondii;Microregion 1 - a mixture of antigens (p30 [SAG1], p29 [GRA7], p35 [GRA8]) to detect antibodies to Toxoplasmagondii;
Микрообласть 2 - смесь антигенов (gB, Pp150) для выявления антител кЦМВ;Microregion 2 - a mixture of antigens (gB, Pp150) to detect antibodies to CMC;
Микрообласть 3 - смесь антигенов (gG-1, gD-1) для выявления антител к ВПГ-1;Microregion 3 - a mixture of antigens (gG-1, gD-1) to detect antibodies to HSV-1;
Микрообласть 4 - смесь антигенов (gG-2, gD-2) для выявления антител кВПГ-2;Microregion 4 - a mixture of antigens (gG-2, gD-2) for the detection of antibodies kVPG-2;
Микрообласть 5 - смесь антигенов (Е1, Е2)для выявления антител к вирусу краснухи;Microregion 5 - a mixture of antigens (E1, E2) to detect antibodies to rubella virus;
Микрообласть 6 - человеческие иммуноглобулины класса G в концентрации 10 мг/мл;Microregion 6 - human immunoglobulins of class G at a concentration of 10 mg / ml;
Микрообласть 7 - человеческие иммуноглобулины класса G в концентрации 50 мг/мл;Microregion 7 - human immunoglobulins of class G at a concentration of 50 mg / ml;
Микрообласть 8 - человеческие иммуноглобулины класса G в концентрации 100 мг/мл для внутреннего контроля реакции и оценки работы компонентов анализа (внутренние калибраторы исследования).Microregion 8 - human immunoglobulins of class G at a concentration of 100 mg / ml for internal reaction control and evaluation of the analysis components (internal study calibrators).
Компоненты каждой микрообласти, содержащей смеси антигенов для отдельного возбудителя и IgG человека в трех концентрациях, иммобилизуют в двух повторах (дублях), что позволяет повысить точность анализа за счет снижения вариабельности и исключения возможности десорбции антигена. Таким образом, на дне каждой лунки микропланшета формируют 16 микрозон диаметром 0,5 мм (рис.1.).The components of each microregion containing a mixture of antigens for an individual pathogen and human IgG in three concentrations are immobilized in two replicates (duplicates), which improves the accuracy of the analysis by reducing variability and eliminating the possibility of antigen desorption. Thus, 16 microzones with a diameter of 0.5 mm are formed at the bottom of each well of a microplate (Fig. 1.).
В раствор для сенсибилизации добавляют глицерин с целью снижения скорости высыхания капель раствора в пределах микрообласти, что в свою очередь повышает равномерность и полноту адсорбции биоспецифических компонентов.Glycerin is added to the sensitization solution in order to reduce the drying rate of the solution droplets within the microregion, which in turn increases the uniformity and completeness of the adsorption of biospecific components.
При анализе сыворотки крови исследуемый образец предварительно разводят 1:100 в растворе для разведения образцов и вносят в сенсибилизированную лунку в объеме 100 мкл. При анализе сухих пятен крови бумажный диск диаметром 3,2 мм помещают в лунку и добавляют 100 мкл раствора для разведения исследуемых образцов. Анализ проводят в три стадии: 1 и 2 стадии - иммуноспецифические, 3 - детектирующая. На первой стадии антитела (при их наличии в исследуемом образце) специфически связываются с антигенами, иммобилизованными в виде дискретных микрообластей 1-10 на дне лунки (рис.2). После инкубирования несвязавшиеся компоненты реакции удаляют отмыванием микропланшета.When analyzing blood serum, the test sample is pre-diluted 1: 100 in a solution for diluting samples and introduced into a sensitized well in a volume of 100 μl. When analyzing dry blood stains, a paper disk with a diameter of 3.2 mm is placed in a well and 100 μl of a solution is added to dilute the test samples. The analysis is carried out in three stages: 1 and 2 stages - immunospecific, 3 - detecting. At the first stage, antibodies (if they are present in the test sample) specifically bind to antigens immobilized as discrete microregions 1-10 at the bottom of the well (Fig. 2). After incubation, unbound reaction components are removed by washing the microplate.
