RU2542390C1 - NUTRIENT MEDIUM FOR DETERMINING ANTIBIOTIC SUSCEPTIBILITY OF Legionella pneumophila - Google Patents

NUTRIENT MEDIUM FOR DETERMINING ANTIBIOTIC SUSCEPTIBILITY OF Legionella pneumophila Download PDF

Info

Publication number
RU2542390C1
RU2542390C1 RU2014100517/10A RU2014100517A RU2542390C1 RU 2542390 C1 RU2542390 C1 RU 2542390C1 RU 2014100517/10 A RU2014100517/10 A RU 2014100517/10A RU 2014100517 A RU2014100517 A RU 2014100517A RU 2542390 C1 RU2542390 C1 RU 2542390C1
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
medium
legionella
potassium phosphate
gelatin
cultures
Prior art date
Application number
RU2014100517/10A
Other languages
Russian (ru)
Inventor
Александр Иванович Шелохович
Ольга Владимировна Маркина
Георгий Давидович Харабаджахян
Елена Юрьевна Люкшина
Диана Игоревна Симакова
Елена Павловна Ульрих
Original Assignee
Федеральное казенное учреждение здравоохранения "Ростовский-на-Дону ордена Трудового Красного Знамени научно-исследовательский противочумный институт" Федеральной службы по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Федеральное казенное учреждение здравоохранения "Ростовский-на-Дону ордена Трудового Красного Знамени научно-исследовательский противочумный институт" Федеральной службы по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека filed Critical Федеральное казенное учреждение здравоохранения "Ростовский-на-Дону ордена Трудового Красного Знамени научно-исследовательский противочумный институт" Федеральной службы по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека
Priority to RU2014100517/10A priority Critical patent/RU2542390C1/en
Application granted granted Critical
Publication of RU2542390C1 publication Critical patent/RU2542390C1/en

Links

Abstract

FIELD: biotechnology.
SUBSTANCE: nutrient medium comprises enzyme-autolyzate of cattle spleen, monosubstituted potassium phosphate, disubstituted potassium phosphate, potassium gluconate, mesoinosite, soluble starch, gelatin, L-cysteine, iron (III) sodium salt, high-grade ink and distilled water in a predetermined ratio of components.
EFFECT: invention enables to improve the accuracy of determining of antibiotic susceptibility of cultures of legionellosis causative agent.
3 tbl 8 ex

Description

Предлагаемое изобретение относится к медицинской микробиологии, а именно к получению плотной питательной среды, с помощью которой возможно определение антибиотикочувствительности культур возбудителя легионелеза - Legionella pneumophila.The present invention relates to medical microbiology, namely to obtain a dense nutrient medium with which it is possible to determine the antibiotic sensitivity of Legionella pathogen cultures - Legionella pneumophila.

Общепринятой средой для определения антибиотикочувствительности подавляющего большинства патогенных бактериальных видов является среда Мюллер-Хинтона (The Oxoid Manual, 1976, p.193), содержащая, г/л:. агар Дифко - 10; настой из говяжьего мяса - 300; гидролизат казеина - 17,5; крахмал растворимый - 1,5; дистиллированную воду до 1 л при pH 7,4.A common medium for determining the antibiotic sensitivity of the vast majority of pathogenic bacterial species is Muller-Hinton medium (The Oxoid Manual, 1976, p. 193), containing, g / l :. agar Difco - 10; beef meat infusion - 300; casein hydrolyzate - 17.5; soluble starch - 1.5; distilled water up to 1 liter at pH 7.4.

Однако легионеллы на данной среде, в силу особенностей своего метаболизма, даже при введении различных добавок растут плохо, поэтому среда Мюллер-Хинтона для изучения антибиотикочувствительности легионелл не применяется.However, legionella on this medium, due to the nature of their metabolism, do not grow well even with various additives, therefore Muller-Hinton medium is not used to study the antibiotic sensitivity of legionella.

За прототип выбрана питательная среда для выращивания и выделения легионелл среда ВСУЕАά (см. WHO. Legionella and prevention of legionellesis. WC 200. WHO. 2007), которая имеет следующий состав, г/л: дрожжевой экстракт - 10,0; агар Дифко 13,0; уголь Норит N - 2,0; ACES - 10; альфа-кетоглютаровая кислота - 1,0; L-цистеин - 0,4; пирофосфат железа - 0,25; глицин - 3,0; циклогексимид - 80,0-100,0 мг/л; ванкомицин - 1,0 мг/л; полимиксин В 80-100 тыс. ЕД/л; дистилированная вода до 1 л при pH 7,1.For the prototype, a nutrient medium was selected for the cultivation and isolation of Legionella BCUEA medium (see WHO. Legionella and prevention of legionellesis. WC 200. WHO. 2007), which has the following composition, g / l: yeast extract - 10.0; Difco agar 13.0; coal Norit N - 2,0; ACES - 10; alpha-ketoglutaric acid - 1.0; L-cysteine - 0.4; iron pyrophosphate - 0.25; glycine - 3.0; cycloheximide - 80.0-100.0 mg / l; vancomycin - 1.0 mg / l; polymyxin B 80-100 thousand units / l; distilled water up to 1 liter at pH 7.1.

Недостатком прототипа является то, что легионеллы весьма чувствительны к перекисным соединениям и рост единичных вирулентных клеток возбудителя на данной среде возможен только при наличии в среде высокоактивного адсорбента, блокирующего действие свободных радикалов, - активированого угля, приготовленного по специальной технологии.The disadvantage of the prototype is that legionella are very sensitive to peroxide compounds and the growth of single virulent pathogen cells in this medium is possible only if the medium has a highly active adsorbent that blocks the action of free radicals - activated carbon prepared by special technology.

Однако уголь сильно адсорбирует многие антибиотики, используемые в настоящее время, например такие как офлоксацин, ципрофлоксацин, рифампицин, клиндамицин и др. (см. статью К. Nilsen, J.V. Bangsborg, N. Hoiby Susceptibility of Legionella to five antibiotics and development of resistance by exposure to erythromycin, ciprofloxacin and rifampicin. Diagn. Microbiol. Infect. Dis., 36 (2000), 43-48).However, coal strongly adsorbs many currently used antibiotics, such as ofloxacin, ciprofloxacin, rifampicin, clindamycin, etc. (see article K. Nilsen, JV Bangsborg, N. Hoiby Susceptibility of Legionella to five antibiotics and development of resistance by exposure to erythromycin, ciprofloxacin and rifampicin. Diagn. Microbiol. Infect. Dis., 36 (2000), 43-48).

Следовательно, по этой причине результаты, характеризующие антибиотикочувствительностьность культур легионелл, получаемые на данной среде, недостоверны, так как показатели ингибиции легионелл в большинстве случаев искусственно занижены.Therefore, for this reason, the results characterizing the antibiotic susceptibility of Legionella cultures obtained in this medium are unreliable, since the indicators of Legionella inhibition in most cases are artificially underestimated.

