RU2493871C1 - Method for preparing antibody erythrocyte diagnosticum for indirect hemagglutination test (iht) for purposes of brucella indication in pathologic material - Google Patents
Method for preparing antibody erythrocyte diagnosticum for indirect hemagglutination test (iht) for purposes of brucella indication in pathologic material Download PDFInfo
- Publication number
- RU2493871C1 RU2493871C1 RU2012119317/15A RU2012119317A RU2493871C1 RU 2493871 C1 RU2493871 C1 RU 2493871C1 RU 2012119317/15 A RU2012119317/15 A RU 2012119317/15A RU 2012119317 A RU2012119317 A RU 2012119317A RU 2493871 C1 RU2493871 C1 RU 2493871C1
- Authority
- RU
- Russia
- Prior art keywords
- diagnosticum
- brucella
- brucellosis
- antibody
- positive
- Prior art date
Links
Landscapes
- Medicines Containing Antibodies Or Antigens For Use As Internal Diagnostic Agents (AREA)
Abstract
Description
Изобретение относится к области ветеринарии, а именно к получению эритроцитарного бруцеллезного антительного диагностикума для реакции непрямой гемагглютинации, с целью индикации бруцелл в патматериале.The invention relates to the field of veterinary medicine, namely to obtaining erythrocyte brucellosis antibody diagnosticum for the reaction of indirect hemagglutination, with the aim of indicating brucella in the material.
Известен «Способ получения эритроцитарного антительного диагностикума для индикации бруцелл в испытуемом материале», суть которого заключается в следующем. Для сенсибилизации эритроцитов используют позитивные бруцеллезные сыворотки крови, разведенные физиологическим раствором поваренной соли 1:80-1:100 или буферно-физиологическим раствором, инактивированным при 64°C в течение 20 минут, с оптимальной pH - 6,4-7,0.The well-known "Method for producing erythrocyte antibody-based diagnosticum for indicating brucella in the test material", the essence of which is as follows. For the sensitization of red blood cells, positive brucellosis blood sera diluted with physiological saline 1: 80-1: 100 or physiological buffered saline inactivated at 64 ° C for 20 minutes with an optimum pH of 6.4-7.0 are used.
Оптимальными параметрами условий сенсибилизации эритроцитов позитивными сыворотками крови являются следующие: 1 объем предварительно оттитрованной концентрации раствора амидола смешивают с 2 объемами 20%-ной взвеси фиксированных эритроцитов и 1 объемом позитивной бруцеллезной сыворотки крови в разведении 1:100, при инкубации в водяной бане при температуре 55°С в течение 25-30 минут, с периодическим встряхиванием через каждые 5-10 минут.The optimal parameters of erythrocyte sensitization conditions by positive blood serum are as follows: 1 volume of pre-titrated concentration of amidol solution is mixed with 2 volumes of a 20% suspension of fixed red blood cells and 1 volume of positive brucellosis blood serum at a dilution of 1: 100, when incubated in a water bath at a temperature of 55 ° C for 25-30 minutes, with periodic shaking every 5-10 minutes.
Сенсибилизированные эритроциты отмывают одним из стабилизаторов (нормальной лошадиной или кроличьей сыворотками), разведенных 1:100-1:500, на центрифуге при 1500-2000 об/мин в течение 5-10 минут двукратно, после чего суспендируют до 0,75%-ной концентрации изотоническим раствором поваренной соли и используют для постановки РНГА с целью индикации бруцелл: Ш.А. Барамова, автореф. дисс., к.в.н., 1988.Sensitized red blood cells are washed with one of the stabilizers (normal horse or rabbit serum), diluted 1: 100-1: 500, in a centrifuge at 1500-2000 rpm for 5-10 minutes twice, after which they are suspended to 0.75% the concentration of isotonic sodium chloride solution and is used for RNGA for the purpose of indicating brucella: Sh.A. Baramova, author. Diss., Ph.D., 1988.