Для проведения второй стадии анализа в лунку микропланшета вносят реакционный раствор вторых иммуноспецифических компонентов, содержащий биотинилированные моноклональные антитела, образуя комплексы «антиген-антитело-конъюгат» на микрообластях 1-10 и комплексы «IgG-антитело - анти-IgG-антитело» на микрообластях 11-16. Биотинилирование антивидовых антител применяют для усиления сигнала иммунных комплексов, образующихся на специфических микрозонах (рис.3).To carry out the second stage of analysis, a reaction solution of the second immunospecific components containing biotinylated monoclonal antibodies is added to the microtiter well, forming antigen-antibody-conjugate complexes on microregions 1-10 and IgG-antibody-anti-IgG antibody complexes on microregions 11 -16. Biotinylation of anti-species antibodies is used to enhance the signal of immune complexes formed in specific microzones (Fig. 3).
Для проведения третьей стадии анализа в лунки микропланшета вносят детектирующий раствор, содержащий конъюгат стрептавидина с Pt-копропорфирином III (патент РФ №1707539), который образует фосфоресцирующие комплексы биотин-стрептавидин на специфических микрообластях на дне лунки (рис.4). Затем микропланшет отмывают и высушивают, после чего проводят детектирование эмиссии фосфоресценции с помощью фосфоресцентного сканера, осуществляющего последовательное сканирование сфокусированным лазерным лучом каждой микрообласти на дне лунки микропланшета.For the third stage of analysis, a detection solution containing a streptavidin conjugate with Pt-coproporphyrin III (RF patent No. 1707539) is introduced into the wells of the microplate, which forms phosphorescence complexes of biotin-streptavidin on specific microregions at the bottom of the hole (Fig. 4). Then, the microplate is washed and dried, after which phosphorescence emission is detected using a phosphorescence scanner, which sequentially scans with a focused laser beam of each microregion at the bottom of the microplate well.
По результатам анализа внутренних калибровочных проб строят кривую, представляющую собой линейную зависимость уровня сигнала фосфоресценции от концентрации IgG-антител, иммобилизованных в виде микрозон 11-16 (рис.5.)Based on the results of the analysis of internal calibration samples, a curve is constructed that represents a linear dependence of the phosphorescence signal level on the concentration of IgG antibodies immobilized in the form of microzones 11-16 (Fig. 5.)
При наличии в исследуемом образце антител к антигенам иммуносорбента они во время первой экспозиции образуют комплекс "антиген-антитело", который связывается затем с конъюгатом, а комплекс "антиген-антитело-конъюгат" выявляется фосфоресценцией при сканировании в биочип-анализаторе; интенсивность фосфоресценции при этом соответствует концентрации антител в исследуемой пробе.If there are antibodies to the antigens of the immunosorbent in the test sample, during the first exposure they form the antigen-antibody complex, which then binds to the conjugate, and the antigen-antibody-conjugate complex is detected by phosphorescence when scanned in a biochip analyzer; the phosphorescence intensity in this case corresponds to the concentration of antibodies in the test sample.
Пример 1. Детектирование антител класса G к цитомегаловирусу.Example 1. Detection of antibodies of class G to cytomegalovirus.
