RU2507258C1 - Recombinant pseudo adenoviral particle based on human being adenovirus genome of 5-th serotype for induction of specific immunity to influenza virus a of h3n2 subtype and method of its use - Google Patents

Recombinant pseudo adenoviral particle based on human being adenovirus genome of 5-th serotype for induction of specific immunity to influenza virus a of h3n2 subtype and method of its use Download PDF

Info

Publication number
RU2507258C1
RU2507258C1 RU2012135825/10A RU2012135825A RU2507258C1 RU 2507258 C1 RU2507258 C1 RU 2507258C1 RU 2012135825/10 A RU2012135825/10 A RU 2012135825/10A RU 2012135825 A RU2012135825 A RU 2012135825A RU 2507258 C1 RU2507258 C1 RU 2507258C1
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
influenza
adenovirus
perth
influenza virus
gene
Prior art date
Application number
RU2012135825/10A
Other languages
Russian (ru)
Inventor
Рустам Равшанович Атауллаханов
Original Assignee
Общество с ограниченной ответственностью "НТфарма"
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Общество с ограниченной ответственностью "НТфарма" filed Critical Общество с ограниченной ответственностью "НТфарма"
Priority to RU2012135825/10A priority Critical patent/RU2507258C1/en
Application granted granted Critical
Publication of RU2507258C1 publication Critical patent/RU2507258C1/en

Links

Images

Landscapes

  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
  • Medicines Containing Antibodies Or Antigens For Use As Internal Diagnostic Agents (AREA)

Abstract

FIELD: biotechnologies.
SUBSTANCE: characterised is recombinant pseudo adenoviral particle based on human being adenovirus genome of the 5-th serotype and method of its use. Provided particle contains expressing cassette with haemagglutinin gene of influenza virus being included. As a haemagglutinin gene of influenza virus, haemagglutinin gene of A/Perth/16/2009(H3N2) strain with pre-optimised for expression in human being cells nucleotide sequence presented in SEQ ID NO:2. The specified haemagglutinin gene of influenza virus of A/Perth/16/2009(H3N2) strain is cloned in expressing cassette containing polyadenylation signal SV40 under control of cytomegalovirus promoter. Presented invention may be used for induction of specific immunity to influenza virus A of H3N2 subtype during injection in efficient quantity.
EFFECT: providing intense expression of recombinant haemagglutinin of the specified influenza virus.
6 cl, 9 dwg, 1 tbl, 4 ex

Description

Область техникиTechnical field

Изобретение относится к области биотехнологии и касается рекомбинантных векторов, которые могут быть использованы в фармацевтической промышленности для производства вакцинных препаратов, в частности, для противогриппозных вакцин.The invention relates to the field of biotechnology and relates to recombinant vectors that can be used in the pharmaceutical industry for the production of vaccine preparations, in particular for influenza vaccines.

Предшествующий уровень развитияPrior development

Вакцинопрофилактика гриппа человека является важнейшим звеном в осуществлении противоэпидемических мероприятий для снижения уровня заболеваемости среди людей во время сезонных вспышек заболевания. Особенно важны вакцины на основе так называемых «пандемических» штаммов вируса гриппа. Пандемические субтипы вируса гриппа способны распространяться глобально, часто с большой смертностью заболевших людей. Эпидемический мониторинг за циркуляцией вирусов гриппа осуществляется ВОЗ (Всемирной Организацией Здравоохранения), которая объявляет штаммы, рекомендуемые для включения в состав сезонных вакцин от гриппа на определенных территориях (Ресурс доступен: www.who.int).Vaccination of human influenza is the most important link in the implementation of anti-epidemic measures to reduce the incidence rate among people during seasonal outbreaks of the disease. Vaccines based on the so-called pandemic influenza virus strains are especially important. Influenza pandemic subtypes can spread globally, often with a high mortality rate for affected people. Epidemic monitoring of the circulation of influenza viruses is carried out by WHO (World Health Organization), which announces the strains recommended for inclusion in seasonal influenza vaccines in certain territories (Resource available: www.who.int).

Для изготовления вакцины требуется наличие высокоиммуногенных антигенов в ее составе. Как правило, аттенуация или инактивация штамма при производстве классических вакцин снижает его иммуногенность. Поэтому на современном этапе развития биотехнологии гораздо более технологически и иммунобиологически эффективным является изготовление генетических вакцин.The manufacture of a vaccine requires the presence of highly immunogenic antigens in its composition. As a rule, attenuation or inactivation of a strain in the production of classical vaccines reduces its immunogenicity. Therefore, at the present stage of development of biotechnology, the production of genetic vaccines is much more technologically and immunobiologically effective.

На сегодняшний день все антигены, входящие в состав вакцин, по способу получения можно разделить на две основные группы - нативные и рекомбинантные, причем последние в связи с развитием генетической инженерии и биотехнологии начинают вытеснять антигены, полученные классическими методами. Для получения антигенов классическими методами необходимо изначально иметь выделенный от больных гриппом штамм вируса гриппа.To date, all the antigens that make up the vaccines can be divided into two main groups according to the production method - native and recombinant, the latter, due to the development of genetic engineering and biotechnology, begin to displace antigens obtained by classical methods. To obtain antigens by classical methods, it is necessary to initially have a strain of the influenza virus isolated from patients with influenza.

Основой любого вакцинного препарата служат различные антигены патогенов, обязательно обладающие иммуногенными свойствами. Основным специфическим иммуногеном вируса гриппа является его гемагглютинин, это учитывается при разработке иммунобиологических препаратов против гриппа.The basis of any vaccine preparation are various pathogen antigens, which necessarily have immunogenic properties. The main specific immunogen of the influenza virus is its hemagglutinin, which is taken into account when developing immunobiological preparations against influenza.

Так, известен вакцинный штамм вируса гриппа В/60/Брисбен/08/83 для производства живой гриппозной интраназальной вакцины для взрослых и для детей (Патент РФ №2 422 517). Данный штамм является живым и аттенуирован методом реассортации с донорным штаммом, безвредным для людей, что лишило его патогенности, но сохранило иммуногенность его гемагглютинина. Штамм размножается в куриных эмбрионах. Как видно, штамм является живым аттенуированным, то есть возможна его реверсия в исходную патогенную форму, для выращивания требует использование куриных эмбрионов, что неэкономично, малопроизводительно, возможна реассортация в другими вирусами гриппа в случае заражения ими эмбрионов, кроме того, остаточные количества куриного белка в препаратах способны вызвать аллергические реакции.Thus, a vaccine strain of influenza virus B / 60 / Brisbane / 08/83 is known for the production of a live influenza intranasal vaccine for adults and children (RF Patent No. 2,442,517). This strain is live and attenuated by a reassortment method with a donor strain that is harmless to humans, which deprived it of pathogenicity, but retained the immunogenicity of its hemagglutinin. The strain propagates in chicken embryos. As you can see, the strain is live attenuated, that is, it can be reversed to its original pathogenic form, it requires the use of chicken embryos for cultivation, which is uneconomical, inefficient, reassortment in other influenza viruses is possible if they infect embryos, in addition, the residual amounts of chicken protein in drugs can cause allergic reactions.

Также из классических вариантов известен вакцинный штамм вируса гриппа A/8/Perth/16/2009(H3N2) для производства инактивированной гриппозной вакцины (Патент РФ №2458124). Данный штамм патогенный и требует соблюдения особой осторожности при обращении с ним в лаборатории и на производстве, а также, в процессе производства обязательна стадия инактивации для переведения данного вируса в неживое состояние, что, однако, резко снижает иммуногенность.Also known from the classic options is the vaccine strain of influenza virus A / 8 / Perth / 16/2009 (H3N2) for the production of inactivated influenza vaccine (RF Patent No. 2458124). This strain is pathogenic and requires special care when handling it in the laboratory and in production, as well as, during the production process, an inactivation step is required to put the virus into a non-living state, which, however, dramatically reduces immunogenicity.

Для решения проблем, связанных с нативными штаммами различных микроорганизмов, предназначенных для производства вакцин, перспективно направление по использованию безопасных векторов, экспрессирующих гены антигенов возбудителя (Abdulhaqq S.A.,Weiner D.B. DNA Vaccines: developing new strategies to enhance immune responses, 2008, №42, с.219-232 - Вакцины: разработка новых стратегий для усиления иммунного ответа); (Zaia J.A., The status of gene vectors for the treatment of diabetes, Cell Biochem. Biophys, 2007, №48 (2-3), с.183-90. - Статус генетических векторов для лечения сахарного диабета). Одними из наиболее безопасных для организма признаны векторы, сконструированные на основе аденовируса человека (Van Kampen K.R. et al., Safety and immunogenicity of adenovirus- vectored nasal and epicutaneous influenza vaccines in humans, Vaccine, 2005, №23(8), с.1029-36 - Безопасность и иммуногенность аденовекторных назальных и накожных противогриппозных вакцин у человека).To solve the problems associated with native strains of various microorganisms intended for the production of vaccines, the direction for the use of safe vectors expressing the genes of pathogen antigens is promising (Abdulhaqq SA, Weiner DB DNA Vaccines: developing new strategies to enhance immune responses, 2008, No. 42, p. .219-232 - Vaccines: developing new strategies to enhance the immune response); (Zaia J.A., The status of gene vectors for the treatment of diabetes, Cell Biochem. Biophys, 2007, No. 48 (2-3), pp. 183-90. Status of genetic vectors for the treatment of diabetes mellitus). The vectors constructed on the basis of human adenovirus are recognized as one of the safest for the body (Van Kampen KR et al., Safety and immunogenicity of adenovirus-vectored nasal and epicutaneous influenza vaccines in humans, Vaccine, 2005, No. 23 (8), p. 1029 -36 - Safety and immunogenicity of adenovector nasal and cutaneous influenza vaccines in humans).

Рекомбинантные аденовирусные векторы обладают следующими полезными характеристиками: не патогенны, так как из их генома удалены области, ответственные за патогенность, способны трансдуцировать как делящиеся, так и постмитотические клетки, ДНК аденовируса остается в экстрахромосомной форме, способны к размножению только в специальных линиях клеток in vitro, выводятся из организма в течение 4-5 недель, индуцируют как клеточный, так и гуморальный иммунный ответ, процесс получения нового рекомбинантного аденовируса занимает всего несколько недель, они обеспечивают высокий уровень экспрессии целевого гена в клетке-мишени.Recombinant adenoviral vectors have the following useful characteristics: they are not pathogenic, since the pathogenicity regions are removed from their genome, they can transduce both dividing and postmitotic cells, the adenovirus DNA remains in an extrachromosomal form, it can reproduce only in special cell lines in vitro , are eliminated from the body within 4-5 weeks, induce both a cellular and a humoral immune response, the process of obtaining a new recombinant adenovirus takes only a few n del, they provide a high level of target gene expression in the target cell.