Недостатком данного способа является слабая активность диагностикума, изготовленного этим способом в реакции непрямой гемагглютинации (РНГА) при индикации бруцелл в исследуемом материале. Кроме того, данный диагностикум в отдельных случаях спонтанно агглютинируются в РНГА нормальной кроличьей сывороткой, используемой в качестве стабилизатора для разведения исследуемых патматериалов, где отсутствуют бруцеллы. Поэтому мы решили разработать способ получения высокоактивного и специфичного бруцеллезного антительного эритроцитарного диагностикума для РНГА, лишенного указанных недостатков.The disadvantage of this method is the weak activity of the diagnosticum made by this method in the reaction of indirect hemagglutination (RNGA) when indicating brucella in the test material. In addition, this diagnosticum in some cases is spontaneously agglutinated in RNGA with normal rabbit serum, which is used as a stabilizer for breeding studied materials where there are no brucellas. Therefore, we decided to develop a method for obtaining a highly active and specific brucellosis antibody erythrocyte diagnosticum for RNGA, devoid of these disadvantages.
Целью изобретения является повышение активности и специфичности бруцеллезного антительного эритроцитарного диагностикума для РНГА. Эта цель достигается тем, что сенсибилизация эритроцитов барана (стабилизированных по Вайнбаху в нашей модификации) с помощью конъюгата амидола проводится по параметрам концентрации ингредиентов, рН, ионной силы среды, температуры и экспозиции.The aim of the invention is to increase the activity and specificity of brucellosis antibody erythrocyte diagnosticum for RNGA. This goal is achieved in that the sensitization of sheep erythrocytes (Weinbach stabilized in our modification) using the amidol conjugate is carried out according to the parameters of the concentration of ingredients, pH, ionic strength of the medium, temperature and exposure.
Максимальная чувствительность и специфичность в РНГА получаются при следующих соотношениях ингредиентов: осадок от 2 объемов 40%-ной взвеси эритроцитов барана, 1 объем 0,43-0,44%-го раствора свежеприготовленного амидола и 1,0-1,5 объема позитивной сыворотки крови, разведенной 1:50-1:100 на 0,85%-ном растворе NaCl, pH - 7,0-7,2 в отсутствие фосфата буфера, инактивированного при 60°С в течение 30 минут, смесь перемешивают и выдерживают в водяной бане 28-32 минуты при 55-56°С, периодически встряхивая через каждые 5-6 минут.The maximum sensitivity and specificity in RNGA are obtained with the following ratios of ingredients: sediment from 2 volumes of a 40% suspension of sheep erythrocytes, 1 volume of a 0.43-0.44% solution of freshly prepared amidol and 1.0-1.5 volumes of positive serum blood diluted 1: 50-1: 100 in a 0.85% NaCl solution, pH 7.0-7.2 in the absence of phosphate buffer, inactivated at 60 ° C for 30 minutes, the mixture is stirred and kept in water bath 28-32 minutes at 55-56 ° C, shaking periodically every 5-6 minutes.
Отмывание сенсибилизированных эритроцитов осуществляется 0,85%-ным раствором NaCl, содержащим нормальную кроличью сыворотку в разведении 1:50-1:100 или лошадиную сыворотку в разведении 1:220-1:250, инактивированные при 60°C в течение 30 минут, pH - 7,0-7,2. По окончании центрифугирования взвеси эритроцитов вносят в физиологический раствор с целью получения 2,5%-ной концентрации эритроцитов.Sensitized red blood cells are washed off with a 0.85% NaCl solution containing normal rabbit serum at a dilution of 1: 50-1: 100 or horse serum at a dilution of 1: 220-1: 250, inactivated at 60 ° C for 30 minutes, pH - 7.0-7.2. At the end of centrifugation, suspensions of red blood cells are added to physiological saline in order to obtain a 2.5% concentration of red blood cells.
Предварительно активность и специфичность изготовленных антительных диагностикумов проверяют в РНГА, при исследовании единого бруцеллезного антигена для РА, РСК и РДСК в предельных разведениях.Preliminarily, the activity and specificity of the produced antibody diagnosticums is checked in the RNGA, in the study of a single brucellosis antigen for RA, RSK and RDSK in maximum dilutions.
Проводили испытание антительного диагностикума, в сравнении с аналогичным препаратом, предложенным Ш.А. Барамовой.Antibody diagnosticum was tested in comparison with a similar drug proposed by Sh.A. Baramova.
Активность и специфичность антительного диагностикума, изготовленного по разработанному нами способу (антительный диагностикум Прикаспийского зонального НИВИ), проверяли в сравнении с аналогичным препаратом, предложенным Ш.А. Барамовой (прототип).The activity and specificity of antibody-based diagnosticum produced by our method (antibody-based diagnosticum of the Caspian zonal NIVI) was tested in comparison with a similar drug proposed by Sh.A. Baramova (prototype).
