RU2525938C1 - Set of oligonucleotide primers and fluorescently labelled probe for species-specific express-identification of rna of junin virus by method of polymerase chain reaction in real time - Google Patents
Set of oligonucleotide primers and fluorescently labelled probe for species-specific express-identification of rna of junin virus by method of polymerase chain reaction in real time Download PDFInfo
- Publication number
- RU2525938C1 RU2525938C1 RU2013135785/10A RU2013135785A RU2525938C1 RU 2525938 C1 RU2525938 C1 RU 2525938C1 RU 2013135785/10 A RU2013135785/10 A RU 2013135785/10A RU 2013135785 A RU2013135785 A RU 2013135785A RU 2525938 C1 RU2525938 C1 RU 2525938C1
- Authority
- RU
- Russia
- Prior art keywords
- junin virus
- species
- rna
- virus
- polymerase chain
- Prior art date
Links
Images
Landscapes
- Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)
Abstract
Description
Изобретение относится к наборам олигонуклеотидных праймеров и флуоресцентномеченого зонда для видоспецифичной экспресс-идентификации РНК вируса Хунин методом полимеразной цепной реакции в реальном времени и может быть использовано в медицинской практике для выявления генетического материала вируса Хунин в клинических или секционных образцах для уточнения диагноза, а также для решения научно-исследовательских задач по изучению свойств вируса Хунин, созданию диагностических, профилактических или лечебных препаратов против вируса Хунин. Использование специфичных праймеров и зондов позволяет выявлять генетический материал вируса Хунин в исследуемых образцах методом полимеразной цепной реакции (ПЦР) с гибридизационно-флуоресцентной детекцией в режиме реального времени.The invention relates to sets of oligonucleotide primers and a fluorescently labeled probe for species-specific rapid identification of Junin virus RNA by real-time polymerase chain reaction and can be used in medical practice to identify the genetic material of Junin virus in clinical or sectional samples to clarify the diagnosis, as well as to solve research tasks to study the properties of the Junin virus, the creation of diagnostic, prophylactic or therapeutic drugs against the virus unin. The use of specific primers and probes makes it possible to identify the genetic material of the Junin virus in the studied samples by the method of polymerase chain reaction (PCR) with hybridization-fluorescence detection in real time.
Вирус Хунин является представителем рода Arenavirus семейства Arenaviridae (http://www.ictvonline.org/virusTaxonomy.asp?version=2011). Вирусный геном сегментирован (L- и S-сегменты) и представлен одноцепочечной РНК.The Junin virus is a member of the genus Arenavirus of the Arenaviridae family (http://www.ictvonline.org/virusTaxonomy.asp?version=2011). The viral genome is segmented (L- and S-segments) and is represented by single-stranded RNA.
Вирус Хунин является возбудителем Аргентинской геморрагической лихорадки - острого инфекционного заболевания, характеризующегося природной очаговостью; аспирационным (воздушно-пылевой путь), фекально-оральным и контактным механизмами передачи возбудителя; тяжелым течением с общеинтоксикационным синдромом, экзантемой, геморрагическим синдромом.Junin virus is the causative agent of Argentine hemorrhagic fever - an acute infectious disease characterized by natural foci; aspiration (air-dust path), fecal-oral and contact pathogen transmission mechanisms; severe course with general intoxication syndrome, exanthema, hemorrhagic syndrome.
Эндемичными районами для инфекции, общая площадь которых составляет около 150000 км2, являются провинции Аргентины. Ежегодно регистрируются вспышки заболевания с числом заболевших от 100 до 3500 человек. Однако, по приблизительным подсчетам, потенциальный риск на эндемичной территории данная инфекция представляет для 5 млн. человек. Переносчиком вируса Хунин и источником заражения для человека являются грызуны Calomis laucha и Calomis musculinus, которые выделяют вирус со слюной и мочой. Люди инфицируются в результате контактов с инфицированными животными, их экскрементами и мочой, содержащими вирус. Заболевание регистрируется чаще у жителей сельских районов [Маркин В.А., Пантиухов В.Б., Марков В.И., Бондарев В.П. Аргентинская геморрагическая лихорадка //ЖМЭИ. - 2012. - 2. - Стр. 78-87].The endemic areas for infection, with a total area of about 150,000 km 2 , are the provinces of Argentina. Outbreaks of the disease with the number of cases from 100 to 3500 people are recorded annually. However, according to rough estimates, the potential risk in the endemic territory of this infection is for 5 million people. The carriers of the Junin virus and the source of infection for humans are rodents Calomis laucha and Calomis musculinus, which secrete the virus with saliva and urine. People become infected through contact with infected animals, their excrement, and urine containing the virus. The disease is recorded more often among residents of rural areas [Markin V.A., Pantiukhov V.B., Markov V.I., Bondarev V.P. Argentine hemorrhagic fever // ZhMEI. - 2012. - 2. - Page 78-87].
