RU2533238C1 - Method for mycoplasma hominis dna detection from blood samples - Google Patents

Method for mycoplasma hominis dna detection from blood samples Download PDF

Info

Publication number
RU2533238C1
RU2533238C1 RU2013127081/15A RU2013127081A RU2533238C1 RU 2533238 C1 RU2533238 C1 RU 2533238C1 RU 2013127081/15 A RU2013127081/15 A RU 2013127081/15A RU 2013127081 A RU2013127081 A RU 2013127081A RU 2533238 C1 RU2533238 C1 RU 2533238C1
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
dna
sorbent
precipitate
washing
supernatant
Prior art date
Application number
RU2013127081/15A
Other languages
Russian (ru)
Inventor
Наталья Авенировна Герасимова
Наталья Петровна Евстигнеева
Original Assignee
Федеральное Государственное Бюджетное Учреждение "Уральский Научно-Исследовательский Институт Дерматовенерологии И Иммунопатологии" Министерства Здравоохранения Российской Федерации (Фгбу "Урниидвии" Минздрава России)
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Федеральное Государственное Бюджетное Учреждение "Уральский Научно-Исследовательский Институт Дерматовенерологии И Иммунопатологии" Министерства Здравоохранения Российской Федерации (Фгбу "Урниидвии" Минздрава России) filed Critical Федеральное Государственное Бюджетное Учреждение "Уральский Научно-Исследовательский Институт Дерматовенерологии И Иммунопатологии" Министерства Здравоохранения Российской Федерации (Фгбу "Урниидвии" Минздрава России)
Priority to RU2013127081/15A priority Critical patent/RU2533238C1/en
Application granted granted Critical
Publication of RU2533238C1 publication Critical patent/RU2533238C1/en

Links

Abstract

FIELD: medicine.
SUBSTANCE: invention represents a method for the Mycoplasma hominis DNA detection from a blood sample by dividing it into a supernatant and precipitate by centrifugation followed by enriching the analysed material, recovering DNA by affine sorption with a sorbent and a lysis buffer added, incubating, washing the sorbent precipitate three times by centrifugation and removing the supernatant, drying the sorbent precipitate, adding a DNA elution solution and detecting by the PCR method. The method is characterised by the fact that the material to be analysed is a whole blood precipitate and to be enriched while recovering DNA by doubling up a number of test tubes per one sample with the whole blood precipitate 100 mcl and the sorbent 20 mcl in each; before the washing procedure, each test tube is added with the washing solution 375 mcl, while the content of the test tubes is combined in one test tube with adding the DNA elution solution 40 mcl to the sorbent precipitate.
EFFECT: higher diagnostic accuracy.
1 tbl

Description

Изобретение относится к области медицины, а именно к способам выявления молекулярных маркеров Mycoplasma hominis (М. hominis) для дальнейшего применения в диагностическом алгоритме.The invention relates to medicine, namely to methods for detecting molecular markers of Mycoplasma hominis (M. hominis) for further use in the diagnostic algorithm.

М. hominis относят к условно-патогенным микроорганизмам, распространенность которых в различных популяционных группах варьирует от 10 до 50% (по данным ряда авторов, до 80%). М. hominis может в норме колонизировать органы урогенитальной системы и нередко выявляются у клинически здоровых лиц (5-20%). Однако при определенных условиях эти микроорганизмы могут вызывать развитие воспалительных процессов мочеполового тракта [1].M. hominis is classified as opportunistic microorganisms, the prevalence of which in various population groups varies from 10 to 50% (according to several authors, up to 80%). M. hominis can normally colonize the organs of the urogenital system and are often detected in clinically healthy individuals (5-20%). However, under certain conditions, these microorganisms can cause the development of inflammatory processes of the genitourinary tract [1].

Инфицирование происходит преимущественно половым путем. Также имеет место внутриутробное инфицирование плода и заражение новорожденных при прохождении через инфицированные родовые пути матери. М. hominis могут являться причиной негонококкового уретрита и простатита, воспалительных заболеваний органов малого таза (сальпингиты, оофориты, эндометриты, аднекситы), патологии беременности и плода, бесплодия у женщин и мужчин, а также перинатальной инфекции новорожденных. Социальная значимость урогенитальной микоплазменной инфекции состоит в ее осложнениях: нарушении репродуктивной функции в виде бесплодия, угрозы прерывания беременности, частого недонашивания, патологии плаценты, внутриутробного инфицирования плода [2].Infection occurs mainly through sexual contact. There is also intrauterine infection of the fetus and infection of the newborn when passing through the infected birth canal of the mother. M. hominis can cause non-gonococcal urethritis and prostatitis, pelvic inflammatory diseases (salpingitis, oophoritis, endometritis, adnexitis), pregnancy and fetal pathology, infertility in women and men, as well as perinatal infections of newborns. The social significance of urogenital mycoplasma infection consists in its complications: violation of reproductive function in the form of infertility, threatened abortion, frequent prematurity, placenta pathology, fetal infection [2].

