RU2488114C1 - Способ определения аутоантител к тромбоцитам - Google Patents

Способ определения аутоантител к тромбоцитам Download PDF

Info

Publication number
RU2488114C1
RU2488114C1 RU2012100232/15A RU2012100232A RU2488114C1 RU 2488114 C1 RU2488114 C1 RU 2488114C1 RU 2012100232/15 A RU2012100232/15 A RU 2012100232/15A RU 2012100232 A RU2012100232 A RU 2012100232A RU 2488114 C1 RU2488114 C1 RU 2488114C1
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
platelet
platelets
cells
antibodies
blood
Prior art date
Application number
RU2012100232/15A
Other languages
English (en)
Inventor
Елена Владимировна Бутина
Галина Алексеевна Зайцева
Наталья Васильевна Исаева
Елена Алексеевна Васкина
Ирина Анатольевна Докшина
Original Assignee
Федеральное государственное учреждение "Кировский научно-исследовательский институт гематологии и переливания крови Федерального медико-биологического агентства"
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Федеральное государственное учреждение "Кировский научно-исследовательский институт гематологии и переливания крови Федерального медико-биологического агентства" filed Critical Федеральное государственное учреждение "Кировский научно-исследовательский институт гематологии и переливания крови Федерального медико-биологического агентства"
Priority to RU2012100232/15A priority Critical patent/RU2488114C1/ru
Application granted granted Critical
Publication of RU2488114C1 publication Critical patent/RU2488114C1/ru

Links

Abstract

Изобретение относится к области медицины, конкретно к методам диагностики аутоиммунных заболеваний крови человека. Способ заключается в определении процентного содержания тромбоцитов, покрытых иммуноглобулинами классов G и М, с использованием проточной цитометрии. Способ позволяет повысить точность диагностики иммунной тромбоцитопении, определить тактику лечения и контролировать его эффективность. Для анализа исследуют собственные тромбоциты и сыворотку крови больного, в качестве маркеров аутоиммунного процесса используют антитела, относящиеся к иммуноглобулинам классов G и М, при этом коэффициент аутосенсибилизции тромбоцитов рассчитывают как отношение количества Anti-Human IgG/IgM-позитивных клеток к числу клеток, фиксирующих CD41: значение коэффициента аутосенсибилизции тромбоцитов более 2% без инкубации с аутосывороткой и более 5% после инкубации с аутосывороткой расценивают как наличие у пациента антитромбоцитарных аутоантител, фиксированных на клетках и/или циркулирующих в плазме крови. 3 табл., 2 пр.