Техническая задача предлагаемого изобретения состояла в создании новой питательной среды с высокой степенью точности в определении антибиотикочувствительноти Legionella pneumophila.The technical task of the invention was to create a new nutrient medium with a high degree of accuracy in determining the antibiotic sensitivity of Legionella pneumophila.

Поставленная задача достигается тем, что в питательную среду для определения антибиотикочувствительности Legionella pneumophila, включающую агар микробиологический и L-цистеин, дополнительно введены ЭДТА железо(III) натриевая соль, стимуляторы роста - калия фосфат однозамещенный и калия фосфат двузамещенный, а в качестве осмопротекторов - мезоинозит и калия глюконат, при этом в качестве питательной основы в среде использованы ферментоаутолизат селезенки крупного рогатого скота и пищевой желатин, при следующем соотношении компонентов, г/л:This object is achieved by the fact that in the nutrient medium for determining the antibiotic sensitivity of Legionella pneumophila, including microbiological agar and L-cysteine, EDTA iron (III) sodium salt is additionally introduced, growth stimulants are monosubstituted potassium phosphate and disubstituted potassium phosphate, and mesosinosis as osmoprotectants and potassium gluconate, while the enzyme-autolysate of cattle spleen and edible gelatin were used as a nutrient base in the medium, in the following ratio of components, g / l:

Ферментоаутолизат селезенки КРСBovine spleen enzymeautolysate 6-8,06-8.0 Агар микробиологическийMicrobiological agar 14,0-16,014.0-16.0 Калия фосфат однозамещенныйPotassium phosphate monosubstituted 1,5-1,71.5-1.7 Калия фосфат двузамещенныйPotassium Phosphate Disubstituted 3,3-3,63.3-3.6 Калия глюконатPotassium gluconate 2,4-2,6 г2.4-2.6 g Крахмал растворимыйInstant starch 2,4-2,62.4-2.6 ЖелатинGelatin 2,4-2,62.4-2.6 МезоинозитMesoinositis 2,4-2,62.4-2.6 L-цистеинL-cysteine 0,3-0,50.3-0.5 ЭДТА железо (III) натриевая сольEDTA iron (III) sodium salt 0,026 -0,0280.026-0.028 Тушь высококачественнаяHigh quality mascara 4-6 мл4-6 ml Дистиллированная водаDistilled water при pH 7,1 доat pH 7.1 to 1 л1 liter

Питательную среду готовят следующим образом. Исходные материалы для предлагаемой среды (обозначенной Б-2): агар микробиологический 14,0-16,0; L-цистеин 0,3-0,5 и крахмал растворимый 2,4-2,6; в качестве ростовой основы берут ферментоаутолизат селезенки крупного рогатого скота 6,0-8,0 и желатин пищевой 2,4-2,6; в качестве буфера используют смесь фосфатных солей: калия фосфат однозамещенный (KH2PO4) 1,5-1,7 и калия фосфат двузамещенный (K2HPO4) 3,3-3,6. Осмопротекторами выбраны мезоинозит 2,4-2,6 и калия глюконат 2,4-2,6, а в качестве источника железа используют комплекс ЭДТА железо(III) натриевая соль 0,026-0,028. Для придания среде темного оттенка, на котором четче визуализируются зоны ингибиции растущей культуры легионелл, используют высококачественную мелкодисперсную стерильную тушь 4-6 мл.The nutrient medium is prepared as follows. The starting materials for the proposed environment (designated B-2): microbiological agar 14.0-16.0; L-cysteine 0.3-0.5 and soluble starch 2.4-2.6; fermentoautolysate of bovine spleen 6.0-8.0 and edible gelatin 2.4-2.6; a mixture of phosphate salts is used as a buffer: potassium phosphate monosubstituted (KH 2 PO 4 ) 1.5-1.7 and potassium phosphate disubstituted (K 2 HPO 4 ) 3.3-3.6. Mesoinositol 2.4-2.6 and potassium gluconate 2.4-2.6 were selected as osmoprotectors, and the EDTA complex iron (III) sodium salt 0.026-0.028 was used as a source of iron. To give the medium a dark shade, on which the zones of inhibition of the growing Legionella culture are more clearly visualized, use 4-6 ml high-quality finely divided sterile mascara.

Все вышеуказанные компоненты, кроме L-цистеина и ЭДТА железо(III)натриевой соли, вносят в емкость и добавляют до 1 литра холодной дистиллированной воды. Смесь подогревают в паровом стерилизаторе и кипятят в течение 30 минут при 100°C при тщательном перемешивании. Затем жидкость автоклавируют при 0,5 атм в течение 20 мин. В результате получают основу, которая хранится при температуре (2-8)°C в холодильнике в течение 2-х лет.All of the above components, except for L-cysteine and EDTA iron (III) sodium salt, are added to the container and up to 1 liter of cold distilled water is added. The mixture is heated in a steam sterilizer and boiled for 30 minutes at 100 ° C with thorough stirring. Then the liquid is autoclaved at 0.5 atm for 20 minutes. The result is a base that is stored at a temperature of (2-8) ° C in the refrigerator for 2 years.

При необходимости приготовления рабочей среды основу растапливают и в нее вводят нужное количество остальных двух добавок: L-цистеина и ЭДТА железо(III) натриевая соль. Среду в растопленном состоянии (45°C) разливают в пластиковые чашки Петри диаметром 90 мм в объеме 30 мл и с толщиной слоя 0,7 см. Чашки хранят в герметичном пакете при температуре холодильника в течение 1-2 мес.If it is necessary to prepare a working medium, the base is melted and the required amount of the remaining two additives is introduced into it: L-cysteine and EDTA iron (III) sodium salt. The melted medium (45 ° C) is poured into plastic Petri dishes with a diameter of 90 mm in a volume of 30 ml and with a layer thickness of 0.7 cm. The cups are stored in an airtight bag at a refrigerator temperature for 1-2 months.

Основные биологические показатели предлагаемой среды Б-2 определяют в сравнении с наилучшей для выращивания легионелл средой BCYEAά. Вначале характеризуют ее чувствительность, время прорастания колоний легионелл, а также эффективность среды (величину выросших колоний и степень развития газона культуры) - примеры 1, 2, 3, 4 и 5.The main biological indicators of the proposed B-2 medium are determined in comparison with the best BCYEAά medium for legionella cultivation. Initially, it is characterized by its sensitivity, the time of germination of the colonies of legionella, as well as the effectiveness of the medium (the size of the grown colonies and the degree of development of the lawn culture) - examples 1, 2, 3, 4 and 5.

