RU2497107C2 - Method to measure redox potential of biological media - Google Patents
Method to measure redox potential of biological media Download PDFInfo
- Publication number
- RU2497107C2 RU2497107C2 RU2012102137/28A RU2012102137A RU2497107C2 RU 2497107 C2 RU2497107 C2 RU 2497107C2 RU 2012102137/28 A RU2012102137/28 A RU 2012102137/28A RU 2012102137 A RU2012102137 A RU 2012102137A RU 2497107 C2 RU2497107 C2 RU 2497107C2
- Authority
- RU
- Russia
- Prior art keywords
- potential
- redox potential
- electrode
- measurement
- silver chloride
- Prior art date
Links
Images
Abstract
Description
Изобретение относится к способу измерения редокс потенциала биологических сред (кровь, плазма крови, сыворотка крови, спинномозговая жидкость, моча и др.), отражающему состояние окислительно-восстановительного равновесия исследуемой системы. Способ может быть использован для мониторинга изменения окислительно-восстановительного состояния организма с целью получения диагностической информации о состоянии пациента и обеспечения своевременной коррекции его лечения.The invention relates to a method for measuring the redox potential of biological media (blood, blood plasma, blood serum, cerebrospinal fluid, urine, etc.), reflecting the state of redox equilibrium of the studied system. The method can be used to monitor changes in the redox state of the body in order to obtain diagnostic information about the patient's condition and ensure timely correction of his treatment.
Известен способ определения оксидантно/антиоксидантной активности растворов. В данном способе оксидантно/антиоксидантную активность оценивают по изменению окислительно-восстановительного потенциала до и после введения анализируемого вещества в специальный раствор, содержащий медиаторную пару [патент РФ 2235998 С2].A known method for determining the oxidant / antioxidant activity of solutions. In this method, the oxidant / antioxidant activity is evaluated by the change in the redox potential before and after the introduction of the analyte in a special solution containing a mediator pair [RF patent 2235998 C2].
Основным недостатком этого способа является необходимость введения в систему дополнительной окислительно-восстановительной пары, в том числе ионов тяжелых металлов (V, Fe, Sn). Также приводятся только дискретные значения величин окислительно-восстановительного потенциала (0,17 В и 0,21 В до и после введения пробы соответственно) без указания времени измерения.The main disadvantage of this method is the need for introducing into the system an additional redox pair, including heavy metal ions (V, Fe, Sn). Also, only discrete values of the values of the redox potential (0.17 V and 0.21 V before and after injection of the sample, respectively) are given without indicating the measurement time.
Наиболее близким аналогом, выбранным за прототип, является способ оценки общего окислительного статуса жидких сред организма путем измерения их окислительно-восстановительного потенциала (ОВП). Показано, что метод может быть полезен для диагностики, оценки и контроля состояния пациентов, перенесших травму (например, травму головы), пациентов с подозрениями на критическое состояние либо пребывающих в критическом состоянии, пациентов с подозрением на инфекции и инфаркт миокарда, либо перенесших инфаркт миокарда. Кроме того, было обнаружено, что метод полезен при контроле и оценке сохранности препаратов крови, а также при мониторинге пациентов, которые получали такие препараты [патент США 0267074 А1].The closest analogue selected for the prototype is a method for assessing the overall oxidative status of body fluids by measuring their redox potential (ORP). It has been shown that the method can be useful for diagnosing, evaluating and monitoring the status of patients who have suffered an injury (for example, a head injury), patients with suspected critical condition or those in critical condition, patients with suspected infections and myocardial infarction, or who have suffered myocardial infarction . In addition, it was found that the method is useful in monitoring and evaluating the safety of blood products, as well as in monitoring patients who received such drugs [US patent 0267074 A1].
