RU2538707C1 - Method for determining level of toxicants in water, food products or physiological liquids, and test system - Google Patents

Method for determining level of toxicants in water, food products or physiological liquids, and test system Download PDF

Info

Publication number
RU2538707C1
RU2538707C1 RU2013138679/15A RU2013138679A RU2538707C1 RU 2538707 C1 RU2538707 C1 RU 2538707C1 RU 2013138679/15 A RU2013138679/15 A RU 2013138679/15A RU 2013138679 A RU2013138679 A RU 2013138679A RU 2538707 C1 RU2538707 C1 RU 2538707C1
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
carrier
solution
quantum dots
level
toxicants
Prior art date
Application number
RU2013138679/15A
Other languages
Russian (ru)
Inventor
Евгений Петрович Гребенников
Наталия Владимировна Белоглазова
Ирина Юрьевна Горячева
Вагиз Равилевич Курбангалеев
Елена Сергеевна Сперанская
Павел Сергеевич Шмелин
Original Assignee
Евгений Петрович Гребенников
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Евгений Петрович Гребенников filed Critical Евгений Петрович Гребенников
Priority to RU2013138679/15A priority Critical patent/RU2538707C1/en
Application granted granted Critical
Publication of RU2538707C1 publication Critical patent/RU2538707C1/en

Links

Images

Landscapes

  • Investigating Or Analysing Materials By The Use Of Chemical Reactions (AREA)

Abstract

FIELD: biotechnologies.
SUBSTANCE: carrier is arranged in a column of a test system in the form of a layer of immunoaffinity gel, which is fixed between two porous membranes and provided with grafted - covalently bound - molecules of a toxic agent; the carrier - the gel layer is treated with a blocking solution for closure on the carrier of the rest free places of nonspecific binding; test specimens containing a certain amount of pre-introduced antibodies specific to a toxicant are added; the carrier is treated with a conjugate-containing solution, and namely a conjugate solution of anti-species antibodies chemically bound to luminescent quantum dots or to liposomes containing luminescent quantum dots, and a level of toxicants is determined by illumination of the treated carrier with excitation radiation as to intensity of luminescence excited at quantum dots.
EFFECT: group of inventions allows effective and reliable determination of a level of toxicants in water, food products or physiological liquids.
4 cl, 1 dwg, 3 ex

Description

Изобретение относится к области биотехнологии и может быть использовано для повышения эффективности и достоверности определения уровня токсикантов в воде, продуктах питания или физиологических жидкостях путем проведения твердофазного иммуноферментного анализа.The invention relates to the field of biotechnology and can be used to increase the efficiency and reliability of determining the level of toxicants in water, food or physiological fluids by conducting an enzyme-linked immunosorbent assay.

Из уровня техники известен способ проведения иммуноферментного анализа, включающий адсорбцию антигенов на твердой фазе физической сорбции, инкубацию тестируемых биологических образцов, инкубацию конъюгатсодержащего раствора, спектрофотометрический анализ реакции по экстинции раствора хромагента (RU 2014610 C1, G01N 33/53, 1994).A method is known from the prior art for conducting an enzyme immunoassay, including adsorption of antigens on the solid phase of physical sorption, incubation of test biological samples, incubation of a conjugate-containing solution, spectrophotometric analysis of the reaction of extinction of a chromagent solution (RU 2014610 C1, G01N 33/53, 1994).

Также известен способ определения уровня токсикантов в воде, продуктах питания или физиологических жидкостях путем проводимого в колонке тест-системы иммуноферментного анализа, включающий размещение в колонке носителя в виде слоя иммуноаффинного геля с привитыми антивидовыми антителами, зафиксированного между двумя пористыми мембранами, обработку носителя блокирующим раствором для закрытия на носителе оставшихся свободными мест неспецифического связывания, иммобилизацию на носителе специфических антител, внесение тестируемых образцов, обработку носителя конъюгатсодержащим раствором и анализ обработанного носителя на изменение окраски (RU 2374649 C1, G01N 33/53, 2009). Несмотря на достаточную простоту, точность визуального определения уровня токсикантов в данном способе недостаточно высокая.Also known is a method for determining the level of toxicants in water, food or physiological fluids by an enzyme-linked immunosorbent assay in a column of a test system, including placing an immunoaffinity gel with grafted antivirus antibodies in the column of the carrier, fixed between two porous membranes, treating the carrier with a blocking solution for closure of non-specific binding sites on the carrier, immobilization of specific antibodies on the carrier, introduction of test samples samples, treatment of the carrier with a conjugate-containing solution and analysis of the treated carrier for a color change (RU 2374649 C1, G01N 33/53, 2009). Despite the sufficient simplicity, the accuracy of visual determination of the level of toxicants in this method is not high enough.

Кроме того, известна тест-система для иммуноферментного определения токсикантов, включающая колонку, в которой установлен носитель в виде слоя иммуноаффинного геля с привитыми специфическими антителами, размещенного между двумя пористыми мембранами (RU 2374649 C1, G01N 33/53, 2009). Недостатком данного устройства является отсутствие средств, обеспечивающих измерение уровня токсикантов.In addition, a known test system for enzyme-linked immunosorbent assay of toxicants, including a column in which the carrier is mounted in the form of a layer of immunoaffinity gel grafted with specific antibodies placed between two porous membranes (RU 2374649 C1, G01N 33/53, 2009). The disadvantage of this device is the lack of tools for measuring the level of toxicants.

Технический результат, на получение которого направлено изобретение, заключается в повышении эффективности и достоверности иммуноферментного определения уровня токсикантов в воде, продуктах питания или физиологических жидкостях, проводимого в колонке тест-системы.The technical result to which the invention is directed is to increase the efficiency and reliability of the enzyme-linked immunosorbent assay for determining the level of toxicants in water, food or physiological fluids carried out in a column of a test system.

