RU2540507C1 - Method for preparing substance with anti-tumour activity accompanying hepatocellular carcinoma - Google Patents
Method for preparing substance with anti-tumour activity accompanying hepatocellular carcinoma Download PDFInfo
- Publication number
- RU2540507C1 RU2540507C1 RU2014105526/15A RU2014105526A RU2540507C1 RU 2540507 C1 RU2540507 C1 RU 2540507C1 RU 2014105526/15 A RU2014105526/15 A RU 2014105526/15A RU 2014105526 A RU2014105526 A RU 2014105526A RU 2540507 C1 RU2540507 C1 RU 2540507C1
- Authority
- RU
- Russia
- Prior art keywords
- supernatant
- centrifuged
- temperature
- cooled
- tumor
- Prior art date
Links
Landscapes
- Pharmaceuticals Containing Other Organic And Inorganic Compounds (AREA)
Abstract
Description
Настоящее изобретение относится к способам получения биологически активных соединений, которые могут найти применение в медицине для подавления роста злокачественных опухолей.The present invention relates to methods for producing biologically active compounds that can be used in medicine to inhibit the growth of malignant tumors.
Известен способ получения противоопухолевых агентов из слизистой оболочки тонкой кишки свиньи, включающий гомогенизацию, обработку этиловым спиртом, прогревание до 70°С, ультрафильтрацию и лиофилизацию [United States Patent 6,015,878, Jan. 18, 2000. Trifonov В.В., Roussev Je. К., Boshev N.A. Antitumor aqents isolated from intestinal mucosa, a method for their isolation and their application]. Указанные агенты обладают противоопухолевой активностью к лимфоме и миеломе мышей, карциноме глотки и эпителиоидной карциноме мочевого пузыря, эмбриональной рабдомиосаркоме.A known method of obtaining antitumor agents from the mucous membrane of the small intestine of a pig, including homogenization, treatment with ethanol, heating to 70 ° C, ultrafiltration and lyophilization [United States Patent 6,015,878, Jan. 18, 2000. Trifonov VV, Roussev Je. K., Boshev N.A. Antitumor aqents isolated from intestinal mucosa, a method for their isolation and their application]. These agents have antitumor activity in mouse lymphoma and myeloma, pharyngeal carcinoma and epithelioid carcinoma of the bladder, embryonic rhabdomyosarcoma.
Задачей изобретения является способ получения противоопухолевого вещества (ПВ), обладающего активностью в отношении гепатоцеллюлярного рака.The objective of the invention is a method for producing an antitumor substance (PV) having activity against hepatocellular cancer.
Поставленная задача решается способом получения ПВ, заключающимся в том, что слизистую оболочку тонкой кишки человека гомогенизируют с водой в соотношении 1:3-5 при +3-+5°С, гомогенат центрифугируют, супернатант прогревают в течение 7-10 мин при температуре от 20 до 38°С, доводят до 100°С и прогревают 15-20 мин при этой температуре, вновь центрифугируют, к охлажденному до +4-+6°С супернатанту добавляют охлажденный до (-15)-(-20)°С этанол до концентрации 65-70%, выдерживают 15-17 ч при (-15)-(-20)°С, вновь центрифугируют, из супернатанта удаляют спирт, полученный целевой продукт замораживают и хранят при (-65)-(-70)°С до использования.The problem is solved by the method of obtaining PV, which consists in the fact that the mucous membrane of the human small intestine is homogenized with water in a ratio of 1: 3-5 at + 3- + 5 ° C, the homogenate is centrifuged, the supernatant is heated for 7-10 minutes at a temperature of 20 to 38 ° С, adjusted to 100 ° С and heated for 15-20 min at this temperature, centrifuged again, ethanol cooled to (-15) - (- 20) ° С is added to the supernatant cooled to + 4- + 6 ° С to a concentration of 65-70%, incubated for 15-17 hours at (-15) - (- 20) ° C, centrifuged again, the alcohol obtained from the supernatant was removed th product is frozen and stored at (-65) - (- 70) ° C until use.