Основным недостатком данного способа является невоспроизводимость метода измерения редокс потенциала, поскольку известно, что в процессе измерения на поверхности электрода возможно протекание процессов адсорбции белков и других компонентов исследуемых объектов, что приводит к загрязнению поверхности электрода и, как следствие, снижается точность измерений редокс потенциала. Кроме того, приведены только дискретные значения величины редокс потенциала в диапазоне от -4,1 до -34,0 мВ без указания времени, через которые они были получены, хотя известно, что редокс потенциал в биологических средах не достигает стационарного значения даже в течение длительного времени, поэтому необходимо регистрировать динамику изменения редокс потенциала во времени и принимать за конечную величину редокс потенциала значение через определенное время измерения.The main disadvantage of this method is the irreproducibility of the method of measuring redox potential, since it is known that during the measurement on the surface of the electrode the processes of adsorption of proteins and other components of the studied objects can occur, which leads to contamination of the surface of the electrode and, as a result, the accuracy of measurements of the redox potential decreases. In addition, only discrete values of the redox potential in the range from -4.1 to -34.0 mV are shown without indicating the time after which they were obtained, although it is known that the redox potential in biological media does not reach a stationary value even for a long time time, therefore, it is necessary to register the dynamics of changes in the redox potential over time and take the value after a certain measurement time as the final value of the redox potential.
Технической задачей способа является обеспечение точного и воспроизводимого измерения редокс потенциала электрода в биологических жидкостях (кровь, сыворотка крови, плазма крови, спинномозговая жидкость и др.) и тканях. Кроме того, необходимо непрерывно фиксировать изменения значения редокс потенциала, как для стандартизации времени измерения редокс потенциала, так и для получения дополнительной информации о тестируемой среде в ходе измерения.The technical task of the method is to provide accurate and reproducible measurements of the redox potential of the electrode in biological fluids (blood, blood serum, blood plasma, cerebrospinal fluid, etc.) and tissues. In addition, it is necessary to continuously record changes in the value of the redox potential, both to standardize the time for measuring the redox potential, and to obtain additional information about the test medium during the measurement.
Поставленная задача достигается тем, что рабочий электрод подвергают предварительному катодно-анодному сканированию в растворе неорганического восстановителя в циклическом потенциодинамическом режиме в течение не менее пятидесяти циклов в диапазоне потенциалов от -600 до +600 мВ относительно хлорсеребряного электрода сравнения со скоростью не менее 500 мВ/с с платинированным титаном в качестве вспомогательного электрода, затем дополнительно проводят не менее десяти циклов в диапазоне потенциалов от +100 до +200 мВ со скоростью не менее 500 мВ/с, затем измеряют потенциал рабочего электрода при разомкнутой цепи относительно хлорсеребряного электрода сравнения в 0,05 до 0,5 М водном растворе сульфата натрия до диапазона потенциалов от 135 до 145 мВ с последующим измерением редокс потенциала биологических систем в режиме непрерывной записи потенциала в течение не менее 30 минут.The task is achieved in that the working electrode is subjected to preliminary cathodic-anode scanning in an inorganic reducing agent solution in a cyclic potentiodynamic mode for at least fifty cycles in the potential range from -600 to +600 mV relative to the silver chloride reference electrode at a speed of at least 500 mV / s with platinum titanium as an auxiliary electrode, then additionally conduct at least ten cycles in the potential range from +100 to +200 mV with a speed of at least 500 mV / s, then the potential of the working electrode is measured with an open circuit relative to the silver chloride reference electrode in a 0.05 to 0.5 M aqueous solution of sodium sulfate to a potential range from 135 to 145 mV, followed by measurement of the redox potential of biological systems in the continuous recording mode for potential not less than 30 minutes.
Предлагаемый способ состоит в том, что платиновый рабочей электрод в виде проволоки, диска, стержня подвергается предварительному катодно-анодному сканированию в циклическом потенциодинамическом режиме. Электродом сравнения может служить стандартный хлорсеребряный электрод, изготовленный в виде стержня, проволоки или фольги, покрытых хлоридом серебра. Вспомогательным электродом может служить сетка, лист, фольга из платины, платинированной платины, платинированного титана, стеклоуглерода, термически расширенного графита.The proposed method consists in the fact that a platinum working electrode in the form of a wire, a disk, a rod is subjected to preliminary cathode-anode scanning in a cyclic potentiodynamic mode. The reference electrode can be a standard silver chloride electrode made in the form of a rod, wire or foil coated with silver chloride. The auxiliary electrode can be a grid, sheet, foil made of platinum, platinum platinum, platinum titanium, glassy carbon, thermally expanded graphite.