Летальность при заболевании аргентинской геморрагической лихорадкой колеблется от 15 до 30 %.Mortality in cases of Argentine hemorrhagic fever disease ranges from 15 to 30%.
Актуальность своевременной диагностики лихорадки Хунин в странах, не являющихся эндемичными территориями, связана с возможностью завоза этой инфекции из Южной Америки.The relevance of timely diagnosis of Junin fever in countries that are not endemic territories is associated with the possibility of importation of this infection from South America.
Известна тест-система для диагностики Аргентинской геморрагической лихорадки на основе метода ИФА с возможностью определения наличия специфических иммуноглобулинов к вирусу Хунин [ S., H., T. et al. Serological Assays Based on Recombinant Viral Proteins for the Diagnosis of Arenavirus Hemorrhagic Fevers // Viruses. - 2012. - 4(10). - P.2097-114]. A known test system for the diagnosis of Argentine hemorrhagic fever based on the ELISA method with the ability to determine the presence of specific immunoglobulins for the Junin virus [S., H., T. et al. Serological Assays Based on Recombinant Viral Proteins for the Diagnosis of Arenavirus Hemorrhagic Fevers // Viruses. - 2012 .-- 4 (10). - P.2097-114].
Однако иммуноглобулины класса М появляются на 10-20 сут после заражения, что приводит к поздней диагностике заболевания. However, class M immunoglobulins appear 10-20 days after infection, which leads to late diagnosis of the disease.
Наиболее близким аналогом (прототипом) является ПЦР тест-система для выявления РНК вируса Хунин методом обратной транскрипции в режиме реального времени. [Vieth S., Drosten Ch., Charrel R. et al. Establishment of conventional and fluorescence resonance energy transfer-based real-time PCR assays for detection of pathogenic New World arenaviruses // J. Clin. Virol. - 2005. - 32. - P.229-35]. Полимеразная цепная реакция (ПЦР) является методом ранней диагностики данной инфекции и позволяет обнаруживать РНК вируса Хунин в первые дни появления клинических признаков [Lozano M.E., Enría D., Maiztegui J.I. et al. Rapid diagnosis of Argentine hemorrhagic fever by reverse transcriptase PCR-based assay. // J Clin Microbiol. - 1995. - 33(5). - P.1327-1332]. The closest analogue (prototype) is a PCR test system for detecting Junin virus RNA by real-time reverse transcription. [Vieth S., Drosten Ch., Charrel R. et al. Establishment of conventional and fluorescence resonance energy transfer-based real-time PCR assays for detection of pathogenic New World arenaviruses // J. Clin. Virol. - 2005. - 32. - P.229-35]. Polymerase chain reaction (PCR) is a method of early diagnosis of this infection and allows you to detect Junin RNA in the early days of the onset of clinical signs [Lozano M.E., Enría D., Maiztegui J.I. et al. Rapid diagnosis of Argentine hemorrhagic fever by reverse transcriptase PCR-based assay. // J Clin Microbiol. - 1995 .-- 33 (5). - P.1327-1332].
Однако чувствительность вышеуказанной тест-системы составляла около 50 ТЦД50/реакцию, а аналитическая чувствительность - около 1000 геномных эквивалентов/реакцию.However, the sensitivity of the above test system was about 50 TCD 50 / reaction, and the analytical sensitivity was about 1000 genomic equivalents / reaction.
