RU2509571C1 - Method for preparing cattle parainfluenza-3 vaccine - Google Patents
Method for preparing cattle parainfluenza-3 vaccine Download PDFInfo
- Publication number
- RU2509571C1 RU2509571C1 RU2012132047/10A RU2012132047A RU2509571C1 RU 2509571 C1 RU2509571 C1 RU 2509571C1 RU 2012132047/10 A RU2012132047/10 A RU 2012132047/10A RU 2012132047 A RU2012132047 A RU 2012132047A RU 2509571 C1 RU2509571 C1 RU 2509571C1
- Authority
- RU
- Russia
- Prior art keywords
- virus
- parainfluenza
- cattle
- strain
- vaccine
- Prior art date
Links
Landscapes
- Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
- Medicines Containing Antibodies Or Antigens For Use As Internal Diagnostic Agents (AREA)
Abstract
Description
Изобретение относится к ветеринарной микробиологии, вирусологии и биотехнологии, может быть использовано при разработке средств специфической профилактики и, в частности, для получения вакцины против парагриппа-3 крупного рогатого скота.The invention relates to veterinary microbiology, virology and biotechnology, can be used in the development of specific prophylactics and, in particular, to obtain a vaccine against bovine parainfluenza-3.
Известен способ получения вакцины против парагриппа-3 крупного рогатого скота, включающий приготовление вируссодержащего материала из штамма парагриппа-3 крупного рогатого скота, инфицирование вируссодержащим материалом культуры перевиваемых клеток, культивирование вируса парагриппа-3, сбор вируссодержащей жидкости, инактивирование ее с последующим приготовлением целевого продукта в жидкой форме (Патент РФ №2378014 «Ассоциированная вакцина против парагриппа-3, инфекционного ринотрахеита и коронавирусной инфекции крупного рогатого скота эмульсионная инактивированная», опубл. 10.01.2010, МКИ A61K 39/205).A known method of obtaining a vaccine against parainfluenza-3 cattle, including the preparation of virus-containing material from a strain of parainfluenza-3 cattle, infection with virus-containing material culture of transplantable cells, cultivation of parainfluenza-3 virus, collecting virus-containing fluid, inactivating it, followed by preparation of the target product in liquid form (RF Patent No. 2378014 "Associated vaccine against parainfluenza-3, infectious rhinotracheitis and coronavirus infection of cattle emulsion inactivated ”, publ. 10.01.2010, MKI A61K 39/205).
Недостатком известного технического решения является использование при инактивации вируса формалина, обладающего канцерогенной активностью. Известно, что при незначительном превышении рабочей концентрации формалин вызывает быструю гибель культур клеток для выращивания вирусов и подавление инфекционной активности вирусов, что нередко сопровождается существенным снижением иммуногенности. При приготовлении вакцины не исключается возможность попадания остатков формальдегида вместе с вакциной в организм иммунизируемых животных), что крайне нежелательно.A disadvantage of the known technical solution is the use of formalin virus with carcinogenic activity during inactivation. It is known that with a slight excess of the working concentration, formalin causes a rapid death of cell cultures for growing viruses and suppresses the infectious activity of viruses, which is often accompanied by a significant decrease in immunogenicity. When preparing the vaccine, it is possible that residues of formaldehyde together with the vaccine can enter the body of the immunized animals), which is highly undesirable.
Задачей заявленного технического решения является повышение качества целевого продукта за счет возможности использования в качестве инактивирующего агента раствора оксидантов, полученного электролизом раствора хлорида натрия, а также ускорение способа.The objective of the claimed technical solution is to improve the quality of the target product due to the possibility of using as an inactivating agent a solution of oxidants obtained by electrolysis of a solution of sodium chloride, as well as speeding up the method.