Предлагаемый способ измерения редокс потенциала в биологических средах включает в себя: (а) катодно-анодное сканирование рабочего электрода в 0,05-0,2 молярном водном растворе неорганического восстановителя (сульфита натрия) в циклическом потенциодинамическом режиме с помощь потенциостата IPC-Compact в диапазоне потенциалов от -600 мВ (х.с.э.) до + 600 мВ (х.с.э.) в течение не менее 50 циклов при скорости развертки потенциала не менее 500 мВ/с, заТем в течение не менее 10 циклов в диапазоне потенциалов от +100 мВ (х.с.э.) до +200 мВ (х.с.э.) при скорости развертки потенциала не менее 500 мВ/с; (б) измерение потенциала при разомкнутой цепи рабочего электрода относительно хлорсеребряного электрода сравнения в водном растворе 0,05-0,5 молярного сульфата натрия с цельЮ контроля соответствия потенциала рабочего электрода стандартизованному значению, составляющему 140±5 мВ (х.с.э.); (в) измерение редокс потенциала рабочего электрода относительно хлорсеребряного электрода сравнения в тестируемой биологической среде в течение 30 минут, во время измерения производится постоянная запись изменения редокс потенциала с помощью потенциостата с компьютерным интерфейсом IPC-Compact, за величину редокс потенциала исследуемой среды принимается величина потенциала рабочего платинового электрода через 30 минут измерения.The proposed method for measuring the redox potential in biological media includes: (a) cathode-anode scanning of the working electrode in a 0.05-0.2 molar aqueous solution of an inorganic reducing agent (sodium sulfite) in a cyclic potentiodynamic mode using an IPC-Compact potentiostat in the range potentials from -600 mV (h.s.) to + 600 mV (h.s.) for at least 50 cycles at a potential sweep speed of at least 500 mV / s, then for at least 10 cycles in potential range from +100 mV (h.s.) to +200 mV (h.s.) at sweat sweep speed at least 500 mV / s; (b) potential measurement with an open circuit of the working electrode relative to the silver chloride reference electrode in an aqueous solution of 0.05-0.5 molar sodium sulfate with the aim of monitoring the compliance of the working electrode potential with a standardized value of 140 ± 5 mV (h.s.) ; (c) measurement of the redox potential of the working electrode relative to the silver chloride reference electrode in the test biological medium for 30 minutes, during the measurement, the change in the redox potential is continuously recorded using a potentiostat with the IPC-Compact computer interface, the value of the working potential is taken as the value of the redox potential of the studied medium platinum electrode after 30 minutes of measurement.
Предлагаемый способ иллюстрируется следующими примерами.The proposed method is illustrated by the following examples.
Пример 1 (по прототипу).Example 1 (prototype).
Редокс потенциал плазмы крови практически здорового человека (как пример биологической системы) определяют путем измерения потенциала при разомкнутой цепи рабочего (платинового) электрода относительно хлорсеребряного электрода сравнения. Запись динамики изменения редокс потенциала проводится в течение 30 минут (Фиг.1). После каждого измерения, рабочий электрод промывается дистиллированной водой и погружается в исследуемую биологическую систему для следующего измерения. Таким образом проводят 3 последовательных измерения.The redox potential of the blood plasma of a healthy person (as an example of a biological system) is determined by measuring the potential with an open circuit of the working (platinum) electrode relative to the silver chloride reference electrode. Recording the dynamics of changes in redox potential is carried out within 30 minutes (Figure 1). After each measurement, the working electrode is washed with distilled water and immersed in the studied biological system for the next measurement. Thus, 3 consecutive measurements are carried out.
Как видно из данных (Фиг.1), наблюдается динамика изменения редокс потенциала плазмы крови в процессе измерения, причем даже через 30 минут его величина не достигает постоянного значения. Поэтому необходимо оговаривать период времени измерения величины редокс потенциала. Кроме того, при измерении в биологических средах, величина редокс потенциала, измеренная за определенное время, смещается в положительную сторону с каждым последующим измерением. Так, для первого измерения величина редокс потенциала через 30 минут составила -49,1 мВ, а для второго и третьего -33,5 мВ и -1,0 мВ соответственно, что связано с загрязнением поверхности электрода компонентами биологической среды.As can be seen from the data (Figure 1), there is a dynamics of changes in the redox potential of blood plasma during the measurement process, and even after 30 minutes its value does not reach a constant value. Therefore, it is necessary to stipulate the time period for measuring the magnitude of the redox potential. In addition, when measuring in biological media, the value of the redox potential, measured over a certain time, shifts in a positive direction with each subsequent measurement. So, for the first measurement, the value of the redox potential after 30 minutes was -49.1 mV, and for the second and third, -33.5 mV and -1.0 mV, respectively, due to contamination of the electrode surface with components of the biological medium.