Техническим результатом заявляемого изобретения является разработка более чувствительного набора специфичных олигонуклеотидных праймеров и зонда для выявления генетического материала вируса Хунин в клинических образцах и биологических жидкостях, образцах внешней среды и других вируссодержащих пробах (культуральная вируссодержащая жидкость и др.) методом ОТ-ПЦР с гибридизационно-флуоресцентной детекцией в режиме реального времени.The technical result of the claimed invention is the development of a more sensitive set of specific oligonucleotide primers and probe for detecting the genetic material of the Junin virus in clinical samples and biological fluids, environmental samples and other virus-containing samples (culture virus-containing liquid, etc.) by RT-PCR with hybridization-fluorescence real time detection.
Указанный технический результат достигается тем, что набор олигонуклеотидных праймеров и флуоресцентномеченого зонда для видоспецифичной экспресс-идентификации РНК вируса Хунин методом полимеразной цепной реакции в реальном времени включает последовательности олигонуклеотидов, видоспецифичные для вируса Хунин и имеющие следующую структуру:The specified technical result is achieved by the fact that the set of oligonucleotide primers and fluorescently labeled probe for species-specific rapid identification of RNA of the Junin virus by real-time polymerase chain reaction includes oligonucleotide sequences species-specific for the Junin virus and having the following structure:
внешний:external:
5΄→3΄ 5΄ TCTTCTTCCCCCYTTTTAGTCTTTCT 3΄5΄ → 3΄ 5΄ TCTTCTTCCCCCYTTTTAGTCTTTCT 3΄
внутренний:interior:
5΄→3΄ 5΄ CGCACAGTGGATCCTAGGCA 3΄5΄ → 3΄ 5΄ CGCACAGTGGATCCTAGGCA 3΄
зонд:probe:
FAM - TGAGTCCATCTAAAGCTTGGNACCTCCTT - BHQ1FAM - TGAGTCCATCTAAAGCTTGGNACCTCCTT - BHQ1
Изобретение иллюстрируется следующими графическими материалами. На фиг. 1 и 2 представлены кривые флуоресценции на канале R6G/Yellow (530 nm/555 nm) амплификатора Rotor Gene 6000.The invention is illustrated by the following graphic materials. In FIG. Figures 1 and 2 show the fluorescence curves on the R6G / Yellow channel (530 nm / 555 nm) of the Rotor Gene 6000 amplifier.
В приложении приведены олигонуклеотидные последовательности, видоспецифичные РНК вируса Хунин.The appendix contains oligonucleotide sequences, species-specific RNA of the Junin virus.
Методика получения набора праймеров и зонда. Диагностические праймеры и флуоресцентно-меченый зонд конструировались для участка S-сегмента генома вируса Хунин и оптимизации концентраций компонентов реакционной смеси и условий проведения ПЦР. Для контроля амплификации были получены рекомбинантные плазмиды, несущие вирусспецифический участок ДНК-матрицы.The method of obtaining a set of primers and probe. Diagnostic primers and a fluorescently-labeled probe were designed for the S-segment of the Junin virus genome and optimization of the concentrations of the components of the reaction mixture and PCR conditions. To control amplification, recombinant plasmids containing the virus-specific region of the DNA template were obtained.
На начальном этапе был проведен анализ нуклеотидных последовательностей геномов вируса Хунин, имеющихся в базе данных NCBI (http://www.ncbi.nlm.nih.gov/), и определены консервативные участки. В качестве мишени для диагностических праймеров и зонда был выбран находящийся в S-сегменте вирусного генома участок гена N, кодирующего нуклеокапсидный белок.At the initial stage, the analysis of the nucleotide sequences of the Hunin virus genomes available in the NCBI database (http://www.ncbi.nlm.nih.gov/) was performed, and conservative sites were determined. As a target for diagnostic primers and a probe, a section of the N gene encoding a nucleocapsid protein located in the S segment of the viral genome was selected.
Анализ свойств олигонуклеотидных праймеров и зондов проводился с использованием программы Vector NTI 9.0.0 (InforMax).The analysis of the properties of oligonucleotide primers and probes was carried out using the Vector NTI 9.0.0 (InforMax) program.