Description

Изобретение относится к области медицины, конкретно к методам диагностики аутоиммунных заболеваний крови человека. Способ заключается в определении процентного содержания тромбоцитов, покрытых иммуноглобулинами классов G и M, с использованием проточной цитометрии. Способ позволяет повысить точность диагностики иммунной тромбоцитопении, определить тактику лечения и контролировать его эффективность.
Изобретение относится к области медицины, конкретно к проточно-цитометрическому способу диагностики аутоиммунной тромбоцитопении. Для осуществления способа из периферической крови человека выделяют тромбоциты, окрашивают их мечеными моноклональными антителами к CD41, IgG, IgM человека и анализируют с помощью проточной цитометрии. Показатель аутосенсибилизации вычисляют как отношение числа IgG (IgM)-позитивных клеток к числу клеток, фиксирующих анти-CD41 антитела. Использование способа направлено на диагностику этиологии тромбоцитопении.
Снижение количества тромбоцитов в периферической крови человека может быть следствием воздействия ряда факторов, основными из которых являются образование аутоиммунных антитромбоцитарных антител, депрессия костномозгового кроветворения, диссеминированное внутрисосудистое свертывание крови, сепсис, прием лекарственных средств, гемодилюция. Для решения вопроса о вовлечении иммунных механизмов в развитие тромбоцитопении необходимо определение аутоантител как фиксированных на поверхности клеток, так и циркулирующих в плазме крови. Результаты исследования применимы для определения тактики ведения больных и контроля эффективности кортикостероидной терапии.
Известен способ выявления антитромбоцитарных аутоантител иммуноферментным методом с нативными и модифицированными тромбоцитами (Зотиков Е.А., 2003). Однако использование данного метода для обнаружения аутоантител, фиксированных на собственных тромбоцитах больного, возможно только при числе тромбоцитов в периферической крови более 70×109/л. В то же время наибольшую диагностическую значимость имеет выявление аутоантител при низких значениях тромбоцитов в крови, т.к. именно эти состояния требуют медикаментозного лечения.
Известен способ определения антитромбоцитарных аутоантител, выполняющийся с помощью иммунофлуоресцентного теста с использованием сыворотки против иммуноглобулинов человека, меченой флуоресцирующим красителем (Катанджян Н.М., 1985). Недостатком метода является отсутствие автоматизации при оценке результатов исследования, что не исключает влияния субъективности.
Известен способ определения антител к тромбоцитам твердофазным методом (Capture-P) с образованием монослоя тромбоцитов с использованием специфического реагента Capture LISS и индикаторных эритроцитов. Недостатком данного способа является существенное затруднение при проведении исследования образцов крови больных с глубокой тромбоцитопенией (количество тромбоцитов в крови менее 20×109/л).
Наиболее близким к предлагаемому изобретению является способ обнаружения антитромбоцитарных антител с помощью проточной цитометрии (Kohler М., 1996), при котором приготовленную суспензию тромбоцитов и лимфоцитов донора инкубируют с сывороткой крови реципиента, окрашивают моноклональными флуорисцентмечеными антителами и выявляют фиксированные на клетках антитела на проточном цитофлуориметре. Способ используется для определения иммунологической совместимости донора и реципиента по антигенам тромбоцитов и лимфоцитов перед трансфузией тромбоцитных концентратов. Данный способ, обладая высокой специфичностью и чувствительностью, позволяет получить результат в течение 2 часов, что имеет несомненное значение для практической трансфузиологии. Однако он применяется только для диагностики аллосенсибилизации больных и не предусматривает выявления антител аутологичной направленности.
Техническим результатом заявляемого изобретения является создание способа, позволяющего выявлять фиксированные и циркулирующие в плазме крови антитромбоцитарные аутоантитела, принадлежащие к иммуноглобулинам классов G и M. Предлагаемый способ определения фиксированных и циркулирующих антитромбоцитарных аутоантител повышает точность диагностики аутоиммунной тромбоцитопении, что, в сою очередь, позволяет:
- назначать адекватную медикаментозную терапию;
- проводить контроль эффективности лечения;
- отслеживать момент возникновения рецидива заболевания.
Для достижения указанного результата в соответствии с прототипом из периферической крови выделяют суспензию тромбоцитов, окрашивают их мечеными антителами к CD41 и Anti-Human IgG и анализируют с помощью проточной цитометрии. В отличие от прототипа, в котором проводится выделение клеток крови доноров и определение аллоантител в сыворотке крови реципиента, в предлагаемом способе выделяют тромбоциты больного, добавляют аутосыворотку крови пациента и исследуют фиксированные и циркулирующие антитромбоцитарные аутоантитела. Оценку результата проводят в соответствии с разработанными критериями нормы. В отличие от прототипа выделенные тромбоциты дополнительно окрашивают мечеными антителами Anti-Human IgM, что необходимо для диагностики аутоиммунного заболевания в начальной стадии. Коэффициент аутосенсибилизации тромбоцитов определяют по соотношению числа Anti-Human IgG- (или Anti-Human IgM) позитивных тромбоцитов и числа клеток, фиксирующих CD41.
Способ осуществляется следующим образом:
Вариант 1
1. Выделение суспензии тромбоцитов: 3 мл венозной крови собирают в пробирки с антикоагулянтом. Кровь разбавляют в 2 раза раствором Хенкса (НПО «Микроген» ТУ 9385-088-1423783-08), затем ее наслаивают на эквивалентный объем фиколл-урографина (плотность 1,078) (Фиколл 400 NPS400, Урографин 76% N ЛС-001850) в силиконированную пробирку с коническим дном и центрифугируют 15 мин при 1200 g. Клетки из интерфазного кольца собирают, добавляют 10 мл раствора Хенкса и центрифугируют 5 мин при 700 g. Супернатант удаляют, а осадок ресуспензируют в растворе Хенкса, доводя концентрацию тромбоцитов до 4-6×105/мкл.
2. Маркируют пробирки для каждого пациента в расчете на три пробы (A, B, C). Полученную суспензию тромбоцитов вносят по 100 мкл в каждую пробу. В пробу с маркировкой «C» добавляют 100 мкл аутосыворотки пациента и инкубируют 30 мин при комнатной температуре. Затем во все пробы добавляют по 5 мл фосфатно-солевого буфера (PBS) (Биоло T), содержащего 0,1% бычьего сывороточного альбумина (BSA) (Sigma). Центрифугируют 5 мин при 3000 g. Последнюю процедуру повторяют 2 раза. Осадок клеток ресуспензируют в 100 мкл PBS.
3. В пробирки первой пробы (А) вносят по 10 мкл моноклональных антител CD41-FITC (меченые флуоресцеинизотиоционатом) (Beckman Coulter IOTest pN IM0649V), в пробирки второй и третьей пробы (B, C) - по 100 мкл моноклональных антител Goat F(ab')2 Anti-Human IgG-FITC, предварительно разведенных в PBS в соотношении 1:20. Пробы инкубируют в темноте 20 минут. Затем добавляют по 5 мл буфера PBS+BSA, и центрифугируют 5 мин при 3000 g. Последнюю процедуру повторяют.
4. Образцы анализируют на проточном цитофлуориметре, оснащенном двумя флуоресцентными каналами и лазером (длина волны 488 нм). Анализ клеток в образце проводят по трем параметрам: интенсивности прямого и бокового (бидиректного) светорассеяния (линейная шкала), флуоресценции FITC.
Полученные данные регистрируют в табличном виде. Анализ результатов осуществляют в следующем порядке. С помощью известных технических средств строят график распределения клеток по интенсивности светорассеяния и флуоресценции FITC. При анализе пробы «А» на графике выбирают регион неповрежденных тромбоцитов и определяют количество клеток, окрашенных моноклональными антителами к CD41. Далее анализируют тот же регион, но в пробах «B» и «C», определяя количество клеток, окрашенных моноклональными антителами Anti-Human IgG. В каждом образце анализируют 2×105 тромбоцитов.
Коэффициент аутосенсибилизации определяют как отношение числа клеток, окрашенных Anti-Human IgG, к числу CD41-положительных клеток.
Установлено, что у 95% здоровых лиц (доноров компонентов крови) значение фиксированных антител не превышает 2%, циркулирующих антител - 5%.
Вариант 2