Решение поставленной задачи с достижением заявленного технического результата обеспечивается тем, что в способе определения уровня токсикантов в воде, продуктах питания или физиологических жидкостях путем проводимого в колонке тест-системы твердофазного иммуноферментного анализа, согласно изобретению в колонке тест-системы размещают носитель в виде зафиксированного между двумя пористыми мембранами слоя иммуноаффинного геля с привитыми - ковалентно связанными - молекулами токсиканта, производят обработку носителя - слоя геля - блокирующим раствором для закрытия на носителе оставшихся свободными мест неспецифического связывания, вносят тестируемые образцы, содержащие определенное количество предварительно введенных специфичных к токсиканту антител, производят обработку носителя конъюгатсодержащим раствором, в качестве которого используют раствор конъюгата антивидовых антител, химически связанных с люминесцентными квантовыми точками или с липосомами, содержащими люминесцентные квантовые точки, а уровень токсикантов определяют путем освещении обработанного носителя возбуждающим излучением по интенсивности люминесценции, возбужденной в квантовых точках.The solution of this problem with the achievement of the claimed technical result is ensured by the fact that in the method for determining the level of toxicants in water, food or physiological fluids by means of an enzyme-linked immunosorbent assay carried out in the column of the test system, according to the invention, the carrier is placed in the form of a fixed between two the porous membranes of the immunoaffinity gel layer with grafted - covalently bound - toxicant molecules, the carrier is processed - gel layer - block test solution containing a certain amount of preliminarily introduced toxicant-specific antibodies is introduced into the carrier, the carrier is treated with a conjugate-containing solution, which is used as a solution of a conjugate of antispecies antibodies chemically bound to luminescent quantum dots or liposomes containing luminescent quantum dots, and the level of toxicants is determined by illuminating the treated carrier excitation radiation intensity of luminescence excited in the quantum dots.

При этом иммуноаффинный гель приготовляют в емкости с пористым дном путем обработки циан бром активированной сефарозы соляной кислотой и введения после набухания в полученный гель раствора антигена-токсиканта в карбонатном буфере.At the same time, the immunoaffinity gel is prepared in a container with a porous bottom by treating cyanogen bromide with activated sepharose with hydrochloric acid and injecting a solution of the antigen-toxicant in carbonate buffer after swelling into the resulting gel.

Решение поставленной задачи обеспечивается также тем, что в тест-системе для способа определения уровня токсикантов в воде, продуктах питания или физиологических жидкостях, включающей колонку, в которой установлен носитель в виде слоя иммуноаффинного геля, размещенного между двумя пористыми мембранами, согласно изобретению колонка снабжена устройством для измерения уровня люминесценции, включающим источник возбуждающего излучения и фотоприемник, причем перед фотоприемником дополнительно установлена фокусирующая оптическая система, а выход фотоприемника электрически подключен через усилитель сигнала и аналого-цифровой преобразователь к блоку управления - контроллеру, к выходу которого подключены блок индикации и через блок стабилизации источник возбуждающего излучения, при этом боковые стенки колонки выполнены из прозрачного для возбуждающего и люминесцентного излучения материала.The solution to this problem is also ensured by the fact that in the test system for a method for determining the level of toxicants in water, food or physiological fluids, including a column in which a carrier is mounted in the form of a layer of immunoaffinity gel placed between two porous membranes, according to the invention, the column is equipped with a device for measuring the luminescence level, including the source of the exciting radiation and the photodetector, and in front of the photodetector an additional focusing optical system a, and the output of the photodetector is electrically connected through a signal amplifier and an analog-to-digital converter to a control unit - a controller, to the output of which a display unit is connected and through a stabilization unit a source of exciting radiation, while the side walls of the column are made of a material that is transparent to the exciting and luminescent radiation.

Кроме того, перед фокусирующей оптической системой может быть размещен светофильтр.In addition, a light filter can be placed in front of the focusing optical system.

Благодаря наличию в растворе конъюгата люминесцентных квантовых точек (или липосом, содержащих люминесцентные квантовые точки), химически связанных с антивидовыми антителами (кроличьими антимышиными антителами), которые обладают способностью связываться со специфичными к токсиканту антителами, и при освещении возбуждающим излучением люминесцируют, в заявленном изобретении, реализующем непрямой конкурентный твердофазный иммуноферментный анализ, обеспечивается увеличение интенсивности полезного сигнала люминесценции, обратно пропорционального концентрации токсинов, что повышает чувствительность способа определения уровня токсикантов в воде, продуктах питания или физиологических жидкостях. Кроме того, наличие в заявленной тест-системе устройства для измерения уровня люминесценции, включающего источник возбуждающего излучения и фотоприемник, которые подключены к блоку управления - контроллеру, позволяет в автоматическом режиме просто и достоверно определять уровень токсикантов по степени интенсивности люминесценции, возбужденной в квантовых точках.Due to the presence in the conjugate solution of luminescent quantum dots (or liposomes containing luminescent quantum dots) chemically associated with anti-species antibodies (rabbit anti-mouse antibodies), which have the ability to bind to toxicant-specific antibodies, and when illuminated with exciting radiation, luminesce, in the claimed invention that implements indirect competitive enzyme-linked immunosorbent assay, an increase in the intensity of the useful luminescence signal, back about ortsionalnogo concentration of toxins, which increases sensitivity method for determining the level of toxicants in water, food or physiological fluids. In addition, the presence in the claimed test system of a device for measuring the level of luminescence, including a source of exciting radiation and a photodetector that are connected to a control unit - a controller, allows to automatically and easily determine the level of toxicants by the degree of luminescence intensity excited in quantum dots.

На чертеже схематично подставлен общий вид тест-системы.In the drawing, a general view of the test system is schematically substituted.

Заявленная тест-система для определения уровня токсикантов в воде, продуктах питания или физиологических жидкостях включает колонку 1 с боковыми стенками, выполненными из прозрачного для возбуждающего и люминесцентного излучения материала, в которой установлен носитель в виде слоя 2 иммуноаффинного геля с привитыми - ковалентно связанными - молекулами токсиканта-антигена, размещенного между двумя пористыми мембранами 3, и устройство для измерения уровня люминесценции, включающее источник 4 возбуждающего излучения, выполненный, например, в виде набора светодиодов с максимумами длин волн излучения в диапазоне 395÷500 нм, и фотоприемник 5 (фотодиод), спектральный диапазон чувствительности которого лежит в диапазоне 420÷675 нм, причем перед фотоприемником 5 установлена фокусирующая оптическая система 6 (например, собирающая линза F=5÷30 мм), перед которой дополнительно размещен светофильтр 7, спектр пропускания которого соответствуют спектру люминесценции. Выход фотоприемника 5 электрически подключен через усилитель 8 сигнала и аналого-цифровой преобразователь 9 к блоку 10 управления - контроллеру, к выходу которого подключены блок 11 индикации и через блок 12 стабилизации источник 4 возбуждающего излучения.The claimed test system for determining the level of toxicants in water, food or physiological fluids includes a column 1 with side walls made of a material that is transparent to the exciting and luminescent radiation, in which a carrier is mounted in the form of a layer 2 immunoaffinity gel with grafted - covalently bound - molecules a toxicant antigen located between two porous membranes 3, and a device for measuring the level of luminescence, including a source 4 of exciting radiation, made, for example p, in the form of a set of LEDs with maximum emission wavelengths in the range 395–500 nm, and a photodetector 5 (photo diode), the spectral sensitivity range of which lies in the range 420–675 nm, with a focusing optical system 6 installed in front of the photodetector 5 (for example, lens F = 5 ÷ 30 mm), in front of which an additional filter 7 is placed, the transmission spectrum of which corresponds to the luminescence spectrum. The output of the photodetector 5 is electrically connected through a signal amplifier 8 and an analog-to-digital converter 9 to a control unit 10 — a controller, to the output of which an indication unit 11 is connected and, through the stabilization unit 12, a source of exciting radiation 4.