Для идентификации генетического материала вируса Хунин методом ПЦР в реальном времени были подобраны праймеры и зонд, представленные ниже:To identify the genetic material of the Junin virus by real-time PCR, primers and probe were selected, which are presented below:
Пример 1. Проверка аналитической чувствительности набора праймеров и зондов.Example 1. Verification of the analytical sensitivity of a set of primers and probes.
Для контроля амплификации были получены положительные контрольные образцы (ПКО), представляющие собой рекомбинантные плазмиды, несущие вирусспецифические вставки, являющиеся матрицей для амплификации вирусспецифических ДНК-фрагментов.To control amplification, positive control samples (PSC) were obtained, which are recombinant plasmids carrying virus-specific inserts, which are the template for amplification of virus-specific DNA fragments.
Для проведения ПЦР в режиме реального времени, в качестве анализируемых образцов использовали рекомбинантную плазмидную ДНК, включающую вставку ДНК, соответствующую детектируемому участку генома вируса Хунин.For real-time PCR, recombinant plasmid DNA was used as the analyzed samples, including a DNA insert corresponding to the detected part of the Junin virus genome.
Условия проведения амплификации оптимизировались по следующим параметрам: концентрация ионов магния в реакционной смеси; концентрация праймеров и зонда в реакционной смеси; температура отжига праймеров.The amplification conditions were optimized by the following parameters: the concentration of magnesium ions in the reaction mixture; the concentration of primers and probe in the reaction mixture; primer annealing temperature.
Для определения аналитической чувствительности из концентрированного раствора плазмидной ДНК были приготовлены последовательные 10-кратные разведения. Определение концентрации ДНК осуществляли при помощи флуориметра QUBIT (Invitrogen, США) и наборов реагентов того же производителя. ПЦР в режиме реального времени для детекции генетического материала вируса Хунин проводили в приборе Rotor Gene 6000 (Corbett Research, Австралия), детекцию результатов амплификации (рисунок 1) осуществляли по каналу FAM/Green (470 nm/510 nm).To determine the analytical sensitivity of the concentrated plasmid DNA solution, serial 10-fold dilutions were prepared. DNA concentration was determined using a QUBIT fluorimeter (Invitrogen, USA) and reagent kits of the same manufacturer. Real-time PCR for detecting the genetic material of the Junin virus was carried out in a Rotor Gene 6000 instrument (Corbett Research, Australia), the amplification results were detected (Figure 1) using the FAM / Green channel (470 nm / 510 nm).
На фиг. 1 приведены кривые флуоресценции на канале FAM/Green (470 nm/510 nm) амплификатора Rotor Gene 6000 (Corbett Research, Австралия). Обозначение образцов, содержащих разные концентрации ДНК-матрицы, и положительного контрольного образца (ПКО): 1 - 109 ГЭ; 2 - 108 ГЭ; 3 - 107 ГЭ; 4 - 106 ГЭ; 5 - ПКО; 6 - 105 ГЭ; 7 - 104 ГЭ; 8 - 103 ГЭ; 9 - 102 ГЭ в образце.In FIG. Figure 1 shows the fluorescence curves on the FAM / Green channel (470 nm / 510 nm) of the Rotor Gene 6000 amplifier (Corbett Research, Australia). Designation of samples containing different concentrations of the DNA template and positive control sample (FFP): 1 - 10 9 GE; 2 - 10 8 HE; 3 - 10 7 HE; 4 - 10 6 HE; 5 - FFP; 6 - 10 5 HE; 7 - 10 4 HE; 8 - 10 3 HE; 9 - 10 2 HE in the sample.
Минимальное количество ДНК-матриц, детектируемое в ПЦР после оптимизации условий проведения реакции, выраженное в ГЭ (геномных эквивалентах), составило 102 ГЭ в образце.The minimum amount of DNA matrices detected in PCR after optimization of the reaction conditions, expressed in GE (genomic equivalents), was 10 2 GE in the sample.
Пример 2. Определение РНК вируса Хунин в вируссодержащих образцах.Example 2. The definition of RNA of the Junin virus in virus-containing samples.