В постановке вместо моноклональных антител Goat F(ab')2 Anti-Human IgG-FITC используются антитела Mouse Anti-Human IgM-FITC (Clone UHB). Данный вариант, направленный на исследование аутоантител класса IgM, применяется при анализе крови пациентов, имеющих клиническую картину иммунной тромбоцитопении в остром периоде заболевания, у которых аутоиммунные антитромбоцитарные IgG антитела не выявляются.
Ниже приводятся клинические примеры.
Пример 1
Пациент С., 71 год. Обследование во время диспансеризации. Диагноз: тромбоцитопения неясной этиологии (количество тромбоцитов в периферической крови - 98×109/л). В таблице 1 приведен результат иммуногематологического исследования фиксированных и циркулирующих антитромбоцитарных аутоантител.
Заключение: Коэффициент аутосенсибилизации тромбоцитов соответствует значениям нормы. Данных за иммунную природу тромбоцитопении не получено.
Пример 2
Пациент А., 57 лет. Клинический диагноз: иммунная тромбоцитопения, впервые выявленная. Острое течение. Стационарное лечение с 15.03.10 по 30.03.10. Проводимая терапия: метипред по стандартной схеме. В таблице 2 приведен результат иммуногематологического исследования фиксированных и циркулирующих антитромбоцитарных аутоантител от 15.03.10.
Заключение: Выявлен высокий коэффициент аутосенсибилизации тромбоцитов без инкубации (4,9%) и после инкубации с аутосывороткой (42,8%), что характерно для тромбоцитопении иммунной этиологии.
В таблице 3 приведен результат иммуногематологического исследования фиксированных и циркулирующих антитромбоцитарных аутоантител от 30.03.10.
Заключение: Коэффициент аутосенсибилизии тромбоцитов соответствует значениям нормы. Получено иммуногематологическое подтверждение эффективности медикаментозной терапии.
Таблица 1
Проба Объект исследования Моноклональные антитела Количество MKA-позитивных клеток, % Коэффициент аутосенсибилизации
A Тромбоциты CD41 98,4
B Тромбоциты Anti-Human IgG 0,3 0,3
C Тромбоциты + аутосыворотка Anti-Human 0,04 0,04
Примечание. Количество тромбоцитов в периферической крови - 98×109/л.
Таблица 2
Проба Объект исследования Моноклональные антитела Количество MKA-позитивных клеток, % Коэффициент аутосенсибилизации
A Тромбоциты CD41 44,6
B Тромбоциты Anti-Human IgG 2,2 4,9
C Тромбоциты + аутосыворотка Anti-Human IgG 19,1 42,8
Примечание. Количество тромбоцитов в периферической крови - 5×109/л.
Таблица 3
Проба Объект исследования Моноклональные антитела Количество MKA-позитивных клеток, % Коэффициент аутосенсибилизации
A Тромбоциты CD41 89,9
B Тромбоциты Anti-Human IgG 1,2 1,3
C Тромбоциты + аутосыворотка Anti-Human IgG 1,4 1,6
Примечание. Количество тромбоцитов в периферической крови -200×109/л.
Список литературы:
1. Kohler М., Dittmann J., Legler T.J., Lynen R., Humpe A., Riggert J., Neumeyer H., Pies A., Panzer S., Mayr W.R. Flow cytometric detection of platelet-reactive antibodies and application in platelet crossmatching // Transfusion, 1996, 366: 250-255.
2. R.Hoffman, E.J.Benz, S.J.Shattil, B.Furie, H.J.Cohen, L.E.Silberstein, P.McGlave. Hematology: basic principles and practice / (edited by) - 3rd Edition, 2000, 2584 p.
3. G.F.Lucas and P.Metcalfe Platelet and granulocyte glycoprotein polymorphisms Transfusion Medicine, 2000, 10, 157-154
4. Annette Von Drygalski, M.D., Brian R.Curtis, M.S., Danial W. Bougie, Ph.D., et al. Vancomycin-Induced Immune Thrombocytopenia The New England Journal of Medicine pp.904-910
5. Головкина Л.Л., Кутьина, Пушкина Т.Д. и соавт. Гуморальный ответ на антигены тромбоцитов у больных заболеваниями системы крови при трансфузиях тромбоцитов. // Вестник гематологии. - 2009. - №2. - T.V. - С.13-14.
6. Зотиков Е.А., Бабаева А.Г., Головкина Л.Л. Тромбоциты и антитромбоцитарные антитела. - М.: Монолит, 2003. - 128 с.
7. Масчан А.А., Румянцев А.Г. Стимуляция продукции тромбоцитов: новый подход к лечению хронической иммунной тромбоцитопенической пурпуры. // Онкогематология. - 2009. - N1. - С.51-56.
8. Основы клинической иммунологии / Перевод с англ. - 5-е изд. - М: ГЭОТАР - Медия, 2008. - 416 с; ил.
9. Руководство по лабораторной гематологии / Б.Сисла; пер. с англ. Под общ. ред. А.И.Воробьева. - М.: Практическая медицина, 2011. - 352 с.: ил.