Отличительными признаками предлагаемого способа являются использование в качестве исходного сырья слизистой оболочки тонкой кишки человека, центрифугирование гомогената в дистиллированной воде, прогревание супернатанта при температуре от 20 до 38°С, доведение температуры до 100°С и выдерживание в течение 15-20 мин при этой температуре, центрифугирование после прогревания, обработка этанолом до концентрации 65-70%, выдерживание с этанолом 15-17 ч при (-15)-(-20)°С, центрифугирование.Distinctive features of the proposed method are the use of raw materials of the mucous membrane of the human small intestine, centrifugation of the homogenate in distilled water, heating the supernatant at a temperature of from 20 to 38 ° C, bringing the temperature to 100 ° C and keeping for 15-20 minutes at this temperature , centrifugation after heating, treatment with ethanol to a concentration of 65-70%, keeping with ethanol for 15-17 hours at (-15) - (- 20) ° С, centrifugation.
Испытания заявляемого ПВ на цитотоксическую (цитостатическую) и противоопухолевую активности были проведены на культурах опухолевых клеток (in vitro) и на крысах с перевиваемыми опухолями (in vivo).Tests of the claimed PV for cytotoxic (cytostatic) and antitumor activity were carried out on tumor cell cultures (in vitro) and in rats with transplantable tumors (in vivo).
Далее приведены примеры, иллюстрирующие способ получения ПВ и определение его биологической активности.The following are examples illustrating a method for producing PV and determining its biological activity.
1. Пример получения ПВ.1. An example of obtaining PV.
Во время резекции тонкой кишки человека производят забор резецированного участка тонкой кишки длиной 5 см, в котором отсутствуют какие-либо образования. Тотчас после забора отделяют слизистую оболочку. Вес ее составляет 2,5 г. Слизистую оболочку измельчают, добавляют 7,5 мл дистиллированной воды, гомогенизируют при +3-+5°С, гомогенат центрифугируют для осаждения ядер (1000 об/мин, 10 мин). Полученный постъядерный нативный супернатант прогревают на водяной бане в течение 7-10 мин при температуре от 20 до 38°С, доводят до 100°С и выдерживают 15-20 мин при 100°С. Образовавшийся осадок термолабильного материала удаляют центрифугированием (5000 об/мин, 15 мин). К супернатанту, охлажденному до +4-+6°С, добавляют 16,1 мл 96% этанола, охлажденного до (-15)-(-20)°С и оставляют при этой температуре на 15-17 ч, центрифугируют в том же режиме, который указан выше. Спирт из супернатанта удаляют на роторном испарителе. Полученный экстракт (4 мл) имеет концентрацию белка 14,0-17,0 мг/мл по оптическому поглощению при D280. Экстракт (ПВ) замораживают и хранят при 65-70°С до использования.During resection of the human small intestine, a resected small intestine section of 5 cm in length is taken in which there are no formations. Immediately after the fence, the mucous membrane is separated. Its weight is 2.5 g. The mucous membrane is crushed, 7.5 ml of distilled water are added, homogenized at + 3- + 5 ° С, the homogenate is centrifuged to precipitate nuclei (1000 rpm, 10 min). The obtained post-nuclear native supernatant is heated in a water bath for 7-10 minutes at a temperature of from 20 to 38 ° C, adjusted to 100 ° C and incubated for 15-20 minutes at 100 ° C. The resulting precipitate of thermolabile material is removed by centrifugation (5000 rpm, 15 min). To the supernatant, cooled to + 4- + 6 ° C, add 16.1 ml of 96% ethanol, cooled to (-15) - (- 20) ° C and left at this temperature for 15-17 hours, centrifuged in the same the mode indicated above. The alcohol from the supernatant is removed on a rotary evaporator. The resulting extract (4 ml) has a protein concentration of 14.0-17.0 mg / ml by optical absorption at D 280 . The extract (PV) is frozen and stored at 65-70 ° C until use.
2. Определение активности заявленного ПВ на культуре опухолевых клеток гепатомы-27, находящихся в стадии роста.2. Determination of the activity of the claimed PV in the culture of tumor cells of hepatoma-27 in the growth stage.