После этого, используя для сравнения ту же среду ВСУЕАά, определяют принципиальную пригодность среды Б-2 для определения антибиотикочувствительности культур легионелл с использованием дисков с антибиотиками (пример 6), стрипов с градациями антибиотиков (пример 7) и при помощи метода серийных разведений антибиотиков в среде (пример 8). В опытах использованы вирулентные и авирулентные штаммы легионелл, полученные из музея живых культур Ростовского-на-Дону противочумного института:After that, using the same VSUEA medium for comparison, they determine the principal suitability of B-2 medium for determining the antibiotic sensitivity of legionella cultures using antibiotic discs (Example 6), strips with gradations of antibiotics (Example 7) and using the method of serial dilutions of antibiotics in the medium (example 8). In the experiments, virulent and avirulent strains of legionella were used, obtained from the Museum of Living Cultures of the Rostov-on-Don Antiplague Institute:

1) L.pneumophila Philadelphia АТСС 33152, 1 серогруппа, LD50 - 4 105 м.к. для морск. свинок (вирулентный)1) L. pneumophila Philadelphia ATCC 33152, 1 serogroup, LD50 - 4 10 5 m.k. for nautical. guinea pigs (virulent)

2) тот же, но авирулентный штамм2) the same, but avirulent strain

3) L.pneumophila Blumington АТСС 33155, 3 серогруппа (авирулентный)3) L. pneumophila Blumington ATCC 33155, 3 serogroup (avirulent)

4) L.pneumophila Chicago АТСС 332 215, 6 серогруппа (авирулентный)4) L. pneumophila Chicago ATCC 332 215, 6 serogroup (avirulent)

Пример 1Example 1

Для приготовления среды используют ингредиенты в следующих минимальных концентрациях, г/л: ферментоаутолизат селезенки КРС - 5,0; агар микробиологический - 12,0; калия фосфат однозамещенный - 1,0; калия фосфат двузамещенный - 3,0; калия глюконат - 2,0; крахмал растворимый - 2,0; желатин - 2,0; мезоинозит - 2,0; L-цистеин - 0,1; ЭДТА железо(III) натриевая соль - 0,01; тушь высококачественная - 3 мл; дистиллированная вода до 1 л, pH 7,1.To prepare the medium, the ingredients are used in the following minimum concentrations, g / l: cattle spleen enzyme-autolysate - 5.0; microbiological agar - 12.0; potassium phosphate monosubstituted - 1.0; disubstituted potassium phosphate - 3.0; potassium gluconate - 2.0; soluble starch - 2.0; gelatin - 2.0; mesoinositis - 2.0; L-cysteine - 0.1; EDTA iron (III) sodium salt - 0.01; high-quality mascara - 3 ml; distilled water up to 1 liter, pH 7.1.

Состав среды сравнения ВСУЕАά аналогичен вышеуказанному (см. прототип).The composition of the comparison medium VSUEAά similar to the above (see prototype).

В работе использовали стандартную методику определения чувствительности питательных сред для легионелл. Применяли типовой штамм легионелл - Legionella pneumophyila Philadelphia - 1 - вирулентный штамм, LD 50 - 4 105 м.к. для морских свинок и три авирулентных штамма. Приготовление инокулума: культуры выращивают в течение 2 суток на среде ВСУЕАά при температуре 35°C, потом смывают калий-фосфатным буфером (pH 7,1).We used the standard method for determining the sensitivity of nutrient media for legionella. Used a typical strain of Legionella - Legionella pneumophyila Philadelphia - 1 - virulent strain, LD 50 - 4 10 5 MK for guinea pigs and three avirulent strains. Inoculum preparation: cultures are grown for 2 days on BCUEA medium at a temperature of 35 ° C, then washed off with potassium phosphate buffer (pH 7.1).

После этого готовят взвесь клеток с концентрацией 1 млрд м.к./ мл, которую разводят до рабочей концентрации 103 м.к/мл и засевают на чашки по 0,1 мл, т.е. по 100 м.к. Посевы инкубируют в течение трех суток при 35°C, подсчитывают количество выросших колоний, определяют время их появления, степень типичности морфологии легионеллезных колоний и сравнивают их диаметр на различных средах в различные сроки инкубации. Посевы совершали трехкратно, для сравнения используют средние величины. Статистическую достоверность сходства и различия величин определяют с помощью критерия Хи-квадрат.After this, a suspension of cells with a concentration of 1 billion m.k. / ml is prepared, which is diluted to a working concentration of 10 3 m.k. / ml and seeded in plates of 0.1 ml, i.e. 100 mk Crops are incubated for three days at 35 ° C, the number of grown colonies is calculated, the time of their appearance, the degree of typical morphology of legionella colonies are determined, and their diameter is compared on different media at different incubation times. Crops were performed three times; average values were used for comparison. The statistical significance of similarities and differences in values is determined using the Chi-square test.

В результате выявлено, что чувствствительность обоих сред статистически различалась: из 100 посеянных м.к. легионелл всех четырех штаммов на третьи сутки инкубации на среде Б-2 состава примера 1 вырастало до 20 колоний возбудителя, на контрольной среде - 50-60 типичных колоний легионелл (p - 0,05, Хи-квадрат 6,0), т.е. степень чувствительности первой среды недостаточна. Аналогичные различия зафиксированы и во времени появления колоний на средах - во всех случаях на предложенной среде они фиксировались с помощью стереомикроскопа на пятые сутки инкубации, визуально на шестые - в виде мелких росинчатых колоний до 1 мм в диаметре, стереомикроскопически с типичной мелкозернистостью и мелковолокнистостью с зеленоватым свечением. На среде-прототипе стереомикроскопически колонии легионелл были зарегистрированы на вторые сутки, визуально - на третьи, что соответствует стандартам. Эффективность среды ВСУЕАά была намного лучше, чем среда Б-2 примера 1, т.е. объем колоний на 5 сут роста в среднем на первой среде был 4-5 мм, на второй максимальный диаметр колоний на 6 сут роста составлял 2-3 мм. Рост газона культуры на среде-прототипе при засеве 0,1 мл взвеси культуры легионелл всех испытуемых штаммов через сутки инкубации при 35°C был достаточным для его визуальной регистрации, на предложенной был крайне слабым.As a result, it was found that the sensitivity of both media was statistically different: from 100 seeded m. legionella of all four strains on the third day of incubation on medium B-2 of the composition of example 1 grew to 20 colonies of the pathogen, on the control medium - 50-60 typical colonies of legionella (p - 0.05, Chi-square 6.0), i.e. . the degree of sensitivity of the first medium is insufficient. Similar differences were also recorded in the time colonies appeared on the media — in all cases, on the proposed medium they were recorded with a stereo microscope on the fifth day of incubation, visually on the sixth — in the form of small dewy colonies up to 1 mm in diameter, stereomicroscopically with typical fine-grained and finely greenish glow On the prototype medium stereomicroscopically, legionella colonies were registered on the second day, visually on the third, which meets the standards. The effectiveness of the VSUEA medium was much better than the B-2 medium of Example 1, i.e. the volume of colonies on the 5th day of growth on average in the first medium was 4-5 mm; on the second, the maximum diameter of the colonies on the 6th day of growth was 2-3 mm. The growth of the culture lawn on the prototype medium when inoculating 0.1 ml of suspension of Legionella culture of all the tested strains after a day of incubation at 35 ° C was sufficient for its visual registration; on the proposed one, it was extremely weak.

