RU2519030C1 - Device for preparation, storage and transportation of dry samples of liquid objects to be subject to laboratory analysis - Google Patents
Device for preparation, storage and transportation of dry samples of liquid objects to be subject to laboratory analysis Download PDFInfo
- Publication number
- RU2519030C1 RU2519030C1 RU2013102274/15A RU2013102274A RU2519030C1 RU 2519030 C1 RU2519030 C1 RU 2519030C1 RU 2013102274/15 A RU2013102274/15 A RU 2013102274/15A RU 2013102274 A RU2013102274 A RU 2013102274A RU 2519030 C1 RU2519030 C1 RU 2519030C1
- Authority
- RU
- Russia
- Prior art keywords
- sample
- adsorption element
- dry
- adsorption
- samples
- Prior art date
Links
Abstract
Description
Изобретение относится к области медицины и ветеринарии, в частности, к средствам для взятия, хранения и транспортировки проб биологических жидкостей (кровь, сыворотка, моча, лимфа, пот, молоко, вытяжки тканей и т.д.) с целью последующего проведения анализа материала на содержание биологически активных веществ методами ИФА-диагностики, ПЦР и др.The invention relates to the field of medicine and veterinary medicine, in particular, to means for taking, storing and transporting samples of biological fluids (blood, serum, urine, lymph, sweat, milk, tissue extracts, etc.) with the aim of subsequent analysis of the material on the content of biologically active substances by ELISA, PCR, etc.
Известен (SU, авторское свидетельство 1017343) контейнер для хранения пробы крови. Известный контейнер содержит емкость с крышкой, на которую установлен стержень для крепления гигроскопической бумаги. В нижней части емкости с зазором по отношению к стержню размещен влагопоглотитель и установлено средство его фиксации, содержащее капроновую сетку и пружину. Известный контейнер используют следующим образом. Открывают крышку емкости и каплей крови смачивают поверхность гигроскопической бумаги, закладывают на дно емкости влагопоглотитель и фиксируют его действием капроновой сетки и пружины. После нанесения капли крови на гигроскопическую бумагу крышку емкости закрывают, размещая тем самым гигроскопическую бумагу с каплей крови внутри контейнера над влагопоглотителем. Под действием влагопоглотителя проба крови на гигроскопической бумаге высыхает.Known (SU, copyright 1017343) container for storing blood samples. The known container contains a container with a lid on which a rod for attaching absorbent paper is mounted. A desiccant is placed in the lower part of the tank with a gap with respect to the rod and a means for fixing it is installed, containing a nylon mesh and a spring. A known container is used as follows. The lid of the container is opened and a drop of blood moistens the surface of the absorbent paper, a desiccant is placed on the bottom of the container and fixed by the action of a nylon mesh and a spring. After applying a drop of blood to absorbent paper, the lid of the container is closed, thereby placing absorbent paper with a drop of blood inside the container above the desiccant. Under the action of a desiccant, a blood sample dries on absorbent paper.
Недостатком известного контейнера следует признать сложность его конструкции. Кроме того, не оговорены характеристики поглотителя пробы - гигроскопической бумаги, что не позволяет учесть объем пробы крови при проведении анализа, при этом уменьшается точность анализа.A disadvantage of the known container should be recognized as the complexity of its design. In addition, the characteristics of the sample absorber — absorbent paper — are not specified, which does not allow taking into account the volume of the blood sample during the analysis, while the accuracy of the analysis is reduced.
Широко известен подход (Edelbroek РМ, van der Heijden J and Stolk LM. Dried blood spot methods in therapeutic drug monitoring: methods, assays, and pitfalls. Therapeutic Drug Monitoring 2009; 31(3): 327-336), основанный на использовании пористой целлюлозной бумаги для нанесения на нее пятен крови в виде капель в несколько заранее обозначенных кружочками мест, высушивании полученной бумажной карточки и хранении или пересылки полученных образцов в специализированную лабораторию, где в последующем проводят вырезание кружочков бумаги с сорбированными образцами крови с использованием дырокола и последующую десорбцию образца в раствор с целью дальнейшего проведения анализа на содержание в исходном образце различных биологически активных веществ.A widely known approach (Edelbroek PM, van der Heijden J and Stolk LM. Dried blood spot methods in therapeutic drug monitoring: methods, assays, and pitfalls. Therapeutic Drug Monitoring 2009; 31 (3): 327-336), based on the use of porous cellulose paper for applying blood stains in the form of drops to several places previously indicated by circles, drying the resulting paper card and storing or sending the samples to a specialized laboratory, where they subsequently cut out circles of paper with sorbed blood samples using a hole punch and subsequent desorption of sample into the solution for the purpose of further analysis for the content in the original sample of various biologically active substances.