Для выполнения данной работы гепатома-27 была переведена в культуру из подкожной опухоли путем трипсинизации. Для этого забивали крысу с подкожной гепатомой, стерильно удаляли опухоль, выбирали участок, свободный от некрозов. Отделяли его, помещали в охлажденный раствор трипсина : версена (1:1) и 24 ч держали при +4°С. Через сутки сливали трипсин : версен, промывали несколько раз раствором Хенкса, заливали стандартной питательной средой с 10% фетальной сыворотки и 100 мкг/мл гентамицина и высевали на флаконы Карреля. Через 24 ч проводили смену среды для удаления не прикрепившихся клеток. Клетки культивировали на среде ДМЕМ+RPMI (1:1) с добавлением 5% эмбриональной телячьей сыворотки (Flow).To perform this work, hepatoma-27 was transferred to culture from a subcutaneous tumor by trypsinization. To do this, a rat with subcutaneous hepatoma was killed, the tumor was sterile removed, and a site free of necrosis was chosen. It was separated, placed in a cooled solution of trypsin: versene (1: 1) and kept at + 4 ° С for 24 hours. After a day, trypsin: versene was poured, washed several times with Hanks solution, poured with standard nutrient medium with 10% fetal serum and 100 μg / ml gentamicin and plated on Carrel vials. After 24 hours, a change of medium was performed to remove non-adherent cells. Cells were cultured on DMEM + RPMI medium (1: 1) supplemented with 5% fetal calf serum (Flow).
Клетки высевали на 96-луночные планшеты (Costar) в 100 мкл питательной среды (ДМЕМ+RPMI (1:1)). Количество клеток, вносимое в лунку, зависело от длительности эксперимента: 1 сутки - 4 тыс./лунка, 3 суток - 2 тыс./лунка, 6 суток - 1 тыс./лунка. Преинкубацию (культивирование клеток без препаратов) проводили в течение 24 ч при 37°С в атмосфере 5% СО2. Оттаянный ПВ вносили в лунки в концентрациях 0,25; 0,5; 1,0 и 2,0 мг/мл культуральной среды. Инкубацию проводили при 37°С в течение 1, 3 и 6 суток.Cells were plated on 96-well plates (Costar) in 100 μl of culture medium (DMEM + RPMI (1: 1)). The number of cells introduced into the well depended on the duration of the experiment: 1 day - 4 thousand / well, 3 days - 2 thousand / well, 6 days - 1 thousand / well. Pre-incubation (culturing cells without preparations) was carried out for 24 hours at 37 ° C in an atmosphere of 5% CO 2 . Thawed PV was added to the wells at concentrations of 0.25; 0.5; 1.0 and 2.0 mg / ml of culture medium. Incubation was carried out at 37 ° C for 1, 3 and 6 days.
МТТ [3-(4,5-димелтиазол-2)2,5 дифенилтетразолиум бромид] (Sigma), растворенный в воде, добавляли в количестве 20 мкл (исходный раствор 5 мг/мл) в каждую лунку на 3 часа при тех же условиях. Затем среду отбирали и для лизиса клеток использовали диметилсульфоксид (60 мкл/лунку). Для гомогенного распределения красителя лизат тщательно перемешивали на шейкере (300 об/мин) в течение 3 минут. Количественное определение формазана проводили на приборе Multiskan (фильтр 540). Жизнеспособность клеток оценивали по соотношению оптической плотности растворов в лунках с контрольными клетками и в лунках с клетками, обработанными ПВ.MTT [3- (4,5-dimethylthiazole-2) 2,5 diphenyltetrazolium bromide] (Sigma) dissolved in water was added in an amount of 20 μl (stock solution 5 mg / ml) to each well for 3 hours under the same conditions . Then the medium was taken and dimethyl sulfoxide (60 μl / well) was used for cell lysis. For a homogeneous distribution of the dye, the lysate was thoroughly mixed on a shaker (300 rpm) for 3 minutes. Quantification of formazan was performed on a Multiskan instrument (filter 540). Cell viability was evaluated by the ratio of the optical density of solutions in wells with control cells and in wells with cells treated with PV.