Пример 2.Example 2
Рабочий (платиновый) электрод диаметром 1 мм подвергают катодно-анодному сканированию в водном растворе 0,1 М Na2SO3 30-ю циклами катодно-анодных импульсов напряжения со скоростью 500 мВ/с в диапазоне потенциалов от -600 до +600 мВ относительно хлорсеребряного электрода сравнения, платинированный титан используют в качестве вспомогательного электрода, после чего измеряют потенциал рабочего электрода в водном растворе 0,1 М Na2SO4 относительно хлорсеребряного электрода сравнения. Данные, полученные указанным образом, приведены в таблице 1.A working (platinum) electrode 1 mm in diameter is subjected to cathode-anode scanning in an aqueous solution of 0.1 M Na 2 SO 3 with 30 cycles of cathode-anode voltage pulses at a speed of 500 mV / s in the potential range from -600 to +600 mV relative silver chloride reference electrode, platinum titanium is used as an auxiliary electrode, after which the potential of the working electrode in an aqueous solution of 0.1 M Na 2 SO 4 relative to silver chloride reference is measured. The data obtained in this way are shown in table 1.
Как видно из представленных данных, разброс данных измерений составляет ±8,73 мВ, что больше принятой нами величины ±5 мВ. Таким образом, обработка рабочего электрода в указанной области сканирования потенциалов не обеспечивает воспроизводимости результатов измерений.As can be seen from the presented data, the scatter of the measurement data is ± 8.73 mV, which is more than the ± 5 mV accepted by us. Thus, processing the working electrode in the indicated potential scanning region does not provide reproducibility of the measurement results.
Пример 3.Example 3
Рабочий (платиновый) электрод диаметром 1 мм подвергают катодно-анодному сканированию в водном растворе 0,1 М Na2SO3 50-ю циклами катодно-анодных импульсов напряжения со скоростью 500 мВ/с в диапазоне потенциалов от -600 до +600 мВ относительно хлорсеребряного электрода сравнения; платинированный титан используют в качестве вспомогательного электрода. Затем рабочий электрод сканируют 10-ю циклами в диапазоне потенциалов от +100 до +200 мВ при скорости развертки 500 мВ/с.После этого измеряют потенциал рабочего электрода в водном растворе 0,1 М Na2SO4 относительно хлорсеребряного электрода сравнения. Данные, полученные указанным образом, приведены в таблице 2.A working (platinum) electrode 1 mm in diameter is subjected to cathode-anode scanning in an aqueous solution of 0.1 M Na 2 SO 3 with 50 cycles of cathode-anode voltage pulses at a speed of 500 mV / s in the potential range from -600 to +600 mV relative silver chloride reference electrode; platinum titanium is used as an auxiliary electrode. Then, the working electrode is scanned in 10 cycles in the potential range from +100 to +200 mV at a sweep speed of 500 mV / s. After that, the potential of the working electrode in an aqueous solution of 0.1 M Na 2 SO 4 relative to the silver chloride reference electrode is measured. The data obtained in this way are shown in table 2.
Как видно из представленных данных, разброс измерений не превышает ±5 мВ, что обеспечивает воспроизводимость результатов измерений с высокой точностью.As can be seen from the data presented, the scatter of the measurements does not exceed ± 5 mV, which ensures reproducibility of the measurement results with high accuracy.
Пример 4.Example 4
Платиновый электрод диаметром 1 мм подвергают катодно-анодному сканированию в водном растворе 0,1 М Na2SO3 50-ю циклами внешних импульсов напряжения со скоростью 500 мВ/с в диапазоне потенциалов от -600 до +600 мВ относительно хлорсеребряного электрода сравнения, платинированный титан испольуют в качестве вспомогательного электрода; после этого платиновый электрод сканируют 10-ю циклами в диапазоне потенциалов от +100 до +200 мВ при скорости развертки 500 мВ/с. Затем измеряют потенциал рабочего электрода в водном растворе 0,1 М Na2SO4 относительно хлорсеребряного электрода сравнения. После указанной обработки платинового электрода производят измерение редокс потенциала плазмы крови практически здорового человека в течение 30 минут (Фиг.2). После каждого измерения электрод вновь подвергают электрохимической обработке и контролю потенциала в деоксигенированном водном растворе 0,1М Na2SO4.A platinum electrode with a diameter of 1 mm is subjected to cathode-anode scanning in an aqueous solution of 0.1 M Na 2 SO 3 with 50 cycles of external voltage pulses at a speed of 500 mV / s in the potential range from -600 to +600 mV relative to the silver chloride reference electrode, plated titanium is used as an auxiliary electrode; after that, the platinum electrode is scanned in 10 cycles in the potential range from +100 to +200 mV at a sweep speed of 500 mV / s. Then measure the potential of the working electrode in an aqueous solution of 0.1 M Na 2 SO 4 relative to the silver chloride reference electrode. After this treatment of the platinum electrode, the redox potential of the blood plasma of a healthy person is measured for 30 minutes (Figure 2). After each measurement, the electrode is again subjected to electrochemical processing and potential control in a deoxygenated aqueous solution of 0.1 M Na 2 SO 4 .