На сегодняшний день известен аденовирусный вектор, экспрессирующий рекомбинантные гемагглютинины вируса гриппа (Заявка на патент WO №2008/157419). Данная конструкция выбрана автором за прототип, как наиболее близкая к изобретению (прототип).Adenoviral vector expressing recombinant influenza hemagglutinins is known today (Patent Application WO No. 2008/157419). This design is selected by the author for the prototype, as the closest to the invention (prototype).

В связи с тем, что на дату приоритета заявки ничего не было известно о штамме вируса гриппа A/Perth/16/2009(H3N2), так как впервые данный возбудитель выделен и охарактеризован во время эпидемии гриппа в 2009 году, нуклеотидная последовательность его гена гемагглютинина не могла быть использована для конструирования рекомбинантных аденовирусных частиц. Соответственно, заявители не имели возможности создать аденовирусную конструкцию с охарактеризованными культурально-морфологическими свойствами, уровнем экспрессии, иммуногенными и протективными свойствами. Это является существенным недостатком заявленной конструкции, так как она не может быть использована для индукции специфического иммунитета к вирусам гриппа субтипа H3N2, в частности к штамму A/Perth/16/2009(H3N2), что препятствует созданию противогриппозных вакцинных препаратов на ее основе.Due to the fact that at the priority date of the application, nothing was known about the strain of the influenza virus A / Perth / 16/2009 (H3N2), since this pathogen was first isolated and characterized during the influenza epidemic in 2009, the nucleotide sequence of its hemagglutinin gene could not be used to construct recombinant adenoviral particles. Accordingly, the applicants were not able to create an adenoviral construct with the characterized cultural and morphological properties, expression level, immunogenic and protective properties. This is a significant drawback of the claimed design, since it cannot be used to induce specific immunity to influenza viruses of the H3N2 subtype, in particular to strain A / Perth / 16/2009 (H3N2), which prevents the creation of influenza vaccines based on it.

Раскрытие изобретенияDisclosure of invention

Техническая задача заявляемого изобретения направлена на создание рекомбинантной псевдоаденовирусной частицы на основе генома аденовируса человека 5-го серотипа, продуцирующей рекомбинантный гемагглютинин вируса гриппа, способной обеспечивать усиленную экспрессию рекомбинантного гемагглютинина вируса гриппа A/Perth/16/2009(H3N2), позволяющую использовать ее для индукции специфического иммунитета к вирусу гриппа А субтипа H3N2.The technical task of the invention is aimed at creating a recombinant pseudo-adenovirus particle based on the genome of human adenovirus of the 5th serotype, producing recombinant influenza hemagglutinin, capable of providing enhanced expression of recombinant influenza virus hemagglutinin A / Perth / 16/2009 (H3N2) for use specific immunity to influenza A virus subtype H3N2.

Техническая задача решается за счет того, что создают рекомбинантную псевдоаденовирусную частицу на основе генома аденовируса человека 5 серотипа, содержащую экспрессирующую кассету со вставкой гена гемагглютинина вируса гриппа, при этом в качестве гена гемагглютинина вируса гриппа штамма A/Perth/16/2009(H3N2) используют ген гемагглютинина с предварительно оптимизированной для экспрессии в клетках человека нуклеотидной последовательностью, с обеспечением повышенной экспрессии гена гемагглютинина вируса гриппа штамма A/Perth/16/2009(H3N2). Причем оптимизированной нуклеотидной последовательностью гена гемагглютинина вируса гриппа штамма A/Perth/16/2009(H3N2) является SEQ ID NO: 2, а ген гемагглютинина вируса гриппа штамма A/Perth/16/2009(H3N2) с оптимизированной нуклеотидной последовательностью клонирован в экспрессирующую кассету под контролем промотора и содержит сигнал полиаденилирования, причем промотором является промотор цитомегаловируса, а сигналом полиаденилирования является SV40. Экспрессирующая кассета в данном техническом решении расположена в области делеции Е1 генома аденовируса человека 5 серотипа. Способ использования рекомбинантной псевдоаденовирусной частицы на основе генома аденовируса человека 5 серотипа, продуцирующей гемагглютинин вируса гриппа A/Perth/16/2009(H3N2,) заключается во введении созданных рекомбинантных псевдоаденовирусных частицы в эффективном количестве для индукции специфического иммунитета к вирусу гриппа А субтипа H3N2.The technical problem is solved due to the fact that they create a recombinant pseudo-adenovirus particle based on the genome of human adenovirus 5 serotype, containing an expression cassette with the insertion of the influenza hemagglutinin gene, while the strain A / Perth / 16/2009 (H3N2) virus hemagglutinin gene is used a hemagglutinin gene with a nucleotide sequence previously optimized for expression in human cells, providing increased expression of the influenza hemagglutinin gene of strain A / Perth / 16/2009 (H3N2). Moreover, the optimized nucleotide sequence of the influenza virus hemagglutinin gene of strain A / Perth / 16/2009 (H3N2) is SEQ ID NO: 2, and the influenza virus hemagglutinin gene of strain A / Perth / 16/2009 (H3N2) with the optimized nucleotide sequence is cloned into an expression cassette under the control of the promoter and contains a polyadenylation signal, the promoter being the cytomegalovirus promoter, and the polyadenylation signal being SV40. The expression cassette in this technical solution is located in the region of the E1 deletion of the genome of the human adenovirus 5 serotype. A method of using a recombinant pseudo adenovirus particle based on the genotype 5 human adenovirus genotype producing hemagglutinin A / Perth / 16/2009 (H3N2,) influenza virus is to administer the generated recombinant pseudo adenovirus particles in an effective amount to induce specific immunity to influenza A virus subtype H3N2.

Перечень фигурList of figures

На фиг.1 - представлены:Figure 1 - presents:

SEQ ID NO: 1 - неоптимизированная нуклеотидная последовательность гена гемагглютинина вируса гриппа штамма A/Perth/16/2009(H3N2);SEQ ID NO: 1 — non-optimized nucleotide sequence of the influenza virus hemagglutinin gene of strain A / Perth / 16/2009 (H3N2);

SEQ ID NO: 2 - оптимизированная для экспрессии в клетках человека нуклеотидная последовательность гена гемагглютинина вируса гриппа штамма A/Perth/16/2009(H3N2);SEQ ID NO: 2 — nucleotide sequence of the influenza virus hemagglutinin gene of strain A / Perth / 16/2009 (H3N2) optimized for expression in human cells;

Protein - аминокислотная последовательность, кодируемая нуклеотидными последовательностями SEQ ID NO: 1 и SEQ ID NO:2.Protein is the amino acid sequence encoded by the nucleotide sequences of SEQ ID NO: 1 and SEQ ID NO: 2.

На фиг.2 - представлена схема экспрессирующей кассеты рекомбинантной псевдоаденовирусной частицы с геном гемагглютинина вируса гриппа штамма A/Perth/16/2009(H3N2).Figure 2 is a diagram of an expression cassette of a recombinant pseudo-adenovirus particle with the hemagglutinin gene of influenza virus strain A / Perth / 16/2009 (H3N2).

На фиг.3 - изображена электрофореграмма ПЦР -анализов ДНК рекомбинантной псевдоаденовирусной частицы, созданной на основе аденовируса человека 5 серотипа со вставкой оптимизированного гена гемагглютинина вируса гриппа штамма A/Perth/16/2009(H3N2) (SEQ ID NO: 2).Figure 3 - shows an electrophoregram of PCR analysis of DNA of a recombinant pseudo-adenovirus particle based on human serotype 5 adenovirus with an optimized influenza hemagglutinin gene of strain A / Perth / 16/2009 (H3N2) (SEQ ID NO: 2).

На фиг.4 - изображены результаты иммуноблот-анализа. Дорожки обозначают результат анализа с лизатом клеток НЕК293 линии.Figure 4 - shows the results of an immunoblot analysis. Lanes indicate the result of an analysis with a lysate of HEK293 cell lines.

На фиг.5 - представлена диаграмма, столбцы которой показывают уровень антигемагглютинирующих антител, определенных в РТГА, к вирусу гриппа A/Perth/16/2009(H3N2).Figure 5 - presents a chart, the columns of which show the level of anti-hemagglutinating antibodies, defined in rtga, to influenza virus A / Perth / 16/2009 (H3N2).

На фиг.6 - представлены кривые выживаемости иммунизированных мышей после заражения летальной дозой вируса гриппа штамма A/Perth/16/2009(H3N2).Figure 6 - shows the survival curves of immunized mice after infection with a lethal dose of influenza virus strain A / Perth / 16/2009 (H3N2).

На фиг.7 - представлена неоптимизированная нуклеотидная последовательность гена гемагглютинина A/Perth/16/2009(H3N2).7 - presents the non-optimized nucleotide sequence of the hemagglutinin gene A / Perth / 16/2009 (H3N2).

На фиг.8 - представлена оптимизированная нуклеотидная последовательность гена гемагглютинина A/Perth/16/2009(H3N2).On Fig - presents the optimized nucleotide sequence of the hemagglutinin gene A / Perth / 16/2009 (H3N2).

На фиг.9 - представлена аминокислотная последовательность гена гемагглютинина A/Perth/16/2009(H3N2).Figure 9 - shows the amino acid sequence of the hemagglutinin gene A / Perth / 16/2009 (H3N2).

Общеизвестно, что генетический код обладает вырожденностью, то есть одна аминокислота может кодироваться от одного до шести различных триплетов (кодонов) из разных нуклеотидов, которые, как правило, имеют различие лишь в последнем нуклеотиде (Дубинин Н.П. Общая генетика, М., 1970, с.204-207). Каждому такому кодону соответствует единственная тРНК, которая в процессе синтеза белка осуществляет доставку соответствующей аминокислоты к рибосоме. Однако у различных организмов набор тРНК различается, причем наблюдается предпочтительное использование одного из нескольких кодонов, кодирующих одну и ту же аминокислоту. Данные по частоте использования кодонов у различных организмов общедоступны (например, ресурс www.kazusa.or.jp).It is well known that the genetic code is degenerate, that is, one amino acid can be encoded from one to six different triplets (codons) from different nucleotides, which, as a rule, differ only in the last nucleotide (N. Dubinin, General genetics, M., 1970, p.204-207). Each such codon corresponds to a single tRNA, which in the process of protein synthesis delivers the corresponding amino acid to the ribosome. However, in different organisms, the set of tRNAs differs, with the preferred use of one of several codons encoding the same amino acid. Data on the frequency of use of codons in various organisms is publicly available (for example, the resource www.kazusa.or.jp).