Таким образом, среда, приготовленная по примеру 1, не удовлетворяет требованиям, предъявляемым к качеству диагностических питательных сред для Legionella pneumophila, и не может использоваться для определения ее антибиотикочувствительности.Thus, the medium prepared according to example 1 does not satisfy the requirements for the quality of diagnostic culture media for Legionella pneumophila, and cannot be used to determine its antibiotic sensitivity.

Пример 2Example 2

Для приготовления среды использовали вышеозначенные ингредиенты в следующих концентрациях, г/л: ферментоаутолизат селезенки КРС - 6,0; агар микробиологический - 14,0; калия фосфат однозамещенный - 1,3; калия фосфат двузамещенный - 3,2; калия глюконат - 2,3; крахмал растворимый - 2,3; желатин - 2,3; мезоинозит - 2,3; L-цистеин - 0,3; ЭДТА железо(III) натриевая соль - 0,025; тушь высококачественная - 4 мл; дистиллированная вода до 1 л, pH - 7,1.To prepare the medium, the above-mentioned ingredients were used in the following concentrations, g / l: cattle spleen enzyme-autolysate - 6.0; microbiological agar - 14.0; potassium phosphate monosubstituted - 1.3; potassium phosphate disubstituted - 3.2; potassium gluconate - 2.3; soluble starch - 2.3; gelatin - 2.3; mesoinositis - 2.3; L-cysteine - 0.3; EDTA iron (III) sodium salt - 0.025; high-quality mascara - 4 ml; distilled water up to 1 liter, pH 7.1.

Методики определения и сравнения чувствительности, времени прорастания и эффективности предложенной питательной среды Б-2 и ВСУЕАά были идентичны описанным в примере 1.The methods for determining and comparing the sensitivity, germination time and effectiveness of the proposed nutrient medium B-2 and VSUEAά were identical to those described in example 1.

Результаты сравнения: из посеянных 100 м.к. вирулентных и авируленетных штаммов легионелл на обоих средах вырастало на третьи сутки по 50-60 типичных колоний (р - 0,05, Хи-квадрат - 0,31), срок формирования колоний - 2 сутки при наблюдении в стереомикроскоп и 3 сутки при визуальном наблюдении. Но по эффективности роста колоний на 5-е сутки инкубации среда ВСУЕАά была несколько лучше приготовленной согласно примеру 2. В то же время выраженность газона культуры на предложенной среде была достаточной для визуальной регистрации на 2 сутки роста. Таким образом, состав среды, приготовленной по примеру 2, обеспечивает рост легионелл в той мере, чтобы данная среда рассматривалась как соответствующая общепринятым нормам ВОЗ.Comparison results: from seeded 100 mk virulent and avirulent strains of legionella on both media grew on the third day for 50-60 typical colonies (p - 0.05, Chi-square - 0.31), the period of formation of colonies - 2 days when observed with a stereo microscope and 3 days with visual observation . But according to the growth efficiency of the colonies on the 5th day of incubation, the VSUEA medium was slightly better prepared according to Example 2. At the same time, the severity of the culture lawn on the proposed medium was sufficient for visual registration on the 2nd day of growth. Thus, the composition of the medium prepared according to example 2, provides the growth of legionella to the extent that this medium was considered as consistent with generally accepted WHO standards.

Пример 3Example 3

Для приготовления среды использовали вышеозначенные ингредиенты в следующих концентрациях, г/л: ферментоаутолизат селезенки КРС - 7,0; агар микробиологический - 15,0; калия фосфат однозамещенный - 1,6; калия фосфат двузамещенный - 3,4; калия глюконат - 2,5; крахмал растворимый - 2,5; желатин - 2,5; мезоинозит - 2,5; L-цистеин - 0,4; ЭДТА железо(III) натриевая соль - 0,027; тушь высококачественная - 5 мл; дистиллированная вода до 1 л, pH 7,1.To prepare the medium, the above-mentioned ingredients were used in the following concentrations, g / l: cattle spleen enzyme-autolysate - 7.0; microbiological agar - 15.0; potassium phosphate monosubstituted - 1.6; potassium phosphate disubstituted - 3.4; potassium gluconate - 2.5; soluble starch - 2.5; gelatin - 2.5; mesoinositis - 2.5; L-cysteine - 0.4; EDTA iron (III) sodium salt - 0.027; high-quality mascara - 5 ml; distilled water up to 1 liter, pH 7.1.

Методика сравнительного изучения чувствительности и эффективности обеих сред соответствовала вышеописанным. Полученные результаты (рост 45-65 типичных колоний всех испытанных штаммов на обоих средах, сроки появления колоний - на 2-3 сутки при инкубации при 35°C, достаточная эффективность роста колоний и газонов культур при некотором превышении этих показателей на среде сравнения) свидетельствуют, что среда, взятая в данном составе, полностью соответствует требованиям, предъявляемым к референтной диагностической питательной среде BCYEAά, используемой для культивирования и выделения Legionella pneumophila. Испытуемая среда в указанном составе по перечисленным признакам может использоваться для выявления антибиотикочувствительности культур легионелл и для обычного их выращивания.The methodology for the comparative study of the sensitivity and effectiveness of both media was consistent with the above. The results obtained (the growth of 45-65 typical colonies of all tested strains on both media, the time for colonies to appear is 2-3 days when incubated at 35 ° C, the sufficient growth efficiency of the colonies and lawns of the cultures with some excess of these indicators on the comparison medium) indicate that the medium taken in this composition fully complies with the requirements for the reference diagnostic nutrient medium BCYEAά used for the cultivation and isolation of Legionella pneumophila. The test medium in the specified composition according to the listed characteristics can be used to detect antibiotic sensitivity of legionella cultures and for their usual cultivation.

Пример 4Example 4

Для приготовления среды использовали вышеозначенные ингредиенты в следующих концентрациях, г/л: ферментоаутолизат селезенки КРС - 8,0; агар микробиологический - 16,0; калия фосфат однозамещенный - 1,7; калия фосфат двузамещенный - 3,6; калия глюконат - 2,6; крахмал растворимый - 2,6; желатин - 2,6; мезоинозит - 2,6; L-цистеин - 0,5; ЭДТА железо(III) натриевая соль - 0,028; тушь высококачественная - 6 мл; дистиллированная вода до 1 л, pH 7,1.To prepare the medium, the above-mentioned ingredients were used in the following concentrations, g / l: cattle spleen enzyme-autolysate - 8.0; microbiological agar - 16.0; potassium phosphate monosubstituted - 1.7; potassium phosphate disubstituted - 3.6; potassium gluconate - 2.6; soluble starch - 2.6; gelatin - 2.6; mesoinositis - 2.6; L-cysteine - 0.5; EDTA iron (III) sodium salt - 0.028; high-quality mascara - 6 ml; distilled water up to 1 liter, pH 7.1.