Поставленная задача решается в способе получения вакцины против парагриппа-3 крупного рогатого скота, включающем приготовление вируссодержащего материала из штамма вируса парагриппа-3 крупного рогатого скота, инфицирование вируссодержащим материалом культуры перевиваемых клеток, культивирование вируса парагриппа-3 крупного рогатого скота, сбор вируссодержащей жидкости, инактивацию ее с последующим приготовлением целевого продукта в жидкой форме, отличающемся тем, что инактивацию вируса парагриппа-3 крупного рогатого скота проводят раствором оксидантов, полученным электролизом 10,0-20,0%-ного раствора хлорида натрия, причем электролиз ведут до достижения величин pH 7,0-8,0, концентрации оксидантов 0,7-0,9% и окислительно-восстановительного потенциала +1000±50 мВ, обработку проводят в одну стадию при содержании активного хлора Сах=250-500 мг/л в течение 60-70 мин при расходе инактивирующего средства 4,5-5,0 см3 на 0,8-1,0 л вируссодержащей жидкости.The problem is solved in a method for producing a vaccine against bovine parainfluenza-3, including preparation of virus-containing material from a parainfluenza-3 virus strain of cattle, infection with virus-containing material of transplanted cell culture, cultivation of bovine parainfluenza-3 virus, collection of virus-containing fluid, inactivation it with the subsequent preparation of the target product in liquid form, characterized in that the inactivation of the parainfluenza virus-3 cattle is carried out a solution of oxidants obtained by electrolysis of a 10.0-20.0% sodium chloride solution, and the electrolysis is carried out until pH values of 7.0-8.0, the concentration of oxidants 0.7-0.9% and the redox potential + 1000 ± 50 mV, the treatment is carried out in one stage with an active chlorine content of Sah = 250-500 mg / l for 60-70 min with an inactivating agent consumption of 4.5-5.0 cm 3 per 0.8-1.0 l virus-containing fluid.
Поставленная задача решается также в способе получения вакцины против парагриппа-3 крупного рогатого скота тем, что в качестве штамма вируса парагриппа-3 крупного рогатого скота используют штамма «ВГНКИ-4» вируса ПГ-3 КРС, сем. Paramyxoviridae, рода Parainfluenza, подтипа Parainfluenza virus 3, коллекция ФГУ «ВГНКИ» «ВГНКИ-4» ДЕП или штамм ЗКСМ.The problem is also solved in a method for producing a vaccine against bovine parainfluenza-3 by the fact that as a strain of bovine parainfluenza-3 the strain "VGNKI-4" of the virus PG-3 cattle, this. Paramyxoviridae, genus Parainfluenza, subtype Parainfluenza virus 3, collection of FSI “VGNKI” “VGNKI-4” DEPT or strain ZKSM.
Известен штамм вируса парагриппа-3 крупного рогатого скота штамм «ВГНКИ-4» вируса ПГ-3 КРС, сем. Paramyxoviridae, рода Parainfluenza, подтипа Parainfluenza virus 3, коллекция ФГУ «ВГНКИ» «ВГНКИ-4» ДЕП (Патент РФ №2378014 «Ассоциированная вакцина против парагриппа-3, инфекционного ринотрахеита и коронавирусной инфекции крупного рогатого скота эмульсионная инактивированная», опубл. 10.01.2010, МКИ A61K 39/205).A known strain of the parainfluenza virus-3 cattle strain "VGNKI-4" virus PG-3 cattle, this. Paramyxoviridae, genus Parainfluenza, subtype Parainfluenza virus 3, collection of FSI “VGNKI” VGNKI-4 DEP (Patent of the Russian Federation No. 2378014 “Associated vaccine against parainfluenza-3, infectious rhinotracheitis and coronavirus infection of cattle inactivated emulsion 01, op. 01, op. 01, op. 2010, MKI A61K 39/205).