Claims (1)

  1. Способ определения аутоантител к тромбоцитам, включающий в себя выделение суспензии тромбоцитов, окраску моноклональными антителами и оценку на проточном цитофлуориметре, отличающийся тем, что для анализа используют собственные тромбоциты и сыворотку крови больного, причем в качестве маркеров аутоиммунного процесса используют антитела, относящиеся к иммуноглобулинам классов G и М, при этом коэффициент аутосенсибилизации тромбоцитов рассчитывают как отношение количества Anti-Human IgG/IgM-позитивных клеток к числу клеток, фиксирующих CD41: значение коэффициента аутосенсибилизации тромбоцитов более 2% без инкубации с аутосывороткой и более 5% после инкубации с аутосывороткой расценивают как наличие у пациента антитромбоцитарных аутоантител, фиксированных на клетках и/или циркулирующих в плазме крови.
RU2012100232/15A 2012-01-10 2012-01-10 Способ определения аутоантител к тромбоцитам RU2488114C1 (ru)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2012100232/15A RU2488114C1 (ru) 2012-01-10 2012-01-10 Способ определения аутоантител к тромбоцитам

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2012100232/15A RU2488114C1 (ru) 2012-01-10 2012-01-10 Способ определения аутоантител к тромбоцитам

Publications (1)

Publication Number Publication Date
RU2488114C1 true RU2488114C1 (ru) 2013-07-20

Family

ID=48791262

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
RU2012100232/15A RU2488114C1 (ru) 2012-01-10 2012-01-10 Способ определения аутоантител к тромбоцитам

Country Status (1)

Country Link
RU (1) RU2488114C1 (ru)

Cited By (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2611348C1 (ru) * 2015-10-12 2017-02-21 Федеральное государственное бюджетное учреждение науки "Кировский научно-исследовательский институт гематологии и переливания крови Федерального медико-биологического агентства" Способ диагностики аллоиммунной тромбоцитопении новорожденного
RU2817215C2 (ru) * 2022-07-08 2024-04-11 Федеральное государственное бюджетное учреждение "Российский научно-исследовательский институт гематологии и трансфузиологии Федерального медико-биологического агентства" (ФГБУ РосНИИГТ ФМБА России) Способ диагностики аллоиммунной тромбоцитопении новорожденных

Citations (5)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2036474C1 (ru) * 1993-04-13 1995-05-27 Санкт-Петербургский педиатрический медицинский институт Способ диагностики аутоиммунной тромбоцитопении
RU2052945C1 (ru) * 1993-12-06 1996-01-27 Научно-производственное объединение пивоваренной, безалкогольной и винодельческой промышленности Безалкогольный напиток
US20050208596A1 (en) * 2002-07-03 2005-09-22 The Trustees Of The University Of Pennsylvania Compositions, methods and kits relating to anti-platelet autoantibodies and inhibitors thereof
US20090111118A1 (en) * 2007-10-29 2009-04-30 Beckman Coulter, Inc. Method for a rapid antibody-based analysis of platelet populations
RU2358267C2 (ru) * 2003-07-09 2009-06-10 Медион Диагностикс Аг Устройство и способ для одновременного определения группы крови, серологического перекрестного контроля и анализа на антитела

Patent Citations (5)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2036474C1 (ru) * 1993-04-13 1995-05-27 Санкт-Петербургский педиатрический медицинский институт Способ диагностики аутоиммунной тромбоцитопении
RU2052945C1 (ru) * 1993-12-06 1996-01-27 Научно-производственное объединение пивоваренной, безалкогольной и винодельческой промышленности Безалкогольный напиток
US20050208596A1 (en) * 2002-07-03 2005-09-22 The Trustees Of The University Of Pennsylvania Compositions, methods and kits relating to anti-platelet autoantibodies and inhibitors thereof
RU2358267C2 (ru) * 2003-07-09 2009-06-10 Медион Диагностикс Аг Устройство и способ для одновременного определения группы крови, серологического перекрестного контроля и анализа на антитела
US20090111118A1 (en) * 2007-10-29 2009-04-30 Beckman Coulter, Inc. Method for a rapid antibody-based analysis of platelet populations

Non-Patent Citations (5)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
LINA TERESA ROMERO-GUZMÁN et. al. Detection of platelet-associated immunoglobulins by flow cytometry for the diagnosis of immune thrombocytopenia: a prospective study and critical review // Haematologica - 2000 - V.85 - P.627-631. *
МАСЧАН А.А. и др. Стимуляция продукции тромбоцитов: новый подход к лечению хронической иммунной тромбоцитопенической пурпуры. - Онкогематология, No.1, 2009, с.51-56. *
МАСЧАН А.А. и др. Стимуляция продукции тромбоцитов: новый подход к лечению хронической иммунной тромбоцитопенической пурпуры. - Онкогематология, №1, 2009, с.51-56. Назаренко Г.И., Кишкун А.А. Клиническая оценка результатов лабораторных исследований. - Литан, Медицина (Татарстан), М.: Медицина. - 2000. - 544 с. LINA TERESA ROMERO-GUZMÁN et. al. Detection of platelet-associated immunoglobulins by flow cytometry for the diagnosis of immune thrombocytopenia: a prospective study and critical review // Haematologica - 2000 - V.85 - P.627-631. НЕЕ JIN HUH et. al. Flow Cytometric detection of platelet-associated immunoglobulin in patients with immune thrombocytopenic purpura and nonimmune thrombocytopenia // Ann Clin Lab Sci - Summer - 2009 - V.39 - №3 - P.283-288. Kohler М. et. al. Flow cytometric detection of platelet-reactive antibodies and application in platelet crossmatching // Transfusion - 1996 -; V.36(3) - P.250-255. *
Назаренко Г.И., Кишкун А.А. Клиническая оценка результатов лабораторных исследований. - Литан, Медицина (Татарстан), М.: Медицина. - 2000. - 544 с. *
НЕЕ JIN HUH et. al. Flow Cytometric detection of platelet-associated immunoglobulin in patients with immune thrombocytopenic purpura and nonimmune thormbocytopenia // Ann Clin Lab Sci - Summer - 2009 - V. 39 - No. 3 - P. 283-288 *