В заявке Cohen с сотр. (US Patent Application Nr. 2012/0045792 Al) приведено использование в таком варианте в качестве мембранного материала вместо пористой целлюлозы (бумаги) мембраны из стекловолокна с расположенными на ней окружностями для обозначения мест нанесения капель крови.In the application of Cohen et al. (US Patent Application Nr. 2012/0045792 Al) shows the use in this embodiment as a membrane material instead of porous cellulose (paper) of a fiberglass membrane with circles located on it to indicate the places where blood drops were applied.
Недостатками указанных подходов следует признать необходимость нанесения капель крови строго по центру обозначенных на бумаге кружочков, невозможность точного дозирования количества наносимого образца и необходимость использования специальных дыроколов с фиксированным диаметром вырезаемого отверстия бумаги для последующего вырезания кружочков мембраны с образцом для их последующей десорбции. Кроме того, данный способ получения сухих пятен крови не позволяет проводить отделение клеточных элементов крови для последующего использования в анализе только плазмы или сыворотки крови.The disadvantages of these approaches should be recognized as the need to apply blood drops strictly in the center of the circles marked on paper, the impossibility of accurately dosing the amount of applied sample and the need to use special holes with a fixed diameter of the cut paper hole for subsequent cutting of the membrane circles with the sample for their subsequent desorption. In addition, this method of obtaining dry blood stains does not allow the separation of cellular elements of blood for subsequent use in the analysis of only plasma or serum.
Для улучшения потребительских свойств устройства предложено использовать (US, патент 5,516,487) мембраны в виде небольшого листа, на котором в определенных местах заранее перфорированы кружочки, на которые наносят анализируемый образец крови. Данное решение не требует использования дырокола, однако его недостатком является детерминированная площадь поверхности мембраны с определяемым образцом, что не позволяет изменять объем анализируемого образца крови, необходимость нанесения капель крови строго по центру перфорированных кружочков, что часто приводит к затруднениям при получении образцов во внелабораторных условиях, а следовательно, значительным ошибкам при проведении анализа. Перфорированные кружочки могут самопроизвольно отделяться от мембраны до начала аналитической процедуры.To improve the consumer properties of the device, it is proposed to use (US Patent 5,516,487) membranes in the form of a small sheet on which circles are pre-punched in certain places on which the analyzed blood sample is applied. This solution does not require the use of a hole punch, but its disadvantage is the determinate surface area of the membrane with the sample being determined, which does not allow changing the volume of the analyzed blood sample, the need to apply blood drops strictly in the center of the perforated circles, which often leads to difficulties in obtaining samples under non-laboratory conditions, and consequently, significant errors in the analysis. Perforated circles can spontaneously separate from the membrane before the start of the analytical procedure.
Указанное техническое решение использовано в качестве ближайшего аналога разработанного устройства.The specified technical solution was used as the closest analogue of the developed device.
Технический результат, получаемый в результате реализации разработанного технического решения, состоит в упрощении конструкции сорбирующего элемента при одновременном расширении области применения за счет расширения возможных объектов анализа.The technical result obtained as a result of the implementation of the developed technical solution consists in simplifying the design of the sorbing element while expanding the scope by expanding the possible objects of analysis.
Для достижения указанного технического результата предложено использовать разработанное устройство для получения, хранения и транспортировки сухих образцов жидкостных объектов, предназначенных для последующего проведения лабораторного анализа. Разработанное устройство содержит защитный контейнер, в котором размещен, по меньшей мере, один адсорбционный элемент, выполненный с возможностью нанесения на него аликвоты жидкостного объекта, содержащего анализируемые компоненты, и последующего его высушивания, причем адсорбционный элемент для получения сухой пробы выполнен из впитывающего влагу пористого материала с адсорбционной емкостью не менее 40 мг воды на см2, способного к обратимой десорбции сухих компонентов жидкостного объекта в растворитель для пробы при погружении, по меньшей мере, рабочей зоны адсорбционного элемента с высушенным образцом в растворитель для пробы с эффективностью не менее 30% по истечении не более 300 с после контакта высушенного образца с растворителем для пробы.To achieve the specified technical result, it is proposed to use the developed device for receiving, storing and transporting dry samples of liquid objects intended for subsequent laboratory analysis. The developed device contains a protective container in which at least one adsorption element is placed, made with the possibility of applying an aliquot of a liquid object containing the analyzed components on it, and then drying it, and the adsorption element to obtain a dry sample is made of absorbent porous material with an adsorption capacity of at least 40 mg of water per cm 2 capable of reversible desorption of the dry components of a liquid object into a solvent for the sample upon immersion, in m at least the working area of the adsorption element with the dried sample in the sample solvent with an efficiency of at least 30% after not more than 300 s after the contact of the dried sample with the sample solvent.