Обследование на урогенитальные микоплазмы проводится по клиническим показаниям. Основными методами идентификации микоплазм являются:Examination for urogenital mycoplasmas is carried out according to clinical indications. The main methods for identifying mycoplasmas are:

1. Молекулярно-биологические методы, основанные на амплификации специфических фрагментов ДНК/РНК из урогенитального тракта труднокультивируемых возбудителей М. hominis, с использованием тест-систем, разрешенных к медицинскому применению в Российской Федерации.1. Molecular biological methods based on the amplification of specific DNA / RNA fragments from the urogenital tract of difficult to cultivate pathogens M. hominis, using test systems approved for medical use in the Russian Federation.

2. Культуральное (бактериологическое) исследование для идентификации М. hominis. Микоплазмы очень требовательны к питательным средам и с трудом выделяются культуральным методом от больных, особенно при хронических инфекциях.2. Cultural (bacteriological) research for identification of M. hominis. Mycoplasmas are very demanding on nutrient media and are hardly distinguished by the cultural method from patients, especially in chronic infections.

Метод полимеразной цепной реакции (ПЦР) позволяет выявить генетический материал возбудителя инфекции, обладает высокой чувствительностью и специфичностью. Результат анализа не зависит от состояния иммунной системы и стадии заболевания, а определяется лишь фактом наличия возбудителя, либо его генетического материала в исследуемом образце. Исследование позволяет выявлять микоплазмы различных видов. Тест используется для подтверждения диагноза при генерализованных формах микоплазменной инфекции [3].The method of polymerase chain reaction (PCR) allows you to identify the genetic material of the pathogen, has high sensitivity and specificity. The result of the analysis does not depend on the state of the immune system and stage of the disease, but is determined only by the fact of the presence of the pathogen, or its genetic material in the test sample. The study allows the detection of various types of mycoplasmas. The test is used to confirm the diagnosis of generalized forms of mycoplasma infection [3].

В основе выделения ДНК методом аффинной сорбции лежит избирательная сорбция на поверхности силикогеля в присутствие хаотропной соли лизирующего буфера. Ингибиторы и другие компоненты исследуемого материала, которые могут привести к ухудшению реакции, остаются в растворе. С помощью центрифугирования силикагель с адсорбированной ДНК осаждается, а надосадочная жидкость с ингибиторами ПЦР удаляется. Серия последующих отмывок обеспечивает получение высокоочищенной ДНК, благодаря чему, данная методика является универсальной и подходит для широкого спектра биологических образцов, в том числе образцов с высоким содержанием белков, таких как биоптаты или цельная кровь, а также для обнаружения различных инфекций с максимальной чувствительностью. При диагностическом исследовании проб сыворотки крови пациентов возможны ложноотрицательные результаты, т.к. проведенные исследования показали, что в сыворотке крови микоплазмы выявляются значительно реже, чем в урогенитальном тракте [4].The basis for DNA isolation by affinity sorption is selective sorption on the surface of the silica gel in the presence of a chaotropic salt of lysis buffer. Inhibitors and other components of the test material, which can lead to a worsening of the reaction, remain in solution. Using centrifugation, silica gel with adsorbed DNA is precipitated, and the supernatant with PCR inhibitors is removed. A series of subsequent washes provides highly purified DNA, so this technique is universal and suitable for a wide range of biological samples, including samples with a high protein content, such as biopsy specimens or whole blood, as well as for detecting various infections with maximum sensitivity. In the diagnostic study of blood serum samples of patients, false-negative results are possible, because studies have shown that in serum mycoplasmas are detected much less frequently than in the urogenital tract [4].