На поверхности дна лунки полистиролового 96-луночного микропланшета (Thermo Labsystems, Финляндия) иммобилизуют смеси рекомбинантных аналогов антигенов токсоплазмы, краснухи, цитомегаловируса, вируса простого герпеса 1 и 2 типа в виде дискретных областей. Для детектирования IgG-антител к каждому из перечисленных возбудителей формируют по 2 идентичные микрозоны диаметром 0,5 мм. Таким же образом сенсибилизируют дно лунки микропланшета человеческими иммуноглобулинами G в трех концентрациях, по 2 микрозоны на каждую концентрацию. Таким образом, на дне каждой лунки микропланшета формируют 16 микрообластей. Для этого с помощью роботинизированного прибора для печатания чипов (наноплоттера) наносят в определенные зоны дна лунки микрокапли растворов соответствующих иммуноспецифических компонентов: IgG-антител человека (в концентрациях 10, 50 и 100 мг/мл) и антигенов (в концентрации 0,05 мг/мл) в растворе для сенсибилизации (0,01 М фосфатно-солевой раствор, pH - 7,2). Для снижения скорости высыхания капель в раствор для сорбции добавляют 5% глицерина (Sigma). Микропланшет инкубируют в течение 24 ч при 4°C, затем промывают и обрабатывают блокирующим раствором (0,05 М трис-HCl, pH 7,75, 1% БСА) в течение 1 часа при 37°С. После этого блокирующий раствор удаляют и высушивают микропланшет в течение 2 часов при комнатной температуре.Mixtures of recombinant analogs of toxoplasma antigens, rubella, cytomegalovirus, herpes
Для проведения анализа сыворотки крови предварительно разводят 1:100 в фосфатно-солевом буферном растворе (0,01 М, pH 7,4, 0,5% БСА, 0,05% азида натрия, 0,01% ТВИН-20) и по 100 мкл вносят в лунки иммуносорбента. При анализе сухого пятна крови бумажные диски диаметром 3,2 мм помещают в лунки и добавляют 100 мкл того же раствора, универсального для всех исследований содержания IgG-антител. Контрольные образцы, содержащие и не содержащие иммуноглобулины класса G к цитомегаловирусу (или к любому другому возбудителю), вносят в лунки микропланшета без предварительного разведения в объеме 100 мкл. Исследуемые пробы и контрольные образцы проверяют на наличие/отсутствие антител класса G к цитомегаловирусу, используя коммерческие монотесты («ИФА-ЦМВ-IgG», ЗАО «ЭКОлаб», и «CMV-IgG-ELISA», Medac).For blood serum analysis, 1: 100 is preliminarily diluted in phosphate-buffered saline (0.01 M, pH 7.4, 0.5% BSA, 0.05% sodium azide, 0.01% TWIN-20) and 100 μl is added to the immunosorbent wells. When analyzing a dry blood stain, paper disks with a diameter of 3.2 mm are placed in the wells and 100 μl of the same solution, universal for all studies of the content of IgG antibodies, is added. Control samples containing and not containing class G immunoglobulins to cytomegalovirus (or to any other pathogen) are added to the wells of a microplate without preliminary dilution in a volume of 100 μl. The test samples and control samples are checked for the presence / absence of class G antibodies to cytomegalovirus using commercial monotests (IFA-CMV-IgG, CJSC ECOlab, and CMV-IgG-ELISA, Medac).
Микропланшет выдерживают в течение 2 часов на шейкере при 25°C и 720 об/мин, после чего 3 раза отмывают промывочным буферным раствором (фосфатно-солевой буферный раствор, pH 6,4, 0,0023% натрия фосфорно-кислого 1-замещенного 2-водного, 0,03331% натрия 2-замещенного 12-водного, 0,2125% хлорида натрия, 0,0125% ТВИН-20; 25-кратный концентрат). Затем в лунки планшета вносят раствор биотинилированных антител (Biotin N-succinimidylester, Fluka, Швейцария) в концентрации 750 нг/мл в реакционном буфере (0,05 М трис-HCl, pH 7,75, 0,87% хлорида натрия, 0,5% БСА, 0,05 азида натрия, 0,01% ТВИН-20). Микропланшет выдерживают планшет 1 час при 25°C на шейкере (720 об/мин) и затем 3 раза отмывают промывочным буферным раствором. После чего в лунки вносят по 30 мкл раствора конъюгата стрептавидина с Pt-копропорфирином в концентрации 333 нг/мл в реакционном буфере (0,05 М трис-HCl, pH 7,75, 0,87% хлорида натрия, 0,5% БСА, 0,05 азида натрия, 0,01% ТВИН-20). Микропланшет 15 мин инкубируют на шейкере (720 об/мин) при 25°C, после чего лунки 3 раза промывают промывочным буферным раствором и 3 раза дистиллированной водой. Планшет подсушивают в течение 1 ч при комнатной температуре и регистрируют результаты анализа с помощью фосфоресцентного биочип-анализатора в режиме возбуждения на длине 532 нм с линейным разрешением 15-20 мкм и постоянной времени затухания сигнала 80 мкс