Инактивацию образцов и выделение РНК проводили в условиях, регламентированных Методическими указаниями МУ 1.3. 2569 -09 «Организация работы лабораторий, использующих методы амплификации нуклеиновых кислот при работе с материалом, содержащим микроорганизмы I - IV групп патогенности».Samples were inactivated and RNA was isolated under the conditions regulated by the Methodological Instructions of MU 1.3. 2569 -09 “Organization of the work of laboratories using nucleic acid amplification methods when working with material containing microorganisms of pathogenicity groups I – IV”.
Для оценки специфичности использовали несколько образцов культуральной вируссодержащей жидкости, полученные с использованием различных культур клеток - Vero, Vero E6 и гомогенатов мозга сосунков мыши с титром вируса Хунин от 2.6х104 ТЦД50/мл до 8.9х105 ТЦД50/мл.To assess the specificity, several samples of the virus-containing culture fluid were used, obtained using various cell cultures - Vero, Vero E6 and brain homogenates of mouse suckers with a Junin virus titer from 2.6 × 10 4 TCD 50 / ml to 8.9 × 10 5 TCD 50 / ml.
Процедуру выделения РНК из исследуемого материала проводили с использованием набора реагентов «Рибо-сорб» (ФГУН ЦНИИЭ Роспотребнадзора) в соответствии с инструкцией по применению.The procedure for isolating RNA from the test material was carried out using the Ribo-sorb reagent kit (FGUN TsNIIE Rospotrebnadzor) in accordance with the instructions for use.
Реакцию обратной транскрипции проводили с использованием набора реагентов «Реверта-L» (ФГУН ЦНИИЭ Роспотребнадзора) в соответствии с инструкцией по применению.The reverse transcription reaction was carried out using the Revert-L reagent kit (FGUN TsNIIE Rospotrebnadzor) in accordance with the instructions for use.
ПЦР в режиме реального времени проводили в реакционной смеси следующего состава (на 1 исследование):Real-time PCR was carried out in the reaction mixture of the following composition (for 1 study):
ПЦР в режиме реального времени и регистрацию результатов проводили в приборе Rotor Gene 6000 (Corbett Research, Австралия) по следующей программе, представленной в таблице 1.Real-time PCR and results were recorded in a Rotor Gene 6000 instrument (Corbett Research, Australia) according to the following program, presented in table 1.
Таблица 1. Программа проведения ПЦРTable 1. PCR program
Измерение флуоресценции осуществляли при температуре 54 °С на канале FAM/Green.Fluorescence was measured at a temperature of 54 ° C on the FAM / Green channel.
Результаты интерпретировали на основании наличия (или отсутствия) пересечения кривой флуоресценции с установленной на соответствующем уровне пороговой линией, что соответствует наличию (или отсутствию) значения порогового цикла Ct в соответствующей графе в таблице результатов. Результат считали положительным в случае, если кривая накопления флуоресценции для соответствующего образца имела характерную «сигмовидную» форму и пересекала пороговую линию. При этом значение Ct для данного образца было не больше 40 (рисунок 1).The results were interpreted based on the presence (or absence) of the intersection of the fluorescence curve with the threshold line set at the appropriate level, which corresponds to the presence (or absence) of the threshold cycle Ct in the corresponding column in the results table. The result was considered positive if the fluorescence accumulation curve for the corresponding sample had a characteristic "sigmoid" shape and crossed the threshold line. In this case, the Ct value for this sample was no more than 40 (Figure 1).
На фиг. 2 приведены кривые флуоресценции образцов, содержащих кДНК вируса Хунин, на канале FAM/Green (470 nm/510 nm) амплификатора Rotor Gene 6000 (Corbett Research, Австралия).In FIG. Figure 2 shows the fluorescence curves of samples containing Junin virus cDNA on the FAM / Green channel (470 nm / 510 nm) of the Rotor Gene 6000 amplifier (Corbett Research, Australia).
Во всех используемых для анализа образцах в оптимизированных условиях проведения реакции ПЦР используемые праймеры и зонды позволяли выявлять РНК вируса Хунин.In all samples used for analysis under optimized conditions for the PCR reaction, the primers and probes used allowed the detection of Junin virus RNA.