Заявленный способ определения уровня токсикантов реализуют следующим образом.The claimed method for determining the level of toxicants is implemented as follows.

Для приготовления иммуноаффинного геля, например, 0,5 г циан бром активированной сефарозы 4В помещают в емкость с пористым дном и промывают в 100 мл 0,001 M соляной кислоты. После набухания геля раствор соляной кислоты сливают и добавляют 150 мкл раствора токсиканта-антигена с концентрацией 2,5 г/л и 450 мкл карбонатного буфера (pH 8,3), содержащего 0,1 М гидрокарбоната натрия и 0,1 M хлорида натрия, после чего смесь продолжительно встряхивают (в течение 2-х часов) при комнатной температуре. Остаток не связавшегося токсиканта-антигена удаляют с помощью промывания геля 5 мл карбонатного буфера (pH 8,3), содержащего 0,1 M гидрокарбоната натрия и 0,1 M хлорида натрия. Для закрытия оставшихся свободными мест неспецифического связывания (активных групп сефарозы) в полученный гель с привитыми - ковалентно связанными - молекулами токсиканта-антигена вносят блокирующий раствор, в качестве которого используют 0,2 M раствор глицина в карбонатном буфере (pH 8,3), содержащем 0,1 M гидрокарбоната натрия и 0,1 M хлорида натрия, и перемешивают в течение 2 часов при комнатной температуре. После процедуры блокирования гель трижды промывают последовательно пятикратным объемом ацетатного буфера (0,1 M ацетата натрия, 0,5 моль хлорида натрия, pH 4,0) и пятикратным объемом фосфатного буфера (pH 7.4÷7.6). Полученный иммуноафинный гель с привитыми - ковалентно связанными - молекулами токсиканта-антигена разводят в фосфатном буфере (pH 7.4÷7.6) в соотношении 1:3 и хранят при температуре 4°C.For the preparation of an immunoaffinity gel, for example, 0.5 g of cyanogen bromide activated Sepharose 4B is placed in a container with a porous bottom and washed with 100 ml of 0.001 M hydrochloric acid. After gel swelling, the hydrochloric acid solution is drained and 150 μl of a solution of toxicant antigen with a concentration of 2.5 g / l and 450 μl of carbonate buffer (pH 8.3) containing 0.1 M sodium bicarbonate and 0.1 M sodium chloride are added, after which the mixture is shaken continuously (for 2 hours) at room temperature. The remainder of the unbound toxicant antigen is removed by washing the gel with 5 ml of carbonate buffer (pH 8.3) containing 0.1 M sodium bicarbonate and 0.1 M sodium chloride. To close the remaining free sites of nonspecific binding (active Sepharose groups), a blocking solution is added to the resulting gel with grafted - covalently bound - antigen-toxicant molecules, using a 0.2 M solution of glycine in carbonate buffer (pH 8.3) containing 0.1 M sodium bicarbonate and 0.1 M sodium chloride, and stirred for 2 hours at room temperature. After the blocking procedure, the gel is washed three times sequentially with a five-fold volume of acetate buffer (0.1 M sodium acetate, 0.5 mol sodium chloride, pH 4.0) and a five-fold volume of phosphate buffer (pH 7.4–7.6). The resulting immunoaffinity gel with grafted - covalently bound - toxicant-antigen molecules is diluted in phosphate buffer (pH 7.4 ÷ 7.6) in a ratio of 1: 3 and stored at 4 ° C.

Пример 1Example 1

Для определения уровня токсиканта, например концентрации зераленона, в анализируемой среде (природной воде) предварительно приготовляют - синтезируют раствор конъюгата антивидовых антител, химически связанных с люминесцентными квантовыми точками - полупроводниковые наночастицы CdSe/ZnS, следующим образом.To determine the level of toxicant, for example, the concentration of zelenone, in the analyzed medium (natural water), they pre-prepare - synthesize a solution of a conjugate of antispecies antibodies chemically bound to luminescent quantum dots - CdSe / ZnS semiconductor nanoparticles, as follows.

20 µл раствора антивидовых антител в карбонатном буфере (0,1 M гидрокарбоната натрия, 0,1 M хлорида натрия, pH 8,3) сливают с 800 µл раствора квантовых точек CdSe/ZnS (разведение 1/10 в карбонатном буфере (0,1 M гидрокарбоната натрия, 0,1 М хлорида натрия, pH 8,3), количество квантовых точек CdSe/ZnS равно 3.2×10-4 µmo1) и перемешивают в течение 12 часов при температуре 4°C.20 μl of a solution of antispecies antibodies in carbonate buffer (0.1 M sodium bicarbonate, 0.1 M sodium chloride, pH 8.3) is drained from 800 μl of a CdSe / ZnS quantum dot solution (1/10 dilution in carbonate buffer (0.1 M sodium bicarbonate, 0.1 M sodium chloride, pH 8.3), the number of CdSe / ZnS quantum dots is 3.2 × 10-4 µmo1) and stirred for 12 hours at 4 ° C.