непосредственно с твердой фазы дна лунок микропланшета. Детекцию сигнала осуществляют путем пошагового сканирования площадки диаметром около 1 мм. С помощью компьютерной программы для каждого исследуемого маркера автоматически рассчитывается среднее число фотоимпульсов по специфическим для маркера микрообластям.The microplate is kept for 2 hours on a shaker at 25 ° C and 720 rpm, after which it is washed 3 times with wash buffer (phosphate-buffered saline, pH 6.4, 0.0023% sodium phosphoric acid 1-substituted 2 -aqueous, 0.03331% sodium 2-substituted 12-aqueous, 0.2125% sodium chloride, 0.0125% TWIN-20; 25-fold concentrate). Then, a solution of biotinylated antibodies (Biotin N-succinimidylester, Fluka, Switzerland) in a concentration of 750 ng / ml in reaction buffer (0.05 M Tris-HCl, pH 7.75, 0.87% sodium chloride, 0, 5% BSA, 0.05 sodium azide, 0.01% TWIN-20). The microplate is kept on the plate for 1 hour at 25 ° C on a shaker (720 rpm) and then washed 3 times with wash buffer. Then, 30 μl of a solution of streptavidin conjugate with Pt-coproporphyrin at a concentration of 333 ng / ml in reaction buffer (0.05 M Tris-HCl, pH 7.75, 0.87% sodium chloride, 0.5% BSA) are added to the wells. , 0.05 sodium azide, 0.01% TWIN-20). The microplate is incubated for 15 min on a shaker (720 rpm) at 25 ° C, after which the wells are washed 3 times with wash buffer and 3 times with distilled water. The tablet is dried for 1 h at room temperature and the analysis results are recorded using a phosphorescence biochip analyzer in the excitation mode at a length of 532 nm with a linear resolution of 15-20 μm and a signal attenuation time constant of 80 μs directly from the solid phase of the bottom of the microplate wells. Signal detection is carried out by step-by-step scanning of a site with a diameter of about 1 mm. Using a computer program for each marker under investigation, the average number of photopulses for the marker-specific microregions is automatically calculated.
Полученные значения интенсивностей сигнала от микрообластей, содержащих в качестве биоспецифических компонентов человеческие IgG-антитела, используют для построения калибровочной кривой (рис.5). Как видно из представленного графика, нарастание сигнала от данных микрообластей при увеличении концентрации IgG-антител в составе микрозон имеет линейный характер, что свидетельствует об адекватной работе компонентов и высокой чувствительности анализа при возможности измерения маркера в низких концентрациях. Вместе с тем, вариации значений интенсивности сигнала от микрообластей, содержащих антигены других возбудителей, не превышают значения порогового уровня, рассчитанного, исходя из формулы: Cutoff=ИФср+3д, гдеThe obtained signal intensities from microregions containing human IgG antibodies as biospecific components are used to construct a calibration curve (Fig. 5). As can be seen from the graph, the increase in the signal from these microregions with an increase in the concentration of IgG antibodies in the composition of the microzones is linear, which indicates the adequate operation of the components and high sensitivity of the analysis when it is possible to measure the marker at low concentrations. At the same time, variations in the signal intensity values from microregions containing antigens of other pathogens do not exceed the threshold level calculated based on the formula: Cutoff = IFsr + 3d, where
Cutoff - интенсивность сигнала микрообластей, содержащих антигены;Cutoff - signal intensity of microregions containing antigens;
ИФср - средняя величина фосфоресценции контрольного образца, не содержащего IgG-антитела, измеренная в импульсах;IFRS - the average value of phosphorescence of a control sample that does not contain IgG antibodies, measured in pulses;
д - среднее квадратичное отклонение.d is the standard deviation.
Это показывает высокую специфичность способа, поскольку не наблюдается перекрестных взаимодействий исследуемого аналита с другими микрообластями (табл.1). Данные результаты коррелируют с результатами исследования с помощью коммерческих иммуноферментных монотестов (табл.2).This shows the high specificity of the method, since no cross interactions of the analyte under study with other microregions are observed (Table 1). These results correlate with the results of the study using commercial enzyme-linked immunosorbent monotests (table 2).