Таким образом, минимальное количество РНК вируса, детектируемое в ПЦР после оптимизации условий проведения реакции, выраженное в ГЭ (геномных эквивалентах), составило 100 ГЭ в образце, вследствие чего чувствительность заявляемых праймеров значительно выше прототипа.Thus, the minimum amount of virus RNA detected in PCR after optimization of the reaction conditions, expressed in HE (genomic equivalents), was 100 GE in the sample, as a result of which the sensitivity of the claimed primers is significantly higher than the prototype.
Приложениеapplication
<110> Федеральное бюджетное учреждение науки «Государственный <110> Federal budget institution of science "State
научный центр вирусологии и биотехнологии "Вектор"» (ФБУН Scientific Center of Virology and Biotechnology "Vector" »(FBUN
ГНЦ ВБ "Вектор") SSC WB "Vector")
<120> Набор олигонуклеотидных праймеров и флуоресцентномеченого зонда для видоспецифичной экспресс-идентификации РНК вируса Хунин методом полимеразной цепной реакции в реальном времени<120> A set of oligonucleotide primers and fluorescently labeled probe for species-specific rapid identification of Hunin virus RNA by real-time polymerase chain reaction
<210> 1<210> 1
<223> Последовательности олигонуклеотидов видоспецифические к вирусу Хунин, <223> Sequence-specific oligonucleotides for the Junin virus,
<400> 1 для выявления РНК вируса Хунин:<400> 1 for the detection of Junin virus RNA:
внешний:external:
5΄→3΄ 5΄ TCTTCTTCCCCCYTTTTAGTCTTTCT 3΄5΄ → 3΄ 5΄ TCTTCTTCCCCCYTTTTAGTCTTTCT 3΄
внутренний:interior:
5΄→3΄ 5΄ CGCACAGTGGATCCTAGGCA 3΄5΄ → 3΄ 5΄ CGCACAGTGGATCCTAGGCA 3΄
зонд:probe:
FAM - TGAGTCCATCTAAAGCTTGGNACCTCCTT - BHQ1FAM - TGAGTCCATCTAAAGCTTGGNACCTCCTT - BHQ1
Claims (1)
внешний:
5΄→3΄ 5΄ TCTTCTTCCCCCYTTTTAGTCTTTCT 3΄
внутренний:
5΄→3΄ 5΄ CGCACAGTGGATCCTAGGCA 3΄
зонд:
FAM - TGAGTCCATCTAAAGCTTGGNACCTCCTT - BHQ1 A set of oligonucleotide primers and a fluorescently labeled probe for species-specific rapid identification of Junin virus RNA by real-time polymerase chain reaction, including oligonucleotide sequences species-specific for Junin virus and having the following structure:
external:
5΄ → 3΄ 5΄ TCTTCTTCCCCCYTTTTAGTCTTTCT 3΄
interior:
5΄ → 3΄ 5΄ CGCACAGTGGATCCTAGGCA 3΄
probe:
FAM - TGAGTCCATCTAAAGCTTGGNACCTCCTT - BHQ1
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
RU2013135785/10A RU2525938C1 (en) | 2013-07-30 | 2013-07-30 | Set of oligonucleotide primers and fluorescently labelled probe for species-specific express-identification of rna of junin virus by method of polymerase chain reaction in real time |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
RU2013135785/10A RU2525938C1 (en) | 2013-07-30 | 2013-07-30 | Set of oligonucleotide primers and fluorescently labelled probe for species-specific express-identification of rna of junin virus by method of polymerase chain reaction in real time |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
RU2525938C1 true RU2525938C1 (en) | 2014-08-20 |
Family
ID=51384674
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
RU2013135785/10A RU2525938C1 (en) | 2013-07-30 | 2013-07-30 | Set of oligonucleotide primers and fluorescently labelled probe for species-specific express-identification of rna of junin virus by method of polymerase chain reaction in real time |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
RU (1) | RU2525938C1 (en) |
-
2013
- 2013-07-30 RU RU2013135785/10A patent/RU2525938C1/en active
Non-Patent Citations (1)
Title |
---|