Известен штамм парагриппа-3 крупного рогатого скота штамм ЗКСМ (Патент РФ №2371726 «Комплексная тест-система иммуноферментного анализа (ИФА) для определения уровня антител к вирусным респираторным заболеваниям крупного рогатого скота», опубл. 27.10.2009, МКИ G01N 33/569).The known strain of parainfluenza-3 cattle strain ZKSM (RF Patent No. 2371726 "Integrated enzyme-linked immunosorbent assay (ELISA) to determine the level of antibodies to viral respiratory diseases of cattle", publ. 27.10.2009, MKI G01N 33/569) .
Изобретение иллюстрируется на следующих примерах.The invention is illustrated by the following examples.
Пример 1. Приготавливают вируссодержащий материал из штамма ЗКСМ вируса парагриппа-3 крупного рогатого скота, инфицируют вируссодержащим материалом культуру перевиваемых клеток почки теленка «ПТ-80», культивируют вирус парагриппа-3 крупного рогатого скота до достижения титра 6,0 lg (ТЦД 50/мл), проводят сбор вируссодержащей жидкости, инактивируют раствором оксидантов, полученным электролизом 10,0%-ного раствора хлорида натрия, причем электролиз ведут до достижения величин pH 7,0, концентрации оксидантов 0,7% и окислительно-восстановительного потенциала +950 мВ, обработку проводят в одну стадию при содержании активного хлора Сах=250 мг/л в течение 60 мин при расходе инактивирующего средства 4,5 см на 0,8 л вируссодержащей жидкости при температуре 37°C в течение 60 минут при pH 7,2. Далее целевой продукт получают согласно известному способу. Получили вакцину 1, которая имеет антигенную активность в реакции торможения гемагглютинации (РТГА), 1:1024 (10 log2), в то время как в известном способе антигенная активность составила 1:512 (9 log2).Example 1. A virus-containing material is prepared from a strain of ZKSM of the parainfluenza-3 virus of cattle, the culture of transplantable cells of the calf kidney PT-80 is infected with the virus-containing material, and the virus of cattle parainfluenza-3 is cultured to a titer of 6.0 lg (TCD 50 / ml), they collect the virus-containing liquid, inactivate the oxidant solution obtained by electrolysis of a 10.0% sodium chloride solution, and the electrolysis is carried out until pH values of 7.0, the concentration of oxidants 0.7% and redox perspiration ncial +950 mV, the treatment is carried out in one stage with an active chlorine content of Sax = 250 mg / l for 60 min with an inactivating agent consumption of 4.5 cm per 0.8 l of virus-containing liquid at a temperature of 37 ° C for 60 minutes at pH 7.2. Next, the target product is obtained according to a known method. Got vaccine 1, which has antigenic activity in the reaction of inhibition of hemagglutination (rtga), 1: 1024 (10 log 2 ), while in the known method the antigenic activity was 1: 512 (9 log 2 ).
Вакцину проверили на антигенность на лабораторных животных. В результате вакцина оказалась антигенноактивной и обладала протективными свойствами.The vaccine was tested for antigenicity in laboratory animals. As a result, the vaccine was antigenically active and possessed protective properties.