Пример 2. Детектирование антител класса G к смеси антигенов (gD-1 и gG-1) вируса простого герпеса 1 типа.Example 2. Detection of class G antibodies to a mixture of antigens (gD-1 and gG-1) of herpes
В лунки микропланшета, сенсибилизированного, как описано в примере 1, вносят предварительно подготовленные исследуемые образцы в виде сыворотки крови или пятен цельной крови на бумажных дисках, а также контрольные пробы, содержащие и не содержащие IgG-антитела к ВПГ 1 типа, в объеме 100 мкл. Исследуемые образцы и контрольные пробы проверяют на наличие/отсутствие антител класса G к вирусу простого герпеса 1 типа, используя коммерческие монотесты («ИФА-ВПГ-1-IgG», ЗАО «ЭКОлаб», и «HSV-1-IgG-ELISA», Medac).In the wells of the microplate sensitized as described in Example 1, pre-prepared test samples were added in the form of blood serum or whole blood stains on paper disks, as well as control samples containing and not containing IgG antibodies to
Ход и детектирование результатов анализа осуществляют так, как описано в примере 1. Результаты исследования, приведенные в таблице 3, демонстрируют получение специфических сигналов от образцов, содержащих IgG-антитела к ВПГ 1 типа, причем уровень их фосфоресценции значительно отличается от отрицательных проб и сигналов от других микрообластей.The progress and detection of the analysis results is carried out as described in example 1. The results of the study, shown in table 3, demonstrate the receipt of specific signals from samples containing IgG antibodies to
Пример 3. Детектирование антител класса G к смеси антигенов (gD-2 и gG-2) вируса простого герпеса 2 типа.Example 3. Detection of class G antibodies to a mixture of antigens (gD-2 and gG-2) of herpes
В лунки микропланшета, сенсибилизированного, как описано в примере 1, вносят предварительно подготовленные исследуемые образцы в виде сыворотки крови или пятен цельной крови на бумажных дисках, а также контрольные пробы, содержащие и не содержащие IgG-антитела к ВПГ 2 типа, в объеме 100 мкл. Исследуемые образцы и контрольные пробы проверяют на наличие/отсутствие антител класса G к вирусу простого герпеса 1 типа, используя коммерческие монотесты («ИФА-ВГГГ-2-IgG», ЗАО «ЭКОлаб», и «HSV-2-IgG-ELISA», Medac).In the wells of the microplate sensitized as described in Example 1, pre-prepared test samples were added in the form of blood serum or whole blood stains on paper discs, as well as control samples containing and not containing IgG antibodies to
Стадии анализа, компоненты и детектирование результатов осуществляют так же, как описано в примере 1.The analysis stages, components and detection of the results are carried out as described in example 1.
Из результатов исследования, приведенных в таблице 4, видно, что при анализе образцов, содержащих IgG-антитела к ВПГ 2 типа, способ позволяет регистрировать уровень сигнала от соответствующих микрообластей, отличающийся от результатов анализа отрицательных проб и превосходящий пороговый уровень, что демонстрирует высокую чувствительность способа. При этом наблюдается отсутствие значимых сигналов на микрообластях, специфичных к другим маркерам, что подтверждает специфичность исследования.From the results of the study, shown in table 4, it is seen that when analyzing samples containing IgG antibodies to
Пример 4. Детектирование антител класса G к смеси антигенов (p29, p30, p35) Toxoplasma gondii.Example 4. Detection of antibodies of class G to a mixture of antigens (p29, p30, p35) Toxoplasma gondii.
В лунки микропланшета, сенсибилизированного, как описано в примере 1, вносят предварительно подготовленные исследуемые образцы в виде сыворотки крови или пятен цельной крови на бумажных дисках, а также контрольные пробы, содержащие и не содержащие IgG-антитела к Т. gondii, в объеме 100 мкл. Исследуемые образцы и контрольные пробы проверяют на наличие/отсутствие антител класса G к токсоплазме, используя коммерческие монотесты («ИФА-Токсо-IgG», ЗАО «ЭКОлаб», и «Toxoplasma-IgG-ELISA», Medac).In the wells of the microplate sensitized as described in Example 1, pre-prepared test samples in the form of blood serum or whole blood stains on paper discs, as well as control samples containing and not containing IgG antibodies to T. gondii, were added in a volume of 100 μl . The test samples and control samples are checked for the presence / absence of class G antibodies to toxoplasma using commercial monotests (IFA-Toxo-IgG, CJSC EKOlab, and Toxoplasma-IgG-ELISA, Medac).