Конкретизация сорбирующих/десорбирующих характеристик адсорбционного элемента позволяет получать воспроизводимые результаты при анализе биологических жидкостей, поскольку для анализа будут использованы сравнимые количества адсорбированной, высушенной и десорбированной пробы биологической жидкости.Specification of the sorbing / desorbing characteristics of the adsorption element allows to obtain reproducible results in the analysis of biological fluids, since comparable amounts of adsorbed, dried and desorbed samples of the biological fluid will be used for the analysis.
В качестве впитывающего влагу пористого материала адсорбционного элемента могут быть использованы целлюлоза и ее производные, а также стеклянное или полиэфирное микроволокно. Кроме того, адсорбционный элемент может быть выполнен из полисульфона. Выбор конкретного материала, из которого изготовлен адсорбционный элемент, зависит от условий взятия пробы, условий и длительности хранения пробы, а также от вида биологической жидкости, подлежащей анализу.As moisture-absorbing porous material of the adsorption element, cellulose and its derivatives, as well as glass or polyester microfiber, can be used. In addition, the adsorption element may be made of polysulfone. The choice of the specific material from which the adsorption element is made depends on the conditions of sampling, the conditions and duration of storage of the sample, as well as on the type of biological fluid to be analyzed.
В некоторых вариантах реализации адсорбционный элемент выполнен в виде полоски шириной от 0,2 до 2 см и длиной от 1 до 10 см, причем на конце полоски с рабочей зоной на одинаковом расстоянии с шагом 0,2-1,0 см друг от друга в поперечном направлении нанесены идентификационные линии, ограничивающие одинаковые по площади участки. Использование адсорбционного элемента в таком варианте позволяет осуществлять равномерное нанесение анализируемого образца на мембрану путем контакта конца мембраны с образцом в течение определенного времени, достаточного для сорбции жидкости на мембране с определенной площадью поверхности. Нанесение идентификационных линий на полоску с мембраной позволяет путем отрезания мембраны обычными ножницами различным по площади ее участков с хорошей точностью получать высушенные образцы анализируемой жидкости с различным фиксированным содержанием анализируемого материала.In some embodiments, the adsorption element is made in the form of a strip with a width of 0.2 to 2 cm and a length of 1 to 10 cm, and at the end of the strip with the working area at the same distance in increments of 0.2-1.0 cm from each other identification lines are drawn in the transverse direction, restricting areas of equal size. The use of an adsorption element in this embodiment allows uniform application of the analyzed sample on the membrane by contacting the end of the membrane with the sample for a certain time, sufficient to sorb the liquid on the membrane with a certain surface area. The application of identification lines on a strip with a membrane allows, by cutting the membrane with ordinary scissors, different in area of its sections, to obtain, with good accuracy, dried samples of the analyzed liquid with different fixed contents of the analyzed material.
Адсорбционный элемент может дополнительно содержать пористую мембрану, способную задерживать клеточные элементы крови при прохождении через ее структуру крови и расположенную в контакте с рабочей зоной полоски.The adsorption element may further comprise a porous membrane capable of retaining the cellular elements of the blood as it passes through its blood structure and located in contact with the working area of the strip.
В некоторых вариантах реализации защитный контейнер может быть выполнен из плотного материала в виде свернутого конверта, обеспечивающего внешнюю защиту адсорбционного материала с двух сторон.In some embodiments, the protective container may be made of a dense material in the form of a folded envelope that provides external protection of the adsorption material on both sides.
Также защитный контейнер может представлять собой стандартный полимерный наконечник для автоматического или полуавтоматического дозатора. В таком варианте мембранный материал, способный эффективно впитывать в себя кровь или другую биологическую жидкость, строго определенного размера (площади или объема) вкладывают в наконечник, фиксированный объем биологической жидкости (меньший, чем объем жидкости впитываемый мембраной) с использованием автоматического дозатора вносят в наконечник, после чего мембрану с жидкостью высушивают (например, с использованием фена или в присутствии эффективного влагопоглощающего осушителя). Хранение или пересылку полученных образцов осуществляют в полимерных пакетах, предотвращающих поглощение мембраной влаги из окружающей среды. Для проведения анализа наконечник с мембраной и высушенным образцом прикрепляют к дозатору и отбирают дозатором объем буферного раствора, эквивалентный первоначальной пробе, проводят инкубацию в течение нескольких минут для десорбции определяемых компонентов в раствор, раствор переносят в кювету анализатора для проведения анализа с использованием соответствующих наборов реагентов.Also, the protective container may be a standard polymer tip for an automatic or semi-automatic dispenser. In this embodiment, a membrane material capable of effectively absorbing blood or other biological fluid of a strictly defined size (area or volume) is inserted into the tip, a fixed volume of biological fluid (smaller than the volume of fluid absorbed by the membrane) is introduced into the tip using an automatic dispenser, after which the membrane with the liquid is dried (for example, using a hairdryer or in the presence of an effective desiccant desiccant). Storage or transfer of the obtained samples is carried out in polymer bags that prevent the membrane from absorbing moisture from the environment. For analysis, a tip with a membrane and a dried sample is attached to the dispenser and the volume of the buffer solution equivalent to the initial sample is taken out by the dispenser, incubated for several minutes to desorb the determined components into the solution, the solution is transferred to the analyzer cuvette for analysis using appropriate reagent kits.