Исходя из вышеописанных биологических особенностей транскрипции белка в организмах, автором было решено в нуклеотидной последовательности гена гемагглютинина заменить отдельные нуклеотиды в кодонах, не влекущие за собой замены самой аминокислоты, с учетом предпочтительности использования кодонов тРНК у человека, то есть использовать ген гемагглютинина с предварительно оптимизированной для экспрессии в клетках человека нуклеотидной последовательностью, что, в конечном итоге, привело к усилению экспрессии целевого гена при введении вектора со вставкой полученного гена гемагглютинина в организм человека.Based on the biological characteristics of protein transcription in organisms described above, the author decided to replace individual nucleotides in the codons in the nucleotide sequence of the hemagglutinin gene that do not entail replacing the amino acid itself, taking into account the preference for using tRNA codons in humans, that is, to use the hemagglutinin gene with previously optimized for expression in human cells with a nucleotide sequence, which ultimately led to increased expression of the target gene upon administration vector with the insertion of the obtained hemagglutinin gene into the human body.

Для решения поставленной технической задачи необходимо:To solve the technical problem is necessary:

1) оптимизировать нуклеотидную последовательность гена гемагглютинина вируса гриппа A/Perth/16/2009(H3N2) для повышения экспрессии данного гена в клетках человека;1) to optimize the nucleotide sequence of the influenza virus hemagglutinin gene A / Perth / 16/2009 (H3N2) to increase the expression of this gene in human cells;

2) сконструировать рекомбинантную псевдоаденовирусную частицу с целевым трансгеном путем встраивания полученного оптимизированного гена гемагглютинина вируса гриппа A/Perth/16/2009(H3N2) в аденовирус человека 5 серотипа;2) to construct a recombinant pseudo-adenovirus particle with a target transgene by embedding the obtained optimized influenza hemagglutinin gene A / Perth / 16/2009 (H3N2) in human adenovirus 5 serotype;

3) показать культурально - морфологические особенности полученных рекомбинантных псевдоаденовирусных частиц;3) show the cultural - morphological features of the obtained recombinant pseudo-adenovirus particles;

4) показать улучшение экспрессии оптимизированного гена гемагглютинина in vitro;4) show improved expression of the optimized hemagglutinin gene in vitro;

5) показать улучшенные иммуногенность и протективные свойства полученных по заявленному изобретению рекомбинантных псевдоаденовирусных частиц на основе аденовируса человека 5 серотипа к вирусу гриппа A/Perth/16/2009(H3N2), и соответственно, обосновать использование их для индукции специфического иммунитета к вирусу гриппа А субтипа H3N2.5) show the improved immunogenicity and protective properties of recombinant pseudo-adenovirus particles obtained according to the claimed invention based on human adenovirus 5 serotype for influenza A / Perth / 16/2009 (H3N2) virus, and accordingly, justify their use for the induction of specific immunity to subtype influenza A virus H3N2.

Представленные ниже примеры подтверждают решение поставленной технической задачи.The examples below confirm the solution of the technical problem.

Примеры осуществления изобретенияExamples of carrying out the invention

Пример 1.Example 1

В данном примере показан ход конструирования рекомбинантной псевдоаденовирусной частицы на основе генома аденовируса человека 5 серотипа со вставкой оптимизированного гена гемагглютинина вируса гриппа штамма A/Perth/16/2009 (H3N2).This example shows the progress of constructing a recombinant pseudo-adenovirus particle based on the genotype 5 human adenovirus genome with the insert of the optimized influenza hemagglutinin gene of strain A / Perth / 16/2009 (H3N2).

На первом этапе для улучшения экспрессии трансгена рекомбинантной псевдоаденовирусной частицей последовательность гена гемагглютинина вируса гриппа штамма A/Perth/I 6/2009(H3N2), выбранная на основе рекомендаций ВОЗ (взята из официального общедоступного источника NCBI, GenBank, США, №GQ293081.1; данные которого доступны: www.ncbi.nlm.nih.gov), на основе общеизвестных сведений о вырожденности генетического кода и частоте использования определенных видов кодонов у человека была предварительно оптимизирована для экспрессии в клетках человека.At the first stage, to improve the expression of the transgene by the recombinant pseudo-adenovirus particle, the sequence of the hemagglutinin gene of the influenza virus strain A / Perth / I 6/2009 (H3N2), selected on the basis of WHO recommendations (taken from the official public source NCBI, GenBank, USA, No. GQ293081.1; whose data are available: www.ncbi.nlm.nih.gov), based on well-known information about the degeneracy of the genetic code and the frequency of use of certain types of codons in humans, has been previously optimized for expression in human cells.

Для этого в нуклеотидной последовательности гена гемагглютинина вируса гриппа штамма A/Perth/I 6/2009(H3N2) заменили «неудобные» для человеческих тРНК кодоны так, чтобы не произошла аминокислотная замена последовательности. При подборе пользовались общеизвестными данными по частоте встречаемости кодонов у человека (http://www.kazusa.or.jp/codon/). Так, например, аминокислота лейцин (L) кодируется шестью кодонами - UUA, UUG, CUA, CUC, CUG, CUU, однако у человека из них наиболее часто используются CUC (20%) и CUG (40%), поэтому на них были заменены все оставшиеся четыре кодона, в соответствующей пропорции (для CUC - 24,7% и CUG - 56,4%).To do this, in the nucleotide sequence of the influenza virus hemagglutinin gene of strain A / Perth / I 6/2009 (H3N2), codons that were “inconvenient” for human tRNA were replaced so that the amino acid sequence did not change. In the selection we used well-known data on the frequency of occurrence of codons in humans (http://www.kazusa.or.jp/codon/). For example, the amino acid leucine (L) is encoded by six codons - UUA, UUG, CUA, CUC, CUG, CUU, however, in humans, CUC (20%) and CUG (40%) are most often used, therefore they were replaced by all the remaining four codons, in the appropriate proportion (for CUC - 24.7% and CUG - 56.4%).

Таким же образом поступали со всеми другими кодонами, не в единственном числе кодирующими одну аминокислоту.The same was done with all other codons, not singularly encoding one amino acid.

На фигуре 1 представлены:The figure 1 presents:

SEQ ID NO: 1 - неоптимизированная нуклеотидная последовательность гена гемагглютинина вируса гриппа штамма штамма A/Perth/16/2009(H3N2);SEQ ID NO: 1 — non-optimized nucleotide sequence of the hemagglutinin gene of influenza virus strain A / Perth / 16/2009 (H3N2);

SEQ ID NO: 2. - оптимизированная для экспрессии в клетках человека нуклеотидная последовательность гена гемагглютинина вируса гриппа штамма A/Perth/16/2009(H3N2);SEQ ID NO: 2. - the nucleotide sequence of the influenza virus hemagglutinin gene of strain A / Perth / 16/2009 (H3N2) optimized for expression in human cells;

Protein - аминокислотная последовательность гена гемагглютинина вируса гриппа A/Perth/16/2009(H3N2), кодируемая нуклеотидными последовательностями SEQ ID NO:Protein is the amino acid sequence of the hemagglutinin gene of influenza A / Perth / 16/2009 (H3N2) encoded by the nucleotide sequences of SEQ ID NO:

1 и SEQ ID NO: 2.1 and SEQ ID NO: 2.

Цифры над последовательностями обозначают номер нуклеотида в последовательности.The numbers above the sequences indicate the nucleotide number in the sequence.

Проведенные с целью оптимизации, замены нуклеотидов в нуклеотидной последовательности SEQ ID NO: 1 неоптимизированного гена гемагглютинина вируса гриппа A/Perth/16/2009(H3N2) на нуклеотиды в нуклеотидной последовательности SEQ ID NO: 2 оптимизированного гена гемагглютинина вируса гриппа A/Perth/16/2009(H3N2) затемнены серыми прямоугольниками.Conducted with the aim of optimization, the replacement of nucleotides in the nucleotide sequence of SEQ ID NO: 1 of the non-optimized influenza A / Perth / 16/2009 (H3N2) hemagglutinin gene with nucleotides in the nucleotide sequence of SEQ ID NO: 2 of the optimized influenza A / Perth / 16 hemagglutinin gene / 2009 (H3N2) darkened with gray rectangles.

Буквенное обозначение аминокислоты расположено под тремя нуклеотидами двух сравненных нуклеотидных последовательностей (SEQ ID NO: 1 и SEQ ID NO: 2), которыми она кодируется.The amino acid letter is located under the three nucleotides of the two compared nucleotide sequences (SEQ ID NO: 1 and SEQ ID NO: 2) with which it is encoded.

Все буквенные обозначения нуклеотидов и аминокислот стандартны и общеизвестны.All letter designations of nucleotides and amino acids are standard and well-known.

Таким образом, представленные на фигуре 1 неоптимизированная и оптимизированная нуклеотидные последовательности гена гемагглютинина вируса гриппа штамма A/Perth/16/2009(H3N2) состоят из 1701 пары нуклеотидов, расположены друг под другом и сравнены (сверху последовательность неоптимизированного гена гемагглютинина, под ней оптимизированная последовательность). Всего обе нуклеотидные последовательности кодируют 566 аминокислот (аминокислотная последовательность отображена под названием «protein»), причем обе представленные нуклеотидные последовательности SEQ ID NO: 1 и SEQ ID NO: 2 кодируют одну и ту же аминокислотную последовательность гена гемагглютинина вируса гриппа штамма A/Perth/16/2009(H3N2), то есть продуцирующийся с оптимизированной нуклеотидной последовательности ген гемагглютинина вышеуказанного штамма вируса гриппа не отличается от нативного, что и требуется при оптимизации нуклеотидной последовательности.Thus, the non-optimized and optimized nucleotide sequences of the influenza virus hemagglutinin gene of strain A / Perth / 16/2009 (H3N2) shown in FIG. 1 consist of 1701 nucleotides pairs, are located under each other and compared (on top is the sequence of the non-optimized hemagglutinin gene, under it the optimized sequence ) In total, both nucleotide sequences encode 566 amino acids (the amino acid sequence is displayed under the name "protein"), both of which are the nucleotide sequences of SEQ ID NO: 1 and SEQ ID NO: 2 encode the same amino acid sequence of the influenza virus hemagglutinin gene of strain A / Perth / 16/2009 (H3N2), that is, the hemagglutinin gene of the above strain of influenza virus produced from an optimized nucleotide sequence does not differ from the native one, which is what is required when optimizing the nucleotide lnosti.