Пример 2. Приготавливают вируссодержащий материал из штамма ЗКСМ вируса парагриппа-3 крупного рогатого скота, инфицируют посевным материалом культуру перевиваемых клеток почки теленка «ПТ-80», культивируют вирус парагриппа-3 крупного рогатого скота до достижения титра 7,0 lg (ТЦД 50/мл), проводят сбор вируссодержащей жидкости, инактивируют раствором оксидантов, полученным электролизом 20,0%-ного раствора хлорида натрия, причем электролиз ведут до достижения величин pH 8,0, концентрации оксидантов 0,9% и окислительно-восстановительного потенциала +1050 мВ, обработку проводят в одну стадию при содержании активного хлора Сах=500 мг/л в течение 70 мин при расходе инактивирующего средства 5,0 см на 1,0 л вируссодержащей жидкости при температуре 38°C в течение 70 минут при pH 7,4. Далее целевой продукт получают согласно известному способу. Получили вакцину 2, которая имеет антигенную активность в реакции торможения гемагглютинации (РТГА), 1:1024 (10 log2), в то время как в известном способе антигенная активность составила 1:1024 (10 log2).Example 2. Virus-containing material is prepared from a strain of ZKSM of the parainfluenza-3 virus of cattle, the culture of transplantable cells of the calf kidney "PT-80" is infected with seed, the parainfluenza-3 virus of cattle is cultured to a titer of 7.0 lg (TCD 50 / ml), they collect the virus-containing liquid, inactivate the oxidant solution obtained by electrolysis of a 20.0% sodium chloride solution, and the electrolysis is carried out until the pH reaches 8.0, the concentration of oxidants is 0.9% and the redox potential +1050 mV, the treatment is carried out in one stage with the content of active chlorine Sah = 500 mg / l for 70 min at a flow rate of inactivating agent 5.0 cm per 1.0 l of virus-containing liquid at a temperature of 38 ° C for 70 minutes at pH 7 ,four. Next, the target product is obtained according to a known method. Got vaccine 2, which has antigenic activity in the inhibition of hemagglutination inhibition (RTGA), 1: 1024 (10 log 2 ), while in the known method the antigenic activity was 1: 1024 (10 log 2 ).
Вакцину проверили на антигенность на лабораторных животных. В результате вакцина оказалась антигенноактивной и обладала протективными свойствами.The vaccine was tested for antigenicity in laboratory animals. As a result, the vaccine was antigenically active and possessed protective properties.
Пример 3. Приготовливают вируссодержащий материал из штамма «ВГНКИ-4» вируса ПГ-3 КРС, сем. Paramyxoviridae, рода Parainfluenza, подтипа Parainfluenza virus 3, коллекция ФГУ «ВГНКИ» «ВГНКИ-4» ДЕП, инфицируют посевным материалом культуру перевиваемых клеток почки теленка «ПТ-80», культивируют вирус парагриппа-3 крупного рогатого скота до достижения титра 5,5 lg (ТЦД 50/мл), проводят сбор вируссодержащей жидкости, инактивируют раствором оксидантов, полученным электролизом 10,0%-ного раствора хлорида натрия, причем электролиз ведут до достижения величин pH 7,0, концентрации оксидантов 0,7% и окислительно-восстановительного потенциала +950 мВ, обработку проводят в одну стадию при содержании активного хлора Сах=250 мг/л в течение 60 мин при расходе инактивирующего средства 4,5 см3 на 0,8 л вируссодержащей жидкости при температуре 37°C в течение 60 минут при pH 7,2. Далее целевой продукт получают согласно известному способу. Получили вакцину 3, которая имеет антигенную активность в реакции торможения гемагглютинации (РТГА), 1:1024 (10 log2), в то время как в известном способе антигенная активность составила 1:1024 (10 log2). Вакцину проверили на антигенность на лабораторных животных. В результате вакцина оказалась антигенноактивной и обладала протективными свойствами.Example 3. Prepare virus-containing material from the strain "VGNKI-4" virus PG-3 cattle, this. Paramyxoviridae, genus Parainfluenza, subtype Parainfluenza virus 3, collection FGU VGNKI VGNKI-4 DEPT, infect seed culture of transplantable calf kidney PT-80 with seed, cultivate cattle parainfluenza 3 virus to reach a titer of 5.5 lg (TCD 50 / ml), a virus-containing liquid is collected, inactivated by an oxidant solution obtained by electrolysis of a 10.0% sodium chloride solution, and the electrolysis is carried out until pH values of 7.0, the concentration of oxidants of 0.7% and redox potential +950 mV, processing is carried out in one step at a content of active chlorine Sah = 250 mg / l for 60 minutes at a flow rate of inactivating agent 4.5 cm 3 per 0.8 l virus-containing fluid at a temperature of 37 ° C for 60 minutes at pH 7,2. Next, the target product is obtained according to a known method. Got vaccine 3, which has antigenic activity in the reaction of inhibition of hemagglutination (rtga), 1: 1024 (10 log 2 ), while in the known method the antigenic activity was 1: 1024 (10 log 2 ). The vaccine was tested for antigenicity in laboratory animals. As a result, the vaccine was antigenically active and possessed protective properties.