Затем 200 мкл ранее приготовленного иммуноаффинного геля с привитыми - ковалентно связанными - молекулами токсиканта-антигена помещают в виде слоя 2 носителя на пористую полиэтиленовую мембрану 3 (фритт), установленную в пустую колонку 1 типа Bond Elut (V=1 мл), предварительно промытую фосфатным буфером (pH 7.4÷7.6) и хранившуюся при температуре 4°C. Затем сверху на слой 2 иммуноаффинного геля с привитыми - ковалентно связанными - молекулами токсиканта-антигена помещают вторую пористую полиэтиленовую мембрану 3 (фритт).Then, 200 μl of a previously prepared immunoaffinity gel with grafted - covalently bound - antigen-toxicant molecules are placed in the form of a carrier layer 2 onto a porous polyethylene membrane 3 (frit) installed in an empty Bond Elut column 1 (V = 1 ml), previously washed with phosphate buffer (pH 7.4 ÷ 7.6) and stored at 4 ° C. Then, on top of layer 2 of an immunoaffinity gel with grafted - covalently bound - molecules of a toxicant-antigen, a second porous polyethylene membrane 3 (frit) is placed.

К 1 мл анализируемой среды добавляют 25 мкл раствора специфичных к токсиканту - зераленону моноклональных мышиных антител, перемешивают в течение 5 минут и пропускают через подготовленную выше указанным образом колонку 1, после чего промывают колонку 1 фосфатным буфером (рН 7.4÷7.6), содержащим 0,05% Tween 20.To 1 ml of the analyzed medium, add 25 μl of a solution specific for the toxicant - Zeralenone monoclonal mouse antibodies, mix for 5 minutes and pass through column 1 prepared as above, then wash column 1 with phosphate buffer (pH 7.4 ÷ 7.6) containing 0, 05% Tween 20.

Затем в колонку 1 вводят 100 мкл предварительно приготовленного раствора конъюгата антивидовых антител, химически связанных с люминесцентными квантовыми точками - полупроводниковые наночастицы CdSe/ZnS (разведение 1/30 в фосфатном буфере (pH 7.4÷7.6), содержащем 0,05% Tween 20 и 0,2% бычьего сывороточного альбумина), и инкубируют в течение 6 минут. Избыток конъюгата удаляют путем промывания колонки 1 фосфатным буфером (pH 7.4÷7.6), после чего осуществляют освещение носителя - слоя 2, содержащего люминесцентные квантовые точки - полупроводниковые наночастицы, световым потоком, поступающим от источника 4 возбуждающего излучения, и регистрируют возникший в результате возбуждающего излучения уровень люминесценция, величина которого обратно пропорциональна концентрации токсиканта - зераленона - в анализируемой среде.Then, 100 μl of a pre-prepared solution of a conjugate of antispecies antibodies chemically bound to luminescent quantum dots — CdSe / ZnS semiconductor nanoparticles (1/30 dilution in phosphate buffer (pH 7.4–7.6) containing 0.05% Tween 20 and 0 , 2% bovine serum albumin), and incubated for 6 minutes. Excess conjugate is removed by washing column 1 with phosphate buffer (pH 7.4–7.6), after which the carrier, layer 2, containing luminescent quantum dots — semiconductor nanoparticles — is illuminated with the light flux coming from the source of exciting radiation 4, and the resulting radiation is recorded the level of luminescence, the value of which is inversely proportional to the concentration of the toxicant - Zeralenone - in the analyzed medium.

При этом, если в анализируемой среде концентрация токсиканта - зераленона - превышает концентрацию специфических антител, добавленных к анализируемой пробе, которая соответствует, например, предельно допустимой концентрации токсиканта, то происходит связывание всех специфических антител с молекулами токсиканта - зераленона, а при пропускании через носитель - слой 2 - раствора конъюгата антивидовых антител с флуоресцентными метками - люминесцентными квантовыми точками - из-за отсутствия специфических антител, связанных с помощью молекул зераленона, сорбированных на носителе - слое 2, содержащиеся в конъюгате антивидовые антитела остаются несвязанными (свободными) и удаляются после промывки из колонки 1 вместе с люминесцентными квантовыми точками - полупроводниковыми наночастицами CdSe/ZnS. В результате при облучении носителя - слоя 2 - источником 4 возбуждающего излучения люминесценция не возникает.Moreover, if in the analyzed medium the concentration of the toxicant - Zeralenone - exceeds the concentration of specific antibodies added to the analyzed sample, which corresponds, for example, to the maximum permissible concentration of the toxicant, then all specific antibodies are bound to the molecules of the toxicant - Zeralenone, and when passed through the carrier, layer 2 - a solution of the conjugate of antispecies antibodies with fluorescent labels - luminescent quantum dots - due to the lack of specific antibodies associated with molecules of zeralenone adsorbed on a carrier - layer 2, the antispecies antibodies contained in the conjugate remain unbound (free) and are removed after washing from column 1 together with luminescent quantum dots - CdSe / ZnS semiconductor nanoparticles. As a result, upon irradiation of the carrier — layer 2 — with the source 4 of exciting radiation, luminescence does not occur.

В том случае если в анализируемой среде концентрация токсиканта - зераленона - не превышает концентрацию специфических антител, добавленных к анализируемой пробе, которая соответствует, например, предельно допустимой концентрации токсиканта, или токсикант - зераленон - в анализируемой среде отсутствует, то происходит связывание избыточных специфических антител с молекулами токсиканта - зераленона, сорбированного на носителе - слое 2 - и при пропускании через носитель - слой 2 раствора конъюгата антивидовых антител с флуоресцентными метками - люминесцентными квантовыми точками - происходит связывание специфических антител, связавшихся с молекулами зераленона, сорбированными на носителе-слое 2, с содержащимися в конъюгате антивидовыми антителами, содержащими люминесцентные квантовые точки - полупроводниковые наночастицы CdSe/ZnS. В результате при облучении носителя - слоя 2 - источником 4 возбуждающего излучения возникает люминесценция, уровень которой обратно пропорционален концентрации токсиканта - зераленона - в анализируемой среде.If in the analyzed medium the concentration of the toxicant - Zeralenone - does not exceed the concentration of specific antibodies added to the analyzed sample, which corresponds, for example, to the maximum permissible concentration of the toxicant, or the toxicant - Zeralenone - in the analyzed medium, there is no binding of excess specific antibodies to molecules of the toxicant - zeralenone adsorbed on the carrier - layer 2 - and when passing through the carrier - layer 2 of a solution of a conjugate of antispecies antibodies with a fluorescent label mi - luminescent quantum dots - the binding of specific antibodies that bind to Zeralenone molecules adsorbed on the carrier layer 2 to antivirus antibodies in the conjugate containing luminescent quantum dots - CdSe / ZnS semiconductor nanoparticles. As a result, upon irradiation of the carrier — layer 2 — with the source 4 of exciting radiation, luminescence arises, the level of which is inversely proportional to the concentration of the toxicant, zeralenone, in the analyzed medium.