Для получения сыворотки пробирки с кровью отстаивают в течение 30 минут до полного образования сгустка. Затем центрифугируют при 3000 об/мин в течение 10 минут при комнатной температуре [5]. Предварительная подготовка образцов крови для получения сыворотки (супернатанта) способствует осаждению вместе с форменными элементами крови в неиспользуемый в диагностике осадок и жизненных форм искомых микроорганизмов, что приводит к снижению ценности сыворотки как объекта исследования с целью диагностики М. hominis.To obtain serum, blood tubes are assayed for 30 minutes until a clot forms completely. Then centrifuged at 3000 rpm for 10 minutes at room temperature [5]. Preliminary preparation of blood samples to obtain serum (supernatant) promotes precipitation together with blood cells in the sediment and life forms of the desired microorganisms, which are not used in diagnostics, which leads to a decrease in the value of serum as an object of study for the diagnosis of M. hominis.

Следовательно, диагностика микоплазменной инфекции не может быть основана на выявлении ДНК в сыворотке крови с помощью ПЦР. В то же время этот метод может оказаться полезным для изучения путей и способов распространения микоплазм в организме, генерализации инфекции и механизмов патогенеза [2]. Так, в сыворотке крови больных с хронической урогенитальной микоплазменной инфекцией, при синдроме хронической усталости и ряде других хронических патологических состояниях удавалось обнаружить ДНК микоплазм и уреаплазм методом ПЦР при отрицательных результатах культурального метода [6].Therefore, the diagnosis of mycoplasma infection cannot be based on the detection of DNA in blood serum by PCR. At the same time, this method may be useful for studying the ways and means of spreading mycoplasmas in the body, generalization of infection, and pathogenesis mechanisms [2]. So, in the blood serum of patients with chronic urogenital mycoplasma infection, with chronic fatigue syndrome and a number of other chronic pathological conditions, it was possible to detect mycoplasma DNA and ureaplasma by PCR with negative results of the culture method [6].

Выявление ДНК М. hominis из крови высокоинформативно для установления причин хронических, малосимптомных воспалительных заболеваний верхнего и нижнего отделов урогенитального тракта, поражения суставов, что является показателем генерализации инфекции. Однако низкое содержание инфекционного агента в образцах крови требует определенных подходов для повышения информативности метода.Detection of M. hominis DNA from the blood is highly informative for establishing the causes of chronic, low-symptomatic inflammatory diseases of the upper and lower parts of the urogenital tract, joint damage, which is an indicator of the generalization of infection. However, the low content of the infectious agent in blood samples requires certain approaches to increase the information content of the method.

Наиболее близким решением является обнаружение урогенитальных микоплазм (М. hominis) человека в сыворотке крови (супернатанте) методом ПЦР [7]. Аликвоту сыворотки крови 1 мл центрифугировали (предварительное обогащение). К осадку добавляли 100 мкл транспортной среды и выделяли ДНК методом аффинной сорбции (по инструкции [8]).The closest solution is the detection of human urogenital mycoplasmas (M. hominis) in blood serum (supernatant) by PCR [7]. A 1 ml aliquot of blood serum was centrifuged (pre-enrichment). 100 μl of transport medium was added to the precipitate, and DNA was isolated by affinity sorption (according to the instructions [8]).

Амплификацию ДНК проводили в амплификаторе Терцик, а ее детекцию - с помощью электрофоретического анализа в агарозном геле.Amplification of DNA was carried out in a Tertsik amplifier, and its detection was performed using agarose gel electrophoretic analysis.

Данным способом в сыворотке крови М. hominis была обнаружена в 8% случаев.In this way, in the blood serum of M. hominis was detected in 8% of cases.

Задачей изобретения является усовершенствование метода обнаружения ДНК М. hominis из крови.The objective of the invention is to improve the method for detecting M. hominis DNA from blood.

Технический результат, который будет достигнут от использования изобретения, заключается в повышении точности диагностики М. hominis.The technical result that will be achieved by using the invention is to improve the accuracy of the diagnosis of M. hominis.