Возможен вариант реализации, когда защитный контейнер выполнен из плотного материала в виде содержащего осушитель закрывающегося пенала, обеспечивающего внешнюю защиту адсорбционного материала.An implementation option is possible when the protective container is made of dense material in the form of a lockable case containing a desiccant that provides external protection for the adsorption material.
В любом варианте реализации защитного конверта он должен изолировать адсорбционный элемент с нанесенной на него пробой биологической жидкости от внешней среды.In any embodiment of the protective envelope, it must isolate the adsorption element with the breakdown of the biological fluid on it from the external environment.
Устройство выполнено с возможностью анализа биологических жидкостей (кровь, сыворотка, моча, лимфа, пот, молоко, вытяжки тканей и т.д.) живых существ, а также воды и содержащих воду проб.The device is configured to analyze biological fluids (blood, serum, urine, lymph, sweat, milk, tissue extracts, etc.) of living things, as well as water and water-containing samples.
Ниже приведены примеры использования разработанного устройства.Below are examples of the use of the developed device.
Пример 1. Устройство для получения сухих образцов крови для проведения лабораторного иммуноферментного анализа антител к возбудителям инфекционной бурсальной болезни (ИББ) в крови иммунизированных цыплят и кур.Example 1. A device for obtaining dry blood samples for laboratory enzyme-linked immunosorbent assay of antibodies to infectious bursal disease (IBD) pathogens in the blood of immunized chickens and chickens.
С использованием коммерческого иммуноферментного набора реагентов BioChek (Англия) определяли титры антител в крови иммунизированных цыплят кур к возбудителям инфекционной бурсальной болезни (ИББ) и инфекционного энцефаломиелита (АЕ) в нативных и в высушенных на мембране образцах. Для получения сухих пятен крови использовали устройство в виде трех отдельных бумажных полосок шириной 0,5 см и длиной 7 см, находящихся в картонном конверте, при этом один из концов каждой из полосок был закреплен в конверте, обеспечивавшем внешнюю защиту с двух сторон полосок, а второй конец находился в свободном состоянии. Полоски были изготовлены из пористой фильтровальной бумаги фирмы Whatman 903, на которых в поперечном направлении были нанесены тонкие линии на равном расстоянии 0,5 см друг от друга. Сорбционная емкость образца используемой бумаги составляла 90 мкл воды на 1 см2 площади поверхности мембраны. Свободный конец полоски погружали в образец исследуемой крови на 2-3 с(время, в течение которого кровь под действием капиллярных сил проходила на расстояние больше двух обозначенных делений). Полоску вынимали из жидкости и высушивали на воздухе в течение 2 часов. Высушенные образцы хранили при комнатной температуре в течение 2 суток перед проведением анализа. При проведении анализа с использованием ножниц аккуратно отрезали от свободного конца полоски кусочек мембраны, соответствующий двум нанесенным делениям (площадь мембраны с высушенным образцом сыворотки составляла 1 см2). Отрезанный кусочек бумаги с сухим образцом помещали в пробирку, в которую добавляли 270 мкл 0,01 М фосфатного буферного раствора, содержащего 0,14 М NaCl, что в три раза превышало первоначальный сорбированный объем образца крови. Пробирку встряхивали в течение 3 минут. Для проведения анализа из пробирки отбирали аликвоту раствора в объеме 20 мкл, которую затем разводили в 167 раз, чтобы конечное разведение, требуемое согласно инструкции к набору, составило соотношение 1:500. Результаты по определению титра антител к ИББ и АЕ с использованием предлагаемого устройства и нативных образцов крови приведены в таблицах 1 и 2, соответственно.Using the commercial BioChek enzyme-linked immunosorbent reagent kit (England), antibody titers were determined in the blood of immunized chicken chickens against infectious bursal disease (IBD) and infectious encephalomyelitis (AE) pathogens in native and membrane-dried samples. To obtain dry blood stains, a device was used in the form of three separate paper strips 0.5 cm wide and 7 cm long, located in a cardboard envelope, while one of the ends of each of the strips was fixed in an envelope that provided external protection on both sides of the strips, and the second end was in a free state. The strips were made of Whatman 903 porous filter paper, on which thin lines were drawn in the transverse direction at an equal distance of 0.5 cm from each other. The sorption capacity of the sample used paper was 90 μl of water per 1 cm 2 the surface area of the membrane. The free end of the strip was immersed in a sample of the blood for 2-3 s (the time during which the blood under the action of capillary forces passed over a distance of more than two designated divisions). The strip was removed from the liquid and dried in air for 2 hours. The dried samples were stored at room temperature for 2 days before analysis. During the analysis using scissors, a piece of the membrane corresponding to the two applied divisions was carefully cut from the free end of the strip (the area of the membrane with the dried serum sample was 1 cm 2 ). A cut-off piece of paper with a dry sample was placed in a test tube into which 270 μl of 0.01 M phosphate buffer solution containing 0.14 M NaCl was added, which was three times the initial sorbed volume of the blood sample. The tube was shaken for 3 minutes. For analysis, an aliquot of the solution was taken from a test tube in a volume of 20 μl, which was then diluted 167 times so that the final dilution required by the kit instruction was 1: 500. The results for determining the titer of antibodies to IBD and AE using the proposed device and native blood samples are shown in tables 1 and 2, respectively.