При этом поступающий из носителя - слоя 2 - суммарный световой фронт, состоящий из полезного сигнала люминесценции и паразитного сигнала возбуждающего излучения, проходит через светофильтр 7, который ослабляет паразитный сигнал, и отфильтрованный суммарный световой фронт с выделенным полезным сигналом фокусируется оптической системой 6 на фотоприемник 5 (фотодиод). Выработанный на выходе фотоприемника 5 электрический сигнал (значение напряжения которого соответствует уровню люминесценции) усиливается усилителем сигнала 8, оцифровывается с помощью аналого-цифрового преобразователя 9, и в цифровом представлении передаются для регистрации на вход блока 10 управления - контроллера - для регистрации уровня люминесценции, где обрабатывается путем сопоставления с предварительно занесенными в память калибровочными постоянными, и количественное значение уровня люминесценции, пропорциональное концентрации токсиканта - зераленона, и/или соответствующее значение уровня (концентрации) токсиканта заносится в память блока 10 управления - контроллера - и отображается в блоке 11 индикации.In this case, the total light front coming from the carrier, layer 2, consists of a useful luminescence signal and a spurious excitation signal, passes through a filter 7, which attenuates the spurious signal, and the filtered total light front with the extracted useful signal is focused by the optical system 6 onto the photodetector 5 (photodiode). The electric signal generated at the output of the photodetector 5 (the voltage value of which corresponds to the luminescence level) is amplified by a signal amplifier 8, digitized using an analog-to-digital converter 9, and transmitted in digital form for registration to the input of the control unit 10 - controller - for recording the luminescence level, where is processed by comparing with the calibration constants previously stored in the memory, and a quantitative value of the luminescence level proportional to the concentration tion of the toxicant - zeralenone, and / or the corresponding value of the level (concentration) of the toxicant is stored in the memory of the control unit 10 - controller - and displayed in the display unit 11.

Кроме того, блок 10 управления - контроллер - в соответствии с заложенным программным алгоритмом в автоматическом режиме осуществляет программируемое управление работой светодиодов источника 4 возбуждающего излучения, нормируя посредством блока 12 стабилизации напряжение источника 1 возбуждающего излучения, и обеспечивает сохранение в памяти параметров калибровочных постоянных (калибровочной кривой), значения которых определяются в процессе предварительных тарировочных измерений с использованием стандартных источников возбуждающего излучения и предварительной калибровки колонки 1 с использованием образцов анализируемой среды, содержащей токсиканты, например зераленон, известной концентрации.In addition, the control unit 10 - the controller - in accordance with the laid down program algorithm automatically performs programmable control of the LEDs of the excitation radiation source 4, normalizing the voltage of the excitation radiation source 1 by means of the stabilization unit 12, and ensures that the calibration constant parameters are saved in the memory (calibration curve ), the values of which are determined in the process of preliminary calibration measurements using standard excitation sources about radiation and preliminary calibration of column 1 using samples of the analyzed medium containing toxicants, for example zeralenone, of known concentration.

Пример 2Example 2

Для определения уровня токсиканта, например концентрации зераленона, в анализируемой среде (природной воде) предварительно приготовляют поэтапно раствор конъюгата антивидовых антител с липосомами, содержащими водорастворимые люминесцентными квантовые точки - полупроводниковые наночастицы CdSe/ZnS, следующим образом.To determine the level of a toxicant, for example, the concentration of Zeralenone, in a test medium (natural water), a solution of a conjugate of antispecies antibodies with liposomes containing water-soluble luminescent quantum dots - CdSe / ZnS semiconductor nanoparticles is preliminarily prepared as follows.

На первом этапе методом гидратирования тонких пленок готовят липосомы, содержащие водорастворимые люминесцентными квантовые точки - полупроводниковые наночастицы CdSe/ZnS. Для этого 70 мг (94 µмоль) фосфолипидов (Lipoid S75) растворяют в 1 мл хлороформа в круглодонной колбе (V=10 мл). Затем хлороформ выпаривают с помощью роторного испарителя до образования пленки фосфолипидов на стенках колбы. Образовавшуюся пленку фосфолипидов обрабатывают 6 мл воды, содержащей 5 µмоль квантовых точек CdSe/ZnS, и перемешивают в течение 30 минут при температуре 45°C. Затем раствор обрабатывают ультразвуком в течение 5 минут для достижения приемлемого размера частиц липосом (порядка 100 нм). Полученный раствор, содержащий липосомы с водорастворимыми квантовыми точками CdSe/ZnS, хранят при температуре 45°C.At the first stage, liposomes containing water-soluble luminescent quantum dots - semiconductor CdSe / ZnS nanoparticles are prepared by the method of hydration of thin films. For this, 70 mg (94 μmol) of phospholipids (Lipoid S75) are dissolved in 1 ml of chloroform in a round-bottom flask (V = 10 ml). Then chloroform is evaporated using a rotary evaporator until a phospholipid film is formed on the walls of the flask. The resulting phospholipid film is treated with 6 ml of water containing 5 μmole CdSe / ZnS quantum dots, and stirred for 30 minutes at a temperature of 45 ° C. Then the solution is treated with ultrasound for 5 minutes to achieve an acceptable particle size of liposomes (of the order of 100 nm). The resulting solution containing liposomes with water-soluble CdSe / ZnS quantum dots is stored at a temperature of 45 ° C.

На втором этапе синтезируют раствор конъюгата антивидовых антител с липосомами, содержащими квантовые точки.At the second stage, a solution of the conjugate of antispecies antibodies with liposomes containing quantum dots is synthesized.