Ингибирование пролиферации клеток в культуре гепатомы-27 вычисляли по формуле:Inhibition of cell proliferation in hepatoma-27 culture was calculated by the formula:
, ,
гдеWhere
ИП - ингибирование пролиферации;PI - inhibition of proliferation;
По - уровень пролиферации в опыте;By - level of proliferation in the experiment;
Пк - уровень пролиферации в контроле.PC - the level of proliferation in the control.
В таблице представлены данные о влиянии ПВ на рост культуры клеток гепатомы-27 при различных концентрациях белка ПВ в 1 мл культуральной среды.The table presents data on the effect of PV on the growth of hepatoma-27 cell culture at various concentrations of PV protein in 1 ml of culture medium.
Из таблицы следует, что на 1 сутки инкубации ПВ во всех представленных концентрациях не оказывал ингибирующего действия на пролиферацию опухолевых клеток. На 3 сутки инкубации ПВ во всех концентрациях оказывал цитостатическое влияние на опухолевые клетки. Наибольшим ингибирующим эффектом обладал ПВ в концентрации 2 мг на 1 мл среды. На 6 сутки инкубации по сравнению с 3 сутками цитостатический эффект всех ПВ возрастал, ингибирование пролиферации клеток было наиболее выражено у экстрактов с концентрацией белка, равной 1 и 2 мг/ мл культуральной среды.From the table it follows that on 1 day of incubation of PV in all the concentrations presented, it did not exert an inhibitory effect on the proliferation of tumor cells. On the 3rd day of incubation, PV in all concentrations exerted a cytostatic effect on tumor cells. PV had the greatest inhibitory effect at a concentration of 2 mg per 1 ml of medium. On the 6th day of incubation, compared with 3 days, the cytostatic effect of all PV increased, the inhibition of cell proliferation was most pronounced in extracts with a protein concentration of 1 and 2 mg / ml of culture medium.
Таким образом, заявляемый ПВ характеризуется высоким уровнем ингибирования пролиферации в культуре клеток гепатомы-27, достигающим 73% (на 3 сутки инкубации) и 92% (на 6 сутки).Thus, the claimed PV is characterized by a high level of inhibition of proliferation in hepatoma-27 cell culture, reaching 73% (on the 3rd day of incubation) and 92% (on the 6th day).
3. Определение активности заявленного ПВ in vivo.3. Determination of the activity of the claimed PV in vivo.
Исследование проведено на беспородных крысах-самцах массой 100-150 г с перевитой внутрипеченочной гепатомой-27. Для этого на 10 сутки после прививки опухоли печени производили повторную лапаротомию, измеряли размеры опухоли (2 наибольших размера), после чего рану передней брюшной стенки ушивали. Животных делили на 2 группы. В 1 группе осуществляли внутрибрюшинное введение ПВ из расчета 100 мг белка на кг массы в объеме 1 мл. Введение производили через день в течение 14 дней (всего 7 введений). Животные 2 группы являлись контролем, ПВ им не вводили. Через 6 дней после последней инъекции крысам 1 группы (через 20 дней после начала лечения и 30 дней после прививки опухоли) животных обеих групп забивали и вновь измеряли опухоль.The study was conducted on outbred male rats weighing 100-150 g with transplanted intrahepatic hepatoma-27. To do this, on the 10th day after inoculation of a liver tumor, a second laparotomy was performed, the size of the tumor (2 largest sizes) was measured, after which the wound of the anterior abdominal wall was sutured. Animals were divided into 2 groups. In group 1, intraperitoneal administration of PV was carried out at the rate of 100 mg of protein per kg of weight in a volume of 1 ml. The introduction was made every other day for 14 days (a total of 7 introductions). Animals of the 2nd group were a control; no PV was administered to them. 6 days after the last injection to rats of group 1 (20 days after the start of treatment and 30 days after vaccination of the tumor), the animals of both groups were killed and the tumor was measured again.