Технический результат достигается тем, что в способе выделения ДНК М. hominis из образцов крови путем ее разделения центрифугированием на супернатант и осадок, последующее обогащение исследуемого материала, выделение ДНК методом аффинной сорбции с добавлением сорбента и лизирующего буфера, инкубацию, трехкратную отмывку сорбентного осадка центрифугированием и удалением надосадочной жидкости, высушивание сорбентного осадка, добавление раствора для элюции ДНК и детекцию ПЦР-методом, в качестве исследуемого материала используют осадок цельной крови, а его обогащение производят в процессе выделения ДНК путем удвоения числа пробирок на один образец со 100 мкл осадка цельной крови и 20 мкл сорбента, в которые перед третьей отмывкой добавляют по 375 мкл отмывочного раствора, а их содержимое соединяют в одну пробирку и к сорбентному осадку добавляют 40 мкл раствора для элюции ДНК.The technical result is achieved by the fact that in the method of isolating M. hominis DNA from blood samples by separating it by centrifugation into a supernatant and a precipitate, subsequent enrichment of the test material, DNA isolation by affinity sorption with the addition of a sorbent and lysis buffer, incubation, three times washing of the sorbent precipitate by centrifugation and removal of the supernatant, drying of the sorbent precipitate, addition of a solution for DNA elution and detection by PCR method; blood enrichment, and its enrichment is carried out in the process of DNA extraction by doubling the number of tubes per sample with 100 μl of whole blood sediment and 20 μl of sorbent, to which, before the third washing, 375 μl of the washing solution are added, and their contents are combined into one tube and 40 μl of DNA elution solution was added to the sorbent precipitate.

Сущность изобретения состоит в определенных подходах, способствующих повышению точности диагностики (детекции) ДНК М. hominis в крови:The invention consists in certain approaches that enhance the accuracy of diagnosis (detection) of M. hominis DNA in the blood:

1. Выбор в качестве объекта исследования - осадка цельной крови, содержащего наибольшее количество бактериальных частиц.1. The choice as the object of study - the whole blood sediment containing the largest number of bacterial particles.

2. Учитывая биологическую особенность - содержание инфекционного агента в крови в количествах на грани детекции, включен дополнительный этап обогащения образца (исследуемого материала) в процессе выделения ДНК, который позволяет анализировать удвоенное количество осадка цельной крови без снижения эффективности сорбции ДНК на силикогеле и без повышения содержания нежелательных примесей, ингибирующих ПЦР, при этом:2. Considering the biological feature - the content of the infectious agent in the blood in quantities on the verge of detection, an additional stage of enrichment of the sample (test material) in the process of DNA extraction is included, which allows you to analyze twice the amount of whole blood sediment without reducing the efficiency of DNA sorption on silica gel and without increasing the content undesirable impurities that inhibit PCR, while:

- лизирование образца в присутствии силикогеля в двух отдельных пробирках создает пространственно оптимальные условия прохождения процесса лизиса и способствует эффективной сорбции ДНК и отмывке от ингибиторов;- lysis of the sample in the presence of silicogel in two separate tubes creates spatially optimal conditions for the passage of the lysis process and promotes effective sorption of DNA and washing from inhibitors;

- 20 мкл раствора сорбента является необходимым и достаточным количеством (подобрано экспериментальным путем) для полной сорбции ДНК, полученной из 100 мкл лизированной цельной крови- 20 μl of a sorbent solution is a necessary and sufficient amount (experimentally selected) for complete sorption of DNA obtained from 100 μl of lysed whole blood

- использование отмывочного раствора в количестве 375 мкл подобрано для половинной наполненности пробирки эппендорф (макс. объем 1500 мкл) при соединении раствора сорбента из двух пробирок в одну и не снижает качество третьей отмывки сорбента;- the use of a washing solution in an amount of 375 μl is selected to half-fill the eppendorf tube (max. volume 1,500 μl) when the sorbent solution is combined from two tubes into one and does not reduce the quality of the third sorbent washing;

- добавление сорбента в каждую пробирку по 20 мкл (общее количество объема - 40 мкл) и выход сорбированной ДНК в 40 мкл раствора для элюции повышает концентрацию ДНК и вероятность попадания целевой ДНК в реакцию амплификации со специфичными праймерами.- the addition of a sorbent to each tube of 20 μl (total volume of 40 μl) and the output of sorbed DNA in 40 μl of an elution solution increases the concentration of DNA and the likelihood of the target DNA getting into the amplification reaction with specific primers.