Методика сравнительного изучения вышеуказанных показателей обеих сред соответствовала описанным. Полученные результаты (рост 50-65 типичных колоний всех испытанных штаммов на обеих средах, сроки появления колоний - на 2-3 сутки при инкубации при 35°C, достаточная эффективность роста колоний и газонов культур при некотором превышении этих показателей на среде сравнения) свидетельствуют, что среда, взятая в данном составе, полностью соответствует требованиям, предъявляемым к референтной диагностической питательной среде BCYEAά, используемой для культивирования и выделения легионелл. Испытуемая среда в данном составе по вышеуказанным признакам может использоваться для выявления антибиотикочувствительности культур Legionella pneumophila и для обычного их выращивания.The methodology for the comparative study of the above indicators of both environments corresponded to those described. The results obtained (the growth of 50-65 typical colonies of all tested strains on both media, the time for colonies to appear is 2-3 days when incubated at 35 ° C, the sufficient growth efficiency of the colonies and lawns of the cultures with some excess of these indicators on the comparison medium) indicate that the medium taken in this composition fully complies with the requirements for the reference diagnostic nutrient medium BCYEAά used for the cultivation and isolation of legionella. The test medium in this composition according to the above characteristics can be used to detect antibiotic susceptibility of Legionella pneumophila cultures and for their normal cultivation.

Пример 5Example 5

Среда в данном примере приготовлена с максимальными концентрациями ингредиентов, г/л: ферментоаутолизат селезенки КРС - 9,0; агар микробиологический - 17,0; калия фосфат однозамещенный - 1,8; калия фосфат двузамещенный - 4,0; калия глюконат - 2,8; крахмал растворимый - 2,8; желатин - 3,0; мезоинозит - 3,0; L-цистеин - 0,8; ЭДТА железо(III) натриевая соль - 0,03; тушь высококачественная - 10 мл; дистиллированная вода до 1 л, pH 7,1.The medium in this example was prepared with the maximum concentrations of the ingredients, g / l: cattle spleen enzyme-autolysate - 9.0; microbiological agar - 17.0; potassium phosphate monosubstituted - 1.8; disubstituted potassium phosphate - 4.0; potassium gluconate - 2.8; soluble starch - 2.8; gelatin - 3.0; mesoinositis - 3.0; L-cysteine - 0.8; EDTA iron (III) sodium salt - 0.03; high-quality mascara - 10 ml; distilled water up to 1 liter, pH 7.1.

Методика сравнительного изучения вышеуказанных показателей обеих сред соответствовала описанным (см. пример 1). Полученные результаты: рост до 20 типичных колоний всех испытанных штаммов на испытуемой среде при значительно лучшем росте на среде сравнения (50-60 колоний при достоверной статистической разнице Р - 00,5 Хи-квадрат - 8,0), более длительные сроки появления колоний на среде данного состава - на 4-5 сутки при инкубации при 35°C. Вывод: недостаточная эффективность роста колоний и газонов культур на данной среде свидетельствуют, что среда, взятая в настоящем составе, не соответствует требованиям, предъявляемым к референтной диагностической питательной среде BCYEAά, используемой для культивирования и выделения легионелл. Испытуемая среда в данном составе по вышеуказанным признакам не может использоваться для выявления антибиотикочувствительности культур легионелл и для обычного их выращивания.The methodology for the comparative study of the above indicators of both environments was as described (see example 1). The results: growth of up to 20 typical colonies of all tested strains on the test medium with significantly better growth on the comparison medium (50-60 colonies with a significant statistical difference of P - 00.5 Chi-square - 8.0), longer periods of colony appearance on the environment of this composition - for 4-5 days when incubated at 35 ° C. Conclusion: the insufficient growth efficiency of the colonies and lawns of cultures on this medium indicate that the medium taken in the present composition does not meet the requirements for the reference diagnostic nutrient medium BCYEAά used for cultivation and isolation of legionella. The test medium in this composition, according to the above characteristics, cannot be used to detect the antibiotic sensitivity of legionella cultures and for their usual cultivation.

Пример 6Example 6

Подтверждение пригодности предложенной среды в определении антибиотикочувствительности культур легионелл методом дисков в сравнении со средой ВСУЕАάConfirmation of the suitability of the proposed medium in determining the antibiotic sensitivity of legionella cultures by the disk method in comparison with the VSUEAά medium

Готовят среду по прописи примера 3 и среду ВСУЕАά согласно общеупотребимой прописи. Первая среда имеет темный цвет, другая -черный. Объемы сред в чашках Петри - 30 мл. Приготавливают односуточные культуры указанных штаммов легионелл, которые засевают на агаровые пластинки обоих сред по 0,1 мл взвеси клеток легионелл (по 4×109 м.к.), распределяют их по поверхности и подсушивают агар. Затем на агар накладывают диски с антибиотиками, чаще всего употребляемыми для лечения легионеллеза: рифампицин, офлоксацин, клиндамицин, эритромицин, доксициклин, моксифлоксацин, азитромицин, левофлоксацин и ципрофлоксацин (содержание антибиотика в диске 1-1,25 мкг). На каждую чашку выкладывают не более трех дисков. Посевы инкубируют в течение 48 ч при 35°C, первый учет проводят через 24 ч, замеряя зоны ингибиции роста культуры и сравнивают их диаметры на обоих средах. На вторые сутки данные показатели замеряют еще раз. Результаты сравнительного испытания в определении атибиотикочувствительности культур легионелл представлены в таблице 1.Prepare Wednesday for the recipe of example 3 and Wednesday VSUEA according to the commonly used recipe. The first medium is dark in color, the other is black. The volume of media in Petri dishes is 30 ml. One-day cultures of the indicated Legionella strains are prepared, which are plated on agar plates of both media with 0.1 ml of suspension of Legionella cells (4 × 10 9 m.k. each), they are distributed over the surface and the agar is dried. Then, discs with antibiotics are most often used on the agar, most often used to treat legionellosis: rifampicin, ofloxacin, clindamycin, erythromycin, doxycycline, moxifloxacin, azithromycin, levofloxacin and ciprofloxacin (the antibiotic content in the disk is 1-1.25 μg). No more than three discs are placed on each cup. Crops are incubated for 48 hours at 35 ° C; the first count is carried out after 24 hours, measuring the zones of inhibition of culture growth and comparing their diameters on both media. On the second day, these indicators are measured again. The results of the comparative test in determining the atibiotic sensitivity of legionella cultures are presented in table 1.