Таким образом, нижняя (SEQ ID NO: 2) нуклеотидная последовательность представляет собой уникальную оптимизированную для экспрессии в клетках человека нуклеотидную последовательность гена гемагглютинина вируса гриппа штамма A/Perth/16/2009(H3N2).Thus, the lower (SEQ ID NO: 2) nucleotide sequence is a unique nucleotide sequence of the influenza virus hemagglutinin gene of strain A / Perth / 16/2009 (H3N2) optimized for expression in human cells.

Полученную уникальную оптимизированную последовательность кДНК гена гемагглютинина вируса гриппа человека синтезировали общеизвестным химическим методом и лигировали в общеизвестную вспомогательную плазмиду для дальнейшего переклонирования. Таким образом, синтезированная нуклеотидная последовательность содержала оптимизированные кодоны, которые не влияли на аминокислотный состав гемагглютинина, но значительно улучшали уровень его экспрессии в клетках человека.The obtained unique optimized cDNA sequence of the human influenza virus hemagglutinin gene was synthesized by a well-known chemical method and ligated into a well-known auxiliary plasmid for further cloning. Thus, the synthesized nucleotide sequence contained optimized codons that did not affect the amino acid composition of hemagglutinin, but significantly improved its expression in human cells.

На следующем этапе получили рекомбинантную псевдоаденовирусную частицу на основе генома аденовируса человека 5-го серотипа, содержащую вставку оптимизированной последовательности гена гемагглютинина вируса гриппа штамма A/Perth/16/2009(H3N2) - SEQ ID NO: 2.At the next stage, a recombinant pseudo-adenovirus particle based on the 5th serotype human adenovirus genome was obtained containing an insert of an optimized sequence of the influenza hemagglutinin gene of strain A / Perth / 16/2009 (H3N2) - SEQ ID NO: 2.

Все нижеописанные работы по клонированию проводили с использованием общеизвестных методик, описанных в Sambrook J. et al., Molecular cloning: a laboratory manual, 3rd ed., Russell, 2001, том 1, 2, 3 - Молекулярное клонирование -лабораторное руководство.All of the cloning work described below was carried out using well-known techniques described in Sambrook J. et al., Molecular cloning: a laboratory manual, 3rd ed., Russell, 2001, vol. 1, 2, 3 — Molecular cloning — laboratory manual.

Получение конструкции рекомбинантной псевдоаденовирусной частицы на основе генома аденовируса человека пятого серотипа (размером 70-80 нм) проводили методом гомологичной рекомбинации между общеизвестной плазмидой pJM17 (McGrory W.J. et al., A simple technique for the rescue of early regioni mutations into infectious human adenovirus type 5, Virology, V. 163, №2, 1988 - Простая техника для удаления раннего региона 1 в инфекционном аденовирусе человека 5 типа), содержащей геномную часть аденовируса человека 5 серотипа с нарушенной Е1 областью, и вспомогательной плазмидой pACCMVpLpA (Roth M. G., Methods in cell biology, №43, с.175 - Методы в клеточной биологии.), (Go' mez-Foix A. et al., Adenovirus-mediated transfer of the muscle glycogen phosphorylase gene into hepatocytes confers altered regulation of glycogen metabolism, J. Biol. Chem., 1992, №267 (35), 15, с.25129-25134 - Обеспечиваемый аденовирусом перенос гена фосфорилазы мышечного гликогена в гепатоциты меняет регуляцию метаболизма гликогена). Предварительно в шаттл-плазмиду pACCMVpLpA переклонировали оптимизированный ген гемагглютинина вируса гриппа A/Perth/16/2009(H3N2) из вспомогательной плазмиды, в результате получили pACCMVpLpA с экспрессирующей кассетой с целевым трансгеном (геном гемагглютинина), фланкированной участками генома аденовируса, которые участвуют в дальнейшей рекомбинации. Гомологичную рекомбинацию проводили в клетках линии НЕК293 (например, №300192, CLS, Germany) после котрансфекции ее плазмидами pJM17 и pACCMVpLpA. Так как плазмида pJM17 содержала бактериальный сайт инициации репликации (Ori) и ген устойчивости к ампициллину внутри области Е1 геномной части аденовируса, то эта плазмида не могла быть упакована в аденовирусные вирионы, и, таким образом, предотвращалось размножение аденовирусов «дикого типа». После рекомбинации Ori и ген устойчивости к ампициллину исчезали, замещаясь кассетой с целевым трансгеном. Рекомбинантные ДНК упаковывались в капсид вирионов, в результате чего образовались рекомбинантные псевдоаденовирусные частицы, не способные размножаться в непермиссивных культурах клеток, в том числе, в обычных клетках человека, из-за отсутствия Е1 в геноме рекомбинантных псевдоаденовирусных частиц.The construction of a recombinant pseudo-adenovirus particle based on the fifth serotype human adenovirus genome (size 70-80 nm) was carried out by homologous recombination between the well-known plasmid pJM17 (McGrory WJ et al., A simple technique for the rescue of early regioni mutations into infectious human adenovirus type 5 , Virology, V. 163, No. 2, 1988 - A simple technique for removing early region 1 in human infectious adenovirus type 5) containing the genomic part of human adenovirus 5 serotype with an E1-impaired region and an auxiliary plasmid pACCMVpLpA (Roth MG, Methods in cell biology, No. 43, p.175 - M methods in cell biology.), (Go 'mez-Foix A. et al., Adenovirus-mediated transfer of the muscle glycogen phosphorylase gene into hepatocytes confers altered regulation of glycogen metabolism, J. Biol. Chem., 1992, No. 267 ( 35), 15, p.25129-25134 - Adenovirus-mediated transfer of muscle glycogen phosphorylase gene to hepatocytes changes the regulation of glycogen metabolism). Previously, the optimized influenza A / Perth / 16/2009 (H3N2) hemagglutinin gene from an auxiliary plasmid was cloned into the shuttle plasmid pACCMVpLpA, and pACCMVpLpA was obtained with an expression cassette with the target transgene (the hemagglutinin gene that is involved in the flank recombination. Homologous recombination was performed in HEK293 cells (for example, No. 300192, CLS, Germany) after cotransfection with plasmids pJM17 and pACCMVpLpA. Since plasmid pJM17 contained the bacterial replication initiation site (Ori) and the ampicillin resistance gene within the E1 region of the genomic part of the adenovirus, this plasmid could not be packed into adenovirus virions, and thus the propagation of wild-type adenoviruses was prevented. After recombination, Ori and the ampicillin resistance gene disappeared, being replaced by a cassette with the target transgene. Recombinant DNAs were packaged in a capsid of virions, resulting in the formation of recombinant pseudo-adenovirus particles that could not multiply in non-permissive cell cultures, including ordinary human cells, due to the absence of E1 in the genome of recombinant pseudo-adenovirus particles.

Фигура 2. Схема экспрессирующей кассеты рекомбинантной псевдоаденовирусной частицы с геномFigure 2. Scheme of the expression cassette of a recombinant pseudo-adenovirus particle with a gene

14fourteen

гемагглютинина вируса гриппа штамма A/Perth/16/2009(H3N2). Изображено:hemagglutinin of influenza virus strain A / Perth / 16/2009 (H3N2). Pictured:

1 - аденовирусная нуклеотидная последовательность (-);1 - adenoviral nucleotide sequence (-);

2 - промотор цитомегаловируса (→);2 - cytomegalovirus promoter (→);

3 - трансген (---);3 - transgene ( --- );

4 - сигнал полиаденилирования SV40 (Simian vacuolating virus 40) (………).4 - SV40 polyadenylation signal (Simian vacuolating virus 40) (………).

Для подтверждения соответствия заявленным свойствам созданной конструкции рекомбинантной псевдоаденовирусной частицы на основе аденовируса человека 5 серотипа со вставкой оптимизированного гена гемагглютинина вируса гриппа типа А штамма A/Perth/16/2009(H3N2) (SEQ ID NO: 2) проводили описанные ниже ПЦР (полимеразная цепная реакция) по известной стандартной методике.To confirm compliance with the claimed properties of the created design of a recombinant pseudo-adenovirus particle based on human adenovirus 5 serotype with the insert of the optimized influenza hemagglutinin gene of type A strain A / Perth / 16/2009 (H3N2) (SEQ ID NO: 2), the following PCR (polymerase chain) was carried out reaction) according to a known standard method.

Проверяли следующие свойства созданной конструкции:We checked the following properties of the created structure:

1. Подлинность рекомбинантной псевдоаденовирусной частицы, то есть наличие генома аденовируса человека 5 серотипа. Для этого проводили ПЦР на аденовирусную часть (последовательность ДНК, кодирующая гексон аденовируса человека 5 серотипа).1. The authenticity of the recombinant pseudo-adenovirus particle, that is, the presence of the genome of the human adenovirus 5 serotype. To do this, PCR was performed on the adenovirus part (DNA sequence encoding human adenovirus 5 serotype hexon).

Использовали пару праймеров для подтверждения наличия генома (ген гексона) рекомбинантного аденовируса.A pair of primers was used to confirm the presence of the recombinant adenovirus genome (hexon gene).

ADH12-ReverseADH12-reverse

5'-CTCAAAAGTCATGTCTAGCGC-3'5'-CTCAAAAGTCATGTCTAGCGC-3 '

ADHH-ForwardADHH-forward

S'-AACTTCCAGCCCATGAGCCG-3'S'-AACTTCCAGCCCATGAGCCG-3 '

2. Отсутствие патогенности, то есть невозможность вызвать заболевание аденовирусом у человека, Е1 область делетирована у полученных рекомбинантной псевдоаденовирусной частицы, в отличие от аденовируса «дикого типа», способного вызвать заболевание. Для подтверждения отсутствия области Е1 проводили ПЦР.2. The absence of pathogenicity, that is, the inability to cause adenovirus disease in humans, the E1 region is deleted in the resulting recombinant pseudo-adenovirus particles, in contrast to the wild-type adenovirus that can cause the disease. To confirm the absence of the E1 region, PCR was performed.

Использовали пару праймеров на область Е1, которая должна отсутствовать у созданных рекомбинантных псевдоаденовирусных частиц.Used a pair of primers on the E1 region, which should be absent in the created recombinant pseudo-adenovirus particles.