Для испытания диагностикума в РНГА исследовали единый бруцеллезный антиген для РА, РСК и РДСК (табл.1).To test the diagnosticum in RNGA, a single brucellosis antigen was studied for RA, CSC, and RDSK (Table 1).
Как видно из данных, приведенных в таблице 1, разработанный нами диагностикум чувствительнее в 15,9 раза, в сравнении с аналогом.As can be seen from the data given in table 1, the diagnosticum we developed is more sensitive by 15.9 times in comparison with the analogue.
Испытание антительного диагностикума в сравнении с аналогичным препаратом, изготовленным по методике Ш.А.БарамовойAntibody diagnosticum test in comparison with a similar drug manufactured by the method of Sh.A. Baramova
Для испытания антительных диагностикумов в РНГА исследовали суспензии лимфоузлов и органов у здорового крупного рогатого скота (20 голов) и 30 - овец. Результаты проверки специфичности указанных диагностикумов представлены в таблице 2.To test antibody diagnostics in the RNGA, suspensions of lymph nodes and organs were studied in healthy cattle (20 animals) and 30 in sheep. The results of the specificity of these diagnostic kits are presented in table 2.
Как видно из таблицы 2, при исследовании в РНГА антительным эритроцитарным диагностикумом, изготовленным по разработанному нами способу (антительный диагностикум Прикасп. ЗНИВИ), со всеми органами и лимфоузлами суспензий здоровых животных получен отрицательный результат, что показывает его высокую специфичность, тогда как по аналогу получен в 3 случаях положительный результат, т.е. прототип в отдельных случаях дает неспецифические реакций с суспензией здоровых животных.As can be seen from table 2, when testing in RNGA with an antibody-based erythrocytic diagnosticum manufactured according to our method (antibody-based diagnosticum Prikasp. ZNIVI), a negative result was obtained with all organs and lymph nodes of suspensions of healthy animals, which shows its high specificity, whereas by analogy in 3 cases a positive result, i.e. the prototype in some cases gives nonspecific reactions with a suspension of healthy animals.
Кроме того, аналог в отдельных случаях спонтанно агглютинируется в РНГА нормальной кроличьей сывороткой, используемой в качестве стабилизатора для разведения исследуемого патматериала для выявления возбудителя бруцеллеза, особенно, когда pH среды - 6,4, как это рекомендует Ш.А. Барамова.In addition, in some cases, the analogue is spontaneously agglutinated in RNGA with normal rabbit serum, which is used as a stabilizer for diluting the test material to detect the causative agent of brucellosis, especially when the pH of the medium is 6.4, as recommended by Sh.A. Baramova.
Оказалось, что удлинение времени сенсибилизации эритроцитов до 32 минут привело к повышению чувствительности индикации возбудителя бруцеллеза, а с повышением температуры выше 28-32°C, при длительности контакта эритроцитов с позитивной сывороткой более 40-60 минут, развивалась спонтанная гемагглютинация (табл.3).It turned out that lengthening the time of sensitization of red blood cells to 32 minutes led to an increase in the sensitivity of indication of the causative agent of brucellosis, and with an increase in temperature above 28-32 ° C, with the duration of the contact of red blood cells with positive serum more than 40-60 minutes, spontaneous hemagglutination developed (Table 3) .
Многие исследователи (Чернышева М.Н. (1970), Садыков С.Ж. (1974), Абуталипов А. (1982), Ромахов В.А. (1992) и др.) для выявления бруцеллезного антигена а патматериале использовали реакцию нейтрализации антител (РНАт) и бактериологический метод. Поэтому мы решили провести сравнительное испытание диагностической эффективности антительного бруцеллезного диагностикума для РНГА (Прикасп. ЗНИВИ), реакции нейтрализации антител (РНАт) и бактериологического метода.Many researchers (Chernysheva M.N. (1970), Sadykov S.Zh. (1974), Abutalipov A. (1982), Romakhov V.A. (1992) and others) used the neutralization reaction of antibodies to detect brucellosis antigen in the material (RNAT) and bacteriological method. Therefore, we decided to conduct a comparative test of the diagnostic effectiveness of antibody brucellosis diagnosticum for RNGA (Prikasp. ZNIVI), antibody neutralization reaction (RNAT) and bacteriological method.