Для всех исследованных сывороток полученные с использованием сухих пятен данные хорошо коррелируют с результатами определения титра антител в нативных сыворотках, что свидетельствует о возможности использования устройства для получения сухих пятен сыворотки для последующего серологического исследования.For all the studied sera, the data obtained using dry spots correlate well with the results of determining the titer of antibodies in native sera, which indicates the possibility of using a device for producing dry serum stains for subsequent serological studies.
Пример 2. Устройство для получения сухого образца сыворотки для проведения лабораторного анализа сыворотки кур на наличие антител к возбудителям ньюкаслской болезни (НБ).Example 2. A device for obtaining a dry serum sample for laboratory analysis of chicken serum for the presence of antibodies to Newcastle disease (NB) pathogens.
Сравнительное определение антител к возбудителям ньюкаслской болезни кур определяли в нативных сыворотках, содержащих антитела в различном титре с использованием реакции торможения гемагглютинации (РТГА) в образцах нативных сывороток и образцах, полученных после их высушивания на мембранах и последующей элюции. Для получения сухих пятен сыворотки использовали устройство в виде трех отдельных бумажных полосок шириной 0,5 см и длиной 7 см, находящихся в картонном конверте, при этом один из концов каждой из полосок был закреплен в конверте, обеспечивавшем внешнюю защиту с двух сторон полосок, а второй конец находился в свободном состоянии. Полоски были изготовлены из пористой фильтровальной бумаги фирмы Munktell, на которых в поперечном направлении были нанесены тонкие линии на равном расстоянии 0,5 см друг от друга. Сорбционная емкость образца используемой бумаги составляла 70 мкл воды на 1 см2 площади поверхности мембраны. Свободный конец полоски погружали в образец исследуемой крови на 2-3 сек (время, в течение которого кровь под действием капиллярных сил проходила на расстояние больше двух обозначенных делений). Полоску вынимали из жидкости и высушивали на воздухе в течение 2 часов. Высушенные образцы хранили при комнатной температуре в течение 2 суток перед проведением анализа. При проведении анализа с использованием ножниц аккуратно отрезали от свободного конца полоски кусочек мембраны, соответствующий двум нанесенным делениям (площадь мембраны с высушенным образцом крови составляла 1 см2). Отрезанный кусочек бумаги с сухим образцом помещали в пробирку, в которую добавляли 210 мкл 0,01 М фосфатного буферного раствора, содержащего 0,14 М NaCl, что в три раза превышало первоначальный сорбированный объем образца сыворотки. Пробирку встряхивали в течение 3 минут. Для проведения анализа из пробирки отбирали аликвоту раствора в объеме 20 мкл. Результаты по определению титра антител с использованием предлагаемого устройства и нативных сывороток приведены в таблице 3.A comparative determination of antibodies to Newcastle disease pathogens was determined in native sera containing antibodies in different titers using the hemagglutination inhibition test (RTGA) in samples of native sera and samples obtained after drying on membranes and subsequent elution. To obtain dry serum stains, a device was used in the form of three separate paper strips 0.5 cm wide and 7 cm long located in a cardboard envelope, with one of the ends of each of the strips being fixed in an envelope that provided external protection on both sides of the strips, and the second end was in a free state. The strips were made of porous filter paper from Munktell, on which thin lines were drawn in the transverse direction at an equal distance of 0.5 cm from each other. The sorption capacity of the sample used paper was 70 μl of water per 1 cm 2 the surface area of the membrane. The free end of the strip was immersed in a sample of the studied blood for 2-3 seconds (the time during which the blood under the action of capillary forces passed at a distance of more than two designated divisions). The strip was removed from the liquid and dried in air for 2 hours. The dried samples were stored at room temperature for 2 days before analysis. During the analysis using scissors, a piece of the membrane corresponding to the two applied divisions was carefully cut from the free end of the strip (the area of the membrane with the dried blood sample was 1 cm 2 ). A cut-off piece of paper with a dry sample was placed in a test tube into which 210 μl of 0.01 M phosphate buffer solution containing 0.14 M NaCl was added, which was three times the initial sorbed volume of the serum sample. The tube was shaken for 3 minutes. An aliquot of the solution in a volume of 20 μl was taken from the tube for analysis. The results for determining the titer of antibodies using the proposed device and native sera are shown in table 3.