KD25-ForwardKD25-Forward

5'-CGCGGGAAAACTGAATAAGAGGA-3'5'-CGCGGGAAAACTGAATAAGAGGA-3 '

wtE1 R-ReversewtE1 R-Reverse

5'-ATGTCGGGCGTCTCAGG-3'5'-ATGTCGGGCGTCTCAGG-3 '

3. Наличие вставки оптимизированного гена гемагглютинина (SEQ ID NO: 2). Для этого использовали ПЦР на гемагглютинин вируса гриппа с праймерами на целевой ген гемагглютинина вируса гриппа A/Perth/16/2009(H3N2), оптимизированный для экспрессии в клетках человека.3. The presence of an insert optimized hemagglutinin gene (SEQ ID NO: 2). For this, PCR for influenza hemagglutinin was used with primers for the target influenza hemagglutinin gene A / Perth / 16/2009 (H3N2), optimized for expression in human cells.

H3opt - forwardH3opt - forward

5' - CGT GCA CCA TCC CGG AAC AG - 3';5 '- CGT GCA CCA TCC CGG AAC AG - 3';

H3opt-reverseH3opt-reverse

5' - TAG AGT TTG TCG AAC TGC TC - 3'5 '- TAG AGT TTG TCG AAC TGC TC - 3'

Результаты ПЦР с вышеприведенными праймерами представлены на одной электрофореграмме (Фигура 3).The results of PCR with the above primers are presented on the same electrophoregram (Figure 3).

На фигуре 3. изображена электрофореграмма ПЦР - анализов ДНК рекомбинантной псевдоаденовирусной частицы на основе аденовируса человека 5 серотипа со вставкой оптимизированного гена гемагглютинина вируса гриппа штамма A/Perth/16/2009(H3N2) (SEQ ID NO: 2).Figure 3. shows an electrophoregram of PCR analysis of DNA of a recombinant pseudo-adenovirus particle based on serotype 5 human adenovirus with an optimized gene for the hemagglutinin gene of influenza strain A / Perth / 16/2009 (H3N2) (SEQ ID NO: 2).

Светлые горизонтальные полоски на треке - положительный результат реакции, отсутствие полос на треке - отрицательный результат.Light horizontal stripes on the track - a positive result of the reaction, the absence of stripes on the track - a negative result.

Треки: 1, 2, 3 - отрицательный контроль, ДНК аденовируса и положительный контроль, соответственно, с праймерами на трансген. Треки 4, 5, 6 - отрицательный контроль, ДНК аденовируса и положительный контроль, соответственно, с праймерами на гексон аденовируса человека пятого серотипа.Tracks: 1, 2, 3 - negative control, adenovirus DNA and positive control, respectively, with transgen primers. Tracks 4, 5, 6 - negative control, adenovirus DNA and positive control, respectively, with primers for human adenovirus hexon of the fifth serotype.

Треки 7, 8, 9 - отрицательный контроль, ДНК аденовируса и положительный контроль, соответственно, с праймерами на Е1 область аденовируса человека пятого серотипа.Tracks 7, 8, 9 - negative control, adenovirus DNA and positive control, respectively, with primers on the E1 region of human adenovirus of the fifth serotype.

М - маркер молекулярного веса Gene Ruler™ DNA Ladder Mix, Fermentas. Анализ проводили в 0,8% агарозном геле.M - molecular weight marker Gene Ruler ™ DNA Ladder Mix, Fermentas. The analysis was performed on a 0.8% agarose gel.

Таким образом, согласно результатам, представленным на фигуре 3, полученная рекомбинантная псевдоаденовирусная частица была проанализирована методом ПЦР с использованием пар праймеров, комплементарных соответствующему целевому трансгену (SEQ ID NO: 2), гену гексона аденовируса человека пятого серотипа, а так же Е1 области аденовируса для контроля возможного присутствия репликативно-компетентных вирусных частиц (ревертантов «дикого типа» аденовируса).Thus, according to the results presented in figure 3, the obtained recombinant pseudo-adenovirus particle was analyzed by PCR using pairs of primers complementary to the corresponding target transgene (SEQ ID NO: 2), the human adenovirus hexon gene of the fifth serotype, as well as the E1 adenovirus region for control the possible presence of replicatively competent viral particles (“wild-type” adenovirus revertants).

Изображенные на фигуре результаты ПЦР-анализа показывают, что Е1 область, которая должна быть делетирована у рекомбинантных псевдоаденовирусных частиц - не обнаружена (отрицательный результат на треке 8), последовательность ДНК, кодирующая гексон аденовируса человека 5 серотипа - обнаружена (положительный результат на треке 5), ген оптимизированного гена гемагглютинина вируса гриппа A/Perth/16/2009(H3N2)(SEQ ID NO: 2) - обнаружен (положительный результат на треке 2).The results of PCR analysis depicted in the figure show that the E1 region that should be deleted in recombinant pseudo-adenovirus particles was not detected (negative result on track 8), the DNA sequence encoding human adenovirus hexon 5 serotype was detected (positive result on track 5) , gene for the optimized influenza virus hemagglutinin gene A / Perth / 16/2009 (H3N2) (SEQ ID NO: 2) - detected (positive on track 2).

По результатам ПЦР заключено, что получена рекомбинантная псевдоаденовирусная (отсутствует Е1 область аденовируса) частица на основе аденовируса человека 5 серотипа (есть гексон аденовируса человека 5 серотипа) со вставкой оптимизированного гена гемагглютинина вируса гриппа штамма A/Perth/16/2009(H3N2) (присутствует оптимизированный ген гемагглютинина - SEQ ID NO: 2), что говорит о соответствии данной конструкции заявляемым по изобретению требованиям.According to PCR results, it was concluded that a recombinant pseudo-adenovirus (E1 region of adenovirus is absent) particle based on human adenovirus 5 serotype (there is a human serum adenovirus 5 serotype) with an optimized gene for the hemagglutinin gene of influenza strain A / Perth / 16/2009 (H3N2) is present the optimized hemagglutinin gene - SEQ ID NO: 2), which indicates the compliance of this design with the requirements claimed according to the invention.

Пример 2.Example 2

В данном примере описываются культурально морфологические особенности сконструированных рекомбинантных псевдоаденовирусных частиц на основе генома аденовируса человека 5 серотипа со вставкой оптимизированного гена гемагглютинина вируса гриппа штамма A/Perth/16/2009(H3N2),SEQ ID NO: 2.This example describes the cultural and morphological features of the constructed recombinant pseudo-adenovirus particles based on the human serotype 5 adenovirus genome with the insert of the optimized influenza hemagglutinin gene of strain A / Perth / 16/2009 (H3N2), SEQ ID NO: 2.

Все применяемые культуральные методы были общеизвестными (Фрешни Р. и др. Культура животных клеток. Методы, М., Мир, 1989, с.333).All applied cultural methods were well known (Freshni R. et al. Culture of animal cells. Methods, M., Mir, 1989, p. 333).

Рекомбинантные псевдоаденовирусные частицы собираются в клетках линии НЕК293 (human embryonic kidney -почек эмбриона человека) (например, №300192, CLS, Germany). Геном данного типа клеток содержит область Е1, что позволяет рекомбинантным псевдоаденовирусным частицам с удаленными аналогичными областями собираться и размножаться в клетках этой линии. Сборка частиц сопровождается лизисом клеток, от момента трансдукции до момента лизиса клеток и получения новой генерации рекомбинантных псевдоаденовирусных частиц со вставкой гена гемагглютинина вируса гриппа проходит 48 часов.Recombinant pseudo-adenovirus particles are collected in cells of the HEK293 line (human embryonic kidney - kidneys of a human embryo) (for example, No. 300192, CLS, Germany). The genome of this type of cell contains an E1 region, which allows recombinant pseudo-adenovirus particles with similar regions removed to collect and multiply in cells of this line. Particle assembly is accompanied by cell lysis, from the moment of transduction to the time of cell lysis and obtaining a new generation of recombinant pseudo-adenovirus particles with the insertion of the influenza virus hemagglutinin gene, 48 hours pass.

Для роста клеток линии НЕК293 в адгезионной культуре необходимо использовать среду DMEM (например, Invitrogen, №52100-047, США), содержащую 25 мМ глюкозы, 4 мМ Д-глютамина и 10% эмбриональной бычьей сыворотки, специальный инкубатор с поддержанием температуры+37°С и 5% СО2.For the growth of HEK293 cells in an adhesion culture, it is necessary to use DMEM medium (for example, Invitrogen, No. 52100-047, USA) containing 25 mM glucose, 4 mM D-glutamine and 10% fetal bovine serum, a special incubator with a temperature of + 37 ° C and 5% CO 2 .

Количество рекомбинантных псевдоаденовирусных частиц, способных трансдуцировать (активность) клетки линии НЕК293, определяли с помощью стандартного метода титрования по бляшкам, в результате получали титр частиц, выраженный в бляшкообразующих единицах на мл (БОЕ/мл).The number of recombinant pseudo-adenovirus particles capable of transducing (activity) HEK293 cells was determined using the standard plaque titration method, resulting in a particle titer expressed in plaque forming units per ml (PFU / ml).

Для оценки активности монослой клеток линии НЕК293 с конфлюэнтностью 50-70% заражали суспензией зараженных клеток, в количестве 10 БОЕ вируса на культуральную чашкудиаметром 15 см. Через двое суток инфицированные клетки снимали, концентрировали низкоскоростным центрифугированием, суспендировали в фосфатном буфере (рН 7,2-7,4) и разрушали с помощью 3-кратного замораживания-оттаивания. Полученную суспензию осветляли центрифугированием при 2000 об/мин 10 мин при +4°С и титровали по бляшкам.To assess the activity of a monolayer of HEK293 cells with a confluency of 50-70%, they were infected with a suspension of infected cells, in the amount of 10 PFU of the virus per culture cup with a diameter of 15 cm. After two days, the infected cells were removed, concentrated by low-speed centrifugation, suspended in phosphate buffer (pH 7.2- 7.4) and destroyed by 3-fold freeze-thaw. The resulting suspension was clarified by centrifugation at 2000 rpm for 10 min at + 4 ° C and titrated by plaque.

Таким образом, установили активность рекомбинантных псевдоаденовирусных частиц от 5×107 до 3×108 БОЕ/мл (бляшкообразующих единиц на мл культуры НЕК293).Thus, the activity of recombinant pseudo-adenovirus particles was established from 5 × 10 7 to 3 × 10 8 PFU / ml (plaque-forming units per ml of HEK293 culture).