Ход и детектирование результатов анализа осуществляют так, как описано в примере 1. Результаты исследования, приведенные в таблице 5, демонстрируют получение высоких сигналов от образцов, содержащих IgG-антитела к токсоплазме, при этом значения интенсивности сигнала от микрообластей, соответствующих другим возбудителям, не превышает порогового уровня, что подтверждает отсутствие перекрестных реакций и специфичность анализа.The progress and detection of the analysis results is carried out as described in example 1. The results of the study, shown in table 5, demonstrate the receipt of high signals from samples containing IgG antibodies to toxoplasma, while the signal intensity from microregions corresponding to other pathogens does not exceed threshold level, which confirms the absence of cross-reactions and the specificity of the analysis.
Пример 5. Детектирование антител класса G к смеси антигенов (Е1 и Е2) краснухи.Example 5. Detection of antibodies of class G to a mixture of rubella antigens (E1 and E2).
В лунки микропланшета, сенсибилизированного, как описано в примере 1, вносят предварительно подготовленные исследуемые образцы в виде сыворотки крови или пятен цельной крови на бумажных дисках, а также контрольные пробы, содержащие и не содержащие IgG-антитела к вирусу краснухи, в объеме 100 мкл. Исследуемые образцы и контрольные пробы проверяют на наличие/отсутствие антител класса G к токсоплазме, используя коммерческие монотесты («ИФА-Краснуха-IgG», ЗАО «ЭКОлаб»).Pre-prepared test samples in the form of blood serum or whole blood stains on paper discs, as well as control samples containing and not containing rubella virus IgG antibodies, were added to the wells of the microplate sensitized as described in Example 1. The test samples and control samples are checked for the presence / absence of antibodies of class G to toxoplasma using commercial monotests (IFA-Rubella-IgG, CJSC ECOlab).
Стадии анализа, компоненты и детектирование результатов осуществляют так же, как описано в примере 1.The analysis stages, components and detection of the results are carried out as described in example 1.
Из результатов исследования, приведенных в таблице 6, видно, что при анализе образцов, содержащих IgG-антитела к вирусу краснухи, способ позволяет регистрировать уровень сигнала от соответствующих микрообластей, отличающийся от результатов анализа отрицательных проб и превосходящий пороговый уровень, что демонстрирует высокую чувствительность способа. При этом наблюдается отсутствие значимых сигналов на микрообластях, специфичных к другим маркерам, что подтверждает специфичность исследования.From the results of the study, shown in table 6, it is seen that when analyzing samples containing IgG antibodies to rubella virus, the method allows you to record the signal level from the corresponding microregions, which differs from the results of the analysis of negative samples and exceeds the threshold level, which demonstrates the high sensitivity of the method. At the same time, there is a lack of significant signals on microregions specific to other markers, which confirms the specificity of the study.
Как видно из примеров 1-5, способ позволяет получить высокую чувствительность и специфичность при одновременном детектировании IgG-антител к каждому из пяти возбудителей TORCH-инфекций.As can be seen from examples 1-5, the method allows to obtain high sensitivity and specificity while detecting IgG antibodies to each of the five causative agents of TORCH infections.
Пример 6. Одновременное определение антител класса G к пяти возбудителям инфекций TORCH-комплекса.Example 6. Simultaneous determination of antibodies of class G to five pathogens of infections of the TORCH complex.
Способ осуществляют, как описано в примерах 1-5. В качестве исследуемых проб используют контрольные сыворотки и клиническиеобразцы, предварительно аттестованные с помощью иммуноферментных монотестов «ИФА-ЦМВ-IgG», «ИФА-ВПГ-1-IgG», «ИФА-ВПГ-2-IgG», «ИФА-Токсо-IgG», «ИФА-Краснуха-IgG» (ЗАО «ЭКОлаб»).The method is carried out as described in examples 1-5. As the studied samples, control sera and clinical samples pre-certified by ELISA-ELISA-CMV-IgG, IFA-HSV-1-IgG, IFA-HSV-2-IgG, IFA-Toxo-IgG "," IFA-Rubella-IgG "(CJSC" EKOlab ").