Из анализа научно-технической и патентной литературы использование в качестве исследуемого образца осадка цельной крови и его обогащение перед выделением ДНК М. hominis методом ПЦР заявляемой совокупностью приемов обеспечивает увеличение вероятности попадания ДНК искомого агента в образец, что увеличивает шансы наработки специфической ДНК во время амплификации - т.е. шансы положительного результата при наличии инфекционного агента, т.е. значительного повышения точности диагностики, нами не выявлено, что позволяет сделать вывод о соответствии заявляемого решения критериям «новизна» и «изобретательский уровень».From the analysis of scientific, technical and patent literature, the use of whole blood sediment as a test sample and its enrichment before M. hominis DNA is isolated by PCR by the claimed combination of techniques provides an increase in the probability of the DNA of the desired agent entering the sample, which increases the chances of producing specific DNA during amplification - those. the chances of a positive result in the presence of an infectious agent, i.e. a significant increase in the accuracy of diagnosis, we have not identified, which allows us to conclude that the proposed solutions meet the criteria of "novelty" and "inventive step".

Изобретение осуществляется следующим образом.The invention is as follows.

Цельную венозную кровь, взятую в пробирку с антикоагулянтом, центрифугируют при 3000 об/мин в течение 20 минут при комнатной температуре. Затем отбирают всю плазму (супернатант), а осадок берут на исследование методом ПЦР.Whole venous blood taken in a tube with an anticoagulant is centrifuged at 3000 rpm for 20 minutes at room temperature. Then the whole plasma (supernatant) is taken, and the precipitate is taken for examination by PCR.

Во все пробирки вносят по 20 мкл сорбента и по 100 мкл осадка цельной крови, вортексируют и инкубируют при комнатной температуре 7 минут, постоянно перемешивая. Затем осаждают сорбент центрифугированием при 5 тыс об/мин в течение 30 секунд. Удаляют надосадочную жидкость, используя вакуумный отсасыватель и отдельный наконечник без фильтра для каждой пары пробирок.20 μl of sorbent and 100 μl of whole blood sediment are added to all tubes, vortexed and incubated at room temperature for 7 minutes, constantly stirring. Then the sorbent is precipitated by centrifugation at 5 thousand rpm for 30 seconds. Remove the supernatant using a vacuum aspirator and a separate tip without filter for each pair of tubes.

Затем проводят отмывку №1. Для чего добавляют 300 мкл раствора для отмывки №1, перемешивают на вортексе до полного ресуспендирования сорбента. Осаждают сорбент центрифугированием при 5 тыс об/мин в течение 30 секунд. Удаляют надосадочную жидкость, используя вакуумный отсасыватель и отдельный наконечник без фильтра для каждой пары пробирок. Отмывку №2 проводят с добавлением в пробы по 500 мкл раствора для отмывки №2, перемешивают на вортексе до полного ресуспендирования сорбента. Осаждают сорбент центрифугированием при 5 тыс об/мин в течение 30 секунд. Удаляют надосадочную жидкость, используя вакуумный отсасыватель и отдельный наконечник без фильтра для каждой пары пробирок. Отмывку №3 проводят с добавлением в пробы по 375 мкл раствора для отмывки №2, перемешивают на вортексе до полного ресуспендирования сорбента. Затем суспензию сорбента из одной пробирки переносят дозатором на 1000 мкл с одноразовым наконечником и фильтром во вторую пробирку образца, тем самым соединяют в одну пробу, содержащую 700 мкл суспензии. Вортексируют. Осаждают сорбент центрифугированием при 5 тыс. об/мин в течение 30 секунд. Удаляют надосадочную жидкость, используя вакуумный отсасыватель и отдельный наконечник для каждой пробы. Пробирку с открытой крышкой, содержащей сорбентный осадок, помещают в термостат при T 65°C на 10-15 минут для его подсушивания.Then carry out washing No. 1. Why add 300 μl of solution for washing No. 1, mix on a vortex until complete resuspension of the sorbent. The sorbent is precipitated by centrifugation at 5 thousand rpm for 30 seconds. Remove the supernatant using a vacuum aspirator and a separate tip without filter for each pair of tubes. Washing No. 2 is carried out with 500 μl of washing solution No. 2 added to the samples, mixed with a vortex until the sorbent is fully resuspended. The sorbent is precipitated by centrifugation at 5 thousand rpm for 30 seconds. Remove the supernatant using a vacuum aspirator and a separate tip without filter for each pair of tubes. Washing No. 3 is carried out with the addition of 375 μl of washing solution No. 2 to the samples, mixed with a vortex until the sorbent is fully resuspended. Then the suspension of the sorbent from one tube is transferred by a 1000 μl dispenser with a disposable tip and a filter to the second sample tube, thereby combining into one sample containing 700 μl of the suspension. Vortexing. The sorbent is precipitated by centrifugation at 5 thousand rpm for 30 seconds. Remove the supernatant using a vacuum aspirator and a separate tip for each sample. A tube with an open cap containing a sorbent precipitate is placed in a thermostat at T 65 ° C for 10-15 minutes to dry it.