Пример 4. Приготавливают вируссодержащий материал из штамма «ВГНКИ-4» вируса ПГ-3 КРС, сем. Paramyxoviridae, рода Parainfluenza, подтипа Parainfluenza vims 3, коллекция ФГУ «ВГНКИ» «ВГНКИ-4» ДЕП, инфицируют вируссодержащим материалом культуру перевиваемых клеток почки теленка «ПТ-80», культивируют вирус парагриппа-3 крупного рогатого скота до достижения титра 7,0 lg (ТЦД 50/мл), проводят сбор вируссодержащей жидкости, инактивируют раствором оксидантов, полученным электролизом 20,0%-ного раствора хлорида натрия, причем электролиз ведут до достижения величин pH 8,0, концентрации оксидантов 0,9% и окислительно-восстановительного потенциала +1050 мВ, обработку проводят в одну стадию при содержании активного хлора Сах=500 мг/л в течение 70 мин при расходе инактивирующего средства 5,0 см на 1,0 л вируссодержащей жидкости конечной концентрации при температуре 38°C в течение 60 минут при pH 7,4. Далее целевой продукт получают согласно известному способу. Получили вакцину 4, которая имеет антигенную активность в реакции торможения гемагглютинации (РТГА), 1:1024 (10 log2), в то время как в известном способе антигенная активность составила 1:1024 (10 log2). Вакцину проверили на антигенность на лабораторных животных. В результате вакцина оказалась антигенноактивной и обладала протективными свойствами.Example 4. Prepare virus-containing material from the strain "VGNKI-4" virus PG-3 cattle, this. Paramyxoviridae, genus Parainfluenza, subtype Parainfluenza vims 3, collection FGU “VGNKI” “VGNKI-4” DEPT, infect the virus-containing culture of transplantable cells of the calf’s kidney “PT-80”, bovine parainfluenza-3 virus is cultivated until titer 7.0 lg (TCD 50 / ml), a virus-containing liquid is collected, inactivated by an oxidant solution obtained by electrolysis of a 20.0% sodium chloride solution, and the electrolysis is carried out until pH values of 8.0, the concentration of oxidants of 0.9% and redox +1050 mV potential, wire processing out in one step at a content of active chlorine Sah = 500 mg / l for 70 minutes at a flow rate of 5.0 cm-inactivating agent at a final concentration of 1.0 l virus-containing fluid at a temperature of 38 ° C for 60 minutes at pH 7,4. Next, the target product is obtained according to a known method. Got vaccine 4, which has antigenic activity in the reaction of inhibition of hemagglutination (rtga), 1: 1024 (10 log 2 ), while in the known method the antigenic activity was 1: 1024 (10 log 2 ). The vaccine was tested for antigenicity in laboratory animals. As a result, the vaccine was antigenically active and possessed protective properties.
Таким образом, заявленное техническое решение позволяет ускорить процесс получения целевого продукта за счет снижения времени инактивации с 72 часов до 60-70 минут (почти на трое суток). Кроме того, получаемая согласно заявляемому способу вакцина имеет срок хранения до 1 года.Thus, the claimed technical solution allows you to speed up the process of obtaining the target product by reducing the inactivation time from 72 hours to 60-70 minutes (almost three days). In addition, obtained according to the claimed method, the vaccine has a shelf life of up to 1 year.