сыворотке% to the titer of antibodies in native
serum
значениеAverage
value
Как видно из таблицы, титр антител, определяемый в элюентах с использованием сухих образцов сывороток, получаемых с использованием предлагаемого устройства, соответствовал исходному на 88-125%, что свидетельствовало о пригодности данных мембран для получения и хранения образцов сывороток крови птиц для дальнейших серологических исследований.As can be seen from the table, the antibody titer determined in eluents using dry serum samples obtained using the proposed device corresponded to the original 88-125%, which indicated the suitability of these membranes for the preparation and storage of bird serum samples for further serological studies.
Пример 3. Устройство для получения сухих образцов коровьего молока для проведения лабораторного анализа молока для определения содержания прогестерона с целью определения стельности коров.Example 3. A device for obtaining dry samples of cow's milk for laboratory analysis of milk to determine the content of progesterone in order to determine the pregnancy of cows.
Для экспресс-выявления стельности коров использовали подход, основанный на определении концентрации прогестерона (ПГ) в молоке осемененных коров на 21 день после осеменения методом твердофазного конкурентного иммуноферментного анализа. Концентрация ПГ в молоке коров претерпевает циклические изменения. Концентрация ПГ менее 2 нг/мл соответствует моменту овуляции, и затем возрастает до максимума (>10 нг/мл) на 13-15 сутки. Если стельность не наступает, то уровень ПГ падает уже на 18-20 сутки. Если корова стельная, высокая концентрация ПГ сохраняется. Поэтому, определяя концентрацию прогестерона на 21 сутки, можно определить статус исследуемых животных как стельных (с высоким уровнем прогестерона) или нестельных (с низким уровнем прогестерона). Стельной считается корова с содержанием ПГ в молоке >7 нг/мл.For rapid detection of cow pregnancy, an approach based on determining the concentration of progesterone (PG) in the milk of seeded cows on the 21st day after insemination by the method of solid-phase competitive enzyme-linked immunosorbent assay was used. The concentration of GHG in cow's milk undergoes cyclic changes. The concentration of GHGs less than 2 ng / ml corresponds to the moment of ovulation, and then increases to a maximum (> 10 ng / ml) on the 13-15th day. If pregnancy does not occur, then the level of GHG drops already by 18-20 days. If the cow is pregnant, a high concentration of GHG is maintained. Therefore, by determining the concentration of progesterone on day 21, it is possible to determine the status of the studied animals as pregnant (with high levels of progesterone) or non-pregnant (with low levels of progesterone). A cow with a GH content in milk> 7 ng / ml is considered to be a pregnant.