Результаты исследования контрольных проб и клинических образцов приведены в таблице 7. Коэффициент корреляции оценок образцов при исследовании в ИФА и представленным способом составил 98%. Исследование образцов №1-10 (сыворотки здоровых новорожденных) дало отрицательные результаты по IgG-антителам к возбудителям пяти TORCH-инфекций. В образцах №11-30 выявлено наличие антител класса G к антигенам того или иного возбудителя, или к антигенам нескольких возбудителей в различных титрах (табл.7).The results of the study of control samples and clinical samples are shown in table 7. The correlation coefficient of the estimates of the samples during the study in ELISA and the presented method was 98%. The study of samples No. 1-10 (serum of healthy newborns) gave negative results for IgG antibodies to the causative agents of five TORCH infections. In samples No. 11-30, the presence of class G antibodies to antigens of one or another pathogen, or to antigens of several pathogens in various titers was revealed (Table 7).
Таким образом, проведенное предложенным способом исследование обеспечило получение адекватных результатов по выявлению IgG-антител. Способ позволяет на основании исследования одного образца охарактеризовать его по спектру антител класса G одновременно на пять TORCH-инфекций с высокой степенью специфичности и точности.Thus, the study carried out by the proposed method provided adequate results for the detection of IgG antibodies. The method allows, based on the study of one sample, to characterize it by the spectrum of class G antibodies simultaneously for five TORCH infections with a high degree of specificity and accuracy.
Применение предложенного способа может существенно повысить эффективность пренатального скрининга.The application of the proposed method can significantly increase the effectiveness of prenatal screening.
типаHSV 1
of
Claims (8)
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
RU2014111098/15A RU2545792C2 (en) | 2014-03-25 | 2014-03-25 | Method of simultaneous detection of antibodies of class g to antigens of agents of torch-infections using immunochip |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
RU2014111098/15A RU2545792C2 (en) | 2014-03-25 | 2014-03-25 | Method of simultaneous detection of antibodies of class g to antigens of agents of torch-infections using immunochip |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
RU2014111098A RU2014111098A (en) | 2014-07-20 |
RU2545792C2 true RU2545792C2 (en) | 2015-04-10 |
Family
ID=51215425
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
RU2014111098/15A RU2545792C2 (en) | 2014-03-25 | 2014-03-25 | Method of simultaneous detection of antibodies of class g to antigens of agents of torch-infections using immunochip |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
RU (1) | RU2545792C2 (en) |
Families Citing this family (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN106501528A (en) * | 2016-10-27 | 2017-03-15 | 杭州量康科技有限公司 | Based on the method that Dried blood spots detect ToRCH10 item antibody |
Citations (5)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
RU2298795C2 (en) * | 2004-03-29 | 2007-05-10 | Федеральное государственное учреждение науки "Государственный научный центр вирусологии и биотехнологии "Вектор" Федеральной службы по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека (ФГУН ГНЦ ВБ "Вектор" Роспотребнадзора) | Multipurpose blood serum analysis kit for simultaneously determining specific antibodies to torch infection pathogens by applying immunoassay method |
US20080118911A1 (en) * | 2004-08-27 | 2008-05-22 | Gerhard Hermann | Test Device for the In-Vitro Diagnosis of Multi-Analyte Tests and Use Thereof |
CN201096783Y (en) * | 2007-11-06 | 2008-08-06 | 山东省医药生物技术研究中心 | Immune layer separation testing paper for detecting ToRCH infection |
RU2440579C2 (en) * | 2009-10-28 | 2012-01-20 | Государственное образовательное учреждение высшего профессионального образования "Уральская государственная медицинская академия Федерального агентства по здравоохранению и социальному развитию" (ГОУ ВПО УГМА Росздрава) | Method of diagnosing lingering version of jaundice clinical course in newborns and children of first year of life |