Как видно из таблицы 1, зоны ингибиции роста газонов культур легионелл всех испытанных штаммов вокруг восьми дисков антибиотиков (рифампицин, офлоксацин, клиндамицин, эритромицин, моксициклин, левофлокасацин и ципрофлоксацин) на среде предложенной в 2-4 раза статистически достоверней (при среднем Хи-квадрате = 6,3) и превышают аналогичные зоны, полученные на контрольной среде BCYEAά, что объяснимо адсорбирующим действием активированного угля в последней. Небольшая зона ингибиции роста легионелл вокруг диска с доксициклином зависит от относительно слабой чувствительности легионелл к данному агенту, сопровождающейся полным отсутствием адсорбирующего эффекта. Таким образом, на предлагаемой среде чувствительность к антибиотикам легионелл выявляется более полно и точно, нежели на среде BCYEAά.As can be seen from table 1, the zones of inhibition of the growth of lawn of Legionella cultures of all tested strains around eight antibiotic disks (rifampicin, ofloxacin, clindamycin, erythromycin, moxycycline, levofloxacin and ciprofloxacin) on the medium proposed are 2-4 times statistically more reliable (with an average Chi-square = 6.3) and exceed similar zones obtained on the BCYEAά control medium, which is explained by the adsorbing effect of activated carbon in the latter. A small zone of inhibition of Legionella growth around a doxycycline disk depends on the relatively weak sensitivity of Legionella to this agent, accompanied by a complete absence of an adsorbing effect. Thus, on the proposed medium, sensitivity to legionella antibiotics is more fully and accurately detected than on BCYEAά medium.

Пример 7Example 7

В данном примере представлены результаты сравнительного испытания среды, взятой в оптимальном составе (аналогично примеру 3), и среды BCYEAά для определения антибиотикочувствительности культур легионелл с помощью стрипов, содержащих градиент концентраций антибиотика - эритромицин и левофлоксацин (производство фирмы Оксоид, Е - тест). Культуры легионелл готовят, как указано в примере 6. Стрипы накладывют на засеянный газон культуры в количестве двух на чашку. Учет результатов проводят через сутки инкубации при 35°C, на другие сутки учет результатов повторяют. При наличии чувствительности культуры к испытуемому антибиотику вокруг стрипа образовывалась ракеткообразная зона ингибиции роста культуры легионелл, нижний край зоны ингибиции соответствовал МИК - минимальной ингибирующей концентрации. Результаты представлены в таблице 2.This example presents the results of a comparative test of the medium taken in the optimal composition (similar to Example 3) and BCYEAά medium for determining the antibiotic sensitivity of legionella cultures using strips containing the concentration gradient of the antibiotic erythromycin and levofloxacin (manufactured by Oxoid, E - test). Legionella cultures are prepared as described in Example 6. Strips are applied to the sown lawn of the crop in an amount of two per cup. The results are taken into account after a day of incubation at 35 ° C; on the other days, the results are repeated. If the culture was sensitive to the antibiotic being tested, a racket-shaped zone of inhibition of Legionella culture growth was formed around the strip, the lower edge of the inhibition zone corresponded to the MIC - the minimum inhibitory concentration. The results are presented in table 2.

Как видно из таблицы 2, зоны ингибиции роста газонов культур легионелл на среде предложенной примерно в 5 раз превышали по МИК аналогичные показатели на контрольной среде (средний Хи квадрат = 6,3). Следовательно, результаты определения антибиотикочувствительности легионелл с помощью стрипов более точны на предлагаемой среде.As can be seen from table 2, the zone of inhibition of the growth of lawns of Legionella cultures on the medium proposed was about 5 times higher than the MIC on the control medium (mean Chi square = 6.3). Therefore, the results of determining the antibiotic sensitivity of legionella using strips are more accurate on the proposed environment.

Пример 8Example 8

Определение пригодности предлагаемой среды для определения антибиотикочувствительности культур легионелл методом серийных разведений антибиотиков в сравнении со средой ВСУЕАάDetermining the suitability of the proposed environment for determining the antibiotic sensitivity of legionella cultures by the method of serial dilutions of antibiotics in comparison with the VSUEA medium

Готовят чашки с авторской средой и ВСУЕАα, как указано в предыдущем случае, за исключением того, что в среду вводят антибиотик в ступенчато повышающихся концентрациях: 0,01, 0,05, 0,1, 0,25, 05, 0,75, 1 мкг/мл. Засевают вышеуказанные культуры легионелл на поверхность агара с антибиотиками в дозе - большая петля взвеси с концентрацией 4×109 м.к., образуя посев в виде диска диаметром 1 см. Посевы подсушивают и инкубируют при тех же условиях, что и в предыдущем случае. Срок инкубации - 2 суток, учет - через 24 и 48 ч. Результаты учитывают по наличию или отсутствию роста культуры (см. таблицу 3). Показатели сравнивают для обеих сред.Cups are prepared with the author's medium and VSUEAα, as indicated in the previous case, except that an antibiotic is introduced into the medium in stepwise increasing concentrations: 0.01, 0.05, 0.1, 0.25, 05, 0.75, 1 mcg / ml. The above legionella cultures are seeded on the surface of the agar with antibiotics in a dose - a large suspension loop with a concentration of 4 × 10 9 m.k., forming a plating in the form of a disk with a diameter of 1 cm. Crops are dried and incubated under the same conditions as in the previous case. The incubation period is 2 days, accounting after 24 and 48 hours. The results are taken into account by the presence or absence of culture growth (see table 3). The indicators are compared for both environments.

Как видно из таблицы 3, минимальная ингибирующая концентрация антибиотиков, определенная для Legionella pneumophila, на предлагаемой среде в 5-10 раз меньше, чем на среде, содержащей активированный уголь.As can be seen from table 3, the minimum inhibitory concentration of antibiotics determined for Legionella pneumophila on the proposed medium is 5-10 times less than on the medium containing activated carbon.

Следовательно, испытания двух сред для определения антибиотикочувствительности легионелл различными методами, а именно: с помощью дисков, стрипов и серийных разведений, подтвердил что наиболее точно и достоверно работает среда Б-2.Therefore, tests of two media for determining the antibiotic sensitivity of legionella using various methods, namely, using discs, strips and serial dilutions, confirmed that the B-2 medium works most accurately and reliably.

Таким образом, при устранении сильного адсорбента - активированного угля, который связывает ряд антибиотиков, занижая этим показатели чувствительности, новая среда дает возможность точно определять антибиотикочувствительность Legionella pneumophila, не занижая показатели ингибиции, что имеет большое значение в клинической практике при лечении легионелеза.Thus, when eliminating a strong adsorbent - activated carbon, which binds a number of antibiotics, thereby lowering the sensitivity indices, the new medium makes it possible to accurately determine the antibiotic sensitivity of Legionella pneumophila without lowering the inhibition indices, which is of great importance in clinical practice in the treatment of legionesis.