Для этого к 0,4 мл раствора, содержащего липосомы с инкорпорированными квантовыми точками - полупроводниковыми наночастицами CdSe/ZnS, капельно при постоянном перемешивании добавляют 0,5 мл 2,5% раствора глутарового альдегида в воде, после чего образовавшийся раствор перемешивают в течение 4 часов при комнатной температуре. Избыток глутарового альдегида удаляют с помощью диализа в течение 2 дней при температуре 4°C. Затем капельно при постоянном перемешивании в течение 2 часов при комнатной температуре добавляют 20 µл раствора антивидовых антител в фосфатном буфере (pH 7.4-7.6). Затем добавляют 60 µл 3M глицина в растворе гидроксида натрия (pH 7,2) для блокирования оставшихся свободными альдегидных групп глутарового альдегида на поверхности липосом. Полученную смесь выдерживают при температуре 4°C при постоянном перемешивании. Избыток не прореагировавших компонентов удаляют с помощью диализа в течение 3 часов. Полученные конъюгаты хранят при температуре 4°C.For this, 0.5 ml of a 2.5% solution of glutaraldehyde in water is added dropwise with constant stirring to 0.4 ml of a solution containing liposomes with incorporated quantum dots - CdSe / ZnS semiconductor nanoparticles, after which the resulting solution is stirred for 4 hours at room temperature. Excess glutaraldehyde is removed by dialysis for 2 days at 4 ° C. Then, 20 μl of a solution of antispecies antibodies in phosphate buffer (pH 7.4-7.6) is added dropwise with constant stirring for 2 hours at room temperature. Then 60 μl of 3M glycine in sodium hydroxide solution (pH 7.2) is added to block the remaining free aldehyde groups of glutaraldehyde on the surface of the liposomes. The resulting mixture was kept at 4 ° C with constant stirring. Excess unreacted components are removed by dialysis within 3 hours. The resulting conjugates were stored at 4 ° C.

К 1 мл анализируемой среды добавляют 25 мкл раствора специфичных к токсиканту - зераленону - моноклональных мышиных антител, перемешивают в течение 5 минут и пропускают через подготовленную аналогично примеру 1 колонку 1, после чего промывают колонку 1 фосфатным буфером (pH 7.4÷7.6), содержащим 0,05% Tween 20.To 1 ml of the analyzed medium, add 25 μl of a solution of toxicant specific - Zeralenone - monoclonal mouse antibodies, mix for 5 minutes and pass through column 1 prepared analogously to Example 1, after which column 1 is washed with phosphate buffer (pH 7.4 ÷ 7.6) containing 0 , 05% Tween 20.

Затем в колонку 1 вводят 100 мкл предварительно приготовленного раствора конъюгата антивидовых антител, химически связанных с липосомами, содержащими водорастворимые люминесцентные квантовые точки - полупроводниковые наночастицы CdSe/ZnS (разведение 1/30 в фосфатном буфере (pH 7.4÷7.6), и инкубируют в течение 6 минут. Избыток конъюгата удаляют путем промывания колонки 1 фосфатным буфером (pH 7.4÷7.6), после чего осуществляют освещение носителя - слоя 2, содержащего люминесцентные квантовые точки - полупроводниковые наночастицы, световым потоком, поступающим от источника 4 возбуждающего излучения, и регистрируют возникший в результате возбуждающего излучения уровень люминесценции, величина которого обратно пропорциональна концентрации токсиканта - зераленона - в анализируемой среде.Then, 100 μl of a pre-prepared solution of a conjugate of antispecies antibodies chemically coupled to liposomes containing water-soluble luminescent quantum dots — CdSe / ZnS semiconductor nanoparticles (dilution 1/30 in phosphate buffer (pH 7.4–7.6)) are then introduced and incubated for 6 minutes, excess conjugate is removed by washing column 1 with phosphate buffer (pH 7.4–7.6), after which the carrier, layer 2 containing luminescent quantum dots — semiconductor nanoparticles — is illuminated by from the source 4 of exciting radiation, and the level of luminescence arising as a result of exciting radiation is recorded, the value of which is inversely proportional to the concentration of the toxicant - zeralenone - in the analyzed medium.

Пример 3Example 3

Для определения уровня токсиканта, например концентрации зераленона, в анализируемой среде (природной воде) предварительно приготовляют поэтапно раствор конъюгата зераленона с липосомами, содержащими гидрофобные люминесцентными квантовые точки - полупроводниковые наночастицы CdSe/ZnS, следующим образом.To determine the level of a toxicant, for example, the concentration of Zeralenone, in a test medium (natural water), a solution of Zeralenone conjugate with liposomes containing hydrophobic luminescent quantum dots - CdSe / ZnS semiconductor nanoparticles is preliminarily prepared as follows.

На первом этапе 70 мг (94 µмоль) фосфолипидов (Lipoid S75) и 30 пмоль гидрофобных квантовых точек (λem = 577 nm) в толуоле (52 µл) растворяют в 1 мл хлороформа в круглодонной колбе (V=10 мл) при воздействии ультразвуком при температуре 4°C.At the first stage, 70 mg (94 μmol) of phospholipids (Lipoid S75) and 30 pmol of hydrophobic quantum dots (λem = 577 nm) in toluene (52 μl) are dissolved in 1 ml of chloroform in a round-bottom flask (V = 10 ml) when exposed to ultrasound at temperature 4 ° C.

Затем в образовавшийся раствор добавляют 3 мл воды и хлороформ выпаривают с помощью роторного испарителя. После этого добавляют еще 3 мл воды и в течение 60 минут перемешивают раствор с образовавшимися липосомами при температуре 4°C.Then, 3 ml of water was added to the resulting solution, and chloroform was evaporated using a rotary evaporator. Then add another 3 ml of water and mix the solution with the formed liposomes at 4 ° C for 60 minutes.

Затем раствор обрабатывают ультразвуком в течение 5 минут для достижения приемлемого размера частиц липосом (порядка 100 нм). Полученный раствор, содержащий липосомы с гидрофобными квантовыми точками CdSe/ZnS, хранят при температуре 4°C.Then the solution is treated with ultrasound for 5 minutes to achieve an acceptable particle size of liposomes (of the order of 100 nm). The resulting solution containing liposomes with hydrophobic CdSe / ZnS quantum dots is stored at 4 ° C.

На втором этапе осуществляют синтез конъюгата антивидовых антител с липосомами, содержащими гидрофобные квантовые точки.At the second stage, a conjugate of antispecies antibodies with liposomes containing hydrophobic quantum dots is synthesized.