RU134329U1 (en) * | 2013-07-17 | 2013-11-10 | Сейфаддин Гашим Оглы Марданлы | TEST KIT FOR IMMUNOLOGICAL ANALYSIS OF CLASS G ANTIBODIES OF TORCH GROUP INFECTIOUS ANGELIC AGENTS |
-
2014
- 2014-03-25 RU RU2014111098/15A patent/RU2545792C2/en not_active IP Right Cessation
Patent Citations (5)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
RU2298795C2 (en) * | 2004-03-29 | 2007-05-10 | Федеральное государственное учреждение науки "Государственный научный центр вирусологии и биотехнологии "Вектор" Федеральной службы по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека (ФГУН ГНЦ ВБ "Вектор" Роспотребнадзора) | Multipurpose blood serum analysis kit for simultaneously determining specific antibodies to torch infection pathogens by applying immunoassay method |
US20080118911A1 (en) * | 2004-08-27 | 2008-05-22 | Gerhard Hermann | Test Device for the In-Vitro Diagnosis of Multi-Analyte Tests and Use Thereof |
CN201096783Y (en) * | 2007-11-06 | 2008-08-06 | 山东省医药生物技术研究中心 | Immune layer separation testing paper for detecting ToRCH infection |
RU2440579C2 (en) * | 2009-10-28 | 2012-01-20 | Государственное образовательное учреждение высшего профессионального образования "Уральская государственная медицинская академия Федерального агентства по здравоохранению и социальному развитию" (ГОУ ВПО УГМА Росздрава) | Method of diagnosing lingering version of jaundice clinical course in newborns and children of first year of life |
RU134329U1 (en) * | 2013-07-17 | 2013-11-10 | Сейфаддин Гашим Оглы Марданлы | TEST KIT FOR IMMUNOLOGICAL ANALYSIS OF CLASS G ANTIBODIES OF TORCH GROUP INFECTIOUS ANGELIC AGENTS |
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
RU2014111098A (en) | 2014-07-20 |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
JP5826917B2 (en) | Immunoassay | |
Ernst et al. | Technical considerations to development of serological tests for SARS-CoV-2 | |
US8338189B2 (en) | Detection of biomarkers and biomarker complexes | |
US20210088517A1 (en) | MULTIPLEX HIGH-THROUGHPUT FLOW CYTOMETRY DETECTION OF SARS-COV-2-SPECIFIC IgG, IgA AND IgM | |
US11592442B2 (en) | Control marker for implementing analysis methods on spots | |
KR20140007449A (en) | Method for measuring myocardial troponin | |
WO2003081240A1 (en) | Method of judging viral infection | |
Yousefi et al. | Long-term persistence of anti-SARS-COV-2 IgG antibodies | |
US6174667B1 (en) | Bovine viral diarrhea virus serum antigen capture | |
CN108398554B (en) | anti-TORCH-IgM antibody spectrum chip, preparation method thereof and TORCH detection kit | |
CN108398564B (en) | anti-TORCH-IgG type antibody spectrum chip, preparation method thereof and TORCH detection kit | |
JP6810055B2 (en) | How to reuse test probes and reagents in immunoassay | |
Rahman et al. | Discovery of human-specific immunodominant Chlamydia trachomatis B cell epitopes | |
RU2545792C2 (en) | Method of simultaneous detection of antibodies of class g to antigens of agents of torch-infections using immunochip | |
US20170030901A1 (en) | Controls for implementing multiplex analysis methods | |
RU2298795C2 (en) | Multipurpose blood serum analysis kit for simultaneously determining specific antibodies to torch infection pathogens by applying immunoassay method | |
US20210318311A1 (en) | Simultaneous detection of humoral and inflammatory biomarkers | |
KR20190059089A (en) | Method for diagnosing rheumatoid arthritis based on lateral flow assay using anti-CCP antibody and Rheumatoid Factor | |
WO2021202414A1 (en) | Multianalyte test for immune response to sars-cov-2 virus leading to covid-19 | |
CZ289582B6 (en) | Method of detecting active antibody production | |
WO2020241443A1 (en) | Method and reagent for measuring thyroglobulin | |
Gouriet et al. | Comparison of the new InoDiag automated fluorescence multiplexed antigen microarray to the reference technique in the serodiagnosis of atypical bacterial pneumonia | |
Kaur et al. | Pull Down Assay-Based Protein Analysis | |
Jiang et al. | Protein arrays based on biotin-streptavidin system for the simultaneous detection of TORCH infections | |
JPH0712816A (en) | Bio-substance measuring method utilizing specific bonding reaction |
Legal Events
Date | Code | Title | Description |
---|---|---|---|
HZ9A | Changing address for correspondence with an applicant | ||
MM4A | The patent is invalid due to non-payment of fees |
Effective date: 20160326 |