Таблица 1Table 1 Штаммы легионеллLegionella strains СредыWednesday Диаметры зон ингибиции газона легионелл вокруг дисков с антибиотиками (мм):The diameters of the zones of inhibition of Legionella lawn around discs with antibiotics (mm): эритромицинerythromycin азитромицинazithromycin кларитромицинclarithromycin доксицинdoxycin левофлоксацинlevofloxacin моксифлоксацинmoxifloxacin офлаксацинoflaxacin клиндамицинclindamycin рифампицинrifampicin L.pneumophila Philadelphia - 1 (вирулентный), 1 серогруппаL. pneumophila Philadelphia - 1 (virulent), 1 serogroup BCYEAαBCYEAα 30thirty 15fifteen 2222 88 2828 20twenty 30thirty 2828 20twenty Б-2B-2 3838 20twenty 3636 1010 00 3535 4040 4040 4040 L.pneumophila Philadelphia - 1 (авирулентный), 1 серогруппаL. pneumophila Philadelphia - 1 (avirulent), 1 serogroup BCYEAαBCYEAα 3232 20twenty 2323 88 30thirty 20twenty 3131 2525 30thirty Б-2B-2 4040 2828 3838 99 4242 30thirty 4444 3838 4242 L.pneumophila Bloomington (авирулентный), 3 серогруппаL. pneumophila bloomington (avirulent), 3 serogroup BCYEAαBCYEAα 2828 1616 20twenty 88 2626 2121 30thirty 2626 1919 Б-2B-2 3636 2222 3838 1010 3838 3333 4141 3838 4040 L.pneumophila Chicago (авирулентный), 6 серогруппаL. pneumophila Chicago (avirulent), 6 serogroup BCYEAαBCYEAα 30thirty 20twenty 2121 77 2222 2222 30thirty 2626 18eighteen Б-2B-2 4040 30thirty 3232 88 3232 3636 4141 4242 3838

Таблица 2table 2 Штаммы легионеллLegionella strains СредыWednesday Минимальная ингибирующая концентрация (MIC) антибиотиков, определенная с помощью «стрипов» (Е-тест)Minimum Inhibitory Concentration (MIC) of Antibiotics Determined with Strips (E-Test) Эритромицин (мкг)Erythromycin (mcg) Левофлоксацин (мкг)Levofloxacin (mcg) L.pneumophila Philadelphia - 1 (вирулентный), 1 серогруппаL. pneumophila Philadelphia - 1 (virulent), 1 serogroup BCYEAαBCYEAα 0,50.5 0,120.12 Б-2B-2 0,10.1 0,010.01 L.pneumophila Philadelphia - 1 (авирулентный), 1 серогруппаL. pneumophila Philadelphia - 1 (avirulent), 1 serogroup BCYEAαBCYEAα 0,50.5 0,120.12 Б-2B-2 0,10.1 0,010.01 L.pneumophila Bloomington (авирулентный), 3 серогруппаL. pneumophila bloomington (avirulent), 3 serogroup BCYEAαBCYEAα 0,40.4 0,150.15 Б-2B-2 0,10.1 0,010.01 L.pneumophila Chicago (авирулентный), 6 серогруппаL. pneumophila Chicago (avirulent), 6 serogroup BCYEAαBCYEAα 0,50.5 0,120.12 Б-2B-2 0,10.1 0,010.01

Таблица 3Table 3 Штаммы легионеллLegionella strains СредыWednesday Минимальная ингибирующая концентрация (MIC) антибиотиков, определенная с помощью метода серийных разведений (мкг):Minimum Inhibitory Concentration (MIC) of antibiotics as determined by the serial dilution method (μg): эритромицинerythromycin доксициклинdoxycycline левофлоксацинlevofloxacin офлаксацинoflaxacin рифампицинrifampicin L.pneumophila Philadelphia - 1 (вирулентный), 1 серогруппаL. pneumophila Philadelphia - 1 (virulent), 1 serogroup BCYEAαBCYEAα 0,50.5 0,50.5 0,10.1 0,250.25 0,250.25 Б-2B-2 0,10.1 0,250.25 0,010.01 0,010.01 0,010.01 L.pneumophila Philadelphia - 1 (авирулентный), 1 серогруппаL. pneumophila Philadelphia - 1 (avirulent), 1 serogroup BCYEAαBCYEAα 0,50.5 0,250.25 0,10.1 0,250.25 0,250.25 Б-2B-2 0,120.12 0,10.1 0,010.01 0,010.01 0,020.02 L.pneumophila Bloomington (авирулентный), 3 серогруппаL. pneumophila bloomington (avirulent), 3 serogroup BCYEAαBCYEAα 0,40.4 0,250.25 0,10.1 0,250.25 0,250.25 Б-2B-2 0,10.1 0,10.1 0,010.01 0,010.01 0,010.01 L.pneumophila Chicago (авирулентный), 6 серогруппаL. pneumophila Chicago (avirulent), 6 serogroup BCYEAαBCYEAα 0,50.5 0,50.5 0,10.1 0,250.25 0,250.25 Б-2B-2 0,10.1 0,10.1 0,010.01 0,010.01 0,010.01

Claims (1)

Питательная среда для определения антибиотикочувствительности Legionella pneumophila, включающая агар микробиологический и L-цистеин, отличающаяся тем, что в состав среды дополнительно введены ЭДТА железо(III) натриевая соль, стимуляторы роста - калия фосфат однозамещенный и калия фосфат двузамещенный, а в качестве осмопротекторов - мезоинозит и глюконат калия, при этом в качестве питательной основы в среде использованы ферментоаутолизат селезенки крупного рогатого скота и пишевой желатин, при следующем соотношении компонентов, г/л:
Ферментоаутолизат селезенки КРС 6-8,0 Агар микробиологический 14,0-16,0 Калия фосфат однозамещенный 1,5-1,7 Калия фосфат двузамещенный 3,3-3,6 Калия глюконат 2,4-2,6 г Крахмал растворимый 2,4-2,6 Желатин 2,4-2,6 Мезоинозит 2,4-2,6 L-цистеин 0,3-0,5 ЭДТА железо (III) натриевая соль 0,026-0,028 Тушь высококачественная 4-6 мл Дистиллированная вода при pH 7,1 до 1 л
Nutrient medium for determining the antibiotic sensitivity of Legionella pneumophila, including microbiological agar and L-cysteine, characterized in that EDTA iron (III) sodium salt is additionally added to the medium, growth stimulants are monosubstituted potassium phosphate and disubstituted potassium phosphate, and mesinositis as osmoprotectants and potassium gluconate, while the enzyme-autolysate of bovine spleen and gelatin gelatin were used as a nutrient base in the medium, in the following ratio of components, g / l:
Bovine spleen enzymeautolysate 6-8.0 Microbiological agar 14.0-16.0 Potassium phosphate monosubstituted 1.5-1.7 Potassium Phosphate Disubstituted 3.3-3.6 Potassium gluconate 2.4-2.6 g Instant starch 2.4-2.6 Gelatin 2.4-2.6 Mesoinositis 2.4-2.6 L-cysteine 0.3-0.5 EDTA iron (III) sodium salt 0.026-0.028 High quality mascara 4-6 ml Distilled water at pH 7.1 up to 1 l
RU2014100517/10A 2014-01-09 2014-01-09 NUTRIENT MEDIUM FOR DETERMINING ANTIBIOTIC SUSCEPTIBILITY OF Legionella pneumophila RU2542390C1 (en)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2014100517/10A RU2542390C1 (en) 2014-01-09 2014-01-09 NUTRIENT MEDIUM FOR DETERMINING ANTIBIOTIC SUSCEPTIBILITY OF Legionella pneumophila