Техническим результатом, достигаемым при применении предлагаемого изобретения является повышение эффективности инактивационной обработки вируссодержащих материалов при уменьшении концентрации инактивирующего средства, сокращение экспозиции обработки до 60-70 минут против 72 часов у прототипа; установлено, что раствор оксидантов относится к IV классу опасности, в соответствующих концентрациях не вызывает токсического действия на перевиваемую культуру клеток почки теленка «ПТ-80», используемую для выращивания и накопления вируссодержащего материала, быстро разлагается после воздействия на вирус, исключая тем самым попадание в организм животных с биопрепаратом, обеспечивает снижение затрат на приобретение препарата до 6 раз и повышение безопасности труда обслуживающего персонала, отсутствует вредное влияние на окружающую среду. Вакцина имеет достаточную антигенную активность. Способ обработки вируссодержащего материала предложенным инактивантом обеспечивает безопасность продукции, получаемой от сельскохозяйственных животных (мясо, молоко).The technical result achieved by the application of the invention is to increase the efficiency of inactivation treatment of virus-containing materials while reducing the concentration of inactivating agents, reducing the exposure of the treatment to 60-70 minutes against 72 hours in the prototype; it was found that the oxidant solution belongs to hazard class IV, at appropriate concentrations it does not cause toxic effects on the transplanted culture of PT-80 calf kidney cells, used for growing and accumulating virus-containing material, quickly decomposes after exposure to the virus, thereby excluding the animal organism with a biological product, provides a reduction in the cost of purchasing the drug up to 6 times and an increase in the safety of staff, there is no harmful effect on the environment do. The vaccine has sufficient antigenic activity. A method of processing virus-containing material by the proposed inactivant ensures the safety of products obtained from farm animals (meat, milk).
Claims (2)
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| RU2012132047/10A RU2509571C1 (en) | 2012-07-27 | 2012-07-27 | Method for preparing cattle parainfluenza-3 vaccine |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| RU2012132047/10A RU2509571C1 (en) | 2012-07-27 | 2012-07-27 | Method for preparing cattle parainfluenza-3 vaccine |
Publications (2)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| RU2012132047A RU2012132047A (en) | 2014-02-10 |
| RU2509571C1 true RU2509571C1 (en) | 2014-03-20 |
Family
ID=50031709
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| RU2012132047/10A RU2509571C1 (en) | 2012-07-27 | 2012-07-27 | Method for preparing cattle parainfluenza-3 vaccine |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| RU (1) | RU2509571C1 (en) |
Citations (3)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| RU2371726C1 (en) * | 2008-07-03 | 2009-10-27 | Государственное научное учреждение Всероссийский научно-исследовательский и технологический институт биологической промышленности РАСХН | Complex test-system of immuno-enzyme analysis (iea) for determination of level of antibodies to viral respiratory diseases of livestock |
| RU2378014C2 (en) * | 2007-12-20 | 2010-01-10 | Федеральное государственное учреждение "Федеральный центр охраны здоровья животных" (ФГУ "ВНИИЗЖ") | Emulsion inactivated associated vaccine against cattle paragrippe-3, rednose and coronoviral infection |
| RU2395298C1 (en) * | 2009-03-31 | 2010-07-27 | Автономная некоммерческая организация "Научно-исследовательский институт диагностики и профилактики болезней человека и животных" (АНО "НИИ ДПБ") | Inactivated combined vaccine against cattle infectious rhinotracheitis, parainfluenza-3, virus diarrhoea, respiratory syncytial rota- and coronaviral disease |
-
2012
- 2012-07-27 RU RU2012132047/10A patent/RU2509571C1/en not_active IP Right Cessation
Patent Citations (3)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| RU2378014C2 (en) * | 2007-12-20 | 2010-01-10 | Федеральное государственное учреждение "Федеральный центр охраны здоровья животных" (ФГУ "ВНИИЗЖ") | Emulsion inactivated associated vaccine against cattle paragrippe-3, rednose and coronoviral infection |