Как видно из данных (Фиг.2), редокс потенциал плазмы крови через 30 минут измерения составил -63,4 мВ, -63,2 мВ и -56,7 мВ, причем разброс данных измерений не превышает ±4,4 мВ против ±6,8 мВ [патент США 0267074]. Таким образом, предлагаемая предварительная обработка рабочего электрода обеспечивает воспроизводимость результатов измерений с ошибкой не более ±5 мВ.As can be seen from the data (Figure 2), the redox potential of blood plasma after 30 minutes of measurement was -63.4 mV, -63.2 mV and -56.7 mV, and the scatter of the measurement data does not exceed ± 4.4 mV against ± 6.8 mV [US Pat. No.,026,074]. Thus, the proposed preliminary processing of the working electrode ensures reproducibility of the measurement results with an error of not more than ± 5 mV.
Пример 5.Example 5
Проводят ежедневный мониторинг величины редокс потенциала сыворотки крови пациента К. Перед проведением измерения в биологической среде рабочий (платиновый) электрод подвергают анодно-катодной обработке в водном растворе 0,1 М Na2SO3 50-ю циклами катодно-анодных импульсов напряжения со скоростью 500 мВ/с в диапазоне потенциалов от -600 до +600 мВ относительно хлорсеребряного электрода сравнения и платинированным титаном в качестве вспомогательного электрода, после этого платиновый электрод сканируют 10-ю циклами в диапазоне потенциалов от +100 до +200 мВ при скорости развертки 500 мВ/с. Затем измеряют потенциал рабочего электрода в водном растворе 0,1 М Nа2SO4 относительно хлорсеребряного электрода сравнения. После этого проводят измерение редокс потенциала сыворотки крови пациента. За величину редокс потенциала принято значение потенциала рабочего электрода при разомкнутой цепи через 30 минут измерения.The redox potential of the patient’s blood serum K is monitored daily. Before measuring in a biological medium, the working (platinum) electrode is subjected to anodic-cathodic treatment in an aqueous solution of 0.1 M Na 2 SO 3 with 50 cycles of cathodic-anodic voltage pulses at a speed of 500 mV / s in the potential range from -600 to +600 mV relative to the silver chloride reference electrode and platinum titanium as an auxiliary electrode, after which the platinum electrode is scanned for 10 cycles in the potential range from +100 d about +200 mV at a sweep speed of 500 mV / s. Then measure the potential of the working electrode in an aqueous solution of 0.1 M Na 2 SO 4 relative to the silver chloride reference electrode. After that, the redox potential of the patient's blood serum is measured. For the value of the redox potential, the value of the potential of the working electrode with an open circuit after 30 minutes of measurement is taken.
Как видно из Фиг.3, редокс потенциал биологической среды отражает состояние пациента, что характеризуется смещением потенциала в положительную сторону с 1-ых по 7-ые сутки в связи с наличием у пациента воспалительного процесса, после 7-ых суток состояние пациента улучшается и наблюдается положительная динамика лечения, что совпадает с данными редокс потенциала (смещение РП в более отрицательную сторону). Т.е. можно сказать, что редокс потенциал сыворотки крови можно использовать в качестве диагностического критерия состояния пациента.As can be seen from Figure 3, the redox potential of the biological medium reflects the patient’s condition, which is characterized by a shift in the potential in the positive direction from the 1st to the 7th day due to the presence of the patient’s inflammatory process, after the 7th day the patient’s condition improves and is observed positive dynamics of treatment, which coincides with the data of redox potential (RP shift to a more negative side). Those. we can say that the redox potential of serum can be used as a diagnostic criterion for the patient's condition.