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2014100517/10A RU2542390C1 (en) 2014-01-09 2014-01-09 NUTRIENT MEDIUM FOR DETERMINING ANTIBIOTIC SUSCEPTIBILITY OF Legionella pneumophila

Publications (1)

Publication Number Publication Date
RU2542390C1 true RU2542390C1 (en) 2015-02-20

Family

ID=53288991

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
RU2014100517/10A RU2542390C1 (en) 2014-01-09 2014-01-09 NUTRIENT MEDIUM FOR DETERMINING ANTIBIOTIC SUSCEPTIBILITY OF Legionella pneumophila

Country Status (1)

Country Link
RU (1) RU2542390C1 (en)

Cited By (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2580227C1 (en) * 2015-04-22 2016-04-10 Федеральное казенное учреждение здравоохранения "Ростовский-на-Дону ордена Трудового Красного Знамени научно-исследовательский противочумный институт" Федеральной службы по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека Medium for isolation of legionella pneumophila
RU2729389C1 (en) * 2019-12-30 2020-08-06 Федеральное казенное учреждение здравоохранения "Ростовский-на-Дону ордена Трудового Красного Знамени научно-исследовательский противочумный институт" Федеральной службы по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека Method of producing a nutrient base of media for extracting and cultivating legionella

Citations (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2455351C1 (en) * 2011-06-08 2012-07-10 Государственное бюджетное образовательное учреждение высшего профессионального образования "Ростовский государственный медицинский университет" Министерства здравоохранения и социального развития Российской Федерации (ГБОУ ВПО РостГМУ Минздравсоцразвития России) Nutrient medium for cultivation of diphtheria bacteria
RU2460768C1 (en) * 2011-07-04 2012-09-10 Федеральное государственное учреждение здравоохранения Ставропольский научно-исследовательский противочумный институт Федеральной службы по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека Solid nutrient medium for legionella cultivation
RU2484141C1 (en) * 2012-05-03 2013-06-10 Федеральное казенное учреждение здравоохранения "Ростовский-на-Дону ордена Трудового Красного Знамени научно-исследовательский противочумный институт" Федеральной службы по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека Elective-differential nutrient medium for extraction of choleraic vibrios

Patent Citations (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2455351C1 (en) * 2011-06-08 2012-07-10 Государственное бюджетное образовательное учреждение высшего профессионального образования "Ростовский государственный медицинский университет" Министерства здравоохранения и социального развития Российской Федерации (ГБОУ ВПО РостГМУ Минздравсоцразвития России) Nutrient medium for cultivation of diphtheria bacteria
RU2460768C1 (en) * 2011-07-04 2012-09-10 Федеральное государственное учреждение здравоохранения Ставропольский научно-исследовательский противочумный институт Федеральной службы по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека Solid nutrient medium for legionella cultivation
RU2484141C1 (en) * 2012-05-03 2013-06-10 Федеральное казенное учреждение здравоохранения "Ростовский-на-Дону ордена Трудового Красного Знамени научно-исследовательский противочумный институт" Федеральной службы по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека Elective-differential nutrient medium for extraction of choleraic vibrios

Non-Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
ПОЛЯК М.С., СУХАРЕВИЧ В.И., СУХАРЕВИЧ М.Э., Питательные среды для медицинской и санитарной микробиологии, Санкт- Петербург, Элби-СПб, 2008, стр.268-270 *

Cited By (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2580227C1 (en) * 2015-04-22 2016-04-10 Федеральное казенное учреждение здравоохранения "Ростовский-на-Дону ордена Трудового Красного Знамени научно-исследовательский противочумный институт" Федеральной службы по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека Medium for isolation of legionella pneumophila
RU2729389C1 (en) * 2019-12-30 2020-08-06 Федеральное казенное учреждение здравоохранения "Ростовский-на-Дону ордена Трудового Красного Знамени научно-исследовательский противочумный институт" Федеральной службы по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека Method of producing a nutrient base of media for extracting and cultivating legionella

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Ottaviani et al. Occurrence and characterization of Aeromonas spp. in mussels from the Adriatic Sea
RU2542390C1 (en) NUTRIENT MEDIUM FOR DETERMINING ANTIBIOTIC SUSCEPTIBILITY OF Legionella pneumophila
CN112961805B (en) Salmonella typhimurium with quinolone drug resistance genes gyrA and parE mutated simultaneously and application thereof
JP2011530303A5 (en)
CN106967779B (en) Screening culture medium suitable for wide drug-resistant pseudomonas aeruginosa and preparation method thereof
JP2011530303A (en) A culture medium that can distinguish S. aureus from coagulase-negative staphylococci
RU2660567C1 (en) Method for isolation and identification of bacteria of acinetobacter calcoaceticus - acinetobacter baumannii complex
CN107208127B (en) Enrichment and Selective culture of Mycobacteria
RU2580227C1 (en) Medium for isolation of legionella pneumophila
JP2019058088A (en) Method of examination of legionella bacteria
RU2711914C1 (en) Nutrient medium for separation and identification of para-hemolytic vibrios (embodiments) and method for production thereof (embodiments)
RU2337360C1 (en) Method of determination of bacteriostatic properties of antibodies to virulence factors burkholderia pseudomallei
KR101824588B1 (en) A culture medium for screening or enrichment of methicillin-resistant s. aureus
KR20200004767A (en) Media for disk diffusion method for evaluating susceptibility to antibiotics
WO2021005813A1 (en) Culture medium for selectively separating lactic acid bacterium
TWI627277B (en) Medium, including the set of the group, and its application
RU2484141C1 (en) Elective-differential nutrient medium for extraction of choleraic vibrios
JP6589648B2 (en) Enterococci detection medium and enterococci detection method
JP7254698B2 (en) Medium for detection of Listeria
RU2307160C2 (en) Method for detection of legionella in vegetative and non-cultivating states
RU2266956C2 (en) Broth for brucelle isolation
JP5476054B2 (en) Medium for detection of Bacillus cereus group
RU2425869C1 (en) SELECTIVE DIFFERENTIAL-DIAGNOSTIC MEDIUM FOR RECOVERING ANTHRAX AGENT AND RELATED Bacillus cereus BACILLI
US20230143236A1 (en) Medium for bacillus cereus group detection
RU2711954C1 (en) Method for preliminary identification of non-tuberculosis mycobacteria using a universal chromogenic medium