Показатель торможения роста опухоли (ТРО) рассчитывали по формуле:The inhibition of tumor growth (SRW) was calculated by the formula:
, ,
гдеWhere
Р оп. контр - размеры опухоли в контроле,R op. counter - the size of the tumor in the control,
Р оп. опыт - размеры опухоли в опыте.R op. experience - the size of the tumor in the experience.
Было выявлено следующее. Через 10 дней после прививки опухоли (на момент начала лечения крыс 1 группы) достоверных различий в размерах опухоли печени в 1 и 2 группах не было: площадь опухоли составляла соответственно 27,0±6,7 и 24,7±7,5 мм2, Р>0,05. Через 30 дней после прививки опухоли размеры ее у крыс 1 группы увеличились недостоверно, составили 55,3±18,8 мм2, Р>0,05, тогда как у животных 2 группы размеры опухоли достоверно увеличились до 167,7±46,4 мм2, Р<0,05. Различия между группами через 30 дней после прививки опухоли были достоверными, что позволяет рассчитать показатель ТРО. Он составил 67%.The following was revealed. 10 days after the inoculation of the tumor (at the start of treatment of rats of group 1), there were no significant differences in the size of the liver tumor in groups 1 and 2: the tumor area was 27.0 ± 6.7 and 24.7 ± 7.5 mm 2, respectively , P> 0.05. 30 days after the inoculation of the tumor, its size in rats of the 1st group increased unreliably, amounted to 55.3 ± 18.8 mm 2 , P> 0.05, whereas in animals of the 2nd group, the tumor sizes significantly increased to 167.7 ± 46.4 mm 2 , P <0.05. The differences between the groups 30 days after tumor inoculation were significant, which allows us to calculate the TPO. It amounted to 67%.
Таким образом, использование заявленного ПВ позволяет эффективно подавить рост гепатомы 27, а именно прекратить пролиферацию раковых клеток (in vitro) и способствовать торможению роста опухоли у крыс (in vivo).Thus, the use of the claimed PV allows you to effectively suppress the growth of hepatoma 27, namely to stop the proliferation of cancer cells (in vitro) and to help inhibit tumor growth in rats (in vivo).
Предлагаемый способ позволяет расширить ассортимент веществ, обладающих противоопухолевой активностью.The proposed method allows to expand the range of substances with antitumor activity.
Claims (1)
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
RU2014105526/15A RU2540507C1 (en) | 2014-02-17 | 2014-02-17 | Method for preparing substance with anti-tumour activity accompanying hepatocellular carcinoma |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
RU2014105526/15A RU2540507C1 (en) | 2014-02-17 | 2014-02-17 | Method for preparing substance with anti-tumour activity accompanying hepatocellular carcinoma |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
RU2540507C1 true RU2540507C1 (en) | 2015-02-10 |
Family
ID=53286887
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
RU2014105526/15A RU2540507C1 (en) | 2014-02-17 | 2014-02-17 | Method for preparing substance with anti-tumour activity accompanying hepatocellular carcinoma |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
RU (1) | RU2540507C1 (en) |
Citations (4)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
US5366723A (en) * | 1993-03-05 | 1994-11-22 | Istvan Tulok | Method of alleviating toxicity originating from treatment with anticancer platinum compounds |
US6015878A (en) * | 1995-10-20 | 2000-01-18 | Alexandrov, Christo Alexandrov | Antitumor agents isolated from intestinal mucosa, a method for their isolation and their application |
WO2000053626A1 (en) * | 1999-03-11 | 2000-09-14 | Institut Bioorganicheskoi Khimii Imeni Akademikov M.M.Shemyakina I Ju.A.Ovchinnikova Rossiiskoi A Kademii Nauk | Peptide having an antitumoral, protection and normalisation activity and pharmaceutical composition |
RU2392946C2 (en) * | 2008-07-30 | 2010-06-27 | Закрытое акционерное общество "Томские клеточные технологии" (ЗАО "Клеточные технологии") | Autologous vaccine for oncotherapy and method for preparing thereof |
-
2014
- 2014-02-17 RU RU2014105526/15A patent/RU2540507C1/en active IP Right Revival