Как видно из примеров, без предварительной обработки платинового электрода невозможно получить воспроизводимые результаты измерений редокс потенциала. Это проблема решается предлагаемым способом электрохимической предобработки платинового электрода, который обеспечивает ошибку измерений не более ±5 мВ. Кроме того, из представленных данных видно, что редокс потенциал в биологических средах не достигает стационарного значения даже в течение длительного времени, поэтому необходимо регистрировать динамику изменения редокс потенциала во времени и принимать за конечную величину редокс потенциала значение через определенное время измерения (не менее 30 минут). Таким мониторинг РП сыворотки крови может быть использован в качестве диагностического критерия для оценки состояния пациентов и качества проводимых лечебных процедур.As can be seen from the examples, without preliminary processing of the platinum electrode it is impossible to obtain reproducible results of measurements of the redox potential. This problem is solved by the proposed method of electrochemical pretreatment of a platinum electrode, which provides a measurement error of not more than ± 5 mV. In addition, it can be seen from the presented data that the redox potential in biological media does not reach a stationary value even for a long time, therefore, it is necessary to record the dynamics of the redox potential in time and take the value after a certain measurement time as a final value of the redox potential (at least 30 minutes ) Thus, monitoring of serum RP can be used as a diagnostic criterion for assessing the condition of patients and the quality of treatment procedures.
Claims (1)
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| RU2012102137/28A RU2497107C2 (en) | 2012-01-24 | 2012-01-24 | Method to measure redox potential of biological media |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| RU2012102137/28A RU2497107C2 (en) | 2012-01-24 | 2012-01-24 | Method to measure redox potential of biological media |
Publications (2)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| RU2012102137A RU2012102137A (en) | 2013-07-27 |
| RU2497107C2 true RU2497107C2 (en) | 2013-10-27 |
Family
ID=49155395
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| RU2012102137/28A RU2497107C2 (en) | 2012-01-24 | 2012-01-24 | Method to measure redox potential of biological media |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| RU (1) | RU2497107C2 (en) |
Cited By (1)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| RU171788U1 (en) * | 2016-06-07 | 2017-06-16 | Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования "Московская государственная академия ветеринарной медицины и биотехнологии - МВА имени К.И. Скрябина" (ФГБОУ ВО МГАВМиБ - МВА имени К.И. Скрябина) | DEVICE FOR DETERMINING PHOTOREDOX EFFECT PARAMETERS IN ALKALINE KERATIN SOLUTIONS |
Citations (7)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| JP2002202405A (en) * | 2000-10-23 | 2002-07-19 | Kureha Elastomer Co Ltd | Optical filter for display screen |
| RU2235998C2 (en) * | 2002-11-14 | 2004-09-10 | Уральский государственный экономический университет | Method of determination of oxidant/anti-oxidant activity of solutions |
| US20050074893A1 (en) * | 2003-10-02 | 2005-04-07 | Noboru Horiguchi | Blood testing method |
| US7264709B2 (en) * | 2004-09-21 | 2007-09-04 | Siemens Water Technologies Holding Corp. | Method and apparatus for conditioning a sensor for measuring oxidation reduction potential |
| WO2008144481A1 (en) * | 2007-05-18 | 2008-11-27 | Institute For Molecular Medicine, Inc. | Measurement and uses of oxidative status |
| JP2010066253A (en) * | 2008-08-11 | 2010-03-25 | Kyoto Biseibutsu Kenkyusho | Method and apparatus for measuring anti-oxidant intensity |
| RU2386960C2 (en) * | 2004-05-14 | 2010-04-20 | БАЙЕР ХЕЛТКЭР ЭлЭлСи | Voltammetric system for analysing biological substances |
-
2012
- 2012-01-24 RU RU2012102137/28A patent/RU2497107C2/en not_active IP Right Cessation
Patent Citations (7)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| JP2002202405A (en) * | 2000-10-23 | 2002-07-19 | Kureha Elastomer Co Ltd | Optical filter for display screen |
| RU2235998C2 (en) * | 2002-11-14 | 2004-09-10 | Уральский государственный экономический университет | Method of determination of oxidant/anti-oxidant activity of solutions |
| US20050074893A1 (en) * | 2003-10-02 | 2005-04-07 | Noboru Horiguchi | Blood testing method |