Пример 3.Example 3

Способность к усиленной экспрессии рекомбинантными псевдоаденовирусными частицами оптимизированного гена гемагглютинина вируса гриппа штамма A/Perth/16/2009(H3N2) определяли in vitro стандартным методом иммуноблоттинга (вестерн-блот) с использованием моноклональных антител к гемагглютинину.The ability of the recombinant pseudo-adenoviral particles to enhance the expression of the optimized hemagglutinin gene of the influenza virus strain A / Perth / 16/2009 (H3N2) was determined in vitro by standard immunoblotting (western blot) using monoclonal antibodies to hemagglutinin.

Для этого клетки линии НЕК293 трансдуцировали рекомбинантными псевдоаденовирусными частицами со вставкой оптимизированного гена гемагглютинина, а также рекомбинантными псевдоаденовирусными частицами с не оптимизированными для трансляции кодонами и рекомбинантными псевдоаденовирусными частицами, имеющими целевой ген, не относящийся к гемагглютининам. Через сутки после трансдукции клетки всех образцов отмыли 2 раза фосфатно-солевым буфером, рН=7.4 и лизировали в буфере для нанесения, содержащем додецил сульфат натрия и дитиотреитол. Образцы прогрели 7 мин при +95°С и охладили до комнантной температуры. Далее полученные лизаты контрольных и трансдуцированных клеток подвергли электрофорезу в полиакриамидном геле в денатурирующих условиях.For this, HEK293 cells were transduced with recombinant pseudo-adenovirus particles with an optimized hemagglutinin gene insert, as well as recombinant pseudo-adenovirus particles with translation-optimized codons and recombinant pseudo-adenovirus particles having a target gene that is not related to hemagglutinins. One day after transduction, the cells of all samples were washed 2 times with phosphate-buffered saline, pH = 7.4, and lysed in an application buffer containing sodium dodecyl sulfate and dithiothreitol. The samples were heated for 7 min at + 95 ° С and cooled to room temperature. Next, the obtained lysates of control and transduced cells were subjected to polyacryamide gel electrophoresis under denaturing conditions.

В качестве положительного контроля использовали очищенный гемагглютинин вируса гриппа A (Sion Biological Inc., кат. №40043-V08H). После проведения фореза, белки из геля перенесли на специальную мембрану для проведения иммуноблот-анализа. Иммуноблот - анализ проводили по стандартной схеме с использованием антител к гемагглютинину вируса гриппа A/Perth/16/2009(H3N2) (Sion Biological Inc., кат. №SEK11056-1). Результаты иммуноблот-анализа показаны на фигуре 4.As a positive control, purified hemagglutinin of influenza A virus was used (Sion Biological Inc., Cat. No. 40043-V08H). After carrying out the phoresis, the proteins from the gel were transferred to a special membrane for immunoblot analysis. Immunoblot analysis was performed according to a standard scheme using antibodies to influenza hemagglutinin A / Perth / 16/2009 (H3N2) (Sion Biological Inc., cat. No. SEK11056-1). The results of the immunoblot analysis are shown in figure 4.

На фигуре 4 изображены результаты иммуноблот-анализа. Дорожки обозначают анализ с лизатом клеток НЕК293 линии:The figure 4 shows the results of an immunoblot analysis. Lanes represent an analysis with a lysate of HEK293 cell lines:

1 - положительный контроль (очищенный гемагглютинин вируса гриппа A (Sion Biological Inc., кат. №40043-V08H);1 - positive control (purified hemagglutinin of influenza A virus (Sion Biological Inc., cat. No. 40043-V08H);

2 - отрицательный контроль (рекомбинантные псевдоаденовирусные частицы, не продуцирующие гемагглютинин);2 - negative control (recombinant pseudo-adenovirus particles that do not produce hemagglutinin);

3 - рекомбинантные псевдоаденовирусные частицы со вставкой оптимизированного гена гемагглютинина вируса гриппа A/Perth/16/2009(H3N2), SEQ ID NO: 2;3 - recombinant pseudo-adenovirus particles with the insert of the optimized influenza hemagglutinin gene A / Perth / 16/2009 (H3N2), SEQ ID NO: 2;

4 - рекомбинантные псевдоаденовирусные частицы со вставкой неоптимизированного гена гемагглютинина вируса гриппа A/Perth/16/2009(H3N2), SEQ ID NO: 1.4 - recombinant pseudo-adenovirus particles with the insertion of the non-optimized influenza hemagglutinin gene A / Perth / 16/2009 (H3N2), SEQ ID NO: 1.

Таким образом, на фигуре 4 хорошо заметно окрашивание полосы детекции на дорожке 1 (положительный контроль) и на дорожке 3 (в лизате клеток 293 линии, трансдуцированных рекомбинантными псевдоаденовирусными частицами со вставкой оптимизированного гена гемагглютинина, SEQ ID NO:Thus, in figure 4, the staining of the detection band on lane 1 (positive control) and lane 3 (in the lysate of 293 cell cells transduced with recombinant pseudo-adenovirus particles with an insert of the optimized hemagglutinin gene, SEQ ID NO:

2. В лизате клеток, трансдуцированных рекомбинантными псевдоаденовирусными частицами с гемагглютинином с неоптимизированными кодонами, SEQ ID NO: 1 на дорожке 4, наблюдалась очень слабая полоса, означающая очень низкий уровень экспрессии, в случае отрицательного контроля на дорожке 2, окрашивания не было.2. In the lysate of cells transduced with recombinant hemagglutinin pseudo-adenovirus particles with non-optimized codons, SEQ ID NO: 1 in lane 4, a very weak band was observed, indicating a very low expression level, in the case of a negative control in lane 2, there was no staining.

Полученные результаты иммуноблот-анализа позволяют заключить о значительно усиленном уровне экспрессии рекомбинантными псевдоаденовирусными частицами оптимизированного гена гемагглютинина вируса гриппа A/Perth/16/2009(H3N2) по сравнению с неоптимизированным геном гемагглютинина вируса гриппа A/Perth/16/2009(H3N2), что соответствует решению поставленной по изобретению задаче по созданию рекомбинантной псевдоаденовирусной частицы на основе генома аденовируса человека 5 серотипа, усиленно продуцирующей гемагглютинин вируса гриппа A/Perth/16/2009(H3N2), SEQ ID NO: 2.The obtained results of the immunoblot analysis allow us to conclude that the expression of recombinant pseudo-adenoviral particles of the optimized influenza hemagglutinin gene A / Perth / 16/2009 (H3N2) compared to the non-optimized influenza hemagglutinin gene A / Perth / 16/2009 (H3N2), which corresponds to the solution of the task of the invention to create a recombinant pseudo-adenovirus particle based on the genome of human adenovirus 5 serotype, intensively producing hemagglutinin of influenza virus A / Perth / 16/2009 (H3N2), SEQ ID NO : 2.

Пример 4.Example 4

В данном примере рассматривается способ использования рекомбинантных псевдоаденовирусных частиц на основе генома аденовируса человека 5 серотипа, продуцирующих гемагглютинин вируса гриппа A/Perth/16/2009(H3N2) путем их введения в эффективном количестве для индукции специфического иммунитета к вирусу гриппа А субтипа H3N2.This example describes a method of using recombinant pseudo-adenovirus particles based on the genotype 5 human adenovirus genome producing hemagglutinin of influenza A / Perth / 16/2009 (H3N2) virus by administering them in an effective amount to induce specific immunity to influenza A virus of the H3N2 subtype.

Для подтверждения способа использования иммунизировали мышей. Наилучшие показатели иммуногенности и протективных свойств созданных рекомбинантных псевдоаденовирусных частиц были получены при введении в дозе 2×107 БОЕ/мышь, при этом никаких побочных эффектов в момент введения и в отдаленный период отмечено не было.To confirm the method of use, mice were immunized. The best immunogenicity and protective properties of the created recombinant pseudo-adenovirus particles were obtained with a dose of 2 × 10 7 PFU / mouse, with no side effects at the time of administration and in the long term.

Для иммунизации лабораторных мышей рекомбинантными псевдоаденовирусными частицами животные были разбиты на группы по 10 особей и под легким эфирным наркозом интраназально однократно иммунизированы рекомбинантными псевдоаденовирусными частицами со вставкой оптимизированного гена гемагглютинина вируса гриппа штамма A/Perth/16/2009(H3N2), SEQ ID NO: 2, в дозе 2×107 БОЕ/мышь. В качестве контрольных использовались группы мышей, получавших рекомбинантные псевдоаденовирусные частицы, не несущие трансгена, и физиологический раствор NaCl. Препаратом сравнения были рекомбинантные псевдоаденовирусные частицы со вставкой неоптимизированного гена гемагглютинина вируса гриппа штамма A/Perth/16/2009(H3N2), SEQ ID NO: 1.For immunization of laboratory mice with recombinant pseudo-adenovirus particles, the animals were divided into groups of 10 individuals and under light ether anesthesia, they were intranasally immunized once with recombinant pseudo-adenovirus particles with an optimized gene for the hemagglutinin gene of the influenza virus strain A / Perth / 16/2009 (H3N2): , at a dose of 2 × 10 7 PFU / mouse. As control groups of mice were used that received recombinant pseudo-adenovirus particles that did not carry a transgene and physiological saline NaCl. The comparison drug was recombinant pseudo-adenovirus particles with an insert of the non-optimized influenza hemagglutinin gene of strain A / Perth / 16/2009 (H3N2), SEQ ID NO: 1.

Взятие крови для анализа сывороток проводился через три недели после иммунизации.Blood collection for serum analysis was carried out three weeks after immunization.

Иммуногенность рекомбинантных псевдоаденовирусных частиц со вставкой гена гемагглютинина определяли по уровню антигемагглютинирующих антител в сыворотке крови в стандартной РТГА (реакции торможения гемагглютинации) (Таблица 1 и фигура 5).The immunogenicity of recombinant pseudo-adenovirus particles with the insertion of the hemagglutinin gene was determined by the level of anti-hemagglutinating antibodies in blood serum in standard RTGA (hemagglutination inhibition reaction) (Table 1 and figure 5).

В таблице 1 представлены титры специфических антител к вирусу гриппа A/Perth/16/2009(H3N2) в сыворотке крови на 21 сутки после иммунизации мышей.Table 1 shows the titers of specific antibodies to the influenza A / Perth / 16/2009 (H3N2) virus in blood serum on day 21 after immunization of mice.