Затем проводят стадию элюирования ДНК: добавляют 40 мкл раствора для элюции ДНК, перемешивают на вортексе и помещают в термостат при 65°C на 5 минут, периодически встряхивая на вортексе. Центрифугируют пробирку при 12 тыс. об/мин в течение 1 минуты на микроцентрифуге. Сливают надосадочную жидкость в чистую пробирку. ДНК готова к постановке ПЦР. Для выделения ДНК М. hominis из цельной крови в качестве лизирующего, отмывочных растворов, раствора для элюции ДНК могут быть использованы любые наборы на основе силикагеля, предназначенные для выделения ДНК из цельной крови.Then, the DNA elution step is carried out: 40 μl of the DNA elution solution is added, mixed on a vortex and placed in a thermostat at 65 ° C for 5 minutes, periodically shaking on a vortex. Centrifuge the tube at 12 thousand rpm for 1 minute in a microcentrifuge. Discard the supernatant in a clean tube. DNA is ready for PCR. To isolate M. hominis DNA from whole blood, any silica gel kits designed to isolate DNA from whole blood can be used as a lysing, washing solution, solution for elution of DNA.

Сравнение эффективности выявления ДНК М. hominis заявляемым способом и способом по прототипу представлено в таблице.A comparison of the detection efficiency of M. hominis DNA by the claimed method and the prototype method is presented in the table.

Figure 00000001
Figure 00000001

Figure 00000002
Figure 00000002

Figure 00000003
Figure 00000003

Как видно из таблицы, заявляемый способ является более информативным: обеспечивает в среднем в 35 раз больший выход специфической ДНК по сравнению с прототипом, в связи с чем увеличивает шансы положительного результата при наличии инфекционного агента, а следовательно, повышает выделение ДНК M. hominis из осадка цельной крови в 1,2 раза по сравнению с выделением из урогенитального тракта. Таким образом, заявляемый способ может быть использован для выявления ДНК M. hominis в осадке цельной крови с помощью ПЦР с целью диагностики урогенитальных микоплазм.As can be seen from the table, the claimed method is more informative: it provides an average of 35 times greater yield of specific DNA compared to the prototype, and therefore increases the chances of a positive result in the presence of an infectious agent, and therefore increases the release of M. hominis DNA from the precipitate whole blood 1.2 times compared with excretion from the urogenital tract. Thus, the inventive method can be used to detect DNA of M. hominis in whole blood sediment using PCR to diagnose urogenital mycoplasmas.

ЛитератураLiterature

1. Ведение больных инфекциями, передающихся половым путем и урогенитальными инфекциями. Клинические рекомендации. Российское общество дерматовенерологов и косметологов. М. 2012. Деловой экспресс. С. 74-78.1. Management of patients with sexually transmitted infections and urogenital infections. Clinical recommendations. Russian Society of Dermatovenerologists and Cosmetologists. M. 2012. Business Express. S. 74-78.

2. Тапильская Н.И. Применение Вильпрафена у пациенток с бесплодием и привычным невынашиванием беременности на этапе прегравидарной подготовки / Трудный пациент. - 2010. №1-2. С.13-18.2. Tapilskaya N.I. The use of Vilprafen in patients with infertility and habitual miscarriage at the stage of pregravid preparation / Difficult patient. - 2010. No. 1-2. S.13-18.

3. Зигангирова Н.А. Персистенция патогенных микоплазм и ее молекулярно-генетические механизмы / Автореферат дисс. … докт. биол. наук, 2001. 46 с.3. Zigangirova N.A. Persistence of pathogenic mycoplasmas and its molecular genetic mechanisms / Abstract of Diss. ... doctor. biol. Sciences, 2001.46 p.

4. Балабанов Д.Н. Антигенемия при урогенитальных микоплазменных инфекциях / Автореф. дисс. … канд. мед. наук, Москва, 2009. - 31 с.4. Balabanov D.N. Antigenemia with urogenital mycoplasma infections / Abstract. diss. ... cand. honey. Sciences, Moscow, 2009. - 31 p.