С этой целью был подвергнут исследованию патологический материал от больного бруцеллезом крупного рогатого скота (7 голов), овец (11 голов), молоко, инфицированное возбудителем этой болезни (5 проб) и водопроводная вода, инфицированная бруцеллами (вакцинным штаммом B.abortus 19) (3 пробы). Результаты исследований представлены в таблице 4.To this end, pathological material from a cattle brucellosis patient (7 animals), sheep (11 animals), milk infected with the causative agent of this disease (5 samples) and tap water infected with brucella (vaccine strain B.abortus 19) were examined ( 3 samples). The research results are presented in table 4.
Проведенными исследованиями установлены специфичность и высокая чувствительность антительного эритроцитарного диагностикума для выявления бруцеллезного возбудителя в патматериале, молоке и других объектах внешней среды.The studies established the specificity and high sensitivity of the antibody erythrocyte diagnosticum to detect the brucellosis pathogen in the material, milk and other environmental objects.
При сравнительном испытании антительного эритроцитарного бруцеллезного диагностикума для РНГА с РНАт установлено, что антительный диагностикум чувствительнее в 22 раза. Кроме того, РНГА с антительным диагностикумом проста в постановке, РНАт является более сложной трехкомпонентной реакцией (положительная сыворотка + бруцеллезный антиген + эритроцитарный бруцеллезный антиген).In a comparative test of antibody erythrocyte brucellosis diagnosticum for RNGA with PHAt, it was found that antibody diagnosticum is 22 times more sensitive. In addition, RNGA with antibody diagnosticum is simple to set up, RNAt is a more complex three-component reaction (positive serum + brucellosis antigen + erythrocyte brucellosis antigen).
Бруцеллезный антительный диагностикум для РНГА по диагностической ценности и быстроте получения результатов превосходит также бактериологический метод исследования.Brucellosis antibody diagnosticum for RNGA in diagnostic value and speed of obtaining results also surpasses the bacteriological method of research.
ЛИТЕРАТУРАLITERATURE
Абуталипов А. Сравнительная диагностическая эффективность РИФ, РНАт и бактериологического метода при бруцеллезе. Вестник с/х науки Казахстана, 1982, №5, с.75-77.Abutalipov A. Comparative diagnostic efficacy of RIF, RNAt and the bacteriological method for brucellosis. Bulletin of agricultural science of Kazakhstan, 1982, No. 5, pp. 75-77.
Ромахов В.А. Дисс. д.в.н. в форме научного доклада, 1992.Romakhov V.A. Diss. Ph.D. in the form of a scientific report, 1992.
Садыков С.Ж. Диагностическая эффективность РНГА и РНАт при бруцеллезе, «Ветеринария», 1974, №6, с. 107-108.Sadykov S.Zh. Diagnostic effectiveness of RNGA and RNAT in brucellosis, Veterinary Medicine, 1974, No. 6, p. 107-108.
Чернышева М.И. с соавт. Сухой эритроцитарный диагностикум для реакции пассивной гемагглютинации и РНАт при бруцеллезе, ЖМЭИ, 1970, №12, с. 171 и др.Chernysheva M.I. et al. Dry erythrocyte diagnosticum for the reaction of passive hemagglutination and RNA with brucellosis, ZhMEI, 1970, No. 12, p. 171 and others
Claims (1)
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
RU2012119317/15A RU2493871C1 (en) | 2012-05-11 | 2012-05-11 | Method for preparing antibody erythrocyte diagnosticum for indirect hemagglutination test (iht) for purposes of brucella indication in pathologic material |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
RU2012119317/15A RU2493871C1 (en) | 2012-05-11 | 2012-05-11 | Method for preparing antibody erythrocyte diagnosticum for indirect hemagglutination test (iht) for purposes of brucella indication in pathologic material |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
RU2493871C1 true RU2493871C1 (en) | 2013-09-27 |
Family
ID=49253933
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
RU2012119317/15A RU2493871C1 (en) | 2012-05-11 | 2012-05-11 | Method for preparing antibody erythrocyte diagnosticum for indirect hemagglutination test (iht) for purposes of brucella indication in pathologic material |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
RU (1) | RU2493871C1 (en) |
Citations (3)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
EP0215684A2 (en) * | 1985-09-20 | 1987-03-25 | Uni-Charm Corporation | Apparatus and process for producing apertured non-woven fabric |