Cited By (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2611348C1 (ru) * 2015-10-12 2017-02-21 Федеральное государственное бюджетное учреждение науки "Кировский научно-исследовательский институт гематологии и переливания крови Федерального медико-биологического агентства" Способ диагностики аллоиммунной тромбоцитопении новорожденного
RU2817215C2 (ru) * 2022-07-08 2024-04-11 Федеральное государственное бюджетное учреждение "Российский научно-исследовательский институт гематологии и трансфузиологии Федерального медико-биологического агентства" (ФГБУ РосНИИГТ ФМБА России) Способ диагностики аллоиммунной тромбоцитопении новорожденных

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Goldschneider et al. Anatomical distribution of T and B lymphocytes in the rat: Development of lymphocyte-specific antisera
US10114012B2 (en) Methods and assays for detecting and quantifying pure subpopulations of white blood cells in immune system disorders
Kelton et al. A prospective comparison of four techniques for measuring platelet‐associated IgG
Aljadi et al. A novel tool for clinical diagnosis of allergy operating a microfluidic immunoaffinity basophil activation test technique
EP3555626A1 (en) Methods and kits for detecting basophil activation
RU2488114C1 (ru) Способ определения аутоантител к тромбоцитам
Lopez et al. Use and interpretation of diagnostic immunologic laboratory tests
Johansson et al. Detection of CAR‐T19 cells in peripheral blood and cerebrospinal fluid: An assay applicable to routine diagnostic laboratories
Ameisen et al. A role for glycoprotein IIb‐IIIa complex in the binding of IgE to human platelets and platelet IgE‐dependent cytotoxic functions
CN110488012A (zh) 一种新生儿肺炎的辅助诊断试剂盒及应用
Downing The lymphocyte crossmatch by flow cytometry for kidney transplantation
AU2015263482B2 (en) Diagnostic of chronic myelomonocytic leukemia (CMML) by flow cytometry
US20180052162A1 (en) Method to detect the onset and to monitor the recurrence of chronic graft versus host disease in tranplantation patients
Tazzari et al. Detection of platelet-associated antibodies by flow cytometry in hematological autoimmune disorders
deShazo et al. Use and interpretation of diagnostic immunologic laboratory tests
Hennink et al. Increased number of tissue factor protein expressing thrombocytes in canine idiopathic immune mediated hemolytic anemia
CN108883174B (zh) 用于鉴定可移植的组织样品的IgG亚型测定
ES2389335T3 (es) Procedimiento para la selección, cribado, de sangre y/o suero con respecto a anticuerpos antigranulocitarios en una extensa población de donantes
US20050260563A1 (en) Methods for measurement of lymphocyte function
Muniz‐Diaz et al. Characterization of antibodies directed against platelet cryptantigens detected during the immunological study of 356 consecutive patients with presumed autoimmune thrombocytopenia (AITP)
WO2014160822A1 (en) Methods for identifying patients at risk for costimulation blockade resistant rejection
EP4057004A1 (en) Method for acquiring information on spinal muscular atrophy
Kerns et al. Safety Profiling of Tumor-targeted T Cell–Bispecific Antibodies with Alveolus Lung-and Colon-on-Chip
Beres et al. A detailed flow cytometric method for detection of low-level in vivo red blood cell–bound IgG, IgA, and IgM
Legrand Eosinophil Purification from Peripheral Blood of Rhesus Monkeys

Legal Events

Date Code Title Description
MM4A The patent is invalid due to non-payment of fees

Effective date: 20140111