В качестве анализируемого материала использовали как свежеполученные образцы молока коров, так и образцы молока, нанесенного на пористые мембраны предлагаемого устройства. Так как отбор молока у коров осуществляется непосредственно на ферме, а анализ проводится в специализированных лабораториях, процессы транспортировки и сохранения образцов до проведения анализа являются ключевыми. Как правило, для сохранения жидких полученных образцов используют их замораживание, что представляет дополнительные трудности. В данном случае для тестирования предлагаемого устройства для получения сухих образцов аналитического материала использовали вариант устройства, основанный на использовании стандартных наконечников автоматических дозаторов на 200 мкл, в которые были помещены стандартные мембраны Whatman 903 в виде узких свернутых полосок площадью 1 см2. С помощью полуавтоматического одноканального дозатора отбирали объемы молока 50 мкл для каждого животного, наконечники с образцами помещали в штатив и высушивали содержимое с использованием фена в течение 1 часа. Полученные образцы, а также соответствующие образцы свежего молока, перевозили в лабораторию, где проводили определение содержания ПГ в образцах молока с использованием стандартных коммерческих наборов реагентов для твердофазного иммуноферментного анализа ПГ производства компании «Хема-Медика» (РФ) с целью определения стельности животных. Всего был протестирован 101 образец молока от 92 животных. Полученные результаты приведены в таблице 4.As the analyzed material, we used both freshly obtained samples of cow’s milk and samples of milk deposited on the porous membranes of the proposed device. Since milk is taken from cows directly on the farm, and the analysis is carried out in specialized laboratories, the processes of transportation and preservation of samples prior to analysis are key. As a rule, to preserve the liquid samples obtained, their freezing is used, which presents additional difficulties. In this case, to test the proposed device for obtaining dry samples of analytical material, we used a variant of the device based on the use of standard tips of automatic dispensers of 200 μl, in which standard Whatman 903 membranes were placed in the form of narrow folded strips with an area of 1 cm 2 . Using a semi-automatic single-channel dispenser, 50 μl volumes of milk were taken for each animal, the tips with the samples were placed in a tripod, and the contents were dried using a hairdryer for 1 hour. The obtained samples, as well as the corresponding samples of fresh milk, were transported to the laboratory where the GH content in milk samples was determined using standard commercial reagent kits for enzyme-linked immunosorbent assay of GH produced by Hema-Medica (RF) in order to determine the pregnancy of animals. A total of 101 milk samples from 92 animals were tested. The results are shown in table 4.
29% от общего числа проб (всего 29 проб от 27 животных) с использованием метода иммуноферментного анализа были диагностированы как принадлежащие нестельным животным, что в последующем было подтверждено в результате ректального исследования. Количество животных, определенное как стельные, полностью соответствовало для образцов жидкого молока и сухих образцов, полученных в предлагаемом устройстве. Таким образом, имеется полное соответствие между результатами определения ПГ в образцах жидкого и сухого молока, что свидетельствует о применимости предлагаемого устройства для получения сухих образцов биологической жидкости для последующего проведения анализа.Using the enzyme-linked immunosorbent assay, 29% of the total number of samples (total 29 samples from 27 animals) were diagnosed as belonging to unstable animals, which was subsequently confirmed by rectal examination. The number of animals, defined as pregnant, was fully consistent for samples of liquid milk and dry samples obtained in the proposed device. Thus, there is a complete correspondence between the results of determining GHG in samples of liquid and milk powder, which indicates the applicability of the proposed device for producing dry samples of biological fluid for subsequent analysis.
Сравнительный анализ разработанного устройства и устройства, использованного в качестве ближайшего аналога, показал несомненное упрощении конструкции сорбирующего элемента при одновременном расширении области применения за счет расширения возможных объектов анализа.A comparative analysis of the developed device and the device used as the closest analogue showed an undoubted simplification of the design of the sorbing element while expanding the scope due to the expansion of possible objects of analysis.
Claims (10)
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
RU2013102274/15A RU2519030C1 (en) | 2013-01-18 | 2013-01-18 | Device for preparation, storage and transportation of dry samples of liquid objects to be subject to laboratory analysis |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
RU2013102274/15A RU2519030C1 (en) | 2013-01-18 | 2013-01-18 | Device for preparation, storage and transportation of dry samples of liquid objects to be subject to laboratory analysis |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
RU2519030C1 true RU2519030C1 (en) | 2014-06-10 |
Family
ID=51216568
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
RU2013102274/15A RU2519030C1 (en) | 2013-01-18 | 2013-01-18 | Device for preparation, storage and transportation of dry samples of liquid objects to be subject to laboratory analysis |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
RU (1) | RU2519030C1 (en) |
Cited By (5)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