| RU2386960C2 (en) * | 2004-05-14 | 2010-04-20 | БАЙЕР ХЕЛТКЭР ЭлЭлСи | Voltammetric system for analysing biological substances |
| US7264709B2 (en) * | 2004-09-21 | 2007-09-04 | Siemens Water Technologies Holding Corp. | Method and apparatus for conditioning a sensor for measuring oxidation reduction potential |
| WO2008144481A1 (en) * | 2007-05-18 | 2008-11-27 | Institute For Molecular Medicine, Inc. | Measurement and uses of oxidative status |
| JP2010066253A (en) * | 2008-08-11 | 2010-03-25 | Kyoto Biseibutsu Kenkyusho | Method and apparatus for measuring anti-oxidant intensity |
Cited By (1)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| RU171788U1 (en) * | 2016-06-07 | 2017-06-16 | Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования "Московская государственная академия ветеринарной медицины и биотехнологии - МВА имени К.И. Скрябина" (ФГБОУ ВО МГАВМиБ - МВА имени К.И. Скрябина) | DEVICE FOR DETERMINING PHOTOREDOX EFFECT PARAMETERS IN ALKALINE KERATIN SOLUTIONS |
Also Published As
| Publication number | Publication date |
|---|---|
| RU2012102137A (en) | 2013-07-27 |
Similar Documents
| Publication | Publication Date | Title |
|---|---|---|
| Lewenstam | Routines and challenges in clinical application of electrochemical ion‐sensors | |
| Ho et al. | Determining mean corpuscular volume and red blood cell count using electrochemical collision events | |
| EP2199792B1 (en) | Method for testing the quality of the thermal coupling of a measuring cell | |
| Johnson et al. | Error detection and measurement in glucose monitors | |
| JP4907481B2 (en) | Method for detecting erroneous measurement results obtained using an ion selective electrode | |
| RU2682324C2 (en) | Haemolysis detection method and system | |
| Neves et al. | Method comparison and validation of a prototype device for measurement of ionized calcium concentrations cow-side against a point-of-care instrument and a benchtop blood-gas analyzer reference method | |
| CA3060910A1 (en) | Analyte measurement system and method | |
| Levent et al. | Application of a pencil graphite electrode for voltammetric simultaneous determination of ascorbic acid, norepinephrine, and uric acid in real samples | |
| US20180150655A1 (en) | Systems and methods for correction of on-strip coding | |
| Chaudhary et al. | Application of six sigma for the quality assurance in clinical biochemistry laboratory–a retrospective study | |
| Zhang et al. | Integrated solid-state wearable sweat sensor system for sodium and potassium ion concentration detection | |
| US20190204268A1 (en) | Non-enzymatic sensor | |
| US11125843B2 (en) | Method for measuring pH | |
| RU2497107C2 (en) | Method to measure redox potential of biological media | |
| KR20190074422A (en) | Blood analyzer and method for blood analysis using the same | |
| CN111812175A (en) | Blood detection method for reducing interference of hematocrit and biosensor | |
| ElSaboni et al. | Empirical model for identifying protein concentrations in wound using cyclic voltammetry | |
| JP2019060887A (en) | Blood condition analysis device, blood condition analysis system, blood condition analysis method, and blood condition analysis program for causing computer to execute the method | |
| EP1376133A4 (en) | Method of screening prediabetic state and screening reagent | |
| Zhang | Point Of Care Testing of Ionized Magnesium in Blood with Potentiometric Sensors-Opportunities and Challenges. | |
| RU2399051C1 (en) | Method for estimating dynamic balance of human homeostasis stability | |
| Tonello et al. | Screen-printed biosensors for the early detection of biomarkers related to Alzheimer disease: preliminary results | |
| Panteghini et al. | Measurement of troponin I 48h after admission as a tool to rule out impaired left ventricular function in patients with a first myocardial infarction | |
| CN107941722B (en) | Blood sample analysis and test system |
Legal Events
| Date | Code | Title | Description |
|---|---|---|---|
| MM4A | The patent is invalid due to non-payment of fees |
Effective date: 20140125 |
|
| NF4A | Reinstatement of patent |
Effective date: 20141227 |
|
| MM4A | The patent is invalid due to non-payment of fees |
Effective date: 20160125 |
|
| NF4A | Reinstatement of patent |
Effective date: 20170515 |
|
| MM4A | The patent is invalid due to non-payment of fees |
Effective date: 20200125 |