Таблица 1Table 1 Наименование вводимого препаратаName of the administered drug Антигемагглютинирующие антитела в РТГА (средний геометрический титр)Antihemagglutinating antibodies in rtga (geometric mean titer) Рекомбинантные псевдоаденовирусные частицы со вставкой оптимизированного гена гемагглютинина вируса гриппа A/Perth/16/2009(H3N2), SEQ ID NO: 2Recombinant pseudo-adenovirus particles with an optimized influenza hemagglutinin gene insert A / Perth / 16/2009 (H3N2), SEQ ID NO: 2 3429,77±863,53429.77 ± 863.5 Рекомбинантные псевдоаденовирусные частицы со вставкой гена гемагглютинина НА3 (не оптимизированного) вируса гриппа A/Perth/16/2009(H3N2), SEQ ID NO:1Recombinant pseudo-adenoviral particles with the insertion of the gene for hemagglutinin HA3 (not optimized) influenza virus A / Perth / 16/2009 (H3N2), SEQ ID NO: 1 203,44±61,8203.44 ± 61.8 Рекомбинантные псевдоаденовирусные частицы без вставки трансгенаRecombinant pseudo-adenovirus particles without transgene insertion <8<8 Контрольное вещество (физиологический раствор NaCl)Control substance (physiological solution of NaCl) <8<8

По данным таблицы 1 видно, что иммуногенность рекомбинантных псевдоаденовирусных частиц со вставкой оптимизированного гена гемагглютинина вируса гриппа A/Perth/16/2009(H3N2), SEQ ID NO: 2 значительно превосходит иммуногенность рекомбинантных псевдоаденовирусных частиц со вставкой неоптимизированного гена гемагглютинина вируса гриппа A/Perth/16/2009(H3N2), SEQ ID NO: 1. Контрольные вещества были неиммуногенны.According to table 1, it is seen that the immunogenicity of recombinant pseudo-adenovirus particles with the insert of the optimized influenza hemagglutinin gene A / Perth / 16/2009 (H3N2), SEQ ID NO: 2 significantly exceeds the immunogenicity of the recombinant pseudo-adenovirus particles with the insert of the non-optimized gene of the hemagglutinin hemagglutinin A virus / 16/2009 (H3N2), SEQ ID NO: 1. Control substances were non-immunogenic.

На фигуре 5 представлена диаграмма, столбцы которой показывают уровень антигемагглютинирующих антител, определенных в РТГА, к вирусу гриппа A/Perth/16/2009(H3N2), при этом иммунизацию проводили следующими веществами:The figure 5 presents a chart, the columns of which show the level of anti-hemagglutinating antibodies defined in rtga to the influenza virus A / Perth / 16/2009 (H3N2), while the immunization was carried out with the following substances:

1 - рекомбинантными псевдоаденовирусными частицами со вставкой оптимизированного гена гемагглютинина вируса гриппа A/Perth/16/2009(H3N2), SEQ ID NO: 2;1 - recombinant pseudo-adenoviral particles with the insert of the optimized gene for hemagglutinin of the influenza virus A / Perth / 16/2009 (H3N2), SEQ ID NO: 2;

2 - рекомбинантными псевдоаденовирусными частицами со вставкой не оптимизированного гена гемагглютинина вируса гриппа A/Perth/16/2009(H3N2), SEQ ID NO: 1;2 - recombinant pseudo-adenovirus particles with the insertion of the not optimized influenza hemagglutinin gene A / Perth / 16/2009 (H3N2), SEQ ID NO: 1;

3 - рекомбинантными псевдоаденовирусными частицами без вставки трансгена;3 - recombinant pseudo-adenovirus particles without transgene insertion;

4 - физиологическим раствором NaCl.4 - physiological NaCl solution.

Результаты диаграммы на фигуре 5 показывают значительное повышение уровня антигемагглютинирующих антител в случае иммунизации рекомбинантными псевдоаденовирусными частицами со вставкой оптимизированного гена гемагглютинина вируса гриппа A/Perth/16/2009(H3N2), SEQ ID NO: 2, по сравнению с рекомбинантными псевдоаденовирусными частицами со вставкой неоптимизированного гена гемагглютинина того же штамма, SEQ ID NO: 1, а также контрольными веществами (титры антигемагглютинирующих антител отсутствовали).The results of the diagram in Figure 5 show a significant increase in the level of anti-hemagglutinating antibodies when immunized with recombinant pseudo-adenovirus particles with the insert of the optimized influenza hemagglutinin gene A / Perth / 16/2009 (H3N2), SEQ ID NO: 2, compared with recombinant pseudo-adenovirus particles with no hemagglutinin gene of the same strain, SEQ ID NO: 1, as well as control substances (anti-hemagglutinating antibody titers were absent).

Также одновременно через три недели после иммунизации для исследования протективных свойств созданных рекомбинантных псевдоаденовирусных частиц моделировали летальную инфекцию путем заражения лабораторных мышей высокой летальной дозой вируса гриппа штамма A/Perth/16/2009(H3N2) интраназально под легким эфирным наркозом. Наблюдение за животными проводили в течение 16 дней после заражения.Also, three weeks after immunization, to study the protective properties of the created recombinant pseudo-adenovirus particles, a lethal infection was simulated by infecting laboratory mice with a high lethal dose of the influenza virus strain A / Perth / 16/2009 (H3N2) intranasally under light ether anesthesia. Observation of animals was carried out for 16 days after infection.

На фигуре 6 представлены кривые выживаемости иммунизированных мышей после заражения летальной дозой вируса гриппа A/Perth/16/2009(H3N2). Иммунизацию проводили:The figure 6 presents the survival curves of immunized mice after infection with a lethal dose of influenza virus A / Perth / 16/2009 (H3N2). The immunization was carried out:

1 (◆) - рекомбинантными псевдоаденовирусными частицами со вставкой оптимизированного гена гемагглютинина вируса гриппа A/Perth/16/2009(H3N2), SEQ ID NO: 2;1 (◆) - recombinant pseudo-adenovirus particles with the insert of the optimized influenza hemagglutinin gene A / Perth / 16/2009 (H3N2), SEQ ID NO: 2;

2 (■) - рекомбинантными псевдоаденовирусными частицами со вставкой не оптимизированного гена гемагглютинина вируса гриппа A/Perth/16/2009(H3N2), SEQ ID NO:1;2 (■) - recombinant pseudo-adenovirus particles with the insertion of the not optimized influenza hemagglutinin gene A / Perth / 16/2009 (H3N2), SEQ ID NO: 1;

3 (▲) - рекомбинантными псевдоаденовирусными частицами без вставки трансгена;3 (▲) - recombinant pseudo-adenovirus particles without transgene insertion;

4

Figure 00000001
- физиологический раствор NaCl.four
Figure 00000001
- physiological solution of NaCl.

Представленные на фигуре 6 данные свидетельствуют о наличии протективных свойств у рекомбинантных псевдоаденовирусных частиц со вставкой оптимизированного гена гемагглютинина вируса гриппа A/Perth/16/2009(H3N2), SEQ ID NO: 2, так как ни одна из иммунизированных мышей при заражении летальной дозой вируса A/Perth/16/2009(H3N2) не погибла (100% выживаемость). В случае иммунизации рекомбинантными псевдоаденовирусными частицами со вставкой неоптимизированного гена гемагглютинина вируса гриппа A/Perth/16/2009(H3N2), SEQ ID NO: 1, и без вставки трансгена протективные свойства были гораздо слабее, выживаемость составила, соответственно, 32% и 9%. При этом, в контрольной группе, получавшей физиологический раствор, наблюдалась гибель 100% мышей в течение 12 дней.The data presented in figure 6 indicate the presence of protective properties of recombinant pseudo-adenovirus particles with the insert of the optimized gene for hemagglutinin of the influenza virus A / Perth / 16/2009 (H3N2), SEQ ID NO: 2, since none of the immunized mice when infected with a lethal dose of the virus A / Perth / 16/2009 (H3N2) did not die (100% survival). In the case of immunization with recombinant pseudo-adenovirus particles with the insertion of an unoptimized influenza hemagglutinin gene A / Perth / 16/2009 (H3N2), SEQ ID NO: 1, and without the insertion of the transgene, the protective properties were much weaker, the survival rate was 32% and 9%, respectively . At the same time, in the control group receiving saline, the death of 100% of mice was observed within 12 days.

Таким образом, по результатам экспериментов заключили, что созданные рекомбинантные псевдоаденовирусные частицы со вставкой оптимизированного гена гемагглютинина вируса гриппа штамма A/Perth/16/2009(H3N2), SEQ ID NO: 2, продуцирующие гемагглютинин вируса гриппа штамма A/Perth/16/2009(H3N2), обладают усиленными иммуногенными и протективными свойствами в отношении специфического штамма возбудителя вируса гриппа, что позволяет использовать их для индукции специфического иммунитета к вирусу гриппа А субтипа H3N2 в организме.Thus, according to the results of the experiments, it was concluded that the created recombinant pseudo-adenovirus particles with the insert of the optimized gene for hemagglutinin of the influenza virus strain A / Perth / 16/2009 (H3N2), SEQ ID NO: 2, producing hemagglutinin of the influenza virus strain A / Perth / 16/2009 (H3N2), have enhanced immunogenic and protective properties against a specific strain of the causative agent of the influenza virus, which allows them to be used to induce specific immunity to the influenza A virus subtype of H3N2 in the body.

Вывод. На основании представленных в примерах и таблицах результатах исследований заключено, что поставленная техническая задача по изобретению выполнена. Создана рекомбинантная псевдоаденовирусная частица со вставкой оптимизированного гена гемагглютинина вируса гриппа штамма A/Perth/16/2009(H3N2), обладающая активностью 5×107 до 3×108 БОЕ/мл и усиленным уровнем экспрессии гена гемагглютинина вируса гриппа штамма A/Perth/16/2009(H3N2), усиленными иммуногенными и протективными свойствами, что позволяет использовать ее для индукции специфического иммунитета к вирусу гриппа А субтипа H3N2 в организме, что также подтверждает промышленную применимость заявленного изобретения.Output. Based on the research results presented in the examples and tables, it was concluded that the technical task of the invention was completed. A recombinant pseudo-adenovirus particle with the insertion of an optimized influenza hemagglutinin gene of strain A / Perth / 16/2009 (H3N2), with an activity of 5 × 10 7 to 3 × 10 8 PFU / ml and increased expression level of the influenza virus hemagglutinin gene of strain A / Perth / 16/2009 (H3N2), enhanced immunogenic and protective properties, which allows it to be used to induce specific immunity to influenza A virus subtype H3N2 in the body, which also confirms the industrial applicability of the claimed invention.