RU2411041C2 (en) * | 2008-12-25 | 2011-02-10 | ГНУ Прикаспийский зональный научно-исследовательский ветеринарный институт | Method for producing r-brucellar erythrocytic diagnosticum for indirect hemagglutination test (ihgt) |
RU2415434C2 (en) * | 2008-03-03 | 2011-03-27 | Государственное учреждение Прикаспийский зональный научно-исследовательский ветеринарный институт | Method for producing erythrocytic antigen for serum diagnostics of brucellosis |
-
2012
- 2012-05-11 RU RU2012119317/15A patent/RU2493871C1/en not_active IP Right Cessation
Patent Citations (3)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
EP0215684A2 (en) * | 1985-09-20 | 1987-03-25 | Uni-Charm Corporation | Apparatus and process for producing apertured non-woven fabric |
RU2415434C2 (en) * | 2008-03-03 | 2011-03-27 | Государственное учреждение Прикаспийский зональный научно-исследовательский ветеринарный институт | Method for producing erythrocytic antigen for serum diagnostics of brucellosis |
RU2411041C2 (en) * | 2008-12-25 | 2011-02-10 | ГНУ Прикаспийский зональный научно-исследовательский ветеринарный институт | Method for producing r-brucellar erythrocytic diagnosticum for indirect hemagglutination test (ihgt) |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
Dubey et al. | Neosporosis | |
US7713715B2 (en) | Method for diagnosing infections | |
CA3092365A1 (en) | Detection of interaction between an assay substance and blood or blood components for immune status evaluation disease detection | |
Sandfoss et al. | A serosurvey for Brucella suis, classical swine fever virus, porcine circovirus type 2, and pseudorabies virus in feral swine (Sus scrofa) of eastern North Carolina | |
CN101592661B (en) | Brucellosis antibody competitive enzyme-linked immunosorbent assay reagent kit | |
Porter et al. | Aleutian disease of mink: a model for persistent infection | |
RU2493871C1 (en) | Method for preparing antibody erythrocyte diagnosticum for indirect hemagglutination test (iht) for purposes of brucella indication in pathologic material | |
Bradbury et al. | The influence of pH of the culture medium on the sensitivity of Mycoplasma gallisepticum antigens for use in certain serological tests | |
RU2425377C1 (en) | Method to diagnose leukosis in cattle | |
US4609630A (en) | Method for improving the specificity of immunoassays | |
Bercovich et al. | Evaluation of the currently used diagnostic procedures for the detection of Brucella melitensis in sheep | |
RU2560684C1 (en) | Agent for diagnostics of bovine leukaemia and method of its application | |
Levieux et al. | Immunological detection of chemotherapeutic success in bovine fasciolosis using the specific antigen f2 | |
Kahl et al. | Efficacy of flukicides against Fasciola hepatica and first report of triclabendazole resistance on German sheep farms | |
Zeedan et al. | Optimization of serological diagnostic methods for rapid field detection of foot-and-mouth disease virus antigen and antibodies in natural infected bovine specimens. | |
EP1044377B1 (en) | Process for detecting borna disease virus (bdv) infections | |
Koppenheffer et al. | The complement system of the duck | |
Grant | Complement “specificity” and interchangeability: measurement of hemolytic complement levels and use of the complement-fixation test with sera from common domesticated animals | |
RU2754465C1 (en) | Method for obtaining an erythrocyte diagnosticum for the indirect hemagglutination reaction (ihar) with clostridiosis of animals | |
Uddin et al. | Seroprevalence of brucellosis in small ruminants in selected area of Bangladash | |
RU2415434C2 (en) | Method for producing erythrocytic antigen for serum diagnostics of brucellosis | |
RU2509306C2 (en) | Method for obtaining erythrocytic antibody ovis diagnosticum for indirect hemagglutination reaction (ihar) to indicate ovis antigen in biomaterial | |
Levy | Feline leukemia and feline immunodeficiency viruses | |
RU2411041C2 (en) | Method for producing r-brucellar erythrocytic diagnosticum for indirect hemagglutination test (ihgt) | |
RU2805871C1 (en) | Method of obtaining dry erythrocyte anthrax antigen diagnosticum |
Legal Events
Date | Code | Title | Description |
---|---|---|---|
MM4A | The patent is invalid due to non-payment of fees |
Effective date: 20150512 |