| RU2371726C1 (en) * | 2008-07-03 | 2009-10-27 | Государственное научное учреждение Всероссийский научно-исследовательский и технологический институт биологической промышленности РАСХН | Complex test-system of immuno-enzyme analysis (iea) for determination of level of antibodies to viral respiratory diseases of livestock |
| RU2395298C1 (en) * | 2009-03-31 | 2010-07-27 | Автономная некоммерческая организация "Научно-исследовательский институт диагностики и профилактики болезней человека и животных" (АНО "НИИ ДПБ") | Inactivated combined vaccine against cattle infectious rhinotracheitis, parainfluenza-3, virus diarrhoea, respiratory syncytial rota- and coronaviral disease |
Non-Patent Citations (1)
| Title |
|---|
| SATO M et al., Current status of vaccines for parainfluenza virus infections., Pediatr Infect Dis J., 2008 Oct., Vol.27., 10 Suppl, abstr. * |
Also Published As
| Publication number | Publication date |
|---|---|
| RU2012132047A (en) | 2014-02-10 |
Similar Documents
| Publication | Publication Date | Title |
|---|---|---|
| Sanders et al. | Inactivated viral vaccines | |
| CN101716341B (en) | Human diploid cell inactivated rabies vaccine and preparation method thereof | |
| CN102174476A (en) | Inactivated vaccine for preventing duck virus hepatitis and preparation method thereof | |
| CN102178945B (en) | Preparation method of inactivated vaccine for iridovirus of grouper | |
| CN102727879B (en) | Spinner bottle production method of inactivated singapore grouper iridovirus (SGIV) vaccine | |
| CN104258389B (en) | A kind of vaccine combination and its preparation method and application | |
| CN101099864A (en) | Method for preparing inactivated vaccine both for preventing chicken Newcastle disease and infectious bronchitis | |
| CN101450209B (en) | Preparation method of transdermal immune influenza multivalent vaccine | |
| CN104338127A (en) | Method for producing inactivated vaccine of H9N2 subtype of avian influenza virus and product of inactivated vaccine | |
| CN104017776A (en) | Attenuated vaccine of contagious ecthyma virocyte as well as preparation method and application thereof | |
| CN104367996A (en) | Method for producing swine pseudorabies live vaccine by using passage cell source, and product thereof | |
| CN103937753B (en) | H9N2 subtype avian influenza virus strain and inactivated vaccine thereof and application | |
| CN111729091B (en) | Method for checking efficacy of porcine Seika virus inactivated vaccine by using rabbit | |
| CN102228685A (en) | Preparation method of iridovirus cell inactivated vaccine for Chinese giant salamanders, and application method thereof | |
| CN103468647B (en) | Swine flu H1N1 and H3N2 subtype bivalent inactivated vaccine | |
| CN102886043B (en) | Binary inactivated vaccine against Japanese encephalitis virus and porcine parvovirus and preparation method thereof | |
| CN106929480B (en) | Porcine reproductive and respiratory syndrome virus strain and application thereof | |
| RU2509571C1 (en) | Method for preparing cattle parainfluenza-3 vaccine | |
| CN104073470A (en) | Spinner-flask culture method for H9N2 subtype of avian influenza virus | |
| RU2522780C2 (en) | Method for preparing infectious bovine rhinotracheitis vaccine | |
| CN106139141B (en) | Sheep pox and orf bivalent cell attenuated vaccine and preparation method and application thereof | |
| RU2502522C1 (en) | Method for preparing cattle viral diarrhoea vaccine | |
| CN102114243B (en) | Method for preparing polyvalent vaccine of primary hamster kidney cells of flu | |
| CN1911445B (en) | Grippe primary generation susliks kidney cell multivalent vaccine and its preparation method | |
| CN102764432A (en) | Chinese giant salamander viral hemorrhagic disease cell culture-based inactivated vaccine, its preparation method and application thereof |
Legal Events
| Date | Code | Title | Description |
|---|---|---|---|
| MM4A | The patent is invalid due to non-payment of fees |
Effective date: 20140728 |