Для этого к 0,4 мл раствора, содержащего липосомы с инкорпорированными квантовыми точками - полупроводниковыми наночастицами CdSe/ZnS, капельно при постоянном перемешивании добавляют 0,5 мл 2,5% раствора глутарового альдегида в воде, после чего образовавшийся раствор перемешивают в течение 3 часов при комнатной температуре. Избыток глутарового альдегида удаляют с помощью диализа в течение 2 дней при температуре 4°C. Затем капельно при постоянном перемешивании в течение 2 часов при комнатной температуре добавляют 20 µл раствора антивидовых антител в фосфатном буфере (pH 7.4-7.6). Затем добавляют 60 µл 3M глицина в растворе гидроксида натрия (pH 7,2) для блокирования оставшихся свободными альдегидных групп глутарового альдегида на поверхности липосом. Полученную смесь выдерживают при температуре 4°C при постоянном перемешивании. Избыток не прореагировавших компонентов удаляют с помощью диализа в течение 3 часов. Полученные конъюгаты хранят при температуре 4°C.For this, 0.5 ml of a 2.5% solution of glutaraldehyde in water is added dropwise with constant stirring to 0.4 ml of a solution containing liposomes with incorporated quantum dots - CdSe / ZnS semiconductor nanoparticles, after which the resulting solution is stirred for 3 hours at room temperature. Excess glutaraldehyde is removed by dialysis for 2 days at 4 ° C. Then, 20 μl of a solution of antispecies antibodies in phosphate buffer (pH 7.4-7.6) is added dropwise with constant stirring for 2 hours at room temperature. Then 60 μl of 3M glycine in sodium hydroxide solution (pH 7.2) is added to block the remaining free aldehyde groups of glutaraldehyde on the surface of the liposomes. The resulting mixture was kept at 4 ° C with constant stirring. Excess unreacted components are removed by dialysis within 3 hours. The resulting conjugates were stored at 4 ° C.

К 1 мл анализируемой среды добавляют 25 мкл раствора специфичных к токсиканту - зераленону - моноклональных мышиных антител, перемешивают в течение 5 минут и пропускают через подготовленную аналогично примеру 1 колонку 1, после чего промывают колонку 1 фосфатным буфером (pH 7.4÷7.6), содержащим 0,05% Tween 20.To 1 ml of the analyzed medium, add 25 μl of a solution of toxicant specific - Zeralenone - monoclonal mouse antibodies, mix for 5 minutes and pass through column 1 prepared analogously to Example 1, after which column 1 is washed with phosphate buffer (pH 7.4 ÷ 7.6) containing 0 , 05% Tween 20.

Затем в колонку 1 вводят 100 мкл предварительно приготовленного раствора конъюгата антивидовых антител, химически связанных с липосомами, содержащими гидрофобные люминесцентные квантовые точки - полупроводниковые наночастицы CdSe/ZnS, (разведение 1/30 в фосфатном буфере (pH 7.4÷7.6), и инкубируют в течение 10 минут. Избыток конъюгата удаляют путем промывания колонки 1 фосфатным буфером (рН7.4÷7.6), после чего осуществляют освещение носителя - слоя 2, содержащего люминесцентные квантовые точки - полупроводниковые наночастицы, световым потоком, поступающим от источника 4 возбуждающего излучения, и регистрируют возникший в результате возбуждающего излучения уровень люминесценция, величина которого пропорциональна концентрации токсиканта - зераленона - в анализируемой среде.Then, 100 μl of a pre-prepared solution of a conjugate of antispecies antibodies chemically coupled to liposomes containing hydrophobic luminescent quantum dots — CdSe / ZnS semiconductor nanoparticles (dilution 1/30 in phosphate buffer (pH 7.4–7.6)) was added and incubated for 10 minutes, excess conjugate is removed by washing column 1 with phosphate buffer (pH 7.4–7.6), after which the carrier, layer 2, containing luminescent quantum dots — semiconductor nanoparticles — is illuminated by the light flux 4 m from the source of the exciting radiation is detected and the resulting excitation emission level of luminescence, which is proportional to the concentration of fluorine - zearalenone - in assay medium.

Заявленное изобретение обеспечивает возможность определения уровня токсикантов в воде, продуктах питания или физиологических жидкостях путем проводимого в колонке тест-системы непрямого конкурентного иммуноферментного анализа уровня токсиканта с пределом обнаружения (чувствительностью) 1÷3 нг/мл.The claimed invention provides the ability to determine the level of toxicants in water, food, or physiological fluids by conducting an indirect competitive enzyme-linked immunosorbent assay of a toxicant level in the column of the test system with a detection limit (sensitivity) of 1 ÷ 3 ng / ml.

Claims (4)

1. Способ определения уровня токсикантов в воде, продуктах питания или физиологических жидкостях путем проводимого в колонке тест-системы твердофазного иммуноферментного анализа, характеризующийся тем, что в колонке тест-системы размещают носитель в виде зафиксированного между двумя пористыми мембранами слоя иммуноаффинного геля с привитыми - ковалентно связанными - молекулами токсиканта, производят обработку носителя - слоя геля - блокирующим раствором для закрытия на носителе оставшихся свободными мест неспецифического связывания, вносят тестируемые образцы, содержащие определенное количество предварительно введенных специфичных к токсиканту антител, производят обработку носителя конъюгатсодержащим раствором, в качестве которого используют раствор конъюгата антивидовых антител, химически связанных с люминесцентными квантовыми точками или с липосомами, содержащими люминесцентные квантовые точки, а уровень токсикантов определяют путем освещении обработанного носителя возбуждающим излучением по интенсивности люминесценции, возбужденной в квантовых точках.1. A method for determining the level of toxicants in water, food products or physiological fluids by means of an enzyme-linked immunosorbent assay carried out in a column of a test system, characterized in that a carrier is placed in the form of a layer of immuno-affinity gel grafted between two porous membranes with grafted covalently bound by toxicant molecules, the carrier, the gel layer, is treated with a blocking solution to close the remaining non-specific binding sites on the carrier, test samples containing a certain amount of previously introduced toxicant-specific antibodies are introduced, the carrier is treated with a conjugate-containing solution, which is used as a solution of a conjugate of antispecies antibodies chemically bound to luminescent quantum dots or to liposomes containing luminescent quantum dots, and the level of toxicants is determined by lighting of the treated carrier by exciting radiation in terms of the luminescence intensity excited in quantum dots . 2. Способ по п.1, характеризующийся тем, что иммуноаффинный гель приготовляют в емкости с пористым дном путем обработки циан бром активированной сефарозы соляной кислотой и введения после набухания в полученный гель раствора антигена - токсиканта - в карбонатном буфере.2. The method according to claim 1, characterized in that the immunoaffinity gel is prepared in a container with a porous bottom by treating cyanogen bromide with activated sepharose with hydrochloric acid and injecting a solution of the antigen-toxicant in the carbonate buffer after swelling into the resulting gel. 3. Тест-система для способа определения уровня токсикантов в воде, продуктах питания или физиологических жидкостя по п.1, включающая колонку, в которой установлен носитель в виде слоя иммуноаффинного геля, размещенного между двумя пористыми мембранами, характеризующаяся тем, что колонка снабжена устройством для измерения уровня люминесценции, включающим источник возбуждающего излучения и фотоприемник, причем перед фотоприемником дополнительно установлена фокусирующая оптическая система, а выход фотоприемника электрически подключен через усилитель сигнала и аналого-цифровой преобразователь к блоку управления - контроллеру, к выходу которого подключены блок индикации и через блок стабилизации источник возбуждающего излучения, при этом боковые стенки колонки выполнены из прозрачного для возбуждающего и люминесцентного излучения материала.3. The test system for a method for determining the level of toxicants in water, food or physiological fluids according to claim 1, including a column in which a carrier is mounted in the form of a layer of immunoaffinity gel placed between two porous membranes, characterized in that the column is equipped with a device for measuring the luminescence level, including the source of the exciting radiation and the photodetector, moreover, a focusing optical system is additionally installed in front of the photodetector, and the output of the photodetector is electrically connected Erez signal amplifier and an analog-digital converter to a control unit - a controller, which are connected to the output display unit and the stabilization unit via a source of exciting radiation, the side walls of the columns are made transparent to the exciting radiation and the luminescent material. 4. Тест-система по п.3, характеризующаяся тем, что перед фокусирующей оптической системой размещен светофильтр. 4. The test system according to claim 3, characterized in that a light filter is placed in front of the focusing optical system.
RU2013138679/15A 2013-08-21 2013-08-21 Method for determining level of toxicants in water, food products or physiological liquids, and test system RU2538707C1 (en)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2013138679/15A RU2538707C1 (en) 2013-08-21 2013-08-21 Method for determining level of toxicants in water, food products or physiological liquids, and test system