5. Методические рекомендации. Забор, транспортировка, хранение клинического материала для ПЦР-диагностики. ЦНИЭ МЗ РФ, Москва, 2003. С.4.5. Methodical recommendations. Fence, transportation, storage of clinical material for PCR diagnostics. Central Research Institute of Health of the Russian Federation, Moscow, 2003. P. 4.

6. Раковская И.В. с соавт. Длительность сохранения жизнеспособных клеток, ДНК и антигенов Mycoplasma hominis и уреаплазм в сыворотке крови человека при 37°C "Клин. лаб. диагностика", 2008, №11, С.40-42.6. Rakovskaya I.V. et al. Duration of preservation of viable cells, DNA and antigens of Mycoplasma hominis and ureaplasmas in human serum at 37 ° C "Clin. Laboratory diagnostics", 2008, No. 11, P.40-42.

7. Бархатова О.И. с соавт. "Обнаружение урогенитальных микоплазм человека в сыворотке крови" "Клин. лаб. диагностика", 2008, №3, С.49-51.7. Barkhatova O.I. et al. "Detection of human urogenital mycoplasmas in blood serum" "Clin. Lab. Diagnostics", 2008, No. 3, S.49-51.

8. Инструкция по применению комплекса реагентов для выделения ДНК из клинического материала «ДНК-сорб-В», утверждена Приказом Росздравнадзора от 13.07.09 г. №5535-Пр/09. С.3-4.8. Instructions for the use of a complex of reagents for the isolation of DNA from the clinical material “DNA-sorb-B”, approved by Order of the Federal Service for Health and Safety of 13.07.09 No. 5535-Pr / 09. C.3-4.

Claims (1)

Способ выделения ДНК Mycoplasma hominis из крови путем ее разделения центрифугированием на супернатант и осадок, последующее обогащение исследуемого материала, выделение ДНК методом аффинной сорбции с добавлением сорбента и лизирующего буфера, инкубацию, трехкратную отмывку сорбентного осадка центрифугированием и удалением надосадочной жидкости, высушивание сорбентного осадка, добавление раствора для элюции ДНК и детекцию ПЦР-методом, отличающийся тем, что в качестве исследуемого материала используют осадок цельной крови, а его обогащение производят в процессе выделения ДНК путем удвоения числа пробирок на один образец со 100 мкл осадка цельной крови и 20 мкл сорбента в каждой, в которые перед третьей отмывкой добавляют по 375 мкл отмывочного раствора, а их содержимое соединяют в одну пробирку и к сорбентному осадку добавляют раствор для элюции ДНК в количестве 40 мкл. The method of isolation of Mycoplasma hominis DNA from blood by separation by centrifugation on a supernatant and a precipitate, subsequent enrichment of the test material, DNA isolation by affinity sorption with the addition of a sorbent and lysis buffer, incubation, three-time washing of the sorbent precipitate by centrifugation and removal of the supernatant, drying the sorbent a solution for elution of DNA and detection by PCR method, characterized in that the whole blood sediment is used as the test material, and its enrichment is They are produced in the process of DNA extraction by doubling the number of tubes per sample with 100 μl of a whole blood precipitate and 20 μl of sorbent in each, to which 375 μl of a washing solution is added before the third washing, and their contents are combined into one tube and a solution is added to the sorbent precipitate for elution of DNA in an amount of 40 μl.
RU2013127081/15A 2013-06-13 2013-06-13 Method for mycoplasma hominis dna detection from blood samples RU2533238C1 (en)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2013127081/15A RU2533238C1 (en) 2013-06-13 2013-06-13 Method for mycoplasma hominis dna detection from blood samples

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2013127081/15A RU2533238C1 (en) 2013-06-13 2013-06-13 Method for mycoplasma hominis dna detection from blood samples

Publications (1)

Publication Number Publication Date
RU2533238C1 true RU2533238C1 (en) 2014-11-20

Family

ID=53382632

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
RU2013127081/15A RU2533238C1 (en) 2013-06-13 2013-06-13 Method for mycoplasma hominis dna detection from blood samples

Country Status (1)

Country Link
RU (1) RU2533238C1 (en)

Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2715692C1 (en) * 2019-06-10 2020-03-02 Федеральное бюджетное учреждение науки "Нижегородский научно-исследовательский институт эпидемиологии и микробиологии им. академика И.Н. Блохиной" Федеральной службы по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека" Method for obtaining target dna of urogenital mycoplasmas grown on a selective nutrient medium for full genomic sequencing