Patent Citations (4)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
US5366723A (en) * | 1993-03-05 | 1994-11-22 | Istvan Tulok | Method of alleviating toxicity originating from treatment with anticancer platinum compounds |
US6015878A (en) * | 1995-10-20 | 2000-01-18 | Alexandrov, Christo Alexandrov | Antitumor agents isolated from intestinal mucosa, a method for their isolation and their application |
WO2000053626A1 (en) * | 1999-03-11 | 2000-09-14 | Institut Bioorganicheskoi Khimii Imeni Akademikov M.M.Shemyakina I Ju.A.Ovchinnikova Rossiiskoi A Kademii Nauk | Peptide having an antitumoral, protection and normalisation activity and pharmaceutical composition |
RU2392946C2 (en) * | 2008-07-30 | 2010-06-27 | Закрытое акционерное общество "Томские клеточные технологии" (ЗАО "Клеточные технологии") | Autologous vaccine for oncotherapy and method for preparing thereof |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
CN104856996B (en) | PQQ, its derivative and/or the new pharmaceutical usage and Pharmaceutical composition of salt | |
US11135160B2 (en) | Use of chlorogenic acid in preparing pharmaceuticals for treatment of LAG-3-mediated disease | |
US20210330626A1 (en) | Pharmaceutical composition for treating kidney cancer and application thereof | |
CN111100006A (en) | 3-caffeoylquinic acid derivative and preparation method and application thereof | |
CN117643283A (en) | Construction method and application of in-situ liver cancer eradication postoperative recurrence model | |
RU2540507C1 (en) | Method for preparing substance with anti-tumour activity accompanying hepatocellular carcinoma | |
CN101831405B (en) | Lung-targeting metastatic human hepatoma cell strain and establishing method thereof | |
CN115177608B (en) | Application of long-chain acyl carnitine compounds in preparation of medicines for preventing and/or treating liver cancer | |
CN109966322B (en) | Gekko Swinhonis-paecilomyces cicadae bidirectional solid fermentation product and preparation method and application thereof | |
CN108379578B (en) | Interleukin 23 neutrality antibody is preparing the application in endometriosis medicine | |
CN103169693A (en) | Application of wogonin derivant in preparation of drug for treating liver cancer | |
CN111973576A (en) | Curcumin nano dispersion film and preparation method and application thereof | |
CN101863984B (en) | Prostatic cancer therapeutic vaccine modified on surface of GM-CSF (Granulocyte-Macrophage Colony-Stimulating Factor)/TNF (Tumor Necrosis Factor)-alpha membrane | |
RU2646791C1 (en) | Remedy for cats with regenerative activity | |
CN112569240A (en) | Application of chlorpromazine hydrochloride in preparation of cyclin inhibitor | |
CN108272795A (en) | A kind of application of monascin in preparing treatment and delaying osteoarthritis drugs | |
CN106540247B (en) | Tumor universal type fibroblast vaccine and preparation method and application thereof | |
CN115444841B (en) | Application of stilbene compounds in preparation of antitumor drugs | |
RU2552667C1 (en) | Method of modelling cecum lymphoma | |
Sari et al. | Effect of human adipose-derived stem cell in collagen gel on relative expression level of vascular endothelial growth factor-A of deep dermal burn healing | |
CN101863997B (en) | Method for preparing hojothuria leucospilota polysaccharide | |
CN112972455B (en) | Application of compound in preparation of antitumor drugs | |
CN106727873B (en) | Use of radix Hedysari or radix Hedysari polysaccharide for treating ischemic vascular diseases | |
TWI635867B (en) | Use of herbal composition in preparation drug for inhibiting tumor cell metastasis | |
CN116270967A (en) | Anti-tumor combined drug of cyclopeptide Galaxamide and doxorubicin and application thereof |
Legal Events
Date | Code | Title | Description |
---|---|---|---|
MM4A | The patent is invalid due to non-payment of fees |
Effective date: 20190218 |
|
NF4A | Reinstatement of patent |
Effective date: 20220224 |