МЕРКУЛОВ В.А. и др., Методические подходы к определению чувствительности амплификационных наборов реагентов и прогнозированию ожидаемой концентрации возбудителя в биопробах по результатам ПЦР, БИОПрепараты, 2010, Декабрь, N4(40), стр.4-7. MARIO E. LOZANO et al., Rapid Diagnosis of Argentine Hemorrhagic Fever by Reverse Transcriptase PCR-Based Assay, JOURNAL OF CLINICAL MICROBIOLOGY, May 1995, Vol. 33, No. 5, p. 1327–1332. Simon Vieth et al., Establishment of conventional and fluorescence resonance energy transfer-based real-time PCR assays for detection of pathogenic New World arenaviruses, Journal of Clinical Virology, 2005, Vol.32, p.p.229–235 * |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
Lau et al. | A real-time PCR for SARS-coronavirus incorporating target gene pre-amplification | |
Yapar et al. | Rapid and quantitative detection of Crimean-Congo hemorrhagic fever virus by one-step real-time reverse transcriptase-PCR | |
Pyrc et al. | Development of loop-mediated isothermal amplification assay for detection of human coronavirus-NL63 | |
Fischer et al. | Detection and differentiation of field and vaccine strains of canine distemper virus using reverse transcription followed by nested real time PCR (RT-nqPCR) and RFLP analysis | |
JP2012080884A (en) | Nucleic acid detection | |
RU2504585C1 (en) | Set of oligodesoxyribonycleotide primers and fluorescent-marked probe for identification of rna of human coronavirus associated with severe sharp respiratory syndrome | |
RU2473702C1 (en) | Set of oligodeoxyribonucleotide primers and fluorescent-marked probes for 229e, nl63, oc43, hku1 coronavirus rna identification by fluorescence in situ hybridisation and reverse transcription-polymerase chain reaction | |
Okamoto et al. | Development of a novel TaqMan real-time PCR assay for detecting rubella virus RNA | |
WO2021212088A1 (en) | Sars-cov-2 test kit for rt-qpcr assays | |
Kim et al. | Differential diagnosis of Brucella abortus by real-time PCR based on a single-nucleotide polymorphisms | |
Xu et al. | Simultaneous detection of novel H7N9 and other influenza A viruses in poultry by multiplex real-time RT-PCR | |
Orlowska et al. | Comparison of real-time PCR and heminested RT-PCR methods in the detection of rabies virus infection in bats and terrestrial animals | |
Vandemeulebroucke et al. | A proposed validation method for automated nucleic acid extraction and RT-qPCR analysis: An example using Bluetongue virus | |
JP2012532627A (en) | Influenza detection method and kit therefor | |
RU2515911C1 (en) | Set of oligodesoxyribonucleic primers and fluorescence-labelled probes for identification of rna and differentiation of human parainfluenza virus of 1, 2, 3 and 4 types | |
Jin | Molecular methods for identification and genotyping of BK virus | |
RU2525937C1 (en) | Set of oligonucleotide primers and fluorescently labelled probe for species-specific express-identification of rna of machupo virus by method of polymerase chain reaction in real time | |
RU2525938C1 (en) | Set of oligonucleotide primers and fluorescently labelled probe for species-specific express-identification of rna of junin virus by method of polymerase chain reaction in real time | |
RU2586527C1 (en) | Oligonucleotide primers and fluorescent probe and method for detection of epidemic diarrhea virus genome by reverse transcription - polymerase chain reaction | |
Suarez | Molecular diagnostic techniques: can we identify influenza viruses, differentiate subtypes and determine pathogenicity potential of viruses by RT-PCR? | |
JP2007514440A (en) | Sensitive and specific test to detect SARS coronavirus | |
Daskou et al. | Development of a reverse transcription loop-mediated isothermal amplification assay (RT-LAMP) that detects enteroviruses by targeting the highly conserved 5′-UTR region | |
Wu et al. | Development of Taqman RT-nested PCR system for clinical SARS-CoV detection | |
Paryan et al. | Design and development of a multiplex real-time PCR assay for detection of HIV-1 and HCV using molecular beacons | |
Peiris et al. | Detection of SARS coronavirus |