Non-Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
RU 2231790 C2 / Московский городской научно-практический центр борьбы с туберкулезом / 27.06.2004. Костюк Светлана Андреевна, Хулуп Генадий Яковлевич / Анализ наличия ДНК Chlamydia Thrachomatis, Mycoplasma Hominis и Ureaplasma Urealyticum методом полимеразной цепной реакции(ПЦР) на основании оценки на этапе электрофореза размера, интенсивности свечения и молекулярной массы фрагмента молекулы ДНК / инструкция по применению, 2005. Инструкция по применению набора реагентов для выявления провирусной ДНК вируса иммунодефицита человека (ВИЧ-1) в клиническом материале методом полимеразной цепной реакции (ПЦР) с гибридизационно-флуоресцентной детекцией "АмплиСенс ДНК-ВИЧ-FL" / Утверждена приказом Росздравнадзора от 12.10.12, N1897-Пр/12. Е.Г. Трынова, Цитова Т.Н., Вылегжанина Е.Я., Бандуренко Н.А / Экспетное генотипирование пятен крови на сорочке Николая II / 19.10.2010 *

Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2715692C1 (en) * 2019-06-10 2020-03-02 Федеральное бюджетное учреждение науки "Нижегородский научно-исследовательский институт эпидемиологии и микробиологии им. академика И.Н. Блохиной" Федеральной службы по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека" Method for obtaining target dna of urogenital mycoplasmas grown on a selective nutrient medium for full genomic sequencing

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Yan et al. Metagenomic Next-Generation Sequencing (mNGS) in cerebrospinal fluid for rapid diagnosis of Tuberculosis meningitis in HIV-negative population
Javadi et al. Qualification study of two genomic DNA extraction methods in different clinical samples
WO2012135815A2 (en) Methods and kits for detecting cell-free pathogen-specific nucleic acids
BRPI0615678A2 (en) method to diagnose infections
Singh et al. Diagnostic application of IS900 PCR using blood as a source sample for the detection of Mycobacterium avium subspecies paratuberculosis in early and subclinical cases of caprine paratuberculosis
Junior et al. Sensitivity of PCR and real-time PCR for the diagnosis of human visceral leishmaniasis using peripheral blood
WO2019075868A1 (en) Method for detecting brucella infection and applications thereof
Kandelaki et al. Human lymphadenopathy caused by ratborne Bartonella, Tbilisi, Georgia
Clothier et al. Effects of bacterial contamination of media on the diagnosis of Tritrichomonas foetus by culture and real-time PCR
Hekmatimoghaddam et al. Comparison of PCR, Wright agglutination test and blood culture for diagnosis of brucellosis in suspected patients.
ZAEIMI et al. Comparative assessment of Chlamydia trachomatis infection in Iranian women with cervicitis: a cross-sectional study
WO2018192452A1 (en) Method for microbiological detection based on exosome nucleic acid and application thereof
RU2533238C1 (en) Method for mycoplasma hominis dna detection from blood samples
CN110878350B (en) Kit for sepsis diagnosis and prognosis evaluation
Yano et al. DNA extraction for short tandem repeat typing from mixed samples using anti-human leukocyte CD45 and ABO blood group antibodies
WO2013163935A1 (en) Method for isolating and obtaining pure and complete fetus genome dna
El Sanousi et al. Comparison of real-time PCR versus ELISA in the diagnosis of cytomegalovirus infection in pregnant women
CN112143796A (en) CARD16 as molecular marker for diagnosis and identification of tuberculosis
CN102146468B (en) Special primer for assisted identification of Streptococcus suis type 2 and Streptococcus suis type 7 and application thereof
Crawshaw et al. A proof of concept study to assess the potential of PCR testing to detect natural Mycobacterium bovis infection in South American camelids
Westermeyer et al. Effects of sampling instrument and processing technique on DNA yield and detection rate for feline herpesvirus-1 via polymerase chain reaction assay
Vică et al. The advantages of using multiplex PCR for the simultaneous detection of six sexually transmitted diseases
RU2452963C1 (en) Diagnostic technique for secondary immunodeficient diseases related to chemical contaminant
CN110184371B (en) Specific primer for detecting acinetobacter cutaneus as well as method and application thereof
CN112481369A (en) Application of MSRB1 as tuberculosis diagnosis molecular marker

Legal Events

Date Code Title Description
MM4A The patent is invalid due to non-payment of fees

Effective date: 20150614