Claims (6)

1. Рекомбинантная псевдоаденовирусная частица на основе генома аденовируса человека 5 серотипа для индукции специфического иммунитета к вирусу гриппа А субтипа H3N2, содержащая экспрессирующую кассету со вставкой гена гемагглютинина вируса гриппа,
отличающаяся тем, что
в качестве гена гемагглютинина вируса гриппа использован ген гемагглютинина вируса гриппа штамма A/Perth/16/2009(H3N2) SEQ ID NO:2 с предварительно оптимизированной для экспрессии в клетках человека нуклеотидной последовательностью, с обеспечением повышенной экспрессии гена гемагглютинина вируса гриппа A/Perth/16/2009(H3N2).
1. Recombinant pseudo-adenovirus particle based on the human adenovirus genome 5 serotype for the induction of specific immunity to influenza A virus subtype H3N2 containing an expression cassette with an insertion of the influenza hemagglutinin gene,
characterized in that
the influenza virus hemagglutinin gene was used the influenza virus hemagglutinin gene of strain A / Perth / 16/2009 (H3N2) SEQ ID NO: 2 with the nucleotide sequence previously optimized for expression in human cells, providing increased expression of the influenza A / Perth / hemagglutinin gene 16/2009 (H3N2).
2. Рекомбинантная псевдоаденовирусная частица по п.1, отличающаяся тем, что ген гемагглютинина вируса гриппа штамма A/Perth/16/2009(H3N2) с оптимизированной нуклеотидной последовательностью клонирован в экспрессирующую кассету под контролем промотора и содержащую сигнал полиаденилирования.2. The recombinant pseudo-adenovirus particle according to claim 1, characterized in that the influenza hemagglutinin gene of strain A / Perth / 16/2009 (H3N2) with an optimized nucleotide sequence is cloned into an expression cassette under the control of a promoter and containing a polyadenylation signal. 3. Рекомбинантная псевдоаденовирусная частица по п.2, отличающаяся тем, что промотором является промотор цитомегаловируса.3. The recombinant pseudo-adenovirus particle according to claim 2, characterized in that the promoter is a cytomegalovirus promoter. 4. Рекомбинантная псевдоаденовирусная частица по п.2, отличающаяся тем, что сигналом полиаденилирования является SV40.4. The recombinant pseudo-adenovirus particle according to claim 2, characterized in that the polyadenylation signal is SV40. 5. Рекомбинантная псевдоаденовирусная частица по п.1, отличающаяся тем, что экспрессирующая кассета расположена в области делеции Е1 генома аденовируса человека 5 серотипа.5. The recombinant pseudo-adenovirus particle according to claim 1, characterized in that the expression cassette is located in the E1 deletion region of the human adenovirus genome 5 serotype. 6. Способ использования рекомбинантной псевдоаденовирусной частицы по п.1 на основе генома аденовируса человека 5 серотипа, продуцирующей гемагглютинин вируса гриппа A/Perth/16/2009(H3N2) путем введения индивидууму в эффективном количестве для индукции специфического иммунитета к вирусу гриппа А субтипа H3N2. 6. The method for using the recombinant pseudo-adenovirus particle according to claim 1 based on the human adenovirus genome 5 serotype producing hemagglutinin of influenza A / Perth / 16/2009 (H3N2) virus by administering to the individual in an effective amount to induce specific immunity to influenza A virus subtype H3N2.
RU2012135825/10A 2012-08-21 2012-08-21 Recombinant pseudo adenoviral particle based on human being adenovirus genome of 5-th serotype for induction of specific immunity to influenza virus a of h3n2 subtype and method of its use RU2507258C1 (en)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2012135825/10A RU2507258C1 (en) 2012-08-21 2012-08-21 Recombinant pseudo adenoviral particle based on human being adenovirus genome of 5-th serotype for induction of specific immunity to influenza virus a of h3n2 subtype and method of its use

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2012135825/10A RU2507258C1 (en) 2012-08-21 2012-08-21 Recombinant pseudo adenoviral particle based on human being adenovirus genome of 5-th serotype for induction of specific immunity to influenza virus a of h3n2 subtype and method of its use

Publications (1)

Publication Number Publication Date
RU2507258C1 true RU2507258C1 (en) 2014-02-20

Family

ID=50113278

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
RU2012135825/10A RU2507258C1 (en) 2012-08-21 2012-08-21 Recombinant pseudo adenoviral particle based on human being adenovirus genome of 5-th serotype for induction of specific immunity to influenza virus a of h3n2 subtype and method of its use

Country Status (1)

Country Link
RU (1) RU2507258C1 (en)

Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2661028C2 (en) * 2016-11-11 2018-07-11 федеральное государственное бюджетное учреждение "Национальный исследовательский центр эпидемиологии и микробиологии имени почетного академика Н.Ф.Гамалеи" Министерства здравоохранения Российской Федедерации Pharmaceutical composition for passive rabies immunization, pharmaceutical kit, pharmaceutical kit application method

Citations (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2326943C1 (en) * 2006-12-29 2008-06-20 Борис Савельевич Народицкий Method of preparation of recombinant adenovirus of birds for vaccination against birds flu virus h5n1
US20110123564A1 (en) * 2009-07-31 2011-05-26 Paxvax, Inc. Adenoviral-based vectors
RU2458124C2 (en) * 2010-07-20 2012-08-10 Федеральное государственное бюджетное учреждение "Научно-исследовательский Институт гриппа" Министерства здравоохранения и социального развития Российской Федерации (ФГБУ "НИИ гриппа" Минздравсоцразвития России) VACCINE INFLUENZA VIRUS STRAIN A(H3N2)-A/8/Perth/16/2009 FOR PRODUCTION OF INACTIVATED INFLUENZA VACCINE

Patent Citations (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2326943C1 (en) * 2006-12-29 2008-06-20 Борис Савельевич Народицкий Method of preparation of recombinant adenovirus of birds for vaccination against birds flu virus h5n1
US20110123564A1 (en) * 2009-07-31 2011-05-26 Paxvax, Inc. Adenoviral-based vectors
RU2458124C2 (en) * 2010-07-20 2012-08-10 Федеральное государственное бюджетное учреждение "Научно-исследовательский Институт гриппа" Министерства здравоохранения и социального развития Российской Федерации (ФГБУ "НИИ гриппа" Минздравсоцразвития России) VACCINE INFLUENZA VIRUS STRAIN A(H3N2)-A/8/Perth/16/2009 FOR PRODUCTION OF INACTIVATED INFLUENZA VACCINE

Non-Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
GRAEME E. PRICE et al., Single-Dose Mucosal Immunization with a Candidate Universal Influenza Vaccine Provides Rapid Protection from Virulent H5N1, H3N2 and H1N1 Viruses, PLoS ONE, October 2010, Vol. 5, Issue 10, p.p.1-13. *

Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2661028C2 (en) * 2016-11-11 2018-07-11 федеральное государственное бюджетное учреждение "Национальный исследовательский центр эпидемиологии и микробиологии имени почетного академика Н.Ф.Гамалеи" Министерства здравоохранения Российской Федедерации Pharmaceutical composition for passive rabies immunization, pharmaceutical kit, pharmaceutical kit application method

Similar Documents

Publication Publication Date Title
CN110093324B (en) Attenuated African swine fever virus with gene deletion and application thereof as vaccine
Toro et al. Protection of chickens against avian influenza with non-replicating adenovirus-vectored vaccine
EA026620B1 (en) Vaccine against rsv
US9931396B2 (en) Koi herpesvirus vaccine
US10342861B2 (en) Arenavirus vaccine
KR20090117697A (en) Recombinant modified vaccinia virus ankara (mva)-based vaccine for the avian flu
Tabynov et al. Novel influenza virus vectors expressing Brucella L7/L12 or Omp16 proteins in cattle induced a strong T-cell immune response, as well as high protectiveness against B. abortus infection
Oladunni et al. Equine influenza virus and vaccines
US20200171141A1 (en) Compositions and Methods for Generating an Immune Response to LASV
US20220001007A1 (en) Compositions and methods
CN113201507A (en) Recombinant pseudorabies virus and vaccine composition thereof
RU2507257C1 (en) Recombinant pseudo adenoviral particle based on human being adenovirus genome of 5-th serotype for induction of specific immunity to influenza virus a of h1n1 subtype and method of its use as component for vaccine production
JP2014511119A (en) New vaccine against H1N1 subtype influenza pandemic virus
JP6175167B2 (en) Recombinant vaccinia virus with hemagglutinin protein gene from new influenza virus
Toro et al. Protection of chickens against avian influenza with nonreplicating adenovirus-vectored vaccine
Liu et al. Recombinant bovine herpesvirus type I expressing the bovine viral diarrhea virus E2 protein could effectively prevent infection by two viruses
RU2507258C1 (en) Recombinant pseudo adenoviral particle based on human being adenovirus genome of 5-th serotype for induction of specific immunity to influenza virus a of h3n2 subtype and method of its use
Ito et al. Safety enhancement of a genetically modified live rabies vaccine strain by introducing an attenuating Leu residue at position 333 in the glycoprotein
Li et al. Protection of chickens against reticuloendotheliosis virus infection by DNA vaccination
Jordan et al. Elements in the development of a production process for modified vaccinia virus Ankara
RU2523599C1 (en) RECOMBINANT PSEUDO-ADENOVIRUS PARTICLE BASED ON GENOME OF HUMAN ADENOVIRUS OF SEROTYPE 5, PRODUCING INFLUENZA HEMAGGLUTININ OF STRAIN A/Brisbane/59/2007(H1N1) AND METHOD OF ITS USE
Wang et al. Parainfluenza virus 5 is a next‐generation vaccine vector for human infectious pathogens
RU2507259C1 (en) RECOMBINANT PSEUDO ADENOVIRAL PARTICLE BASED ON HUMAN BEING ADENOVIRUS GENOME OF 5-TH SEROTYPE, PRODUCING HAEMAGGLUTININ OF INFLUENZA VIRUS OF B/Brisbane/60/2008 STRAIN AND METHOD OF ITS USE FOR INDUCTION OF SPECIFIC IMMUNITY TO INFLUENZA VIRUS B
Yuan et al. Swinepox virus vector-based vaccines: attenuation and biosafety assessments following subcutaneous prick inoculation
Choudhury et al. Recent development of ruminant vaccine against viral diseases