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2013138679/15A RU2538707C1 (en) 2013-08-21 2013-08-21 Method for determining level of toxicants in water, food products or physiological liquids, and test system

Publications (1)

Publication Number Publication Date
RU2538707C1 true RU2538707C1 (en) 2015-01-10

Family

ID=53288169

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
RU2013138679/15A RU2538707C1 (en) 2013-08-21 2013-08-21 Method for determining level of toxicants in water, food products or physiological liquids, and test system

Country Status (1)

Country Link
RU (1) RU2538707C1 (en)

Citations (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2371726C1 (en) * 2008-07-03 2009-10-27 Государственное научное учреждение Всероссийский научно-исследовательский и технологический институт биологической промышленности РАСХН Complex test-system of immuno-enzyme analysis (iea) for determination of level of antibodies to viral respiratory diseases of livestock
RU2374649C1 (en) * 2008-05-04 2009-11-27 Государственное образовательное учреждение высшего профессионального образования "Саратовский государственный университет им. Н.Г. Чернышевского" Test system for immunoenzymometric determination of toxicants

Patent Citations (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2374649C1 (en) * 2008-05-04 2009-11-27 Государственное образовательное учреждение высшего профессионального образования "Саратовский государственный университет им. Н.Г. Чернышевского" Test system for immunoenzymometric determination of toxicants
RU2371726C1 (en) * 2008-07-03 2009-10-27 Государственное научное учреждение Всероссийский научно-исследовательский и технологический институт биологической промышленности РАСХН Complex test-system of immuno-enzyme analysis (iea) for determination of level of antibodies to viral respiratory diseases of livestock

Non-Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
RU2426779 C1, (Российская Федерация, от имени которой выступает Министерство образования и науки Российской Федерации (RU), Государственное учебно-научное учреждение Биологический факультет Московского государственного университета имени М.В.Ломоносова (RU)), 20.08.2011. BALMAND S. et al. Whole cell immobilized biosensors for toxicity assessment of a wastewater treatment plant treating phenolics containing waste. Anal. Chim. Acta, V.487, Iss. 1, 1 July 2003, p.61-74 *

Similar Documents

Publication Publication Date Title
CN108474743B (en) Optical detection of substances in fluids
US9475046B2 (en) Method and device for immunoassay
JP6260541B2 (en) An immunoassay to reduce the effects of impurities
EA013337B1 (en) Method for rapid identifying mycotoxins
JPH08501146A (en) Method for improving measurement accuracy in vanishing wave optical biosensor analysis
KR20130091644A (en) Homogeneous chemiluminescence assay methods with increased sensitivity
CA2832010C (en) A device for detecting an analyte
CN108700572A (en) Method for the bile acid in the kit of the bile acid in quantitative Biosample and quantitative Biosample
KR20160134796A (en) Glycated protein assay
CN103026230B (en) Co-coupling to control reactivity of reagents in immunoassays
US20150198528A1 (en) Assay detection system
JP6677284B2 (en) Analyte detection method and lateral flow test strip
JP6605802B2 (en) Microorganism detection method by immunoassay, sample treatment method for immunoassay, sample pretreatment solution for immunoassay, and immunochromatography test kit
RU2538707C1 (en) Method for determining level of toxicants in water, food products or physiological liquids, and test system
JP4810639B2 (en) Quantitative method using infrared fluorescent particles
US10871447B2 (en) Bleaching of dyes in luminescent detection
JP4913454B2 (en) Method for measuring vitamin concentration and method for measuring PCB concentration
RU2508553C1 (en) Method for determining level of toxicants in water, food products or physiological liquids, and test system
Carter et al. Rapid detection of aflatoxin B1 with immunochemical optrodes
RU2547577C1 (en) Method of determining level of toxicants in water, food products or body fluids and test system
RU2005100042A (en) SUITABLE FOR HIGH-PERFORMANCE SCREENING (HTS) METHOD AND TEST SYSTEM FOR DETERMINING THE INTERACTION BETWEEN C-REACTIVE PROTEIN AND RELATED TO C-REACTIVE PROTEIN COMPONENTS
RU2506586C1 (en) Method to determine level of toxicants in water, food or physiological liquids and test system
JP7190196B2 (en) Norovirus lateral flow analyzer using time-resolved fluorescence analysis and measurement method using the same
CN103712963B (en) A kind of fluorescence analysis method and device
KR20240033262A (en) Articles and methods for performing analysis

Legal Events

Date Code Title Description
MM4A The patent is invalid due to non-payment of fees

Effective date: 20190822