RU2616242C1 (en) * | 2016-03-31 | 2017-04-13 | Общество с ограниченной ответственностью "Биологическая среда" | Device for collecting, storage and transportation of biological material of living organisms and plants |
RU173706U1 (en) * | 2016-12-19 | 2017-09-06 | Федеральное государственное автономное образовательное учреждение высшего образования "Национальный исследовательский технологический университет "МИСиС" | Device for storing and transporting dry blood |
RU175113U1 (en) * | 2016-12-19 | 2017-11-21 | Федеральное государственное автономное образовательное учреждение высшего образования "Национальный исследовательский технологический университет "МИСиС" | Large capacity device for receiving and transporting biomaterial in dry form |
RU2663732C1 (en) * | 2017-05-04 | 2018-08-09 | Игорь Михайлович Рулев | Method of automatic selection and packaging of microbiological objects |
RU2706405C1 (en) * | 2018-12-05 | 2019-11-18 | Общество С Ограниченной Ответственностью "Университест" | Kit for obtaining, storage and transportation of dry blood samples or blood serum of birds for control of vaccination efficiency |
Citations (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
US5516487A (en) * | 1994-06-22 | 1996-05-14 | Isolab, Inc. | Absorbent paper for liquid sampling and impregnated paper calibrators and controls |
-
2013
- 2013-01-18 RU RU2013102274/15A patent/RU2519030C1/en active IP Right Revival
Patent Citations (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
US5516487A (en) * | 1994-06-22 | 1996-05-14 | Isolab, Inc. | Absorbent paper for liquid sampling and impregnated paper calibrators and controls |
Cited By (5)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
RU2616242C1 (en) * | 2016-03-31 | 2017-04-13 | Общество с ограниченной ответственностью "Биологическая среда" | Device for collecting, storage and transportation of biological material of living organisms and plants |
RU173706U1 (en) * | 2016-12-19 | 2017-09-06 | Федеральное государственное автономное образовательное учреждение высшего образования "Национальный исследовательский технологический университет "МИСиС" | Device for storing and transporting dry blood |
RU175113U1 (en) * | 2016-12-19 | 2017-11-21 | Федеральное государственное автономное образовательное учреждение высшего образования "Национальный исследовательский технологический университет "МИСиС" | Large capacity device for receiving and transporting biomaterial in dry form |
RU2663732C1 (en) * | 2017-05-04 | 2018-08-09 | Игорь Михайлович Рулев | Method of automatic selection and packaging of microbiological objects |
RU2706405C1 (en) * | 2018-12-05 | 2019-11-18 | Общество С Ограниченной Ответственностью "Университест" | Kit for obtaining, storage and transportation of dry blood samples or blood serum of birds for control of vaccination efficiency |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
RU2519030C1 (en) | Device for preparation, storage and transportation of dry samples of liquid objects to be subject to laboratory analysis | |
CN107530700B (en) | Device for biological sample collection and analysis and method of use thereof | |
US6258045B1 (en) | Collection device for biological samples and methods of use | |
DK3112473T3 (en) | DOWNSTREAM PREPARATION OF AN ALKALIC PHOSPHATASE | |
JPH03128461A (en) | Module liquid sample preparing assembly | |
BR112012031294B1 (en) | METHOD FOR QUANTITATIVE TRANSFER, PREVIOUSLY DOSED SAMPLING DEVICE AND KIT FOR TESTING | |
US20090269247A1 (en) | Fluid collection device with expresser plug holder | |
EP3705042B1 (en) | Blood sample separation devices and methods | |
US20100221830A1 (en) | Device and Method for Ambient Storage of Fresh/Frozen Tissue Sections Via Desiccation | |
RU2016143521A (en) | Method and device for the selective processing of eggs in accordance with gender and other characteristics | |
KR20190120333A (en) | Immunochromatographic Test Specimens for Extracting and Measuring Sugar Chain Antigens That May Prevent Nonspecific Reactions | |
JPH05307038A (en) | Method for preserving antigen cell in solid phase immunity inspection | |
CN101957370A (en) | Method and detection strip for rapidly detecting human blood group antibodies | |
US20040254500A1 (en) | Device and method for collecting, transporting and recovering low molecular weight analytes in saliva | |
US11944435B2 (en) | System and procedure for stabilizing, storing and recovering blood samples | |
US10060887B2 (en) | Field sampling kit and methods for collecting and detecting alkyl methylphosphonic acids | |
RU2619898C1 (en) | Method for biological materials preservation | |
US20140329229A1 (en) | Absorbent dried biofluid collection substrates | |
CA3110444A1 (en) | Microsampling detection in diabetes | |
US3275416A (en) | Process and device for separating barbituric acid derivatives from biological samples, and for analyzing same | |
RU2616242C1 (en) | Device for collecting, storage and transportation of biological material of living organisms and plants | |
ES2963821T3 (en) | Procedure and test kit for the quantitative determination of biomarkers in fecal samples | |
RU2706405C1 (en) | Kit for obtaining, storage and transportation of dry blood samples or blood serum of birds for control of vaccination efficiency | |
Samsonova et al. | Dried samples of biological fluids on porous membranes as a promising sample preparation method for biomedical and veterinary diagnostics | |
US20230073180A1 (en) | Sample collection device |
Legal Events
Date | Code | Title | Description |
---|---|---|---|
MM4A | The patent is invalid due to non-payment of fees |
Effective date: 20190119 |
|
NF4A | Reinstatement of patent |
Effective date: 20210817 |